ФЕДЕРАЛЬНОЕ ГОСУДАРСТВЕННОЕ ОБРАЗОВАТЕЛЬНОЕ УЧРЕЖДЕНИЕ ВЫСШЕГО ПРОФЕССИОНАЛЬНОГО ОБРАЗОВАНИЯ «Курская государственная сельскохозяйственная

ФЕДЕРАЛЬНОЕ ГОСУДАРСТВЕННОЕ ОБРАЗОВАТЕЛЬНОЕ
УЧРЕЖДЕНИЕ ВЫСШЕГО ПРОФЕССИОНАЛЬНОГО ОБРАЗОВАНИЯ
«Курская государственная сельскохозяйственная
академия имени профессора И.И. Иванова»
На правах рукописи
РОТМИСТРОВСКАЯ Елена Геннадьевна
ФУНКЦИОНАЛЬНЫЕ РЕЗЕРВЫ ЩИТОВИДНОЙ ЖЕЛЕЗЫ
И ТЕСТОСТЕРОНСИНТЕЗИРУЮЩЕЙ СИСТЕМЫ У КОРОВ
С РАЗНОЙ МОЛОЧНОЙ ПРОДУКТИВНОСТЬЮ И ИХ ТЕЛЯТ
Специальность: 03.03.01 - физиология
ДИССЕРТАЦИЯ
на соискание ученой степени кандидата биологических наук
Научный руководитель:
доктор биологических наук, профессор
В.И. Ерёменко
Курск - 2014
СОДЕРЖАНИЕ
ОБЩАЯ ХАРАКТЕРИСТИКА РАБОТЫ
5
1. ОБЗОР ЛИТЕРАТУРЫ
10
1.1 Роль эндокринной системы в обмене веществ и
продуктивности животных
10
1.2 Значение тестостерона в организме животных
15
1.3 Роль щитовидной железы в организме животных
21
1.4 Прогнозирование молочной продуктивности крупного рогатого
скота
34
2. МАТЕРИАЛЫ И МЕТОДЫ ИИСЛЕДОВАНИЙ
40
3. РЕЗУЛЬТАТЫ ИССЛЕДОВАНИЙ
44
3.1 Динамика суточных удоев у подопытных лактирующих коров
44
Уровень общего белка в крови лактирующих коров с разной
3.2
молочной продуктивностью
45
3.3 Динамика общих липидов в крови лактирующих коров
48
3.4
Динамика
общего
холестерола
в
крови
лактирующих
разнопродуктивных коров
50
3.5 Динамика активности аминотрансфераз в крови
лактирующих коров
53
3.6 Динамика тиреоидных гормонов в крови лактирующих коров
с разной молочной продуктивностью
57
3.7 Функциональные резервы щитовидной железы у коров с
разным уровнем молочной продуктивности по фазам лактации
61
3.8 Динамика концентрации тестостерона в крови лактирующих
коров
67
3.9 Функциональные резервы тестостеронсинтезирующей
системы у лактирующих коров на пике и в конце лактации
70
3.10 Динамика живой массы телочек, полученных от
разнопродуктивных коров
81
2
3.11 Динамика общего белка в крови телочек, полученных от
разнопродуктивных коров
82
3.12 Уровень общего холестерола в крови телочек, полученных от
разнопродуктивных коров
84
3.13 Динамика общих липидов в крови телочек, полученных от
разнопродуктивных коров
85
3.14 Активность аминотрансфераз в крови телочек, полученных от
разнопродуктивных коров
87
3.15 Концентрация тиреоидных гормонов в крови телочек,
полученных от разнопродуктивных коров
90
3.16 Функциональные резервы щитовидной железы у телочек,
полученных от разнопродуктивных коров
93
3.17 Концентрация тестостерона в крови телочек, полученных от
разнопродуктивных коров
95
3.18 Функциональные резервы тестостеронсинтезирующей
системы у 6 -месячных телочек
97
3.19 Состояние обмена веществ, щитовидной железы и
тестостеронсинтезирующей системы у 20 – месячных телок и связь
этих показателей с будущей их молочной продуктивностью
ЗАКЛЮЧЕНИЕ
100
122
ВЫВОДЫ
132
ПРАКТИЧЕСКИЕ ПРЕДЛОЖЕНИЯ
134
СПИСОК ИСПОЛЬЗОВАННОЙ ЛИТЕРАТУРЫ
136
ПРИЛОЖЕНИЯ
166
3
Перечень используемых в работе сокращений
КАТС – коэффициент активности тестостеронсинтезирующей системы
ИАТГ - индекс активности тиреоидных гормонов
Т 3 – трийодтиронин
Т 4 – тироксин
ТТГ – тиреотропный гормон
ХГ – хорионический гонадотропин
АСТ - аспартатаминотрансфераза
АЛТ - аланинаминотрансфераза
4
ОБЩАЯ ХАРАКТЕРИСТИКА РАБОТЫ
Актуальность выбранной темы. Эффективная селекционная работа
в молочном скотоводстве на современном этапе ее развития невозможна без
комплексного использования в ней не только зоотехнических методов, но и
интерьерных показателей животного.
В этом перспективном и актуальном направлении селекции животных с
использованием показателей крови имеется ряд научных исследований,
которые проводились в разные годы (В.А. Першин, 1962; Л.С. Жебровский,
1969, 1973; П.Ф. Солдатенков,1976; М.Т. Таранов,1976; В.П. Радченков,
1984; Е.В. Бутров, В.А. Матвеев,1989; Р. О. Кертиев, 1996; В.П Кулаченко,
1997).
Имеются
исследования,
в
которых
показана
коррелятивная
зависимость между уровнем молочной продуктивности и отдельными
биохимическими показателями крови (Л.С. Жебровский, 1971; Е. В. Бутров,
В.А. Матвеев, 1989; В.Б. Дмитриев, 1998; В.И. Ерёменко, 1999, 2000, 2006;
В.М. Кретова, 2007; В.И. Ерёменко, 2008, 2010; Ю.Ю. Вострухина, 2010).
Однако использование в прогнозировании таких показателей далеко не
всегда приносит желаемые результаты, так как часто тот или иной показатель
отражает лишь кратковременную метаболическую картину животного.
Поэтому в селекционной работе необходимо все больше использовать
не только отдельные тесты, а целую систему различных показателей, что
позволит повысить уровень прогноза будущей продуктивности животных.
Все это свидетельствует о том, что необходимы глубокие исследования
в области физиологии и биохимии, которые будут направлены на раскрытие
стойких механизмов в индивидуальном развитии животного.
Разноречивость и противоречивость результатов связаны также с тем,
что биохимические показатели крови имеют высокую вариабельность
(особенно эндокринные показатели).
Поэтому изучение различных
регуляторных механизмов, которые напрямую связаны с продуктивными
5
показателями животных, должны проводиться через узловые регуляторные
системы, особенно такие, как эндокринная система (щитовидная железа, кора
надпочечников, тестостеронсинтезирующая система и др.).
Для определения оценки функциональной активности эндокринной
железы, как правило, проводят определение базального уровня того или
иного гормона. Однако, уровень гормона в крови не всегда объективно
отображает
реальное
функциональное
состояние
железы,
поэтому
определяют функциональные резервы эндокринной железы с помощью
метода функциональных нагрузок (В.П. Радченков, 1987; В.А. Матвеев, А.И.
Дюкар, 1992; В.И.Еременко, 2000, 2003; В.М. Дюмина (В.М. Кретова), 2006;
Д.А. Меченков, 2008, 2009; В.И.Ерёменко, 2010; Ю.Ю. Вострухина, 2011).
В этой связи определение показателей функциональных резервов
щитовидной железы и тестостеронсинтезирующей системы в комплексе с
метаболитами крови, которые непосредственно взаимосвязаны с уровнем
молочной продуктивности, позволит разработать надежные
тесты для
раннего прогнозирования молочной продуктивности крупного рогатого
скота, что является актуальным.
Цель и задачи исследования. Целью данной диссертационной работы
было определение функционального состояния тестостеронсинтезирующей
системы,
щитовидной
железы
и
показателей
обмена
веществ
у
разнопродуктивных коров и их телочек, а также разработка математических
моделей
с
использованием
изучаемых
показателей
для
раннего
прогнозирования молочной продуктивности крупного рогатого скота черно –
пестрой породы.
Для достижения указанной цели были поставлены следующие задачи:
1. Изучить уровень общего белка, холестерола, липидов, активности
АЛТ, АСТ в крови лактирующих коров черно – пестрой породы с разным
уровнем молочной продуктивности.
6
2. Определить уровень гормонов : тироксина, трийодтиронина и
тестостерона в крови лактирующих коров черно – пестрой породы с разным
уровнем молочной продуктивности.
3. Установить функциональные резервы щитовидной железы и
тестостеронсинтезирующей системы у разнопродуктивных коров.
4. Изучить метаболический и гормональный статус, функциональные
резервы щитовидной железы и тестостеронсинтезирующей системы
у
телочек, полученных от разнопродуктивных коров.
5. Разработать математические модели с использованием полученных
показателей для раннего прогнозирования молочной продуктивности коров.
Научная новизна работы. Впервые проведено комплексное изучение
метаболических и гормональных показателей, а также функциональных
резервов щитовидной железы и тестостеронсинтезирующей системы у
разнопродуктивных коров и их телочек. Разработаны математические модели
с использованием полученных показателей для раннего прогнозирования
молочной продуктивности крупнорогатого скота черно – пестрой породы.
Теоретическая и практическая значимость работы. Состоит в том,
что полученные результаты исследования расширяют научное представление
об особенностях метаболического и гормонального статуса, а также
функциональных резервах щитовидной железы и тестостеронсинтезирующей
системы у разнопродуктивных коров черно – пестрой породы и их телочек.
Полученные математические модели могут быть использованы для раннего
прогнозирования молочной продуктивности крупного рогатого скота черно пестрой породы.
Апробация и реализация результатов научных исследований.
Основные положения диссертационной работы были доложены на 6 научных
конференциях:
- Международной научно-практической конференции, посвященной
30-летию
образования
кафедры
кормления,
разведения
и
генетики
7
сельскохозяйственных животных Брянской ГСХА ( 18-19 октября 2012 г.). Брянск, 2012.
-
Международной
научно
–
практической
конференции
«Агропромышленный комплекс: контуры будущего» (14-16 ноября 2012 г.) .
– Курск, 2012.
- Международной научно-производственной конференции «Проблемы
сельскохозяйственного производства на современном этапе и пути их
решения» (20-21 ноября 2012 г.). – Белгород, 2012.
-
Международной
научно-практической
конференции
«Развитие
аграрного сектора в условиях вступления России в ВТО» (28 ноября 2012 г.).Смоленск, 2012.
-
Международной
научно-производственной
конференции
«Инновационные пути развития АПК на современном этапе» (14- 16 мая
2012 г.). – Белгород, 2012.
-
Международной
научно-производственной
конференции
«Актуальные проблемы ветеринарии и интенсивного животноводства,
посвященной
памяти доктора ветеринарных наук,
профессора Ткачева
Анатолия Алексеевича» (1-2 октября 2013 г.).- Брянск, 2013.
- Международной научно - практической конференции «Научное
обеспечение агропромышленного производства» (29-31 января 2014 г.). –
Курск, 2014.
Объем и структура диссертации. Работа изложена на 165 страницах
основного текста, содержит 7 рисунков, 44 таблицы. Список литературы
включает 276 источников, в том числе 63 иностранных авторов.
Публикации результатов исследования. По материалам диссертации
опубликовано
7
статей
и
2
статьи
опубликованы
в
изданиях,
рекомендованных ВАК РФ Министерства образования и науки.
8
Основные положения, выносимые на защиту:
1) уровень общего белка, общего холестерола и общих липидов, а также
активность АЛТ и АСТ в крови более высокоудойных коров выше и
положительно коррелируют с величиной суточных удоев;
2) уровень тироксина, трийодтиронина и тестостерона у высокоудойных
коров ниже, чем у низкоудойных и отрицательно коррелирует с
величиной суточных удоев;
3) коэффициенты
активности
тиреоидных
гормонов
и
индексы
активности тестостеронсинтезирующей системы у высокоудойных
коров ниже, чем у низкопродуктивных, и отрицательно коррелируют с
уровнем молочной продуктивности коров;
4) уровень общего белка, общего холестерола и общих липидов, а также
активность АЛТ, АСТ выше в крови телочек, полученных от
высокоудойных коров;
5) уровень тироксина, трийодтиронина и тестостерона в крови телочек
имеет такую же направленность, как и у их матерей;
6) функциональные резервы щитовидной железы у телочек, полученных
от более высокоудойных коров, имеют меньший коэффициент
активности тиреоидных гормонов;
7) функциональные резервы тестостеронсинтезирующей системы ниже у
телочек, полученных от более высокоудойных коров, и имеют
меньший индекс активности тестостеронсинтезирующей системы;
8) математические модели для раннего прогнозирования молочной
продуктивности крупного рогатого скота черно – пестрой породы.
9
1. ОБЗОР ЛИТЕРАТУРЫ
1.1 Роль эндокринной системы в обмене веществ и продуктивности
животных
Регуляция
основных
физиологических
функций
в
организме
происходит за счет влияния гормонов на органы и клетки организма.
Гормоны оказывают мощное биологическое действие на рост различных
органов и тканей, а также влияют на дифференцировку тканей организма,
участвуют в процессах обмена веществ. Эти вещества выделяются одной или
несколькими эндокринными железами, могут действовать как синергисты
или антагонисты (В.Л. Владимиров, 1974).
Для всех гормонов характерны следующие характеристики: наличие
специализированной железы или клетки, вырабатывающей данный гормон.
Выделение гормона непосредственно в кровь и транспортировка его к органу
- мишени, а также способность специфически воздействовать на ткани и
органы- мишени при незначительных концентрациях их в крови (Н.А. Юдаев,
1980).
Эндокринная система осуществляет основную роль в процессах обмена
веществ, скорости синтеза белков, углеводов, жиров. Эндокринная система
через выделяемые ею гормоны оказывает влияние на специфические клетки мишени. Образующиеся в организме различные гормоны, ферменты и белки
являются специфичными и оказывают регулирующее влияние на различные
метаболические процессы (Д. Теппермен, 1989; J.W.
Blum, P. Kuna, W.
Scheider, 1979; М. Assane, А. Sere, 1990).
Гормоны принимают участие в регуляции активности всех клеток
организма.
Воздействуя на органы-мишени, они вызывают в них
значительные физиологические изменения. У гормона может быть несколько
органов-мишеней, и вызываемые им физиологические изменения могут
сказываться на целом ряде функций организма (Б.В. Алёшин, В.И. Губский,
10
1983; В.Б. Дмитриев, 1998).
В научной литературе имеется достаточное количество работ,
указывающих
на
мощное
воздействие
различных
гормонов
на
метаболические процессы, происходящие в организме животного (В.Т.
Головань, 1972; М.Е. Зельцер, 1988; В.И. Георгиевский, 1990; П.Д. Дейвис,
2000; J.W. Blum et al., 1983; H. Bonsack, 1992).
В организме связь между клетками, органами и тканями происходит
следующим образом: нервные клетки получают сигналы, которые поступают
из внешней и внутренней среды и преобразуют их в нервные импульсы и
синапсы, так же и эндокринная система через эндокринные железы выделяет
в кровь гормоны, влияя на органы - мишени (Л.С. Жебровский, 2002).
После того как гормон соединится с рецептором, в клетке запускается
целая
система
биохимических
реакций,
которые
воздействуют
на
синтетический аппарат клетки и приводят в итоге к перестройке ее работы:
усилению или прекращению синтеза различных веществ, изменению
проницаемости клеточной мембраны (В.А. Ткачук, 1983).
По данным литературы механизм действия гормонов полностью
является не изученным. Однако установлено, что после синтеза гормоном
железой он попадает непосредственно в кровь. В крови гормоны
связываются со специфическими белками переносчиками – альбуминами и
только лишь 5 % гормона в крови остается в свободном виде. К органам и
тканям гормоны доставляются кровотоком. Физиологическое действие
гормона начинает осуществляться после его контакта к этому гормону
рецепторами. С кровотоком гормон доставляется ко всем органам и тканям и
контактирует с ними. Однако его специфическое действие начинается после
соединения с чувствительными к этому гормону рецепторами (Н.А. Юдаев,
1980; В.А. Ткачук, 1983).
Активность эндокринной системы зависит от способности желез
внутренней секреции выделять определенное количество гормонов, а также
11
зависит от скорости и способности белков крови к транспортировке
гормонов к органам - мишеням. Обычно гормоны связываются белковыми
фракциями
крови
транспортируются
(альбумины,
ими
во
все
глобулины,
органы
и
преальбумины)
системы.
В
и
организме
вырабатывается большое количество гормонов, ферментов и других белков,
являющихся специфичными и регулирующих процессы метаболизма и роста
(С.И. Плященко, 1974; С.В. Шаталов, 1983; В.С. Грачев, 2002).
Белковые молекулы построены из множества полипептидных цепочек,
которые, в свою очередь, состоят из аминокислотных остатков. В
зависимости от последовательности пар оснований в генах зависят свойства
ферментов, а также и белков, которые синтезируются в организме. В связи с
этим информация, которая закодирована в генах, является программой,
которая определяет свойства всех белков, ферментов и гормонов данного
организма, а гены как носители наследственной информации определяют не
только специфику белков, но и участвуют в их синтезе. Поэтому можно
предположить, что индивидуальные различия животных в различных
проявлениях, в том числе и продуктивных, а также различные патологии в
организме связаны с эндокринной системой, активностью ферментов и в
конечном итоге с уровнем обмена веществ. Поэтому, чтобы регулировать эти
процессы,
необходимо
наследственную
учитывать
особенность
породную
животных
(И.П.
и
индивидуальную
Битюков,
1995;
В.В.
Алифанов, 1999).
Уровень гормонов в организме зависит от множества факторов
внешней и внутренней среды: температуры среды, поражения радиацией,
питания, пола, наличия особей другого пола. Так, например, содержание
большинства видов животных в помещениях с определенной постоянной
температурой не влияет на их сезонное изменение обмена веществ. Также в
период размножения животных выделение половыми железами гормонов в
большинстве случаев зависит от длины светового дня (В.В. Валяжников,
12
1981; А.Е. Болгов, 1982; И.Ф. Горлов, 1996; С.А. Брагинец, 1998).
Факторы внешней среды по- разному влияют на состояние животных
разных видов. Так например, у бурундука повышение образования спермы и
активация инстинкта размножения наблюдается только лишь при повышении
температуры внешней среды ( G. M. Chiericato, 1997).
Также
накоплен
достаточно
большой
материал
в
научных
исследованиях, где доказана роль гормонов в процессах размножениях (И.Е.
Мозгов, 1971; Б.В. Покровский, 1976; В.А. Наук, 1984; В.А. Матвеев, 1997).
Например, брачные игры самцов, охрана гнезда птицами происходят
только в том случае, если в организм поступают половые гормоны и гормоны
гипофиза в определенной последовательности. Удаление или угнетение
функции отдельных эндокринных желез приводит к изменению обмена
веществ в организме и поведенческим реакциям животных (Н.А. Юдаев,
1976; Wang Jianchen, 1988).
Также в научной литературе приведены данные о роли гормонов и их
связи с продуктивностью животных (В.И. Мельников, 1966; Р.С. Москалик,
1986; О.Ю. Осадчая, 1998; П. Прохоренко, 2000; В.И. Ерёменко, 2001; 2004;
2004).
Например, в гипофизе карликовых телят уровень гормона роста ниже,
чем у нормальных животных, что указывает на генетический контроль
секреции соматотропного гормона. Установлено, что уровень СТГ с
увеличением возраста уменьшается (R. Hall, 1978; A. Trenke, 1972). По
данным Ю.Н. Шамберева (1975), между содержанием соматотропного
гормона и ростом животных отмечена положительная коррелятивная связь.
По результатам таких исследований было сделано заключение, что
концентрацию соматотропного гормона можно использовать как тест для
прогноза скорости роста животных. В исследованиях В.П. Радченкова (1980,
1997) положительная коррелятивная связь между суточным приростом массы
животного
и
концентрацией
соматотропного
гормона
в
крови
не
13
установлена.
Исследователь В. М. Кретова (2006, 2007, 2008) указывает на
возможность
использования
в
селекции
животных
данных
по
функциональной активности щитовидной железы.
Также в работах других исследователей (Д.А. Меченков, 2008, 2009)
указывается на взаимосвязь уровня тестостерона в крови
лактирующих
коров с их продуктивностью.
Отмечается
взаимосвязь
уровня
молочной
продуктивности
и
функциональной активности коры надпочечников (Е.В. Морозова, 2010).
В работах Ю.Ю. Вострухиной (2010) имеются данные о связи уровня
тестостерона
в
крови
лактирующих
коров
с
уровнем
молочной
продуктивности.
В своих исследованиях А.Н. Подрепный (2011) отмечает связь
концентрации
инсулина
с
уровнем
молочной
продуктивности
у
лактирующих коров.
В.И. Ерёменко (2000, 2003, 2006, 2010)
в своих исследованиях
отмечает, что уровень гормонов и функциональные резервы желез
внутренней секреции у разных пород животных отличаются, это указывает
на то, что такие данные
можно использовать как
тесты для раннего
прогнозирования молочной продуктивности скота.
Метод определения
функциональных резервов, как указывает
Радченков В.П. с сотрудниками (1985), является классическим методом в
эндокринологии, позволяющим выявить пределы активности эндокринных
желез у человека и у животных. Этот метод занял довольно прочное место
среди прочих методов оценки функционального состояния эндокринной
системы. Недостаточно знать, что данная железа анатомически изменена, но
и необходимо изучить и функциональные изменения ее. По отношению к
каждой из эндокринных желез существуют методы функциональной
диагностики, так называемые тесты, однако диагностическая ценность их в
14
большинстве случаев очень мала.
На животных этот метод раньше применялся довольно редко. Для
оценки
функциональных
резервов
щитовидной
железы
применяют
тиреотропный гормон, для оценки резервов коры надпочечников –
аденокортикотропный гормон, а для нагрузки на инсулярный аппарат
животных применяют глюкозу (В.Б.Дмитриев, 1998; В.М. Кретова, 2007).
Для раннего прогнозирования молочной продуктивности коров В. И.
Ерёменко и В.М. Кретова (2007) рекомендуют использовать коэффициенты
активности щитовидной железы .
В работах В.Д. Дмитриева с сотрудниками (1975) описывается
методика выполнения определения функциональных резервов семенника,
посредством многократной стимуляции хорионическим гонадотропином.
Для
определения
функциональных
резервов
семенника
проводилась
многократная стимуляция хорионическим гонадотропином. ХГ в дозе 30006000 ед. вводили внутривенно 5 раз с интервалом 72 часа. Кровь для
исследования отбирали из яремной вены перед каждым введением
хорионического гонадотропина. Через 2 часа после введения ХГ семенник
отвечал резким повышением концентрации тестостерона в крови по
сравнению с базальным уровнем гормона у большинства видов животных.
После третьей нагрузки ХГ уровень тестостерона достигал своего максимума
через 24 часа. Последующие стимуляции не вызывали желаемого эффекта.
Таким образом, значение эндокринной системы в организме животных
многогранно и зависит от множества факторов.
1.2 Значение тестостерона в организме животных
В 1935 году Эрнст Лако выделил из яичек быка «кристаллический
мужской гормон», а в том же году немецкий химик Бутенандт получил и
описал структуру тестостерона, а неделей позже югославский химик
Леопольд Ружичка осуществил его частичный синтез из холестерина.
15
В 1939 году Ружичка и Бутенандт получают Нобелевскую премию за
открытие метода синтеза тестостерона из холестерина.
В мужском организме тестостерон синтезируется в клетках Лейдига, и
является главным стероидным гормоном семенника (J. A. Ivancsies, 1985).
Клетки Лейдига - крупные клетки, входящие в состав ткани семенника,
диаметром около 20 мкм с овальным ядром. Основной функцией клеток
Лейдига является синтез мужского полового гормона – тестостерона.
В
женском
организме
тестостерон
синтезируется
яичниками,
превращаясь в клетках зреющего фолликула в эстрогены, способствует
развитию молочных желёз (концентрация его во время беременности
увеличивается) (В.И. Георгиевский, 1990).
У женских особей около ворот яичников расположены клетки, которые
по строению похожи на клетки Лейдига в мужском организме, именно в них
синтезируются андрогены. Все стероидные гормоны синтезируются в
организме из холестерола. Роль в физиологических функциях организма
проявляется на всех этапах жизнедеятельности организма (А.Г. Резников,
1988).
Общим предшественником стероидных гормонов является холестерин.
Углеродный скелет холестерина включает 27 атомов углерода и состоит из 4
конденсированных колец. Четвертое кольцо имеет длинную боковую цепь.
Холестерин, необходимый для синтеза стероидных гормонов, поступает из
разных источников в гормонсинтезирующие клетки желез, а в составе
липопротеинов низкой плотности (ЛНП) или синтезируется в клетках из
ацетил-СоА. Избыток холестерина откладывается в липидных каплях в виде
эфиров жирных кислот. Запасной холестерин вновь быстро мобилизуется за
счет гидролиза. (А. Ленинджер, 1985).
Можно выделить два основных действия тестостерона: анаболическое
и андрогенное действие.
Первое включает в себя ускорение прироста
мышечной массы и физической силы, увеличение плотности костной ткани
16
(кальцификация костей), стимуляцию линейного роста костей, способствует
созреванию
костной
ткани
и
анаболический
эффект
тестостерона
стимулирует синтез белка в организме, участвует в регуляции синтеза
липопротеидов
печенью,
модулирует
синтез
эндорфинов
("гормонов
радости"), инсулина, обеспечивает задержку в организме азота, калия,
кальция, серы, фосфатов, а также натрия, хлора, воды ( М.И. Балаболкин,
1998).
Андрогенное действие у мужских особей выражается формированием
половой системы по мужскому типу, развитием мужских вторичных половых
признаков, активирует половое влечение, сперматогенез и потенцию,
отвечает за психофизиологические особенности полового поведения.
У женщин тестостерон участвует в механизме регрессии фолликула в
яичниках и в регуляции уровня гонадотропных гормонов гипофиза (М.И.
Балаболкин, 1998).
Для поддержания мужского фенотипа (вторичные половые признаки) в
организме необходим тестостерон (A.M. Arnold, 1997).
Для развития вторичных половых признаков, которые увеличиваются с
повышением тестостерона в организме в период полового созревания,
необходим тестостерон. Также необходимо учитывать важную роль
тестостерона в сперматогенезе (М. Santos, 1998).
Своим анаболическим действием тестостерон оказывает влияние на
гладкую и мышечную ткань, приводит к увеличению их массы. Уменьшение
тестостерона в организме приводит к мышечной дистрофии, а после к
атрофии. Этот гормон участвует в обмене липидов в организме (Ф.Ф.
Эйснер, 1977; С.В. Шаталов, 1983; Ю.Г. Абовян, 1990; Е. Annison, 1982).
Мужской организм вырабатывает в 10 раз меньше эстрогена, чем в
женском, и в 10 раз больше тестостерона, чем его производится в женских
надпочечниках, около 4-7 мг в сутки у мужских особей, а у женских 0,5 мг
тестостерона в сутки ( Н.А. Юдаев, 1980).
17
Основной тестостерон, находящийся в организме, циркулирует в крови
в виде соединения со специфическим белком-носителем – тестостеронэстрадиол
-
связывающий
глобулин.
Этот
гликопротеидный
белок
вырабатывается в печени. В крови связывает половые гормоны: тестостерон,
5-дигидротестостерон, андростендион, эстрадиол, прогестерон, ограничивая
количество биологически активной (не связанной) части каждого из
гормонов (Л.И. Хайсанова, 1996; Ю.Н. Шамберев, 1970).
Биологический эффект тестостерона наиболее специфичен в клетках –
мишенях, где этот гормон накапливается. В клетках семенника, яичниках у
женских особей, гипоталамусе, матке и фолликулах были найдены
рецепторы к тестостерону (В.П. Радченков, 1985; А. Trenke, 1972).
Во время развития плода тестостерон синтезируется яичками плода и
участвует в дифференцировке головного мозга и половой системы, которая в
свою очередь развивается по мужскому типу. В период полового созревания
тестостерон участвует в формировании вторичных половых признаков (А.Г.
Резников, 1988).
На особей женского пола тестостерон и дигидротестостерон оказывает
влияние в развитии их полового аппарата. Также в женском организме
тестостерон участвует в процессах биосинтеза в матке и в фолликулах
яичников. Повышенная концентрация тестостерона в женском организме
приводит к нарушению функций яичников, а также к вирилизации (Б.В.
Покровский, 1976).
При удалении семенников происходят нарушения в организме. Это
недоразвитие
половых
органов,
диспропорция
скелета
и
ожирение.
Кастрация в зрелом возрасте не вызывает такого резкого нарушения обмена
веществ. Также происходит снижение синтеза ферментов, отвечающих за
анаболические процессы, но при введении тестостерона их синтез
восстанавливается (А.Г. Резников, 1982; Р.Н. Ойвадис, 1984; А.Г. Резников,
1988; Р. Humbolt, 1986).
18
Концентрация тестостерона в крови животных находится под
контролем лютеинизирующего гормона (ЛГ) гипофиза (R. Everett, 1986).
В научной литературе имеется достаточное количество работ,
указывающих на то, что уровень тестостерона зависит от возраста, пола,
сезона года, количества спермопродукции (В.А. Битюков, 1983; В.Л.
Владимиров, В.А. Рыжков, М.Ю. Чернов, 1990; Е.П. Ващекин, 1995; С.А.
Брагинец, 1998; T. J. Parkinson, 1985).
В
клетках
Лейдига
отсутствует
запас
тестостерона,
но
при
необходимости эти клетки способны повысить его синтез за счет повышения
генов ферментов стероидогенеза (В. Bartoov, 1981; R.G. Saacke, 1983).
Гормональный потенциал семенников – характеристика способностей
семенников
вырабатывать
тестостерон,
т.е.
способности
экстренных
выбросов гормональных ресурсов клеток Лейдига. В частности, это
необходимо в условиях социальной конкуренции ( Л.В. Осадчук, 2001).
Установлена отрицательная коррелятивная связь между концентрацией
тестостерона в крови животных и проявлением заботы о потомстве у
мужских особей (M. Santos, 1998).
Гиперсекреция андрогенов наблюдается при опухолях клеток Лейдига ,
что приводит к повышенному проявлению мужских половых признаков.
Такое явление наблюдается, как правило, у подростков. При опухолях
семенников синтезируются андрогены, которые вызывают феминизацию
В
случае
продуцируется
редкой
столько
опухоли
семенников
хорионических
-
хориокарциномы
гонадотропинов,
что
-
анализ
минимального количества мочи или сыворотки дает те же результаты, что и
при беременности у женщин. Развитие хориокарциномы может привести к
феминизации. У человека отмечено сохранение половой активности при
удалении семенников (R.M. Couch, 1973; R.E. Johnsonbaugh, 1976).
У самцов уровень тестостерона генетически детерминирован, поэтому
в любой популяции животных существуют особи с низким или высоким
19
уровнем половых гормонов в крови, например у песчанки уровень
тестостерона зависит от внутриутробного развития потомства: у мужских
эмбрионов уровень тестостерона выше (G. M. Chiericato, 1997).
Уровень
тестостерона
у
мужских
особей
достигает
своих
максимальных значений в возрасте 3 – 4 месяца, а затем незначительно
снижается (W. Skrzypczak, 1998).
Между уровнем тестостерона и среднесуточными приростами у быков
установлена положительная коррелятивная связь (В.П. Радченков, 1980).
Радченков В.П. с сотрудниками (1991) также установили, что у бычков
мясного направления продуктивности концентрация тестостерона в крови
выше, чем у молочных.
Также установлены связи качества спермы быков с уровнем
тестостерона в крови (А.Н. Варнавский, 1994).
Установлена положительная коррелятивная связь между уровнем
тестостерона в крови и уровнем резистентности организма (С.В. Шаталов,
1983).
Также тестостерон оказывает влияние на родовые процессы в
организме. К концу родов концентрация тестостерона снижается (J. K.
Huttunen, 1972).
Тестостерон участвует в стимуляции в желтом теле прогестерона (W.
Skrzypczak, 1998).
У
крупного
рогатого
скота
в
период
беременности
уровень
тестостерона увеличивается с увеличением срока беременности (К.Г.
Дашукаева, 1997).
Под влиянием стероидных гормонов происходит выработка феромонов
в организме животных, которые определяют половое поведение (К.Г.
Дашукаева, 1997; В.Б.Дмитриев, 1998).
Хорионический гонадотропин (ХГ) - это функциональный аналог
лютеинизирующего гормона. Изучение процессов, которые регулируют
20
гормональный ответ семенников при стимуляции ХГ, является актуальной
общебиологической и медицинской проблемой из - за широкого применения
в медицине и сельском хозяйстве для стимуляции тестикулярной функции и
при исследовании гормональных резервов семенников. ХГ используется для
усиления тестикулярного стероидогенеза и сперматогенеза у домашних
животных, крупного и мелкого рогатого скота, при разведении в неволе
пушных зверей, рыб, земноводных (A.M. Arnold, 1997).
1.3 Роль щитовидной железы в организме животных
Одной
из
центральных
желез
внутренней
секреции
является
щитовидная железа, обладающая способностью регулировать практически
все основные процессы обмена веществ в организме ( Н.А. Абрамова, В.В.
Фадеев, Г.А. Герасимов, Г.А. Мельниченко, 2006).
Щитовидная железа размещается на передней поверхности шеи между
щитовидным хрящом и 5-6 м кольцами трахеи. Железа состоит из правой и
левой долей, соединенных между собой перешейком. Длина каждой доли
железы составляет 2,5 – 4 см, ширина 1,5-2 см, толщина 1-1,5 см. Каждая
доля железы принадлежит к общей сонной артерии, нижней части глотки и
верхней
части
пищевода.
Кровоснабжение
щитовидной
железы
осуществляется через 2 верхние щитовидные артерии, которые отходят от
внешних сонных артерий, и 2 нижние щитовидные артерии, которые отходят
от щито – шейных стволов. Артерии лежат на поверхности железы. Также
железу кровоснабжают дополнительные артериальные ветви. От щитовидной
железы отходят 34-38 лимфатических сосудов, по которым лимфа отекает в
глубокие и поверхностные лимфатические узлы. Железа иннервируется
симпатическими волокнами, отходящими от шейных ганглиев (А.И.
Акаевский, 1975).
