Химия - Zachot

ВУЗ
Контрольная работа по
БИОХИМИИ
Выполнил: студент(ка)_________ курса
Кафедры ___________________________
____________________________________
Проверил:__________________________
____________________________________
Санкт-Петербург
2000
1. В какой мультиферментный комплекс входят следующие коферменты
тиаминпирофосфат, липоевая кислота, СоА:
б) альфа-кетоглутаратдегидрогеназный;
ж) пируватдегидрогеназной системы?
α-кетоглутаровая кислота — одно из двух кетоновых производных глутаровой
кислоты. Название «кетоглутаровая кислота» без дополнительных обозначений
обычно
означает
альфа-форму.
β-кетоглутаровая
кислота
отличается
только
положением кетонной функциональной группы и встречается гораздо реже.
Анион
α-кетоглутаровой
кислоты,
α-кетоглутарат
(также
называемый
оксоглутарат) — важное биологическое соединение. Это кетокислота, которая
образуется при дезаминировании глутамата. Альфа-кетоглутарат является одним из
соединений, образущихстя в цикле Кребса.
α-кетоглутарат
—
ключевой
продукт
Кребса,
образуется
в
результате
декарбоксилирования изоцитрата и превращается в сукцинил-CoA в альфакетоглутарат
дегидрогеназном
комплексе.
Анаплеротические
реакции
могут
пополнять цикл на данном этапе путём синтеза α-кетоглутарата трансаминированием
глутамата, или действием глутаматдегидрогеназы на глутамат.
Глутамин синтезируется из глутамата с помощью фермента глутаминсинтетазы,
которая на первой стадии образует глутамилфосфат, используя в качестве донора
фосфата АТР; глутамин образуется в результате нуклеофильного замещения фосфата
катионом аммония в глутамилфосфате, продуктами реакции являются глутамин и
неорганический фосфат.
Другой функцией альфа-кетоглутаровой кислоты является транспорт аммиака,
выделяющегося в результате катаболизма аминокислот.
Ци́кл трикарбо́новых кисло́т (цикл Кре́бса, цитра́тный цикл) — центральная часть
общего пути катаболизма, циклический биохимический аэробный процесс, в ходе
которого
происходит
превращение
двух-
и
трёхуглеродных
соединений,
образующихся как промежуточные продукты в живых организмах при распаде
углеводов, жиров и белков, до CO2. При этом освобождённый водород направляется в
цепь тканевого дыхания, где в дальнейшем окисляется до воды, принимая
непосредственное участие в синтезе универсального источника энергии — АТФ.
Цикл Кребса — это ключевой этап дыхания всех клеток, использующих
кислород, центр пересечения множества метаболических путей в организме. Кроме
значительной
энергетической
роли
циклу отводится
также
и
существенная
пластическая функция, то есть это важный источник молекул-предшественников, из
которых в ходе других биохимических превращений синтезируются такие важные для
жизнедеятельности клетки соединения как аминокислоты, углеводы, жирные кислоты
и др.
Цикл превращения лимонной кислоты в живых клетках был открыт и изучен
немецким биохимиком Хансом Кребсом, за эту работу он (совместно с Ф. Липманом)
был удостоен Нобелевской премии (1953 год).
У эукариот все реакции цикла Кребса протекают внутри митохондрий, причём
катализирующие их ферменты, кроме одного, находятся в свободном состоянии в
митохондриальном матриксе, исключение составляет сукцинатдегидрогеназа, которая
локализуется на внутренней митохондриальной мембране, встраиваясь в липидный
бислой. У прокариот реакции цикла протекают в цитоплазме.
Цикл Кребса регулируется «по механизму отрицательной обратной связи», при
наличии большого количества субстратов (ацетил-КоА, оксалоацетат), цикл активно
работает, а при избытке продуктов реакции (NADH, ATP) тормозится. Регуляция
осуществляется и при помощи гормонов, основным источником ацетил-КоА является
глюкоза,
поэтому
гормоны,
способствующие
аэробному
распаду
глюкозы,
способствуют работе цикла Кребса. Такими гормонами являются: инсулин и
адреналин. Глюкагон стимулирует синтез глюкозы и ингибирует реакции цикла
Кребса.
Как правило работа цикла Кребса не прерывается за счёт анаплеротических
реакций, которые пополняют цикл субстратами: Пируват + СО2 + АТФ =
Оксалоацетат (субстрат Цикла Кребса) + АДФ + Фн.
