1) Подготовка зерна для разведения зерновой моли (ситотроги).

Министерство сельского хозяйства Республики Казахстан
АО «КазАгроИнновация»
ТОО «КАЗАХСКИЙ НИИ ЗАЩИТЫ И КАРАНТИНА РАСТЕНИЙ»
НОРМАТИВЫ БИОЛОГИЧЕСКОЙ ЭФФЕКТИВНОСТИ БИОАГЕНТОВ
(ЭНТОМОФАГОВ), СТАНДАРТЫ И МЕТОДИКИ ОПРЕДЕЛЕНИЯ ИХ
КАЧЕСТВА
Алматы 2012
Настоящие «Нормативы биологической эффективности биоагентов
(энтомофагов), стандарты и методики определения их качества»
подготовлены ТОО «Казахский научно-исследовательский институт
защиты и карантина растений» по заказу Министерства сельского
хозяйства Республики Казахстан.
© ТОО «КазНИИ защиты и карантина растений» 2012 год.
2
СОДЕРЖАНИЕ
1
1.1
2
2.1
2.2
2.3
3
3.1
3.2
3.3
4
4.1
4.2
4.3
5
5.1
5.2
6
7
Наиболее эффективные местные виды биоагентов (энтомофагов)
для искусственного массового разведения и борьбы с особо
опасными вредителями хлопчатника.........………………………….
Краткая биология особо опасных вредителей хлопчатника и их
энтомофагов…………………………………………………………..
Разработка рекомендаций по производственному разведению
биоагентов (трихограммы, бракона, златоглазки) против особо
опасных вредных организмов в биолабораториях .…………………
Технология массового производства трихограммы……………….
Технология массового производства бракона………………………
Технология массового производства златоглазки…………………
Разработка рекомендаций по содержанию и хранению биоагентов
(трихограммы, бракона, златоглазки) против особо опасных
вредных организмов в биолабораториях …...……………………….
Оптимальные
условия
для
содержания
и
хранения
трихограммы………………………………………………………….
Оптимальные
условия
для
содержания
и
хранения
бракона…………………………………………………………………
Оптимальные условия для содержания и хранения златоглазки…..
Стандарт и методика определения качества биоагентов
(энтомофагов) …………………………………………………………
Стандарт и методика определения качественных показателей
трихограммы…………………………………………………………
Стандарт и методика определения качественных показателей
бракона…………………………………………………………………
Стандарт и методика определения качественных показателей
златоглазки……………………………………………………………
Критерий
биологической
эффективности
биоагентов
(энтомофагов) при полевом применении с учетом норм и
кратности их выпусков…….................................................................
Критерий биологической эффективности биоагентов хлопковой
совки…………………………………………………………………
Критерий биологической эффективности биоагентов паутинного
клеща………………………………………
Норматив по определению биологической эффективности
биоагентов (энтомофагов) – трихограммы, бракона и златоглазки
против хлопковой совки и паутинного клеща на посевах
хлопчатника………………………………………………………….
Список использованных источников………………………..……..
3
6
7
10
10
13
14
16
16
17
18
20
20
23
25
28
28
29
31
35
ОПРЕДЕЛЕНИЯ, ОБОЗНАЧЕНИЯ И СОКРАЩЕНИЯ
Биоагент (агент биологической борьбы) – полезный организм,
используемый в биологической борьбе с вредными организмами (например,
энтомофаг – в борьбе с насекомыми).
Бракон - Bracon hebetor насекомое размером взрослой особи до 4 мм,
которое
относится
к
семейству
браконид
(Braconidae)
отряда
перепончатокрылых (Hymenoptera). Данный энтомофаг используется в
биологической защите растений от чешуекрылых вредителей растений и
является наружным паразитом гусениц.
Златоглазка (обыкновенная) – Chrysopa carnea насекомое длиной тела до
20 мм и крылья в размахе достигают 15-30 мм из семейства хризопид
(Chrysopidae) отряда сетчатокрылых (Neuroptera). Энтомофаг является
хищником комплекса вредных насекомых и клещей с мягкими покровами тела
(в различных фазах развития). Златоглазка поддается массовому размножению
в искусственных условиях и используется как агент биологической борьбы.