У каждого вида животных размеры, форма и местоположение
щитовидной железы разные. Например у крупного рогатого скота плоские
21
боковые доли, железа в виде треугольника , темно – коричневого цвета, ее
вес достигает 30 гр. Щитовидная железа у свиней достигает веса до 20 гр,
непарная, немного вытянута по длине и также в виде треугольника (С.Б.
Баркер, 1963; А.А.Алиев, 1993; Б.А. Бударков, 1993).
На 35 сутки развития эмбриона можно обнаружить щитовидную
железу, расположенную в начале трахеи. После 60 суток роста эмбриона
масса и размер щитовидной железы постоянно растет (G.H. Oppenheimer,
1983). Далее с возрастом ее масса снижается (A. Witkowski, 1971).
У особей мужского пола масса щитовидной железы немного больше
чем у особей женского пола (А.А. Параскун, 1995; С.П. Васильев, 1996; М.В.
Ельчиникова, 2000).
Фолликул – структурная единица щитовидной железы. Каждый
фолликул окружен капиллярной сетью. 20-30 фолликулов образуют дольку
железы, дольки между собой разделены соединительной тканью. Полость
каждого фолликула заполнена коллоидом, состоящим из тироглобулина. В
коллоиде, кроме этого, есть ферменты, липиды, витамины, аминокислоты
(Л.М. Гольберг, 1972).
Щитовидная железа вырабатывает тиреоидные гормоны - тироксин(Т4 )
и трийодтиронин (Т3), которые являются производными аминокислоты
тирозина. Тироксин и трийодтиронин оказывают влияние на окислительные
процессы в тканях, ускоряют расщепление белков, жиров и углеводов (Б.В.
Алёшин, 1973).
Тиреоидные гормоны производят на организм животного многогранное
действие, влияют на обмен во всех органах и тканях. Они стимулируют
термогенез, усиливают поглощение кислорода и окислительные процессы в
организме, поддерживают деятельность дыхательного центра, усиливают
сократительную активность миокарда и моторику кишечника, увеличивают
скорость эритропоэза. Действие тиреоидных гормонов осуществляется
внутриклеточно. Под влиянием тиреоидных гормонов осуществляется рост и
22
дифференцировка органов и тканей ( В.Б. Розен, 1994).
Гормоны щитовидной железы играют важную роль в биосинтезе белка
в организме животных. Они оказывают прямое действие на его синтез и рост
клеток в мышцах, печени и других органах (И.К. Медведев, 1983).
В 1915 году английские ученые Б. Бауман и Р. Росс положили конец
спорам, в ткани щитовидной железы они обнаружили первый из
вырабатываемых ею биологически активных веществ – тироксин (Т4) и без
труда расшифровали его формулу. В состав Т4 входит четыре атома йода и
незаменимая аминокислота – тирозин. В 1952 году исследователям удалось
выделить другой гормон – трийодтиронин (Т3). Его молекула содержит на
один атом йода меньше.
Тиреоидные гормоны принимают активное участие в регуляции у
жвачных животных в рубцовых процессах. Под влиянием этих гормонов
усиливается брожение кормовой массы, возрастает количество летучих
жирных кислот и повышается уровень их всасывания, активизируется
моторика преджелудков (С.А.Краснова, 2007).
Деятельность щитовидной железы регулируется следующим образом:
когда организм по тем или иным причинам нуждается в усилении обмена
веществ, сигнал об этом поступает в гипоталамус. В гипоталамусе
синтезируется так называемый тиреотропный рилизинг-фактор, который,
попадая в гипофиз, стимулирует выработку в нем тиреотропного гормона
(ТТГ) (И.А. Држевецкая, 1994).
Тиреотропный гормон активизирует деятельность щитовидной железы
и
увеличивает
синтез
тиреоидных
гормонов
—
тироксина,
или
тетрайодтиронина (Т4) и трийодтиронина (Т3). Большая часть тиреоидных
гормонов — Т4 и Т3 — находится в крови в связанном неактивном состоянии,
в комплексе с определенными белками. Лишь при «освобождении» от этих
белков гормоны становятся активными (П.М. Боднар, 2007).
Выработка
гормонов
в
щитовидной
железе
круглосуточная
и
23
постоянная, за 1 минуту через каждый миллиметр ее ткани протекает 5-6 мл
крови ( М.А. Жуковский, 1982).
Из вышеизложенного можно сделать вывод, о том ,что щитовидная
железа имеет высокую секреторную активность, а также высокое значение в
физиологии организма.
Щитовидная железа богато снабжена афферентными и эфферентными
нервами. Импульсы, приходящие к железе по симпатическим нервным
волокнам,
стимулируют
ее
активность.
Контроль
за
деятельностью
щитовидной железы имеет каскадный характер (В.А. Матвеев, В.П.
Радченков, Е.Е. Бутров, 1991).
От поступления в организм йода зависит напрямую функциональная
деятельность щитовидной железы и её морфофункциональное состояние. Об
этом свидетельствуют исследования многих ученых (Е.С. Горбачев, 2006;
Н.Д. Овчаренко, 2006; Н.В. Труш, 2006; И.А. Шкуратова, 2006).
Одна треть всего йода, содержащегося в организме, находится в
щитовидной железе (И.И. Дедов, 1993).
Метаболический путь йода в организме происходит непрерывно как за
счет внешних источников - пищи и воды, так и внутренних - секреции
щитовидной железы, слюны, желудочного сока и, наконец, всасывания
продуктов распада тиреоидных гормонов (В.Г. Астапенко, А.Т. Барченко,
1978). Накопление небольшой части йода происходит в слюнных железах,
плаценте, слизистой оболочке желудка и задней части гипофиза (Д.
Теппермен, 1989).
Синтез гормонов происходит в тироцитах, которые составляют
основную массу щитовидной железы (Р.Р. Рачев, 1975).
Выделяют 4 этапа биосинтеза тиреоидных гормонов : поглощение
йодидов щитовидной железы, органификация йода, конденсация его с
тирозином и освобождение. Тироциты поглощают йодиды из плазмы крови.
Это
активный
процесс,
поддерживаемый
АТФ,
он
стимулируется
24
тиротропином, вырабатываемым базофильными клетками передней части
аденогипофиза.
Йодирование
тирозина
происходит
под
влиянием
тиропероксидазы при участии пероксида водорода (Я.Х. Туракулов, 1980).
В организме животных и человека имеется такой большой запас
тиреоидных гормонов, что этого количества хватило бы на 2 месяца при
условии нормальной жизнедеятельности организма (Т.Ю. Демидова, О.Р.
Галиева, 2008).
Отмечено, что максимальная деятельность щитовидной железы
наблюдается у свиней в возрасте 4 месяцев, а далее с возрастом ее
активность снижается (А.А.Сысоев, 1979; А.И.Манухина, 2000).
Синтез тиреоидных гормонов в организме происходит следующим
образом: А-клетки щитовидной железы избирательно захватывают йодиды из
протекающей через железу крови и образуют органические соединения йода
- гормоны Т4, Т3 и коллоидальный белок тиреоглобулин, который
представляет собой запасную форму тиреоидных гормонов и содержит
обычно около 90 % от общего количества йода, присутствующего в
щитовидной железе (Е.О. Савронь, 1966).
Хранение тиреоглобулина происходит в коллоиде, внутри фолликулов
железы (М.Г. Суриков, 1970).
В сутки тироксина выделяется до 80 мкг, а трийодтиронина всего лишь
3 мкг (I.G. Chopra, 1978).
С
сывороточными
белками
трийодтиронин
соединяется
очень
медленно, если сравнить его с тироксином (G.A. Bubenik, R.D. Brown, 1989).
Йод в организме преимущественно находится в органической форме
(В.П. Радченков, Е.В. Бутров, Е.К. Голенкевич и др., 1984).
Секреция
гормонов
в
кровь
осуществляется
под
влиянием
тиротропина. Когда уровень тиреоидных гормонов в периферической крови
снижается, выделяется тиротропин и связывается со специфическими
рецепторами на тироците. В последнем активируется аденилатциклаза и
25
накапливается АМФ, который стимулирует активность протеаз. Кроме
тироксина и трийодтиронина в кровь в незначительном количестве поступает
монойодтиронин, тироглобулин (T.F. Davies, 1983).
Особенностью щитовидной железы является её способность не только
поглощать и накапливать йод, поступающий в организм из внешней среды,
но и дейодировать его в биосинтезе своего важнейшего гормона. Процесс
синтеза йода в щитовидной железе начинается с его органификации, т.е.
присоединением к белку. Органификация заключается во включении атомов
йода в тирозил (остаток аминокислоты тирозина), который превращается в
йодтирозин, после чего начинается гормоногенез, который завершается
продукцией йодированного тиреоидного гормона, существующего в форме
тироксина (Т4) и трийодтиронина (Т3). Т3 в 5-6 раз превосходит Т4 по
активности и в 2-3 раза по скорости кругооборота. Полураспад Т4,
находящегося в циркуляции, продолжается 6-7 суток, а Т3 деградирует
быстрее, в течение 2-3 суток. Тироксин в 99,9% случаев связывается с
белками сыворотки, вследствие чего концентрация протеин связанного
(белковосвязанного) йода в крови (БСЙ) часто используется как показатель
секреторной активности щитовидной железы. Связывание тироксина с
белками сыворотки предотвращает его деградацию, но препятствует его
действию на клетки-мишени, которое осуществляется лишь свободным
тироксином.
Трийодтиронин
связывается
с
сывороточными
белками
значительно слабее, чем тироксин (Б.В. Алёшин, В.И. Губский, 1983).
Изменения концентраций белков, связывающих тиреоидные гормоны,
приводят к изменениям содержания самих T4 и T3. Например, при
повышении концентрации тироксинсвязывающего глобулина уровни общего
T4 и общего T3 в сыворотке крови возрастают, а при дефиците
тироксинсвязывающего
глобулина
—
снижаются.
Между
общим
содержанием T4 и T3 и содержанием свободных T4 и T3 существует
физиологическое равновесие. Увеличение уровня тироксинсвязывающего
26
глобулина сначала приводит к уменьшению свободных тиреоидных
гормонов. В последствии секреция этих гормонов увеличивается, а их общий
уровень в крови повышается до тех пор, пока не наступит равновесие
уровней свободного тироксина и трийодтиронина. В связи с этим,
концентрации свободного тироксина и трийодтиронина в крови не меняются.
Поэтому не меняются и метаболические процессы, регулируемые в тканях –
мишенях.
На морфологическое
состояние железы и выработку тиреоидных
гормонов могут влиять внешние и внутренние факторы (Н.А. Абрамова, В.В.
Фадеев, Г.А. Герасимов, Г.А. Мельниченко, 2006).
На понижение уровня тиреоидных гормонов могут влиять следующие
причины: воспаление ткани щитовидной железы или удаление ее части,
недостаток йода и аминокислот в рационах животных, нарушение
всасывания йода и аминокислот в кровь, засорение кровеносных капилляров
и стрессы, приводящие к спазмам кишечника и капилляров (А.Н. Климов,
1977, 1998).
На жизнедеятельность щитовидной железы влияние оказывают и
сезоны года ( М.В. Бондаренко, 1967; Э.Давид. Меулер, 1980).
При действии температур ниже нуля, уровень тиреоидных гормонов в
крови увеличивается (А.О. Войнар, 1960; Г.А. Бабенки, 1965; Д.Е. Альперин,
1965; В.Л. Владимиров, М.Ю. Чернов,1989; Н. Грин, 1990).
Изменение активности
щитовидной железы в течение 24 часов
отмечали и другие исследователи (Р.И. Ладанивский, 1967; О.К. Ширалиев,
1994; А.М. Мкртумян, 1994; И.И. Стеценко, 2000).
Тиреоидные гормоны принимают участие в обмене веществ организма.
На белковый обмен
гормоны щитовидной железы оказывают
катаболическое влияние при гиперфункции щитовидной железы.
При гипофункции щитовидной железы в организме происходит
задержка воды и электролитов (L.T. Williams, 1977; J.C. Hart,1979).
27
Трийодтиронин и тироксин играют роль в регуляции поглощения
тканями кислорода (А.Х. Пирров, 2002; 2003).
Гормоны
щитовидной
железы
также
способствует
набуханию
митохондрий (Б.В. Алёшин, 1982).
Своё действие тироксин производит через ряд ферментных систем.
Тиреоидные гормоны увеличивают скорость ферментов, в том числе и
скорость активации
гексокиназы мышц, и сукциноксидазу печени (М.Г.
Коломийцева, 1970; Ю.И. Москалёв, 1985).
Тиреоидные гормоны играют роль в накоплении белков ткани и
активации ферментов SH-группы, что приводит к активации ферментных
систем (К. Hodate,1982).
Тиреоидные гормоны увеличивают скорость распада глюкозы и
участвуют в регуляции роста костной ткани (С.П. Лазарева, 1988; С.Н.
Балдаев, 1991 ).
При
гиперфункции
щитовидной
железы
происходит
рост
фосфолипидов в печени, уменьшается уровень холестерина в крови (L.E
Shapiro, 1978).
При длительной стимуляции тироксином наблюдался рост массы
печени, а количество жирных кислот в крови увеличивался (J.H. Zaletel,
1952).
Тироксин
участвует в обмене углеводов. Под его действием
увеличивается всасывание углеводов в кишечнике (М. Simon ,1984).
Трийодтиронин
действует
на
транскрипцию
отдельных
генов,
участвующих в обмене белков (M.A. Lammoglia et. all, 1997).
В этом и заключается главная метаболическая функция тиреоидных
гормонов (G. Fradkin, 1983).
При гипофункции щитовидной железы в организме замедляются
пщевые рефелксы, прекращается рост конечностей, происходит угнетение
аппетита, выпадение волос, кожный покров становится грубым. В организме
28
происходит замедление потребления кислорода, уровень глюкозы в крови
снижается, обменные процессы начинают замедляться. У животных
гипофункция щитовидной железы происходит в период зимней спячки.
При гипофункции щитовидной железы прекращается рост самой
щитовидной железы.
Развивается заболевание , которое носит название
эндемический зоб. Оно происходит при недостатке йода в кормах, воде и
почве (Б.В. Алёшин, 1981; Р. Prakash , V.S. Rathore, 1991).
Основной общепринятый этиологический фактор, обусловливающий
заболевание эндемическим зобом людей и животных - это недостаточность в
почве, воде, растениях и воздухе йода, входящего в состав гормонов
щитовидной железы (Н.А. Уразаев, 1983; И.И. Дедов и соавт., 1992; Э.П.
Касаткина, 1997; J. D. Kirchmann, L. J. Dunne, 1990; G. Bogue, G. Tompos,
1996;
E.
Andrzejewska
et
al.,
1996).
Эндемический
зоб
является
распространенным заболеванием щитовидной железы у животных (У.Б.
Байзаков, 1985;; М.Я. Жолондз, 1997; D. Sinombing et al., 1974)
Нередко эндемический зоб служит фоном для возникновения других
заболеваний (Л.Г. Замарин, 1977; М.П. Кучинский, 1988).
При введении животному тиреоидных гормонов или ТТГ в организме
происходит гиперфункция щитовидной железы. В основном это используется
в экспериментах. Визуально гиперфункция щитовижнгой железы выглядит
так: щитовидная железа увеличена в размерах, на ощупь плотная и
припухшая (И.И. Дедов, 1998).
Гипофункция щитовидной железы может быть вызвана врожденным
отсутствием щитовидной железы, полным или частичным хирургическим
удалением щитовидной железы, передозировкой лекарств, воздействующих
на щитовидную железу, повреждением железы в результате воспалительного
процесса или воздействия радиации (например, облучение шеи или грудной
клетки
рентгеновскими
лучами
после
проводимого
ранее
лечения
гиперфункции щитовидной железы радиоактивным йодом). Гипофункция
29
щитовидной железы может также возникать по причинам, не связанным с
собственно железой, а именно в результате повреждения гипофиза или
гипоталамуса, что вызывает отсутствие или нарушение продукции гормонов,
стимулирующих щитовидную железу (вторичная гипофункция щитовидной
железы) (В.О. Мохнач, 1974).
У жвачных животных гипотиреоз генетически обусловлен (Н.П.
Старкова,1983). В связи с этим в рационах животных должны быть
микроэлементы меди, кобальта и др. ( В.В. Ковальский, 1969, 1983; Ю.И.
Москалев, 1985; А.А. Алиев, 1993).
На обусловленность генетической функции щитовидной железы в
своих исследованиях указывают многие учёные ( В.Р. Клячко, 1978; В.И.
Георгиевский и др., 1979; В.В. Таланов, 1985; В.И. Ерёменко, В.М. Кретова,
2007, 2010).
Гипертиреоз– эндокринный синдром, вызванный чересчур активной
выработкой тиреоидных гормонов тироксина (T3) и трийодтиронина (T4)
щитовидной железой (В.П. Радченков, 2000).
Гипертиреоз стандартно является результатом различных патологий
щитовидной железы, которые могут быть вызваны как нарушениями
непосредственно в самой железе, так и на процессах, которые она
регулирует. Гипертиреоз по уровню дисфункции щитовидной железы бывает
первичным
гипофиза)
(патология
и
щитовидной
третичным
железы),
вторичным
(патология
(патология
гипоталамуса).
В исследованиях А.Н. Климова, (1977) указано, что при гипофункции
щитовидной железы в организме наблюдается отложение жира.
При осеменении животных с пониженной функцией щитовидной
железы оплодотворение может происходить, но эмбрионы обречены на
гибель в начальные сроки беременности. Повышенная функция щитовидной
железы также неблагоприятно влияет на функцию половых желез, это
30
приводит к изменениям, связанным с цикличностью половых циклов,
абортам (О.Н. Савченко,1989).
В
природе
существуют
вещества,
которые
нарушают
синтез
тиреоидных гормонов – это гойтрогены (зобогенные вещества), что приводит
к повышению продукции ТТГ и соответственно к гипертрофии щитовидной
железы. К зобогенным кормам относится капуста (С.И. Вишняков, 1967;
В.В. Дюкарев, 1985; H. Perez, E. Mendoza , J.L. Alvarez, O. Fernandez, 1997 ).
Так например, при введении в рационы кроликов капусты у них
развивалось увеличение щитовидной железы. Впоследствии "капустный зоб"
удалось вызвать и у других видов животных, а гойтерогенная активность
была обнаружена в большом числе растительных продуктов, включая
практически все виды крестоцветных (С.Н. Аухатова, 1993; M.L. Heron at all.,
1976; R. Lakshmy et al., 1995).
На метаболизм йода в организме животных влияют также витамины А,
Е, В6 (А.М. Раскин, 1973; L. Klein, 1984) и витамин С. При С гиповитаминозе снижается синтез тироксина (И.П. Кондрахин, 1989).
Зобогенные вещества (гойтрогены, струмогены) можно условно
разделить на 3 основные группы: - лекарственные средства, блокирующие
функцию щитовидной железы (тиреостатики); - "естественные" зобогены,
находящиеся в продуктах питания и воде (наиболее изученными являются
флавоноиды и тиоцианаты); - зобогены преимущественно промышленного
происхождения.
Все зобогены объединяет то, что они способны с разной степенью
интенсивности блокировать функцию щитовидной железы и вызывать ее
рост, в том числе и за счет активации секреции тиреотропного гормона.
Гойтрогенные препараты попадают в молоко и отрицательно влияют на
деятельность щитовидной железы детей (E.G. Underwood, 1977; 1981).
Также имеются данные о взаимосвязи функции щитовидной железы с
образованием молока
и с процессом беременности во многих работах
31
исследователей (В.А. Першин, 1962; В.А. Першин, 1971; Г.Б. Тверской, 1972;
И.К. Медведев, 1983; H. Bonsack, 1992; J. Stzetelski, 1993; V. Tancin, 1994; T.
Tiraits, 1997).
Введение гормонов щитовидной железы приводило к значительным
изменениям уровня молочной продуктивности и качественному составу
молока лактирующих коров. При этом изменяется его жирнокислотный и
химический состав (В.А. Першин, 1962; Г.И. Азимов, В.В. Арепьев, 1965;
В.Т. Головань, 1972; П.З. Лагодюк, В.А. Чаркин, Ю.С. Клос, И.О. Кисинь,
1982; M. Oshima, 1978).
Во время беременности в крови увеличивается вдвое синтез
тиреоидных
гормонов.
У
стельных
животных
щитовидная
железа
увеличивается в размере и увеличивается поглощение количества йода из
плазмы крови. От матери к плоду проникает не более 1 % тиреоидных
гормонов. В последние недели беременности у плода значительно
повышается уровень тиротропина и синтез тиреоидных гормонов. Все
показатели снижаются в течение суток после рождения. При максимальных
удоях
концентрация
установлена
тироксина
в крови
лактирующих
коров
была
на самом низком уровне, по сравнению с другими фазами
лактации. Установлена отрицательная коррелятивная связь между суточными
удоями и концентрацией тиреоидных гормонов в крови лактирующих коров
в работах других ученых (Т.Л. Соловьева, В.В. Цюпко, 1977; Т.Л. Соловьева,
В.В. Цюпко, 1984; J. Hart, 1978; G. Bertoni, 1983; J. W. Blum et al.,1983; S.
Mroczkowski, 1993).
Исследованиями В.П. Радченкова и др. (1984) отмечено, что после
родов в крови коров отмечается высокий уровень трийодтиронина. Это
явление они объясняют активацией энергетических ресурсов организма
после отёла.
Положительную коррелятивную связь между уровнем тиреоидных
гормонов и молочной продуктивностью установили в своих исследованиях
32
многие авторы (М.Г. Алиев, Ю.Б. Исмаилов, 1981; И.Г. Аллахвердиев, В.Ф.
Емельянова, Л. Рзаева, 1982;).
Между деятельностью щитовидной железы и стрессоустойчивостью
животных установлена взаимосвязь. Отмечено, что в первые сутки после
родов,
более
высокая
концентрация
трийодтиронина
у
коров
стрессоустойчивого типа, чем у низкострессоустойчивых (Э.Б. Туманова,
Г.Г. Герасимова и др., 1988).
Функциональные
нагрузки на щитовидную железу используют как
тест для прогнозирования
будущей молочной продуктивности крупного
рогатого скота (В.М. Кретова, 2007; B.Tveit et al., 1990).
На активность щитовидной железы влияние оказывают и сезоны года
(В.Л. Владимиров и др., 1989; 1990; G. A. Bubenik et al., 1989; A. Shubbur et
al., 1989; M. Assane et al., 1990; P. Prakash et al., 1991; H. Peres et al., 1997; H.
Bonsack et al., 1992), а при высоких температурах функция щитовидной
железы резко снижается ( А.Л. Падучева, 1979; А.С. Зеньков, И.А. Яцко и
др., 1983; A. Magdub et al., 1982; A.W. Bell et al., 1989; P. Berbigier et al.,
1990.). При действии низких температур, наоборот, уровень тиреоидных
гормонов в крови увеличивался (S. Bobek et al., 1980; K. Hodate, 1982; D.L.
Heaf et al., 1983; M.A. Lammoglia et al., 1997; H. Perez et al., 1997).
Проведенный
анализ
литературы
свидетельствует
о
том,
что
трийодтиронин и тироксин влияют на различные процессы метаболизма,
роста и развития организма. На активность щитовидной железы оказывают
влияние внешние и внутренние факторы. Существует связь уровня
концентрации
гормонов
продуктивностью
коров.
щитовидной
Часто
железы
результаты
в
крови
с
исследований
молочной
носили
противоречивый характер, так как проводились в разных условиях
экспериментов. Поэтому необходимо более детальное изучение функции
щитовидной железы, методов оценки ее активности и связи уровня
тиреоидных гормонов с какими-либо процессами в организме.
33
1.4 Прогнозирование молочной продуктивности крупного рогатого
скота
Лактация – это физиолого- биохимический процесс, который включает
этапы образования и резервирования молока в молочной железе у самок.
Развитие в процессе эволюции у млекопитающих молочных желез и
способности вскармливать детёнышей молоком является одним из наиболее
поздних филогенетических приобретений и служит примером важнейшего
эволюционного скачка (В.А.Павлов,1984).
Для молокообразования необходим постоянный приток веществ,
которые называются предшественники молока. Предшественниками белков
молока являются аминокислоты, доставляемые кровью, и белки плазмы
крови. Организм имеет очень большое количество предшественников молока
(А.С. Жебровский, 1973).
Метаболиты, которые поступают в молочную железу, подвергаются
сложным биохимическим процессам. Они всасываются молочной железой, и
в
дальнейшем
используются
для
синтеза
компонентов.Количество
компонентов, содержащихся в молоке, не постоянно и определяется уровнем
кормления
и
содержания,
стадией
лактации,
уровнем
молочной
продуктивности, породой, возрастом, временем отела, сезоном года, уровнем
нейрогуморального
взаимодействия,
наследственностью.
Проводимые
исследования о составляющих молока приобретают значимость для
установки прогнозирующих тестов молочной продуктивности (Н.В. Курилов,
1975; В.И. Третевич, 1975; И.К. Медведев, 1977; П.З. Лагодюк, В.А,Чаркин,
Ю.С, Клос, И.О. Кисинь, 1982 ).
Такие основные компоненты, как молочный жир, лактоза, казеины,
лактоальбумин,
лактоглобулин,
являются
соединениями,
которые
синтезируются в молочной железе и встречаются только в молоке (В.П.
Радченков, Е.В. Бутров, В.Н. Панасенко и др., 1987).
34
Молоко — является продуктов секреции молочной железы. С
биохимической точки зрения молоко является сложной дисперсной
системой. Основной средой является вода, а дисперсной фазой служат
вещества, которые находятся в коллоидном и эмульсионном состоянии.
Молочный сахар и минеральные соли образуют молекулярные и
ионные растворы. Белки находятся в растворенном (альбумин и глобулин) и
коллоидном (казеин) состоянии, молочный жир — в виде эмульсии (Г.Н.
Николаева, 1971).
Молочная продуктивность коров является полигенным признаком,
тоесть, ее формирование происходит под воздействием комплекса генов.
Большое влияние на молочную продуктивность оказывают и паратипические
факторы, прежде всего такие, как кормление и содержание. Интересным
представляется анализ влияния продолжительности лактации на ряд
хозяйственно-полезных
признаков у высокопродуктивных
первотелок.
Укороченную лактацию чаще всего имеют животные, оплодотворившиеся в
первую или вторую охоту. Прогестерон, выделяемый желтым телом
беременности, поддерживает развитие эмбриона и угнетает лактационную
функцию. Часто от коров, оплодотворенных в первую или вторую охоту,
недополучают молоко, поскольку они рано запускаются и не успевают
полностью реализовать свой генетический потенциал. Удлиненная лактация
также
нежелательна,
поскольку
у
таких
коров
будет
длительным
межотельный период, будет недополучен теленок (А.С.Емельянов, 1963).
Молочная продуктивность коровы зависит в немалой степени от ее
живой массы, так как живая масса является показателем общего развития и
выражает степень упитанности животного. Обычно в тех хозяйствах, где
получают наибольшее количество молока, средняя живая масса коров
значительно выше, чем в других хозяйствах, разводящих животных той же
породы (Л.С. Жебровский, 1980).
Высокая
молочная
продуктивность
коров
связана
с
большим
35
физиологическим напряжением всего организма, поэтому они должны быть
хорошо развитыми, иметь крепкую конституцию и здоровье. Заботу о
будущих
высокопродуктивных
коровах
надо
проявить
еще
с
внутриутробного периода их развития путем правильного проведения
сухостойного периода у коров-матерей и обеспечения оптимальных условий
кормления и содержания во все периоды выращивания животного после
рождения. В каждой породе, в каждом стаде лучшая по продуктивности
часть животных, как правило, имеет более высокую живую массу, чем в
среднем по породе, в среднем по стаду. Для лучших в породе рекордисток по
удою характерна и более высокая живая масса (А.С.Емельянов, 1953).
Большое значение при ведении селекционной работы имеет ранее
выявление полезно- хозяйственных признаков у сельскохозяйственных
животных (Ю.М. Кривенцов, А.А. Иванов, 1991; Р.О. Кертиев, 1995; В.А.
Погребняк, 1998; Г.О. Калиевская, 2000, 2002, 2005).
В течении лактации количество молока по месяцам выглядит в виде
кривой, которая называется лактационной.
По характеру лактационных кривых А.С. Емельянов (1984) выделил
четыре типа коров: - сильная устойчивая лактационная деятельность с
высокими удоями; сильная неустойчивая лактационная деятельность,
спадающая
после
получения
высших
суточных
удоев
и
вновь
поднимающаяся во второй половине лактации (двухвершинная лактационная
кривая);
высокая,
но
неустойчивая,
быстроспадающая
лактационная
деятельность; устойчивая низкая лактационная деятельность, коровы этого
типа низкопродуктивны.
По исследованиям В.И. Дмитриева (1998) , установлено два вида
прогнозирования- краткосрочное и среднесрочное прогнозирование. При
краткосрочном прогноз строится на 1-2 шага вперед. Указанный прогноз
проводится, как правило, постоянно. При среднесрочном прогнозировании
прогнозирование ведется на несколько шагов вперед.
36
В животноводстве чаще всего применяются методы среднесрочного
прогнозирования. Они основаны, как правило, на учете причинноследственных связей и математическом моделировании, приводящих к
построению
регрессионных
уравнений,
с
помощью
которых
экстраполируются несколько точек предполагаемого хода изучаемого
процесса. Однако изучение многочисленных факторов, влияющих на
продуктивность
животных,
необходимое
для
среднесрочного
прогнозирования, требует высокой квалификации, достаточно трудоемко и
не исключает вероятности того, что какой-либо существенный фактор
окажется не учтенным (Л.С. Жебровский, 1975).
Что же касается методов краткосрочного прогнозирования, то работы
по их применению в животноводстве нам не известны. Вместе с тем эти
методы представляют несомненный практический интерес, например, для
предсказания помесячной молочной продуктивности крупного рогатого
скота. Они выявляют тенденцию изменений при изолированном анализе
временного ряда и не требуют изучения каждого фактора в отдельности или
многофакторного анализа, в то же время, они учитывают влияние всех без
исключения факторов, так как тенденция изменений является результатом их
совместного действия.
Существует
много
исследований,
где
показаны
различные
коррелятивные связи и молочной продуктивности коров с метаболитами
крови, что
могло бы помочь в
создании тестов для прогнозирования
молочной продуктивности коров (И.Г. Аллахвердиев, В.Ф. Емельянова, Л.
Рзаева, 1982; Е.В. Бутров, В.А. Матвеев,1989; Ю.Ю. Вострухина, 2011; В.И.
Ерёменко, 2011).
В
работах
Кулаченко
В.П.
(1995,
1997)
отмечено,
что
для
прогнозирования молочной продуктивности голштинофризской породы
необходимо
использовать
уровень
общего
белка
в
крови.
А
для
37
прогнозирования содержания жира в молоке использовать данные общих
липидов.
Имеются данные, что у крупного рогатого скота айрширской породы
между концентрацией общего белка и уровнем среднесуточного удоя
отмечена положительная связь, эта величина колеблется в разные фазы
лактации и наиболее высока в первой ее половине (R = 0,44; Р>0,99).
Взаимосвязь
молочной
продуктивности
с
глобулинами
крови
непостоянна. У айрширской и голландской пород эта связь составила R=
0,32 и R = 0,27 (И.З. Ахметов, 1965).
В.П. Тихонов (1968) в своих исследованиях отметил отрицательную
связь между белками крови и уровнем молочной продуктивности в
зависимости от возраста коров и уровня их продуктивности.
Анализируя взаимосвязь свободных аминокислот и синтез белков
молока, П. В. Кугенева (1972) делает вывод, что установить четкую
взаимосвязь между ними до настоящего времени не удается.
В исследованиях А.Е. Боглова (1968) отмечено, что в крови животных
с высоким уровнем молочной продуктивности содержится большое
количество общего белка по сравнению с низкопродуктивными животными.
Коэффициент корреляции между удоем и концентрацией белка в крови у
коров айрширской породы составляет 0,43, 0,9 у черно – пестрой породы, и у
голландской 0,29 . У холмогорского и красно - пёстрого скота коэффициенты
корреляции составили 0,34 и 0,47.
Так, по данным Е. В. Эйдригевича и В. В. Раевской (1978), которые
исследовали
морфологию
крови
коров
в
зависимости
от
уровня
продуктивности, абсолютное количество форменных элементов у коров с
высоким уровнем продуктивности было значительно выше. У них был выше
объем циркулирующей крови и плазмы, объем эритроцитарной массы и
массы гемоглобина. Однако процентное содержание гематокрита, числа
эритроцитов и концентрация гемоглобина у коров с разным уровнем
38
продуктивности
почти
не
различались.
Это
говорит
о
том,
что
высокопродуктивные коровы были более массивны, чем низкопродуктивные.
Таким образом, на основании изложенного материала, можно сделать
вывод, что уровень продуктивности молочных коров влияет как на
морфологические, так и на биохимические показатели крови. Анализ
показателей крови можно использовать в качестве теста состояния здоровья
высокопродуктивных животных, полноценности их кормления и прогноза
молочной продуктивности.
39
2. МАТЕРИАЛЫ И МЕТОДЫ ИССЛЕДОВАНИЙ
Научно - производственный опыт проводили в подсобном хозяйстве
ФГУ санаторий «Марьино» Рыльского района Курской области по схеме,
представленной на рисунке 1.
Объектом
исследования
были
лактирующие
коровы
голштинизированной черно – пестрой породы и полученные от них телята.
Для опыта было сформировано две группы коров по 10 голов в каждой. Одна
группа коров была высокоудойная 8460 ± 85 литров молока за лактацию, а
вторая группа 4600 ± 62 литра. Внутри каждой группы животные были
аналогами по возрасту и уровню молочной продуктивности.
Кормление
животных
соответствовало
уровню
их
молочной
продуктивности и физиологическому состоянию и осуществлялось по
общепринятым нормам (И.В. Калашников, И.В. Фисинин, В.В. Щеглов, Н.И.
Клейменов, 2003). Количество концентрированных кормов в рационе
регулировали в зависимости от уровня молочной продуктивности. В зимнестойловый период коровы содержались на привязи в коровниках, а в летний
период выпасались на пастбище. Основными кормами в зимне - стойловый
период были: сено злаково-бобовое, силос кукурузный, свекла кормовая,
комбикорм. В летний период коровам скармливали траву пастбищную и
комбикорм.
Образцы крови для биохимического анализа отбирали у лактирующих
коров один раз в месяц из хвостовой вены до утреннего кормления.
Молочную продуктивность коров определяли методом контрольных доек. В
образцах крови определяли содержание общего белка, общих липидов,
общего
холестерола,
активность
АСТ
и
АЛТ
на
автоматическом
биохимическом анализаторе «Sapphire 400» с использованием реактивов
фирмы «Bios systems».
