ФЕДЕРАЛЬНОЕ ГОСУДАРСТВЕННОЕ ОБРАЗОВАТЕЛЬНОЕ УЧРЕЖДЕНИЕ ВЫСШЕГО ПРОФЕССИОНАЛЬНОГО ОБРАЗОВАНИЯ «МОСКОВСКАЯ

ФЕДЕРАЛЬНОЕ ГОСУДАРСТВЕННОЕ ОБРАЗОВАТЕЛЬНОЕ УЧРЕЖДЕНИЕ
ВЫСШЕГО ПРОФЕССИОНАЛЬНОГО ОБРАЗОВАНИЯ «МОСКОВСКАЯ
ГОСУДАРСТВЕННАЯ АКАДЕМИЯ ВЕТЕРИНАРНОЙ МЕДИЦИНЫ И
БИОТЕХНОЛОГИИ им. К.И.СКРЯБИНА»
Крупальник В.Л., Наврузшоева Г.Ш.
КЛАССИЧЕСКАЯ И
АФРИКАНСКАЯ ЧУМА СВИНЕЙ
Лекция
Москва 2012
УДК 619:616:98:578.833.31(075)
Крупальник В. Л., Наврузшоева Г.Ш. Классическая и африканская чума
свиней: Лекция. – М.: ФГОУ ВПО МГАВМиБ им. К.И.Скрябина, 2012. с.
Изложены современные представления о классической и африканской чуме
свиней. Приведены данные исследований последних лет о возбудителях болезни,
эпизоотологические
данные,
патогенез,
клинические
признаки,
патологоанатомические изменения, диагностика и дифференциальный диагноз, меры
борьбы и профилактика классической и африканской чумы свиней.
Предназначена для слушателей факультета повышения квалификации,
студентов факультета ветеринарной медицины и ветеринарных врачей.
Рецензент : Родионова В.Б. , профессор МГАВМиБ
Утверждена учебно-методической
медицины. (протокол № от 2012г.)
комиссией
факультета
ветеринарной
2
Классическая чума свиней (лат.-Pestis suum,англ.-Swine fever, Hog cholera) высококонтагиозная вирусная болезнь, характеризующая при остром течении
септицемией и геморрагическим диатезом, постоянным типом лихорадки, а при
подостром или хроническом часто осложняется секундарной инфекцией (бактериями
из группы сальмонелл или пастерелл), что проявляется в виде крупозных пневмоний
и крупозно-дифтерическом колитом.
Африканская чума свиней (лат.-Pestis Africana suum; англ – African swine
fever:болезнь монтгомери) - особо опасная высококонтагиозная вирусная болезнь,
характеризующая лихорадкой, цианозом кожи, обширными геморрагиями во
внутренних органах и большой летальностью.
ИСТОРИЧЕСКА СПРАВКА. РАСПРОСТРАНЕНИЕ КЛАССИЧЕСКОЙ
АФРИКАНСКОЙ ЧУМЫ СВИНЕЙ.
И
Классическая чума свиней (КЧС) впервые описана в Северной Америке в 1833г. В
60-х гг. XIX в. она распространилась в большинстве стран Европы, и до 50-х гг. XX
в. ее отмечали во многих странах мира. В Россию вирус чумы занесен в 1903 г. из
Западной Европы. Вирусную природу болезни установили в 1903 г. американские
исследователи Швейниц и Дорсет. Большой вклад в изучение чумы и разработки
профилактических мероприятий внесли А.П.Уранов, П.Н.Соломкин, Н.В.Лихачев,
Н.К.Мищенко, В.И.Попов, П.И.Притулин, А.И.Карелин, А.А.Конопаткин,
С.И.Джупина и др. За последние годы опубликованы данные о биологии вируса,
описаны формы клинического проявления и течения эпизоотического процесса,
предложены вакцины, разработаны средства и методы диагностики, однако,
предпринимаемые попытки ликвидации болезни успеха пока не имеют.
Классическая чума свиней (КЧС) относится к списку А особо опасных инфекций и
наносит большой экономический ущерб свиноводству как в развивающихся , так и
развитых стран с хорошо организованным ветеринарно-санитарным надзором. В
настоящее время встречается повсеместно на всех континентах за исключением
США, Канады, Австралии, Исландии, Новой Зеландии, Норвегии, Швеции. Больше
других эта инфекция распространена в странах Европы, Азии, Южной и
Центральной Америки, где хорошо развито свиноводство.
В 1991-1998 гг. около 60 стран мира были неблагополучны по КЧС. Рост
эпизоотологических показателей КЧС в Европе объясняется тем, что страны ЕЭС
разработали программу искоренения этой болезни в сочетании с резким
ограничением или полным прекращением проведения
профилактической
иммунизации живыми вакцинами. За рубежом уже давно считается аксиомой, что
3
если в стране продолжается вакцинация свиней против КЧС, да еще и живыми
вакцинами, то эту страну нельзя считать свободной от возбудителя этой болезни.
Отмечается периодическое усиление и ослабление проявления эпизоотического
процесса чумы в России.
Африканская чума (АЧС) впервые зарегистрирована в 1903 г. в Восточной Африке.
АЧС до конца 1950-х годов встречалась только в Африке. Португалия оказалась
первой страной в Европе, в которой в 1957г. была зарегистрирована АЧС.
Впоследствии это заболевание проявилось в других Европейских странах: Испания
(1960), Франция (1964), Италия (1967, 1969 и 1993), Бельгия (11985), Нидерланды
(1986). В период с 1978 по 1980 годы АЧС проявилась в Бразилии, Кубе, Гаити.
Вирусную природу доказал английский исследователь Р. Монтгомери (1921).
Длительное время АЧС регистрировалась только в Африке, но с 1957 года появилась
в странах Европы, на Кубе и Бразилии.
В настоящее время африканские страны являются стационарно неблагополучными
по этой болезни и представляют опасность для других стран. Обусловлено это
вовлечением в эпизоотический процесс других свиней- вирусоносителей и
аргасовых клещей в неблагополучных зонах.
Африканская Чума Свиней регистрировалась в России в начале XX века, а в 70-е
годы в бывшем СССР имели место три случая (Московская область, Молдавия,
Одесса). В последние годы Африканская Чума свиней зарегистрирована во всех
районах Грузии, Абхазии, Северной Осетии, Армении, Краснодарском и
Ставропольском краях и др. Занос заболевания на территорию России зафиксирован
в 2007 году (Чеченская Республика, дикие кабаны); в мае 2008г. отмечены первые
случаи АЧС среди домашних свиней в Северной Осетии. По данным МЭБ в России в
2010г. зарегистрировано 173 очага.
В 2010-2011 гг. Отмечены повторно и новые вспышки АЧС в Краснодарском и
Ставропольском краях, Калининградской, Ростовской, Ленинградской, Мурманской
и Архангельской областях, г. Санкт-Петербург.
Распространение АЧС связано со следующими факторами: отсутствие единой
межведомственной программы борьбы; запоздалая постановка диагноза;
межхозяйственные, транспортные связи и практика скармливания животным
пищевых отходов; затягивание мероприятий по депопуляции восприимчивого
поголовья в неблагополучных районах страны; большое количество диких свиней и
их возможные контакты с домашними; наличие клещей рода орнитодорус
(резервуарный вид) в южном районе страны.
Занос заболевания на территорию России зафиксирован в 2007 году (Чеченская
Республика, дикие кабаны). По данным МЭБ зарегистрировано 173 очага.
4
В 2010 году в МЭБ нотифицировано 73 новые вспышки АЧС (55 среди
домашнего поголовья, 18-среди диких кабанов), в том числе на ранее благополучных
территориях.
ВОЗБУДИТЕЛИ БОЛЕЗНЕЙ
Возбудитель классической чумы свиней - РНК-содержащий вирус из рода Pestivirus
семейства Flaviviridae. По вирулентности различают А-, В- и С-варианты вируса. В
группу А входят вирулентные эпизоотические штаммы, вызывающие у свиней всех
возрастов остро протекающую болезнь. Вирусы подгруппы В вирулентны только
для поросят и при циркуляции в стаде вызывают атипичную или хроническую чуму.
К подгруппе С относится американский слабо вирулентный штамм. Установлено
одностороннее родство между вирусом КЧС и вирусом диареи КРС: антитела к
вирусу диареи КРС нейтрализуют вирус КЧС, но антитела к вирусу КЧС не
нейтрализуют вирус диареи. Вирус пантропен, накапливается во всех органах и
тканях, селезенке, печени, слизистой оболочке кишечника и эндотелии кровеносных
сосудов. Вирус размножается в гомологичных (свиньи) и гетерологичных (КРС,
овцы, козы) культурах клеток без ЦПД.
Лабораторные животные невосприимчивы. Вирус удается репродуциро вать в
первичной культуре клеток легких, селезенки, почки. Вирус чумы свиней
адаптируется к организму кролика.
Устойчивость. По устойчивости к химическим дезинфицирующим средствам вирус
чумы относится к устойчивым (2 группа). В свинарниках не теряет вирулентности в
течение года, в замороженном мясе – более 4 лет, свежеохлажденном мясе 45-71
день, в солонине – более 6 мес., в копченостях- 3 мес. При прогревании мясных
продуктов при 44°С вирус инактивируется через 4 часа. В навозе и трупах погибает
через 3-5 дней, в почве – через 1-2 недели. Сыворотка крови больных чумой свиней
при 37°С содержит активный вирус 11 дней, при 2-4°С не теряет активности 4-6 мес.
Неустойчив к высоким температурам. Для дезинфекции наиболее эффективны
растворы: едкого натра (2-3%-ные), формалина (2%-ный), хлорной извести (2-3%ные), однохлористого йода (5%-ный), перекиси водорода(3-4%-ные), йодеза (1%ный), виркона С 1:350 и др. Быстро инактивируется под действием
ультрафиолетового света.
В природе существует замкнутый круг циркуляции вируса АЧС между дикими
свиньями-вирусоносителями и аргасовыми клещами рода Ornithodoros: в Африке –
O. moubata, в Европе – O. erraticus. В организме клещей вирус может сохраняться
многие годы (весь период жизни клеща – 10-12 лет) и передаваться потомству
трансовариально; установлена устойчивость вируса в мертвых клещах в течении 1315 мес. Клещи могут мигрировать на расстояние 8 км от места обитания. В связи с
5
тесными биологическими взаимоотношениями вируса и аргасовых клещей
природный очаг может существовать без повторных заносов вируса АЧС
неопределенное время (Сюрин В.Н.,1998).
Возбудитель АЧС относится к роду Asfarvirus, который является единственным
представителем семейства Asfarviridae. Это ДНК-содержащий вирус. Болеют только
свиньи всех пород и возрастов. К экспериментальному заражению невосприимчивы
кошки, крысы, кролики, куры, голуби, овцы и лошади.
