ДЕЗИНФЕКТАНТ ИЛИ ПРОБИОТИК ДЛЯ ОБРАБОТКИ ИНКУБАЦИОННЫХ ЯИЦ 636.5:619

advertisement
УДК 636.5:619
ДЕЗИНФЕКТАНТ ИЛИ ПРОБИОТИК ДЛЯ ОБРАБОТКИ
ИНКУБАЦИОННЫХ ЯИЦ
С. Б. Лыско, М. В. Задорожная, А. П. Красиков
ГНУ СибНИИП Россельхозакадемии, Россия, 644555, Омская обл., Омский р-он, с. Морозовка, ул. 60 лет Победы, д. 1,
e-mail: sibniip@mail.ru
Аннотация
В статье представлены результаты опытов по применению моющего пробиотика «Органикс» для обработки инкубационных яиц.
Показано его влияние на микрофлору, эмбриогенез и постнатальное развитие цыплят.
Ключевые слова:
пробиотик «Органикс», экоцид С, дезинфекция, инкубация, яйцо, эмбрион, выводимость яиц, микрофлора,
цыплята, сохранность, живая масса
Поступило в редакцию: 11.07.2014
Опубликовано: 09.09.2014
Это произведение доступно по лицензии Creative Commons «Attribution» («Атрибуция») 4.0 Всемирная. Чтобы
увидеть копию этой лицензии, посетите http://creativecommons.org/licenses/by/4.0/.
1. Введение
Традиционно в птицеводстве для обработки инкубационных яиц применяют дезинфицирующие
средства. Дезинфекция яиц перед закладкой в инкубатор значительно уменьшает количество патогенной и
условно-патогенной микрофлоры, но часть микроорганизмов выживает в порах и подскорлупных
оболочках, другая поступает с воздухом и развивается в благоприятных условиях инкубационного шкафа
[Ковалев, 2000; Худяков, 2007; Knape, 2002]. Однако, в процессе инкубации, микрофлора неизбежно
накапливается снова, что снижает выводимость яиц, ведет к перезаражению цыплят на выводе, снижает
жизнеспособность полученного молодняка. Применение дезинфектантов, антибиотиков в период инкубации
и на выводе убивает как патогенную микрофлору, так и полезные микроорганизмы, необходимые для
нормальной жизнедеятельности цыплят. От того какая микрофлора и в каком соотношении в первые часы
жизни попадет в организм цыпленка напрямую зависит его развитие и жизнеспособность. Кроме того,
многократные обработки дезинфектантами оказывают токсическое действие на эмбрионы, вредны для
обслуживающего персонала инкубаториев и окружающей среды [Байдевлятов и др., 2002; Гусев и др., 1990].
Одним из способов решения данной проблемы является применение биологических препаратов –
пробиотиков. В состав бактериально-спорового концентрата «Органикс» входит пять семейств
непатогенных, высококонцентрированных микроорганизмов в споровом состоянии, стабилизатор спор,
моющая органическая основа, вода. Микроорганизмы, входящие в состав препарата, не убивают бактерии,
как антибиотики и дезинфектанты, а, доминируя в питании, надежно держат их размножение под
контролем, не позволяя популяции патогенных бактерий разрастаться до уровня инфекции, способной
вызывать заболевания. Препарат не вызывает резистентности патогенной микрофлоры, не оказывает
отрицательного влияния на развивающийся эмбрион, обслуживающий персонал и окружающую среду. В
исследованиях, проведенных нами ранее, показана антогонистическая активность препарата «Органикс» в
отношении патогенной и условно-патогенной микрофлоры, выделенной от птицы [Лыско, и др., 2010],
разработаны и испытаны различные схемы его применения для обработки инкубационных яиц [Лыско,
2014].
2. Цель исследования
Испытать наиболее эффективные схемы применения пробиотика «Органикс» для обработки
инкубационных яиц в сравнении с дезинфектантом.
3. Материалы и методы
Исследования проводили в лаборатории отдела ветеринарии, инкубатории и экспериментальном
птичнике ГНУ СибНИИП Россельхозакадемии. В опытах использовали инкубационные яйца кур-несушек
Открытый научный бюллетень. Вып. 3. 2014
Open Scientific Bulletin. Issue 3. 2014
www.openbull.com
мясных пород. Партии (опытная и контрольная) формировались по методу аналогов по 1000 яиц в каждой.
