Протокол - Бурятская государственная сельскохозяйственная
advertisement
ЗООЛОГИЯ Программа и методические указания по проведению учебной практики для студентов 1 курса технологического факультета Направление 11100.62 Зоотехния Квалификация бакалавр Улан – Удэ Издательство ФГБОУ ВПО БГСХА 2013 УДК 592 Б 759 Печатается по решению методического Совета Бурятской государственной сельскохозяйственной академии Протокол № РЕЦЕНЗЕНТ: Имескенова Э.Г. кандидат сельскохозяйственных наук, доцент Составители: Болотова Ж.Г., Ешижамсоева С.Б., Лузбаева А.Л. ЗООЛОГИЯ. Программа и методические указания по проведению учебной практики для студентов 1 курса технологического факультета, направление 111100.62 «Зоотехния»- Улан - Удэ: РИО Бурятской государственной сельскохозяйственной академии, 2013.- 50 с. Содержатся программа и методические указания к учебно-полевой практике по дисциплине «Зоология». Предназначены для студентов 1 курса технологического факультета по направлению «Зоотехния», с целью закрепления теоретических знаний по систематике, экологии беспозвоночных и позвоночных животных, получения практических навыков по определению важнейших групп, методов сбора, учета, изготовления влажных микропрепаратов и коллекций. ©Болотова Ж.Г., Ешижамсоева С.Б., Лузбаева А.Л. I. Программа учебно-полевой практики по зоологии 1. Цель и задачи практики. Учебная практика является составной частью базового фундаментального курса «Зоология» и логически завершает его прохождение, закрепляя и углубляя знания, полученные студентами на лекциях и лабораторных занятиях. Летняя полевая практика предоставляет возможность изучения на конкретных примерах адаптаций позвоночных животных к условиям среды, предоставляет возможность знакомства с группами животных, ознакомление с которыми невозможно в холодное время года в лабораторных условиях. Во время полевой практики студенты изучают животных в их естественной среде обитания и приобретают практические навыки, необходимые для экологических наблюдений и научных исследований. При этом выделяется три основных вида деятельности: экскурсии в природу, обработка материалов в лабораторных условиях и выполнение самостоятельной работы исследовательского плана по заданию преподавателя. Цель практики: закрепление и углубление теоретических знаний, полученных студентами во время занятий по дисциплине «Зоология беспозвоночных»; формирование умений и навыков по использованию основных методик исследования беспозвоночных животных. Задачи: 1. ознакомление с видовым многообразием животных, обитающих в местных условиях; 2. наблюдение за организмами в их естественной среде обитания и в лабораторных условиях; 3. изучение адаптаций беспозвоночных к конкретным условиям среды; 4. выявление закономерностей распределения животных в зависимости от среды обитания; 5. освоение основных методов обнаружения животных, сбора, обработки и хранения зоологического материала, составления коллекций; 6. приобретение навыков работы с определителями. Ожидаемые результаты. В результате прохождения учебной практики по зоологии обучающийся должен демонстрировать следующие результаты образования: знать: – основные черты строения и развития животных; – экологию и распространение животных; – основных представителей фауны животных республики. уметь: - пользоваться определителями, атласами, приборами и инструментами, необходимыми для определения; – ориентироваться в видовом составе животных республики, района, окрестностей населенного пункта «места работы»; владеть: – полевыми и лабораторными методами зоологического исследования и изучения наглядного материала по зоологии и экологии животных. – умениями по зоологии и экологии, необходимыми для специалистов в области биологии 2. Содержание практики 2.1. Вопросы, изучаемые на практике № Наименование вопросов, изучаемых на практике Форма контроля 1 Введение. Цель и задачи учебно-полевой практики, ее содержание, организация, формы и методы работы. Инструктаж по технике безопасности. Методы изучения, сбора и обработки полевого материала, комплектация звеньев и выдача индивидуальных заданий 2 Овладение методикой почвенно-зоологических исследований, установка почвенных ловушек. 3 Методы учета позвоночных. 4 Беспозвоночные и лиственного леса и луга 5 Беспозвоночные и позвоночные обитатели леса и луга. Наблюдение за суточной активностью наземных животных 6 Обитатели агроценозов. Учет напочвенной фауны, выявленной с помощью почвенных ловушек. Наблюдения за животными поселений человека (городская местность), работа над индивидуальными заданиями. 7 Определение материала, работа с литературой, работа над индивидуальными заданиями. Оформление коллекций и дневника практики. водных беспозвоночных позвоночные и обитатели Оформлени е полевого дневника ежедневно. Текущий контроль: проводится ежедневно: оценивается качество приобретаемых навыков сбора материала, правильность его фиксации и монтирования в коллекции, проверка знания латинских названий изученных таксонов. отчет по теме самостоятельной работы коллекционный материал 2.2. Индивидуальные задания: 1. Видовой состав беспозвоночных водоемов различного типа (река, пруд, болото). 2. Видовой состав и экология пиявок. 3. Водные моллюски района практики. Видовой состав, экология, значение. 4. Выявление видового состава насекомых, привлекаемых светоловушками. 5. Двукрылые района полевой практики. Видовой состав, экология, значение. 6. Деструктивные сукцессии в микробиотопах (дерево, пень, навоз, трупы животных). 7. Дневные чешуекрылые района полевой практики. Видовой состав, экология, значение. 8. Жесткокрылые района полевой практики. Видовой состав, экология, значение. 9. Жизненные формы и экологические ниши насекомых. 10. Защитные приспособления насекомых. Каталепсия. Биологическое значение. 11. Значение полиморфизма в популяциях у муравьев, тлей. 12. Изучение динамики лета на свет чешуекрылых в зависимости от абиотических факторов. 13. Изучение фауны биотопа (луг, лес, водоем). 14. Муравьи района полевой практики. Видовой состав, экология, значение, поведение. 15. Наземные моллюски района практики. Видовой состав, экология, значение. 16. Насекомые - вредители леса, огорода, поля . 17. Насекомые - санитары леса, сада, поля. 18. Насекомые-опылители. Учет насекомых-опылителей. 19. Ночные чешуекрылые. Видовой состав, экология, значение. 20. Пауки. Видовой состав, экология и значение. 21. Почвенная фауна беспозвоночных и их роль в биоценозе. 22. Ручейники района практики. Видовой состав. Поведение личинок в естественных и экспериментальных условиях. Домики ручейников. 23. Стрекозы района полевой практики. Видовой состав, экология, значение. 24. Типы окраски насекомых и биологическое значение. 25. Трофические связи в биоценозе (лес, луг, водоем). 26. Фауна птиц. 27. Наблюдения за гнездом. 28. Биотопическое распределение мелких млекопитающих. 29. Структура популяции мелких грызунов. 30. Активность земноводных. 3. Методика сбора беспозвоночных, камеральная обработка собранного материала и определение животных Методы сбора наземных беспозвоночных: ручной сбор, ловля сачком, специальные методы. Сбор вредителей по внешним и внутренним повреждениям растений. Сбор почвенных животных: метод почвенных проб. Сбор беспозвоночных из лесной подстилки. Методы сбора водных беспозвоночных: ручной сбор, ловля сачком, сбор бентоса драгой. Приемы замаривания и фиксации беспозвоночных. Правила этикетирования. Хранение объектов в консервирующих жидкостях, на ватных матрасиках. Монтирование беспозвоночных, составление и хранение коллекций. Правила пользования определителями и атласами. Приборы и инструменты, необходимые для определения. 