Вирус АЧС значительно устойчив к различным факторам. Инфекционность вируса
сохраняется при +5*С до 5-7 лет, при комнатной температуре (18-20*С) – до 18
месяцев, при +37*С – до 30 суток, при 56*С – погибает за 70 минут, при 60*С – за
20 минут.
В трупах свиней вирус сохраняется от 17 суток до 10 недель, в кале – до 160 суток, в
моче – 60 суток; в почве (лето-осень) – 111 суток – 900 суток(осень-зима); на
поверхности из дерева и кирпича 120-180 суток. В инфицированном свинарнике
вирус сохраняет жизнеспособность в течении 3 месяцев.
Замораживание не влияет на биологическую активность вируса. Так, при минус 3060*С вирус сохраняется от 6 до 10 лет. В мясе от больного животного при хранении
в замороженном состоянии до 155 суток,а в копценой колбасе и ветчине – до 6
месяцев.
ЭПИЗООТОЛОГИЧЕСКИЕ
ОСОБЕННОСТИ
КЛАССИЧЕСКОЙ
И
АФРИКАНСКОЙ ЧУМЫ СВИНЕЙ.
При эпизоотологическом анализе КЧС внимание обращают на заболеваемость
свиней на соседних фермах и в приусадебных хозяйствах, на наличие природных
очагов этой инфекции, факты гибели диких кабанов и реализации свинины от таких
животных, добытых охотниками, поступление на ферму свиней, кормов, кухонных и
боенских отходов. Обращают внимание на связи транспортных средств с перевозкой
свиней, особенно из хозяйств, оздоровленных от этой инфекции. Учитывают
характер распространения инфекции: при одновременном заболевании большого
числа животных уделяют повышенное внимание кормам и ингредиентам, из которых
они приготовлены, как факторам передачи возбудителя инфекции . При выявлении
единичных больных и постепенном веероподобном распространении инфекции на
ферме уточняют связи обслуживающего персонала с неблагополучными пунктами и
другие факторы передачи возбудителя инфекции.
Факторами передачи возбудителя могут являться животные личных
подворий. Продукты убоя больных свиней, поступившие из индивидуального
сектора по неучтённым каналам, способствуют механическому переносу и
сохранению вируса во внешней среде. Распространение вируса КЧС в значительной
6
мере зависит также от ветеринарно-санитарного состояния хозяйства. Отсутствие
скотомогильников и убойных площадок, убой в необорудованных местах,
захоронение трупов павших или внутренностей вынужденно убитых животных в
землю способствует заражению диких животных.
Установлено, что имеющие недостаточный иммунитет супоросные
свиноматки в случае заноса болезни в хозяйство являются основным источником
возбудителя для новорожденных, играют важную роль в его поддержании и
распространении. Данные вирусологических исследований показали, что вирус КЧС
персистирует среди поросят отъемного возраста и молодняка на доращивании.
Продажа и транспортирование
таких животных в инкубационном периоде,
очевидно, является основной причиной распространения вируса среди этих хозяйств.
Из неблагополучных хозяйств вирус КЧС выносится за 2 недели до
появления болезни в инкубационном периоде и после начала её до установления
диагноза, когда животных без ограничения вывозят на мясокомбинаты и другие
хозяйства. Реализация продуктов убоя таких свиней – главная причина
распространения чумы в современных условиях. Важное значение имеют
механические переносчики вируса – домашние и дикие животные, мухи, птицы,
обслуживающий персонал, ветеринарные специалисты (кастраторы, вакцинаторы,
осеминаторы). Описана передача вируса комарами. Примерно из 100 комаров
разных видов, отловленных в двух неблагополучных по КЧС фермах, готовили
суспензию и заражали поросят. В 8 случаях поросята заболели.
Животные заражаются чумой при совместном их содержании с больными,
при размещении свиней в инфицированных помещениях, а также при скармливании
заражённых кормов. В организм вирус проникает через пищеварительный тракт и
органы дыхания, а также через слизистую оболочку и повреждённую кожу.
Возбудитель внутри хозяйства в основном распространяется горизонтальным путём
(кормовой, водный и воздушный). Вирус передаётся аэрогенным путём, реально его
распространение между помещениями с принудительной вентиляцией, находящимся
в непосредственной близости.
Опасным путём распространения болезни является завоз латентно
инфицированных свиней, а также использование инфицированной спермы.
Наиболее важным аспектом в циркуляции вируса КЧС в природе является
трансплацентарная передача полевых и вакцинных штаммов (вертикальный путь).
Доказана трансплацентарная передача вируса КЧС в различные периоды
супоросности. Поросята длительное время после рождения остаются скрытыми
вирусоносителями и служат источником заражения. Исследования крови 1-3дневных поросят методом ПЦР показало, что в неблагополучных хозяйствах от 10 до
30% потомства рождается инфицированным вирусом КЧС. Свиноматкивирусоносители рождают клинически здоровых, но инфицированных и
7
иммунотолерантных поросят, которые выделяют вирус в больших количествах в
течение 4-6 месяцев. Все поросята с виремией в конечном счёте погибают.
Циркуляция вируса в популяции «свиноматка-плод-потомство» является основным
связующим звеном естественного кругооборота вируса.
Наличие латентных форм, возможность длительного вирусоносительства,
сходство с другими болезнями, затруднительная клиническая и лабораторная
диагностика осложняют своевременное выявление КЧС и способствует её
распространению. Этому также в значительной степени способствует оживлённые
экономические связи между хозяйствами, регионами и странами. Чума свиней может
возникнуть в любое время года. Эпизоотии чумы свиней не имеют сезонности и
периодичности. Однако чаще отмечают осенью (массовые перемещения, продажа и
убой свиней). Болезнь возникает независимо от типа (структуры) ведения
свиноводства, однако наиболее неблагополучные по КЧС оказались хозяйства с
концентрацией свиней до 10 тыс. – откормочные совхозы, подсобные хозяйства,
связанные с закупкой поросят в хозяйствах-репродукторах, и кооперативы, в
которых ветеринарно-санитарное обслуживание организовано недостаточно.
Важной особенностью современной эпизоотической ситуации является то,
что во многих случаях, особенно в небольших и индивидуальных хозяйствах,
вспышки чумы свиней провоцируют скрытое пастереллоносительство и вызывают
острое
проявление
пастереллеза.
Положение
осложняется
тем,
что
бактериологическими исследованиями довольно легко подтверждается пастереллез,
а по патологоанатомическим признакам дифференцировать эти болезни трудно.
Следует отметить, что пастереллез в хозяйствах частного сектора практически не
регистрируют. Если он подтверждён лабораторно, надо обязательно исключить
чуму. Чума свиней, как правило, провоцирует скрытое носительство пастереллеза и
вызывает клиническое проявление этой болезни в ассоциации. Для пастереллеза не
свойственна эстафетная передача возбудителя инфекции: он относится к эндогенным
инфекциям. Свиньи больные пастереллезом легко поддаются лечению
антибиотиками (особенно тетрациклинового ряда). При классической чуме нет
эффективных средств лечения. Поэтому если в подобных случаях применение
антибиотиков не даёт терапевтического эффекта, то, как правило в 100% случаев
подтверждается диагноз – классическая чума.
Важнейшие эпизоотологические данные о КЧС представлены в табл.1.
При африканской чуме свиньи болеют всех пород и возрастов, независимо от
сезона года, а также дикие африканские свиньи (бородавочники, кустарниковые,
лесные) и кабаны. Животные других видов, а также человек невосприимчивы к
вирусу. У диких африканских свиней болезнь протекает субклинически. Являясь
вирусоносителями, они могут заболевать в период случки и кормления поросят. От
8
диких свиней – вирусоносителей в естественных условия заражаются клещи, рода
Ornithodoros, чем обеспечиваются природная очаговость болезни.
Источник возбудителя – больные свиньи и вирусоносители, от которых
заражаются клещи. Из организма этих животных вирус выделяется с кровью при
носовом кровотечении, фекалиями, мочой, секретами слизистых оболочек носовой
полости, слюной, загрязняя окружающую среду.
К факторам передачи вируса относятся все объекты внешней среды,
контаминированные выделениями больных, а также обслуживающий персонал.
Особое значение как фактор передачи являются: необеззараженное мясо свиней и
мясные продукты, отходы пищевых предприятий. Переносчиками могут быть
кровососущие насекомые, грызуны, которые находились в эпизоотическом очаге.
Основные ворота инфекции алиментарный, респираторный и поврежденные
кожные покровы. АЧС проявляется в виде эпизоотий и характеризуется высокими
показателями заболеваемости, смертности и летальности (до 98-100%).
Распространение болезни по России сопровождается изменением
клинической картины заболевания и появления новых путей распространения
инфекции. Так, если в Грузии и Абхазии заболевание распространялось дикими
свиньями, то на Ставрополье, в Оренбуржье и Краснодарском крае заболевание в
первую очередь возникало на свиньях, содержащихся в мелких и индивидуальных
подсобных хозяйствах частного сектора. При этом инфекция проявилась с самой
неожиданной стороны, маскируясь под незначительное недомогание. Такое начало
заболевания сбивает с толку как опытных свиноводов, и так ветеринарных
специалистов, ожидающих от АЧС очень тяжелых клинических проявлений. Такое
течение заболевания не делает его менее опасным, поскольку заболевшие свиньи, в
конце концов, погибают, но успевают за период заболевания, которое может длиться
более месяца, заразить гораздо большее количество собратьев, чем при коротком, но
бурном клиническом течение.
Патогенез
Вирус КЧС, попав в организм свиньи, репродуцируется в лимфоидноретикулярной ткани входных ворот (миндалины и носоглотка).
Через 16-24 часа вирус проникает в регионарные лимфатические узлы. Для вируса
характерна пантропность, однако преимущественно репродуцируется и
накапливается в органах, богатых лимфоидно-ретикулярными клетками (селезёнка,
лимфатические узлы, костный мозг, печень и эндотелий кровеносных сосудов),
вызывая дистрофические и некротические изменения. В результате этого
повышается проницаемость стенок кровеносных сосудов, что приводит к
возникновению кровоизлияний, отёков и воспалительных процессов в различных
тканях и органах, а в селезёнке – инфарктов. Вирусемия сопровождается
лихорадкой, нарушением обмена веществ. В результате поражения кроветворных
9
органов развивается анемия и лейкопения, сильное угнетение опсоно-фагоцитарной
реакции и резкое снижение бактерицидности сыворотки крови. Размножаясь в
клетках иммунной системы и вызывая их разрушение, вирус сильно снижает
иммунные свойства организма, что способствует активизации условно-патогенных
микроорганизмов (пастерелл, сальмонелл). При осложнении секундарными
бактериальными инфекциями развивается пневмония и крупозно - дифтеритический
колит. Воспалительные процессы в мозговой ткани обуславливают развитие в
головном и спинном мозге периваскулярных инфильтратов, что клинически
проявляется нервными явлениями (депрессия, возбуждение, припадки). При остром
течении смерть наступает в результате морфологических поражений всех систем
организма, в особенности органов кроветворения и кровообращения.