Проведено 2 исследования. Все инкубационные яйца перед закладкой обеззараживали аэрозольно 1%-ным
раствором экоцида С. В опытных партиях дополнительно осуществляли аэрозольные обработки 5%-ным
(1-е исследование) и 10%-ным (2-е исследование) раствором моющего пробиотика «Органикс» (из расчета
0,01 и 0,02 мл концентрата на одно инкубационное яйцо соответственно) на 7,5; 11,5 и 18,5 сутки
инкубации. Аэрозоль получали с использованием генератора холодного тумана. Для контроля микробной
обсемененности проводили бактериологическое исследование смывов со скорлупы инкубационных яиц на
наличие стафилококка и бактерий группы кишечной палочки (БГКП) с применением простых и
дифференциально-диагностических питательных сред. Количество БГКП и микроскопических грибов в
воздухе инкубаторов определяли седиментационным методом на чашки Петри с использованием сред: для
БГКП – желчный фиолетово-красный агар, для микроскопических грибов – среда Чапека. Расчеты
проводили по методу Омелянского [Костенко и др., 1989]. Влияние препарата на эмбриональное развитие
цыплят определяли по выводимости яиц с выяснением причин гибели эмбрионов, проводили
биохимическое исследование крови у суточных цыплят. Содержание общего белка, альбумина в сыворотке
крови устанавливали с помощью наборов Hospitex diagnostics на фотометре Elх800. Для изучения влияния
препарата на постнатальный онтогенез полученного молодняка учитывали сохранность в первые 10 дней
выращивания и живую массу цыплят в суточном и 7-дневном возрасте. Результаты исследований
обработаны методами математической статистики, принятыми в биологии и медицине, с использованием
программы Microsoft Excel и критериев Стьюдента.
4. Результаты исследований
В смывах с поверхности инкубационных яиц после обработки экоцидом и перед применением
препарата «Органикс» (7,5 сутки инкубации) стафилококк был выделен как в контрольной, так и в опытной
партиях в 10–20% случаях (табл. 1).
Таблица 1. Влияние препарата «Органикс» на обсемененность поверхности скорлупы инкубационных яиц стафилококками, % (n=10)
1-е исследование
2-е исследование
Период инкубации,
сутки
контрольная
опытная
контрольная
опытная
7,5
10
10
10
20
11,5
30
10
40
20
18,5
30
10
100
50*
Примечание *- Р < 0,05
В процессе инкубации отмечали увеличение количества выделенных культур стафилококка во всех
партиях, при наименьших показателях в опытных. Обработка инкубационных яиц по предлагаемой схеме
препаратом «Органикс» 5%-ной концентрации (1-е исследование) снижала содержание стафилококков в
смывах с яиц опытной партии на 11,5 и 18,5 сутки инкубации на 20% по сравнению с контрольной, при
обработки 10%-ным препаратом (2-е исследование) – на 20 и 50% соответственно. Наибольшую разницу в
показателях отмечали при применении 10% -ного препарата.
Содержание микроскопических грибов в воздухе инкубаторов опытных и контрольных партий яиц
также увеличивалось в процессе инкубации (табл. 2).
Таблица 2. Влияние препарата «Органикс » на количество микроскопических грибов в 1м3 воздуха инкубационных шкафов, КОЕ (n=5)
1-е исследование
2-е исследование
Период инкубации,
сутки
контрольная
опытная
контрольная
опытная
7,5
25
24
11
13
11,5
17
11
27
21
18,5
138
78
51
40
21
269
139
193
51*
Примечание *- Р < 0,05
2
Открытый научный бюллетень. Вып. 3. 2014
Open Scientific Bulletin. Issue 3. 2014
www.openbull.com
Количество их до обработки препаратом «Органикс» (7,5 сутки инкубации) в опытных и контрольных
партиях отличалось незначительно. После применения препарата разница между партиями увеличилась и в
1-м исследовании на 11,5, 18,5 и 21 сутки инкубации составляла соответственно 6, 60 и 76 КОЕ/м3 (35,3; 43,5
и 28,3%), во 2-м исследовании – 6; 11 и 142 КОЕ/м3 (22,2; 21,6 и 73,6%), при наименьших показателях в
опытных партиях. При применении препарата 10%-ной концентрации достоверную разницу в показателях с
контролем отмечали во 2-м исследовании на 21 сутки инкубации.