3.1. Основные правила снаряжения (при походе в лес, на поле, болото и в др. биотопы) На экскурсиях или при одиночном походе лучше всего использовать обувь, подходящую для длительных переходов и только на низком каблуке. В пойменный биотоп рекомендуется дополнительно брать с собой резиновые сапоги. Одежда должна быть рассчитана на возможность резкой смены погоды. Наиболее удобны джинсовые брюки, рубашка с длинным рукавом, легкая куртка и непромокаемые кроссовки. Необходимо брать с собой головной убор (панаму, косынку и т.п.). Во время экскурсии для освобождения рук целесообразно переносить вещи в рюкзаке. При проведении экскурсии каждый студент обязан иметь полевой дневник, карандаш и набор герметичных емкостей для сбора животных (например, пластмассовые пузырьки из-под таблеток, спичечные коробки, пластмассовые коробки из-под фотопленок, пузырьки из-под детского питания и т.п.). 3.2. Необходимое оборудование Сачок. Представляет собой кольцо из проволоки, на которое нашита ткань (марля). В случае самостоятельного изготовления сачка проволоку лучше брать стальную, 3-5 мм в диаметре. Элементы устройства и кройка сачка представлены на рис. 1, 2, 3. Не следует пришивать мешок непосредственно к обручу. На обруч нашивается сначала неширокая полоса прочной ткани, к которой уже подвешивается мешок (ткани – бязь, марля, кисея, капроновая сетка, мельничный газ). В этом случае при протирании ткани в месте соприкосновения с обручем достаточно будет заменить ее, пришив основной мешок сачка к новой полосе. Глубина сачка должна быть в 1,15-1,25 раза больше диаметра обруча у водного сачка и в 2 раза больше у воздушных сачков. Рисунок 1 Простой сачок для ловли насекомых Также для водных сачков необходимо использовать более прочную, чем марля, ткань. В противном случае марля разорвется, и все содержимое будет потеряно. Обруч изготавливается из стальной проволоки диаметром 4 мм. В качестве рукоятки сачка можно использовать любую палку длиной не менее 1,5 м. Однако намного удобнее, легче и универсальнее рукоятка, сделанная из раздвижных элементов, например из ножки от фотоштатива. Рис. 2 Кройка сачка: воздушного (А) и водного (В). Все размеры указаны в см Рис. 3 Водный сачок Морилка представляет собой своеобразную камеру для умерщвления насекомых. В качестве морилок можно использовать любую герметичную стеклянную посуду от пузырька из-под таблеток до обычной стеклянной банки (рис. 4). На дно морилки или на ее крышку помещается ватный тампон, смоченный эфиром, этилацетатом или хлороформом. Рекомендуется также вкладывать смятые кусочки бумаги или крупные опилки, которые будут предотвращать слипание насекомых в морилке при ее транспортировке. При отсутствии эфира можно использовать бензин для зажигалок (иногда используют ацетон). Рис. 4 Различные варианты морилок В любом случае при работе с анестезирующими веществами следует быть осторожными: работы проводить на открытом воздухе или в хорошо проветриваемом помещении. Также следует помнить, что при нагревании на солнце некоторые эфиры способны самовозгораться Эксгаустер, или всасыватель. Это специальный прибор, предназначенный для сбора мелких насекомых путем их засасывания в приемную камеру. Устройство обычного эксгаустера представлено на рис. 5. Он состоит из небольшой широкогорлой баночки (на 50-100 мл), резиновой пробки и трубок. Рис.5 Эксгаустер Эксгаустер понадобится еще и для всасывания мелких насекомых из сачка, когда занимаются кошением, или при сборе прямо с почвы, цветов, листьев. Когда в баночку набирается 10-20 экз., их всех сразу пересыпают в морилку. Расправилка. Это своеобразный деревянный станок для расправления бабочек, стрекоз, прямокрылых и некоторых перепончатокрылых. Расправилка изготавливается следующим образом: берется деревянный брусок длиной 30 см (рис. 6). Рис. 6 Расправилка Вдоль него, посредине, укладывается полоса пенопласта (или древесной коры). По сторонам от этой ленты приклеивают дощечки из мягкой древесины (лучше липовой). Поверхность этих дощечек должна быть гладкой и скошенной к середине основного бруска под углом 25-30°. Ватные матрасики. Используются для коллекционирования насекомых в полевых условиях. Для их изготовления необходима бумага и вата (см. далее). Желательно делать матрасики по размерам какой-либо неглубокой коробки (например, из-под конфет), куда их затем удобно складывать. 3.3 Основные способы сбора и учета беспозвоночных Эклектор (от греч. eklégó - выбираю, собираю). Это устройство для выгонки мелких беспозвоночных из пробы почвы (рис. 7). Из куска плотного картона длиной 70-80 см сворачивают воронку так, чтобы диаметр нижнего отверстия был 10 мм, а верхнего – 300 мм. На узкую часть воронки надевают обрезанную соску, к которой легко крепится пробирка с фиксирующей жидкостью. В верхнюю часть воронки вкладывается сито с размером ячеи 1,5х1,5 мм. На это сито помещают почву. Над воронкой укрепляется лампочка для обогрева почвы сверху. Рис. 7 Термогигрофотоэклектор ( аппарат Тулгрена): а — общий вид; б — разрез ( схема): 1 — цилиндр; 2 — сетка для почвы; 3 — воронка; 4 — сосуд с фиксирующей жидкостью Беспозвоночные под действием высыхания верхних участков пробы мигрируют вниз и попадают в пузырек. При сборе беспозвоночных во время экскурсий не следует увлекаться отловом чрезмерного количества одинаковых животных (если не стоит задача отлова одного вида для специальных исследований). Обычно двух-трех экземпляров одного вида бывает достаточно (остальных можно просто пересчитать и сделать соответствующие записи в дневнике). Наиболее простым и наиболее распространенным методом отлова беспозвоночных является ручной сбор. Отлов животных производится при осмотре кормовых растений, под корой, из пней и трухи, из куч навоза, под различными предметами, лежащими на почве и т.п. В древесном ярусе удобно стряхивать насекомых на полотно. Для этого под деревом, кустом или отдельной веткой расстилают белое полотно (или полиэтилен) и стряхивают на него беспозвоночных. Отряхивание проводят до тех пор, пока насекомые не перестанут осыпаться. Для целенаправленного отлова летающих насекомых используют энтомологический (воздушный) сачок, При этом возможно осуществление относительного учета летающих насекомых на основе их вылова в единицу времени. Для оценки результатов используют следующую градацию: весьма много численный вид - за час отловлено более 100 особей; многочисленный от 10 до 99; обычный - от 1 до 9; редкий - от 0,1 до 0,9; очень редкий отловлено менее 0,09 особей в час. Эти учеты необходимо проводить на маршрутах, охватывающих сходные биотопы. Умерщвлять насекомых при этом нет необходимости. Окончательно выпускать всех пойманных на маршруте насекомых следует только после завершения учета. Укажем, что такие учеты подразумевают хорошее знание насекомых в полевых условиях (т.е. легкая идентификация вида). Если знаний для точного определения видов не хватает, лучше не проводить подобные учеты. Довольно старым методом изучения насекомых является энтомологическое кошение. Данный метод пригоден для кратковременных наблюдений: определения видового разнообразия, степени доминирования, сравнения с другими подобными стациями и т.