Патогенез при африканской чуме свиней изучен недостаточно. Полагают, что
вирус, проникнув в организм, адсорбируется на клетках ретикулоэндотелиальной
системы (РЭС), исчезает из крови, размножается в пораженных клетках и за 24-48 ч.
до повышения температуры тела вновь появляется в крови, во всех органах и тканях,
где вызывает дистрофические и некротические изменения с пикнозом и рексисом
ядер клеток миелоидного ряда и лимфоцитов, а также дистрофию коллагеновых и
ретикулярных волокон. Развиваются некротические поражения стенок кровеносных
сосудов, что приводит к застою крови, тромбозу и геморрагиям в органах и тканях.
Таблица 1
Эпизоотологический метод
диагностики
видовая и возрастная
восприимчивость
Источники и
резервуары
возбудителя
инфекции
Способ заражения и
механизм передачи
Восприимчивы только свиньи (домашние и дикие) всех пород
и возрастов
ь
Больные и переболевшие (вирусоносители) домашние или
дикие свиньи выделяют вирус с мочой, фекалиями,
истечениями из носа, глаз
Возбудитель внутри хозяйства распространяется в основном 10
горизонтальным путем. Заражение чаще-через
пищеварительный тракт, органы дыхания, реже-через
ТЕЧЕНИЕ И КЛИНИЧЕСКОЕ ПРОЯВЛЕНИЕ ПРИ КЧС
Инкубационный период в зависимости от вирулентности вируса, дозы, метода
заражения и резистентности животного длится 3-9 дней, реже 12, иногда до 20 дней.
КЧС может протекать сверхостро, остро, подостро и хронически. При сверхостром
течении (в основном в популяции неиммунных свиней) отмечают высокую
температуру (41-42ºС), угнетенное состояние, отсутствие аппетита, рвоту,
учащенное сердцебиение и дыхание, ярко-красные пятна на коже. Животные
погибают через 1-2 дня. Острое течение чаще регистрируют в начале эпизоотии.
Основные признаки: постоянный тип лихорадки до 40,5-41ºС, угнетение, отказ от
корма. Развивается гнойный конъюнктивит, появляется рвота, запор, а затем диарея
11
(фекалии иногда с примесью крови). Мочеиспускание затруднено. Одновременно с
этим общее количество лейкоцитов снижается с 8500-9000 тыс./мл (норма) до 25003000 тыс./мл, уменьшение эозинофильных и базофильных гранулоцитов, снижаются
тромбоциты с 500-550 тыс./мл (в норме) до 100 тыс./мл. Супоросные свиньи
абортируют, часто возникает слизисто-гнойный ринит, а у отдельных животных –
носовое кровотечение. На коже внутренних поверхностей бёдер, живота, шеи и
основании ушных раковин появляются пустулы, заполненные желтоватым
экссудатом, а позже – точечные кровоизлияния, которые в дальнейшем сливаются и
образуют темно-багровые пятна, не исчезающие при надавливании. В результате
сердечной недостаточности кожа пяточка, ушных раковин, живота и конечностей
приобретает синюшную окраску. Перед гибелью температура снижается до 35-36ºС..
Животные погибают на 7-10 день. Подострое течение длится до 3 недель и
проявляется преимущественно поражением органов дыхания. У животных
наблюдают затрудненное дыхание, кашель, слизистогнойное истечение из носа. При
осложнении чумы сальмонеллезом местом локализации вторичных поражений
является ЖКТ. Запор сменяется поносами со зловонным запахом и примесью слизи,
а иногда крови. Свиньи худеют, ослабевают, передвигаются с трудом, и болезнь
заканчивается гибелью, реже приобретает хроническое течение.
Хроническое течение продолжается до 2 месяцев и более. Клинические признаки
могут сильно варьировать в зависимости от осложнёний секундарной инфекции.
Отмечают точечные и более крупные кровоизлияния в коже ушей и живота, как
диагностический признак КЧС. Свиньи приобретают вид заморышей, полностью не
выздоравливают и остаются вирусоносителями. Летальность 30-60%.
Часто отмечаются некрозы кончиков ушей и хвоста. Температура тела повышена,
иногда повышение температуры тела не отмечают. Животные большей частью
лежат, зарывшись в подстилку.
В последнее время под влиянием различных причин болезнь протекает атипично
(более продолжительный инкубационный период, субклиническое переболевание
взрослого свинопоголовья, с нарушением функции воспроизводства, а у поросят и
подсвинков – развитие нервного синдрома без явного геморрагического диатеза).
Атипичная форма обычно проявляется у поросят-сосунов и отъемышей, имевших
материнский иммунитет или заражённых слабовирулентным вирусом серогруппы В.
Для неё характерно подострое и хроническое течение продолжительностью 2-3
недели и более. Болезнь характеризуется анорексией, конъюнктивитом,
внутрикожными кровоизлияниями, гипертермией. Одни животные выздоравливают,
а у других болезнь осложняется вторичной бактериальной инфекцией,
заканчивающейся гибелью животного либо превращением их в заморышей.
В хозяйствах промышленного типа, связанных с репродукцией поголовья, КЧС на
фоне вакцинации протекает, как правило, атипично и часто осложняется условно12
патогенной микрофлорой, присутствующей в пищеварительном или респираторном
тракте здоровых свиней. В основном болеют поросята в период доращивания (1-3
мес.), гибель которых может достигать 20-50%.
Показатели
Вирулентность вируса
Время заражения
Острое
Высокая
Постнатальное
Хроническое
Умеренная
Постнатальное
Латентное
Низкая
Преднатальное
Общие признаки классической чумы свиней при различных течениях болезни
показаны в табл. 2.
Таблица 2.Общие признаки классической чумы свиней при различных течениях
болезни (Van Oirshot J.T.,1994)
13
Симптомы
Виремия
Лейкопения
Иммунный ответ на
КЧС
Гибель
Патологоанатомические
изменения
Гистологические
изменения
Короткий
инкубационный
период, тяжёлая
депрессия,
высокая
лихорадка,
анорексия,
конъюнктивит,
запор,
диарея,
конвульсии,
нарушение
координации,
геморрагии
на
коже
Высокого уровня
Развивается
быстро
Нет
Через 10-20 дней
Множественные
геморрагии,
особенно
в
лимфоузлах
и
почках,
инфаркты
селезёнки
Дегенерация
эндотелиальных
клеток,
пролиферация
ретикулярных
клеток,
энцефалит
Короткий
инкубационный
период, три фазы
болезни:
1) депрессия,
лихорадка,
анорексия;
2) клиническое
улучшение;
3) обострение
болезни
Латентное
заболевание, тяжёлая
депрессия и
анорексия,
нормальная или
слегка изменившаяся
температура тела,
дерматиты,
конъюнктивит,
двигательные
нарушения
Непостоянная
Развивается
быстро, следует за
лейкоцитозом
Есть
Высокого уровня
Развивается поздно в
течение болезни
Через 1-3 мес.
Изъязвления
толстого
кишечника,
«бутоны»,
инфаркты
селезёнки
Через 2-11 мес.
Лимфоузлы
увеличены,
тимус
атрофирован
Есть
Дегенерация
Дегенерация
эндотелиальных
эндотелиальных
клеток,
клеток,
лимфоцитарное
лимфоцитарное
истощение,
истощение,
гистеоцитарная
гистеоцитарная
гиперплазия,
гиперплазия
гломерулонефриты
Патологоанатомические изменения при КЧС очень вариабельны и зависят
от течения болезни и наличия осложнений секундарной инфекцией (сальмонеллез,
пастереллез и др.), возраста животных. Наиболее типичные изменения встречаются у
14
подсвинков и взрослых животных. При остром течении (септическая форма) чума
обычно протекает без осложнения вторичной инфекцией. На краях век и углах глаз
образуются коричневые корочки. Конъюнктива, слизистые оболочки носа и рта
бледны, цианотичны. Кожа ушей, шеи, живота, внутренней стороны бедер пятнисто
или диффузно окрашена в багрово-красный цвет, видны точечно-пятнистые
кровоизлияния. Обращают внимание выраженные явления геморрагического диатеза
в различных органах. Наиболее выраженные и постоянные изменения в
лимфатических узлах (63-100%). Лимфоузлы, преимущественно головы и шеи,
набухшие, сочны, красного цвета снаружи и мраморного вида на разрезе.
Характерны точечные кровоизлияния под слизистой надгортанника. Селезенка
особенно по краям, в 36-60% случаев имеет гемаррагические инфаркты в виде
плотных черно-красных бугорков. Почки анемичны с точечными кровоизлияниями в
корковом слое и лоханке, а также в мочеточниках и мочевом пузыре. В желудке и
кишечнике катаральное или геморрагическое воспаление со множеством
кровоизлияний в фундальной части желудка и толстом кишечнике. Легкие
кровенаполнены, отечные и пятнистые. У поросят-сосунов признаки
геморрагического диатеза проявляются слабее, и патологоанатомические изменения
находят в основном в органах пищеварения и почках.
Чума, осложненная пастереллезом (грудная форма). Основные изменения
наблюдают в органах грудной полости. Устанавливают крупозно - геморрагическую
пневмонию, множественные некрозы, серозно-геморрагический или фибринозный
плеврит и перикардит, кровоизлияния на серозных покровах грудной полости, а
также на слизистой гортани и трахеи.
Чума, осложненная сальмонеллезом (кишечная форма). Болезнь протекает
преимущественно хронически и характеризуется язвенно-некротическими
процессами в пищеварительном аппарате (глотке, миндалинах, желудке и
кишечнике). Наиболее часто поражаются слепая и ободочная кишки, где находят
дифтеритические «бутоны» и язвы, реже диффузное дифтеритическое воспаление.
Резко выраженные поражения кишечника чаще отмечают у поросят - отъемышей и
подсвинков. При хроническом течение у 90% убитых и павших животных находят
ненормальное окостенение 6-8 пар ребер и появление здесь геморрагической линии,
что имеет большое диагностическое значение.
Гистологические изменения при КЧС неспецифические. В большинстве
случаев (70-90%) в ЦНС обнаруживают негнойный лимфоцитарный
энцефаломиелит. В срезах, приготовленных из лимфоузлов, сердечной мышцы и
печени, можно обнаружить присутствие ацидофильных внутриядерных телецвключений. В лимфоузлах их находят на 6-12-й день после заражения.
Вирус КЧС обладает выраженным гематотропизмом в отношении костного
мозга, содержащего большое количество бластных клеток, чем лимфоузлы и
15
селезенка. Поэтому костный мозг поражается первым. При подозрении на чуму для
уточнения диагноза несколько тяжелобольных животных убивают и исследуют
мазки из костного мозга грудной кости.