Тироксин, трийодтиронин и тестостерон -
иммуноферментным
методом с использованием наборов фирмы «JBLGmbH» (Германия).
40
Для выявления функциональных
резервов щитовидной железы
подопытным коровам на 2 и 8 месяцах лактации внутримышечно вводили
тиреотропный гормон ТТГ на физиологическом растворе в дозе 0,5 ед/ кг
живой массы тела. Телятам такую же нагрузку ТТГ проводили на 6 месяце их
жизни. Образцы крови из хвостовой вены отбирали перед введением ТТГ и
через 0,5, 1 и 2 часа после введения.
Коэффициенты активности тиреоидных гормонов по Т3 и Т4
определяли по формуле:
Катг = Т1 – Т 0 / Т0, где
(1)
Катг - коэффициент активности тиреоидных гормонов
Т0 – уровень гормона до нагрузки
Т1 – уровень гормона через 2 часа после нагрузки
Для
определения
функциональных
резервов
тестостеронсинтезирующей системы этим же лактирующим коровам так же
на 2 и 8 месяцах лактации, а полученным от них телочкам на 6 месяце их
жизни внутримышечно вводили хорионический гонадотропин ХГ в дозе от 1
до 5 тысяч и.е., в зависимости от возраста животных. ХГ вводили коровам 4
раза, а телочкам 3 раза с интервалом 72 часа. Кровь для определения
тестостерона отбирали перед введением ХГ и через 2,12,24, 48 и 72 часа
после его введения.
Индекс активности тестостеронсинтезирующей системы определяли по
формуле :
Иатс = Т1 – Т 0 / Т0, где
(2)
Иатс - индекс активности тестостеронсинтезирующей системы
Т0 – базальный уровень тестостерона перед первым введением ХГ.
Т1 – уровень тестостерона через 24 часа после третьей нагрузки ХГ.
Для расчета математических моделей для раннего прогнозирования
молочной продуктивности было отобрано 20 голов телочек, у которых в 20 –
месячном возрасте взяли образцы крови из хвостовой вены для анализа тех
41
же показателей, что и у коров, и в это же время провели функциональные
нагрузки на щитовидную железу и тестостеронсинтезирующую систему и
рассчитали коэффициенты активности тиреоидных гормонов и индексы
активности тестостеронсинтезирующей системы.
Рисунок 1 - Схема исследований
42
После окончания лактации были построены математические модели
для раннего прогнозирования молочной продуктивности крупного рогатого
скота
с использованием полученных биохимических показателей в
различных комбинациях. Математические модели были построены с
использованием математической статистики и программным обеспечением
Statgraf. Полученные результаты исследований подверглись биометрической
обработке по Е. К. Меркурьевой (1977) с использованием программы
Microsoft Excel.
43
3. РЕЗУЛЬТАТЫ ИССЛЕДОВАНИЙ
3.1 Динамика суточных удоев у подопытных лактирующих коров
Результаты проведенных контрольных доек в первой и второй группе
подопытных лактирующих коров показали, что молочная продуктивность в
первой группе коров за лактацию составила 8460 ± 85 кг молока. Во второй
менее продуктивной группе лактирующих коров молочная продуктивность
составила 4600 ± 62 кг за лактацию, что на 54 % меньше показателя первой
группы.
Динамика молочной продуктивности обеих групп лактирующих
подопытных коров представлена на рисунке 2.
40
35
30
кг
25
I группа
20
II группа
15
10
5
0
1
2
3
4
5
6
7
8
9
10
месяцы
Рисунок 2 – Динамика среднесуточных удоев коров с разной молочной
продуктивностью
Из данных рисунка видно, что у подопытных коров среднесуточные
удои закономерно менялись в зависимости от фазы лактации. Так на первом
месяце лактации среднемесячный удой в первой группе составлял 21,5 ± 0,72
кг. Во второй группе этот показатель был на уровне 13,5 ± 0,63 кг молока на
44
1 голову в сутки.
Самые высокие показатели среднесуточных удоев в обеих группах
были
на
2
месяце
лактации
(пик
лактации).
В
группе
более
высокопродуктивных коров этот показатель был на уровне 38,5 ± 0,90 кг
молока на одну голову в среднем за сутки. В менее продуктивной группе этот
показатель составил 18,8 ± 0,79 кг.
Далее по ходу лактации уровни молочной продуктивности плавно
уменьшились в обеих группах. Среднесуточный удой в первой группе на
третьем месяце лактации составил 33,3 ± 1,08 на одну голову, а во второй
группе 17,5 ± 0,62 кг. На 4 месяце лактации среднесуточные удои немного
уменьшились в обеих группах и составили 33,1 ± 0,98 кг и 16,4 ± 0,73 кг
молока соответственно по группам.
Далее по ходу лактации показатели среднесуточных удоев плавно
уменьшались в обеих группах и к 9 месяцу составили в первой группе 23,6 ±
1,15 кг молока, а во второй группе 13,9 ± 0,47 кг на 1 голову. На 10 месяце
лактации были отмечены самые минимальные значения за весь период
лактации и составили в первой группе 12,9 ± 1,15 кг, а во второй - 8,3 ± 0,47
кг в среднем на 1 голову.
Во все периоды лактации различия между группами отмечены как
статистически достоверные (Р < 0,05). В целом молочная продуктивность
коров в первой группе к концу 10 месяца уменьшилась на 66,6 % по
сравнению с 1 месяцем лактации, а во второй группе на 62,6 %.
Разница между удоями в целом за 10 месяцев лактации между обеими
группами составила 3860 кг молока.
3.2 Уровень общего белка в крови лактирующих коров с разной
молочной продуктивностью
Данные динамики уровня концентрации общего белка в крови
лактирующих подопытных коров представлены в таблице 1.
Анализируя данные, приведенные в таблице, видно, что концентрация
45
общего белка в обеих группах на протяжении всей лактации увеличивалась с
первого месяца лактации и по седьмой месяц включительно. На первом
месяце лактации уровень общего белка был 70,4±2,3 г/л в первой группе и
67,6 ±3,4 г/л во второй, менее продуктивной группе лактирующих коров. На
втором месяце произошло увеличение в обеих подопытных группах : в
первой группе уровень общего белка увеличился на 5,6 % и составлял 74,4
±1,3 г/л , а во второй на 8,1 % и составил 73,1 ± 2,3 г/л. К третьему месяцу
лактации уровень общего белка несколько понизился и в первой группе этот
показатель составил 71,4 ± 3,1 г/л и 70,6 ± 2,9 г/л. Далее по ходу лактации
уровень общего белка в обеих группах незначительно увеличивался. Так на 4
месяце в первой группе уровень общего белка составлял 72,6 ± 3,5 г/л , а на 6
месяце 77,0 ± 2,2 г/л , что на 6 % больше, чем на 4 месяце лактации. Во
второй группе на 4 месяце лактации уровень общего белка составлял 71,2 ±
2,1 г/л , а на 6 месяце 74,7 ± 1,9 г/л, что на 5 % больше, чем на 4 месяце
лактации. В период лактации наибольшая концентрация белка в крови
лактирующих подопытных коров отмечена на 7 месяце и составила 78,4±2,1
г/л и 73,9±2,8 г/л. Причём более высокая концентрация его отмечена у более
высокопродуктивных коров. На 8 месяце лактации в первой группе уровень
общего белка составлял 75,2 ± 3,3 г/л, а во второй группе животных 70,6 ± 2,6
г/л. К концу лактации концентрация общего белка в сыворотке крови
разнопродуктивных коров постепенно снижалась, а на 10 месяце
она
составила 69,3 ± 2,7 г/л и 69,0 ± 1,8 г/л соответственно в первой и во второй
группе. Такая тенденция отмечена на всём протяжении лактации. Различия
между группами отмечены как статистически
недостоверные (Р > 0,05).
Между уровнем общего белка в крови и суточными удоями установлена
положительная коррелятивная связь в первой группе R = 0.47, а во второй
группе R = 0,50. Аналогичные результаты были получены и другими
46
47
70,4±2,3
67,3±3,4
II
1
I
Группа коров
73,1±2,3
74,4±1,3
2
70,6±2,9
71,4±3,1
3
71,2±2,1
72,6±3,5
4
73,0±2,5
76,0±1,4
5
74,7±1,9
77,0±2,2
6
Месяц лактации
73,9±2,8
78,4±2,1
7
70,6±2,6
75,2±3,3
8
70,5±3,0
72,7±3,5
9
69,0±1,8
69,3±2,7
10
Таблица 1 – Динамика концентрации общего белка в крови коров с разной молочной продуктивностью
(г/л)
исследователями, которые также отмечают положительную коррелятивную
связь между удоями и уровнем общего белка в крови (Т.Ю. Демидова, О.Р.
Галиева, 2008; В.И. Ерёменко, 2001, 2010; Ю.Ю. Вострухина, 2011;
Е.В.Морозова , 2010; А.Н. Подрепный, 2012; В.П. Полянский, 2012).
Таким образом, в ходе исследований нами было установлено, что
наиболее высокая концентрация белка в крови во все периоды лактации
наблюдалась у более высокопродуктивной группы животных.
3.3 Динамика общих липидов в крови лактирующих коров
Как показали результаты исследования, уровень общих липидов в
крови у лактирующих коров на первом месяце лактации составил 3,5 ± 0,25
г/л, а у второй группы этот показатель был ниже – 2,7 ± 0,17 г/л (Р<0,05).
Динамику изменения уровня общих липидов в крови в течение
лактации в крови у лактирующих подопытных коров в обеих группах можно
увидеть в таблице 2.
Ко 2 месяцу лактации эти показатели практически не изменились и
незначительно различались между группами: 4,5 ± 0,30 и 3,6 ± 0,18 г/л
соответственно (Р<0,05). К 3 месяцу лактации эти показатели составили в
первой, более высокоудойной группе 4,4 ± 0,28 г/л, а во второй 3,3 ± 0,18 г/л
(Р<0,05). На 4 месяце лактации показатели плавно увеличились в первой
группе до 4,5 ± 0,30 г/л, а во второй группе плавно уменьшились 3,0 ± 0,17
г/л (Р<0,05). К 5 месяцу лактации показатели уровня общих липидов в крови
лактирующих коров продолжали плавно уменьшаться и составили 3,9 ± 0,20
г/л и 3,1 ± 0,15 г/л в первой и второй группе соответственно (Р<0,05). К 6
месяцу лактации значения общих липидов у лактирующих коров немного
увеличились по отношению к показателям 1 месяца лактации. В первой
группе концентрация липидов увеличилась на 5,7%, во второй группе на 5,9
%. На 7 месяце лактации в первой группе произошло незначительное
48
49
4
5
6
3,6±0,18
3,0±0,17
3,1±0,15
3,4±0,15
7
3,2±0,13
3,8±0,20
* P < 0,05 к сравниваемой группе
3,3±0,18
2,7±0,17
3
II
2
3,5±0,25* 4,5±0,30* 4,4±0,28* 4,5±0,30* 3,9±0,20* 3,7±0,21
1
I
Группа
коров
Месяц лактации
(г/л)
2,8±0,19
3,0±0,17
8
10
2,7±0,17
2,5±0,12
3,2±0,21 3,6±0,19*
9
Таблица 2 – Динамика уровня общих липидов в крови коров с разной молочной продуктивностью
повышение показателей общих липидов в крови подопытных коров по
сравнению с первым месяцем лактации. Показатель уровня общих липидов в
крови лактирующих коров на 7 месяце составил 3,8 ± 0,20 г/л, что, видимо,
связано с понижением уровня среднесуточных удоев.
Во второй группе, наоборот, произошло небольшое увеличение
показателя уровня общих липидов в крови лактирующих коров и составило
3,2 ± 0,13 г/л.
Далее по ходу лактации происходило понижение уровня общих
липидов в крови лактирующих коров и к 10 месяцу лактации
значения
общих липидов составили у коров первой группы 3,6± 0,19 г/л, а у коров
второй группы– 2,5 ± 0,12 г/л (Р<0,05).
Между концентрацией липидов в крови лактирующих коров и
суточными удоями установлена положительная коррелятивная связь. В
первой группе R = 0,67, а во второй R =0,65. Положительную коррелятивную
связь между уровнем молочной продуктивности и концентрацией общих
липидов в крови отмечали и другие исследователи (Ю.Ю. Вострухина, 2011).
Исходя из вышеизложенного, можно сделать вывод, что у коров с
более высокими удоями концентрация в крови общих липидов выше, чем у
коров с меньшей молочной продуктивностью, что, видимо, зависит от
скорости обменных процессов в организме. Также можно сделать вывод о
том, что чем выше суточные удои у лактирующих коров, тем выше уровень
общих липидов в их крови.
3.4 Динамика общего холестерола в крови лактирующих
разнопродуктивных коров
Результаты
исследования
общего
холестерола
в
крови
разнопродуктивных коров приведены в таблице 3.
Исследования показали, что в первый месяц лактации концентрация
общего холестерола в крови лактирующих коров составляла 4,5 ± 0,25
50
ммоль/л в первой группе и 3,7 ±0,17 ммоль/л во второй (Р<0,05). На втором
месяце лактации концентрация общего холестерола значительно повысилась
в обеих группах.
В этот период уровень общего холестерола в первой группе был на
уровне 5,5 ±0,30 ммоль/л, а во второй группе 4,6 ±0,18 ммоль/л (Р<0,05).
В первой группе с 1 месяц по 4 месяц концентрация этого показателя
увеличивалась на 28,5 % и составила 5,5 ±0,30 ммоль/л. Во второй группе
11,1 % и составило 3,0 ±0,17 ммоль/л (Р<0,05).
Максимальное
значение
концентрации
общего
холестерола
повысилось на 11,1 %, и составило 4,0 ±0,17 ммоль/л. (Р<0,05)
В середине лактации на 5 месяце концентрация общего холестерола в
первой группе составляла 4,9 ±0,20 ммоль/л, а во второй группе 4,1± 0,15
ммоль/л (Р<0,05).
На 6 месяце лактации в первой группе лактирующих подопытных
коров уровень общего холестерола в крови был на уровне 4,7 ±0,21 ммоль/л,
а во второй группе 4,4 ±0,15 ммоль/л.
Далее по ходу лактации в первой группе концентрация общего
холестерола снижалась и на 8 месяце его уровень был отмечен как
минимальный за весь период наблюдения. В первой группе его концентрация
составила 4,0 ±0,17 ммоль/л, а во второй - 3,8 ± 0,19 ммоль/л. На последнем
месяце лактации концентрация общего холестерола по сравнению с пиком
лактации плавно понизилась и составила 4,6 ± 0,19 ммоль/л в первой группе,
и 3,5± 0,12 ммоль/л во второй (Р<0,05).
При сравнении двух групп по уровню общего холестерола следует
отметить, что выраженную тенденцию к более высокому уровню общего
холестерола
в
крови
имели
коровы
с
более
высокой
молочной
продуктивностью, чем с низкой.
Между уровнем молочной продуктивности коров черно - пестрой
породы и уровнем содержания общего холестерола в крови отмечена
51
52
4
5
6
4,6±0,18
4,0±0,17
4,1±0,15
4,4±0,15
7
4,2±0,13
4,8±0,20
* P < 0,05 к сравниваемой группе
4,3±0,18
3,7±0,17
3
II
2
4,5±0,25* 3,5±0,30* 5,4±0,28* 5,5±0,30* 4,9±0,20* 4,7±0,21
1
I
Группа
коров
Месяц лактации
3,8±0,19
4,0±0,17
8
10
3,7±0,17
3,5±0,12
4,2±0,21 4,6±0,19*
9
Таблица 3 – Динамика концентрации общего холестерола в крови коров с разной молочной
продуктивностью (ммоль/л)
положительная коррелятивная связь R = 0,71 в первой группе, и во второй R
=0,81.
Положительная
коррелятивная
связь
между
уровнем
общего
холестерола в крови и удоями обоснована и в других работах (А.Н.
Подрепный, 2010).
Это говорит о прямой зависимости уровня молочной продуктивности
коров и концентрацией общего холестерола в крови лактирующих коров.
Проведенные
исследования
позволяют
сделать
вывод
о
том,
что
концентрация общего холестерола в крови лактирующих коров зависит от
уровня продуктивности коров и фазы лактации.
3.5 Динамика активности аминотрансфераз в крови лактирующих коров
Исследование уровня активности аминострансфераз в крови у двух
групп коров показывает, что активность АЛТ и АСТ в крови понижается с
увеличением срока лактации. Динамика активности АЛТ и АСТ в крови
лактирующих коров представлена в таблицах 4 и 5.
На первом месяце лактации уровень АСТ составил 333 ± 3,8 нкат/л в
первой группе и во второй 340 ± 4,9 нкат/л . На 2 месяце лактации в крови
лактирующих коров уровень АСТ составил 365 ± 4,1 нкат/л в первой группе,
а во второй, менее продуктивной группе активность АСТ составила 352 ± 4,6
нкат/л (Р<0,05) . К третьему месяцу лактации произошло незначительное
увеличение активности АСТ в крови лактирующих коров и составило в
первой группе 428± 4,8 нкат/л , а во второй 417± 5,2 нкат/л .
С 4 по 7 месяц лактации происходило понижение уровня АСТ в крови
лактирующих коров. На 4 месяце лактации уровень АСТ находился на
уровне 423 ± 5,1 нкат/л в первой группе , а второй группе 418 ± 4,6 нкат/л.
На 7 месяце лактации уровень АСТ находился на уровне 410±4,7
нкат/л
в первой группе, а во второй 400± 5,2 нкат/л .Уровень АСТ в крови
лактирующих коров в группе более продуктивных коров к 7 месяцу лактации
снизился на 23 % по сравнению с уровнем АСТ в крови на 1 месяце
лактирующих коров, а во второй группе на 18 %.
53
54
333±3,8
340±4,9
II
1
I
Группа
коров
352±4,6
365±4,1*
2
418±4,6
423±5,1
4
415±4,9
428±4,8
5
395±4,8
411±4,4*
6
7
400±5,2
410±4,7
* P < 0,05 к сравниваемой группе
417±5,2
428±4,8
3
Месяц лактации
370±4,8
385±5,0*
8
377±4,4
380±4,2
9
10
380±3,9
388±4,6
Таблица 4 – Динамика активности АСТ в крови коров с разной молочной продуктивностью
(нкат/л)
К концу лактации наблюдается некоторое уменьшение активности
этого фермента. Данная тенденция обусловлена, видимо, периодичностью
процессов переаминирования и самообновления белков в организме в период
стельности животных.
Так к 9 месяцу лактации в первой более высокоудойной группе коров
активность АСТ в крови лактирующих коров была на уровне 380 ± 4,2 нкат/л,
а к 10 месяцу лактации еще понизилась до 388± 4,6 нкат/л.
Во второй группе менее продуктивных коров уровень активности АСТ
на 9 месяце лактации в крови коров был на уровне 377 ± 4,4 нкат/л , а на 10
месяце лактации составил 380 ± 3,9 нкат/л.
Такую же тенденцию можно проследить и по уровню активности АЛТ
в крови лактирующих коров (таблица 5).
Так на первом месяце лактации уровень активности АЛТ составил 263
± 6,4 нкат/л в первой группе, а во второй 250 ± 4,9 нкат/л .
На 2 месяце лактации в крови лактирующих коров уровень активности
АЛТ составил 270 ± 5,5 нкат/л в первой группе,
а во второй, менее
продуктивной группе уровень АСТ был на уровне 259 ± 4,4 нкат/л.
К третьему месяцу лактации произошло незначительное уменьшение
активности АЛТ в крови лактирующих коров и составило в первой группе
289± 5,8 нкат/л , и во второй 269± 5,1 нкат/л (Р<0,05).
На 5 месяце лактации активность АЛТ составила в первой группе коров
282 ± 5,4 нкат/л , а во второй - 265 ± 5,4 нкат/л (Р<0,05).
К 9 месяцу лактации уровень активности АЛТ в крови лактирующих
коров уменьшился и составил в первой группе подопытных коров 242 ± 5,1
нкат/л , а во второй - 239 ± 5,0 нкат/л.
На 10 месяце лактации уровень активности АЛТ составлял 257 ±5,4
нкат/л и 241 ± 4,8 нкат/л , в первой и второй группе соответственно.
Между
активностью
АСТ
и
суточными
удоями
отмечена
положительная коррелятивная связь R= 0,47 в первой группе и R = 0,41 во
второй группе. Такая же зависимость установлена и по АЛТ: в обеих группах
она составила R=0,36. Аналогичные результаты исследований отмечены и в
других работах.
55
56
263±6,4
250±4,9
II
1
I
Группа
коров
259±4,4
270±5,5
2
270±4,9
280±4,7
4
265±5,4
282±5,4*
5
259±5,3
270±4,4
6
7
262±4,4
272±5,1
* P < 0,05 к сравниваемой группе
269±5,1
289±5,8*
3
Месяц лактации
( нкат/л)
235±3,9
250±4,6
8
239±5,0
242±5,1
9
10
241±4,8
257±5,4
Таблица 5 – Динамика активности АЛТ в крови коров с разной молочной продуктивностью
3.6 Динамика тиреоидных гормонов в крови лактирующих коров с
разной молочной продуктивностью
Динамика уровня тироксина представлена в таблице 6.
Как показали результаты исследований, на 1 месяце лактации
концентрация тироксина в крови у первой высокоудойной группы коров
составила 34,2 ± 2,1 нмоль/л , а у сравниваемой группы она была выше и
составила 38,6 ± 1,1 нмоль/л.
На втором месяце лактации показатели этого гормона незначительно
уменьшились у высокопродуктивной группы до 32,8± 1,6 нмоль/л, а у
сравниваемой группы до 35,1 ± 1,1 нмоль/л. На 3 месяце лактации
концентрация тироксина у высокопродуктивной группы коров немного
возросла до уровня 33,1 ± 1,9 нмоль/л, а у второй группы до 37,1± 0,9
нмоль/л.
На 4 месяце лактации концентрация тироксина у высокопродуктивной
группы увеличилась до уровня 45,7 ± 1,9 нмоль/л, а во второй группе 46,7 ±
0,9 нмоль/л. К 5 месяцу лактации концентрация гормона в крови подопытных
животных увеличилась во второй сравниваемой группе и составила 48,4 ± 1,2
нмоль/л, а в первой более продуктивной группе практически не изменилась и
осталась на уровне 45,6 ± 2,3 нмоль/л.
На 6 месяце лактации произошло небольшое увеличение концентрации
тироксина в крови лактирующих коров: в первой группе это значение
составило 46,1 ± 2,1 нмоль/л, а во второй группе 49,3 ± 1,8 нмоль/л.
В дальнейшем по ходу лактации концентрация тироксина постепенно
увеличивалась и максимального значения она достигала
на 9 месяце
лактации. У высокопродуктивной группы концентрация гормона к этому
времени лактации составила 50,5 ± 2,2 нмоль/л, а в сравниваемой группе 49,1
± 0,11 нмоль/л.
В конце лактации концентрация гормона в обеих подопытных группах
оставалась относительно на высоком уровне. У высокопродуктивной группы
на 10 месяце лактации концентрация тироксина составила 49,2± 1,6 нмоль/л,
57
58
34,2±2,1
38,6±1,1
II
1
I
Группа
коров
35,1±1,1
32,8±1,6
2
37,1±0,9
33,1±1,9
3
46,7±0,9
45,7±1,9
4
48,4±1,2
45,6±2,3
5
49,3±1,8
46,1±2,1
6
Месяц лактации
(нмоль/л)
48,4±0,6
46,1±2,1
7
50,5±2,2
9
49,2±1,6
10
50,2±1,1 49,1±0,11 48,2±0,6
49,5±2,8
8
Таблица 6 – Динамика концентрации тироксина в крови коров с разной молочной продуктивностью
а у низкопродуктивной группы 48,2 ± 0,6 нмоль/л, что выше по отношению к
1 месяцу лактации на 43,8 % в первой группе, и на 24,8 % во второй.
Следует также отметить, что более низкие концентрации тироксина на
всем протяжении лактации отмечены у более продуктивной группы коров.
Это видимо, связано с тем, что происходит интенсивное поглощение тканями
организма тироксина. Это отмечают в своих исследованиях Л.С. Радченков с
сотрудниками
(1985).
Статистически
достоверных
различий
между
сравниваемыми группами животных не установлено ( Р> 0,05).
Между концентрацией тироксина и уровнем молочной продуктивности
у обеих групп коров установлена отрицательная коррелятивная связь. В
первой группе она составила R = - 0.48, а во второй группе R = - 0,49.
Отрицательную коррелятивную связь отмечают в своих исследованиях и
другие авторы (Радченков В.П., 1975; В.И.Ерёменко, 1999, 2000; В.М.
Кретова, 2007; В.И.Ерёменко, 2010; В.П. Полянский, 2012).
Таким образом, более высокому уровню молочной продуктивности
коров соответствует низкий уровень концентрации тироксина в их крови.
Данные по концентрации трийодтиронина в крови лактирующих коров
приведены в таблице 7.
Результаты
исследований
уровня
трийодтиронина
в
крови
лактирующих коров показали, что в начале лактации в первой группе
уровень трийодтиронина находился на низком уровне и составил 1,0 ± 0,17
нмоль/л, а во второй группе 1,3 ±0,05 нмоль/л.
В первой половине лактации в обеих группах значение концентрации
трийодтиронина было на низком уровне. На 2 месяце лактации этот
показатель в первой группе и второй группе коров незначительно отличался
и составлял
0,8 ± 0,11 нмоль/л и
0,8 ± 0,08 нмоль/л по группам
соответственно. К 3 месяцу лактации концентрация трийодтиронина в крови
лактирующих коров немного понизилась и в первой группе составляла 0,7 ±
0,10 нмоль/л, а во второй – 0,8 ± 0,05 нмоль/л.
59
60
1,0±0,17
1,3±0,05
II
1
I
Группа
коров
0,8±0,08
0,8±0,11
2
5
6
0,9±0,09
1,2±0,10
1,3±0,10
0,8±0,10 0,9±0,10* 1,1±0,13
4
7
1,4±0,09
1,2±0,07
* P < 0,05 к сравниваемой группе
0,8±0, 05
0,7±0,10
3
Месяц лактации
1,5±0,09
1,2±0,10
8
1,6±0,10
1,3±0,08
9
Таблица 7 – Динамика концентрации трийодтиронина в крови коров с разной молочной
продуктивностью
(нмоль/л)
1,3±0,05
1,0±0,09
10
К 5 месяцу лактации уровень трийодтиронина в крови лактирующих
коров незначительно увеличился: в первой группе этот показатель составлял
0,9 ± 0,10 нмоль/л, а во второй 1,2 ± 0,10 нмоль/л (Р<0,05).
Далее по ходу лактации происходило увеличение концентрации
трийодтиронина в крови лактирующих коров и к 7 месяцу этот показатель
составлял: в первой группе 1,2 ± 0,07 нмоль/л, а во второй 1,4 ± 0,09 нмоль/л.
На
9
месяце
лактации
отмечена
относительно
максимальная
концентрация гормона трийодтиронина, как в первой , так и во второй группе
подопытных животных. В первой группе этот показатель составлял 1,3 ± 0,08
нмоль/л, а во второй группе 1,6± 0,10 нмоль/л.
Полученные данные показывают, что наиболее низкие концентрации
трийодтиронина в крови животных наблюдаются в начале и на пике
лактации, а также во время сухостойного периода.
В середине лактации, а также во второй её половине показатели
тиреоидных гормонов достигали максимальных значений, особенно на 7, 8 и
9-м месяцах.
Между суточными удоями лактирующих коров и концентрацией
трийодтиронина в крови установлена отрицательная коррелятивная связь, в
первой группе R = - 0,47, а во второй группе R = - 0,67. Отрицательная
коррелятивная зависимость отмечается и в других научных исследованиях
(Радченков В.П., 1975; В.И.Ерёменко, 1999, 2000; В.М. Кретова, 2007;
В.И.Ерёменко, 2010; В.П. Полянский, 2012).
Из проведённого анализа исследований следует, что содержание
трийодтиронина в крови у более высокоудойной группы коров ниже, чем у
сравниваемой.
3.7 Функциональные резервы щитовидной железы у коров с
разным уровнем молочной продуктивности по фазам лактации
Использование
гормональных
фонового
показателей
не
уровня
гормонов
всегда
объективно
при
исследовании
отражает
картину
61
функционального состояния эндокринной железы. Это можно объяснить тем,
что фоновый уровень гормонов зависит от многих процессов, протекающих в
организме, а также факторов внешней среды.
Поэтому чтобы более объективно оценить состояние и функцию
эндокринной
железы,
необходимо
провести
ее
оценку
методом
функциональных нагрузок.
Метод функциональной нагрузки – это способ, благодаря которому мы
можем объективно оценивать состояние эндокринной железы, выводить ее
функции на максимальное плато и устанавливать рамки ее функциональной
активности.
Для определения функциональных резервов щитовидной железы
использовали нагрузку тиреотропным гормоном. Подробно методика
описана в разделе « Материалы и методы исследования». Учитывая, что
максимальные удои лактирующих коров были на 2 месяце, то в этот период
мы провели функциональную нагрузку на щитовидную железу ТТГ.
Динамика тиреоидных гормонов в крови подопытных лактирующих
коров после нагрузки ТТГ представлена в таблицах 8 и 9.
Таблица 8 - Динамика тироксина в крови подопытных коров после нагрузки
ТТГ на 2 месяце лактации
Группа коров
Базальный
(нмоль/л)
Время после нагрузки (час)
Катг
уровень
0,5
1
2
I группа
31,4±0,3
36,1±0,5
37,2±0,3
43,9±0,3
0,39
II группа
36,7±0,5
43,7±0,3
54,2±0,5
67,4±0,6
0,83
62
Из данных, приведенных в таблице 8, мы видим, что перед введением
ТТГ концентрация тироксина в крови лактирующих коров первой группы
составляла 31,4 ± 0,3 нмоль/л. Во второй группе этот показатель был выше и
составил 36,7 ± 0,5 нмоль/л.
После введения ТТГ через 0,5 часа в первой группе коров
концентрация тироксина увеличилась на 14,9 % и составила 36,1 ± 0,5 нмоль/л,
а во второй группе увеличение произошло на 19 % и достигло уровня 43,7 ±
0,5 нмоль/л.
Через 1 час после введения ТТГ значения тироксина продолжали
увеличиваться и составили 37,2±0,3 и 54,2±0,5 нмоль/л в первой и второй
группе соответственно.
Максимальных значений концентрация тироксина после введения ТТГ
наблюдалась через 2 часа после его введения и составила в первой группе 43,9
± 0,3 нмоль/л, что превышало базальный уровень на 39,8 %.
Во второй группе концентрация тироксина через 2 часа после введения
ТТГ была выше, чем в первой группе, и составила 67,4 ± 0,6, что выше по
сравнению с базальным уровнем на 83,6 %.
Расчеты Катг
показали, что коэффициент активности тироксина
в
группе у коров с более высокой молочной продуктивностью составил 0,39 , у
группы с менее низкой молочной продуктивностью составил 0,83.
Результаты
исследования
динамики
трийодтиронина
в
крови
лактирующих коров с разным уровнем молочной продуктивности на 2 месяце
лактации приведены в таблице 9.
63
Таблица 9 - Динамика трийодтиронина в крови подопытных коров после
нагрузки ТТГ на 2 месяце лактации (нмоль/л)
Базальный
Группа коров
Время после нагрузки (час)
Катг
уровень
0,5
1
2
I группа
0,9±0,02
1,3±0,05
1,4±0,05
1,5±0,06
0,66
II группа
1,2±0,05
1,4±0,05
1,7±0,04
2,3±0,04
0,90
Из приведенных данных видно, что перед введением ТТГ уровень
трийодтиронина у первой группы животных составлял 0,9±0,02 нмоль/л. У
второй группы – 1,2 ± 0,05. Через 0,5 часа после введения ТТГ уровень
трийодтиронина в первой группе увеличился на 44,4 % и составил 1,3 ± 0,05
нмоль/л. Во второй группе концентрация трийодтиронина увеличилась за этот
промежуток времени на 16,6 % и составила 1,4 ± 0,05 нмоль/л.
Через 1 час после введения ТТГ этот показатель в первой группе
продолжал увеличиваться и составил 1,4 ± 0,05, а во второй группе
концентрация трийодтиронина через 1 час возросла до 1,7 ± 0,04 нмоль/л.
Максимальных значений концентрация гормона в обеих группах коров
достигала через 2 часа после проведения нагрузок ТТГ. В первой группе
уровень трийодтиронина достиг уровня 1,5 ± 0,06 нмоль/л, а во второй группе
2,3 ± 0,04 нмоль/л.
Расчет
коэффициента
активности
тиреоидных
гормонов
по
трийодтиронину показал, что более высокие значения этого показателя были
во второй группе и составили 0,90, а в первой группе 0,66.
Таким образом, максимальных значений концентрации тиреоидных
гормонов были отмечены в обеих группах коров через 2 часа после введения
64
ТТГ.
У коров с более высокими удоями отмечены относительно низкие
коэффициенты активности тиреоидных гормонов.
С целью выявления сохранения функциональных резервов щитовидной
железы этим же
лактирующим коровам на 8 месяце лактации
провели
аналогичные функциональные нагрузки.
Из данных, приведенных в таблице 10, мы видим что перед введением
ТТГ концентрация тироксина в крови лактирующих коров первой группы
составила 47,1 ± 0,4 нмоль/ л, а во второй группе 42,2 ± 0,3 нмоль/ л. Через
0,5 часа после первой нагрузки ТТГ наблюдалось увеличение концентрации
тироксина в крови исследуемых животных: в первой группе концентрация
тироксина составила 49,3 ± 0,6 нмоль/ л , а во второй группе 51,2 ± 0,3 нмоль/
л.
Таблица 10 - Динамика тироксина в крови подопытных коров после нагрузки
ТТГ на 8 месяце лактации ( нмоль/л )
Группа коров
Время после нагрузки (час)
Базальный
Катг
уровень
0,5
I группа
47,1 ± 0,4
49,3 ± 0,6
53,1 ± 0,9 60,8 ± 1,1
0,29
II группа
42,2 ± 0,3
51,2 ± 0,3
63,3 ± 0,8
0,67
Через 1 час после нагрузки
1
2
70,5 ± 1,8
ТТГ показатели уровня
тироксина
продолжали увеличиваться и составили в первой группе лактирующих коров
65
53,1 ± 0,9 нмоль/ л, а во второй группе коров 63,3 ± 0,8 нмоль/ л.