α-кетоглутарат — один из важнейших переносчиков аммиака в метаболических
путях. Аминогруппы от аминокислот прикрепляются к α-кетоглутарату в реакции
трансаминирования и переносятся в печень, попадая в цикл мочевины
Пируватдегидрогеназный комплекс (ПДК) — комплекс трех ферментов, который
осуществляет окислительное декарбоксилирование пирувата. Продуктами окисления
являются углекислый газ, ацетил-КоА, НАДН.Н+.
Пируватдегидрогеназный комплекс включает в себя 3 фермента, 3 кофактора
(простетическая группа, связанная с апоферментом прочно ковалентно), 2 кофермента
(простетическая группа, связанная с апоферментом непрочно нековалентно):
Е1 — пируватдегидрогеназа декарбоксилирующая.
Кофактором является активная форма витамина В1 — тиаминпирофосфат.
Е2 — дигидролипоилацетилтрансфераза.
Кофактором является витаминоподобное вещество — липоевая кислота, которая
присоединив 2 атома водорода может превращаться в дигидролипоил.
Коферментом является активная форма пантотеновой кислоты — НS-КоА, она
принимает ацетильный остаток от липоевой кислоты.
Е3 — дигидролипоилдегидрогеназа .
Кофактором является флавинадениндинуклеотид (ФАД) — активная форма
витамина В2.
Коферментом
является
активная
форма
витамина
PP
—
никотинамидадениндинуклеотид (НАД+).
«По механизму обратной связи» ингибируют работу пируватдегидрогеназного
комплекса конечные продукты окислительного декарбоксилирования — ацетил-КоА,
НАДН.Н+, а также АТФ. Увеличивает активность комплекса пируват.
Также имеется регуляция со стороны гормонов: Инсулин увеличивает активность
комплекса, глюкагон — снижает.
СН3-СО-СООН + НS-КоА + НАД+ => СО2 + СН3-СО~SKoA + НАДН.Н+
2. Каковы спектральные характеристики НАДН ₂: а) полоса поглощения
при 260 нм
г) появление полосы поглощения при 340 нм.
Спектр
поглощения
- это
NADH
суперпозиция
спектров аденина и
никотинамида
Экспериментально и путем строгих квантово-химических расчетов исследованы
водные
растворы
спектрально
никотинамидадениндинуклеотида,
значимых
аденина
и
локальных
никотинамида.
фрагментов
Показано,
что
электронный спектр поглощения бихромофора NADH может быть аппроксимирован
суперпозицией электронных спектров поглощения аденина (в области 260 нм) и
модифицированного никотинамида (в области 340 нм). Электронный спектр
изолированного бихромофора NADH рассчитан в неэмпирическом приближении.
Электронные спектры сольватированных фрагментов рассчитаны в полуэмпирическом
приближении.
Реакция, в результате которой NAD переходит в восстановленную форму
является заключительной в цикле Кребса, представляющем собой совокупность
последовательных ферментативных реакций, с помощью которых вырабатывается
основная часть энергии, необходимой для жизнедеятельности клетки. Максимумы
флуоресценции NAD и его восстановленной формы NADH лежат в одной
спектральной области, однако квантовый выход флуоресценции NADH существенно
выше, поэтому и вклад NADH в спектр автофлуоресценции биотканей существенно
больше.
Любые изменения в клеточном метаболизме могут быть выявлены из динамики
соотношения спектральных компонент дыхательной цепи NADH и FAD.
Все первичные фотопроцессы протекают с участием основного и первого
возбужденного электронных состояний, наибольший интерес представляет первый
синглет-синглетный электронный переход, определяющий флуоресцентные свойства
молекулы. В случае кофермента NADH этот переход принадлежит длинноволновой
полосе поглощения в области 340 нм.
Никотинамидадениндинуклеотид может находиться в окисленной (NAD) и
восстановленной (NADH) формах. Окисленная форма имеет спектр поглощения с
максимумом на 260 нм. При переходе в восстановленную форму появляется полоса
поглощения с максимумом на 340 нм и способность флуоресцировать. Концентрация
кофермента
дегидрогеназ
никотинамидадениндинуклеотида
физиологическим показателем.