Диагностика и дифференциальный диагноз. Болезнь диагностируют на
основании анализа эпизоотологических данных, клинических признаков,
патологоанатомических изменений и результатов лабораторных исследований.
Сообщения последних лет свидетельствуют о трудности, а порой невозможности
быстрой постановки диагноза по комплексу эпизоотологических данных,
клинических признаков и патологоанатомических изменений, так как частая
вакцинация свиней против чумы создает иммунный фон, влияющий на симптомы
болезни и характер патоморфологических изменений. Правильный диагноз может
быть поставлен только лабораторными методами. Эффективность любого
диагностического метода зависит от ряда конкретных условий, в частности
необходимо учитывать биологические свойства вируса, время отбора проб и вид
используемого для исследования материала.
Для выделения вируса берут пробы крови, кусочки селезенки, миндалин,
лимфоузлов, грудной кости, почек и легких от 2-3 животных впервые 2 часа после
гибели или убоя больных в агональном состоянии.
Методы лабораторной диагностики классической чумы представлены в
таблице 3.
Таблица 3
Методы лабораторной диагностики
классической чумы свиней.
Вирусологический
Выделение вируса в
культуре
клеток
(почки поросенка РК15).
Исследование
патогистологических
срезов:
головного,
спинного и костного
мозга, лимфотических
узлов,
сердечной
мышцы, печени.
Серологический
РИФ, РНИФ,
РНФБ (реакция
нейтрализации
флюоресцирующ
их бляшек),
РНГА, РДП,
ELISA, ПЦР,
РГА, РЗГА.
Биопроба
На поросятах 2-3 мес.
возраста.
Диагноз на чуму свиней по результатам лабораторных исследований считают
установленными при получении одного из следующих показателей:
16
 Обнаружение скоплений форменных элементов крови и пролиферации
эндотелия сосудов при микроскопическом исследовании гистосрезов
головного мозга;
 Обнаружение специфического свечения цитоплазмы и ядра при
люминесцентном микроскопическом исследовании клеток;
 Положительная биопроба на неиммунных поросятах (в возрасте 2-3
мес.), зараженных фильтратом патологического материала с развитием у
них через 5-6 дней клинической картины, характерной для чумы виней и
гибели их в течении 7-10 дней.
Весьма ценным и быстрым методом ранней диагностики чумы свиней является
гематологический – резко выраженная лейкопения (2,5-3 тыс. лейкоцитов в 1 мл
крови), резкое уменьшение или исчезновение ретикулоцитов, эозинопения.
Лабораторная диагностика КЧС основывается на выявлении вирусного
антигена, специфических антител, обнаружении вирусного генома и выделении
вируса. Выделение вируса в перевиваемой линии клеток почки поросенка (РК-15) –
наиболее чувствительный и традиционный метод диагностики КЧС, поскольку он
позволяет выявить присутствие небольшого количества вирулентного вируса.
Наличие вируса в культуре определяют и его идентификацию проводят с
использованием меченных антисывороток и моноклональных антител (МФА).
Для обнаружения вирусного антигена в патологическом материале применяют
МФА. Исследуют мазки-отпечатки миндалин и других органов павших и убитых
животных, а также криосрезы тканей. Этот метод оказался быстрым и надежным для
выявления вирусного антигена и используется во многих странах.
Другим современным методом, применяемым для обнаружения вируса КЧС,
является метод полимеразной цепной реакции (ПЦР). С помощью этой реакции
вирус КЧС можно обнаружить в инфицированных культурах клеток и в материалах
от больных и павших животных, а также у вакцинированных.
Серологические методы диагностики КЧС играют важную роль, однако их
значение различно и зависит от стратегии борьбы с этим заболеванием. В странах
Западной Европы при отсутствии вакцинации обнаружение вирусоспецифических
антител служит основанием для постановки диагноза на КЧС.
В России и ряде других стран, где проводится широкомасштабная вакцинация
свиней против КЧС, определение уровня специфических антител может иметь
значение при оценке иммунного статуса животных и проведении соответствующих
мероприятий по специфической профилактике.
НПО Нарвак выпускает набор реагентов для определения антител к вирусу
классической чумы свиней иммуноферментным методом «КЧС-СЕРОТЕСТ». Набор
реагентов предназначен для выявления антител к вирусу КЧС у не вакцинированных
животных и оценки напряженности иммунитета после вакцинации.
17
Для проведения серологического мониторинга и определения напряженности
иммунитета при КЧС на основе твердофазного иммуноферментного анализа
разработан и предложен «Набор препаратов для выявления специфических антител к
вирусу КЧС не прямым методом иммуноферментного анализа на основе
рекомбинантного белка Е 2 ВКЧС»
Методы лабораторной диагностики африканской чумы представлены в
таблице 4
Методы лабораторной
диагностики африканской
чумы свиней
Вирусологический
Серологический
Биопроба
Выделение вируса в
культуре клеток (костного
мозга или лейкоцитов
свиней)-РГАд.
Цитоплазматическое
исследование на наличие
циплазмотических клеток
ИФ ИМФ ,РИФ , ПЦР
РГА, РиФ, РП, РСК,
РЗГд,РДП, ИФА,
ELISA,ПЦР.
Заражение подозрительным
материалом (кровь,
суспензия селезенки и
лимфатических узлов)
свиней вакцинированных
против классической чумы
Реакция гемадсорбции состоит в том, что зараженные вирусом африканской
чумой свиней клеток костного мозга или лейкоцитов свиней приобретают
способность адсорбировать на себе эритроциты свиней. При заражении этих культур
вирусом классической чумы свиней гемадсорбции не происходит.
При цитологическом исследовании основными изменениями в зараженных
клетках являются распад хроматина ядра клетки, появление вакуолей в цитоплазме и
образование цитоплазматических ацидофильных телец-включений, которые
выявляются после окрашивания по Гимза.
При окрашивании препаратов акредином оранжевым включения светятся зеленым
светом, что указывает на наличие в них ДНК.
18
Для проведения серологического мониторинга и определения напряженности
иммунитета при КЧС на основе твердофазного иммуноферментного анализа
разработан и предложен «Набор препаратов для выявления специфических антител к
вирусу КЧС непрямым методом иммуноферментного анализа на основе
рекомендантного Е2 ВКЧС».
Дифференциальный диагноз. Необходимо исключить африканскую чуму,
рожу, пастереллез, сальмонеллез, болезнь Ауески, вирусный гастроэнтерит,
энзоотическую пневмонию, дизентерию, листериоз, грипп, отравления.
Дифференциальная диагностика классической чумы от африканской, рожи и
пастереллеза свиней представлены в табл.5.
Дифференциальная диагностика болезней свиней.
Таблица 5
Патологоанатомические Классическая
показатели
чума
Африканская
чума
Рожа
Пастереллез
1
Геморрагический
диатез и кровоизлияния
в кожу.
Серозный
отек
в
области глотки и шеи
3
Сильно
выражены
4
-
5
-
-
Типичный
признак
-
Серозный дерматит
2
Менее
выражены
Непостоянный
признак
Непостоянный
признак
Поражены
Характерный
в только
узлы признак
и головы и шеи
Геморрагический
инфильтрат
соматических
висцеральных
лимфоузлах.
Геморрагический
лимфаденит
с
диффузным рексисом
лимфацитов
Системная гиперплазия
в
сочетании
с
геморрагической
инфильтрацией
в
лимфатических узлах
Серозный
плеврит,
перикардит, перитонит
-
Типичный
признак
Непостоянный признак
Редко
Характерный
встречается и постоянный
слабо выражен признак
-
-
Характерный
постоянный
признак
-
Типичный
признак
-
Иногда
наблюдают
Обнаруживают
большое
количество
экссудата
-
Непостоянный Характерный
признак
признак
Нормальная или слегка Характерный
увеличенная селезенка признак
-
-
19
с инфарктами
Геморрагическая
спленомегалия
с
интенсивным
кареорексисом
лимфоцитов
Крупозная пневмония
-
Серозногеморрагическая
пневмония с резким
интерстициальным
отеком легких
Серозный гепатит с резким
отеком
желчного пузыря
Постоянный
признак
-
-
-
-
Типичный
постоянный
признак
-
Типичный
постоянный
признак
-
Характерный
постоянный
признак
-
-
При эпизоотологическом методе диагностики учитывают торговые и
экономические связи со странами, неблагополучными по чуме, быстрое развитие
эпизоотий с высокой летальностью и особенно развитие эпизоотий среди животных,
привитых против классической чумы.
При африканской чуме из патоморфологических изменений следует
выделить увеличение и размягчение селезенки, полнокровие и кровоизлияние в
почках. Чаще поражаются, имея вид кровяных сгустков, портальные, почечные и
брыжеечные лимфоузлы. Сильно выражен отек интерстициальной ткани легких,
скопление в грудной полости кровянистой жидкости. Редко отмечают инфаркт
селезенки, постоянно-тотальный распад лимфоцитов и тканей лимфоидных органов.
Для
подтверждения диагноза ставят тест перекрестного иммунитета, тест
гемадсорбции, РИФ и ПЦР, а так же путем постановки биопробы на иммунных к
чуме подсвинках. Учитывают быстрое развитие эпизоотий с высокой летальностью
и особенно развитие эпизоотий среди животных, привитых против классической
чумы.
Дифференциальная диагностика классической и африканской чумы свиней
представлена в табл. 5,6.
По внешним проявлениям африканскую чуму трудно отличить от
классической чумы. Из клинических симптомов следует учитывать высокую
постоянную лихорадку в течении 3-6 дней, угнетении, нарушении гемодинамики,
посинение кожи ушей, живота, симптомы отека легких, диарея иногда с кровью,
кровянистые истечения из ротовой и носовой полостей. Болезнь заканчивается
летально в течении 2-6 дней. Клинические признаки не характерны сходны с
таковыми при классической чуме.
20
Пастереллез, как правило, не принимает характера эпизоотии, поражает
преимущественно взрослых животных. Для него характерны отек подкожной
клетчатки подчелюстного пространства, распростроняющийся на шею и глотку,
серозный
лимфаденит,
фибринозно-некротизирующая
пневмония,
слабо
выраженный геморрагический диатез. Кроме того, обнаруживают возбудителя при
бактериологическом и биологическом исследованиях. Хороший лечебный эффект
оказывают одновременное применение пастереллезной сыворотки с антибиотиками.
При остром течение пастереллеза выделенные штаммы высоко вирулентны для
лабораторных животных; штаммы же пастерелл, выделенные у животных, больных
классической чумой, осложненных пастереллезом, слабо вирулентны для белых
мышей и кроликов (последние погибают после заражения на третьей стадии и
позднее).