Применение препарата «Органикс» способствовало снижению БГКП в воздухе инкубаторов на
выводе в опытных партиях яиц на 21 КОЕ/м3 (84,0%) в 1-м исследовании и на 9 КОЕ/м3 (81,8%) в 2-м по
сравнению с контрольной партией.
Обработка инкубационных яиц препаратом «Органикс» не влияет на их оплодотворенность, а также
гибель эмбрионов в первую неделю инкубации (ложный неоплод, кровькольцо), так как первые обработки
были на 7,5 сутки инкубации. Потеря массы яиц во всех опытах на 7,5; 11,5 и 18,5 сутки инкубации как
опытной, так и контрольной партий яиц находилась в пределах нормы. По результатам 1-го исследования
выводимость яиц опытной партии на 2,0% выше по сравнению с контрольной за счет уменьшения замерших
и задохликов на 0,3 и 3,1% (табл. 3). Во 2-м исследовании за счет уменьшения задохликов на 2,7%
выводимость яиц опытной партии превышала контрольную на 2,2%. Вывод цыплят опытной партии за счет
более высокой оплодотворенности и выводимости яиц был выше контрольной на 2,6% в 1-м исследовании
и на 3,2% – во 2-м.
Таблица 3. Результаты инкубации при применении препарата «Органикс» для обработки инкубационных яиц, %
1-е исследование
Показатели
2-е исследование
контрольная
опытная
контрольная
опытная
Оплодотворенность яиц
87,5
88,7
88,2
89,6
Выводимость яиц
74,8
76,8
78,0
80,2
Вывод цыплят
65,5
68,1
68,7
71,9
Неоплодотворенное яйцо
12,5
11,3
11,8
10,4
Ложный неоплод
2,2
2,9
1,6
2,1
Кровяное кольцо
3,7
4,9
3,8
4,0
Замершие
1,2
0,9
1,1
1,3
Задохлики
15,0
11,9
13,0
10,3
Изучаемые биохимические показатели крови
физиологической нормы и представлены в таблице 4.
суточных
цыплят
находились
в
пределах
Таблица 4. Биохимические показатели крови суточных цыплят при применении препарата «Органикс»
для обработки инкубационных яиц (n=10)
1-е исследование
Показатели
2-е исследование
контрольная
опытная
контрольная
опытная
124,9±13,8
131,3±8,6
126,8±4,9
129,0±5,3
Протеин, г/л
26,3±1,6
26,4±1,6
21,5±2,2
25,1±3,4
Альбумин, г/л
8,6±0,8
8,4±0,4
7,9±0,5
7,3±0,7
Глобулины, г/л
17,7±2,2
18,0±1,9
13,7±2,3
17,9±3,0
Гемоглобин, г/л
Содержание гемоглобина в крови суточных цыплят в 1-м исследовании было выше в опытной партии
на 6,4 г/л (5,1%), во 2-м – на 2,2 г/л (1,7%). Содержание общего белка в сыворотке крови суточных цыплят
опытной партии 1-го исследования на 0,1г/л (0,4%) выше контроля. Во 2-м исследовании данный показатель
опытной группы на 3,6 г/л (16,6%) превосходил контроль, количество глобулинов – на 4,2 г/л (30,7%).
Живая масса суточных цыплят опытной партии 1-го исследования превышала контроль на 0,3 г
(0,7%) и составляла 44,9±0,2; – 2-го исследования – на 0,7 г (1,6%) и была 45,4±0,3. Данная тенденция
сохранилась и в возрасте 7 дней, данный показатель опытных партий превышал контроль на 3,6 г (2,5%) и
3
Открытый научный бюллетень. Вып. 3. 2014
Open Scientific Bulletin. Issue 3. 2014
www.openbull.com
3,0 г (3,0%) соответственно. Сохранность цыплят в обоих исследованиях за период 1–10 дней в контрольных
и опытных партиях составила 100%.
5. Выводы
Таким образом, для обработки инкубационных яиц наиболее эффективно применение 10%-ного
раствора пробиотика «Органикс» на 7,5, 11,5 и 18,5 сутки инкубации, что подавляет патогенную, условнопатогенную микрофлору, способствует размножению полезных микроорганизмов в процессе инкубации,
создает нормальный микробный фон, стимулирует эмбриональное развитие, повышает выводимость яиц,
позволяет получать здоровый жизнеспособный молодняк.