Максимальные значения концентрации тироксина после введения ТТГ
наблюдались так же через 2 часа и составили в первой группе 60,8 ± 1,1
нмоль/л, что превышало базальный уровень на 29 %.
Во второй группе концентрация тироксина через 2 часа после введения
ТТГ была выше, чем в первой и составила 70,5 ± 1,8 нмоль/л, что выше по
сравнению с базальным уровнем на 67 %, а этот показатель в первой группе
составил 60,8 ± 1,1 нмоль/л, что выше по сравнению с базальным уровнем на
68 %.
Расчеты Катг показали, что коэффициент активности тироксина в группе
у коров с более высокой молочной продуктивностью составил 0,29 , у группы
с менее низкой молочной продуктивностью составил 0,67.
Такие же различия мы наблюдали и при нагрузке на 2 месяце лактации ,
где было установлено, что меньший индекс Катг по тироксину был у коров с
высоким уровнем молочной продуктивности.
Результаты функциональной нагрузки по трийодтиронину приведены в
таблице 11.
Таблица 11- Динамика трийодтиронина в крови подопытных коров после
нагрузки ТТГ на 8 месяце лактации (нмоль/л)
Группа коров
Базальный
Время после нагрузки (час)
Катг
уровень
0,5
1
2
I группа
1,3 ±0,3
1,5 ± 0,1
1,6 ± 0,1
2,3 ± 0,5
0,7
II группа
1,4 ± 0,5
2,1 ± 0,1
2,2 ± 0,1
2,8 ± 0,4
1,0
66
Из данных, приведенных в таблице 11, мы видим, что перед введением
ТТГ концентрация трийодтиронина в крови лактирующих коров первой
группы составила 1,3 ±0,3 нмоль/ л, а во второй группе 1,4 ± 0,5 нмоль/ л.
Через 0,5 часа после введения тиреотропного гормона произошло
увеличение концентрации трийодтиронина в крови лактирующих коров и
составило в первой группе 1,5 ± 0,1 нмоль/л, а во второй группе 2,1 ± 0,1
нмоль/л.
Через 1 час после введения ТТГ значения концентрации уровня
трийодтиронина плавно увеличились в первой группе до 1,6 ± 0,1 нмоль/л, а
во второй группе менее продуктивных коров до 2,2 ± 0,1 нмоль/л.
Через 2 часа наблюдалось максимальное увеличение трийодтиронина.
Уровень этого гормона составил 2,3 ± 0,5 нмоль/л и 2,8 ± 0,4 нмоль/л,
соответственно в первой и во второй группах.
Расчет
коэффициентов
активности
тиреоидных
гормонов
по
трийодтиронину показал, что в группе животных с более высокой молочной
продуктивностью он составил 0,7 , а у группы с менее низкими удоями он
составил 1,0.
Из всего вышеизложенного можно сделать вывод, что наиболее низкие
коэффициенты активности тиреоидных гормонов
наблюдались
у коров с
более высокой молочной продуктивностью. Это свидетельствует о более
высоких функциональных резервах щитовидной железы у коров второй
группы.
3.8 Динамика концентрации тестостерона в крови лактирующих коров
Динамика уровня тестостерона в крови лактирующих подопытных
коров представлена в таблице 12.
Как показали результаты исследования, уровень тестостерона в крови у
лактирующих коров первой группы на первом месяце лактации составил
2,8±0,1, а во второй 3,1±0,2 нмоль/л.
67
68
2,8±0,1
3,1±0,2
II
1
I
Группа
коров
3,0±0,1
2,6±0,1*
2
2,8±0,2
1,9±0,2*
4
2,8±0,2
2,5±0,1
5
3,6±0,2
3,2±0,1
6
7
3,8±0,2
3,2±0,1*
* P < 0,05 к сравниваемой группе
2,6±0,1
2,1±0,1*
3
Месяц лактации
3,3±0,2
3,1±0,1
8
3,6±0,2
3,6±0,2
9
10
5,2±0,1
4,8±0,1*
Таблица 12 – Динамика тестостерона в крови коров с разной молочной продуктивностью
(нмоль/л)
Ко 2 месяцу лактации этот показатель практически не изменился и
составил: 2,6 ± 0,1 и 3,0 ± 0,1 нмоль/л соответственно (P < 0,05).
К 3 месяцу лактации уровень гормона снизился и составил в первой
более высокопродуктивной группе 2,1 ± 0,1 нмоль/л, а во второй 2,6 ± 0,1
нмоль/л (P < 0,05).
На 4 месяце лактации уровень тестостерона оставался на низком
уровне и составил в первой группе : 1,9 ± 0,2 нмоль/л, а во второй группе он
был выше - 2,8 ± 0,2 нмоль/л (P < 0,05).
К 5 месяцу лактации показатели уровня тестостерона в крови
лактирующих коров первой группы незначительно увеличились и составили
2,5 ± 0,1 нмоль/л, а во второй группе этот показатель по отношению к 4
месяцу лактации не изменился
и остался на том же уровне - 2,8 ± 0,1
нмоль/л.
В
дальнейшем
по
ходу
лактации
концентрация
постепенно увеличивалась. К 6 месяцу лактации
тестостерона
эти значения у
лактирующих коров увеличились и составили 3,2 ± 0,1 нмоль/л в первой
группе и 3,6 ± 0,2 нмоль/л во второй.
Показатель уровня тестостерона в крови лактирующих коров на 7
месяце лактации в первой группе составил 3,2 ± 0,1 нмоль/л, а во второй
группе уровень тестостерона был выше и составил 3,8 ± 0,2 нмоль/л (P <
0,05). Далее по ходу лактации происходило повышение уровня тестостерона
в крови лактирующих коров и к 10 месяцу лактации значение тестостерона
составило у коров первой группы
4,8 ± 0,1 нмоль/л, а у коров второй
группы– 5,2 ± 0,1 нмоль/л (P < 0,05). Между концентрацией тестостерона в
крови лактирующих коров и суточными удоями установлена отрицательная
коррелятивная связь. В первой группе R= - 0,78, а во второй R=-0,76.
Отрицательная коррелятивная связь взаимосвязь между уровнем общего
тестостерона в крови и удоями отмечена и другими авторами (Д.А.
Меченков, 2009; Ю.Ю.Вострухина, 2010, 2011).
Исходя из вышеизложенного можно сделать вывод, что у коров с более
высокими продуктивными качествами концентрация в крови тестостерона
ниже, чем у коров с меньшей молочной продуктивностью.
69
3.9 Функциональные резервы тестостеронсинтезирующей системы у
лактирующих коров на пике и в конце лактации
Учитывая, что максимальные удои в обеих группах коров были на 2
месяце, то в этот период мы и провели нагрузку ХГ. Подробно схема
введения ХГ описана в разделе « Материалы и исследования».
Из данных, приведенных в таблице 13, мы видим, что перед введением
ХГ базальный уровень тестостерона составлял в первой группе лактирующих
коров 3,5 ± 0,18 нмоль/л, а
во второй сравниваемой группе 3,6 ± 0,18
нмоль/л. Через 2 часа после первого введения ХГ значительных изменений в
концентрации тестостерона в крови подопытных животных ни в первой
группе, ни во второй не наблюдалось. В первой группе уровень тестостерона
составил 3,5± 0,18 нмоль/л, а во второй 3, 6 ± 0,18 нмоль/л, то есть он был на
уровне базального показателя.
Через 12 часов после первого введения ХГ наблюдался скачок уровня
тестостерона в крови лактирующих коров, в обеих группах он составлял 5,2 ±
нмоль/л.
Через 24 часа после первого введения ХГ продолжалось увеличение
уровня тестостерона в крови лактирующих коров, в первой группе он
составил: 6,3 ± 0,55 нмоль/л, а во второй группе этот показатель составил 6,6
± 0,45нмоль/л.
Через 48 часов уровень тестостерона в крови лактирующих коров
продолжал увеличиваться и составил в первой группе : 7,8 ± 0,45 нмоль/л, а
во второй сравниваемой группе 8,0± 0,40 нмоль/л. Пик концентрации
тестостерона выявлен в двух группах через 72 часа после первого введения
ХГ и составил по группам 8,7 ± 0,40 нмоль/л и 8,9 ± 0,50 нмоль/л в первой и
второй группе соответственно.
Для определения полного потенциала тестостеронсинтезирующей
системы лактирующих подопытных животных было проведено повторное
70
71
Базальный
Уровень
3,5±0,18
3,6±0,18
Группа коров
I
II
3,6±0,18
3,5±0,18
2
на 2 месяце лактации
5,2±0,35
5,2±0,30
12
6,6±0,45
6,3±0,55
24
8,0±0,40
7,8±0,45
48
Время после нагрузки (час)
(нмоль/л)
Таблица 13 - Динамика тестостерона в крови подопытных коров после первой нагрузки ХГ
8,9±0,50
8,7±0,40
72
введение ХГ. Динамику концентрации тестостерона в крови лактирующих
коров после второго введения ХГ можно увидеть в таблице 14.
Перед вторым введением уровень тестостерона в крови лактирующих
коров оставался на том же уровне, что и через 72 часа после первого
введения ХГ.
Через 2 часа после второго введения ХГ уровень тестостерона в крови в
первой группе составил 9,1 ± 0,40 нмоль/л, а во второй группе 9,4 ± 0,38
моль/л.
Через 12 часов после второго введения ХГ уровень тестостерона в
крови в первой группе увеличился до 9,3 ± 0,38 нмоль/л, а во второй группе
9,5 ± 0,42 моль/л.
В дальнейшем уровень тестостерона продолжал расти и через 24 часа
составил в первой группе 9,6 ± 0,50 нмоль/л, а во второй сравниваемой
группе 9,9 ± 0,45 нмоль/л.
Максимальных концентраций после второго введения ХГ уровень
тестостерона достиг также через 72 часа и составлял в первой группе 10,5 ±
0,40 нмоль/л, а во второй группе 11,7 ± 0,50 нмоль/л.
Динамику концентрации тестостерона в крови лактирующих коров
после третьего введения ХГ можно увидеть в таблице 15.
Перед третьей стимуляцией ХГ
уровень тестостерона в крови
лактирующих коров оставался на уровне, как и после 72 часов после второго
введения. После третьей стимуляции ХГ через 2 часа после введения
концентрация тестостерона в первой группе составляла 11,0 ± 0,45 нмоль/л, а
во второй группе 11,8 ± 0,40 нмоль/л.
В дальнейшем уровень концентрации тестостерона продолжал расти и
через 12 часов после третьего введения составил в первой группе 11,3 ± 0,50
нмоль/л, а во второй сравниваемой группе 13,7 ± 0,50 нмоль/л.
Максимальных значений уровень тестостерона в крови лактирующих
подопытных коров достиг через 24 часа после третьего введения ХГ и
72
73
Базальный
уровень
8,7±0,40
8,9±0,50
Группа коров
I
II
9,4±0,38
9,1±0,40
2
9,5±0,42
9,3±0,38
12
9,9±0,45
9,6±0,50
24
11,0±0,45
10,0±0,40
48
Время после нагрузки (час)
на 2 месяце лактации (нмоль/л)
72
11,7±0,50
10,5±0,40
Таблица 14- Динамика тестостерона в крови подопытных коров после второй нагрузки ХГ
74
Базальный
уровень
10,5±0,40
11,7±0,50
Группа коров
I
II
11,8±0,40
11,0±0,45
2
13,7±0,50
11,3±0,50
12
15,9±0,50
11,8±0,40
24
14,6±0,48
11,2±0,46
48
Время после нагрузки (час)
на 2 месяце лактации (нмоль/л)
72
13,7±0,45
10,2±0,50
Таблица 15- Динамика тестостерона в крови подопытных коров после третьей нагрузки ХГ
составил в первой группе 11,8 ± 0,40 нмоль/л, а во второй группе 15,9 ± 0,50
нмоль/л.
Далее через 48 часов уровень тестостерона в крови начал снижаться,
что,
видимо,
означало
полную
реализацию
функции
тестостеронсинтезирующей системы.
Через 72 часа после третьего введения ХГ концентрация тестостерона
начала постепенно уменьшаться и составила в первой группе 10,2 ± 0,50
нмоль/л, а во второй группе 13,7 ± 0,45 нмоль/л.
Последующее
четвертое
введение
ХГ
показало,
что
уровень
тестостерона в крови лактирующих коров не увеличивался, а некоторое
время оставался на одном и том же уровне, а потом постоянно снижался, что,
видимо,
связано
с
полной
тестостеронсинтезирующей
реализацией
системы
функциональных
подопытных
резервов
лактирующих
коров
(таблица 16).
Таблица 16- Динамика тестостерона в крови подопытных коров после
четвертой нагрузки ХГ на 2 месяце лактации (нмоль/л)
Группа
Базальный
коров
уровень
I
группа
II
группа
10,2 ± 0,50
13,7 ± 0,45
Время после нагрузки (час)
2
12
24
48
72
10,3 ±
0,30
9,8 ±
0,40
9,7 ±
0,35
9,3 ±
0,43
8,8 ±
0,35
13,7 ±
12,8 ±
12,1 ±
11,7 ±
10,6 ±
0,35
0,44
0,38
0,4
0,4
75
Сравнивая
результаты,
функциональных
нагрузок
между
подопытными лактирующими коровами, видно, что более высокими
потенциалами тестостеронсинтезирующей системы обладают коровы с
меньшей молочной продуктивностью.
Таким образом, проведенные исследования по функциональной
нагрузке на тестостеронсинтезирующую систему лактирующих коров с
разным уровнем молочной продуктивности показали, что более высокие
резервы тестостеронсинтезирующей системы наблюдались у коров с более
низкой молочной продуктивностью.
Аналогичные функциональные нагрузки ХГ были проведены этим же
животным и на 8 месяце лактации.
Динамику уровня тестостерона в крови лактирующих коров после
первого введения ХГ на 8 месяце лактации можно увидеть в таблице 17.
Базальный уровень тестостерона в крови на 8 месяце лактации
составил в первой группе 5,4 ± 0,40 нмоль/л, а во второй группе 5,2 ± 0,50
нмоль/л.
Через 2 часа после первой стимуляции ХГ уровень тестостерона в
крови немного увеличился и составлял в первой группе 5,8 ± 0,40 нмоль/л и
в сравниваемой группе 5,8 ± 0,38 нмоль/л. В дальнейшем он постоянно
увеличивался.
Через 24 часа в первой группе он составил 7,5 ± 0,50 нмоль/л, а во
второй - 8,0 ± 0,45 нмоль/л.
Через 48 часов концентрация тестостерона в крови продолжала
увеличиваться и составила в первой группе 8,0 ± 0,45 нмоль/л, а во второй
8,9 ± 0,50 нмоль/л.
Поскольку
тестостерон
продолжал
увеличиваться,
мы
провели
повторную стимуляцию ХГ. Динамика уровня тестостерона в крови
лактирующих коров после второго введения ХГ приведена в таблице 18.
76
77
Базальный
уровень
нмоль/л
5,4±0,40
5,2±0,50
Группа коров
I
II
5,8±0,38
5,8±0,40
2
7,1±0,35
6,6±0,30
12
8,0±0,45
7,5±0,50
24
8,9±0,50
8,0±0,45
48
Время после нагрузки (час)
на 8 месяце лактации (нмоль/л)
Таблица 17- Динамика тестостерона в крови подопытных коров после первой нагрузки ХГ
9,7±0,50
8,6±0,40
72
78
Базальный
уровень
8,6±0,40
9,7±0,50
Группа коров
I
II
9,9±0,38
8,8±0,45
2
10,3±0,35
8,8±0,30
12
12,7±0,45
9,8±0,50
24
10,9±0,50
10,0±0,45
48
Время после нагрузки (час)
на 8 месяце лактации (нмоль/л)
Таблица 18 - Динамика тестостерона в крови подопытных коров после второй нагрузки ХГ
11,4±0,50
11,0±0,40
72
Перед вторым введением уровень тестостерона в крови лактирующих
коров был такой же, как и после 72 часов при первом введении ХГ.
Через 2 часа после второго введения ХГ уровень тестостерона в крови
увеличивался в первой группе составлял 8,8 ± 0,45 нмоль/л,, а во второй 0,38
нмоль/л.
В дальнейшем концентрация тестостерона в крови увеличивалась и
через 72 часа после второго введения в первой группе составила 11,0 ± 0,40
нмоль/л, а во второй группе – 11,4 ± 0,50 нмоль/л.
В связи с тем, что уровень гормона продолжал увеличиваться была
проведена третья стимуляция ХГ как и на 2 месяце лактации.
Перед третьей стимуляцией ХГ
концентрации тестостерона между
группами практически не отличались и были на уровне 11,0 ± 0,40 нмоль/л и
11,4 ± 0,50 нмоль/л.
Динамика уровня тестостерона в крови лактирующих коров после
третьего введения ХГ на 8 месяце лактации приведена в таблице 19.
Как
видно,
после
стимуляции
уровень
гормона
продолжал
увеличиваться до своего максимального уровня 12,7 ± 0,50 нмоль/л, который
был зафиксирован через 24 часа после третьего введения ХГ в первой группе,
а во второй 14,3± 0,45 нмоль/л.
Расчет
индекса
активности
тестостеронсинтезирующей
системы
показал, что у первой группы он составил Иатс= 1,35, а во второй группе
Иатс= 1,75.
Анализируя данные межгрупповых различий после проведения трех
стимуляций,
видно,
что
наиболее
высокими
потенциалами
тестостеронсинтезирующей системы обладают коровы с меньшей молочной
продуктивностью, так же как и на 2 месяце лактации. Это подтверждается и в
других работах (Д.А. Меченков, 2009; Ю.Ю. Вострухина, 2010, 2011).
79
80
11,0±0,40
11,4±0,50
I
II
Группа
коров
Базальный
уровень
12,5±0,38
11,2±0,40
2
13,6±0,35
11,6±0,30
12
14,3±0,45
12,7±0,50
24
8,9±0,50
12,1±0,45
48
Время после нагрузки (час)
на 8 месяце лактации (нмоль/л)
9,7±0,50
10,0±0,40
72
Таблица 19 - Динамика тестостерона в крови подопытных коров после третьей нагрузки ХГ
1,75
1,35
Иатс
3.10 Динамика живой массы телочек, полученных от
разнопродуктивных коров
Результаты взвешиваний показали, что при рождении по живой массе
телочки,
полученные от
разнопродуктивных
коров,
практически
не
отличались.
У первой высокопродуктивной группы коров масса телочек при
рождении составила 29,5 ± 1,36 кг , а у второй группы - 28,9 ± 1,66 кг.
Сравнивая результаты, функциональных нагрузок между подопытными
лактирующими коровами, видно, что более высокими потенциалами
тестостеронсинтезирующей системы обладают коровы с меньшей молочной
продуктивностью.
Масса телят в 2 - месячном возрасте составляла в первой группе 73,0 ±
1,36 кг, а во второй группе 72,0 ± 1,66 кг. Разница составила 2 %, т.е различия
не существенны.
Начиная с 4 - месячного возраста телочки, полученные от более
высокопродуктивных коров, начали незначительно превосходить по живой
массе телочек, полученных от менее продуктивных коров.
Живая масса в возрасте 4 месяцев составила в первой группе 115,0 кг ±
1,15 кг, а в сравниваемой группе 110,0 кг ± 1,75 кг, что ниже на 4,5 %
(Р<0,05).
В 6 - месячном возрасте масса животных составила в первой группе
158,0 ± 1,35 кг, а в сравниваемой группе 151,0 ± 1,27 кг. Различия отмечены
как статистически достоверные (Р<0,05).
Динамика живой массы телочек, полученных от разнопродуктивных
коров, приведена в таблице 20.
81
Таблица 20 - Динамика живой массы телочек, полученных от
разнопродуктивных коров (кг)
Возраст (мес)
Группы
коров
При
рождении
2
4
6
I группа
29,5 ± 1,36
73,0 ± 1,36
115,0 кг ± 1,15*
158,0 ± 1,35*
II группа
28,9 ± 1,66
72,0 ± 1,57
110,0 кг ± 1,75
151,0 ± 1,27
P < 0,05 к сравниваемой группе
Таким образом, анализ динамики живой массы телочек, полученных от
разнопродуктивных коров, показал, что живая масса телят, полученных от
коров с более высокой молочной продуктивностью, несколько выше, чем у
телят, полученных от коров с менее высокой молочной продуктивностью.
3.11 Динамика общего белка в крови телочек, полученных от
разнопродуктивных коров
Уровень содержания общего белка в крови телочек, полученных от
коров с разной молочной продуктивностью, представлен в таблице 21.
Из полученных данных видно, что уровень общего белка в крови
телочек
от рождения до 6 - месячного возраста находился в пределах
физиологической нормы. Минимальные показатели уровня общего белка в
крови телочек были установлены на первом месяце жизни и составили в
первой группе : 55,2 ± 1,6 г/л, а в сравниваемой группе 56,3 ± 1,6 г/л. В
дальнейшем в двух, - трехмесячном возрасте уровень общего белка в крови
телочек постепенно увеличивался. В дальнейшем по ходу роста телочек
концентрация общего белка в крови увеличивалась.
В 2 - месячном возрасте концентрация общего белка в крови телочек
немного возросла. В первой группе показатель концентрации общего белка
82
находился на уровне 57,1 ± 1,6 г/л , а в сравниваемой группе 56,9 ± 1,7 г/л и
продолжал увеличиваться.
Таблица 21 – Уровень содержания в крови общего белка у телочек,
полученных от разнопродуктивных коров (г/л)
Возраст телочек (мес)
Группы
коров
1
2
3
4
5
6
55,2 ± 1,6
57,1± 1,6
70,1± 2,3
69,7± 1,8
72,1± 2,0 77,1± 1,8*
56,3 ± 1,6
56,9± 1,7
68,7± 2,1
68,5± 1,8
72,4± 1,8
I
группа
II
группа
72,0± 1,6
* Р<0,05 к сравниваемой группе
К 3 - месячному возрасту телочек в первой группе концентрация
общего белка составила 70,1 ± 2,3 г/л, что на 26,9 % выше показателя
концентрации общего белка в крови, чем на первом месяце. В сравниваемой
группе уровень общего белка также увеличивался и составил 68,7 ± 2,1 г/л,
что на 22 % выше показателя уровня общего белка в крови, чем на первом
месяце.
К 4 - месячному возрасту этот показатель существенно не изменился и
составил в первой группе 69,7 ± 1,8 г/л, а во второй группе 68,5 ± 1,8 г/л.
Максимальные значения концентрации общего белка в крови подопытных
телят были отмечены в 6 - месячном возрасте и составили в первой группе :
83
77,1± 1,8 г/л, а во второй группе 72,0± 1,6 г/л (Р<0,05). В первой группе от 1
до 6 - месячного возраста концентрация белка в крови увеличилась на 39,6 %,
а во второй группе на 27,8 %.
Таким образом, можно сделать вывод о том, что концентрация белка в
крови телочек с возрастом увеличивается постепенно, более высокие его
уровни наблюдаются у телочек, полученных от более высокопродуктивных
коров.
3.12 Уровень общего холестерола в крови телочек, полученных от
разнопродуктивных коров
Уровень содержания общего холестерола в крови телочек, полученных
от коров с разной молочной продуктивностью, представлен в таблице 22.
Анализируя данные таблицы, можно сделать вывод, что уровень
общего холестерола в крови подопытных телочек в течение 6 месяцев был в
пределах физиологической нормы и постепенно увеличивался с возрастом.
Таблица 22 - Уровень холестерола в крови телочек, полученных от
разнопродуктивных коров (ммоль/л)
Возраст телочек (мес)
Группа
коров
1
2
3
4
5
6
I группа
2,5 ± 0,20
2,7±0,25
3,1±0,30
2,9±0,22
3,3±0,30 3,6±0,28
II группа
2,6±0,23
2,7±0,30
2,8±0,25
2,9±0,28
2,9±0,30 3,0±0,25
84
Исследования
показали,
что
минимальные
значения
общего
холестерола были у одномесячных телочек в обеих группах.
У телочек, полученных от более высокопродуктивных коров, уровень
общего холестерола в этом возрасте составлял 2,5± 0,20 ммоль/л, а у
полученных от менее продуктивных коров этот показатель был на уровне 2,6
± 0,23 ммоль/л. В дальнейшем происходило некоторое увеличение этого
показателя.
К 2 - месячному возрасту концентрация общего холестерола в крови
подопытных телочек в первой группе составляла : 2,7 ± 0,25 ммоль/л. Такая
же концентрация общего холестерола была и во второй группе 2,7 ± 0,30
ммоль/л.
К 3 - месячному возрасту в первой группе телочек уровень общего
холестерола в крови немного увеличился по сравнению с 2 - месячным
возрастом и составил - 3,1 ± 0,30 ммоль/л. Во второй сравниваемой группе 2,8 ± 0,25 ммоль/л.
К 6 - месячному возрасту отмечены максимальные значения
концентрации
общего холестерола в крови телочек, полученных от
разнопродуктивных коров. В первой группе этот показатель составил
3,6±0,28 ммоль/л, а во второй группе 3,0±0,25 ммоль/л.
Статистически
достоверных различий по уровню общего холестерола в крови телочек,
полученных от разнопродуктивных коров, не установлено (Р>0,05).
Таким образом, с помощью проведенных исследований, можно сделать
вывод, что незначительно более высокие значения уровня общего
холестерола
наблюдался
у
телочек,
полученных
от
более
высокопродуктивных коров.
3.13 Динамика общих липидов в крови телочек, полученных от
разнопродуктивных коров
Динамика изменения общих липидов в крови телочек, полученных от
85
разнопродуктивных коров, представлена в таблице 23.
Таблица 23 - Динамика изменения общих липидов в крови телочек,
полученных от разнопродуктивных коров (г/л)
Возраст телочек (мес)
Группа
коров
1
2
3
4
5
6
I группа
2,7 ± 0,15
3,3±0,25
4,5±0,30
4,4±0,38
4,2±0,30
3,8±0,30
II группа
2,6±0,72
3,3±0,30
4,1±0,35
4,2±0,38
4,0±0,25
3,5±0,28
Результаты исследований показали, что уровень общих липидов по
мере роста подопытных животных находился в пределах физиологической
нормы в течение всего опыта.
Минимальные значения были установлены на первом месяце жизни и
составили в первой группе: 2,7 ± 0,15 г/л, а во второй сравниваемой группе
телочек, полученных от менее продуктивных коров, 2,6 ± 0,72 г/л.
Ко второму месяцу жизни произошло относительно небольшое
увеличение уровня общих липидов в крови в обеих группах подопытных
телочек. В первой и второй группе их показатель уровня концентрации
общих липидов в крови был на одинаковом уровне и составлял 3,3 г/л.
К 3 - месячному возрасту произошло увеличение уровня общих
липидов в крови телочек в обеих группах.
В первой группе этот показатель составил 4,5 ± 0,30 г/л, что на 66,6 %
86
выше уровня общих липидов в крови телочек, чем на первом месяце их
жизни. Во второй группе уровень общих липидов в крови находился в
пределах 4,1 ± 0,35 г/л, что на 57,6 % выше уровня общих липидов в крови
телочек, чем на первом месяце их жизни.
К 4 - месячному возрасту показатель уровня общих липидов в крови
подопытных телят практически не изменился и составил в первой группе 4,4
± 0,38 г/л, а во второй сравниваемой группе 4,2 ± 0,38 г/л.
Из данных таблицы мы видим, что к 6 месяцу жизни показатель уровня
общих липидов в крови уменьшился и составил в первой группе 3,8±0,3 г/л, а
во второй 3,5±0,28 г/л, что возможно связано, с переходом подопытных 6месячных телят на растительный корм и с началом работы
рубцового
пищеварения.
Статистически достоверных различий по уровню общих липидов в
крови телочек, полученных от разнопродуктивных коров, не установлено
(Р>0,05).
Таким образом, можно сделать вывод о том, что более высокая
концентрация общих липидов в крови подопытных телят, полученных от
более высокопродуктивных коров.
3.14 Активность аминотрансфераз в крови телочек, полученных от
разнопродуктивных коров
Наиболее важные ферменты, связанные с обменом аминокислот и
белков - трансаминазы, которые переносят группу NH2 с аминокислот на
кетокислоты. Наиболее высокой каталитической активностью обладают два
фермента: аланин-аминотрансфераза (АЛТ) и аспартат-аминотрансфераза
(АСТ). Исследуя уровень АЛТ и АСТ в крови телочек, можно увидеть, что
активность АСТ и АЛТ с возрастом существенно не изменяется. Показатели
АСТ в крови телочек, полученные в результате проведенных исследований,
приведены в таблице 24.
87
Таблица 24 – Динамика изменения активности АСТ в крови растущих
телочек, полученных от разнопродуктивных коров (нкат/л )
Возраст телочек (мес)
Группа
телочек
1
2
3
4
5
6
1
426±5,3
433±4,1
445±5,1*
423±5,2*
430±4,8
434±4,8
2
424±4,6
437±5,4
427±5,1
408±4,7
422±5,6
420±5,0
* Р<0,05 к сравниваемой группе
Из данных таблицы 24 видно, что при рождении уровень активности
АСТ в крови первой группы подопытных телочек, полученных от коров с
более высокой молочной продуктивностью, была на одинаковом уровне и
составляла 426±5,3 нкат/л, а в сравниваемой группе - 424±4,6 нкат/л.
В последующий месяц жизни произошло незначительное увеличение
активности АСТ в крови телочек : у первой группы концентрация АСТ
увеличилась до 433±4,1 нкат/л, во второй группе - 437±5,4 нкат/л. К третьему
месяцу жизни активность АСТ в крови телочек, полученных от коров с более
высокой продуктивностью, достигла максимального уровня и составила
445±5,1 нкат/л. Во второй группе концентрация аспартатаминотрансферазы в
крови телочек на третьем месяце жизни составила 427± 5,1 нкат/л (Р<0,05).
Начиная с 4 месяца жизни активность АСТ в крови телочек обеих
групп незначительно понизилась и составила в первой группе 423±5,2 нкат/л,
88
а во второй группе 408±4,7 нкат/л (Р<0,05). В 6 - месячном возрасте уровень
активности АСТ в крови подопытных телочек составлял в первой группе
434±4,8 нкат/л, в сравниваемой группе 420±5,0 нкат/л.
Показатели активности АЛТ в крови телочек, полученные в
результате проведенных исследований, приведены в таблице 25.
Как видно из данных таблицы 25, на первом месяце жизни уровень
АЛТ в крови телочек, полученных от более высокопродуктивных коров,
составил 280±5,3 нкат/л, а во второй группе телочек 279 ±4,7 нкат/л.
На 2 месяце жизни уровень активности АЛТ в крови у телочек первой
группы составил 276 ± 4,5 нкат/л, у телочек второй группы активность АЛТ в
крови составляла 277 ± 4,5 нкат /л.
К третьему месяцу жизни произошло незначительное увеличение
активности фермента в крови у обеих групп телочек, полученных от
разнопродуктивных коров.
На 3 месяце жизни активность АЛТ в крови телочек первой группы
составляла 289±4,0 нкат /л, а во второй группе 282±4,7 нкат /л.
Таблица 25 – Динамика изменения АЛТ в крови растущих телочек,
полученных от разнопродуктивных коров (нкат/л )
Возраст телочек (мес)
Группа
телят
1
2
3
4
5
6
1
280±5,3
276±4,5
289±4,0
270±4,6
274±3,9
283±4,0
2
279±4,7
277±4,5
282±4,7
260±5,3
268±4,1
271±4,5
89
К 4 месяцу жизни уровень АЛТ уменьшился и был на уровне 270±4,6
нкат /л в первой группе и 260±5,3 нкат /л во второй группе. К 6 - месячному
возрасту активность АЛТ у двух групп телочек повысился. В первой группе
концентрация АЛТ в крови составляла 283±4,0 нкат /л, во второй группе
271±4,5 нкат /л.
Статистически достоверной разницы в период исследования между
группами не установлено (Р>0,05).
Таким образом,
следует отметить определенную тенденцию, что
более высокая активность АСТ и АЛТ в крови была у телочек, полученных
от коров с более высокой молочной продуктивностью.
3.15. Концентрация тиреоидных гормонов в крови телочек,
полученных от разнопродуктивных коров
Полученные результаты исследований по уровню тироксина в крови
телочек, полученных от разнопродуктивных коров, показали, что его уровень
на протяжении роста телочек находился в пределах физиологической нормы.
Динамика изменения уровня тироксина в крови телочек, полученных
от разнопродуктивных коров, представлена в таблице 26.
Таблица 26 – Динамика изменения тироксина в крови растущих
телочек, полученных от разнопродуктивных коров
(нмоль/л)
Возраст телочек (мес)
Группа
коров
1
2
3
4
5
6
I группа
39,2±3,1
37,9±2,8
38,3±3,4
37,7±3,0
37,0±3,0
36,8±2,1
II группа
39,0±2,7
38,4±3,4
37,2±2,8
36,6±3,4
36,1±2,8 35,9±3,0
90
На первом месяце жизни уровень гормона тироксина в первой группе
составлял 39,2 ± 3,1 нмоль/л, а во второй группе телочек, полученных от
менее продуктивных коров, 39,0 ± 2,7 нмоль/л.
Ко второму месяцу жизни уровень гормона тироксина в крови обеих
групп телочек незначительно уменьшился, в первой группе этот показатель
составлял 37,9±2,8 нмоль/л, а во второй группе 38,4±3,4 нмоль/л.
К третьему месяцу жизни у телочек первой группы концентрация
тироксина в крови немного увеличилась и составляла 38,3±3,4 нмоль/л. Во
второй группе телочек, полученных от менее продуктивных коров, уровень
тироксина уменьшился и составлял 37,2±2,8 нмоль/л.
К четвертому месяцу жизни показатели концентрации тироксина в
крови телочек, полученных от разнопродуктивных коров, в обеих группах
уменьшились, в первой группе 37,7±3,0 нмоль/л, во второй группе телочек
36,6±3,4 нмоль/л. Далее происходило равномерное понижение уровня
концентрации гормона тироксина в крови телочек и к 6 месяцу составляло в
первой группе 36,8±2,1 нмоль/л, во второй группе 35,9±3,0 нмоль/л, это,
видимо, связано с более интенсивным ростом и более интенсивным
поглощением тканями организма тиреоидных гормонов.
Статистически достоверных различий по уровню тироксина между
группами телочек не установлено ( Р > 0,05 ).
Из всего вышеизложенного, можно сделать вывод, что с возрастом
уровень тироксина в крови телочек уменьшается. В крови телочек,
полученных от коров с более высокой молочной продуктивностью, уровень
тироксина был незначительно выше, чем у телочек, полученных от коров с
менее высокой молочной продуктивностью.