Сальмонеллезом болеют поросята с первых дней жизни до 5-6 месячного
возраста, особенно в период отъема. Взрослые свиньи болеют без резко выраженных
симптомов. Ведущим признаком является понос. Селезенка темно-синего цвета, с
плотной пульпой, размер ее больше нормы. При подостром течении в толстом
отделе кишечника некроз лимфатических фолликулов и дифтерическое воспаление
слизистой оболочки. Лечебное действие оказывают антибиотики. Результаты
бактериологических исследований являются также основанием для дифференциации
КЧС.
Рожей болеют свиньи в возрасте от 3-4 мес. до года. Болезнь чаще возникает в
летний период. На коже вместо кровоизлияний видны участки гиперемии (багровокрасные или темно-фиолетовые пятна), при надавливании они бледнеют. Отмечают
застойные явления кожи и во внутренних органах, увеличение селезенки,
гломерулонефрит и катаральный гастроэнтерит. Хороший терапевтический эффект
оказывают пенициллин с противорожистой сывороткой. Бактериологическое
исследование решает постановку диагноза на рожу.
Болезнь Ауески у взрослых свиней протекает легко, а у поросят сосунов
тяжело. Большинство больных погибает. Ведущим симптомом болезни является
расстройство нервной системы. Проводят вирусологические исследования и
биопробу на кроликах.
Вирусный гастроэнтерит свиней особенно тяжело протекает и наиболее
характерно клинически проявляется у поросят первых дней жизни и лактирующих
не иммунных маток при первичной его вспышке в хозяйстве. Типичные клинические
признаки у поросят – внезапная рвота (первичный признак), понижение аппетита и
быстро развивающаяся диарея. Отмечается быстрая потеря массы, цианотичность и
липкость кожных покровов, 100% падеж у поросят до 5-дневного возраста, 6-10дневном до 70%, в 11-15-дневном – 30% на 2-7-й день после проявления первых
21
клинических признаков. Для подтверждения диагноза ставят биопробу на 2-7
дневных поросятах.
Дизентерией чаще болеет молодняк свиней в возрасте 1-6 мес. Основной
клинический признак – диарея со слизью и примесью крови в фекалиях. Для
дизентерии характерно наличие геморрагического и дифтеретического колита. При
микроскопии фекалий и соскобов слизистой оболочки толстого кишечника
обнаруживают Serpulina hyodysenteriаe.
Листериоз
можно
дифференцировать
от
чумы
на
основании
эпизоотологических данных, патологоанатомических изменений и результатов
бактериологического исследований.
Грипп свиней исключаются вирусологическим исследованием материала
взятого из верхних дыхательных путей (наличие гемагглютинирующего
вируссодержащего материала в первых пассажах на КЭ, гемадсорбции в культуре
ткани, цитоплазматических включений при риноцитоскопии).
Лечение. Заболевших чумой свиней немедленно убивают, так как лечение не
разработано.
Таблица 6
Дифференциальная диагностика классической и африканской чумы свиней
Показатель
Продолжительность
инкубационного периода
Распространение болезни
Смертность
Экссудаты в полостях тела
Изменения в почках
Кровоизлияния в лоханках
почек
Язвы
в
кишечнике
(«бутоны»)
Отек легких
Изменение
лейкоцитов
количества
Иммунитет
после
переболевания
Вакцинация
вакциной
против классической чумы
Классическая чума
3-4 дня и больше
Африканская чума
От 2 до 7 дней (редко
больше)
Постепенно нарастающее
Очень быстрое
60-70%
98-100%
Обнаруживают часто
Бывают очень часто
Анемия,
точечные Цианоз, кровоизлияния под
рассеянные кровоизлияния капсулой
часто
под капсулой
напоминающие гематомы
Встречаются
лишь
при Встречаются очень часто
остром течении болезни
Встречаются при подостром Обычно отсутствуют, часто
течении
отмечаетя
диффузный
некроз слизистой оболочки
Наблюдается редко
Наблюдается часто
Отмечается лейкопения с Отмечается лейкопения с
нормальными
ядрами разрушением
ядра
лейкоцитов
лейкоцитов
Стойкий
и Отсутствует
продолжительный
Создает иммунитет
Не создает иммунитета
22
Иммунитет, специфическая профилактика. Переболевшие классической
чумой свиньи приобретают стойкий пожизненный иммунитет. В настоящее время
для активной иммунизации в большинстве стран применяют сухие вирусвакцины из
лапинизированных и культуральных аттеинуированных штаммов вируса чумы
свиней.
Иммунитет
при
классической
чуме
свиней
обусловлен
вируснейтрализующими антителами. Для профилактики болезни в нашей стране
применяют живые вакцины:
1.
сухую культуральную вирусвакцину из штамма «К» «ВГНКИ»
(Щелковский биокомбинат);
2.
сухую лапинизированную вирусвакцину из штамма «СИНЛАК»
(ВНИИЗЖ);
3.
сухую культурльную вирусвакцину из штамма «ЛК-ВНИИВВиМ»
(покровский завод); сухую куьтуральную вирусвакцину из штамма «ЛК-К»ВНИИВВиМ;
4.
сухую культуральную вирусвакцину из штамма «КС» (НАРВАК НПО)
Иммунная активность у этих препаратов различная. В настоящее время для
специфической профилактики КЧС в России в основном применяют вакцину из
штамма «ЛК-ВНИИВиМ». Иммунитет формируется на 10-14 день после
однократной прививки и у взрослых животных сохраняется не менее года.
Во ВНИИВВиМ разработана инактивированная сухая культуральная
вирусвакцина против КЧС из штамма «ЛК-К» для перорального, внутримышечного
и аэрозольного методов применения, а так же эта вакцина является единственным
эффективным средством защиты от КЧС диких кабанов в охотохозяйствах и
заповедниках.
Вакцину применяют с кормом пероральным методом для иммунизации
домашних и диких свиней в комплексе с общими противоэпизоотическими мерами в
соответствии с действующими «Инструкцией о мероприятиях по предупреждению и
ликвидации классической чумы свиней» и «Инструкцией о предупреждении и
ликвидации классической чумы диких кабанов»
Перед вакцинацией копыта очищают от остатков кормов, грязи, снега и
просушивают. За сутки перед вакцинацией свиней не кормят. Вакцинируют кабанов
дважды с интервалом 3-5 суток. Кабанам при каждой вакцинации задают по 10г
вакцины на голову, тщательно перемешивая с 1,5 - 2,0кг сухого корма (комбикорма,
зерна). Поросятам задают по 5г вакцины на голову, перемешивая с 250 – 300г сухого
корма. Образцы вакцины с нарушением целостности пакета, а также не
использованные в течение указанного срока годности подлежат уничтожению
кипячением в течение 30 минут. Обследование очагов и анализ эффективности
существующих мероприятий показали, что применение вирусвакцин не позволяет
23
ликвидировать болезнь независимо от типа применяемой вакцины. Результаты
серологического обследования хозяйств свидетельствует об отсутствие 100%
группового специфического иммунитета. Основным противоречием при этом
является вакцинация свиноматок, которые обеспечивают колостральный иммунитет
у поросят. Наличие специфических колостральных антител затрудняет создание
поствакцинального иммунитета.
Успех противоэпизоотических мероприятий при классической чуме свиней
зависит от создания напряженного иммунитета во всех возрастных группах стада
свиней, но особенно поросят до 2-3-месячного возраста, составляющих до 40-50%
поголовья репродукторных хозяйств. Однако практика ликвидации эпизоотических
вспышек классической чумы свиней выявила недостаточную эффективность ранее
предложенных схем многократной вакцинации поросят с 10-15-суточного возраста,
рожденных иммунными к вирусу КЧС свиноматками. Эффективная вакцинация
поросят, имеющих естественно или искусственно пассивно-приобретенные
вируснейтрализующие антитела, представляют собой сложную проблему. Схемы
вакцинации разрабатывают с учетом иммунологического статуса вакцинированных
свиней и эпизоотической ситуации. С целью передачи потомству материнского
иммунитета свиноматок рекомендуют вакцинировать за 20-30 дней до опороса, а
полученных от них поросят на 45 или 70 день жизни. Однако полученные данные
свидетельствуют о том, что вакцинация свиноматок против КЧС с целью создания
колострального иммунитета у их потомства является недостаточной мерой для
надежной защиты поросят в эпизоотическом очаге.
По данным В.Т. Сакович., Т.А. Савельева и др. наиболее эффективной
схемой вакцинации поросят – отъемышей является вакцинация поросят, в 20дневном возрасте и повторно в 40-дневном возрасте сухой культуральной
вирусвакциной «ЛК-ВНИИВВ и М» против КЧС. Эффективность групповой защиты
к 2-месячному возрасту поросят отъемышей привитых двукратно, составила 87,24%.
Результаты опытов показали, что применение эмульгированной культуральной
вирус вакцины « ЛК-ВНИИВВ и М» создает напряженный иммунитет против КЧС
только у 40% поросят, полученных от иммунных свиноматок. Наиболее
эффективной (94-100% защиты от КЧС) схемой иммунизации поросят, независимо
от уровня колостральных вируснейтрализующих антител к моменту вакцинации,
оказалась однократная прививка в повышенной в 20 раз дозой вирус вакцины
поросятам в течение первых 6 часов после рождения, а также двукратная прививка
поросят-сосунов от 1 до 30-суточного возраста с интервалом 20-25 суток. В
последнее время, в НПО НАРВАК разработана новая культуральная вакцина «КС»
против КЧС. Данная вакцина по безопасности и иммуногенности отвечает
требованиям МЭБ и отличается от аналогичных живых вакцин против КЧС (ЛКВНИИВВ и М) более высокой концентрацией вируса. Вакцину производят в двух
24
вариантах: концентрированная и неконцентрированная. Неконцентрированную
вакцину «КС» применяют для профилактической вакцинации свиней во всех
категориях хозяйств, благополучных по КЧС, а также для вынужденной вакцинации
свиней в небольших хозяйствах при появлении КЧС. Концентрированная вакцина
«КС» предназначена для иммунизации свиней в крупных хозяйствах
промышленного типа, неблагополучных по КЧС. Основная цель гипервакцинации
с применением вакцины «КС» состоит в прекращении циркуляции вирулентного
вируса КЧС в неблагополучных хозяйствах
путем создания максимально
выраженного иммунитета практически у всего поголовья и, в первую очередь, у
свиноматок и новорожденных поросят.
Учитывая вышеизложенные аспекты, в условиях промышленного
свиноводства, одним из путей реализации данной проблемы может быть
комплексное использование вакцины на фоне иммуномодуляторов, сочетание
которых может усилить гуморальный иммунитет. Установлен наиболее выраженный
стимулирующий эффект миксоферона при введении его через 48 часов после
иммунизации их вакциной против КЧС, то есть в продуктивную фазу синтеза
антител. Литературные данные свидетельствуют о том, что при титре
вируснейтрализующих антител в сыворотке крови 1:8 и выше животные не
реагируют на введение в организм живой вакцины против КЧС. Применение
миксоферона в значительной степени уменьшало ингибирующее влияние фонового
титра антител свыше 3 log на эффективность вакцинации. Учитывая
вышеизложенное, необходимо контролировать напряженность иммунитета против
КЧС по аналогии с таковой на птицефабриках, определяющей эффективность
вакцинации кур против Ньюкаслской болезни.