Литература
Байдевлятов А., Бессарабов Б., Бородай В. Дезинфектанты для инкубационных яиц // Птицеводство. 2002. № 2. С. 34–36.
Гусев А., Кулигина А., Козлова А. Дезинфекция скорлупы яиц // Птицеводство. 1990. № 1. С. 39–40.
Ковалев М.М. Совершенствование мер санации инкубационного яйца: Автореф. Дис. ... канд. вет. наук. Воронеж, 2000. 22 с.
Костенко Т.С., Скаршевская Е.И., Гительсон С.С. Практикум по ветеринарной микробиологии и иммунологии: Учеб. Пособие.
М.: Агропромиздат, 1989. 272 с.
Худяков А.А. Гигиена инкубаториев // РацВетИнформ. 2007. № 12. С. 13–14.
Лыско С., Макарова О., Рыбников А. Новое средство для обеззараживания объектов птицеводства // Птицеводство. 2010. № 6. С. 42–43.
Лыско С.Б. Альтернативный способ обработки инкубационных яиц // Птицеводство. 2014. № 5. С. 34–38.
Knape K.D., Chavez C., Burgess R.P Cortiparison of eggshell surface microbial populations for in-line and offline commercial egg processing
facilities // Poultry Sc. 2002. Vol. 81. No. 5. P. 695–698.
DISINFECTANT OR PROBIOTIC FOR PROCESSING OF
INCUBATORY EGGS
S. B. Lysko, M. V. Zadorozhnaja, A. P. Krasikov
GNU SibNIIP Rosselthoozakademii, 1, 60 let Pobedy, Morozovka, Omsk region, 644555 Russia, e-mail: sibniip@mail.ru
Abstract
Results of experiences on application of a washing probiotic of "Organiks" are presented in article for processing of incubatory eggs. Its
influence on microflora, embryogenesis and postnatal development of chickens is shown.
Keywords:
probiotic of “Organiks”, ecocide С, disinfection, incubation, egg, embryo, deductibility of eggs, microflora, chickens,
safety, live weight
Submitted: 11.07.2014
Published: 09.09.2014
This work is licensed under the Creative Commons Attribution 4.0 International License. To view a copy of this
license, visit http://creativecommons.org/licenses/by/4.0/.
References
Bajdevljatov A., Bessarabov B., Borodaj V. (2002) Dezinfektanty dlja inkubacionnyh jaits [Disinfectants for Incubatory Eggs] // Pticevodstvo.
2002. No. 2. pp. 34–36. (in Russian)
Gusev A., Kuligina A., Kozlova A. (1990) Dezinfekcija skorlupy jaits [Disinfection of Eggshells] // Pticevodstvo. 1990. No. 1. pp. 39–40. (in
Russian)
Kovalev M.M. (2000) Sovershenstvovanie mer sanacii inkubacionnogo jajtsa [Improvement of Environmental Sanitation of Incubating Eggs]:
Avtoref. Dis. ... kand. vet. nauk. Voronezh, 2000. 22 p. (in Russian)
Kostenko T.S., Skarshevskaja E.I., Gitel'son S.S. (1989) Praktikum po veterinarnoj mikrobiologii i immunologii [Practicum on Veterinary
Microbiology and Immunology]: Ucheb. Posobie. M.: Agropromizdat, 1989. 272 p. (in Russian)
Hudjakov A.A. (2007) Gigiena inkubatoriev [Hygiene of Hatcheries] // RacVetInform. 2007. No. 12. pp. 13–14. (in Russian)
Lysko S., Makarova O., Rybnikov A. (2014) Novoe sredstvo dlja obezzarazhivanija ob’ektov pticevodstva [New Facility for the
Decontamination of Poultry Facilities] // Pticevodstvo. 2010. No. 6. pp. 42–43. (in Russian)
Lysko S.B. (2014) Al'ternativnyj sposob obrabotki inkubacionnyh jaits [Alternative Method of Treatment Incubatory Eggs] // Pticevodstvo. 2014.
No. 5. pp. 34–38. (in Russian)
Knape K.D., Chavez C., Burgess R.P. (2002) Cortiparison of eggshell surface microbial populations for in-line and offline commercial egg
processing facilities // Poultry Sc. 2002. Vol. 81. No. 5. P. 695–698.
4
Download