является
важным
3. Какая аминокислота является промежуточным продуктом при биосинтезе
мочевины и расщепляется с образованием орнитина и мочевины:
в) аргинин
Основным механизмом обезвреживания аммиака в организме является биосинтез
мочевины. Последняя выводится с мочой в качестве главного конечного продукта
белкового, соответственно аминокислотного, обмена. На долю мочевины приходится
до 80–85% от всего азота мочи. Основным и, возможно, единственным местом синтеза
мочевины является печень. Впервые Г. Кребс и К. Гензеляйт в 1932 г. вывели
уравнения реакций синтеза мочевины, которые представлены в виде цикла,
получившего в литературе название орнитинового цикла мочевинообразования
Кребса. Следует указать, что в биохимии это была первая циклическая система
метаболизма, описание которой почти на 5 лет опеределило открытие Г. Кребсом
другого метаболического процесса – цикла трикарбоновых кислот (см. ранее).
Дальнейшие исследования в основном подтвердили циклический характер биосинтеза
мочевины в печени. Благодаря исследованиям Г. Коена, С. Ратнер и сотр. были
уточнены
промежуточные
этапы
и
ферментные
системы,
катализирующие
образование мочевины.
Таким образом, весь цикл мочевинообразования может быть представлен
следующим образом. На первом этапе синтезируется макроэрги-ческое соединение
карбамоилфосфат – метаболически активная форма аммиака, используемая в качестве
исходного продукта для синтеза пи-римидиновых нуклеотидов (соответственно ДНК и
РНК) и аргинина (соответственно белка и мочевины):
К настоящему времени открыты три разных пути синтеза карбамоил-фосфата de
novo, катализируемые тремя разными ферментами. Первую необратимую реакцию
катализирует регуляторный фермент – аммиакзави-симая карбамоилфосфатсинтетаза
Реакция требует затраты двух молекул АТФ, открыта в митохондриях клеток
печени и используется преимущественно для синтеза аргинина и мочевины. В этой
реакции в качестве активного стимулирующего ал-лостерического эффектора
действует N-ацетилглутамат.
Вторую,
также
необратимую,
реакцию
катализирует
глутаминзависимая
карбамоилфосфатсинтетаза
Данная реакция открыта в цитозоле клеток животных и требует наличия ионов
Mg2+. Следует указать, что благодаря включению гидролитической стадии она
используется преимущественно для синтеза пиримидиновых нуклеотидов. Фермент
широко распространен в клетках животных.
Третью обратимую реакцию катализирует карбаматкиназа
Реакция открыта у разных микроорганизмов и, возможно, используется скорее
для ресинтеза АТФ, чем для синтеза карбамоилфосфата.
На
втором
этапе
цикла
мочевинообразования
происходит
конденсация
карбамоилфосфата и орнитина с образованием цитруллина; реакцию катализирует
орнитин-карбамоилтрансфераза.
На следующей стадии цитруллин превращается в аргинин в результате двух
последовательно протекающих реакций. Первая из них, энергозави-симая,– это
конденсация цитруллина и аспарагиновой кислоты с образованием аргининосукцината
(эту
реакцию
катализирует
аргининосукцинат-синтетаза).
Аргининосукцинат
распадается в следующей реакции на аргинин и фумарат при участии другого
фермента – аргининосукцинатлиазы. На последнем этапе аргинин расщепляется на
мочевину и орнитин под действием аргиназы.
Необходимо подчеркнуть, что аргиназа содержится в печени тех животных,
которые экскретируют с мочой мочевину как основной и конечный продукт
азотистого обмена. В печени птиц, например, аргиназа отсутствует, поскольку птицы
вместо
мочевины
выделяют
мочевую
кислоту.
Орни-тиновый
цикл
мочевинообразования с учетом новых данных представлен на рис. 12.5.
Суммарная реакция синтеза мочевины без учета всех промежуточных продуктов
может быть представлена в следующем виде:
Данная реакция сопровождается снижением свободной энергии (ΔG0 = –40 кДж),
поэтому процесс всегда протекает в направлении синтеза мочевины. Следует указать,
что синтез мочевины энергетически дорого обходится организму. На синтез одной
молекулы мочевины требуется
Рис. 12.5. Орнитиновый цикл синтеза мочевины в печени.
затрата четырех высокоэнергетических фосфатных групп: две молекулы АТФ
расходуются на синтез карбамоилфосфата и одна – на образование аргининоянтарной
кислоты, при этом АТФ расщепляется на АМФ и РРi, который при гидролизе также
образует две молекулы Рi.