Для повышения иммуногенности сухой живой вакцины из штамма «ЛКВНИИВВ и М» и снижение возможных поствакцинальных осложнений В.В.
Жалдыбин рекомендует в качестве разбавителя вакцины использовать 30%-ый
раствор натрия тиосульфата в количестве 2 см3 препарата на одну дозу вакцины.
Общим для всех иммуномодуляторов - стимуляторов иммунной системы является
активация иммунокомпетентных клеток-макрофагов, лимфоцитов, а также
гуморальных факторов иммунной системы-комплемента, пропердина, лизоцима,
интерферона, бета - лизинов, нормальных антител. Серологическое обследование
поголовья свиней, вакцинированных против КЧС, позволяет оценивать
эффективность проведенной вакцинации. При иммунизации живыми вакцинами
ВНА в крови появляются на 7-10-й день, достигая, пика (1:128 и выше) к концу
месяца, и сохраняются на высоком уровне в течение всего периода
невосприимчивости. Вакцинацию можно считать успешной, если титр антител в РН
флюоресцирующих микробляшек, спустя 2-5 мес. после иммунизации составляет
1:20 и выше. Установлено, что при титре ВНА в РН флюоресцирующих бляшек 1:4 и
25
выше животные устойчивы к внутримышечному заражению эпизоотическим
штаммом в дозе 104 ЛД50, при титре 1:2 - переболевают и независимо от исхода
представляют опасность как вирусоносители.
Средства специфической профилактики при африканской чуме свиней
(вакцин, гипериммунных сывороток) пока не разработаны. Это объясняется тем, что
в природе циркулирует множество серологических и иммунологических типов
вируса. Аттенуированные штаммы вируса неспособны стимулировать синтез
полноценных антител – последние не обладают вируснейтрализующими свойствами.
Профилактика классической и африканской чумы свиней.
Главное внимание обращают на охрану благополучных хозяйств от заноса
возбудителя чумы свиней. Поэтому в основе предупреждения возникновения КЧС
лежат общие профилактические меры. Для успешной профилактики классической
чумы свиней необходимо учитывать и вертикальную передачу возбудителя
инфекции, фактор скрытого вирусоносительства у животных определенных
возрастных групп, и зависимость вирусоносительства от проводимой вакцинации
животных. Большую опасность представляет перемещение клинически здоровых
свиней их хозяйств, оздоровленных от этой инфекции. Свинину от таких животных
следует реализовать на мясные изделия, подвергающиеся по технологии высокой
термической обработке. В зоне реализации такой свинины все кухонные отходы
подвергаются термической обработке. Специфическая профилактика классической
чумы свиней должна проводиться с учетом эпизоотической ситуации. Необходимо
учитывать, что применение противочумных вакцин на большом поголовье взрослых
свиней способствует формированию у определенной части животных скрытого
вирусоносительства.
Общие профилактические и специфические мероприятия при классической чуме
свиней отраженны в таблице 7.
Основу профилактики при африканской чуме свиней представляют
мероприятия, направленные на недопущение заноса вируса на территорию страны. С
этой целью анализируется эпизоотическая ситуация в странах мира, ограничивается
или запрещается ввоз в страну свинины и продуктов убоя свиней из
неблагополучных стран. Все пищевые отходы из самолётов, вагонов-ресторанов,
кораблей прибывающих из-за границ, должны быть утилизированы или
обеззаражены. Запрещается содержать свиней на территориях международных
воздушных, морских, речных путях и пограничных станциях. На свиноводческих
фермах должны соблюдаться ветеринарно-санитарные правила по охране от заноса
болезни.
Ежедневно следует проводить осмотр свинопоголовья. Содержать свиней всех
видов хозяйств в закрытом помещении, не допуская их контакта со свиньями
26
Профилактика КЧС
Общие
профилактически
е мероприятия
Комплектование ферм здоровыми животными
из благополучных по чуме хозяйств.
Таблица 7
Специфические
профилактические мероприятия
Плановая систематическая со 100%-ным охватом вакцинация свиней.
Профилактическое карантинирование вновь
поступивших животных (30 дн.).
Не допускать комплектование репродукторных ферм поголовьем из хозяйств, использующих в корм свиньям пищевые, боенские и
кухонные отходы.
а) при непосредственной
угрозе заноса вируса из
неблагополучных хоз-в.
Огораживание ферм, устройство постоянных санпропускников, изоляторов для
больных, дезбарьеров.
Обособленное размещение кормокухонь от
свинарников.
Тщательно обезвреживать пищевые и боенские отходы, используемые в корм свиньям.
б) в откормочных хозяйствах, комплектующих свинофермы
сборным поголовьем, а
так же использующих в
корм свиней пищевые
боенские и кухонные
отходы.
Регулярно проводить профилактическую
дезинфекцию, дератизацию, дезинсекцию
животноводческих помещений.
Не допускать на ферму посторонних лиц.
Знать эпизоотическую ситуацию по КЧС в
регионе, контролировать использование
свинины из хозяйств, оздоровленных от
КЧС и передвижение кормов этого вида
животных.
в) в хозяйствах, расположенных в непосредственной близости от мясоперерабатывающих
предприятий, а так же
расположенных в
зонах, где отмечались
ранее в течение последних трех лет случаи
заболевания чумой
диких свиней.
населенного пункта и дикими свиньями; исключить допуск птиц, собак, кошек
в свинарник и места складирования корма; не допускать вход посторонних на ферму;
при входе в помещение иметь оборудованное место для дезковрика. Целесообразно
27
провести ограждение фермы. При въезде на ферму иметь дезбарьер для
автотранспорта.
Корма следует закупать в районах и хозяйствах, благополучных по АЧС . Не
использовать пищевые отходы столовых, ресторанов и других пищевых блоков .
пищевые отходы личного хозяйства подвергать проварке в течении 60 минут. Для
водопоя не использовать воду открытых источников. Проводить борьбу с
грызунами, не допуская их проникновения на ферму. Трупы грызунов, собранные
после дератизации следует сжигать.
После освобождения мест содержания свиней (после завершения цикла
откорма и размещения нового поголовья) рекомендуется провести механическую
очистку помещения и профилактическую дезинфекцию с применением дезсредств,
предварительно получив консультацию ветеринарного специалиста.
В ЛПХ в случае убоя здоровой свиньи для личного употребления мяса, сала и
других продуктов, разделку туши проводить с соблюдением санитарных правил
(сбор крови в тару; боенские отходы не выбрасывать,а предварительно проваривать
не менее 60 минут). Не использовать для обработки продуктов убоя воду рек, озер и
других открытых водоемов. Продукты убоя использовать только внутри ЛПХ.
В порядке профилактических мероприятий следует проводить работу по
определению степени риска заноса АЧС в хозяйства и разрабатывать условия
защиты их.
Меры борьбы с классической чумой свиней. При подозрении на
заболевание чумой больных животных изолируют, прекращают перегруппировки
животных, неблагополучные станки дезинфицируют 2-3%-ым раствором едкого
натра, вирконом С 1:350. Одновременно вводят жесткие ограничительные меры с
целью недопущения распространения болезни. При установлении диагноза
накладывают карантин и определяют границы угрожаемой зоны. Для ликвидации
чумы свиней проводят комплекс ветеринарно-санитарных и организационных
мероприятий, исключающих возможность заражения свиней этой инфекцией.
Мероприятия по ликвидации КЧС представлены в таблице 8
Карантин с неблагополучного по чуме свиней пункта снимают через 40
дней после последнего случая падежа или убоя больных свиней, обезвреживания
мяса, полученного от их убоя, и при условии проведения всех ветеринарносанитарных мероприятий, предусмотренных инструкцией.
При отсутствии патологических изменений в туше и во внутренних
органах, решении об их использовании принимают после микробиологического
исследования на наличие сальмонелл. В случае обнаружении в мясе или во
внутренних органах сальмонелл, внутренние органы утилизируют, а туши
28
выпускают после обеззараживания проваркой или направляют на изготовление
консервов, мясных хлебов, а внутренний жир вытапливают.
Таблица 8
МЕРОПРИЯТИЯ ПО ЛИКВИДАЦИИ КЧС В
НЕБЛАГОПОЛУЧНОМ ПУНКТЕ
Карантинирова
ние хозяйства.
Запрещается
:
Перегруппировк
а свиней.
Откормочные,
подсобные и
прикухонные
хозяйства.
Убой всего
поголовья
неблагополучн
ых свинарников
на мясо без
снятия шкур
(консервы,
колбасы).
Репродукторные
и племенные
хозяйства.
Клинический
осмотр.
Термометрия.
Разделение на
2 группы.
Ввоз и вывоз
свиней.
Убой без
разрешения
ветспециалистов.
Торговля
свиньями и не
обезвреженными
продуктами.
Больные и
подозреваемые в
заражении
Ветеринарносанитарные
мероприятия.
Дезинфекция
станков,
предметов ухода
после каждого
случая выделения
больного
животного, а
затем 1 раз в 5
дней до снятия
карантина.
Здоровые
Вакцинация.
Убой на мясо
без снятия
шкур.
Биометрическое
обеззараживание
навоза, сжигание
трупов и
малоценного
инвентаря.
При отсутствии сальмонелл тушу, шпик и внутренние органы обеззараживают
путём изготовления варёных, варёно – копчёных колбасных изделий или направляют
на проварку.
Парные шкуры дезинфицируют насыщенным раствором поваренной соли с
добавлением 5% кальцинированной соды в течении 24 часов при жидкостном
коэффициенте 1:4 и температуре 17-20ºС.
Свиней привитых после чумы и имевших перед убоем повышенную
температуру, или у которых после убоя обнаружены пат изменения внутренних
органов, рассматривают как больных чумой.
29
При обнаружении в мышечной ткани дистрофических патологических
изменений, тушу и внутренние органы утилизируют.
После снятия карантина сохраняют ограничения, в частности запрещают
вывозить оставшихся свиней, продукты животного происхождения и сырье,
полученные от убоя (кроме вывоза на мясокомбинат), за пределы неблагополучного
хозяйства. По завершению откорма свиней убивают на мясокомбинате, проводят
весь комплекс закрепительных мероприятий с заключительной дезинфекцией и
снимают ограничения.
В угрожаемой зоне запрещают контакт и связи с неблагополучным
пунктом; вакцинируют всех свиней; устанавливают дезбарьеры при входе и выходе
из свинарников; строгий ветеринарно-санитарный контроль за заготовкой и вывозом
свиней, сырья, фуража; ветеринарно-просветительная работа среди населения.