п. Кошение следует проводить против солнца, кося перед собой, так как тень человека, упавшая на растения, вспугивает сидящих на них насекомых (они улетают или падают на землю). Однако на практике учет таким способом осуществим далеко не для всех объектов. Даже при очень тщательном обкашивании растительности улавливается всего около 1% популяции. Кроме того, необходимо проводить учеты как можно чаще, но не друг за другом, поскольку при обкашивании неизбежно нарушается распределение насекомых на растениях. В то же время обкашивание можно с успехом применять для установления видового разнообразия насекомых в различных биотопах. 3.4 Способы сбора беспозвоночных с помощью ловушек и пробных площадок Для длительных стационарных наблюдений обычно устанавливают систему ловушек. Наиболее эффективно для отлова наземных беспозвоночных (герпетобионтов) зарекомендовала себя система канавок шириной и глубиной 10-15 см, длиной от 3 до 10 м (рис. 8). Стенки таких канавок заглаживаются, на их дно вровень с ним вкапывается несколько обычных стеклянных банок или стаканов1, чаще всего с фиксирующей жидкостью. Осмотр такой ловушки целесообразно проводить утром и вечером. Таким путем можно вести не только длительные наблюдения, определяя видовой состав попавших в ловушку животных, но и возможно изучение суточной активности и сезонной динамики отдельных видов. При использовании фиксаторов частота осмотра ловушек составляет 1 раз в 10-14 дней. Можно установить и более простую почвенную ловушку (рис. 8). Таких ловушек устанавливают разное количество на один биотоп (от 10 и более, через каждые 3-5 м). такие почвенные ловушки впервые описаны и опробованы Барбером, по имени которого их иногда называют. В зависимости от целей сбора в банку заливают фиксирующую жидкость (раствор формалина, воду и т.п.), кладут приманку или насыпают немного почвы. Рис. 8. Схема установки ловчей канавки с тремя банками внутри Для сбора насекомых, ведущих сумеречный или ночной образ жизни, используют различные светоловушки. Наиболее простой способ установка источника света перед белой стеной или экраном (рис. 9). В результате на свет прилетаютразличные виды насекомых и их можно собирать непосредственно перед стеной (экраном). В средней полосе наибольший лет насекомых наблюдается до полуночи в теплые безлунные пасмурные ночи. Наилучшие места для отлова – пустыри, опушки, лесные вырубки, выгоны, поймы рек и другие открытые пространства. Хорошие результаты дает применение ламп с сильным ультрафиолетовым излучением. Для автоматического отлова насекомых, летающих днем, применяют особый тип оконных ловушек. Такие ловушки состоят из барьера (стекло, прозрачная пленка или пластик), под которым установлена ванночка с фиксирующей жидкостью. Оконные ловушки обычно устанавливают на опушке леса, вырубках (где много куч хвороста, веток и т.п.), на берегах водоемов. Желательно, чтобы барьерный материал пропускал ультрафиолетовый свет. Рис. 9 Схема устройства для лова на свет Достаточно эффективны различные ловчие пояса. Под ними собираются беспозвоночные для ночевки или зимовки. Осмотр таких ловушек следует производить еженедельно. Для учета численности насекомых на единицу площади делают осмотр нескольких пробных площадок (1 м2), подсчитывают среднее количество насекомых и пересчитывают на площадь всего поля, луга и т.п. Для учета почвенных обитателей используют метод пробным ям. На почве отмеряют квадрат 25x25 см или 50x50 см. В этом месте роется яма глубиной 30-50 см. Исследование фауны лучше всего вести по слоям: сначала снимается и изучается подстилка, затем вынимается слой почвы глубиной 10 см, затем слой до 20 см и т.д. Для выявления плотности размещения каких-либо почвенных видов достаточно сделать 10 проб на 1 га одного исследуемого биотопа. В каждой пробе определяется объем грунта (площадь пробы умножаем на глубину), затем рассчитывается средняя и сравнивается с другими стациями. Ловушки Мёрике – это пластиковые ванночки (стаканы объемом 0,3-0,5 л) с выкрашенным в ярко-жёлтый цвет дном и заполненные водой с добавлением любого средства для мытья посуды. Они эффективно привлекают мух, перепончатокрылых, мелких летающих жуков. Ловушка Малеза состоит из трех Н-образно скрепленных стенок и кровлевидного верха (рис. 10, 11). На более высокой передней стенке в верхнем углу снаружи укреплен ловчий стакан. Ловушка действует по принципу пре грады. Летающие насекомые сталкиваются с ее центральной стенкой, поднимаются вверх и концентрируются в верхнем углу ловушки, где имеется круглое отверстие, через которое насекомые попадают в полупрозрачную полиэтиленовую банку. Банка крепится посредством двух колец, изготовленных из листового алюминия толщиной 1,5–2,0 мм. Кольцо, расположенное снаружи передней стенки ловушки, имеет наконечник для насаживания на шест. Стеклянная банка с фиксатором крепится к полиэтиленовой банке с помощью стандартной полиэтиленовой крышки, снабженной соответствующим вырезом. Для изготовления ловушки используется капроновое мельничное сито 19-го и 21-го номеров. За исключением верхней части ловушка окрашивается в черный цвет, что значительно повышает уловистость. Фиксирующей жидкостью служит этиловый спирт 96%-ной концентрации. Среднесуточный рас ход спирта на одну ловушку обычно составляет около 30 мл. Рис. 10. Ловушка Малеза: - общий вид, Б ловчий стакан; 1 - передняя стенка, 2 - задняя стенка, 3 - центральная стенка, 4 - кровлевидный верх, 5 - полиэтиленовая банка, 6 -стеклянная банка, 7 - крышка, 8 - наружное кольцо, 9 внутреннее кольцо. Рис. 11 Ловушка Малеза: - ловчий стакан; 1 - передняя стенка, 2 - задняя стенка, 3 центральная стенка, 4 - кровлевидный верх, 5 - полиэтиленовая банка, 6 -стеклянная банка, 7 - крышка, 8 - наружное кольцо, 9 внутреннее кольцо. На открытом солнечном свету расход фиксатора несколько возрастает. В зависимости от продолжительности интервалов между сменой ловчих стаканов используют банки 0,2 и 0,5 л. Важную роль в повышении уловистости ловушки играет ориентация переднего конца ловушки со стаканом к свету, заднего конца к древесной и кустарниковой растительности, а также к различным хозяйственным постройкам. Фиксирующие жидкости В качестве фиксатора обычно используют раствор формалина, уксусной эссенции, спирта. Требование ко всем жидкостям: слабая испаряемость из ловушек и быстрая фиксация материала. Наиболее простым способом считается фиксация в формалине. Исходная концентрация параформалина – 40%. Для заливки в ловушки его разводят до 4%: на 1 часть параформалина берут 9 частей воды. 3.5 Обработка собранного материала в лабораторных условиях При возвращении с экскурсии необходимо сразу же произвести разборку материала. Насекомые, которых предполагается выпустить, обрабатываются в первую очередь. Их высыпают на кусок поролона и прижимают сверху стеклом или прозрачным пластиком. После консультации с преподавателем и записи в дневник информации о пойманных животных, насекомых следует вернуть в подобный экскурсионному биотоп. Остальные особи умерщвляются и оформляются в коллекцию. Не следует помещать всех животных подряд в морилку. Для сохранности некоторых групп требуются специальные методы фиксации. Опишем наиболее общие их них. Мелких беспозвоночных с мягкими покровами (коллембол) умерщвляют постепенным прибавлением слабого раствора анестезирующего