Из приведенной схемы процесса мочевинообразования нетрудно видеть, что один
из атомов азота мочевины имеет своим источником свободный аммиак (через
карбамоилфосфат); второй атом азота поступает из ас-партата. Аммиак образуется
главным образом в процессе глутаматде-гидрогеназной реакции. В процессе
пополнения запасов аспартата участвуют три сопряженные реакции: сначала фумарат
под действием фумаразы присоединяет воду и превращается в малат, который
окисляется
при
участии
малатдегидрогеназы
с
образованием
оксалоацетата;
последний в реакции трансаминирования с глутаматом вновь образует аспартат.
Учитывая известные фактические данные о механизмах обезвреживания аммиака
в организме, можно сделать следующее заключение. Часть аммиака используется на
биосинтез аминокислот путем восстановительного аминирования α-кетокислот по
механизму реакции трансаминирования. Аммиак связывается при биосинтезе
глутамина и аспарагина. Некоторое количество аммиака выводится с мочой в виде
аммонийных солей. В форме креатинина, который образуется из креатина и
креатинфосфата, выделяется из организма значительная часть азота аминокислот.
Наибольшее количество аммиака расходуется на синтез мочевины, которая выводится
с мочой в качестве главного конечного продукта белкового обмена в организме
человека и животных. Подсчитано, что в состоянии азотистого равновесия организм
взрослого здорового человека потребляет и соответственно выделяет примерно 15 г
азота в сутки; из экскретируемого с мочой количества азота на долю мочевины
приходится около 85%, креатинина – около 5%, аммонийных солей – 3%, мочевой
кислоты – 1% и на другие формы – около 6%.
В процессе эволюции живые организмы выработали различные типы азотистого
обмена. Это аммониотелический тип, при котором главным конечным продуктом
азотистого обмена является аммиак; он свойствен преимущественно рыбам. При
уреотелическом типе обмена основным конечным продуктом обмена белков является
мочевина; такой тип характерен для человека и животных. Урикотелический тип
характерен для птиц и рептилий; главным конечным продуктом данного типа обмена
является мочевая кислота.
4. Какие компоненты и факторы необходимы для осуществления инициации
полипептидной цепи: ...
Ответ: б) мРНК, N-формилметионил-тРНК, инициирующий кодон в мРНК
(АУГ), 30S-рибосомная субчастица, 50S-рибосомная субчастица, ГТФ, ион
магния, факторы инициации.
В ходе синтеза белка прочтение информации мРНК идёт в направлении от 5'- к З'концу, обеспечивая синтез пептида от N- к С-концу.
Каждая эукариотическая мРНК кодирует строение только одной полипептидной
цепи (т.е. она моноцистронна), в отличие от прокариотических мРНК, которые часто
содержат информацию о нескольких пептидах (т.е. они поли-цистронны). Эти
различия вызваны тем, что у прокариотов ДНК лишена интронов, и РНК-полимераза
транскрибирует участки, прочтение информации с которых подчиняется общему
регуляторному механизму. Кроме того, на полицистронных мРНК синтез белка
начинается до того, как заканчивается их собственный синтез, так как процессы
транскрипции и трансляции не разделены. У эукариотов трансляция протекает в
цитоплазме, куда из ядра поступают уже "зрелые" мРНК.
События на рибосоме включают этапы: инициации, элонгации и терминации.
1. Инициация
Инициация трансляции представляет собой событие, в ходе которого происходит
образование комплекса, включающего Мет-тРНКiМет, мРНК и рибосому, где тРНКiМет инициирующая метиониновая тРНК (рис. 4-37). В этом процессе участвуют не менее
10 факторов инициации, которые обозначают как elF (от англ. eukaryotic initiation
factors) с указанием номера и буквы. Первоначально 40S субъединица рибосомы
соединяется с фактором инициации, который препятствует ее связыванию с 60S
субъединицей, но стимулирует объединение с тройным комплексом, включающим
Мет-тРНКiМет, eIF-2 и ГТФ. Затем этот теперь уже более сложный комплекс
связывается с 5'-концом мРНК при участии нескольких elF. Один из факторов
инициации (eIF-4F) узнаёт и присоединяется к участку "кэп" на молекуле мРНК,
поэтому он получил название кэпсвязывающе-го белка. Прикрепившись к мРНК, 40S
субъединица начинает скользить по некодирующей части мРНК до тех пор, пока не
достигнет
инициирующего
кодона
AUG
кодирующей
нуклеотидной
последовательности. Скольжение 40S субъединицы по мРНК сопровождается
гидролизом АТФ, энергия которого затрачивается на преодоление участков
спирализации
в нетранслируемой
части
мРНК.