Данные по уровню гормона трийодтиронина в крови телочек до 6
месячного возраста приведены в таблице 27.
91
Таблица 27 – Динамика изменения трийодтиронина в крови растущих
телочек, полученных от разнопродуктивных коров (нмоль/л.)
Возраст телочек (мес)
Группа
телят
1
2
3
4
5
6
1
0,9±0,10
0,9±0,08
0,9±0,10
1,1±0,09
1,2±0,10
1,3±0,10*
2
0,9±0,10
0,9±0,14
0,9±0,10
1,0±0,10
1,1±0,11
1,1±0,10
* Р<0,05 к сравниваемой группе
На первом месяце жизни уровень трийодтиронина в обеих группах
телочек был на одинаковом уровне. Он составлял 0,9±0,10 нмоль/л.
На втором месяце показатель уровня трийодтиронина в обеих группах
немного увеличился и в первой группе был на уровне 0,9±0,08 нмоль/л. Во
второй сравниваемой группе уровень гормона трийодтиронина был на уровне
0,9±0,14 нмоль/л.
Наиболее видимое увеличение гормона трийодтиронина произошло
начиная с 4 месяца жизни, в обеих группах телочек, полученных от
разнопродуктивных коров. Так в первой группе этот показатель составил
1,1±0,09 нмоль/л, а во второй группе 1,0±0,10 нмоль/л.
Далее с увеличением возраста телочек показатель уровня гормона
трийодтиронина в крови исследуемых телочек увеличивался и к 6 месяцу
жизни составлял в первой группе 1,3±0,10 нмоль/л, а во второй сравниваемой
группе 1,1±0,10 (Р<0,05). По сравнению с первым месяцем жизни уровень
92
гормона трийодтиронина в крови телочек, полученных от коров с более
высокой молочной продуктивностью, к 6 месяцу жизни увеличился на 44,4%.
Во второй группе уровень гормона трийодтиронина в крови телочек,
полученных от коров с менее высокой молочной продуктивностью, к 6
месяцу жизни увеличился на 22,2 %.
Из всего вышеизложенного можно сделать вывод о том, что
концентрация трийодтиронина от 1 месяца до 6 увеличивается у телочек,
полученных от коров с более высокой молочной продуктивностью и выше
чем у телочек, полученных от менее продуктивных коров.
3.16 Функциональные резервы щитовидной железы у телочек,
полученных от разнопродуктивных коров
В ходе эксперимента вводили тиреотропный гормон (ТТГ), который,
воздействуя на специфические рецепторы ТТГ в щитовидной железе,
стимулирует
выработку
и
активацию
тироксина.
Он
активирует
аденилатциклазу и увеличивает потребление йода клетками железы.
Внутримышечно подопытным животным в дозе 0,5 ед на кг массы
животного. Наглядно динамику изменения тироксина в крови подопытных
телочек можно увидеть на рисунке 3.
Перед введением ТТГ базальная концентрация тироксина у первой
группы телочек составила 34,9 ± 2,4 нмоль/л, у второй группы 35,3 ± 3,0
нмоль/л. Через 30 минут после введения произошел резкий скачок уровня
тироксина в крови подопытных животных, который составил в первой
группе 50,3 ± 2,3 нмоль/л, а в сравниваемой группе 50,6 ± 3,3 нмоль/л.
Через 1 час после первого введения ТТГ было зафиксировано
увеличение концентрации тироксина в крови подопытных животных: в
первой группе этот показатель составил 67,4 ± 3,4 нмоль/л, а во второй
группе 69,4 ± 3,6 нмоль/л. Через 2 часа после введения уровень тироксина
93
в крови увеличился и достиг своих максимальных значений и составил в
первой группе 68,6 ± 3,2 нмоль/л, а во второй группе 79,2 ± 3,1 нмоль/л.
90
80
70
нмоль/л
60
50
I группа
II группа
40
30
20
10
0
0
0,5
1
2
время после введеня ТТГ (час)
Рисунок 3 - Динамика уровня тироксина в крови подопытных
телочек после введения ТТГ
Расчет коэффициента активности тиреоидных гормонов проводили
по формуле, указанной в материалах и методах исследований. К
атг
по Т 4
составил в первой группе 0,96 , а во второй группе 1,24.
Динамика изменения трийодтиронина
в крови подопытных
животных после введения ТТГ можно увидеть на рисунке 4.
Базальный уровень Т
3
по двум группам составил 1,8 ± 0,10нмоль/л
в первой группе и 1,8 ± 0,10 нмоль/л во второй.
После введения ТТГ через 30 минут уровень трийодтиронина
увеличился в обеих группах и составил в первой группе 2,2 ± 0,09 нмоль/л, а
во второй группе 2,0 ± 0,10 нмоль/л. Через 1
час после проведения
стимуляции щитовидной железы ТТГ уровень трийодтиронина продолжал
увеличиваться в обеих группах. В первой группе уровень трийодтиронина в
крови подопытных телочек составил 2,47 ± 0,10 нмоль/л, а во второй группе
уровень трийодтиронина в крови подопытных телочек составил 2,2 ± 0,08
нмоль/л. Максимальных концентраций уровень трийодтиронина в крови
94
подопытных телочек достиг через 2 часа после проведения стимуляции
щитовидной железы ТТГ. В первой группе он составил 2,61 ± 0,10 нмоль/л, а
во второй сравниваемой группе этот показатель составил 2,78 ± 0,09 нмоль/л.
К атг по Т 3 составил в первой группе 0,40 и во второй группе 0,54.
3
2,5
нмоль/л
2
I группа
1,5
II группа
1
0,5
0
0
0,5
1
2
время после введеня ТТГ (час)
Рисунок 4 - Динамика изменения трийодтиронина в крови подопытных
животных после введения ТТГ
Таким образом, пик концентрации тироксина и трийодтиронина
установлен через 2 часа после введения ТТГ в обеих группах.
Таким образом, проведенные исследования по функциональной
нагрузке щитовидной железы телочек ТТГ
свидетельствуют о том, что
телята, полученные от более высокопродуктивных коров, имеют меньший
коэффициент активности щитовидной железы.
3.17 Концентрация тестостерона в крови телочек, полученных от
разнопродуктивных коров
Результаты проведенных исследований показали, что уровень
тестостерона в крови изменялся от 1 до 6 - месячного возраста.
Динамика изменения тестостерона в крови растущих телочек,
95
полученных от разнопродуктивных коров, представлена в таблице 28.
Таблица 28 - Динамика тестостерона в крови растущих телочек, полученных
от разнопродуктивных коров (нмоль/л.)
Возраст телочек (мес)
Группа
коров
1
2
3
4
5
6
I группа
2,5 ± 0,30
2,4±0,40
2,2±0,30
2,6±0,40
2,8±0,40
3,6±0,45*
II группа
2,6±0,40
2,5±0,30
2,2±0,30
2,6±0,50
2,9± 0,40
3,8 ±0,50
* Р<0,05 к сравниваемой группе
В первый месяц жизни телочек уровень тестостерона в крови был на
уровне 2,5 ± 0,30 нмоль/л в первой группе, а во второй 2,6 ± 0,40 нмоль/л.
На втором месяце жизни концентрация тестостерона в крови в
первой группе составила 2,4 ± 0,40 нмоль/л, а во второй 2,5 ± 0,30 нмоль/л.
На третьем месяце жизни уровень тестостерона в крови обеих групп
был одинаковым и составил 2,2 нмоль.
К четвертому месяцу показатели уровня тестостерона в крови
незначительно возросли в обеих группах и составили 2,6 ±0,40 нмоль/л в
первой группе и 2,6 ±0,50 нмоль/л во второй.
Максимальное значение тестостерона в крови подопытных телят
было отмечено на 6 месяце, что, видимо, связано с началом периода полового
созревания. В первой группе показатель уровня тестостерона был на уровне
3,6 ±0,45 нмоль/л, а во второй группе 3,8 ±0,50 нмоль/л (Р<0,05 ).
Увеличение концентрации тестостерона в крови телочек в первой
96
группе произошло на 44 %, а во второй на 46 %, по сравнению с данными
первого месяца жизни. На 6 месяце жизни уровень тестостерона в крови
телочек, полученных от менее продуктивных коров стастически достоверные
(Р<0,05), чем у телочек, которые получены от более высокопродуктивных
коров.
Таким образом, концентрация гормона тестостерона с возрастом с
началом периода полового созревания увеличивается.
3.18 Функциональные резервы тестостеронсинтезирующей системы
у 6 - месячных телочек
Как
показали
результаты
исследований,
базальный
уровень
тестостерона в крови 6 - месячных телочек перед введением ХГ составлял в
первой группе телочек 3,6 ± 0,30 нмоль/л, а во второй группе 3,8 ± 0,40
нмоль/л.
После
введения
хорионического
гонадотропина
уровень
тестостерона постепенно увеличивался.
Динамика изменения тестостерона в крови 6 - месячных телочек,
полученных от разнопродуктивных коров, после первого введения ХГ
представлена на рисунке 5.
8
7
6
нмоль/л
5
I группа
4
II группа
3
2
1
0
0
2
12
24
48
72
время после введеня ХГ (час)
Рисунок 5 – Динамика тестостерона в крови 6 - месячных телочек,
полученных от разнопродуктивных коров, после первого введения ХГ
97
Как видно из данных рисунка 7, через 2 часа после введения ХГ
концентрация тестостерона увеличилась и составляла в первой группе 5,6 ±
0,5 нмоль/л, а во второй группе 5,5 ± 0,4 нмоль/л.
Максимальная концентрация тестостерона после стимуляции ХГ
достигала через 48 часов.
В первой группе концентрация тестостерона в крови телочек
составляла 6,6 ± 0,2 нмоль/л, а в сравниваемой группе - 6,8 ± 0,3 нмоль/л.
Уровень тестостерона после введения ХГ через 48 часов в первой группе
увеличился на 83,3 % по сравнению с базальным уровнем тестостерона. Во
второй группе концентрация тестостерона после введения ХГ через 48 часов
увеличилась на 78,9 %.
Почти на таком же уровне этот гормон оставался и после 72 часов
после введения ХГ. В первой группе концентрация тестостерона после 72
часов после введения ХГ составляла 6,5 ± 0,5 нмоль/л, а в сравниваемой
группе 6,8 ± 0,6 нмоль/л. Через 72 часа провели повторное введение ХГ, при
этом концентрация тестостерона в крови продолжала увеличиваться, но не
достигала своего максимального уровня.
Перед вторым введением хорионического гонадотропина концентрация
тестостерона оставалась на том же уровне, что и после 72 часов после первой
стимуляции.
Изменение концентрации тестостерона в крови 6 - месячных телочек
после второго введения ХГ представлено на рисунке 6.
Как видно из рисунка 6, через 2 часа после второго введения ХГ
концентрация тестостерона в крови телочек составляла в первой группе 6,7 ±
0,2 нмоль/л, а во второй группе - 6,8 ± 0,4 нмоль/л.
Наиболее высокая концентрация гормона в крови телочек обеих групп
наблюдалась через 72 часа после второго введения ХГ. В первой группе
составляла 6,8 ± 0,4 нмоль/л, а во второй 7,2 ± 0,3 нмоль/л.
98
7,6
7,4
I группа
7,2
II группа
нмоль/л
7
6,8
6,6
6,4
6,2
6
0
2
12
24
время после введеня ХГ (час)
48
72
Рисунок 6 - Концентрация тестостерона в крови 6 - месячных телочек после
второго введения ХГ
Перед третьей стимуляцией уровень тестостерона в крови подопытных
животных был почти на одинаковом уровне. Динамику изменения
тестостерона в крови 6 - месячных телочек после третьего введения ХГ
можно увидеть на рисунке 7.
8
7,8
I группа
7,6
II группа
нмоль/л
7,4
7,2
7
6,8
6,6
6,4
6,2
0
2
12
24
48
72
время после введеня ХГ (час)
Рисунок 7 - Концентрация тестостерона в крови 6 месячных телочек после
третьего введения ХГ
99
После третьего введения ХГ реакция тестостеронсинтезирующей
системы продолжала нарастать, достигая своего максимума у 1 и 2 группы
через 24 часа. Концентрация тестостерона в крови 6 – месячных телочек
после 3 введения ХГ через 24 часа составляла в первой группе 7,4 ± 0,2
нмоль/л, а во второй 8,8 ± 0,3 нмоль/л. Последующее введение ХГ не
приводило к повышению тестостерона в крови, а лишь поддерживало
достигнутый уровень гормона.
Расчёт
коэффициентов
активности
тестостеронсинтезирующей
системы (Катсс) показал, что у телочек первой группы он составил 1,0; у
телочек второй группы 1,3.
Таким образом, проведенные функциональные нагрузки показали, что
функциональные резервы тестостеронсинтезирующей системы у телочек,
полученных от более высокоудойных коров, имеют меньший индекс
активности тестостеронсинтезирующей системы.
3.19 Состояние обмена веществ, щитовидной железы и
тестостеронсинтезирующей системы у 20 – месячных телок и связь этих
показателей с будущей их молочной продуктивностью
Как указано в разделе «Материалы и методы исследования» была
сформирована группа 20 – месячных телок в количестве 20 голов.
Всем животным были проведены функциональные нагрузки на
щитовидную железу ТТГ и на тестостеронсинтезирующую систему ХГ по
той же схеме, как и лактирующим коровам, и рассчитаны коэффициенты
активности тестостеронсинтезирующей системы и индексы активности
тиреоидных гормонов по Т 3 и Т 4.
Кроме того, в этот же период у телок была взята кровь и в ее образцах
определили концентрацию общего белка, общего холестерола, общих
липидов, а также определили активность АСТ и АЛТ. Полученные данные
приведены в таблице 29.
По окончании лактации между фактическими удоями и указанными
100
показателями крови были рассчитаны коэффициенты корреляции и
построены математические модели для раннего прогнозирования молочной
продуктивности. Обработка полученных результатов проводилась в системе
Statgraf. Результаты математических расчетов в различных сочетаниях
показателей крови приведены в разделе « Приложения».
Математическая обработка материала однофакторным методом
показала, что коэффициенты корреляции в данном случае имели невысокие
взаимосвязи и находились в интервале от R = 0,51 до R = 0,68 . При
использовании многофакторного метода коэффициенты корреляции были
на уровне R = 0,80 и выше.
101
Таблица 29 – Биохимические показатели крови, индексы активности тестостеронсинтезирующей системы и
коэффициенты активности тиреоидных гормонов у 20 – месячных телок
№
животного
Общий белок
крови
( Х 1 ) г/л
1
2
3
4
5
6
7
8
9
10
11
12
13
14
15
16
17
18
74
81
70
72
75
81
74
85
68
72
68
74
75
74
77
85
81
75
Общий
холестерол
крови
( Х 2 ) г/л
4
4,9
3,3
4,6
4,7
3,7
4,1
4,6
4,3
3,6
3,2
4,9
4,3
3,9
3,8
4,5
4,3
3,8
19
60
20
85
102
Общие липиды
крови
( Х 3 ) ммоль/л
Активность
АСТ
( Х 4 ) нкат/л
4
4.2
3.9
3.5
4.6
3.4
3.8
4.7
3.9
4.4
3.3
4.5
4.2
4.6
4.4
4.7
3.3
4.4
380.2
550.1
390.4
300.4
540.1
670.4
350.4
550.2
580.4
260.1
210.4
520.4
450.1
350.7
550.4
540.3
630.7
320.4
Активность
АЛТ
(Х5 )
нкат/л
100,2
150,2
250,3
230,1
550,1
510,4
280,1
680,7
810,1
180,2
150,1
700,1
710,4
680,6
540,2
610,4
680,1
270,4
Иатс
(Х6 )
Катг (Т3)
(Х7 )
Катг (Т4)
(Х8 )
Фактический
удой за лактацию
(кг)
0.5
0.8
1.1
0.7
0.3
0.8
0.7
0.4
0.7
0.9
1.2
0.3
0.8
0.3
0.3
0.4
0.3
1.1
0,6
0,8
1
0,6
0,4
0,3
0,6
0,3
0,8
1
1,1
0,4
0,7
0,4
0,4
0,3
0,4
0,7
0,6
0,4
0,6
0,5
0,7
0,4
0,8
0,4
0,3
0,9
0,9
1
0,8
0,3
0,4
0,3
0,4
0,8
6400
7790
5340
6215
8440
5320
6740
8540
7900
5410
4320
6700
5840
8920
7940
8730
7940
5320
3,6
3.5
260.1
200,4
1.2
0,9
1,1
4930
4,7
3.1
450.1
269,3
0.7
0,9
0,9
6400
1. Взаимосвязь общего белка крови 20-месячных телок с последующей их
молочной продуктивностью описывается следующей математической
моделью:
У = - 1786,11 + 113,451 • Х1
R =0,51
(3)
2. Взаимосвязь общего холестерола крови с последующей молочной
продуктивностью :
У = -107,529 + 1658,04 • Х2
R = 0,60
(4)
R = 0,53
(5)
R = 0,58
(6)
R = 0,61
(7)
R = -0,84
(8)
R = 0,66
(9)
R = 0,68
(10)
R = 0,64
(11)
R = 0,68
(12)
R = 0,61
(13)
R = 0,70
(14)
R = 0,84
(15)
3. Общие липиды:
У = 919,729 + 1452,0 • Х3
4.АСТ:
У = 4035,89 + 6,14446•Х4
5. АЛТ:
У = 5191,44+3,65965•Х5
6. Иатс:
У = 9315,39 – 3790,58• Х6
7. Катг Т3 :
У = 9033,87 – 3614,48•Х7
8. Катг Т4
У = 9086,92 - 3728,28 • Х8
9. Белок и общий холестерол:
У = -2918,09+58,6614 • Х1 + 1269,96 • Х2
10. Белок и общие липиды:
У = -5306,11+ 1233,3 • Х3 + 94,3555 • Х1
11. Общий белок и АСТ:
У = 717,915+ 53,4144 • Х3 + 4,55435 • Х4
12. Белок и АЛТ
У = -683,343+81,5437 • Х1 + 3,03902 • Х5
13. Белок и Иатс
У = 7693,24 + 19,6447 • Х1 -3578,86 • Х6
14. Белок и Катг (Т3 )
103
У = 5178,49 + 46,0034 • Х1 -2993,33 • Х7
R = 0,69
(16)
R = 0,71
(17)
R = 0,72
(18)
R = 0,67
(19)
R = 0,73
(20)
R = 0,85
(21)
R = 0,75
(22)
R = 0,83
(23)
R = 0,73
(24)
R = 0,69
(25)
R = 0,86
(26)
R = 0,72
(27)
R = 0,78
(28)
R = 0,65
(29)
R = 0,85
(30)
15. Белок и К атг ( Т4 )
У = 4490,68+55,7672 • Х1 -3093,12• Х8
16. Холестерол и липиды
У = -3449,65 + 1380,49• Х2 -1117,2• Х3
17. Холестерол и АСТ
У = 296,802 + 1139,8• Х2 +3,9321• Х4
18.Холестерол и АЛТ
У = 607,518 + 1205,63• Х2 +2,70718• Х5
19.Холестерол и Иатс
У = 7235,74 + 433,433• Х2 -3368,0• Х6
20. Холестерол и К атг ( Т3 )
У = 4089,36 + 1053,47• Х2 -2688,85• Х7
21. Холестерол и К атг ( Т4 )
У = 3162,0 + 1354,32• Х2 -3219,41• Х8
22. Липиды и АСТ
У = -697,563 + 1253,32• Х3 +5,45594• Х4
23.Липиды и АЛТ
У = 1645,03 + 966,516• Х3 +2,86712• Х5
24.Липиды и Иатс
У = 6840,7 + 548,169• Х3 – 3389,02• Х6
25. Липиды и К атг ( Т3 )
У = 5219,75 + 837,675• Х3 -2905,48• Х7
26. Липиды и К атг ( Т4 )
У = 4404,41 + 1086,77• Х3 -3226,36• Х8
27. АСТ и АЛТ
У = 4237,9 + 3,35429• Х4 + 2,41634• Х5
28.АСТ и Иатс
У = 8485,19 + 1,35304• Х4 -3448,27• Х6
29.АСТ и К атг ( Т3 )
104
У = 7218,54 + 2,78736• Х4 -2692,19• Х7
R = 0,69
(31)
R = 0,71
(32)
R = 0,85
(33)
R = 0,71
(34)
R = 0,77
(35)
R = 0,84
(36)
R = 0,89
(37)
R = 0,77
(38)
R = 0,83
(39)
R = 0,75
(40)
R = 0,85
(41)
R = 0,81
(42)
R = 0,87
(43)
R = 0,75
(44)
R = 0,88
(45)
30.АСТ и К атг ( Т4 )
У = 7217,98 + 2,94816• Х4 -2826,76• Х8
31.АЛТ и Иатс
У = 8699,57 + 0,824494• Х5 -3400,7• Х6
32. АЛТ и К атг ( Т3 )
У = 7526,15 +1,90816• Х5 -2516,77• Х7
33. АЛТ и К атг ( Т4 )
У = 7506,53 + 2,32989• Х5 -2794,11• Х8
34.Катс и К атг ( Т3 )
У = 9265,09 -3982,13• Х6 +285,077• Х7
35.Каттс и К атг ( Т4 )
У = 9997,54 -3015,7• Х6 -1928,3• Х8
36. К атг ( Т3 )и К атг ( Т4 )
У = 9765,88 -2302,53• Х7 -2493,65• Х8
37.Белок, холестерол и К атг ( Т4 )
У = 3657,53 -8,65016•Х1 +1404,01• Х2 - 3299,26• Х 8
38. Белок, холестерол и К атг ( Т3 )
У = 3301,46 +12,5325• Х1 +997,564• Х2 - 2568,75• Х 7
39. Белок, холестерол и Иатс
У = 6607,36 +10,0495• Х1 +391,445• Х2 - 3300,63• Х 6
40.Липиды, АСТ и К атг ( Т4 )
У = 2587,66 +1081,26• Х3 +2,9033• Х4 - 2341,11• Х 8
41.Липиды АСТ и Иатс
У = 5123,18 +617,615• Х3 +1,79927• Х4 – 2882,95• Х 6
42.Липиды, АСТ и АЛТ
У = 13,8841 +1092,37• Х3 +4,11343• Х4 + 1,23921• Х5
43.Холестерол, липиды и К атг ( Т4 )
У = 328,059 +1176,22• Х2+838,569• Х3 – 2899,05•Х 8
44.Холестерол, липиды и К атг ( Т3 )
105
У = 850,536 +997.79• Х2 +768,721• Х3 – 2087,13• Х 7
R = 0,79
(44)
R = 0,87
(45)
R = 0,79
(46)
R = 0,79
(47)
R = 0,88
(48)
45. Холестерол, липиды и Иатс
У = 4642,63 +448,926• Х2 +557,933• Х3 – 2944,18• Х 6
46.Холестерол, липиды и АЛТ
У = -2025,61 +1099,41• Х2 +827,684• Х3 +2,1124• Х 5
47. Холестерол, липиды и АСТ
У = -3001.2 +879,835• Х2 +1099,05• Х3 +3,83292• Х 4
48. Холестерол, липиды и К атг ( Т4 )
У = 328,059+1176,22• Х2 +838,569• Х3 -2899,05• Х 8
Где У – прогнозируемый удой за лактацию
Х 1 - общий белок крови
Х 2 - общий холестерол крови
Х 3 - общие липиды крови
Х 4 - активность АСТ
Х 5 - активность АЛТ
Х 6 - Иатс
Х 7 - Катг (Т3)
Х 8 - Катг (Т4)
Таким образом, более высокие коэффициенты корреляции были
получены
при
использовании
в
математических
моделях
индексов
активности тестостеронсинтезирующей системы.
106
Таблица 30- Взаимосвязь коэффициента активности
тестостеронсинтезирующей системы у 20 – месячных телок с их
последующей молочной продуктивностью
Разница (%)
Прогнозируемый
между
удой (кг)
фактическим и
У
прогнозируемым
удоем
15,9
7420
23,9
6283
№
животного
Фактический
удой
(кг)
Иатс
Х6
1
6400
0.5
2
7790
0.8
3
5340
1.1
5146
3,7
4
6215
0.7
6662
7,1
5
8440
0.3
8178
3,2
6
5320
0.8
6283
18,1
7
6740
0.7
6662
1,1
8
8540
0.4
7799
9,5
9
7900
0.7
6662
8,5
10
5410
0.9
5904
9,1
11
4320
1.2
4767
10,3
12
6700
0.3
8178
22,0
13
5840
0.8
6283
7,5
14
8920
0.3
8178
9,0
15
7940
0.3
8178
2,9
16
8730
0.4
7799
11,9
17
7940
0.3
8178
2,9
18
5320
1.1
5146
3,3
19
4930
1.2
4767
3,4
6400
0.7
У = 9315,39 – 3790,58• Х6 ;
где У - прогнозируемый удой;
Х6 - Иатс
6662
4,0
20
107
Таблица 31- Взаимосвязь коэффициента активности
тестостеронсинтезирующей системы, холестерола крови у 20 – месячных
телок с их последующей молочной продуктивности
№ Фактический
живот
удой
ного
(кг)
Общий
холестерол крови
(ммоль/л)
Х2
Иатс
Х6
Разница (%)
Прогнозирумежду
емый удой
фактическим и
(кг)
прогнозируеУ
мым удоем
13,8
7285
1
6400
4
0.5
2
7790
4,9
0.8
6665
16,8
3
5340
3,3
1.1
4961
7,6
4
6215
4,6
0.7
6872
10,5
5
8440
4,7
0.3
8262
2,1
6
5320
3,7
0.8
6145
15,5
7
6740
4,1
0.7
6655
1,2
8
8540
4,6
0.4
7882
8,3
9
7900
4,3
0.7
6742
17,1
10
5410
3,6
0.9
5765
6,5
11
4320
3,2
1.2
4581
6,0
12
6700
4,9
0.3
8349
24,6
13
5840
4,3
0.8
6405
9,6
14
8920
3,9
0.3
7916
12,6
15
7940
3,8
0.3
7872
0,8
16
8730
4,5
0.4
7839
11,3
17
7940
4,3
0.3
8089
1,8
18
5320
3,8
1.1
5178
2,7
19
4930
3,6
1.2
4754
3,7
6400
4,7
0.7
У = 7235,74 + 433,433• Х2 -3368,0• Х6 ;
6915
8,0
20
где У - прогнозируемый удой;
Х2 - общий холестерол крови; Х6 - Иатс
108
Таблица 32- Взаимосвязь общего холестерола в крови и Катг (Т4)
у 20 – месячных телок с их последующей молочной продуктивностью
1
6400
4
0,6
6648
Разница (%)
между
фактическим
и
прогнозируемым удоем
3,8
2
7790
4,9
0,4
8510
9,2
3
5340
3,3
0,6
5700
6,7
4
6215
4,6
0,5
7782
25,2
5
8440
4,7
0,7
7274
16,0
6
5320
3,7
0,4
6885
29,0
7
6740
4,1
0,8
6139
9,7
8
8540
4,6
0,4
8104
5,3
9
7900
4,3
0,3
8020
1,5
10
5410
3,6
0,9
5140
5,2
11
4320
3,2
0,9
4598
6,4
12
6700
4,9
1
6579
1,8
13
5840
4,3
0,8
6410
9,7
14
8920
3,9
0,3
7478
19,2
15
7940
3,8
0,4
7021
13,0
16
8730
4,5
0,3
8291
5,2
17
7940
4,3
0,4
7698
3,1
18
5320
3,8
0,8
5733
7,7
19
4930
3,6
1,1
4496
9,6
0,9
6630
3,5
№
Фактический
живот
удой
ного
(кг)
Общий
холестерол
крови
(ммоль/л)
Х2
Катг Т4
Х8
Прогнозиру
емый удой
(кг)
У
20
6400
4,7
У = 3162,0 + 1354,32•Х2 -3219,41• Х8 ;
Где
У - прогнозируемый удой;
Х2 - общий холестерол крови;
Х8 - Катг (Т4)
109
Таблица 33- Взаимосвязь Иатс и общего белка в крови у 20 – месячных телок
с их последующей молочной продуктивностью
Разница (%) между
фактическим и
прогнозируемым
удоем
№
живот
ного
Фактический удой
(кг)
Общий
белок
крови
(г/л)
Х1
1
6400
74
0.5
7358
14,9
2
7790
81
0.8
6421
21,3
3
5340
70
1.1
5132
4,0
4
6215
72
0.7
6602
6,2
5
8440
75
0.3
8093
4,2
6
5320
81
0.8
6421
20,6
7
6740
74
0.7
6642
1,4
8
8540
85
0.4
7931
7,6
9
7900
68
0.7
6524
21,0
10
5410
72
0.9
5887
8,8
11
4320
68
1.2
4734
9,5
12
6700
74
0.3
8073
20,5
13
5840
75
0.8
6304
7,9
14
8920
74
0.3
8073
10,5
15
7940
77
0.3
8132
2,4
16
8730
85
0.4
7931
10,0
17
7940
81
0.3
8211
3,4
18
5320
75
1.1
5230
1,7
19
4930
60
1.2
4577
7,7
6400
85
0.7
У = 7693,24 + 19,6447 • Х1 -3578,86 • Х6;
6858
7,0
20
Иатс
Х6
Прогнозируемый удой
(кг)
У
где У - прогнозируемый удой;
Х1 - общий белок крови;
Х6 - Иатс
110
Таблица 34- Взаимосвязь Иатс и общих липидов в крови у 20 – месячных
телок с их последующей молочной продуктивностью
№
живот
ного
Фактический удой
(кг)
Общие
липиды
крови
(ммоль/л)
Х3
1
6400
4
0.5
7339
Разница (%)
между
фактическим
и
прогнозируемым удоем
14,6
2
7790
4.2
0.8
6432
21,1
3
5340
3.9
1.1
5251
1,6
4
6215
3.5
0.7
6387
2,7
5
8440
4.6
0.3
8346
1,1
6
5320
3.4
0.8
5993
12,6
7
6740
3.8
0.7
6551
2,8
8
8540
4.7
0.4
8061
5,9
9
7900
3.9
0.7
6606
19,5
10
5410
4.4
0.9
6203
14,6
11
4320
3.3
1.2
4583
6,0
12
6700
4.5
0.3
8291
24,0
13
5840
4.2
0.8
6432
10,0
14
8920
4.6
0.3
8346
6,8
15
7940
4.4
0.3
8236
4,9
16
8730
4.7
0.4
8061
8,0
17
7940
3.3
0.3
7633
4,0
18
5320
4.4
1.1
5525
4,0
19
4930
3.5
1.2
4692
5,0
6400
3.1
0.7
У = 6840,7 + 548,169• Х3 – 3389,02• Х6 ;
6168
3,7
20
где
Иатс
Х6
Прогнозиру
емый удой
(кг)
У
У - прогнозируемый удой;
Х3 - общие липиды крови;
Х6 - Иатс
111
Таблица 35- Взаимосвязь Иатс и активностью АСТ у 20 – месячных
телок с их последующей молочной продуктивностью
1
6400
380.2
0.5
7275
Разница (%)
между
фактическим
и
прогнозируемым удоем
13,6
2
7790
550.1
0.8
6471
20,0
3
5340
390.4
1.1
5220
2,2
4
6215
300.4
0.7
6478
4,2
5
8440
540.1
0.3
8181
3,1
6
5320
670.4
0.8
6634
24,0
7
6740
350.4
0.7
6546
3,0
8
8540
550.2
0.4
7850
8,7
9
7900
580.4
0.7
6857
15,0
10
5410
260.1
0.9
5734
5,9
11
4320
210.4
1.2
4632
7,2
12
6700
520.4
0.3
8155
21,7
13
5840
450.1
0.8
6336
8,4
14
8920
350.7
0.3
7925
12,5
15
7940
550.4
0.3
8195
3,2
16
8730
540.3
0.4
7837
11,3
17
7940
630.7
0.3
8304
4,5
18
5320
320.4
1.1
5126
3,7
19
4930
260.1
1.2
4699
4,9
6400
450.1
0.7
У = 8485,19 + 1,35304• Х4 -3448,27• Х6 ;
6680
4,3
№
Фактический
животудой
ного
(кг)
Активность
АСТ
(нкат/л)
Х4
20
Иатс
Х6
Прогнозируемый удой
(кг)
У
где У - прогнозируемый удой;
Х4 - активность АСТ;
Х6 - Иатс
112
Таблица 36- Взаимосвязь Иатс и активностью АЛТ в крови
у 20 – месячных телок с их последующей молочной продуктивности
№
живот
ного
Фактическ
ий удой
(кг)
Активность
АЛТ
(нкат/л)
Х5
Иатс
Х6
Прогнозируемый удой
(кг)
У
1
6400
100,2
0.5
7082
Разница (%)
между
фактическим
и
прогнозируемым удоем
10,6
2
7790
150,2
0.8
6103
27,6
3
5340
250,3
1.1
5165
3,3
4
6215
230,1
0.7
6509
4,7
5
8440
550,1
0.3
8133
3,7
6
5320
510,4
0.8
6400
20,3
7
6740
280,1
0.7
6550
2,9
8
8540
680,7
0.4
7901
8,0
9
7900
810,1
0.7
6987
13,0
10
5410
180,2
0.9
5788
6,9
11
4320
150,1
1.2
4742
9,7
12
6700
700,1
0.3
8257
23,0
13
5840
710,4
0.8
6565
12,4
14
8920
680,6
0.3
8241
8,2
15
7940
540,2
0.3
8125
2,3
16
8730
610,4
0.4
7843
11,3
17
7940
680,1
0.3
8240
3,7
18
5320
270,4
1.1
5182
2,6
19
4930
200,4
1.2
4784
3,0
6400
269,3
0.7
У = 8699,57 + 0,824494• Х5 -3400,7•Х6 ;
6541
2,0
20
где У - прогнозируемый удой;
Х5 - активность АЛТ;
Х6 - Иатс
113
Таблица 37- Взаимосвязь Иатс и Катг (Т3) у 20 – месячных телок с их
последующей молочной продуктивностью
1
6400
0.5
0,6
7445
Разница (%)
между
фактическим и
прогнозируемым удоем
16,3
2
7790
0.8
0,8
6307
23,5
3
5340
1.1
1
5170
3,2
4
6215
0.7
0,6
6649
6,9
5
8440
0.3
0,4
8184
3,1
6
5320
0.8
0,3
6165
15,8
7
6740
0.7
0,6
6649
1,3
8
8540
0.4
0,3
7758
10,0
9
7900
0.7
0,8
6706
17,8
10
5410
0.9
1
5966
10,2
11
4320
1.2
1,1
4800
11,1
12
6700
0.3
0,4
8184
22,1
13
5840
0.8
0,7
6279
7,5
14
8920
0.3
0,4
8184
8,9
15
7940
0.3
0,4
8184
3,0
16
8730
0.4
0,3
7758
12,5
17
7940
0.3
0,4
8184
3,0
18
5320
1.1
0,7
5084
4,6
19
4930
1.2
0,9
4743
3,9
6400
0.7
0,9
У = 9265,09 -3982,13• Х6 +285,077• Х7 ;
6734
5,2
№
Фактический
животудой
ного
(кг)
Иатс
Х6
Катг (Т3)
Х7
Прогнозируемый удой
(кг)
У
20
где У - прогнозируемый удой;
Х6 - Иатс
Х7 – Катг ( Т3)
114
Таблица 38 - Взаимосвязь Иатс и Катг (Т4) у 20 – месячных телок с их
последующей молочной продуктивностью
№
живот
ного
Фактичес
кий удой
(кг)
Иатс
Х6
Катг Т4
Х8
Прогнозируемый удой
(кг)
1
6400
0.5
0,6
7333
Разница (%)
между
фактическим и
прогнозируемым удоем
14,5
2
7790
0.8
0,4
6814
14,3
3
5340
1.1
0,6
5523
3,4
4
6215
0.7
0,5
6922
11,3
5
8440
0.3
0,7
7743
9,0
6
5320
0.8
0,4
6814
28,0
7
6740
0.7
0,8
6344
6,2
8
8540
0.4
0,4
8020
6,4
9
7900
0.7
0,3
7308
8,1
10
5410
0.9
0,9
5548
2,5
11
4320
1.2
0,9
4643
7,4
12
6700
0.3
1
7165
6,9
13
5840
0.8
0,8
6042
3,4
14
8920
0.3
0,3
8514
4,7
15
7940
0.3
0,4
8322
4,8
16
8730
0.4
0,3
8213
6,2
17
7940
0.3
0,4
8322
4,8
18
5320
1.1
0,8
5138
3,5
19
4930
1.2
1,1
4258
16,0
6151
4,0
20
6400
0.7
0,9
У = 9997,54 -3015,7• Х6 -1928,3• Х8 ;
где У - прогнозируемый удой;
Х6 - Иатс
Х8 - Катг (Т4)
115
Таблица 39- Взаимосвязь Катг (Т4), общего белка и холестерола
у 20 – месячных телок с их последующей молочной продуктивностью
№
Фактический
живот
удой
ного
(кг)
Разница
Общий
Общий
(%) между
холестеПрогнозирубелок
фактичесрол
Катг Т4 емый удой
крови
ким и
крови
Х8
(кг)
(г/л)
прогнози(ммоль/л)
У
Х1
руемым
Х2
удоем
3,9
74
4
0,6
6654
1
6400
2
7790
81
4,9
0,4
8517
9,3
3
5340
70
3,3
0,6
5706
6,8
4
6215
72
4,6
0,5
7844
26,2
5
8440
75
4,7
0,7
7298
15,6
6
5320
81
3,7
0,4
6832
28,4
7
6740
74
4,1
0,8
6134
9,8
8
8540
85
4,6
0,4
8061
5,9
9
7900
68
4,3
0,3
8117
2,7
10
5410
72
3,6
0,9
5120
5,6
11
4320
68
3,2
0,9
4593
6,3
12
6700
74
4,9
1
6598
1,5
13
5840
75
4,3
0,8
6407
9,7
14
8920
74
3,9
0,3
7503
19,0
15
7940
77
3,8
0,4
7007
13,3
16
8730
85
4,5
0,3
8251
5,8
17
7940
81
4,3
0,4
7674
3,4
18
5320
75
3,8
0,8
5705
7,2
19
4930