вещества, затем переносят в фиксирующую жидкость. Например, дождевых червей помещают в посуду с небольшим количеством воды, в которую добавляют маленькими порциями 4%-ный раствор формалина при постоянном перемешивании. Для анестезии водных беспозвоночных (плоских червей, мшанок, круглых червей) применяют слабые растворы спирта или хлороформа. Легочных моллюсков (например, больших прудовиков) помещают в сосуд, до краев заполненный кипяченой водой и плотно закрывают крышку, в результате те погибают через несколько часов от недостатка кислорода. При этом животное не втягивается внутрь раковины, а остается расправленным. Членистоногих с мягкими покровами (гусеницы, личинки жуков, пауки) убивают погружением на 10-60 с в крутой кипяток. При этом их покровы расправляются и большинство белков денатурирует, благодаря чему сохраняется относительно естественная форма тела. Некоторые зоологи рекомендуют убивать бабочек взяв их за грудь двумя пальцами (большим и указательным) и слегка сдавив с боков (до хруста). При этом мышцы грудного отдела теряют способность сокращаться. После этого бабочку помещают в специальный конвертик, который можно поместить в морилку. Также бабочек можно умерщвлять инъекцией 1-2 капель 10%-ный раствора аммиака или этилового спирта на границе грудного и брюшного отделов. При этом необходимо помнить, что за крылья бабочек брать нельзя. Примерно такой же инъекцией умерщвляются перепончатокрылые. При оформлении коллекции необходимо определиться, в каком виде будут храниться материалы - на ватных матрасиках, в наколотом виде или в фиксирующей жидкости. В первом случае на все сборы требуется одна этикетка, включающая следующую информацию: дату, место и авторов сборов. Если за время экскурсии посещалось несколько мест, то целесообразней для каждого сбора использовать свой матрасик или использовать вариант оформления (рис. 12) Рис. 12 Ватный матрасик для временного хранения насекомых Если насекомые будут храниться в наколотом виде, то этикеткой снабжается каждый экземпляр. Накалывать насекомых необходимо в день сбора. Клопов, жуков, перепончатокрылых, тараканов, двукрылых и др. мелких насекомых можно сразу помещать в энтомологическую коробку. Бабочек, стрекоз и других насекомых с крупными крыльями снабжают этикетками и на 3-4 дня помещают в расправилки (см. выше). После сушки их также можно переносить в энтомологические коробки. Большинство водных беспозвоночных, слизней и личинок бабочек помещают в 2-4%-ный раствор формальдегида или 70%-ный раствор этилового спирта. При накалывании насекомых следует строго соблюдать следующие правила (рис. 13 – 16): 1. Необходимо следить, чтобы иголка перпендикулярно вошла в тело животного. 2. В центр груди накалываются стрекозы, прямокрылые, чешуекрылые, перепончатокрылые, двукрылые. 3. В правое надкрылье на уровне 2-3 пары ног накалываются жуки. 4. В щиток накалываются цикады, листоблошки, клопы. 5. Мелкие насекомые наклеиваются клеем БФ или ПВА на узкий конец треугольника, размерами 3x7 мм (животное помещается боком, брюшной стороной наружу) (рис. 15). Затем всю конструкцию накалывают на иголку. Можно использовать вариант наклеивания, показанный на рис. 16. При сборе моллюсков для демонстрационных коллекций не следует брать живых особей. Это позволит избежать работы по извлечению животных (особенно улиток) из раковин. В случае же крайней необходимости можно опустить улитку в кипяток, после чего тело из раковины извлекается относительно легко. Рис. 13. Этапы расправления бабочек (А). Правильно наколотое насекомое (Б) (бабочка). Рис. 14. Накалывание насекомых различных групп. А - очень мелкие виды накалываются на минуции; Б - правильно наколотая и этикетированная стрекоза; В - прямокрылые; Г- клопы; Д- мухи; Е - стрекозы; Ж перепончатокрылые; 3 - жуки: И- поямокпылые: К - бабочки. Рис. 15. Различные варианты картонных пластинок для наклеивания мелких насекомых Рис. 16. Наклеивание мелких клопов (А), жуков (Б), двукрылых (В). 3.6 Этикетирование и хранение собранных беспозвоночных Этикетка. Любое коллекционное животное необходимо снабдить этикеткой. Для наколотых насекомых этикетки заполняются тушью или простым карандашом на плотной (альбомной) бумаге. При хранении в фиксирующей жидкости этикетка оформляется на кальке. Если известно, в каких местах исследователь будет проводить сборы, можно делать сразу много этикеток с географическими указателями, в которые потом вписывается информация по биотопу (луг, пойма, смешанный лес и т.п.) и дата. Как показал опыт, наиболее удобным является автоматический карандаш с толщиной стержня около 0,5 мм. Этикетки для наколотых насекомых делаются размером 18х8 мм, для влажных препаратов 15х30 мм. Этикетка должна содержать следующую информацию: дату, точное место, биотоп и фамилию автора сбора (рис. 14). Этикетка с названием вида оформляется только на латинском языке и содержит полное название вида и фамилию автора определения. Накалывание этикеток на энтомологические булавки производится в следующем порядке: первой под насекомое подкладывается географическая этикетка, затем экологическая (при необходимости), последней – определительная, на которой указывается видовое и родовое название насекомого на латинском языке и ФИО человека, определившего экземпляр (на латыни). Между самими этикетками оставляют маленький промежуток для того, чтобы можно было прочесть текст нижних этикеток. Располагаются этикетки длинной стороной вдоль тела насекомого, а под экземплярами стрекоз, бабочек и других насекомых с расправленными крыльями – перпендикулярно к продольной оси их тела. После накалывания и этикетирования материал ставится в коллекцию (в энтомологические коробки). В случае если этикетка получается громоздкой, можно экологические данные вынести на отдельную этикетку (рис. 17 ). 25. 05. 2011. 2. 08. 2011. Посевы зерновых Сибирская Бурятия, Бурятия, культур, на листьях и кобылка Тарбагатайский р- Тарбагатайский р-н, стеблях зерновых Gomphocerus н, окр. с. Барыкино окр. с. Бар, посевы культур sibiricus Сибирская зерновых культур Gomphocerus sibiricus кобылка Сибирская кобылка Сибирская кобылка Gomphocerus Gomphocerus sibiricus sibiricus РИС. 17. Различные варианты заполнения этикеток: А - географическая; Б общая этикетка, совмещающая географические и экологические данные; В экологическая; Г- определительная. В этом случае экземпляр насекомого будет содержать 3 этикетки: географическую, экологическую и определительную. При первичной обработке материала определительную этикетку можно не накалывать, остальные помещаются в обязательном порядке. Даже очень ценный материал без этикетки теряет свою научную значимость! Рис. 18 Ватный матрасик и лист-вкладыш с этикетками При оформлении этикеток не используются закодированные обозначения и местные названия, а место сбора указывается по географической карте так, чтобы потом его можно было бы легко установить (например, для сравнения в последующие годы). При возможности лучше всего использовать географические координаты, определенные с помощью GPS-навигатора. Для хранения беспозвоночных используют различные фиксирующие жидкости. Для большинства мелких видов используют 70%-ный раствор спирта (личинки насекомых, почвенные членистоногие, моллюски, плоские черви) или 4%-ный раствор формалина (дождевые черви, нематоды и другие круглые черви). При хранении в формалине, из-за его дубильных свойств, материал