Качество энтомофага (при массовом разведении) – совокупность
свойств (физиологических, экологических, поведенческих) энтомофага,
необходимых для его эффективного использования в биологической борьбе.
Кратность выпуска (энтомофага) – общее количество выпусков
энтомофагов (при использовании их методом сезонной колонизации) на
защищаемую культуру за сезон. Также нужно различать кратность выпуска
энтомофагов против конкретного поколения целевого вредителя. К примеру,
кратность выпуска трихограммы против одного поколения хлопковой совки
составляет 3 выпуска, а общее количество за сезон составляет 9 выпусков
против 3-х поколений хлопковой совки.
Массовое разведение биоагентов (энтомофагов) – разведение больших
количеств энтомофагов в искусственных условиях. Массовым (в отличие от
лабораторного) следует называть разведение насекомых для биологической
защиты растений с приемлемым соотношением стоимости и прибыли в
объемах, превышающих в 10 тыс. – 1 млн. раз количество потомков одной
самки разводимого вида за генерацию. Цель массового разведения –
выращивание в кратчайший срок на минимальной площади возможно большего
числа плодовитых самок с наименьшими затратами труда и средств. Включает
три тесно связанных между собой и одинаково важных процесса: размножение
растений-хозяев или приготовление искусственных питательных сред для
содержания насекомого-хозяина, на котором развивается энтомофаг; создание и
сохранение соответствующих запасов насекомого-хозяина и энтомофага,
свободного от вредных видов (маточная культура); непрерывное размножение
полезного вида в таких количествах, которое требуется для намечаемой
программы биологической защиты.
Трихограмма – мелкое насекомое размером до 1 мм, которое относится к
семейству трихограмматид (Trichogrammatidae) отряда перепончатокрылых
(Hymenoptera). Хотя различные виды трихограмм паразитируют в яйцах
насекомых из разных отрядов, наибольший практический интерес представляет
4
паразитизм в яйцах вредителей из отряда чешуекрылых (Lepidoptera) на
хлопчатнике, кукурузе, овощных культурах, в садах и лесных насаждениях.
Условный гектар – участок плантации сельскохозяйственной культуры,
на котором производился два и более выпуска энтомофагов. К примеру, если на
1 физическом гектаре посева хлопчатника трихограмма выпускалась 9 раз за
сезон, то условный гектар равен 9.
Энтомофаг – хищник, который питается насекомыми, или паразит
(паразитоид), развивающийся за счет насекомых. Для биологической защиты
растений наибольшее практическое значение имеют насекомые из отрядов
перепончатокрылых,
жесткокрылых,
полужесткокрылых,
двукрылых,
сетчатокрылых.
5
1 НАИБОЛЕЕ ЭФФЕКТИВНЫЕ МЕСТНЫЕ ВИДЫ БИОАГЕНТОВ
(ЭНТОМОФАГОВ) ДЛЯ ИСКУССТВЕННОГО МАССОВОГО РАЗВЕДЕНИЯ
И БОРЬБЫ С ОСОБО ОПАСНЫМИ ВРЕДИТЕЛЯМИ ХЛОПЧАТНИКА
Комплексное использование биологических средств (биологические
агенты, биологические препараты) в интегрированной системе защиты
хлопчатника обеспечивает более высокую биологическую и экономическую
эффективность защитных мероприятий. Биологические средства защиты
снижают загрязненность окружающей среды инсектицидами, обеспечивают
долговременный контроль за развитием основных вредителей (паутинный
клещ, хлопковая совка и др.), создают условия для размножения и накопления
энтомофагов на поле.
Многолетняя практика применения трихограммы в мире показала, что
лучший эффект биологической борьбы достигается при использовании местных
видов яйцеедов, приспособленных в процессе длительной эволюции к местным
условиям. Разнообразие ландшафтных зон, обилие возделываемых культур,
специфичность климата Казахстана вызывают необходимость выявления
местных видов трихограммы, изучения их экологии. Это позволит
рекомендовать производству для применения в борьбе с вредными
чешуекрылыми наиболее перспективные виды яйцеедов.