60
3,6
1,1
4564
8,0
6552
2,3
20
6400
85
4,7
0,9
У = 3657,53 -8,65016• Х1 +1404,01* Х2 - 3299,26• Х 8 ;
где У - прогнозируемый удой; Х1 - общий белок крови;
Х2 - общий холестерол крови; Х8 - Катг (Т4)
116
Таблица 40- Взаимосвязь Иатс, общего белка и холестерола в крови
у 20 – месячных телок с их последующей молочной продуктивностью
№
Фактический
животудой
ного
(кг)
Общий
белок
крови
(г/л)
Х1
Общий
холесте
рол
крови
(ммоль/
л)
Х2
Иатс
Х6
Прогнозируемый
удой
(кг)
У
Разница
(%) между
фактическим и
прогнозируемым
удоем
1
6400
74
4
0.5
7266
13,5
2
7790
81
4,9
0.8
6699
16,2
3
5340
70
3,3
1.1
4972
7,4
4
6215
72
4,6
0.7
6821
9,7
5
8440
75
4,7
0.3
8211
2,7
6
5320
81
3,7
0.8
6229
17,0
7
6740
74
4,1
0.7
6646
1,4
8
8540
85
4,6
0.4
7942
7,5
9
7900
68
4,3
0.7
6663
18,5
10
5410
72
3,6
0.9
5770
6,6
11
4320
68
3,2
1.2
4583
6,0
12
6700
74
4,9
0.3
8279
23,5
13
5840
75
4,3
0.8
6404
9,6
14
8920
74
3,9
0.3
7887
13,0
15
7940
77
3,8
0.3
7878
0,7
16
8730
85
4,5
0.4
7903
10,4
17
7940
81
4,3
0.3
8114
2,1
18
5320
75
3,8
1.1
5218
1,9
19
4930
60
3,6
1.2
4659
5,8
6400
0.7
85
4,7
6991
У = 6607,36 +10,0495• Х1 +391,445* Х2 - 3300,63• Х 6 ;
9,2
20
где У - прогнозируемый удой;
Х1 - общий белок крови;
Х2 - общий холестерол крови; Х6 – Иатс
117
Таблица 41- Взаимосвязь Катг (Т4), общих липидов и активности АСТ в
крови у 20 – месячных телок с их последующей молочной продуктивностью
Общие
Разница
липи- Актив(%) между
Прогнози№
Фактический
ды
ность
фактичесКатг Т4
руемый
живот
удой
крови
АСТ
ким и
Х8
удой
ного
(кг)
(ммоль (нкат/л)
прогнозиУ
/л)
Х4
руемым
Х3
удоем
1
6400
4
380.2
3,3
0,6
6612
2
7790
4.2
550.1
0
0,4
7790
3
5340
3.9
390.4
22,3
0,6
6533
4
6215
3.5
300.4
2,3
0,5
6074
5
8440
4.6
540.1
12,6
0,7
7491
6
5320
3.4
670.4
36,7
0,4
7274
7
6740
3.8
350.4
15,3
0,8
5841
8
8540
4.7
550.2
2,5
0,4
8331
9
7900
3.9
580.4
1,4
0,3
7787
10
5410
4.4
260.1
10,7
0,9
5993
11
4320
3.3
210.4
7,8
0,9
4660
12
6700
4.5
520.4
1,1
1
6623
13
5840
4.2
450.1
12,3
0,8
6563
14
8920
4.6
350.7
13,2
0,3
7877
15
7940
4.4
550.4
0,8
0,4
8007
16
8730
4.7
540.3
2,2
0,3
8536
17
7940
3.3
630.7
12,6
0,4
7050
18
5320
4.4
320.4
20,0
0,8
6403
19
4930
3.5
260.1
8,3
1,1
4552
20
6400
3.1
450.1
24,5
0,9
5139
У = 2587,66 +1081,26• Х3 +2,9033* Х4 - 2341,11• Х 8 ;
где У - прогнозируемый удой; Х3 - общие липиды крови;
Х4 - активность АСТ; Х8 - Катг (Т4)
118
Таблица 42- Взаимосвязь Иатс, общих липидов и активности АСТ в крови
у 20 – месячных телок с их последующей молочной продуктивности
Общие Актив№
Фактически липиды
ность
животй удой
крови
АСТ
ного
(кг)
(ммоль/л) (нкат/л)
Х3
Х4
Иатс
Х6
Разница (%)
Прогнози
между
руемый
фактичесудой
ким и
(кг)
прогнозиУ
руемым
удоем
6,8
6836
21,6
6401
1
6400
4
380.2
0.5
2
7790
4.2
550.1
0.8
3
5340
3.9
390.4
1.1
5063
5,4
4
6215
3.5
300.4
0.7
5807
7,0
5
8440
4.6
540.1
0.3
8071
4,5
6
5320
3.4
670.4
0.8
6123
15,0
7
6740
3.8
350.4
0.7
6083
10,8
8
8540
4.7
550.2
0.4
7863
8,6
9
7900
3.9
580.4
0.7
6558
20,4
10
5410
4.4
260.1
0.9
5714
5,6
11
4320
3.3
210.4
1.2
4080
5,8
12
6700
4.5
520.4
0.3
7974
19,0
13
5840
4.2
450.1
0.8
6221
6,5
14
8920
4.6
350.7
0.3
7730
15,3
15
7940
4.4
550.4
0.3
7966
0,3
16
8730
4.7
540.3
0.4
7845
11,2
17
7940
3.3
630.7
0.3
7431
6,8
18
5320
4.4
320.4
1.1
5246
1,4
19
4930
3.5
260.1
1.2
4293
14,8
6400
3.1
450.1
0.7
5830
У = 5123,18 +617,615• Х3 +1,79927•Х4 – 2882,95• Х 6 ;
9,7
20
где У - прогнозируемый удой; Х3 - общие липиды крови;
Х4 - активность АСТ; Х6 - Иатс
119
Таблица 43- Взаимосвязь Катг ( Т4 ), общего холестерола и общих липидов в
крови у 20 – месячных телок с их последующей молочной продуктивностью
Общий
Общие
№
Фактический холестелипиды
животудой
рол крови
крови
ного
(кг)
(ммоль/л) (ммоль/л)
Х2
Х3
Катг
Т4
Х8
Прогнози
руемый
удой
(кг)
Разница
(%) между
фактическим и
прогнозируемым
удоем
1
6400
4
4
0,6
6648
3,8
2
7790
4,9
4.2
0,4
8454
8,5
3
5340
3,3
3.9
0,6
5741
7,5
4
6215
4,6
3.5
0,5
7224
16,0
5
8440
4,7
4.6
0,7
7684
9,8
6
5320
3,7
3.4
0,4
6372
19,7
7
6740
4,1
3.8
0,8
6018
11,9
8
8540
4,6
4.7
0,4
8520
0,2
9
7900
4,3
3.9
0,3
7787
1,4
10
5410
3,6
4.4
0,9
5643
4,3
11
4320
3,2
3.3
0,9
4250
2,3
12
6700
4,9
4.5
1
6966
3,9
13
5840
4,3
4.2
0,8
6589
12,8
14
8920
3,9
4.6
0,3
7903
12,8
15
7940
3,8
4.4
0,4
7328
8,3
16
8730
4,5
4.7
0,3
8693
0,4
17
7940
4,3
3.3
0,4
6993
13,5
18
5320
3,8
4.4
0,8
6168
15,9
19
4930
3,6
3.5
1,1
4308
14,4
5847
9,4
20
6400
3.1
4,7
0,9
У = 328,059 +1176,22•Х2+838,569• Х3 – 2899,05• Х 8 ;
где У - прогнозируемый удой; Х2 - общий холестерол крови;
Х3 - общие липиды крови;
Х8 - Катг (Т4)
120
Таблица 44- Взаимосвязь Иатс, общего холестерола и общих липидов в крови
у 20 – месячных телок с их последующей молочной продуктивностью
Общий
холесОбщие
липиды
№ Фактический терол
крови
крови
живот
удой
(ммоль (ммоль/л)
ного
(кг)
/л)
Х3
Х2
Иатс
Х6
Прогнози
руемый
удой
(кг)
Разница
(%) между
фактическим и
прогнозируемым
удоем
1
6400
4
4
0.5
7198
12,4
2
7790
4,9
4.2
0.8
6830
14,0
3
5340
3,3
3.9
1.1
5061
5,5
4
6215
4,6
3.5
0.7
6600
6,1
5
8440
4,7
4.6
0.3
8436
0,04
6
5320
3,7
3.4
0.8
5845
9,8
7
6740
4,1
3.8
0.7
6542
3,0
8
8540
4,6
4.7
0.4
8152
4,7
9
7900
4,3
3.9
0.7
6688
18,1
10
5410
3,6
4.4
0.9
6064
12,0
11
4320
3,2
3.3
1.2
4387
1,5
12
6700
4,9
4.5
0.3
8470
26,4
13
5840
4,3
4.2
0.8
6561
12,3
14
8920
3,9
4.6
0.3
8077
10,4
15
7940
3,8
4.4
0.3
7920
0,2
16
8730
4,5
4.7
0.4
8107
7,6
17
7940
4,3
3.3
0.3
7531
5,4
18
5320
3,8
4.4
1.1
5565
4,6
19
4930
3,6
3.5
1.2
4679
5,3
6400
3.1
0.7
4,7
6421
У = 4642,63 +448,926• Х2 +557,933* Х3 – 2944,18• Х 6 ;
0,3
20
где У - прогнозируемый удой; Х2 - общий холестерол крови;
Х3 - общие липиды крови;
Х6 - Иатс
121
ЗАКЛЮЧЕНИЕ
На современном этапе развития селекционной работы в молочном
скотоводстве невозможно ее эффективное ведение без комплексного
использования всех достижений в области физиологии и биохимии. Поэтому
необходимо познание механизмов высокой молочной продуктивности и
соответственно применение их в практике ведения молочного скотоводства.
Познание таких механизмов на ранних этапах развития животных позволит
с помощью биохимических тестов прогнозировать будущую их молочную
продуктивность, что позволит целенаправленно выращивать их. В связи с
этим необходимо изучать различные механизмы связи биохимических
показателей крови лактирующих животных с уровнем их молочной
продуктивности и находить наиболее тесные коррелятивные связи этих
показателей с величиной молочной продуктивности крупного рогатого скота,
а затем эти показатели использовать как тесты для раннего прогнозирования
уровня молочной продуктивности.
Одной из центральных регуляторных систем организма является
эндокринная
система.
Под
ее
контролем
находится
интенсивность
метаболических процессов. Поэтому необходимо комплексное изучение
эндокринной системы во взаимосвязи с метаболитами крови и уровнем
молочной продуктивности крупного рогатого скота.
По уровню гормонов в крови не всегда можно объективно судить о
функциональном состоянии той или иной эндокринной железы. Это прежде
всего связано с высокой вариабельностью гормонов, которые зависят от
множества различных внешних и внутренних факторов организма, а также
индивидуальных
особенностей
животного.
Поэтому
в
классической
эндокринологии для объективной оценки функционального состояния
железы используют метод функциональных нагрузок, который позволяет
нивелировать
железы
и
влияние различных факторов на функцию эндокринной
определить
генетически
предрасположенный
потенциал
122
функциональных резервов железы. Резервы эндокринных желез реализуются
в период высоких напряжений в организме, которые наблюдаются в период
беременности,
лактации,
животных).
эти
В
стресса
(особенно
напряженные периоды
у
высокопродуктивных
в организме происходит
мобилизация всех его внутренних резервов и особенно эндокринных.
Поэтому использование данных о функциональных резервах эндокринных
желез
в
комплексе
с
метаболитами
крови
и
уровнем
молочной
продуктивности позволит более полно познать регуляторные механизмы
высокой молочной продуктивности крупного рогатого скота.
Как известно, в эндокринной системе щитовидная железа занимает
центральное место
и находится в тесной взаимосвязи
с другими
показателями. В связи с этим происходят в организме различные
метаболические
процессы,
будучи
связаны
с
ее
функциональной
активностью. Функции щитовидной железы тесно взаимосвязаны с обменом
белков, липидов, углеводов, минеральных веществ и других. Тиреоидные
гормоны непосредственно участвуют в регуляции беременности и лактации.
В
эти
напряженные
увеличиваются и её
периоды
ее
функциональные
резервы
резко
генетически обусловленное плато, значительно
возрастает и полностью реализуются ее функциональные резервы.
У высокоудойных коров уровень метаболических процессов будет
особенно высоким. В связи с этим для определения функциональных
резервов щитовидной
нагрузок
железы был использован метод функциональных
с помощью ТТГ и определены коэффициенты активности
тиреоидных гормонов у лактирующих коров на пике лактации и в ее конце и
связь этих показателей с уровнем молочной продуктивности коров. Такие же
нагрузки были проведены и 6-месячным телочкам, которые были получены
от указанных разнопродуктивных лактирующих коров.
Крайне малоизученной в организме лактирующих коров является
тестостеронсинтезирующая система и ее основной гормон тестостерон.
Поскольку эндокринная система – это тесно взаимосвязанная система,
123
поэтому необходимо изучать и состояние тестостеронсинтезирующей
системы во взаимосвязи с функцией щитовидной железы и уровнем таких
метаболитов как общий белок , липиды, холестерол, активность АСТ и АЛТ,
и их взаимосвязь с уровнем молочной продуктивности лактирующих коров и
у их телят.
В результате проведенных исследований было установлено, что
молочная продуктивность коров голштинизированной черно – пестрой
породы в первой высокопродуктивной группе коров составила 8460 ± 85 кг, а
во второй сравниваемой группе 4600 ± 62 кг. Разница по удою за лактацию
составила 38610 кг молока. Пик лактации в обеих группах был на 2 месяце.
Во все периоды лактации различия по удою между группами отмечены как
статистически достоверные ( Р < 0,05). Более высокий уровень общего белка
в
крови
на
всем
протяжении
лактации
был
отмечен
у
более
высокопродуктивных коров, но различия между сравниваемыми группами
коров по указанному показателю были статистически недостоверные ( Р >
0,05). Между уровнем общего белка в крови и суточными удоями
установлена положительная коррелятивная связь в первой группе R = 0.47, а
во второй группе R = 0,50.
Анализируя динамику общих липидов в крови сравниваемых групп
лактирующих коров было установлено, что у коров с более высокими удоями
концентрация в крови общих липидов была выше, чем у коров с меньшей
молочной продуктивностью. Статистически достоверные различия между
группами коров были установлены на 1,2,3,4,5 и 10 месяцах лактации. (Р
<0,05). Между концентрацией липидов в крови лактирующих коров и
суточными удоями установлена положительная коррелятивная связь. В
первой группе R = 0,67, а во второй R = 0,65. Наиболее высокий уровень
этого показателя, как и общего белка, был отмечен в обеих группах на пике
лактации. Концентрация общего холестерола в крови была подобна
изменениям общего белка и липидов в крови. Концентрация общего
холестерола в крови коров на всем протяжении лактации была также выше у
124
коров первой группы. Статистически достоверные различия между группами
коров были установлены на 1,2,3,4,5,7 и 10 месяцах лактации (Р <0,05). О
прямой
зависимости
уровня
молочной
продуктивности
коров
и
концентрацией общего холестерола в их крови указывают положительные
коррелятивные связи. В первой группе корреляция составляла R = 0,71, а во
второй группе R = 0,81.
Проведенные исследования по уровню общего белка, липидов и
холестерола позволяют сделать вывод о том, что концентрации указанных
метаболитов в крови лактирующих коров зависят от уровня молочной
продуктивности коров и от фазы лактации. Исследования уровня активности
аминотрансфераз в крови разнопродуктивных коров показывают, что
активность АСТ и АЛТ в крови лактирующих коров имели неоднозначные
показатели и зависят от уровня молочной продуктивности коров и месяца
лактации. Во все периоды лактации более высокая активность АСТ и АЛТ в
крови лактирующих коров была у высокоудойных коров, а на 2,6 и 8 месяце
лактации между группами установлены статистически достоверные различия
(Р <0,05). Между активностью АСТ и суточными удоями отмечена
положительная коррелятивная связь R= 0,47 в первой группе и R = 0,41 во
второй группе. Такая же зависимость установлена и по активности АЛТ: в
обеих группах она составила R = 0,36.
Как уже отмечалось, тиреоидные гормоны Т 3 и Т 4 играют ключевую
роль в метаболических процессах организма животных, поддержании
лактации и синтезе компонентов молока. Как показали результаты анализа
тиреоидных гормонов, их уровень в крови лактирующих разнопродуктивных
коров имел значительные различия не только между группами, но и в
течение лактации.
Наиболее низкая концентрация тироксина в обеих
группах коров была установлена в начале лактации, когда удои были
максимальными, а на пике лактации эти значения были минимальные за весь
период лактации. К концу лактации концентрация Т
4
на 10 месяце по
отношению к первому месяцу в первой группе увеличилась на 43,8 %, а во
125
второй группе на 24,8 %. Между концентрацией тироксина и уровнем
молочной продуктивности у обеих групп коров установлена отрицательная
коррелятивная связь. В первой группе она составила R = - 0.48, а во второй
группе R = - 0,49. Аналогичная динамика изменения была установлена и по
трийодтиронину. Его концентрация в крови коров также была низкой в
период максимальных удоев, а по ходу лактации его уровень постепенно
увеличивался. Коэффициент корреляции между суточными удоями и
концентрацией трийодтиронина в крови в первой группе составил R = - 0,47,
а во второй группе R = - 0,67.
Как уже отмечалось, уровень гормона в крови зависит не только от
скорости секреции его эндокринной железой, но и от степени поглощения его
тканью – мишенью. В связи с этим невозможно объективно судить о степени
функциональной активности железы. Поэтому для объективной оценки
функциональной
активности
железы
необходимо
проводить
функциональную нагрузку. Для выявления функциональных резервов
щитовидной железы мы провели на нее нагрузку ТТГ и провели расчеты
коэффициентов активности тиреоидных гормонов по
проведенной
нагрузки
максимальных
значений
Т
3
и Т
4
. После
тиреоидные гормоны
достигали через 2 часа после введения ТТГ.
Было установлено, что Катг по Т 3 и Т 4 имели разные показатели. Так
на пике лактации Катг по Т
4
продуктивностью
0,39,
составил
в группе коров с более высокой молочной
а
у
коров
с
меньшей
молочной
продуктивностью составил 0,83. Такие же различия были установлены и по
Катг (Т3) в первой группе - 0,66 , а во второй - 0,90. В конце лактации этим же
животным на 8 месяце лактации
провели аналогичные функциональные
нагрузки, по той же схеме что на и на 2 месяце лактации. Расчеты Катг по Т 3
и Т 4 показали, что у коров первой группы Катг по Т 4 составил 0,5 , а у коров
с меньшей молочной продуктивностью - 0,7. Расчет коэффициентов
активности тиреоидных гормонов по трийодтиронину показал, что в группе
коров с более высокой молочной продуктивностью он составил 0,76 , а у
126
животных с меньшими удоями он составил 1,0. Сравнивая показатели
коэффициентов активности тиреоидных гормонов, было установлено, что
более их высокие значения, на 2 и 8 месяцах лактации были у коров 2
группы, у которых молочная продуктивность была ниже, чем у коров 1
группы. Это свидетельствует о том, что функциональные резервы
щитовидной железы сохраняются и имеют одинаковую направленность в
течение лактации.
Результаты исследований уровня тестостерона в крови лактирующих
коров с разным уровнем молочной продуктивности свидетельствуют о том,
что по ходу лактации его концентрация увеличивается. В первой группе
уровень тестостерона к 10 месяцу лактации по отношению к 1 увеличился на
71,4 %, а во второй группе на 67,7 %. В течение лактации более высокая
концентрация тестостерона была отмечена в менее продуктивной группе
коров. Статистически достоверные различия между группами коров были
установлены на 2,3,4,7 и 10 месяцах лактации (Р <0,05). Между
концентрацией тестостерона в крови лактирующих коров и суточными
удоями установлена отрицательная коррелятивная связь. В первой группе R=
- 0,78, а во второй R=- 0,76.
Для
определения
функциональных
резервов
тестостеронсинтезирующей системы обеим группам лактирующих коров
были проведены функциональные нагрузки с помощью хорионического
гонадотропина. Полученные результаты свидетельствуют о том, что
функциональные резервы тестостеронсинтезирующей системы на 2 месяце
лактации имеют неоднозначные показатели и зависят от фазы лактации и в
целом от уровня молочной продуктивности коров. Расчет индексов
активности тестостеронсинтезирующей системы показал, что у первой
группы он составил Иаттс= 2,3, а во второй группе Иаттс= 3,4. На 8 месяце
лактации значения этого показателя были ниже и составили у первой группы
Иаттс= 1,35, а во второй группе Иаттс= 1,75. Как видно, Иаттс на 2 и 8 месяце
лактации были ниже у высокоудойной группы коров.
127
Результаты взвешиваний телят показали, что при рождении по живой
массе телочки, полученные от разнопродуктивных коров, практически не
отличались. Начиная с 4-х месячного возраста телочки, полученные от более
высокопродуктивных коров на 5 кг превосходили телочек, полученных от
менее продуктивных коров. А к 6-ти месячному возрасту различия по живой
массе между телочками составили 7 кг. Уровень содержания общего белка в
крови с увеличением возраста телочек постепенно увеличивается.
По сравнению с данными 1-го месяца жизни концентрация общего
белка в крови увеличилась на 39,6 %, а во второй группе на 27,8 %.
Концентрация общего белка в крови телочек, полученных от более
высокоудойных коров в 6 - месячном возрасте была выше на 20 % (Р < 0,05).
Исследования концентрации общего холестерола в крови показали, что
минимальные значения этого показателя в обеих группах телочек были в
одномесячном возрасте и с увеличением возраста телочек постепенно
увеличивались.
В первой группе к 6-ти месячному возрасту значения общего
холестерола увеличились к данным 1 – месячного возраста на 44%, а во
второй группе на 15 %. В 3,5 - и 6 - месячном возрасте концентрация общего
холестерола
была
выше
у
телочек,
полученных
от
более
высокопродуктивных животных, но эти различия были статистически
недостоверные (Р > 0,05). Динамика изменения общих липидов в крови
телочек была подобной изменению общего белка и холестерола. От 1 до 6 месячного возраста уровень общих липидов был незначительно выше у
телочек, которые были получены от высокоудойных коров, но эти различия
были статистически недостоверные (Р > 0,05).
Активность аминотрансфераз крови у телочек, полученных от
высокоудойных коров, была незначительно выше по отношению к
сравниваемой группе. Активность АСТ на 3 и 4 месяце жизни телочек была
статистически достоверной выше у телочек, полученных от более
высокопродуктивных коров (Р < 0,05). Аналогичные изменения активности
128
были и у АЛТ. В период от 1 до 6-ти месячного возрасте активность АЛТ
изменялась незакономерно. Наиболее высокие значения этого показателя в
обеих группах телочек были на 3 месяце их жизни. Сравнивая показатели
активности АЛТ между группами телочек, видно, что у телочек, полученных
от более высокоудойных коров, этот показатель был незначительно выше, то
эти различия были статистически недостоверные (Р > 0,05).
Полученные результаты исследований уровня тироксина в крови
телочек, полученных от разнопродуктивных коров, показали, что его уровень
с увеличением возраста животных в обеих группах уменьшается. В первой
группе от 39,2 ± 3,1 нмоль в 1 – месячном возрасте до 36, ± 2,1 нмоль в 6месячном возрасте, а во второй группе с 39,0 ± 2,7 до 35,9 ±3,0 нмоль /л.
Сравнивая уровень тироксина между двумя группами телочек, было
установлено незначительное превосходство этого показателя у телочек,
полученных
от
более
высокопродуктивных
коров.
Статистически
достоверных различий по уровню тироксина между группами телочек не
установлено ( Р > 0,05 ).
Аналогичные изменения были и по второму тиреоидному гормону
трийодтиронину. Этот показатель также от 1 до 6-ти месячного возраста в
обеих группах увеличивался. В первой группе от 0,9 ± 0,1 до 1,3± 0,10
нмоль/л , а во второй группе от 0,9 ± 0,10 до 1,1 ± 0,10 нмоль/л. Выше
уровень этого гормона был у телочек, полученных от коров с относительно
более высокой молочной продуктивностью. В 6 - месячном возрасте эти
различия были отмечены как статистически достоверные (Р < 0,05).
Проведенные функциональные нагрузки на щитовидную железу 6 месячным телочкам обеих групп показали, что К
группе 0,96 , а во второй группе 1,24. К
атг
атг
по Т 4 составил в первой
по Т 3 составил в первой группе
0,40 и во второй группе 0,54. Таким образом, К
атг
во второй группе телочек,
которые были получены от менее продуктивных коров, были выше.
Аналогичные К
атг
были у матерей этих телочек, то есть потенциальные
129
резервы железы у коров и полученных от них телочек имеют одинаковую
направленность и, видимо, генетически детерминированы.
Результаты исследования уровня тестостерона в крови телочек от 1 до
6 - месячного возраста изменялись в сторону увеличения. В первой группе от
2,5 ± 0,30 нмоль/л до 3,6 ± 0,45 нмоль/л, а во второй группе от 2,6 ±0,4
нмоль/л до 3,8 ±0,5 нмоль/л. В 6 - месячном возрасте уровень тестостерона в
крови телочек второй группы, которые были получены от менее
продуктивных коров, статистически достоверно превосходил данные первой
группы (Р < 0,05). После трехкратной нагрузки ХГ 6 – месячным телочкам
было установлено, что функциональные резервы тестостеронсинтезирующей
системы у телочек, полученных от более высокоудойных коров, имеют
меньший индекс активности тестостеронсинтезирующей системы. Об этом
свидетельствуют индексы активности тестостеронсинтезирующей системы,
которые показали, что у телочек первой группы он составил 1,0; у телочек
второй группы 1,3. Более высокие И атс были и у их матерей на 2 и 8 месяцах
лактации у менее продуктивных коров 2 группы. В связи с этим, можно
предположить, что функциональная активность тестостеронсинтезирующей
системы является генетически детерминированной.
Исследования, проведенные на 20 - месячных телочках, показали, что
между
показателями
их
крови
и
последующей
их
молочной
продуктивностью имеются определенные коррелятивные связи, которые
имеют разные коэффициенты корреляции. На основании этих исследований
и расчетов были построены математические модели. (Расчет приведен в
разделе «Приложения».
Для расчета математических моделей были использованы следующие
показатели крови: общий белок, общий холестерол, общие липиды, АСТ,
АЛТ, Иатс, Катг (Т3 , Т4 ).
При использовании построения математических моделей для раннего
прогнозирования молочной продуктивности биохимических показателей
крови с коэффициентами активности тиреоидных гормонов и индексом
130
активности
тестостеронсинтезирующей
комбинациях
было
корреляции
последующей
использовании
в
установлено,
что
системы
более
молочной
математических
в
различных
высокие
коэффициенты
продуктивности
моделях
их
индексов
были
при
активности
тестостеронсинтезирующей системы. Точность прогноза при этом была
более высокой.
Таким образом, проведенные исследования позволяют заключить, что
исследованные биохимические показатели крови в различных сочетаниях
взаимосвязаны с уровнем молочной продуктивности коров и могут быть
использованы
как
тесты
для
раннего
прогнозирования
молочной
продуктивности коров голштинизированной черно – пестрой породы.
131
ВЫВОДЫ
1.
Показатели уровня общего белка, липидов и холестерола в крови
высокоудойных коров превосходят данные менее продуктивных. Между
уровнем общего белка в крови и суточными удоями установлена
положительная корреляция в первой группе R = 0.47, а во второй R = 0,50;
между общими липидами и суточными удоями R = 0,67 и R =0,65; между
общим холестеролом и суточными удоями R = 0,71 и R=0,82 соответственно
по группам.
2.
Уровень активности трансаминаз АЛТ и АСТ в крови высокоудойных
коров выше по сравнению с менее продуктивными. Между активностью АСТ
и суточными удоями установлена положительная коррелятивная связь R
=0,47 и R=0,41 соответственно по группам. По АЛТ в обеих группах коров
коррелляция составила R =0,36.
3.
Концентрация
высокоудойных
концентрацией
тироксина,
коров
ниже,
тироксина
и
трийодтиронина
чем
у
и
тестостерона
низкопродуктивных.
суточными
удоями
коров
у
Между
установлена
отрицательная коррелятивная связь. В первой группе она составила R = 0,48, а во второй группе R = - 0,49; по трийодтиронину R = - 0,47 и R = 0,67; по тестостерону R= - 0,78 и R=- 0,76 соответственно по группам.
4.
При функциональной нагрузке на щитовидную железу тиреотропным
гормоном коэффициенты активности тиреоидных гормонов (Катг) были ниже
у высокоудойных коров и имели одинаковую направленность на 2 и 8
месяцах лактации. На 2 месяце лактации они составили Катг (Т3 ) - 0,66 и
0,90, Катг (Т4 ) - 0,39 и 0,83, на 8 месяце лактации Катг (Т3 )- 0,7 и 1,0, Катг (Т4
)– 0,29 и 0,67 соответственно по группам.
5.
При функциональной нагрузке на тестостеронсинтезирующую систему
хорионическим
гонадотропином
(ХГ).
Индексы
активности
тестостеронсинтезирующей системы (Иатс) у коров на 2 и 8 месяцах лактации
имеют одинаковую направленность. Иатс на 2 месяце лактации у первой
132
высокопродуктивной группы составил 2,37, а во второй группе 3,41, а на 8
месяце лактации 1,35 и 1,75 соответственно.
6.
Концентрация общего белка, липидов, холестерола, активность АСТ и
АЛТ выше в крови телочек до 6-ти месячного возраста, полученных от
высокопродуктивных коров, по сравнению с менее продуктивными. И имеют
такую же направленность, как и у их матерей.
7.
Концентрация тиреоидных гормонов
(тироксина, трийодтиронина)
выше в крови телочек до 6 - месячного возраста, полученных от
высокоудойных коров по сравнению с низкопродуктивными, а уровень
тестостерона, наоборот, ниже.
8.
Расчет Катг по Т3 и Т4 при функциональной нагрузке на щитовидную
железу тиреотропным гормоном (ТТГ) 6 – ти месячным телочкам
показывает, что Катг по (Т4) в первой группе составил 0,96, а во второй 1,24, а
Катг по (Т3) 0,40 и 0,54 соответственно по группам и имеют такую же
направленность, как и у их матерей.
9.
Функциональная нагрузка на тестостеронсинтезирующую систему
хорионическим гонадотропином (ХГ) 6 – ти месячным телочкам показывает,
что индексы активности тестостеронсинтезирующей системы (Иатс) были
выше у телочек, полученных от менее продуктивных коров, и составили Иатс
1,3 , а в сравниваемой группе – 1,0.
133
ПРАКТИЧЕСКИЕ ПРЕДЛОЖЕНИЯ
1.