со временем становится ломким, поэтому следует избегать хранения в нем членистоногих с длинными придатками. Для хранения на ватных матрасиках подходят насекомые с плотными покровами. Объекты раскладываются на слое ваты ровными рядами или группами. При этом особи, собранные в одном биотопе, должны лежать совместно. Кроме этого, следует избегать непосредственного соседства очень крупных и очень мелких форм. Если границы между группами насекомых не очевидны, следует провести их, выложив между ними темную нитку. При неправильном хранении насекомые на ватных матрасиках в первую очередь подвергаются разрушению. Поэтому после полной обработки все матрасики необходимо собрать в одну коробку, поместить ее в целый целлофановый пакет вместе со смоченной эфиром ватой и завязать на несколько часов. Аналогичным образом весь пакет можно положить в морозильную камеру холодильника на 1-3 ч. Подобные обработки для уничтожения молей и кожеедов необходимо проводить раз в полгода. Энтомологическая коробка. Обычно в коробке монтируется систематическая или тематическая коллекция насекомых. Последовательность расположения отрядов, семейств и родов лучше брать из любого определителя. Хороший эстетический эффект получается при комбинировании размеров шрифтов для указания класса, отряда и т.д. (чем выше таксон, тем крупнее шрифт). По контуру коробка промазывается любым средством от тараканов, а в угол помещается мешочек с таблеткой нафталина. 4. Методика наблюдений за позвоночными животными Основные методы зоологических исследований позвоночных животных в полевых условиях 4.1. Общие правила экскурсирования в природе Необходимые условия для успешной работы на экскурсиях – внимание и тщательная запись наблюдений. Успех экскурсии зависит от порядка движения участников, внимания и их осторожности. Число участников не должно превышать 10–12 человек. Экскурсанты, медленно двигаясь, должны соблюдать полную тишину, идти компактной группой, не растягиваясь цепочкой и не заходя вперед руководителя. Одежда имеет очень важное значение. Не следует на экскурсию одевать яркую одежду (например, красную или желтую); желательны темные тона – зеленый, серый, коричневый и др. Продолжительность экскурсии не должна составлять более 3–4 часов, т.к. длительные экскурсии утомляют внимание экскурсантов. 4.2. Формы записей и наблюдения В полевых условиях практиканты обязательно должны вести дневник наблюдений. При этом в записях необходимо строго разграничивать личные наблюдения от пояснений преподавателя, местных жителей и собственных догадок. Записи производятся по возможности немедленно, не откладывая на более поздний срок. Заметки делаются только простым карандашом и никак не чернилами. Писать необходимо обо всем и как можно подробнее, не забывая о вещах, кажущихся весьма обычными. При ведении записей обязательно указывается точная дата, время, состояние погоды, место и условия наблюдения. Существует несколько форм и систем записей: 1). Хронологический дневник В таком дневнике ежедневно указывается место, дата, характеристика погоды, маршрут экскурсии. При этом нужно хотя бы приблизительно определить длину пройденного маршрута и указать время, затраченное на переход. Последнее дает возможность составить приблизительное представление о численности того или иного животного (форма относительного учета). Подробно описываются места обитания (стации), затем идет детальное описание встречи с тем или иным видом животных (указывается вид животного). Для удобства последующей работы с дневником название животного в тексте необходимо подчеркнуть. Если возможно, отмечается пол, возраст, количество встреченных особей в стае или в стаде. Поведение животных описывается как можно подробнее. Для гнезд, нор и других убежищ указывается их местоположение, размеры, обитаемость, характер строительного материала, число молодых особей или число яиц (их размеры и окраска), возраст птенцов или иных обитателей, состояние оперения или волосяного покрова, поведение родителей и молодых, остатки пищи (количество и место). В случае, если остатки пищи или другие находки не поддаются определению на месте, то берутся с собой для лабораторного определения; при этом в дневнике указывается номер сбора. В хронологическом дневнике возможны также схематические зарисовки плана местности, сроки маршрута с указанием места встречи животных и т.д. При экскурсии на водоем, необходимо дать характеристику водоема: описание берегов и дна, прибрежной растительности, голосовой активности земноводных, температуру, течение и прозрачность воды. При ловле рыбы, надо записать какими орудиями и сколько времени производился лов, каковы его результаты. Данные по размерам рыб и их вскрытию, номера сбора чешуй и т.д. также заносят в дневник. 2) Предметно-тематический, или повидовой дневник Эта система записей сводится к тому, что данные по каждому виду животных по мере накопления фактов записываются на отдельных страницах дневника, отведенных и озаглавленных заранее. 3) Система записей на бланках или карточках Карточки изготавливаются из плотной бумаги (обычно размером 10х15см или 7х12см). На них заносятся наблюдения по каждому конкретному виду животных. При этом на каждой карточке записываются: - название животного; - дата и время наблюдения; - погода; -место наблюдения; - содержание наблюдения. Удобство карточного метода – легкость обрабатываемого материала. 4.3. Формы дополнительных записей Описание на многих страницах дневника может быть заменено простой схемой, планом, рисунком, фотографией. Схема, план, рисунок. Для полевых работ, как правило, необходим план местности или карта, которые важны, как основа биосъемки, т.е. для нанесения на неё специальных зоологических данных. Необходимо, чтобы на плане или на карте было нанесено распределение биотопов. На такую планкарту, пользуясь условными знаками, наносятся необходимые сведения: расположение гнезд, гнездовые участки, норы, логова, плотность поселения различных видов и пр. Для гнездовых участков или района нор обычно составляют отдельные крупномасштабные планы. План должен быть сориентирован по сторонам горизонта, иметь масштаб и условные обозначения. Такие планы удобнее рисовать по миллиметровой бумаге. Рисунки следов, расположение гнезд и т.д. очень хорошо дополняют описание. На рисунке обязательно указывают действительный размер объекта (в см) или степень его уменьшения или увеличения, при этом обязательно должна быть указана местность и стоять дата. Рисунки удобнее делать на отдельных листах бумаги, пронумеровав их, а также делать ссылки на данный номер рисунка в дневнике. Фотографирование. Правильно сделанный снимок – научный документ. Основное правило при съемке живой природы – максимальное сохранение естественной обстановки. Снимки должны быть подписаны (дата, название местности и т.д.). При съемке полезно около объекта расположить какойлибо предмет (например, спичечный коробок), используя его как масштаб. 