В эукариотических
клетках
некодирующие участки мРНК имеют разную длину, но обычно от 40 до 80
нуклеотидов, хотя встречаются области с протяжённостью более 700 нуклеотидов.
Достигнув начала кодирующей последовательности мРНК, 40S субъединица
останавливается и связывается с другими факторами инициации, ускоряющими
присоединение 60S субъединицы и образование 80S рибосомы за счёт гидролиза ГТФ
до ГДФ и неорганического фосфата. При этом формируются А- и Р-центры рибосомы,
причём в Р-центре оказывается AUG-кодон мРНК с присоединённым к нему МеттРНКiМет.
В клетках есть 2 различающиеся по структуре тРНК, узнающие кодон AUG.
Инициирующий кодон узнаёт тРНКiМет, а триплеты мРНК, кодирующие включение
метионина во внутренние участки белка, прочитываются другой тЗРКМет
2. Элонгация
По завершении инициации рибосома располагается на мРНК таким образом, что в
Р-центре находится инициирующий кодон AUG с присоединённой к нему МеттРНКшМет, а в А-
Рис. 4-37. Образование инициирующего комплекса в ходе синтеза белка у
эукариотов.
Мет-тРНКМет объединяется с малой субъединицей рибосомы в форме тройного
комплекса:
Мет-тРНКМет,
elF-2
и
ГТФ.
Образовавшийся
более
сложный
четырёхкомпонентный комплекс присоединяется к 5'-концу мРНК с помощью
нескольких дополнительных факторов, и малая субъединица начинает скользить по
мРНК до тех пор, пока антикодон Мет-тРНКМет не свяжется с инициирующим
кодоном AUG. При этом в комплексе происходит изменение состава инициирующих
факторов,
и
ускоряется
присоединение
60S
субъединицы
рибосомы,
сопровождающееся гидролизом ГТФ. Мет-тРНКiМет занимает на рибосоме Р-центр.
центре - триплет, кодирующий включение первой аминокислоты синтезируемого
белка. Далее начинается самый продолжительный этап белкового синтеза - элонгация,
в ходе которого рибосома с помощью аа-тРНК последовательно "читает" мРНК в виде
триплетов нуклеоти-дов, следующих за инициирующим кодоном в направлении от 5' к
3'-концу,
наращивая
полипептидную
цепочку
за
счёт
последовательного
присоединения аминокислот.
Включение каждой аминокислоты в белок происходит в 3 стадии, в ходе которых:
 аа-тРНК
каждой входящей в белок аминокислоты связывается с А-центром
рибосомы;
 пептид
от пептидил-тРНК, находящейся в Р-центре, присоединяется к α-
NH2-гpyппe аминоацильного остатка аа-тРНК А-центра с образованием новой
пептидной связи;
 удлинённая
на
один
аминокислотный
остаток
пептидил-тРНК
перемещается из А-центра в Р-центр в результате транслокации рибосомы.
Связывание аминоацил-тРНК в А-центре. Кодон мРНК, располагающийся в Ацентре рядом с инициирующим кодоном, определяет природу аа 1тРНКaa1, которая
будет включена в А-центр. аа1тРНКaa1 взаимодействует с рибосомой в виде тройного
комплекса, состоящего из фактора элонгации EF-1, аа1тРНКaa1 и ГТФ. Комплекс
эффективно взаимодействует с рибосомой лишь в том случае, если антикодон аатРНКaa1 комплементарен и антипараллелен ко-дону мРНК в А-центре. Включение аатРНКaa1 в рибосому происходит за счёт энергии гидролиза ГТФ до ГДФ и
неорганического фосфата (рис. 4-38).
Образование пептидной связи происходит сразу же после отщепления
комплекса EF-1 и ГДФ от рибосомы. Эта стадия процесса получила название реакции
транспептидации (рис. 4-39).
В ходе этой реакции остаток метионина Мет-тРНКIМет связывается с aаминогругшой первой аминокислоты, присоединённой к тРНКaa1 и расположенной в
А-центре,
образуется
первая
пептидная
связь.