Для
раннего
прогнозирования
молочной
продуктивности
голштинизированной черно – пестрой породы с 6-ти месячного возраста
рекомендуется использовать следующие математические модели :
1. У = 9315,39 – 3790,58• Х6
R = -0,84
2. У = 7693,24 + 19,6447 • Х1 -3578,86 • Х6
R = 0,84
3. У = 7235,74 + 433,433• Х2 -3368,0• Х6
R = 0,85
4. У = 3162,0 + 1354,32• Х2 -3219,41• Х8
R = 0,83
5. У = 3162,0 + 1354,32• Х2 -3219,41• Х8
R = 0,83
6. У = 6840,7 + 548,169• Х3 – 3389,02• Х6
R = 0,86
7. У = 8485,19 + 1,35304• Х4 -3448,27• Х6
R = 0,85
8. У = 8699,57 + 0,824494• Х5 -3400,7• Х6
R = 0,85
9. У = 9265,09 -3982,13• Х6 +285,077• Х7
R = 0,84
10.У = 9997,54 -3015,7• Х6 -1928,3• Х8
R = 0,89
11.У = 3657,53 -8,65016•Х1 +1404,01• Х2 - 3299,26• Х 8
R = 0,83
12.У = 6607,36 +10,0495• Х1 +391,445• Х2 - 3300,63• Х 6
R = 0,85
13.У = 2587,66 +1081,26• Х3 +2,9033• Х4 - 2341,11• Х 8
R = 0,81
14.У = 5123,18 +617,615• Х3 +1,79927• Х4 – 2882,95• Х 6
R = 0,87
15.У = 328,059 +1176,22• Х2+838,569• Х3 – 2899,05•Х 8
R = 0,88
16.У = 4642,63 +448,926• Х2 +557,933• Х3 – 2944,18• Х 6
R = 0,87
17.У = 328,059+1176,22• Х2 +838,569• Х3 -2899,05• Х 8
R = 0,88
где У – фактический удой за лактацию
Х 1 - общий белок крови
Х 2 - общий холестерол крови
Х 3 - общие липиды крови
Х 4 - активность АСТ
Х 5 - активность АЛТ
Х 6 - Иатс
Х 7 - Катг (Т3)
Х 8 - Катг (Т4)
R – коэффициент корреляции
134
2. Полученные результаты исследований рекомендуется использовать в
учебном
процессе
«Физиология
сельскохозяйственных
сельскохозяйственных
вузов
по
дисциплинам
животных»,
и
«Разведение
сельскохозяйственных животных».
135
СПИСОК ИСПОЛЬЗОВАННОЙ ЛИТЕРАТУРЫ
1. Абовян, Ю.Г. Породные и возрастные особенности естественной
резистентности крупного рогатого скота /Ю.Г. Абовян, Э.Г. Абранян, В.А.
Зоранян // С. -х. биология. - 1990. - № 4. - С. 198-200.
2. Абрамова, Н. А. Клиническая и экспериментальная тиреоидология /
Н.А. Абрамова, Н. А. Фадеев, В.В., Герасимов, Г.А. Мельниченко // Журнал.
Вып. 2.- 2006.- С. 45-47.
3. Азимов, Г.И. Влияниие процессов в рубце и щитовидной железе на
жирномолочность / Г.И. Азимов, В.В. Арепьев //Животноводство. – 1965. - №
6. – С. 65-68.
4. Акаевский, А.И. Анатомия домашних животных / А.И. Акаевский // М.: Колос, 1975. - 600 с.
5. Алёшин, Б.В. Источники и регуляция роста щитовидной железы / Б.В.
Алёшин // Арх. анат. гистол. и эмбриол. Вып. 10. - 1973. - С. 5-18.
6. Алёшин, Б.В. Некоторые вопросы патогенеза зобной болезни/ Б.В.
Алёшин // Арх. патол. Вып. 4. - 1981. - С. 88-93.
7. Алёшин, Б.В. О некоторых спорных вопросах в патофизиологии
щитовидной железы /Б.В. Алёшин // Успехи соврем. биологии. Вып. 1. 1982. - С. 121-138.
8. Алёшин, Б.В. Гипоталамус и щитовидная железа / Б.В. Алёшин, В.И.
Губский // М.: Медицина, 1983. - 184 с.
9. Алиев, А.А. Особенности метаболизма йода у коров и телят при разной
обеспеченности организма этим элементом: автореф. дис. … канд. биол.
наук./ А.А. Алиев //- Боровск, 1993. - 28 с.
10.
Алиев, М.Г. Гормональный профиль у буйволиц разной
молочности, как интерьерный признак / М.Г. Алиев, Ю.Б. Исмаилов // С.-х.
биология. – 1981. – Т.16. - №4. – С. 603-606.
136
11.
Алифанов, В.В. Воспроизводительная способность быков при
оценке их по качеству потомств / В.В. Алифанов, С.В. Алифанов, С.В.
Волкова // Молочное и мясное скотоводство.-1999. - №7. - С.26-27.
12.
Алифанов,
В.В.
Селекция
быков
по
технологическим
признакам/ В.В.Алифанов, Д.К. Алифанова, П.Г. Хромов // Зоотехния. - 1999.
- № 6. – С.5 - 6.
13.
Аллахвердиев, И.Г., Емельянова В.Ф., Рзаева Л. Взаимосвязь
содержания гормонов в крови с уровнем молочной продуктивности у коров //
тез. VI Всесоюзный симпозиум по физиологии и биохимии лактации, Львов,
14-17 октября 1982. - М., 1982. – С. 17-18.
14.
Альперин, Д.Е. Патологическая физиология / Д.Е. Альперин //-
М.: Медицина, 1965. 434 с.
15.
Аухатова, С.Н. Особенности содержания йода в тканях животных
при разном уровне йода и гойтрогенных веществ в рационе / С.Н. Аухатова,
Г.А. Янбухтина // Вопр. соврем. науки и практ. Ун-т им. В. И. Вернадского. –
2008.- N 3.- С.29-32.
16.
Ахметов, И.З. Биохимические показатели крови и молока у коров
чёрно-пёстрой и бушуевской пород в связи с их физиологическим
состоянием и некоторыми факторами внешней среды: автореф. дис. на соиск.
учен. степени канд. биол. наук./ И.З. Ахметов // - Ташкент, 1965.
17.
Бабенки,
Г.А.
Микроэлементы
в
экспериментальной
и
клинической медицине /Г.А. Бабенки // - М.: Здоровье, 1965. - 152 с.
18.
Байзаков, У.Б. Этиопатогенез и профилактика эндемического
зоба / У.Б. Байзаков // Эндемический зоб. Сб. научн. трудов. - Фрунзе: Б. п.,
1985. - С.34-39.
19.
Балаболкин, М.И. Эндокринология. учебник. — 2-е изд., перераб.
и доп. - / М.И. Балаболкин, // М.: Универсум паблишинг, 1998. — 416 с.
20.
Балдаев, С.Н. Биохимия нарушений обмена веществ у овец и их
профилактика / С.Н. Балдаев, С.А. Кириллов// - Улан-Удэ: Бурятское
книжное издательство, 1991. - 160 с.
137
21.
Баркер,
С.Б.
Биохимия
гормонов щитовидной
железы
//
Щитовидная железа, физиология и клиника./ С.Б. Баркер //- Л.: Медицина,
1963. - 52-58 с.
22. Битюков, В.А. Возрастные изменения показателей естественной
резистентности
у
крупного
рогатого
скота/В.А.
Битюков,
В.И.
Родионов//Труды Кубан. с.-х. ин-та. - Краснодар, 1983. - Вып. 232. - С. 58-62.
23. Битюков, И.П. Динамика биохимических показателей постнального
развития /И.П. Битюков, Н.А. Миненков// Повышение эффективности
функционирования АПК: тез. докл. научн.-практ. конф. Курск, март, 1995г. Курск, 1995. – С. 50-51.
24.
Боднар, П. М. Эндокринология / П.М. Боднар // Новая книга.
2007.- 344 стр.
25.
Болгов, А.Е.
Характеристика племенной ценности быков по
белкам крови/А.Е. Болгов// Животноводство. -1982. - № 8. - С. 46-48.
26.
Бондаренко, М.В. Липолитическая активность сердечной мышцы
при экспериментальном тиреоидном токсикозе / М.В. Бондаренко //
Проблемы эндокринологии. - 1967. - Т 1. - С. 67-69.
27.
Брагинец,
С.А.
Воспроизводительные
качества
быков-
производителей ГСПП «Невское» в зависимости от породы и возраста/С.А.
Брагинец//
Совершенствование
племенных
и
продуктивных
качеств
племенных животных. СПб: СПбГАУ, 1998. - С. 99 - 102.
28.
Брагинец, С.А. Селекционно-генетические параметры основных
показателей воспроизводительных качеств быков-производителей ГСПП
«Невское»/С.А. Брагинец // Совершенствование племенных и продуктивных
качеств племенных животных. - СПб: СПбГАУ, 1998. - С. 29-30.
29.
Бударков, Б.А. Иммунный статус жвачных животных при
поражении щитовидной железы радиоактивным йодом / Б.А. Бударков, О.И.
Бриндак, С.М. Позывайло // С.-х. биология, - 1993. - С. 81-87.
138
30.
Бутров, Е.В. Способ раннего отбора высокопродуктивных тёлок
по потенциалу функции инсулярного аппарата. труды ВНИИФБиП с.-х.
животных / Е.В. Бутров, В.А. Матвеев //– Боровск, 1989.– С. 43-44.
31.
Валяжников, В.В. Оплодотворяющая способность семени быков-
производителей в зависимости от групп крови / В.В Валяжников, О.С
Егоров// Проблемы генетики и селекции с.-х. животных. тезисы докладов. Л., 1981.-С. 67-68.
32.
Варнавский, А.Н. Новое исследование воспроизводственной
функции самцов/А.Н. Варнавский, С.Г Абсаматов, М. Мамытбеков// Опыт и
пробл. зоотех. науки. – Ульяновск, 1994. – С. 5-13.
33.
Васильев, С.П. Обмен веществ и продуктивность молодняка
свиней в зависимости от источников протеина, йода и меди в рационе:
автореф. дис. канд. с.-х. наук./ С.П. Васильев// - Саранск, 1996. - 22 с.
34.
Ващекин, Е.П. Содержание тестостерона в крови ремонтных
бычков в зависимости от скорости роста и двигательной активности /Е.П.
Ващекин, Е.А Кривопушкина// С.-х. биология. – 1995. - №4. – С. 46-49.
35.
Вишняков, С.И. Обмен макроэлементов у сельскохозяйственных
животных / С.И. Вишняков // - М.: Колос, 1967. - 256 с.
36.
Владимиров, В.Л. Биохимические процессы у животных мясного
направления продуктивности в связи с возрастом и разной скоростью роста:
автореф. дис. на соиск. уч. степени доктора биол. наук. 03.00.04 / В.Л.
Владимиров // – Львов, 1974. – 45 с
37.
Владимиров, В.Л. Гормональный статус телят, выращиваемых на
открытом воздухе при разном уровне молочного питания// Докл. ВАСХНИЛ
/ В.Л. Владимиров, В.А. Рыжков, М.Ю. Чернов // - 1990. – Т.1. - С. 39-43.
38.
Владимиров, В.Л. Изменение функции щитовидной железы на
холоде у телят, получавших разное количество ЗЦМ // Бюл. науч. работ –
ВИЖ. / В.Л. Владимиров, М.Ю. Чернов // - Подольск, 1989. - Т.94. - С. 79-81.
39.
Войнар, А.О. Биохимическая роль микроэлементов в организме
животных и человека / А.О. Войнар // - М.: Высшая школа, 1960. - 543 с.
139
40.
Волгин, В.И. Некоторые особенности обмена у крупного
рогатого скота разных пород в связи с уровнем его продуктивности: автореф.
дис. на соиск. учен. степени д-ра с.-х. наук/В.И. Волгин //- Л., 1971.
41.
Вострухина, Ю.Ю. Динамика биохимических показателей крови
у бычков разных линий в онтогенезе / Ю.Ю. Вострухина, В.И. Ерёменко //
Вестник Курской государственной сельскохозяйственной академии.- 2011.№2.- С. 62-63.
42.
Вострухина, Ю.Ю. Концентрация общего холестерола в крови в
период лактации у коров и растущих бычков / В.И. Ерёменко,
Вострухина
//
Материалы
Международной
Ю.Ю.
научно-практической
конференции, посвященной 140-летию со дня рождения профессора Ильи
Ивановича Иванова: «Обеспечение продовольственной безопасности России.
Если не мы, то кто? » - Курск, 2010.- С. 115-116
43.
Вострухина, Ю.Ю. Функциональные эндокринные резервы
семенников
у
растущих
бычков
разных
линий/
В.
И.
Ерёменко,
Ю.Ю.Вострухина// Зоотехния. – 2011.- №7. – С. 29-30.
44.
Вострухина, Ю.Ю. Уровень тестостерона в крови бычков разных
линий / Ю.Ю. Вострухина //Материалы Международной научно –
практической конференции, посвященной 60 – летию ФГОУ ВПО «Курская
ГСХА»: «Наука и инновации в сельском хозяйстве». – Курск, 2011. – С. 191193.
45.
Вострухина, Ю.Ю. Динамика общего белка и альбумина в крови
лактирующих
разнопродуктивных
коров
и
растущих
бычков/
А.Н.
Подрепный, Ю.Ю.Вострухина// Материалы Международной научно –
практической конференции, посвященной 140 – летию со дня рождения
профессора И.И. Иванова «Обеспечение продовольственной безопасности
России. Если не мы, то кто?». – Курск,2010.-С.239-240.
46.
Вострухина, Ю.Ю. Влияние сезона года на концентрацию общего
белка в крови племенных бычков разных пород // Материалы V
международной
научно
–
практической
конференции
молодых
140
исследователей
«Наука
и
молодежь:
новые
идеи
и
решения».-
Волгоград,2011. – С. 24-25.
47.
Георгиевский,
В.И.
Физиология
сельскохозяйственных
животных/ В.И. Георгиевский // - М.: Агропромиздат, 1990. - 511 с.
48.
Головань, В.Т. Влияние тироксина на секрецию белков молока
при разных способах введения гормона / В.Т. Головань // Тр. Кишиневского
СХИ. – Кишинев, 1972. - №94. – С. 46-53.
49.
Гольберг, Л.М. Тиреотоксикозное сердце / Л.М. Гольбер, В.И.
Кандор // - М.: Медицина, 1972. - 344 с.
50.
Горбачев,
Е.С.
Возрастная
динамика
морфометрических
показателей щитовидной железы овец аборигенной кулундинской породы /
Е.С. Горбачев, Н.Д. Овчаренко // Актуальные проблемы ветеринарной
патологии и морфологии животных. материалы научно-производственной
конференции. - Воронеж: Научная книга, 2006. –С.110-114.
51.
Горлов, И.Ф. Влияние технологических приемов выращивания на
иммунное состояние организма телят/И.Ф Горлов// Технология производства
и перераб. продукции животновод. – Волгоград, 1996. – С. 139-143.
52.
Грачев, В.С. Фенотипические и репродуктивные качества быков-
производителей в зависимости от их генотипа: автореф. дис. на соискание
степени канд. биол. наук: 06. 02. 01/ В.С. Грачев // - СПб., 2002. - 16 с.
53.
Грин, Н. Минеральное питание растений и животных / Н. Грин,
У. Стаут, Д. Тейлор // Биология. Т. 1. - М.: Мир, 1990. - С. 316-319.
54.
Дашукаева,
К.Г.
Влияние
водолечения
на
содержание
тестостерона в крови хряков с пониженной потенцией Изменение
гормонального статуса у коров во время беременности // Обеспеч. стабилиз.
АПК В условиях рыночн. форм хозяйствования: тез. Докл. межрегионал.
научн. конф. мол. ученых и спец./ К.Г. Дашукаева // – Воронеж, 1997. – Ч.2. –
С.26-27.
55.
Дедов, И.И. Использование таблетированных препаратов йода
для профилактики эндемического зоба / И.И. Дедов, Г.А. Герасимов, Н.Ю.
141
Свириденко, А.А. Шишкина, Н.М. Майорова // Пробл. эндокрин. - 1998. Вып. 1. - С. 24-27.
56.
Дедов, И.И. Возрастной андрогенный дефицит у мужчин / И.И.
Дедов, // Москва, 2006.- С. 110-140.
57.
Дедов, И.И. Некоторые показатели, характеризующие состояние
щитовидной железы у детей и подростков, проживающих в одном из
загрязненных радионуклеотидами районов Калужской области / И.И. Дедов,
Л.Ф. Цыб, Е.Т. Матвеенко, В.Т. Омельченко и др. // Пробл. эндокрин. - 1993.
- Вып. 5. - С. 10-15.
58.
Дейвис, П.Д. Негеномные эффекты тиреоидных гормонов //
Болезни щитовидной железы: пер. с англ. / П.Д. Дейвис, под ред. Л.И.
Браверманна. - М.: Медицина, 2000. - С. 18.
59.
Демидова, Т.Ю. Роль и место гипофункции щитовидной железы в
развитии метаболического синдрома // Российский национальный конгресс
"Человек и лекарство", Москва, 14-18 апр. 2008./ Т.Ю. Демидова, О.Р.
Галиева // - М., 2008. - С.492-493.
60.
Дмитриев, В.Б. Гормональный фактор в микроэволюционном
процессе и селекции животных / В.Б. Дмитриев // С.-х. биология. – 1998. №2. – С. 18-19.
61.
Дмитриев, В.Б. Функциональные эндокринные резервы и их
использование в животноводстве: автореф. на соис. ст. докт. биолог. наук -/
В.Б. Дмитриев // Ленинград, – 40 с.
62.
Дмитриев,
В.Б.
Эндокринная
реакция
семенника
на
многократную стимуляцию хорионического гонадотропина /В.Б.Дмитриев,
Г.Г.Герасимова, А.П.Рудаков, Р.И. Карпова// Проблемы эндокринологии у с.х жив. и применение гормональных препаратов в животноводстве: тез.
докладов Всесоюзной конф. -Л., 1975.- С.236-237.
63.
Држевецкая, И.А. Основы физиологии обмена веществ и
эндокринной системы / И.А. Држевецкая // - М.: Высш. Шк., 1994. - 256с.
142
64.
Дюкарев, В.В. Кормовые добавки в рационах животных / В.В.
Дюкарев, А.Г. Ключковский, И.В. Дюкар. - М.: Агропромиздат, 1985. - 278 с.
65.
Дюмина, В.М. ( Кретова В.М. ) Функциональная активность
щитовидной железы и влияющие на нее факторы // Современные проблемы
ветеринарной медицины и животноводства: сб. науч. тр./ В.М. Кретова // –
Курск: КГСХА, 2006. – С. 23-28.
66.
Ельчиникова, М.В. Различные состояния тиреоидной системы у
поросят // Актуальные проблемы биологии в животноводстве/ М.В.
Ельчиникова // - Боровск, 2000. - С. 286-287.
67.
Емельянов, А.С. Лактационная деятельность коров и управление
ею / Вологод. обл. опыт. станция животноводства/ А.С. Емельянов // Вологда, 1953. — 256 с.
68.
Емельянов, А.С. Выращивание молочных коров / А.С. Емельянов
// - Вологда: Кн. изд-во, 1963. — 40 с.
69.
Ерёменко, В.И. Динамика тироксина и трийодтиронина в крови
телок черно-пестрой, швицкой и лебединской пород. Актуальные проблемы
вет. науки // Тезисы докладов МВА им. Скрябина/ В.И. Ерёменко //– М.,
1999.– С. 194-195.
70.
Ерёменко, В.И. Гормональный статус, показатели обмена
веществ и резистентности у крупного рогатого скота разных пород в
онтогенезе: автореферат дисс… д-ра биол. наук 03.00.13 / В.И. Ерёменко//–
Сумы, 2001. – 19 с.
71.
Ерёменко, В.И. Функциональные резервы некоторых желез
внутренней секреции в период лактации у первотелок черно-пестрой,
швицкой и Лебединской пород // Третья Международная конференция
«Актуальные проблемы биологии в животноводстве», Боровск, 6-8 сент.,
2000: тезисы докладов / В.И. Ерёменко // – Боровск, 2000. – С. 287-289.
72.
Ерёменко, В.И. Динамика кортизола в крови нетелей разных
пород / В.И. Ерёменко, Ю.В. Рябыкина // Передовые технологии науки и
образования.- Курск, 2004.-С. 21-22.
143
73.
Ерёменко, В.И. Методы селекции и биологический потенциал
крупного рогатого скота / В.И. Ерёменко, В.В. Обливанцов // Монография –
Курск, 2004.–С. 123-135.
74.
Ерёменко, В.И. Функциональные резервы эндокринной системы
в прогнозировании молочной продуктивности / В.И. Ерёменко.- Курск:
Издательство Курской государственной сельскохозяйственной академии,2010.- 194с.
75.
Ерёменко,
В.И.
Метаболический
статус,
неспецифическая
резистентность и их коррекция у крупного рогатого скота/ В.И. Ерёменко,
О.Б. Сеин //- Курск: Издательство «Деловая полиграфия»,- 2011. 194с.
76.
Ерёменко, В.И. Способ оценки функциональных резервов
тестостеронсинтезирующей системы у крупного рогатого скота // Сборник
научных трудов. Передовые технологии образования и науки / В.И.
Ерёменко, М.А. Ткач // – Курск, 2003.– С. 25-26.
77.
Ерёменко,
В.И.
Функция
щитовидной
железы
и
коры
надпочечников у коров разной продуктивности / В.И. Ерёменко // Журнал
«Аграрная наука» .- №2.- 2008. – С.31-33.
78.
Ерёменко, В.И. Методы селекции и биологический потенциал
крупного рогатого скота // монография / В.И. Ерёменко, В.В. Обливанцов //–
Курск, 2004.–С. 320.
79.
Ерёменко, В.И. Взаимосвязь липидных показателей крови с
молочной продуктивностью черно-пестрого скота // Мат. межд. научнопрактической конф. (25-29 сентября) / В.И. Ерёменко // - Сумы, 2006.-С. 9-10.
80.
Жебровский, Л.С. Изменчивость и наследственность содержания
белка, белковых фракций и аминокислот в молоке коров. – В кн.: Сборник
научных трудов Всесоюзного НИИ разведения с.-х. животных/ Л.С.
Жебровский // – 1969. - Вып. 15. - Т. 2. - С. 3-24.
81.
Жебровский, Л.С. Прогнозирование молочной продуктивности
крупного рогатого скота / Л.С. Жебровский, А.Д. Комисаренко, В.Е.
Митютько // Л., 1980. - С. 141.
144
82.
Жебровский, Л.С. Селекционно-генетические основы белкового
состава молока коров/ Л.С. Жебровский // - М., 1973.
83.
Жебровский,
Л.С.
Селекционно-генетические
параметры
белково-молочности крупного рогатого скота:. автореф. дис. на соиск. учен.
степени д-ра биол. наук / Л.С. Жебровский // - Таллин, 1971.
84.
Жебровский, Л.С. Косвенная селекция на повышение содержания
белка в молоке коров / Л.С. Жебровский, А.А. Снопова // – Вестник
сельскохозяйственной науки. – 1973. - № 7. - С. 51-57.
85.
Жебровский, Л.С. О прогнозировании белково-молочности
крупного рогатого скота: – зап. ЛСХИ/ Л.С. Жебровский, Л.С. Соминич //
1975. - Т. 272. - С. 47-52.
86.
Жебровский, Л.С. Биотехнология животных/Л.С. Жебровский//
СПб., 2002. - 146 с.
87.
Жолондз, М.Я. Щитовидная железа - тупик эндокринологии.
Выход из тупика. Частное расследование/ М.Я. Жолондз // - СПб.: Лань,
1997. - 208 с.
88.
Жуковский, М.А. Детская эндокринология: руководство для
врачей. - 2-е изд. / М.А. Жуковский // - М.: Медицина, 1982. - 448 с.
89.
Замарин, Л.Г. Йодная недостаточность (эндемическая зобная
болезнь) // Эндемические болезни животных/ Л.Г. Замарин // - М., 1968. - С.
34-62.
90.
Зельцер, М.Е. Аутотиреоидная гиперплазия щитовидной железы -
актуальная проблема современной эндокринологии // Пробл. эндокрин./
М.Е. Зельцер // 1988. - Вып. 4. - С. 43-45.
91.
Зеньков, А.С. Функциональная активность эндокринных желез у
откармливаемых бычков на промышленном комплексе/ А.С. Зеньков, , И.А.
Яцко, Г.С. Козырь и др. // Зоотехническая наука Белоруссии. - 1983.- Т.22. С. 88-92.
92.
Калашников,
А.П.
Нормы
и
рационы
кормления
сельскохозяйственных животных: справ. пособие. - 3–е издание, перер. и
145
доп. // Под редакцией А.П. Калашникова, И.В. Фисинина, В.В. Щеглова, Н.И.
Клейменова.- Москва, 2003.
93.
Калиевская, Г. О продуктивном долголетии коров / Г.Калиевская
// Молочное и мясное скотоводство.- 2000.- № 6.- С. 19-21.
94.
Касаткина, Э.П. Йододефицитные заболевания у детей и
подростков
(пленарная
лекция)/
Э.П.
Касаткина
//
Проблемы
эндокринологии. - М.: Медицина, 1997. - № 3. - С.3-7.
95.
Кертиев, P.M. Влияние уровня продуктивности за 1 лактацию на
продолжительность жизни коров / P.M. Кертиев // Улучшение хозяйственнобиологических показателей отечественных пород скота.- М.: ВНИИплем,
1995.- С.86-88.
96.
Кертиев, Р. О продуктивном долголетии коров / Р. Кертиев //
Молочное и мясное скотоводство.-1996.- № 4,- С.10-13.
97.
Климов, А.Н. Липиды и липопротеиды / А.Н. Климов, Н.Г.
Никульчева. - С.-Пб.: Питер, 1998. - 173 с.
98.
Климов, А.Н. Липиды. Структура, биосинтез, превращение и
функции /А.Н. Климов // - М.: Медицина, 1977. - 142 с.
99.
Клячко, В.Р. Актуальные вопросы консервативного лечения
токсического зоба / В.Р. Клячко // - М.: Медицина, 1978. - 69 с.
100.
Ковальский, Б.В. Геохимическая экология эндемического зоба в
СССР / Б.В. Ковальский, Р.И. Блохина // Биологическая роль йода. - М.:
Колос, 1972. - С. 114-144.
101.
Ковальский,
Б.В.
Значение
кобальта
в
обмене
йода
и
йодсодержащих аминокислот в щитовидной железе / Б.В. Ковальский, Р.И.
Блохина // Микроэлементы в сельском хозяйстве и медицине. – Киев, 1962. 38-43 с.
102.
Коломийцева,
М.Г.
Микроэлементы
в
медицине
/
М.Г.
Коломийцева, Р.Д. Габович. - М.: Медицина, 1970. - 288 с.
146
103.
Кондрахин,
И.П.
Алиментарные
и
эндокринные
болезни
животных / И.П. Кондрахин // - М.: Агропромиздат, 1989. - С.212-224
104.
Краснова, С.А. Гормональная терапия / С.А. Краснова // Эксмо. –
2007.- С. 250-270.
105.
Кретова, В.М. Взаимосвязь тиреоидных гормонов и белка крови с
молочной продуктивностью/ В. М. Кретова, В.И. Ерёменко // Региональные
проблемы повышения эффективности агропромышленного комплекса: мат.
Всер. научн. – практ. конф., г. Курск, 20 – 22 марта. 2007 г., ч.3. – Курск: Издво. КГСХА, 2007. – С. 153 – 156.
106.
Кретова, В.М. Использование метода функциональной нагрузки
на щитовидную железу / В. М. Кретова, В.И. Ерёменко // Научные проблемы
производства продукции животноводства и улучшения ее качества: сб. науч.
тр. Междунар. науч. – практ. конф. 4-5 октяб. 2007 г. – Брянск: БГСХА, 2007.
– С.424-426.
107.
Кретова,
В.М.
Применение
функциональной
нагрузки
на
щитовидную железу / В. М. Кретова, В.И. Ерёменко // Системные
исследования в науке и образовании: сб. науч. тр. – Курск: Изд. Центр. «ЮМЭКС», 2007. – С. 66-69.
108.
Кретова,
В.М.
Функция
щитовидной
железы
и
коры
надпочечников у коров разной продуктивности / В.М. Кретова, В.И.
Ерёменко, В.В. Февронин // Аграрная наука.- 2008.- №2.- С. 31-33.
109.
Кривенцов, Ю.М. Продуктивное долголетие коров / Ю.М.
Кривенцов, А.А.Иванов // Зоотехния.-1991.- № 4.- С.2-7.
110.
Кулаченко, В.П. Возрастная повторяемость физиологических
показателей у к. р. с. и их практическое значение // Проблемы с.-х. пр-ва на
совр. этапе и пути их решения: тез. докл. I Междунар. науч. - практ. конф./
В.П. Кулаченко // -Белгород, 1997. - С -226.
111.
Кулаченко,
чистопородных
В.П.
Обмен
симментальских
и
веществ
помесных
и
резистентности
у
симментал-голштинских
147
животных: автореферат дисс… д-ра биол. наук 03.00.13 / В.П. Кулаченко // –
Белгород, 1997. – 36 с.
112.
Кулаченко, В.П. Породные и возрастные особенности обмена
липидов у крупного рогатого скота / В.П. Кулаченко // Проблемы с.-х. пр-ва
на современ. этапе и пути их решения: тез. докл. 1 междун. н.— практ. конф.
- Белгород, 1997. -С. 164.
113.
Кулаченко, В.П. Естественная резистентность и продуктивность
симментало-монбельярдских помесей / В.П. Кулаченко, С.П., Кулаченко,
Ф.Р. Капустин, Н.П. Дьякова, А.И. Ивашура // Селекционно-генетические
пробл. повышения продуктивности с.-х. животных. – 1988. – С. 18-23.
114.
Курилов, Н.В. Образование и использование продуктов рубцовой
ферментации для синтеза составных частей молока / Н.В. Курилов // – Тр.
ВИЖ. 1975.- Т.14.- С. 184-190.
115.
Кучинский, М.П. Профилактика зоба у телят препаратом ДИФ - 3
/ М.П. Кучинский, П.М. Шешко, Д.П. Иванов, Е.А. Панковец // Технология
получения и выращивания молодняка сельскохозяйственных животных и
рыбопосадочного материала: тезисы докладов республиканской научнопрактической конференции. - Мн., 1993. - С.174.
116.
Лагодюк, П.З. Влияние гормона роста, введенного совместно с
тироксином на процессы молокообразования у коров / П.З. Лагодюк, В.А.
Чаркин, Ю.С. Клос, И.О. Кисинь // Физиологический журнал СССР. – 1982. №10. - С. 1438-1443.
117.
Ладанивский, Р.И. Влияние диет с различным уровнем витамина
Д и йода на гистоморфологию щитовидной железы и содержание в ней йода:
автореф. дис. канд. м. наук / Р.И. Ладанивский // - Львов, 1967. - 20 с.
118.
Лазарева, С.П. Показатели клеточного иммунитета и их
информативность при аутоиммунных заболеваниях щитовидной железы /
С.П. Лазарева, В.И. Кандрор // Пробл. эндокрин. - 1988. - Вып. 4. - С. 49-53.
119.
Ленинджер, А. Основы биохимии. Т. 1. /А. Ленинджер // - М.:
Мир, 1985. - 367 с.
148
120.
Манухина,
А.И.
Морфофункциональные
особенности
эндокринных желез и органов иммунной системы свиней разного потенциала
продуктивности / А.И. Манухина, О.Б. Брускова // Актуальные проблемы
биологии в животноводстве. - Боровск, 2000. - С. 323-324.
121.
Матвеев,
В.А.
Гормональная
регуляция
метаболизма
и
продуктивности жвачных животных/ В.А. Матвеев// Матер. 2 Междун. конф.
«Актуальные проблемы биологии в животноводстве». – Боровск, 1997. – С.
177-190.
122.
Матвеев, В.А. Концентрация гормонов в крови коров при разном
уровне молочной продуктивности. Труды ВНИИФБиП с.-х. животных / В.А.
Матвеев, Е.В. Бутров, А.И. Дюкар // – Боровск, 1991.– С. 135-136.
123.
Матвеев, В.А. Ранний отбор молодняка крупного рогатого скота с
высоким потенциалом продуктивности по гормональным показателям. В кн.:
«Биологическая наука на службе животноводства» / В.А. Матвеев, Е.В.
Бутров, В.П. Радченков // – Калуга, 1995. – С. 8-10.
124.
Матвеев,
В.А.
Гормональная
регуляция
процессов
молокообразования у коров тез. докл. Всесоюзного совещания «Новые
аспекты участия биологически активных веществ в регуляции метаболизма и
продуктивности с.-х. животных» / В.А. Матвеев, А.И. Дюкар //– Боровск,
1991. –С. 13-14.
125.
Матвеев, В.А. Состояние эндокринной системы коров с разным
уровнем молочной продуктивности. Бюл. ВНИИФБиП с.-х. животных / В.А.
Матвеев, А.И. Дюкар // – Боровск, 1992. – Вып. 2-3 (103-104). – С. 26-30.
126.
Матвеев,
В.А.
Эндокринная
регуляция
метаболизма
и
продуктивности с.-х. животных: матер. Межд. конф. Биологические основы
высокой продуктивности с.-х. животных, Ч. 2. / В.А. Матвеев, В.П.
Радченков, Е.В. Бутров // - Боровск, 1991. – С. 3-12.
127.
Медведев, И.К. Гормоны в регуляции метаболизма и лактации у
жвачных животных / И.К. Медведев // Физиолого-биохимические основы
высокой продуктивности с.-х. животных. - М., 1983. - С. 143-151.
149
128.
Медведев, И.К. Новые данные о биосинтезе жира и белка молока
/ И.К. Медведев // – В кн. «Генетика и новые методы селекции молочных
пород скота». - М., 1977.-228 с.
129.
Мельников, В.И. Влияние возраста быка на оплодотворяющую
способность семени и продуктивность потомства/В.И. Мельников // Сборник
науч. работ Всесоюз. н.-и. института животноводства. - 1966. - Вып. 2. - С.
28-33.
130.
Меркурьева, Е.К. Генетические основы селекции в скотоводстве /
Е.К. Меркурьева //. М., 1977.- 238 с.
131.
Меулер, Э. Давид. Биохимия: Химические реакции в живой
клетке / Меулер Э. Давид. В 3-х томах // Пер. с англ. - М.: Мир, 1980. - 205 с.
132.
Меченков,
Д.А.
Функциональные
резервы
тестостеронсинтезирующей системы у телок / В.И. Ерёменко, Д.А. Меченков
// Аграрная наука, 2009.- № 4.-С.22-23.