В Казахстане наиболее полно изучены виды трихограммы: Trichogramma
evanescens West., T.euproctidis, T. pintoi Voeg., T. рrincipum Sug. et Sor.;
наиболее эффективными видами бракона являются Bracon hebetor Say., B,
simonovi Kokuev.
Златоглазки в Казахстане представлены 15 видами: Chrysopa formosa
Brauer, Ch. septempunctata Wesm., Ch. perla L., Ch. саrnеа Steph. и др.
Кроме биологических агентов (трихограмма, бракон, златоглазка),
разводимых в биофабриках и биолабораториях и выпускаемых регулярно за
лето на посевы хлопчатника, на этих посевах обитают до 60 видов других
энтомоакарифагов. Среди них наиболее многочисленны и эффективны
кокцинеллиды (Coccinella septempunctata L., Adalia bipunctata L., Adonia variegata Gz.);
хищные клопы: ориус (Orius niger Wolff.) и набис (Nabis ferus L.); наездники:
афидиус (Aphidius ssp.), микроплитис (Microplitis spectabilis Hal.), рогас (Rogas
ssp.) и апантелес (Apanteles ssp.); хищный клещ – фитосейулюс (Phytoseiulus
persimilis Ath.–Henr); мухи тахины (Tachinidae); жужелицы (Carabidae) и др.
Своей полезной деятельностью, указанные биоагенты способны на 1025% и более снизить численность многих вредителей, включая и совок. Однако
это возможно лишь при отсутствии пестицидного прессинга на агробиоценозы.
Из-за того, что паутинный клещ и хлопковая совка, повреждающие хлопчатник,
отнесены к особо опасным вредителям, защитные химические меры против
которых финансируются из государственного бюджета, наблюдается
пестицидная нагрузка в хлопкосеющем регионе Казахстана. Следовательно,
своевременная биологизация защитных мероприятий против вредителей
хлопчатника на юге Казахстана позволит стабилизировать экологическую
обстановку в этом регионе.
6
1.1 Краткая биология особо опасных вредителей хлопчатника и их
энтомофагов
Хлопковая совка (Helicoverpa armigera Hubn.) – наиболее опасный
вредитель хлопчатника на юге Казахстана, а также томатов, кукурузы, нута и
других культур. Зимуют куколки в почве на глубине 8-10 см. В зависимости от
погодных условий в конце апреля-мая из куколок вылетают бабочки, которые
питаются нектаром цветов, спариваются, затем откладывают яйца. Одна
бабочка способна отложить в среднем около 500 яиц, но отдельные самки
могут откладывать до 3000 яиц. Откладывают яйца на различные растения, а на
хлопчатник в период его бутонизации, поэтому первое поколение совки
развивается на других культурах, а последующие поколения на хлопчатнике. В
зависимости от температуры окружающей среды через 2-6 дней отрождаются
гусеницы. Они в I-II возрастах повреждают листья, цветочные почки и бутоны
в верхней части растений. По мере роста гусеницы переходят и повреждают
средние и нижние ярусы кустов, поедая содержимое бутонов, цветов,
сформировавшихся коробочек. Поврежденные плодоэлементы опадают,
коробочки загнивают. Потери урожая от этого вредителя могут достигнуть 50%
и более процентов.
За сезон развивается в 3-4 поколениях. Наибольшей численности совка
достигает во втором-третьем поколениях (июль-август), в эти периоды она
способна нанести наибольший вред, так как уничтожает сформировавшийся
урожай. В отдельные годы второе и третье поколения вредителя, накладываясь
друг на друга, сильно повреждают хлопчатник. В зоне
хлопкосеяния
численность ее ежегодно заметная. Вспышки ее массового размножения
наблюдались в 1998, 2004 и 2010 годах.
Паутинный клещ (Tetranychus turkestani Ug.et.Nic.) - опасный вредитель
хлопчатника. Жизнедеятельность обыкновенного паутинного клеща в условиях
Южного Казахстана начинается с конца марта. В своем развитии клещ
проходит следующие фазы: яйцо, личинка, пронимфа, дейтонимфа и имаго.