Стратегия борьбы с КЧС в разных странах была и остается различной.
Одни полностью исключают вакцинацию, другие прибегают к ней в случае крайней
необходимости как к вынужденной и временной мере, третьи используют ее как
основную меру борьбы и профилактики КЧС. Меры борьбы с КЧС часто
определяются эпизоотической ситуацией и социально-экономическими факторами.
Положительный опыт борьбы с КЧС с помощью вакцинации накоплен во многих
странах.
Широкое применение таких вакцин в ряде стран, в том числе в СССР и
России, привело к существенному сокращению заболеваемости свиней КЧС,
резкому снижению экономических потерь и улучшению эпизоотической обстановки
по данному заболеванию.
Несмотря на снижение заболеваемости свиней вследствие планомерно
проводимой вакцинации, ее эффективность во многом зависит от выполнения
ветеринарно-санитарных мероприятий, направленных на ликвидацию КЧС (Т. SzentIvanii, 1984). По мнению ряда авторитетных специалистов, опыт Европы
убедительно показал, что КЧС может быть ликвидирована в отдельных
энзоотических зонах при систематическом и жестком режиме вакцинации в течение
длительного времени в сочетании со строгими полицейскими и ветеринарносанитарными мерами (C.Terpstra et al., 1986, 1987).
Широкая вакцинация в 1984-1986 гг. привела к ликвидации КЧС в Нижней
Саксонии и Рейн-Вестфалии, но оказалась недостаточной, чтобы исключить
вирусоносительство и обеспечить, в конечном счёте, ликвидацию КЧС в стране (D.
Kuttler, 1999). В Голландии в 1982-1985 гг. на фоне широкого применения
лапинизированной вакцины С в зонах интенсивного свиноводства случаи
возникновения КЧС (12 случаев из 63) наблюдали через 9-13 мес. после вакцинации.
Анализ 450 вспышек в Голландии в этот период показал, что вакцинация более
эффективна в откормочных хозяйствах, чем в репродукторных или хозяйствах
30
смешанного типа. В двух последних категориях хозяйств эффективность вакцинации
находится в обратной зависимости от их размера. По-видимому, большие хозяйства,
несмотря на вакцинацию всего поголовья, содержат достаточное количество
чувствительных к заражению свиноматок и поросят, чтобы непрерывно
поддерживать репродукцию и распространение вируса на низком уровне. Инфекция
у поросят может длиться в течение всего подсосного периода (С. Terpstra, G.
Wensvoort, 1988). Как показал международный опыт, эффективность специфической
профилактики КЧС обратно пропорциональна плотности популяции свиней в
данном регионе или численности свиней в одном хозяйстве (C. Terpstra, J. Van
Oirschot, 1989, 1999).
Опыт борьбы с КЧС в странах ЕС привел к выводу, что существующие в
мире живые вакцины против КЧС и традиционные схемы их применения «способны
защитить свиней от заболевания и гибели, но не от инфицирования» (G.Edwards.
Симпозиум МЭБ по КЧС; Англия, Бирмингем, 1998). Наиболее ярким примером
недостаточной эффективности систематической вакцинации в ликвидации КЧС по
причине высокой плотности популяции свиней явилась ситуация, которая сложилась
в Голландии в 1997-1998 гг. Аналогичные результаты в других странах Европы
послужили причиной отказаться от вакцинации в борьбе с КЧС, заменив ее убоем
всех свиней в неблагополучных и угрожаемых хозяйствах. По этой причине с 1993
по 1998г. в странах ЕС было уничтожено более 13 млн. свиней. Экономические
потери составили 5 млрд. долл. США (симпозиум МЭБ по КЧС, 1998). Подобная
стратегия борьбы с КЧС была принята в США еще с 1962 г. и позволила в 1977 г.
стать первой страной, ликвидировавшей КЧС. Кроме США в настоящее время еще
более 15 стран являются свободными от КЧС. В крупных хозяйствах
промышленного типа ликвидация КЧС с помощью средств специфической
профилактики оказалась неразрешимой задачей. Это, прежде всего, относится к
репродукторным хозяйствам и хозяйствам с замкнутым циклом. В них, несмотря на
систематическую вакцинацию и временами кажущееся клиническое благополучие,
КЧС протекает в стертой форме, поражая в основном поросят в период
доращивания.
Такое явление связано с рядом причин: генетически обусловленной
недостаточностью иммунного ответа у части вакцинированных свиней (K.Depner et
al., 1997), низкой иммунореактивностью поросят, особенно до отъемного возраста
(С. Terpstra, G.Wensvoort, 1987; G.Correa et al., 1992), подавлением вакцинального
иммунитета у поросят колостральными антителами (T. Lin et al., 1980; K.
Suvintaracorn et al., 1993).
Наиболее коварным звеном в поддержании КЧС в крупных хозяйствах
репродукторного типа, несмотря на вакцинацию, является наличие слабоиммунных
свиноматок, способных к латентному инфицированию и последующей
31
трансплацентарной передаче вируса потомству (W. Stewart, E. Carbrey, J. Kreese,
1972, 1973). Трансплацентарное инфицирование поросят может происходить на
любой стадии супоросности.
Меры борьбы с африканской чумы свиней.
Поскольку лечение и специфическая профилактика при АЧС не разработаны,
то основным является проведение комплекса ветеринарно-санитарных мероприятий.
Мировой опыт борьбы с АЧС предполагает использование трех радикальных
понятий: ранний, быстрый и тотальный, т.е. ранее распознавание и лабораторное
подтверждение болезни; быстрое наложение эффективного карантина, быстрое
уничтожение больных и дезинфекция, быстрый эффективный контроль для
предотвращения перемещения свиней, продуктов свиноводства и быстрое
устранение диких свиней.
Мероприятия в эпизоотическом очаге. На хозяйство, населенный пункт,
район, область. Край или республику, где выявлено заболевание АЧС , накладывают
карантин. Больных африканской чумой животных лечить запрещается.
В эпизоотическом очаге проводят учет и изъятие всех свиней и полученной от
них продукции в порядке, установленном «Правилами отчуждения животных и
изъятия продуктов животноводства при ликвидации очагов особо опасных болезней
животных», утвержденными постановлением Правительства Российской Федерации
от 26.05.2006г. № 310, а так же регулирование численности димких кабанов в
порядке, установленном приказом Минсельхоза России от 20.01.2009г. № 23 «Об
утверждении порядка регулирования численности объектов животного мира,
отнесенных
к объектам охоты», зарегистрированным Минюстом России
13.02.2009г., регистрационный № 3330.
Изъятых свиней подвергают убою бескровным методом (применяют
препараты килин, аделин-супер и др.). Трупы павших и убитых свиней, продукцию
животного происхождения, ветхие помещения, навоз, остатки кормов, тару,
малоценный инвентарь, деревянные полы, кормушки, перегородки, изгороди
уничтожают путем сжигания на площадках, специально отведенных для этой цели в
пределах эпизоотического очага.
При отсутствии возможности сжигания трупов свиней без вывоза за пределы
эпизоотического очага, они могут быть захоронены в соответствии с «Ветеринарносанитарными правилами сбора, утилизации и уничтожения биотехнических
отходов» утвержденным Главным государственным ветеринарным инспектором
Российский Федерации 04.12.1995г. «13-7/469, зарегистрированными Минюстом
России 05.01.1996г. Закапывание трупов следует производить на глубину не менее 2х метров. Перед захоронением вскрывают непосредственно в траншее брюшную
полость трупов животных, засыпают их хлорной известью, а затем землей. В
течении 1 года запрещается проведение земляных работ (Инструкция, 1980).
32
Наиболее простым и доступным сооружением для сжигания зараженного
навоза, остатка кормов и др. материалов в условиях фермы может служить
выкопанная траншея глубиной 75см и шириной 75-100см на высоте 40-50см от ее
дна поперек устанавливаю брусья, а сверху на них накладывают навоз, если он
сырой, то его смешивают с соломой или стружками. После их сжигания место, где
они находились и рабочий инвентарь навоза дезинфицируют. При отсутствии
возможности сжигания навоза, навозную жижу в жижесборнике смешивают с сухой
хлорной известью (содержанием хлора не менее 25%) из расчета 1,5 кг извести на
каждые 10 л навозной жижи.
После ликвидации поголовья свиней навоз, скапливающийся на
необорудованных (стихийных) навозохранилищах, посыпают с поверхности сухой
хлорной известью из расчета 0,5 кг/м2, затем перемещают в траншею, выкопанную в
непосредственной близости к навозохранилищу и закапывают на глубину не менее
2х метров.
В период карантина проводят трехкратную дезинфекцию в следующем
порядке: первую – после убоя свиней; одновременно проводят дезинсекцию,
дезакаризацию и дератизацию острыми ядами трупы грызунов собирают и сжигают;
вторую – после снятия деревянных полов, перегородок, кормушек и проведения
тщательной механической очистки. Снятый деревянный материал сжигают;
поверхность почвы помещения после снятия пола дезинфицируют; третью
(заключительную) – перед снятием карантина. Навозные стоки (сточные воды)
свиноводческих комплексов, неблагополучных по АЧС, дезинфицируют. Для этого
согласно документу «Правила проведения дезинфекции и дезинвации объектов
государственного ветеринарного надзора» (2002) навозные стоки, жидкий и
полужидкий навоз обеззараживают жидким аммиаком при его расходе 30 кг на 1 м3
массы и другими средствами.
Транспортные средства и другую технику, находящиеся в эпизоотическом
очаге, после окончания работы подвергают тщательной промывке и дезинфекции.
Для этого используют одно из средств : 1,5%-ный раствор формальдегида, 5%-ный
раствор хлорамина,5%-ный раствор теотропина,3-4%-ный раствор едкого натра,5%ный раствор гипохлорита кальция, 5%-ный осветлённый раствор хлорной извести и
другие препараты разрешённые Департаментом ветеринарии МСХ РФ для этих
целей. Указанные средства наносят на поверхности кузова, колёс, тракторных
гусениц, узлов и агрегатов из расчёта 1 л/м2 . Дезинфекцию следует проводить на
площадках с твёрдым покрытием, обеспечивающих сбор сточных вод в автономный
накопитель с последующим их обеззараживанием.
На въезде и выезде с территории неблагополучного по АЧС пункта (фермы)
оборудуют дезбарьеры для дезинфекции колёс автомобильного и другого
транспорта. Дезбарьеры длиной по зеркалу дезинфицирующего раствора должны
33
быть не менее 9-10м и по днищу 6м, глубиной 20-30см. Их заполняют 4%-ным
раствором формальдегида, 5%-ным раствором хлорной извести, 2%-ным раствором
глутарового альдегида или другими дезинфицирующими средствами, разрешёнными
для этих целей ДВ МСХ России. После прохождения транспортного средства через
дезбарьер его выдерживают на площадке отстоя не менее 20-30 мин. Дезбарьеры
можно оборудовать в отапливаемом помещении или под навесом. В последнем
случае под днищем прокладывают трубы центрального отопления для подогрева
раствора в зимнее время. Если такой возможности нет, то в этом случае строят
неотапливаемый дезбарьер, где в зимнее время для предотвращения замерзания к
растворам добавляют 10-15%-ной поваренной соли. Важным звеном в проведении
дезинфекции является обязательное выполнение контроля качества дезинфекции
,которую контролирует по тест-культуре золотистого стафилококка и культуре
возбудителя АЧС.