Установлено,
что
пептидилтрансферазная активность большой субъединицы рибосомы принадлежит
28S рРНК. К настоящему времени обнаружена целая группа РНК, обладающая
Рис. 4-38. Включение аа1-тРНКaa1 в рибосому.
aа1-тРНКaa1 взаимодействует с рибосомой в виде тройного комплекса, состоящего
из
фактора
элонгации
EF-1I,
аа1-тРНKaa1
и
ГТФ.
Антикодон
аа-тРНКаа1
комплементарен и антипараллелен кодону мРНК в А-центре. Связывание аа1-тРНКaa1
происходит за счёт энергии гидролиза ГТФ до ГДФ и Рi
Рис. 4-39. Реакция транспептидации.
Метионин от Мет-тРНКiМет, находящегося в Р-центре, присоединяется к α-МН2 группе аминоацильного остатка аа1-тРНКaa1 А-центра с образованием новой
пептидной связи.
свойствами ферментов. Эти каталитически активные РНК получили название
рибозимов (см. раздел 2). Полагают, что рибозимы можно считать "реликтами"
раннего периода эволюции, когда белки ещё не приобрели такого значения, как в
последующие периоды.
Транслокация - третья стадия элонгации. К рибосоме присоединяется фактор
элонгации EF-2 и за счёт энергии ГТФ продвигает рибосому по мРНК на один кодон к
3'-концу. В результате дипептидил-тРНК, которая не меняет своего положения
относительно мРНК, из А-центра перемещается в Р-центр. Свободная от метионина
тРНКiМет покидает рибосому, а в область А-центра попадает следующий кодон (рис. 440).
По завершении третьей стадии элонгации рибосома в Р-центре имеет дипептидилтРНК, а в А-центр попадает триплет, кодирующий включение
Рис. 4-40. Стадия транслокации.
К рибосоме присоединяется фактор элонгации EF-2, и за счёт энергии ГТФ
продвигает рибосому по мРНК на один кодон к 3'-концу. Пептидил-тРНК, не меняя
своего положения относительно мРНК, из А-центра перемещается в Р-центр.
в полипептидную цепь второй аминокислоты. Начинается следующий цикл
стадии элонгации, в ходе которого на рибосоме снова проходят вышеописанные
события. Повторение таких циклов по числу смысловых кодонов мРНК завершает
весь этап элонгации.
3. Терминация
Терминация трансляции наступает в том случае, когда в А-центр рибосомы
попадает один из стоп-кодонов: UAG, UAA или UGA. Для стоп-кодонов нет
соответствующих тРНК. Вместо этого к рибосоме присоединяются 2 белковых
высвобождающих фактора RF (от англ, releasingfactor) или фактора терминации.
Один
из
них
с
помощью
пептидилтрансферазного
центра
катализирует
гидролитическое отщепление синтезированного пептида от тРНК. Другой за счёт
энергии гидролиза ГТФ вызывает диссоциацию рибосомы на субъединицы (рис. 4-41).
Интересно отметить, что факторы трансляции, реализующие эффекты за счёт
гидролиза ГТФ, являются членами суперсемейства G-белков, в которое входят Gбелки, участвующие в трансдукции сигналов гормонов и других биологически
активных веществ, и Ras-белки, функционирующие как факторы роста (см. разделы
11, 15). Все G-белки связывают и гидролизуют ГТФ. Когда они связаны с ГТФ, то
активны и участвуют в соответствующих метаболических процессах, а когда в
активном центре в результате гидролиза ГТФ превращается в ГДФ, эти белки
приобретают неактивную конформацию.
Таким образом, матричная природа процесса трансляции проявляется в том, что
последовательность поступления аминоацил-тРНК в рибосому для синтеза белка
строго детерминирована мРНК, т.е. порядок расположения кодонов вдоль цепи мРНК
однозначно задаёт структуру синтезируемого белка. Рибосома сканирует цепь мРНК в
виде триплетов и последовательно отбирает из окружающей среды "нужные" аа-тРНК,
освобождая в ходе элонгации деацилированные тРНК.
Малая и большая субъединицы рибосомы в процессе трансляции выполняют
разные функции: малая субъединица присоединяет мРНК и декодирует информацию с
помощью тРНК и механизма транслокации, а большая субъединица ответственна за
образование пептидных связей.