Свежеотложенное яйцо имеет вид прозрачной капельки жидкости, в
дальнейшем оно мутнеет и перед выходом личинки приобретает кремоватый
оттенок. Форма шаровидная, оболочка без всякой скульптуры. Яйцо
развивается в среднем 1,5-2 дня.
Самым характерным отличием личинки от следующих фаз развития
является наличие только трех пар ног. Тело полушаровидное, окраска бледножелтоватая. Вышедшая из яиц личинка сразу же проявляет большую
активность, энергично ползает по листу, но не плетет паутинку. Паутину плетут
взрослые особи, под ней они питаются и размножаются. Личинка развивается в
среднем 4 дня. Пронимфа отличается от личинки сравнительно большим
размером и присутствием четырех пар ног. По форме тела схожи с личинкой.
Окраска светло-зеленного цвета. Пронимфа развивается в среднем 1-1,5 дня.
Самцы после фазы пронимфы превращаются во взрослых клещей. Самки же
имеют еще фазу дейтонимфы. По форме тела и по окраске она приближается к
взрослой форме. Дейтонимфа проходит фазу развития в течении 2-3 дней.
7
Тело самки овальное, четыре пары ног. Тело покрыто ясно заметными
щетинками. Окраска самки в летнее время зеленовато-желтое с темными
пятнами по бокам. Самец значительно меньше самки и отличается более
суживающимся к концу брюшком. Расположение щетинок и пигментация тела
аналогичны самкам. Плодовитость самки варьирует от 30 до 756 яиц. На
хлопковых полях, в естественных условиях самка за один день в среднем
откладывает 6-7 яиц, при температуре воздуха 270С и относительной влажности
воздуха 53%. В природных условиях продолжительность жизни самок
составляет в среднем 9 дней, максимальная 14 дней, минимальная 3 дня.
Паутинный клещ перебирается на хлопчатник чаще всего в конце мая –
начале июня. Оптимальными условиями для развития паутинного клеща
являются температура 26-300С и относительная влажность воздуха 40-50%.
Трихограмма (Trichogramma pintoi Voeg.) – местный распространенный
паразитоид яиц озимой, хлопковой, малой наземной (карадрины) и других
видов совок. Этот вид используется для защиты посевов хлопчатника от совок
на юге Казахстана. Величина трихограммы в зависимости от размеров яиц
совок, на которых она развивалась, составляет от 0,25 до 0,9 мм. Самцы
несколько меньше самок. Окраска трихограммы варьирует от бледно-желтого
до черного цвета. Усики самки покрыты короткими редкими щетинками и
заканчиваются утолщенной булавой, у самца усики покрыты густыми
длинными щетинками, последние членики усиков слиты между собой. Самка
трихограммы откладывает яйца в свежеотложенные яйца совок по 2-4 в каждое
яйцо. Зараженные яйца приобретают черный цвет с синеватым оттенком, что
позволяет легко отличить зараженные яйца от незараженных. Отродившиеся
личинки питаются содержимым яиц совок и там же окукливаются. Развитие
личинок трихограммы в яйцах завершается за 4-6 суток. Самцы вылетают
раньше самок, а последние отрождаются готовыми к яйцекладке. Плодовитость
самок составляет 40-50 яиц. Для развития и поисковой активности
благоприятны температура воздуха 24-300С и влажность 60-80%. При
температуре выше 300С и влажности ниже 30%, что наблюдается на юге
Казахстана в июле-августе, плодовитость трихограммы уменьшается.
Трихограмма передвигается по растениям и способна перелетать на
короткие расстояния – до 1,5-2 м. В течение одного поколения совок она
развивается в 2-3 поколениях, а за сезон в 13-14 генерациях. Зимует в стадии
личинок в яйцах совок и других чешуекрылых на межах и обочинах полей. В
природе ее немного, поэтому на биофабриках и в биолабораториях налажено ее
массовое разведение. Применяют трихограмму методом сезонной колонизации
(периодические выпуски) в период яйцекладки совок. Разводят ее на яйцах
зерновой моли (ситотроге). В целях поддержания качественных показателей и
сохранения ее поисковой активности проводят пассаж (размножение) на
природных хозяевах – яйцах озимой, хлопковой и других совок.