4.4. Методы наблюдения При изучении животных в природе пользуются методом прямых наблюдений над ними и методом изучения животных по следам их жизнедеятельности. Прямые наблюдения осуществляются на экскурсии или во время подкарауливания, из укромного места. Маршрут экскурсии заранее намечается и продумывается. Должны быть учтены особенности образа жизни, поведения животных в зависимости от сезона, времени дня, погоды. Во время экскурсии от наблюдателя требуется постоянная и большая настороженность, внимание, быстрая реакция на каждый звук, шорох, движение в траве или кустах. Экскурсант должен идти медленно и бесшумно, все время осматриваясь и прислушиваясь, в случае необходимости моментально останавливаться и замирать на месте. Важно заметить птицу до того, как она насторожится. При скрадывании нужно пользоваться всякого рода укрытиями и двигаться не прямо на животное, а как бы мимо него. При этом не следует делать никаких резких движений, которые могут привлечь к себе внимание животного. При подходе к животному нужно учитывать направление ветра, имея в виду, что у животных обостренные обоняние и слух. При подкарауливании устраивают засады около гнезд и нор, на местах кормежки и т.д. Можно применять и приваживание животных на пищу, подманивание на голос и т.д. При подкарауливании необходимо тщательно маскироваться – прятаться в густых кустах, высокой траве и т.д. Подкарауливание лучше всего проводить в утренние или вечерние часы, когда животные наиболее активны. Большое значение в изучении птиц имеет голос. По крикам и песне можно определить вид той или иной птицы. Крики и песни – сигнал, по которому наблюдатель легко может подкрасться к птице и произвести прямые наблюдения. Изучение птичьих голосов нужно начинать с простых, часто слышимых птиц (зяблики, синицы и др. птицы). Это позволит познакомиться с криками, издаваемыми в различных случаях: крик тревоги, ссоры, позывки для птенцов и т.д. Метод изучения животных по следам их жизнедеятельности. Непосредственные наблюдения возможны не всегда и не над всеми животными (например, млекопитающими). По отпечаткам лап, остаткам пищи, клочкам шерсти, по помету, по постройкам нор можно определить вид животного. В поле нужно уметь вести не только непосредственные наблюдения за животными, но и замечать все следы их деятельности. В летнее время отпечатки лап зверей, птиц и т.д. лучше всего искать на илистых и песчаных берегах водоемов, на дорогах после дождя или на покрытых пылью тропинках. Нужно выработать в себе привычку не оставлять без внимания ни одного отпечатка, ни одного следа жизнедеятельности животных. От острой наблюдательности зависит успех полевых исследований. 4.5 Методы учета численности земноводных и рептилий в природе Задача количественного учета животных состоит в получении данных о численности особей на исследуемой территории или в получении данных о соотношении численности основных видов. Учет численности проводится на определенных площадках, имеющих форму квадрата, или учетных лентах, а затем производится перерасчет на 1га (для мелких животных) или на 10га (для крупных животных). Точность будет зависеть от однообразия биотопа, характера распределения животных и особенностей экологии вида. Методика учета численности земноводных и рептилий сводится к тому, что: – на каждой обычной экскурсии отмечаются все особи, встреченные в различных биотопах, для каждого вида в отдельности. По окончании работ эти данные суммируются. Следует отметить, что более точные данные можно получить, если проводить учеты на постоянном маршруте; – учеты всегда проводятся в часы наибольшей активности животных, так как эта группа животных реагирует на изменение температуры и влажность. Постоянно связанных с водоемом земноводных учитывают, как правило, на пробных площадках (площадный метод учета), заложенных на берегу или в водоеме. Границу площадок желательно отметить колышками. Общий размер площадки – 25м2. Количество наблюдений в зависимости от требуемой точности должно быть не менее 5–10 раз. При линейном способе учета земноводных выбирается маршрут в 1– 2км, ящериц и змей – 4–6км. Ширину учетной ленты выбирают в зависимости от характера биотопа: много растительности – 2–3м; на оголенной земле – до 10м. В случае высокой численности животных необходимо четко ограничивать ширину учетного маршрута при помощи веревок, которые несут 2 счетчика. 4.6 Метод изучения суточной активности земноводных Суточная активность – это чередование периодов покоя и активности, связанных с добыванием корма, миграциями или процессами размножения. Земноводных удобно и просто учитывать на постоянных маршрутах. На миллиметровой бумаге строится график, на котором с интервалом в 2-4 часа наносится абсолютное количество встреченных особей в разные часы суток или процент встреченных особей от максимума. Это дает ясное представление о характере суточной активности вида. Следует отдельно проводить подсчет особей, находящихся в воде или на суше, что дает представление как об общей активности животных, так и о распределении их по какой-либо территории. Одновременно важно вести наблюдения за изменением температуры и влажности. 4.7. Метод изучения питания земноводных и рептилий При этом методе изучается не только состав пищи, но и изменение питания в зависимости от различных внешних факторов, состояния самого животного. Основные способы изучения питания: а) анализ содержимого пищеварительного тракта (желудков); б) анализ остатков пищи. Состав пищи земноводных и пресмыкающихся определяется по содержанию желудков. На маршруте проводится забор животных. Не позже, чем через 2–3 часа проводят вскрытие животного, для этого вынимается содержимое желудка. После извлечения пищевого комка, его взвешивают и разбирают при помощи препаровальных игл. Поддающиеся определению части насекомых отбирают, подсчитывают и взвешивают. Если этого сделать невозможно, отмечают примерный объем компонентов по 5-бальной шкале: 1 балл – 0–1%; 2 балла – небольшое кол-во – 10–20%; 3 балла – значительное кол-во – 50%; 4 балла – много – до 75%; 5 баллов – очень много – более 75%. Составляется простая коллекция содержимого желудка земноводного. Для этого насекомых, извлеченных из желудка, удобнее всего раскладывать на вату, которую фиксируют на плотной бумаге, а затем все остатки содержимого желудка земноводного нумеруются и подписываются. 4.8. Методы учета численности птиц и млекопитающих в природе Количественный учет птиц проводится главным образом маршрутным методом. Наблюдатель подсчитывает всех встреченных в полосе учета птиц по голосу или внешности. Учетные маршруты желательно прокладывать по тропам или узким дорогам (важно в гнездовый период). Протяженность маршрута в лесу составляет 500–1000м; в степи 2–3км. Ширина учетной ленты – 100м в лесу и может быть больше в открытых ландшафтах. Ширину ленты определяют на глаз (не следует включать птиц, находящихся за пределами учетной полосы), учет проводят предпочтительно ранним утром, а для некоторых видов - вечером (зарянка). При учетах птиц в гнездовой период учет ведется по голосам. Условно принимается, что каждый поющий самец представляет пару птиц. Кроме поющих самцов необходимо учитывать и самок по позывным крикам и обозначать условными знаками. Для получения достоверных данных учеты птиц на маршрутах проводят не менее 10 раз. В гнездовый период количественный учет птиц может проводиться на пробных площадках в 1га (100х100м) или типичных площадках, ограниченных границами-засеками. Составив план площадки и её описание, нужно найти все гнезда и нанести их на план, при этом отмечают всех птиц, залетающих на пробную площадку за кормом. Кормовое поведение птиц изображают графически. При проведении учетов в осенне-зимний период используется методика маршрутного учета без ограничения полосы обнаружения. Этот