ГНУ ВНИИВСГЭ рекомендует для проведения дезинфекции, разработанные
отечественной фирмой “Авиаисток” (Беляков В.С. и др.) совместно с институтом
(Бутко М.П. и др.) две установки: “Аист-2М” для аэрозольной дезинфекции, и
“Аист-8У” для влажной дезинфекции. Установки сертифицированы, имеют
техпаспорта и инструкции по применению и выпускаются серийно на Софоринском
механическом заводе Московской обл. Данные установки зарекомендовали себя как
высокоэффективные и широко применяются в сельскохозяйственном производстве.
Как известно, согласно инструкции всех свиней из первой угрожаемой зоны
направляют на убой, на ближайший мясокомбинат или пункт, определённые
чрезвычайной комиссией. ВСЭ осуществляют согласно документу “Правила
ветосмотра убойных животных и ВСЭ мяса и мясных продуктов” (1988). Мясо
используют в пределах первой зоны. Там, где нет условий убоя ГНУ ВНИИВСГЭ
предлагает разработанный институтом “Убойный пункт переносной универсальный
(УППУ)”. Карантин снимают через 30 дней после убоя свиней в двух первых зонах
и осуществления мероприятий в зоне возможного заноса. После снятия карантина
устанавливают ограничения на 6 месяцев. Необходимо проводить строгие
карантинные мероприятия, предотвращающие возможный вынос инфекции за
пределы неблагополучных хозяйств. При эпизоотологической диагностики
учитывают торговые и экономические связи со странами, неблагополучных по
африканской чуме, быстрое развитие эпизоотии среди животных, привитых против
КЧС.
При возникновении африканской чумы определяют эпизоотический очаг,
первую вторую угрожаемые зоны. Мероприятия по ликвидации африканской чумы
свиней изложены в табл. 9.
34
Таблица 9
Мероприятия по ликвидации африканской чумы свиней
Эпизоотический
очаг
Уничтожение всех
свиней бескровным
методом
Трупы убитых и павших
свиней, навоз, остатки
кормов, деревянные полы,
перегородки, ветхие
помещения сжигают
первая угрожаемая
зона ( глубина 5-20
км. ) от
эпизоотического очага
Убой свиней (мясо используют
на этой территории или
выпускают после термической
обработки)
Разведение свиней через
6 месяцев после убоя
Трехкратная
дезинфекция
помещений: первая сразу после
уничтожения
животных, вторая после снятия
деревянных полов,
третья – перед снятием
карантина
Одновременно
проводят
дезинфекцию,
дезакаризацию и
дератизацию.
Вторая угрожаемая
зона (глубина 100150 км) от
эпизоотического
очага
Запрещают торговлю
на рынках свиньями и
продуктами
свиноводства
Учет всех свиней,
вакцинация против КЧС
и рожи свиней.
Запрещается
скармливание свиньям
недоваренных пищевых
отходов
Разведение свиней через
12 месяцев после
уничтожения.
В настоящее время нет специфической профилактики африканской чумы свиней.
Поэтому наиболее радикальными методами борьбы являются строгие ветеринарносанитарные мероприятия, которые должны быть направлены на уничтожение вируса
35
во внешней среде в неблагополучных хозяйствах и связанных с убоем и
уничтожением в таких хозяйствах всего свиного поголовья.
Помимо этого, нужно проводить строгие карантинные мероприятия,
предотвращающий возможный вынос инфекции за пределы неблагополучных
хозяйств.
При эпизоотологической диагностики учитывают торговые и экономические
связи со странами, неблагополучных по африканской чуме, быстрое развитие
эпизоотий с высокой летальностью и особенно развитые эпизоотии среди животных,
привитых против КЧС.
Вопросы для самопроверки
1.По каким показателям диагноз на классическую и африканскую чуму свиней
считается установленным?
2. Эпизоотологические особенности классической и африканской чумы свиней.
3. Опишите клинические признаки классической и африканской чумы свиней.
4. Какие мероприятия проводят в отношении второго звена эпизоотической цепи?
5. От каких болезней и на основании, каких данных нужно дифференцировать
классическую чуму свиней?
6. Как провести дифференциальную диагностику классической чумы свиней от
африканской чумы свиней?
7. Какие патологоанатомические изменения имеют диагностическое значение при
постановке диагноза на классическую и африканскую чуму свиней?
8. Дайте сравнительную оценку диагностической ценности лабораторным методам
исследований классической и африканской чумы свиней.
9. Опишите патогенез при КЧС.
10.Какова роль серологических методов диагностики при КЧС и АЧС?
11. Какие применяют вакцины для специфической профилактике КЧС?
12. Как определить эффективность проведенной вакцинации против КЧС?
13. Роль иммуномодуляторов при вакцинации свиней против КЧС.
14. Опишите общие и специфические профилактические мероприятия при КЧС.
15. Что необходимо сделать при подозрении на заболевание чумой свиней?
16. Какие происходят изменения в крови при КЧС?
17. Какие проводят мероприятия по ликвидации классической и африканской чумы
свиней в неблагополучном пункте?
18. Дайте характеристику возбудителям КЧС и АЧС.
19. Составьте план мероприятий по ликвидации КЧС и АЧС в хозяйстве.
19. Порядок наложения и снятия карантина АЧС и КЧС.
20. Стратегия борьбы с КЧС в разных странах.
21. Какие проводят ветеринарно-санитарные и специфические мероприятия в
эпизоотическом очаге, в первой и второй угрожаемой зоне при африканской чуме
свиней?
22. Какие мероприятия необходимо проводить с целью недопущения заноса АЧС изза рубежа?
36
Библиографический список
1. Балашева В. И., Жестеров В.И. и др. Вакцины против классической чумы
свиней из штамма ЛК-К. / Ветеринария, 2001, № 4-С. 19-21.
2. Булаков И.А. Проблемы современной эволюции африканской чумы свиней //
Вестник с/х наука : 1990 №3 –с.46-55
3. Бутко М.П. Памятка о мерах профилактики АЧС в личных подсобных хозяйствах
(ЛПХ) граждан “Проблемы ветеринарной санитарии , гигиены и экологии, 2011,
№1(5), с.83-84
4. Вишняков И.Ф. и др. Совершенствование лабораторной диагностики
классической чумы свиней. / Ветеринария, 1992, № 6-С. 28-29.
5. Груздев К.Н. , Пономарёв А.Б., Иванов А.В., Белоусов В.И.Панышева О.В.,
Павелко В.И., “Португалия и Испания семнадцать лет назад победили АЧС. А мы?
” -2011-№3-с. 16-18
6. Груздев К.Н. Опыт ликвидации АЧС в Португалии “ Ветеринарный врач” .
Научно-производственный журнал .- 2011- №6 – с.8-10
7. Жалдыбин В.В. Иммуногенез у свиней, вакцинированных против классической
чумы с применением иммуностимуляторов. //Автореферат дисс. кандидата вет. Ак.
наук-М., 2005, С. 17.
8. Ильков Р.П. Серологический контроль эффективности профилактических
мероприятий против классической чумы свиней. //Ветеринария, 1992, № 3-С. 25-28.
9 . Коваленко Я.Р. , Сидоров М.А., Бурба Л.Г. “Африканская чума свиней” –М.,
Колос, 1972
10. Конопаткин А.А. Классическая чума свиней. //Эпизоотология и инфекционные
болезни. М., 1993-С.432-441.
11. Крупальник В.Л., Нагасингхе сампат //Классическая чума свиней. М., 2006, С.
31.
12. Коломыцев А.А. и др. Роль супоросных маток в эпизоотическом процессе
классической чумы свиней. //Ветеринария, 1991, № 5-С. 30-33.
13. Кудрин В.В., Вишняков и др. Эпизоотологические, патогенетические и
диагностические особенности классической чумы свиней. //Ветеринария, 1993. №
12-С. 6-11.
14. Сергеев В.А., Непоклонов Е.А., Алипер Г.И. Классическая чума свиней в
промышленном свиноводстве. //Ветеринария, 2001. № 9-С. 10-15.
15. Сергеев В.А. Классическая чума свиней. Диагностика и профилактика основных
инфекционных и паразитарных болезней свиней. М., 2005-С.12-13.
16. Сидоров М.А. , Крупальник В.Л. Чума свиней //инфекционные болезни
животных. – М. , 2007 – с. 362-372.//
17. Сидоров М.А. , Африканская чума свиней // инфекционные болезни животных. –
М. , 2007 – с. 272-376.//
18. Смирнов А.М. , Бутко М.П., Гуненкова Н.К. Обеспечение ветеринарносанитарного благополучия на территории РФ “Проблема ветеринарной санитарии,
гигиены и экологии”, 2011, №1(5), с.7-11
19. Смирнов А.М., Бутко М.П. Устойчивость возбудителя и меры борьбы с
африканской чумой свиней “Ветеринарный врач”. Научно-производственный
журнал.-2011-№6-с.2-7..
37
20. Стариков А.М. Классическая чума свиней: территориальное распределение и
анализ эпизоотического процесса в Волгоградской области. //Автореферат дисс.
кандидата вет. наук - Покров, 2005, С. 26.
21. Сюрин В.Н., Самуйленко А.Я. и др. Чума свиней. Вирусные болезни животных.
М., 1998, С. 111-113.
22. Ветеринарное законодательство. //Под ред. Третьякова А.Д. М., 1988, Т.4.
Содержание
1.Историческая справка. Распространение классической и африканской чумы
свиней………………………………………………………………………2
2.Возбудители болезни………….…………………………………………4
3.Эпизоотологические особенности классической и африканской чумы
свиней…………………………………………………………………………5
4.Патогенез при классической и африканской чумы свиней……………8
5.Течение и симптомы классической и африканской чумы свиней……11
6.Патологоанатомические изменения классической и африканской чумы
свиней……………………………………………………………………..14
7.Диагноз дифференциальная диагностика классической и африканской чумы
свиней ……………………………………………………………………….15
8.Иммунитет и специфическая профилактика…….……………………....25
9. Профилактика и меры борьбы классической и африканской чумы свиней
……………………………….……………………………………………….29
10 Мероприятия по ликвидации классической чумы свиней……………32
11. Мероприятия по ликвидации африканской чумы свиней…….37
12.Вопросы для самопроверки………………………………………….…..43
13.Библиографический список………………………………………….…..44
38