133.
Меченков, Д.А. Концентрация тестостерона в крови растущих
тёлочек / В.И. Ерёменко, Д.А. Меченков // Материалы межрегиональной
научно-практической конференции «Инновационные парадигмы в медицине
и педагогике».- Курск, 2009.- С. 25-26.
134.
Меченков, Д.А. Динамика тестостерона в крови бычков чёрно-
пёстрой и симментальской породы / Д.А. Меченков // Материалы
межрегиональной
научно-практической
конференции:
«Инновационные
парадигмы в медицине и педагогике».- Курск, 2009.- С. 89-90.
135.
Меченков, Д.А. Динамика тестостерона в крови лактирующих
коров разных пород / Д.А. Меченков // Сборник научных трудов
«Диагностика, лечение и профилактика болезней животных».- Курск, 2009.С.17-18.
136.
Меченков, Д.А. Состояние тестостеронсинтезирующей системы
у тёлочек чёрно-пёстрой и симментальской пород до 6-месячного возраста /
В.И. Ерёменко, Д.А. Меченков // Материалы Всероссийской научнопрактической
конференции,
посвященной
55-летию
образования
150
зооинженерного
факультета
«
Актуальные
проблемы
развития
животноводства и пути их решения».- Курск, 2008.- С. 96-98.
137.
Мкртумян,
А.М.
Кальцийрегулирующая
система
и
фосфорнокальциевый обмен при диффузном токсическом зобе / А.М.
Мкртумян, М.И. Балаболкин, Т.Л. Хаютина, Н.М. Майрова // Пробл.
эндокрин. - 1994. - Вып. 2. - С. 18-21.
138.
Мозгов, И.Е. Эндокринная регуляция и использование гормонов
в животноводстве/И.Е. Мозгов, А.Л. Падучева, Ю.Д. Клинский, К.И.
Барулин, Ю.Н. Шамберев, И.И. Розгони // Матер. 4 конф. по физиологии и
биохим. основам повышения продуктивности с.-х. животных. - Боровск, 1971
- С. 133-160.
139.
Морозова, Е.В.Динамика общего белка и белковых фракций в
крови лактирующих разнопродуктивных коров /Е.В. Морозова, Н.В.
Лебедева // материалы Всероссийской научно-практической конференции,
посвященной 90-летию государственности Удмуртии: «Научное обеспечение
инновационного развития АПК».-Ижевск,2010.-С.136-140.
140.
Морозова,
Е.В.
Динамика
показателей
естественной
резистентности у лактирующих коров с разными уровнями молочной
продуктивности и их потомства/ Е.В. Морозова //Вестник Курской
государственной сельскохозяйственной академии.-2011.-№2.-С.57-59.
141.
Москалёв, Ю.И. Минеральный обмен / Ю.И. Москалёв // - М.:
Медицина, 1985. - 288 с.
142.
Москалик, Р.С. Микрофлора спермы и половых органов
клинически здоровых племенных быков /Р.С. Москалик // Технол. аспекты
содерж. и выращивания животных. - Кишинев, 1986. - С. 103-109.
143.
Мохнач, В.О. Йод и проблемы жизни / В.О. Мохнач // - Л.:
Наука, 1974. - 259 с.
144.
Наук, В.А. Действие внешних факторов на спермопродукцию
быков/В.А. Наук // Животноводство. - 1984. - № 6. - С. 46-48.
151
145.
Николаева, Г.Н. Белковый состав молока и крови и его
особенности у коров разных пород: автореф. дис. на соиск. учен. степени
канд. биол. наук / Г.Н. Николаева //– Петрозаводск, 1971.
146.
Овчаренко, Н.Д. Особенности морфологии щитовидной железы
новорождённых маралов, коз и овец / Н.Д. Овчаренко, О.Е. Власова, Н.Ю.
Давыдова, Е.С. Горбачёва // Актуальные проблемы ветеринарной патологии
и
морфологии
животных
(материалы
научно-производственной
конференции). - Воронеж: Научная книга, 2006. –С.70-75.
147.
Ойвадис, Р.Н. Морфология гамет самцов с.-х. животных как
критерий биологической полноценности и морфол. исслед. в практике
здравоохранения и животноводства/Р.Н. Ойвадис, А.Н. Абилов, И.И.
Соколовская - М., 1984.-С.144-147.
148.
Осадчая, О.Ю. Повышение достоверности оценки племенных
качеств быков-производителей: автореф. дис. на соискание уч. степени канд.
с.-х. наук: 06. 02. 01 ВИЖ. - Дубровицы, 1998. - 26 с.
149.
Осадчук, Л.В. Половые различия в уровне тестостерона в крови и
содержании в гонадах у плодов серебристо-черных лисиц/Л.В. Осадчук//
Онтогенез - 2001. – 32. № 4. – С. 277 -282.
150.
Павлов, В.А. Физиология воспроизводства крупного рогатого
скота / В.А. Павлов // М.: Россельхозиздат, 1984. 208 с.
151.
Падучева, А.Л. Гормональные препараты в животноводстве / А.Л.
Падучева // - М.: Россельхозиздат, 1979. - 229 с.
152.
Параскун,
А.А.
Функциональная
морфология
щитовидной
железы и ее серотонин – катехоламиновое обеспечение в условиях
гипокинезии и гемитиреоидэктомии: автореф. дис. канд. м. наук / А.А.
Параскун // – Львов, 1987. – 30 с.
153.
Першин, В.А. Жирномолочность и ее регуляция. автореф. дисс.
канд. биол. наук 03.00.13. / В.А. Першин //– Москва, 1962.-21 с.
152
154.
Першин, В.А. Роль эндокринных желез в регуляции лактации и
использования продуктов рубцового метаболизма в синтезе составных частей
молока. автореф. дисс. докт. биол. наук. 03.00.13. / В.А. Першин // - М.,
1971. - 40 с.
155.
Пирров, А.Х. Функциональная активность щитовидной железы и
коры надпочечников в течение лактации у коров черно-пестрой породы
разного возраста / А.Х. Пирров // С.-х. биология. - 2003. - №2. – С. 75-80.
156.
Пирров, А.Х. Функциональное состояние щитовидной железы у
крупного рогатого скота / А.Х. Пирров // Онтогенез, профилактика. –М.,
2002.
157.
Плященко,
С.И.
Породные
и
возрастные
особенности
естественной резистентности организма животных/ С.И. Плященко, В.Т.
Сидоров, В.Т. Хацкевич // Использование генетических параметров и
методов селекции сельскохозяйственных животных. - Жодино, 1974. - С. 177179.
158.
Погребняк, В.А. Генетический потенциал продуктивности и
долголетия коров /В.А.Погребняк// Селекция, кормление, содержание
сельскохозяйственных животных и технология производства продуктов
животнаводства: сб. науч. тр.- Лесные поляны, 1998.-Вып.5.- С.43-46.
159.
Подрепный, А.Н. Динамика общего белка и альбуминов в крови
лактирующих разнопродуктивных и растущих бычков / Подрепный, А.Н. Ю.Ю.
Вострухина // Вестник Курской государственной сельскохозяйственной академии. –
2012. – №1. – С.- 42.
160.
Подрепный, А.Н. Динамика общего белка и альбумина в крови
лактирующих разнопродуктивных коров и растущих бычков / А.Н.
Подрепный, Ю.Ю. Вострухина, // Материалы Международной научнопрактической конференции, посвященной 140-летию со дня рождения профессора
Ильи Ивановича Иванова: «Обеспечение продовольственной безопасности
России. Если не мы, то кто?». – Курск, 2010. – С.239-240.
153
161.
Подрепный, А.Н. Концентрация общего холестерола в крови в
период лактации у коров и растущих бычков / В.И. Ерёменко, Ю.Ю.
Вострухина,
А.Н.
Подрепный
//
Материалы Международной научно-
практической конференции, посвященной 140-летию со дня рождения профессора
Ильи Ивановича Иванова: «Обеспечение продовольственной безопасности
России. Если не мы, то кто? ». – Курск, 2010. – С.115-116.
162.
Покровский,
Б.В.
Биохимия
гормонов
и
гормональной
регуляции/Б.В. Покровский// - М., 1976. – С. – 246-249.
163.
Полянский, В.П. Динамика общего белка в крови лактирующих
коров черно-пестрой породы разного генетического происхождения /В.П.
Полянский // Материалы Международной научной конференции «Современные
проблемы развития животноводства: сборник научных трудов». – Брянск, 2012. –
С.30-32.
164.
Полянский, В.П. Функциональные резервы щитовидной железы и
коры надпочечников у лактирующих коров черно-пестрой породы разного
генетического происхождения / В.П. Полянский, В.И. Ерёменко // Вестник Курской
государственной сельскохозяйственной академии. – 2012. – №2. – С.94-96.
165.
Прохоренко, П. Влияние генетических и средовых факторов на
телосложение голштинизированного скота/П. Прохоренко, Д. Михайлов //
Молочное и мясное скотоводство. - 2000. - № 2. - С. 23-25.
166.
Радченков, В.П. Гормоны, рост и продуктивность животных /
В.П. Радченков, В.А. Матвеев, Е.В. Бутров, В.П. Галочкина, Е.Е. Комкова //
Актуальные проблемы биологии в животноводстве. - Боровск, 2000. - С. 332334.
167.
Радченков, В.П. Эндокринная регуляция роста и продуктивности
животных / В.П. Радченков, В.А. Матвеев, Е.В. Бутров, Е.И. Буркова. - М.:
Агропромиздат, 1991. - 160 с.
168.
Радченков, В.П. Уровень гормонов в крови бычков и связи с
циркадной ритмикой, факторами кормления и отложением азота/ В.П.
154
Радченков, Е.Г. Сапунова, В.А. Матвеев // Науч.тр. ВНИИФБиП с.-х.
животных. – Боровск, 1980. - №24. – С. 91-97
169.
Радченков, В.П. Определение гормонов в крови молодняка
крупного рогатого скота и его гормональный статус/В.П. Радченков, В.А.
Матвеев, Е.В. Бутров // Методические указания. – Боровск, 1980. - 70 с.
170.
Радченков, В.П. Уровень эндогенных гормонов, обмен веществ и
прирост массы тела растущего молодняка крупного рогатого скота/ В.П.
Радченков, В.А. Матвеев, Е.В. Бутров // Тезисы съезда биохим. о-ва РАН,
Москва, 19-23 мая, 1997. - Пущино, 1997. - Ч. 1 - С. 226-227.
171.
Радченков, В.П. Определение гормонов в крови крупного
рогатого скота, свиней и их гормональный статус/ В.П. Радченков, В.С.
Аверин, Е.В. Бутров и др. // Методические указания. - Боровск, 1985. – 75 с.
172.
Радченков, В.П. Гормональный профиль, рост и становление
половой функции у телок / В.П. Радченков, Е.В. Бутров, Е.К. Голенкевич и
др. // С.-х. биология. – 1984. - №12. - С. 93-96.
173.
Радченков,
В.П.
Гормональный
профиль
и
молочная
продуктивность первотелок / В.П. Радченков, Е.В. Бутров, В.Н. Панасенко и
др. // С.-х. биология. - 1987. - №2. – С. 75-80.
174.
Раскин, А.М. Аутоиммунные процессы в патологии щитовидной
железы / А.М. Раскин //- Л.: Медицина. - 1973. - С.116-125, 174-177.
175.
Рачев, Р.Р. Тиреоидные гормоны и субклеточные структуры / Р.Р.
Радчев, Н.Д. Ещенко. - М.: Медицина, 1975.
176.
Резников, А.Г. Антиандрогены/ А.Г. Резников, С.В. Варга// - М.:
Медицина, 1988.- 206 с.
177.
Розен, В.Б. Основы эндокринологии / В.Б. Розен //- М.: МГУ,
1994. 170-230 с.
178.
Савронь, Е.О. Биохимия животных / Е.О. Савронь //
- М.:
Высшая школа, 1966. - 465 с.
155
179.
Савченко,
О.Н.
Стероидогенная
функция
коров
при
физиологических родах и кесаревом сечении / О.Н. Савченко, Г.С. Степанов,
В.У. Давыдов и др. // с.-х. биология. – 1989.- №6. – С.39-42.
180.
Самохин, В.Т. Влияние физиологического состояния и сезона
года на активность щитовидной железы / В.Т. Самохин // Доклады ВСХНИЛ.
- №4. - 1971. - С. 3.
181.
Солдатенков, П.Ф. Промежуточный обмен в продуктивность
животных / П.Ф. Солдатенков // - М. 1976. - 174 с.
182.
Соловьева, Т.Л., Цюпко В.В. Содержание Т4 в крови коров в
зависимости от обеспеченности тканей энергией / Т.Л. Соловьева, В.В.
Цюпко // С.-х. биология. – 1984. - №9. - С. 96-99.
183.
Старкова, Н.П. Клиническая эндокринология / Н.П. Старкова // -
М.: Медицина, 1983. - 290 с.
184.
поросят
Стеценко, И.И. Оценка закономерности развития костной ткани
при
выращивании
на
кормах
с
высоким
содержанием
гойттерогенных веществ / И.И. Стеценко // Актуальные проблемы
исследований в области зоотехнии и ветеринарной медицины в современных
условиях. - Чебоксары, 2000. - С. 258-260.
185.
Суриков, М.Г. Гормоны и регуляция обмена веществ / М.Г.
Суриков, И.Л. Голенда. - Минск: Беларусь, 1970. - С. 42-45.
186.
Таланов, В.В. Состояние и перспективы проблемы эндемического
зоба / В.В. Таланов // Пробл. эндокрин. - 1985. - Вып. 5. - С. 81-85.
187.
Таранов, М.Т. Биохимия и продуктивность животных / М.Т.
Таранов // - М.: Колос, 1976. - 240 с.
188.
Таранов, М.Т. Биохимия кормов / М.Т. Таранов, А.Х. Сабиров. -
М.: Агропромиздат, 1987. - 244 с.
189.
Тверской, Г.Б. Регуляция секреции молока / Г.Б. Тверской // -
Ленинград, 1972. - 355 с.
190.
Теппермен, Д. Физиология обмена веществ эндокринной системы
/ Д. Теппермен, Х. Теппермен. - М.: Мир, 1989. - С. 302-308.
156
191.
Тихонов, В.П. Использование групп крови при селекции
животных / В.П. Тихонов // М., 1967, С.17-22
192.
Ткачук, В.А. Введение в молекулярную эндокринологию / В.А.
Ткачук // - М.: Медицина, 1983. - 235 с.
193.
Третевич, В.И. Изучение закономерностей секреции молока. –
автореф. дис. на соис. уч. ст. докт. биол. наук / В.И. Третевич // - Львов,
1975.
194.
Труш,
Н.В.
Динамика
морфометрических
показателей
щитовидной железы собак / Н.В. Труш // Актуальные проблемы
ветеринарной патологии и морфологии животных (материалы научнопроизводственной конференции). - Воронеж: Научная книга, 2006. –С.114119.
195.
Туманова, Э.Б. Влияние отела и первого доения на деятельность
надпочечных
и
щитовидных
желез
у
коров
различного
типа
стрессоустойчивости / Э.Б. Туманова, Г.Г. Герасимова, В.П. Политов, С.П.
Пчеленко // Физиолого-биохимические основы реализации генетического
потенциала молочности. - Л., 1988. - С. 20-28.
196.
Туракулов, Я.Х. Биохимия и патохимия щитовидной железы /
Я.Х. Туракулов // -Ташкент: Изд-во: АН Узб. ССР, 1963. - 403 с.
197.
Туракулов, Я.Х. Пути биосинтеза, метаболизма и механизм
действия гормонов щитовидной железы в норме и при патологии / Я.Х.
Туракулов // Вестник АМН СССР. - 1980. - С. 54-61.
198.
Уразаев, Н.А. Исследование щитовидной железы // Клиническая
диагностика внутренних незаразных болезней животных / Н.А. Уразаев // М.: Агропромиздат, 1988. - С.179.
199.
Хайсанова, Л.И. Активность ферментов в сыворотке крови и ее
связь с ростом и развитием помесных телят/Л.И. Хайсанова, Л.Н. Лукичева //
Актуал. пробл. физиолог. человека и животных: матер. научн. конф.,
Ульяновск, 15 мая, 1996. - Ульяновск, 1996. - С. 15-16.
157
200.
Шамберев, Ю.Н. Взаимодействие гормонов и алиментарных
веществ в регуляции обмена веществ и роста животных / Ю.Н. Шамберев //
Гормоны в животноводстве. - М.: Колос, 1974. - С. 180-195.
201.
Шамберев, Ю.Н. Влияние половых гормонов и их синтетических
аналогов на откорм животных/ Ю.Н. Шамберев // - М., 1970.
202.
Шамберев, Ю.Н. Участие алиментарных факторов в секреции
гормонов у жвачных животных/Ю.Н. Шамберев // ХII съезд Всесоюзного
физиологич. общества. Секция физиол. с.-х. животных, Тбилиси, 75. Тез.
научных сообщений. - Боровск, 1975. - С. 83.
203.
Шаталов, С.В. Уровень естественной резистентности у крупного
рогатого скота разных линий/С.В. Шаталов // Пути и методы качественного
совершенствования скота и свиней. - Персиановка, 1983. - С. 14-17.
204.
Ширалиев, О.К. Гормоны и остеопороз / О.К. Ширалиев, Г.Ф.
Мамедов, Ж.И. Гагиева // Пробл. эндокрин. - 1994. - Вып. 3. - С. 49-52.
205.
Шкуратова,
И.А.
Морфофункциональные
особенности
щитовидной железы у крупного рогатого скота в разных экологических зонах
/ И.А. Шкуратова, Л.И. Дроздова, М.В. Ряпосова, Н.А. Верещак //Актуальные
проблемы ветеринарной патологии и морфологии животных (материалы
научно-производственной конференции). - Воронеж: Научная книга, 2006. –
С.226-228.
206.
Щеплягина, Л.А. Особенности течения зобной эндемии в
современных условиях
/ Л.А. Щеплягина // Современные проблемы
педиатрии, 1998. - С. 381
207.
Цюпко, В.В., Соловйова Т.Л. Регуляцiя розподiлу продуктiв
травлення у лактуючих корiв // Матерiали 10-го з’iзду укр.фiзiол.
тваринництва. – Киiв: Наукова думка.- 1997. – 346 с.
208.
Цюпко, В.В. Механизм распределения продуктов переваривания
корма у лактирующих коров / В.В. Цюпко, Т.Л. Соловьева, А.В. Осенев //
Физиолого-биохимические основы высокой продуктивности с.-х. животных.
– Ленинград, 1983. – С. 169-173.
158
209.
Эйдригевич, Е. В. Интерьер сельскохозяйственных животных /
Е.В. Эйдригевич, В.В. Раевская // – М.: Колос, 1978. – 255 с.
210.
Эйснер, Ф.Ф. Функциональная активность желез внутренней
секреции у крупного рогатого скота/ Ф.Ф. Эйснер,
Л.П. Резниченко//
Сельхозбиология. – Генетика. - 1977. - Т. 13 – С. 430-438.
211.
Юдаев, Н.А. Биохимия гормонов и гормональной регуляции/Н.А.
Юдаев// – М.: Наука, 1976. – 256 c.
212.
Юдаев, Н.А. Гормоны, их механизм действия и регуляция обмена
веществ/Н.А Юдаев // Вестник АМН СССР. – 1980. - №7. - С. 3-9.
213.
Alrares M.B., Jonson H.D. Environmental heat exposure on cattle
plasma catecholamine and glucocorticoids // J. Dairy Sci. - 1973. - Vol. 56. - P.
189.
214.
Andrzejewska E., Rokicka B., Gajda J. Et al. Evaluation of potassum
iodide in Polish dietary salt // Rocz - Panstw-Zaki - Hig., 1996. - V.47 (4). - P.395400.
215.
Annison E. Hormonal nutrition interactions in metabolic regulation in
ruminants/ E. Annison// Proc. Nutr. Soc. Austr., 1982. – Vol. 7. – P. 81-88.
216.
Arnold A.M. Effect of testosterone on differential muscle growth and
on protein and nucleic acid concentrations in muscles of growing lambs/A.M.
Arnold, J.M. Peralta, M.L. Thonney // J. Anim. Sc. - 1997. - Vol. 75, №6. - P.
1495-1503.
217.
Assane M., Sere A. Influence de la saison et de la gestation sur la
concentration plasmatigue des hormones thyroidiennes: triiodothyronine (T3) et
thyroxine (T4) chez la brebis peulh du Sahel. Ann // Rech. Veter. - 1990. - T. 21,
№4. - P. 285-289.
218. Bartoov В. Sperm motility analyzer (SMA) a practical tool of motility
and sperm concentration determinations in Artificial Insemination centers/ B.
Bartoov, D. Kalay, A. Mayevsky // Theriogenology. 1981. - № 15. - P. 173 – 174.
159
219. Bell A.W., McBride B.W., Slepetis R. Chronic heat stress and prenatal
development in sheep. 1. Conceptus growth and maternal plasma hormones and
metabolites // J. anim. Sc. - 1989. - Vol. 67, № 12. - P. 3289-3299.
220.
Berbigier P., Cabello G. Effect of exposure to full sunshine on
temperature regulation of pregnant dwarf goats of Guadeloupe (French West
Indies), and on birthweight, T3 and T4 plasma levels of newborn kids // J. therm.
Biol. - 1990. - T. 15, № 2. - P. 109-113.
221.
Bertoni G. Considerasioni a ricerche sui rapporti fra laattarione,
metabolisme energetice ea attivita tiroiden // Zootechn.Nutr. Anim. – 1983. – Vol.
9, №1. – P. 19-80.
222.
Bines J.A. Hormonal rogulation of the partition of energy between
milk and body tissue in adult cattle/J.A. Bines, J.C. Hart // Proc. Hutr. Sci. – 1978.
– Vol. 37, №3. – P. 281-287.
223.
Blum J., Bruckmaier R., Vacher P. Et al. Twenty - four - hour patterns
of lactation in high-yielding dairy cows dfed triglicerides and free fatty acids. // J.
Vet. Med. A. -2000. – Vol. 47, №1. - S. 43-60.
224.
Blum J.W. et al. Thyroid hormones bloed metabolites an
hacmatologial parametere in relationahip to milk field in dairy cows // Anim.
Product. – 1983. – Vol. 36, №1. – P. 93-104.
225.
Blum J.W., Kuna P., Scheider W. Changes of hormones and
metabolites during reduced and compenaatory growth of steers // Ann.Rech. Vet. –
1979. – Vol. 10. – P. 391-392.
226.
Bobek S. et al. Sosonowa rasowa sniennose stesenia hormonow
tarcsycy w surowicy krwi u budla // Acta Agr. Silvestra Ser. Zoctechn. – 1980. –
Vol. 19. – P. 3-12.
227.
weiterer
Bonsack H. Vergleichende Bestimmung des Gehalts an Prolaktin und
fur
die
Milchbildung
bedeutsamer
Hormone
(Cortisol,
Schilddrusenhormone) im Blutplasma von Kuhen mit hoher und niedriger
Milchleistung /H. Bonsack, H. Bier, E. Grun // Mh. Veter. Med. –1992. - T. Jg. 47,
H. 8. - S. 401-410.
160
228.
Bubenik G.A., Brown R.D. Seasonal levels of cortisol, triidothyronine
and thyroxine in male Axis deer // Comp. Biochem. Physiol. - 1989. - Vol. 92 A,
№ 4. - P. 499-503.
229.
Chiericato G. M. Endocrine response of hybrid rabbits of different
ages and under two environmental temperature conditions/G.M. Chiericato, C.
Rizzi, C. Boiti, C. Canali , V. Rostellato// Tropicultura. - 1997. - Vol. 15, № 1. P. 22-26.
230.
Chopra I.G. Pathways of metabolism of thyroid hormones. // Recent.
Prog. Horm Res., 1978. Vol.34. p.531.
231.
Couch R.M./R.M. Couch, K. M. // Biochemistry. – 1973. – Vol. 12,
№16. – P. 3114-3121
232.
Davies T.F. Dislases of the TSH receptor // Clin. Endoorinol. Metab.,
1983. Vol. 12. p.79.
233.
Everett R. W.Semen fertility an evaluation system for AI sires.
Technicians, herds and systematic fixed effect/R.W. Everett,B. Bean// J. Dairy
Science. - 1986. -№696.-P.1630-1641.
234.
Fradkin G. Iodide-indiced thyrotoxicosis / Fradkin G., Wolf Q. //
Medicine (Baltimore). 1983. Vol. 62 p.1-102.
235.
Mroczkowski S. Mlecznosc merynosa polskiego a poziom tyroksyny
(T4) i trojjodotyroniny (T3) // Zootechnika. – Bydgoszcz, 1993, № 23. - S. 17-23.
236.
Hall R. The care and management of farm animals/R. Hall// London:
Bailliere Thindal1, 1978. – Р. 21-22.
237.
Hart J. C., Bines J.A., Morant S.V., Ridicy J.L. Endocrine control of
energy metaboliam in the cow: comparison of the level of hormones and
metabolites in the plasma of high and low yielding cattle of various stages of
lactation // J. Endocrinol. – 1978, – Vol. 77. – P. 333-345.
238.
Hart J. C., Bines J.A., Roy J.H.B., Morant S.V. Plasma Thyroxine and
free thyroxine index in high- and low-yielding cattle and in calves of different
breeds // J. Endocrinol. – 1979. – Vol. 80, №2. – P. 52-53.
161
239.
Heaf D.L., Chen W.Y., John C.J. et al. Seascnal changes in the
concentrations of thyroxine and its tranaport proteins in sheep plasma // Biochem.
Soc. Trans. – 1983. – Vol. 11, №4. – P. 391-392.
240.
Heron M.I., Kolar F., Papousek F., Racusan K. Early and late effect of
neonatal hypo - and hyperthyroidism on coronary capillary geometry and longterm heart function in rat // Cardiovasc - Res., 1997. - V.33 (1). P.230-240.
241.
Hodate K. Effect of short term changes of ambient temperature on
plasma levels of thyrotropin and thyroid hormones in dairy heifers // Japan. J.
Zootechn. Sci.– 1982. – Vol. 53. – P. 1-12.
242.
Hodate K., Johke J., Kawabata A. et al. effects of age, body weight
and sex on pituitary thyroid axis in duiry cattie and dairy variations of thyrotropin
and thyroid hormones // Japan. J. Zootechn. Sci. – 1981. – Vol. 52, №5. – P. 334342.
243.
Humbolt P. Sire effects on cow fertility and late embryonic mortality
in the montebelliard breed/P. Humbolt, I.B. Denis// Livestock product. Sci. 1986. V. 14.-№2.-P.139-148.
244.
Huttunen J. K. Adipose tissue lipids and their hormonal regulation/
J.K. Huttunen// J. Clin. Lab. Invest. – 1972. – Vol. 29. – P. 126-130.
245.
Ivancsies J. A. Population genetical analysis of the sperm quality of
beef and dairy bulls/J.A. Ivancsies// Kmetiystvo. 1985. - № 46. - P. 87 - 93.
246.
Johnsonbaugh R.E. Steroid Biochem/R.E. Johnsonbaugh, F.C.
Dalldorf, F.C. French, S.H. Nayfeh// 1976. – vol. 7., N 2. – p. 73 – 79.
247.
Kirshmann J. D., Lavon J. Dune. Nutrition almanac / Nutrition
Search. MC graw - hill, publishing company, 1990. - P.74, 172.
248.
Klein I. New perspectives on thyroid hormone, catecholamines and
heart / Klein I., Level G.S. // Am. I. Med., 1984. Vol. 76. p. 167.
249.
Kumar R., Rattan P.J.S. Plasma thyroidal and adrenocortical
hormones during different developmental stages in buffalo heifers // Indian J.
anim. Sc. – 1992. -; Vol. 62, № 8. – Р. 747-748.
162
250.
Lakshmy R., Rao P. S., Sesicran B., Surysprakash P. Iodine
metabolism in responce to goitrogen inducrd altered thyroid status under
conditious of moderate and high intake of iodine // Horm-Metab-Res, 1995. - V.27.
- P.450-454.
251.
Lammoglia M.A., Bellows R.A., Short R.E., Bellows S.E., Bighorn
E.G., Stevenson J.S., Randel R.D. Body temperature and endocrine interactions
before and after calving in beef cows // J. Anim. Sc. - 1997. - Vol. 75, № 9. - P.
2526-2534.
252.
Oppenheimer G.H. Molecular Basis of thyroid Hormone Action New
Work / Oppenheimer G.H., Samuels H.H. (eds.) // Academic Press. 1983.
253.
Oshima M., Fuse H., Ishii T., Hakagaki K. Inverse relationship
between the electrolyte concentretion and the content of fat, protein and lactose in
milk with differing composition from the individual cow administered thyroxine //
Jap. J. Zootechn. Sci. – 1978. – Vol. 49, №11. – P. 828-831.
254. Parkinson T. J. Seasonal variation in semen quality of bulls and
correlations with metabolic and endocrine parameters/ T. J. Parkinson // Vet. Rec.
1985. -V. 117. - № 12. - P. 303-307.
255.
Perez H., Alvarez J.L. Patron de secrecion de triyodotironina y
tiroxina en toros sementales Holstein // Rev. Salud anim. - 1997. - Vol. 19, № 1. P. 47-50.
256.
Perez H., Mendoza E., Alvarez J.L., Fernandez O. Efecto del indice
temperatura-humedad sobre la secrecion de hormonas tiroideas en novillas
Holstein // Rev. Salud anim. - 1997. - Vol. 19, № 2. - P. 131-135.
257.
Prakash P., Rathore V.S. Seasonal variations in blood serum profiles
of triiodothyronins and thyroxine in goat . Indian // J. Anim. Sc. - 1991. - T. Vol.
61, № 12. - P. 1311-1312.
258.
Saacke R.G. Semen quality in relation to semen preservation/ R. G.
Saacke// J. of Dairy Science. 1983.-V. 66. - № 12. - P. 2635-2644.
163
259.
Santos M. Terfil de testosterone e metabolitos lipidicos de touros zebu
alimentados com dois nireis de concentrado e lipideos/ M. Santos, M., C. Torres,
S. Filho // Rev. Soc. Bras. Zootech. - 1998. - Vol. 27, № 3. - P. 620-626.
260.
Shapiro L.E. Thyroid and giucocorticoid hormones synergltically
control growth hormone m-RNA in cultured GHi cells / Shapiro L.E., Samuels
H.H., Iffe B.M. // Proc Natl.Aoad. sci: USA, 1978. V.p.45.
261.
Shubbur A., Goffaux M., Thibier M. Evolution saisonniere des
niveaux plasmatigues de thyroxine et de triiodothyronine chez le taureau postpubere en France et Irak:Variations concomitantes des taux de LH et de
testosterone // Reprod. Nutrit. Developpem. - 1989. - T. 29, № 3. - P. 309-315.
262.
Simon
M.
Clical
and
biochemical
studies
of
iodopathic
hemochromarosis / Simon M., Bourel M. // Metabolism of trace metal in man /
Eds. Renert O.M., Chan W.I. Vol. 11. Boca Raton, 1984. p. 82-107.
263.
Sinombing D. T. H., Cromwell G. L., Hays V. W. ffects of protein
source and thyroid status of pigs // J. Anim. Sci., 1974. - V.39. - № 6. - P.11061112.
264.
Skrzypczak W. Circadian variations in some biochemical indices of
blood in calves in early postnadal period. /W. Skrzypczak, E. Skotnicka , M. Orgo
// Folia univ. agr.stetin zootechn. – 1998. – N 36. – Р. 33 – 34.
265.
Strzetelski J., Antoniewicz A., Rys R., Bilik K., Pietras M. Wplyw
hormonu uwalniajacego tyreotropine (TRH) na wydajnosc i sklad mleka krow oraz
stezenie hormonow tarczycowych, cholesterolu i wolnych kwasow tluszczowych
we krwi. Roczn. nauk // Zootechn. – Krakow, 1993 . - T. 20, Z.2. - S. 77-85.
266.
Tancin V., Broucek J., Mihina S. Vplyv cicania prvostok tel’atami v
prvom mesiaci laktacie na ich neskorsi hormonalny profil // Pol’nohospodarstvo. 1994. - Vol. 40, № 9. - P. 693-698.
267.
Tiraits T. Thyroxine, triiodothyronine and revers-triiodothyronine
concentrations in blood plasma in relation to lactational stage, milk yield, energy
and dietary protein intake in Estonian dairy cows // Acta veter. Scand. - 1997. Vol. 38, №4. - P. 339-348.
164
268.
Trenke A. Growth hormone secretion rates in cattle/ A. Trenke// J.
Anim. Sci., 1972, vol. 32, N 1, Р. 115 – 118.
269.
Tveit B., Almlid T. T4 degradation rate and plaama levels of TSH and
thyroid hormones in ten jonny bulls during feeding conditions and 48-th of
starvation // Acta Endocrinol. – 1980. – Vol. 93. – P. 435-439.
270.
Tveit B., Lingaas F., Standal N. Thyroid function in heifers measured
by hormone levels before and after injection of thyrotropin releasing hormone. 1.
Methods, repeatability and correlation with production traits // Acta agr. Scand. 1990. - T. 40, №2. - P. 175-181.
271.
Underwood E.G. The mineral nutrition of liverstok Farman Royal.,
1981.
272.
Underwood E.G. Trance elements in hyman and animal nutrition. // 4
rd Ed. Nev-Work Acad Press 1977. p.402.
273.
Wang Jianchen The changes of cortisol, 17b-oestradiol and
progesterone levels in peripheral plasma of Xinong Saanen milch goats around
parturition, and their effects on parturition/ Wang Jianchen, Wang Guangya, Duan
Enkui, Li Xiaocheng // Acta veter. zootechn. sinica. – 1988. - T. 19, №4. – P. 217223.
274.
Williams L.T. Thyroid hormone regulation of adrenergic receptor
number / Williams L.T., Lefrowitz R.I., Watanale A.M. // I. Biol. Chem., 1977.
Vol. 252. p. 27-87.
275.
Witkowski A. Realationship of thyroid activity with age and
liveweight in pigs // Roczniri Naur Rolniczy ch, 1971, cer. B. Vol.93. p. 137.
276.
Zaletel J.H. Lipids in blood plasma of young dairy calves/ J.H.
Zaletel, R.S. Allen, N.L. Jacobson // J.Dairy Sci. – 1952. – V.35, №12. – P. 10461052.
165
Приложения
166
167
168
169
170
171
172
173
174
175
176
177
178
179
180
181
182
183
184
185
186
187
188
189
190
191
192
193
194
195
196
197
198
199
200
201
202
203
204
205
206
207
208
209