метод отличается относительной простотой как в части техники проведения учета, так и расчета относительной численности птиц. В учетах используются данные всех встреч птиц (в полевом дневнике отмечаются все увиденные и услышанные птицы независимо от расстояния до них). Результатом учета является не численность птиц на единицу площади, а относительная частота встречаемости. Обычная скорость пешего учета в зимний период составляет 2–2,5км/час, при этом учеты проводят в утренние часы, в отсутствие сильного ветра или снегопада. В ходе количественных учетов птиц, если это позволяют время или особенности учетного маршрута, составляют этограммы – графическое изображение поведения птицы на кормовой территории. На ней отмечаются: - особенности движения (простое, сложное); - посадка; - сколько клевков сделала птица; - бег по территории; - отдых; - особенности поведения. Характеристика метода на примере кормодобывающей деятельности 1. Что необходимо фиксировать? - частоту использования того или иного приема кормодобывания; - локомоторную деятельность; - межвидовые, внутривидовые взаимоотношения. 2. Необходимо иметь шифровку для поведенческих реакций (т.к. они повторяются и сменяют друг друга), например: простой клевок выковыривание осматривание 3. Расшифровка записей дает следующее: - репертуар актов деятельности; - закономерности этих актов; - индивидуальные особенности; - число поведенческих актов в единицу времени. 4. Все это раскладывается во времени от 1 до 10 минут. 1 мин мин мин и т.д. Количественный учет млекопитающих проводится методом подсчета нор грызунов (или на маршруте, или на площадке). Длина маршрута – 2– 10км, ширина учетной ленты – 2–4м, площадь учетных лент – 0,5 до 2%. Важно различать при подсчетах обитаемые и покинутые норы. Лучше производить прикопку нор и подсчитывать количество открывшихся входных отверстий. Раскапывают не менее 20 колоний, площадью 10х10м. Для каждого биотопа учитывают среднее количество входных отверстий, колоний и зверьков на 1га. На площадках учет нор производится так же, но размер площадок 100–250 2 м . Форма площадки может быть разной: квадрат, прямоугольник, круг. Существует также метод сплошной раскопки нор. Раскапывать следует постепенно, метр за метром вскрывать ходы от периферии к центру. На месте вскрытых участков хорошо оставлять траншейки с крутыми стенками для задержки зверьков. Следует зарисовать план раскрытых колоний или одиночных нор в 2-х проекциях (план, разрез) с указанием размеров. 4.9. Метод изучения суточной активности птиц Учет птиц на определенном маршруте через равные промежутки времени (через 2–4 часа) проводится в течение круглых суток. Полученные результаты наносят на график (суммарные сведения о суточной активности всех птиц и по отдельным видам). В период пения самцов удобно изучать суточный цикл по изменению интенсивности пения (изменение числа слышимых песен в течение суток). Для этого проводят дежурства в одном пункте и подсчитывают число поющих птиц за какой-либо короткий период (15 минут). Этот способ применим к овсянкам, зябликам, пеночкам, лесным конькам. Результаты учетов наносятся на графики. Весьма интересны дежурства с целью установления точного времени пробуждения, а вечером – регистрации засыпания птиц у различных видов в зависимости от условий (погоды, освещения и т.д.). Параллельно необходимо вести метеорологические наблюдения (температура, осадки, влажность, сила света). В гнездовый период можно отмечать показатель активности самцов и самок по числу прилетов к гнезду в течение 1 часа. Результаты графически отображаются. 4.10 Метод изучения питания птиц Для изучения питания птиц проводят анализ содержимого желудков или зобов. Разбор содержимого желудка такой же, как у земноводных и пресмыкающихся. Но нужно учитывать, что скорость пищеварения у птиц очень велика и существует особенность переваривания самих пищевых остатков. При изучении питания дневных хищных птиц, сов, чаек, врановых хорошие результаты даёт анализ погадок. Анализ производят так же, как анализ желудков и зобов, но при этом нужно учитывать, что количественный анализ затруднен. При изучении питания цапель, бакланов нужно производить сбор остатков пищи в гнездах и под деревьями. Для этого собирать остатки нужно 3 раза в день. Для составления количественной характеристики питания необходимо точно знать вес порции корма, приносимый птенцу за 1 раз. Для этой цели следует вести постоянные наблюдения за гнездом и отбирать корм у птенцов после кормежки. Для полной характеристики питания необходимо знать количество прилетов родителей к гнезду за сутки. С этой целью либо организуют суточные наблюдения за гнездом и подсчитывают число прилетов за сутки, либо применяют самописцы, либо ставят искусственного птенца. Непосредственные наблюдения за выкармливанием птенцов очень важны для установления интенсивности кормления у разных видов в различный период роста птенцов. Для этого необходимы круглосуточные дежурства у гнезда. Следует отмечать количество прилетов самца и самки с кормом за каждый час, а также отмечать начало и конец кормежки. Обязательно учитываются погодные условия. 4.11 Метод изучения птичьих гнезд Каждое обнаруженное гнездо птиц должно быть по возможности определено (желательно до вида). Для этого его нужно описать и измерить: наибольший внешний диаметр, высоту гнезда, толщину стенок, диаметр и глубину лотка. Если гнездо расположено на дереве, отмечают породу дерева, толщину ствола, его высоту, высоту ствола до гнезда, расположение и способ прикрепления гнезда, экспозицию по сторонам света. Для гнезд, расположенных в дуплах, измеряют диаметр летка, отмечают его форму, приуроченность дупла к выгнившему суку или трутовику. Внутренность гнезда осматривают с помощью зеркала. Описывая гнезда, расположенные на земле, отмечают приуроченность гнезда к какому-либо укрытию (пень, куст, дерево и т.д.), микрорельеф участка. Если гнездо в норе, измеряют размер летка, протяженность норы, экспозицию норы к сторонам света. Изучая микроклимат гнезда (температурный режим), следует исследовать режим пустого гнезда, чтобы понять его значение. С интервалом в 2 часа измеряют температуру внутри лотка и снаружи гнезда в течение целых суток. В практическом и теоретическом отношении очень важны эксперименты по привлечению птиц в различные искусственные гнездовья (дуплянки и т.д.); проводят посадку деревьев и кустарников (метод создания условий для поселения полезных и хозяйственно важных птиц). 4.12. Метод изучения нор и логовищ Перед описанием норы нужно дать характеристику рельефа, экспозиции, грунта, типа растительности. Раскапывая нору, постепенно проводят ее глазомерную съемку. Масштаб берут в зависимости от размеров норы, по возможности более крупный. Длину ходов измеряют от поворота до поворота или до ответвления. Для этих же точек определяют глубину их залегания под поверхностью земли. Если раскапываемая нора сложная и занимает большую площадь, то зарисовку лучше проводить последовательно в узких полосах, отделенных бечевкой. Прежде, чем приступить к раскопке, следует найти все входные отверстия и нанести их расположение на план; то же следует сделать с надземными гнездами, если они есть, с дорожками и т.д. Для того чтобы не упустить “хозяина” норы, необходимо заткнуть все, даже старые и заброшенные, выходы пучками травы, мха и т.д. Раскапывать нору следует в определенном порядке, вскрытый ход нельзя засыпать землей, где ход дает ответвление, вбивают в землю колышки. Чтобы не потерять ход, постепенно проталкивают в него гибкий прут, или проволоку с загнутым концом. Временные норы и тропинки также необходимо нанести пунктиром на план. При колониальном поселении раскапывают и наносят на план участок колонии. При раскопке нор следует стремиться добыть хозяина норы, а также других беспозвоночных и позвоночных животных, обитающих в этой норе. Описывая гнезда и норы млекопитающих, нужно измерить диаметр, толщину стенок, определить размер и направление входных отверстий, характер строительного материала, высоту и способ прикрепления. При изучении температурного режима в норах и гнездах, в неглубоких норах измерения проводят через каждые 2 часа, а в глубоких норах выкапывают вертикальную шахту и через специальную трубку производят замер. Особым разделом изучения норовой деятельности является вопрос влияния землероек на почвообразование. Подсчитывают количество куч земли на единицу площади и площадь покрытия этими кучками; следует также измерить и взвесить кучки. Для изучения химического состава грунта нужно брать почвенные пробы из разных горизонтов. 5. Необходимое оборудование и требования к оформлению дневника полевой практики Необходимое оборудование: 1. На экскурсии: блокнот или тетрадь для записей, простой карандаш, бинокли, стеклянные банки с крышками, 40%-ный раствор формалина или спирта, ведро, полиэтиленовые мешки, удочки, сачки, определители, фотоаппарат. 2. В лаборатории: определители позвоночных животных, скальпели, пинцеты, ножницы, лупы, весы аптекарские, иголки, нитки. Требования к оформлению дневника полевой практики. На основании черновых записей (в блокноте и записных книжках) ежедневно в период практики каждым студентом ведется хронологический дневник. В дневнике должны быть зафиксированы: 1. План учебно-полевой практики по зоологии позвоночных; 2. Техника безопасности; 3. Необходимое оборудование; 4. Методы работы в полевых и лабораторных условиях; 5. Дата и тема каждого занятия; 6. Цели и задачи занятия; 7. Описание местности, биотопов и погодных условий; 8. Объекты наблюдений и сборов, содержание наблюдений и их обсуждение. Описания должны быть подробными, для пояснения записей использовать рисунки, схемы и фотографии. 9. В конце дневника список литературы, использованной в ходе экскурсий и лабораторной обработки собранного материала. 3. Требования к зачету по полевой практике К зачету допускаются студенты, отработавшие полностью программу практики. Документацией к зачету служат: - дневник полевой практики каждого студента; - письменный отчет по теме самостоятельной работы; - перечень видов позвоночных животных, встреченных на экскурсиях за весь период полевой практики (с латинскими названиями); - определительные карточки по местной фауне земноводных, пресмыкающихся, птиц и млекопитающих (наиболее массовые и часто встречающиеся виды); - оформленные коллекционные материалы для зоологического музея университета (следы жизнедеятельности позвоночных, тотальные препараты, гнезда птиц, фотографии и т.д.). 6. Вопросы к зачету по полевой практике 1. Формы записей и наблюдений в природе. Основные правила снаряжения 2. Требования к зарисовкам и фотографиям как формам фиксации наблюдений в природе; 3. Общие правила экскурсирования в природе. Необходимое оборудование. Фиксирующие жидкости 4. Основные способы сбора и учета беспозвоночных. Способы сбора беспозвоночных с помощью ловушек и пробных площадок 5. Требования, предъявляемые к сбору коллекций и их хранению; 6. Этикетирование и хранение собранных беспозвоночных 7. Прямые наблюдения над различными следами жизнедеятельности животных; 8. Методы учета численности земноводных и пресмыкающихся в природе; 9. Методы учета птиц и млекопитающих в природе; 10. Методы изучения питания земноводных и пресмыкающихся; 11. Методы изучения питания птиц; 12. Методы изучения суточной активности земноводных; 13. Методы изучения суточной активности птиц; 14. Методы изучения нор и логовищ; 15. Методы изучения птичьих гнезд; 16. Распознавание птиц по характерным признакам (общему облику, окраске, звукам голоса, повадкам и особым движениям, местам обитания); 17. Обработка собранного материала в лабораторных условиях ЛИТЕРАТУРА Основная литература 1. Кожанчиков И.В. Методы исследования экологии насекомых. М.: Высш. школа, 1961. 350 с. 2. Мамаев Б.М, Определитель насекомых по личинкам, М.; Просвещение, 1972. 400 с. 3. Мамаев Б.М.. Медведев Л.Н., Правдин Ф.Н. Определитель насекомых Европейской части СССР. М.: Просвещение, 1976. 304 с. 4. Мельников М.В., Цуриков М.Н. Проведение полевых исследований беспозвочных животных. Липецк, 2008. 54 с. 5. Методы исследования экологии насекомых. М., 1961. 286 с. 6. Палий В.Ф. Методика изучения фауны и фенологии насекомых. Воронеж, 1970. 189 с. 7. Плавильщиков Н.Н. Определитель насекомых. М.: Топикал, 1994. 544 с. 8. Райков Б.Е., Римский-Корсаков М.Н. Зоологические экскурсии. М.: Топикал, 1994. 540 с. 9. Фасулати К.К. Полевое изучение наземных беспозвоночных. М.: Высш. школа, 1971 424 с. 10. Хейсин Е.М. Краткий определитель пресноводной фауны. М.: Учпедгиз, 1962. 148 с. Дополнительная литература 1. Андрианова Н.С. Экология насекомых. М.: МГУ, 1970. 157 с. 2. Аникин В.В. Летняя практика по зоологии беспозвоночных (гидробиологический раздел). Саранск, 1998. 18 с. 3. Бёме Р.Л., Кузнецов А.А. Птицы лесов и гор СССР. – М., 1981. 4. Веселов Е.А. Определитель пресноводных рыб фауны СССР. – М., 1977 5. Воронцов А.И., Мозолевская Е.Г. Практикум по лесной энтомологии. М.: Высшая школа, 1973. 6. Второв П.П., Дроздов Н.Н. Определитель птиц фауны СССР. – М., 1980. 7. Ганзак Я. Энциклопедия птиц. – Прага: Артия, 1974. 7. Дунаев Е.А. Муравьи Подмосковья. Методы экологических исследований. М., 1987. 87 с. 5. Душенков В.М., Макаров К.В. Летняя практика по зоологии беспозвоночных. М., 2000. 6. Иванов А.И., Штегман Б.К. Краткий определитель птиц СССР. – Л., 1978. 7. Красная книга СССР / Под ред. акад. А.М.Бородина. – 2-е изд. – М., 1984. – Т.1 8. Кудрин А.И. Об усовершенствовании учетов численности способом исчерпывания при помощи ловушек // Зоолог. журн. 1971. Т. 50. Вып. 9. С. 1388-1400. Кузнецов Б.А. Определитель позвоночных животных фауны СССР. Ч.1– 3. – М., 1974–1975 10. Любищев А.А. К методике количественного учета и районирования насекомых. Фрунзе, 1958. 164 с. 11. Медведев Л.Н. К методике определения абсолютной численности беспозвоночных // Биоценологические исследования в широколиственноеловых лесах. М.: Наука, 1971. 12. Михеев А.В. Определитель птичьих гнезд. – М., 1975. 13. Нога Г.С. Наблюдения и опыты по зоологии. – М., 1972. 14. Чернышев В.Б. Экология насекомых. М.: Изд-во Моск. ун-та, 1996. 304 с. 15. Определитель земноводных и пресмыкающихся фауны СССР. – М., 1977. УДК 592 Б 759 Учебно-методическое издание Болотова Ж.Г., Ешижамсоева С.Б., Лузбаева А.Л. ЗООЛОГИЯ Методические указания по проведению учебно-полевой практики для студентов 1 курса цикла ОПД.Ф.01 по ГОС направление 111100.62 - «Зоотехния» Редактор Лицензия ЛР № 021274 от 26.03.98 г. Подписано в печать Формат Бум. тип. ЛЬ 1. Уч.- изд. л. 0,45. Усл. псч. л. Заказ Тираж 100. Цена договорная. п.л. Издательство ФБГОУ ВПО «Бурятская государственная сельскохозяйственная академия им. В.Р. Филиппова», 670024, г. Улан Удэ. ул. Пушкина, 8.