Бракон хебетор (Braсon hebetor Say.) – наружный паразит озимой,
хлопковой, малой наземной (карадрины) и других совок, огневок и молей.
Длина тела 0,2-0,3 см. Бракон заражает гусениц средних (III-IV) и старших (VVI) возрастов. Прежде чем отложить яйца на поверхность гусеницы, самка
8
парализует ее, введя яйцеклад в тело, отчего гусеница прекращает питание. За
одни сутки бракон заражает 100-150 гусениц. Плодовитость самок от 100 до
800 яиц. Отродившиеся личинки питаются содержимым гусениц и
окукливаются у ее остатков. В одной гусенице хлопковой совки может
развиваться 20-25 личинок. В течение развития одного поколения хлопковой
совки бракон развивается в 2-2,5, а за сезон в 6-7 поколениях.
Зимуют самки внутри неопавших скрученных листьев, в дуплах деревьев.
Наиболее оптимальные условия для развития бракона температура воздуха 26280С и относительная влажность 60-80%. При выпуске на поле питается
нектаром цветов и гемолимфой гусениц и ведет активный поиск гусениц, за
сутки, перелетая до 100 м, а поисковая способность составляет 500-550 метров.
На биофабриках и биолабораториях местный вид бракона размножают на
гусеницах большой вощинной огневки.
Златоглазка обыкновенная (Chrysopa carnea Steph.) – наиболее
распространенный среди других видов златоглазок. Крылья в размахе до 40 мм.
Личинки ее активно уничтожают яйца и гусениц младших возрастов озимой,
хлопковой, малой наземной совок, а также тлей, трипсов, паутинного клеща.
Личинка за день способна уничтожить 50-60 тлей, 200 клещей и значительное
количество яиц и гусениц младших возрастов совок. Взрослая златоглазка
питаются нектаром цветков, пыльцой, сахаристыми выделениями тлей и
клещами.
Имаго зимует в постройках, жилых и нежилых помещениях. При
среднесуточной температуре воздуха 11-160С златоглазки активны с апреля и
обитают на люцерне, садах, затем в мае на хлопчатнике. Самки откладывают
яйца на листья и стебли хлопчатника по одному (иногда больше) на длинных
тонких
ножках.
Плодовитость
самок
составляет
190-700
яиц.
Продолжительность развития яиц в зависимости от температуры воздуха 3-12,
личинок – 12-15, пупарий – 6-8 дней. Взрослые живут 30-35 дней. За сезон
златоглазка развивается в 3-5 поколениях. Наиболее благоприятны для ее
развития температура воздуха 25-300С и влажность 60%. Златоглазку разводят
на биофабриках и биолабораториях и выпускают в стадии яиц или личинок
второго возраста в очаги развития совок, тлей, паутинного клеща.
9
2 РАЗРАБОТКА РЕКОМЕНДАЦИЙ ПО ПРОИЗВОДСТВЕННОМУ
РАЗВЕДЕНИЮ
БИОАГЕНТОВ
(ТРИХОГРАММЫ,
БРАКОНА,
ЗЛАТОГЛАЗКИ) ПРОТИВ ОСОБО ОПАСНЫХ ВРЕДНЫХ ОРГАНИЗМОВ В
БИОЛАБОРАТОРИЯХ
Среди биологических агентов для защиты посевов хлопчатника широкое
применение получили трихограмма, бракон и златоглазка, используемые
методом сезонной колонизации. Трихограмму, бракон и златоглазку массово
производят в биолабораториях и биофабриках, используя для их размножения
лабораторных хозяев.
2.1 Технология массового производства трихограммы
На биофабриках массовое размножение трихограммы осуществляется
комплектом оборудования механизированной линии в соответствии c
техническим описанием и инструкцией по эксплуатации.
Трихограмму разводят в производственных биолабораториях или на
биофабриках, используя в качестве пищи яйца зерновой моли, или ситотроги
(Sitotroga cerealella Oliv.), которую разводят на полноценном зерне ячменя.
Технология массового разведения зерновой моли и трихограммы включает
следующие основные операции:
1) Подготовка зерна для разведения зерновой моли (ситотроги).
2) Заражение зерна ситотрогой.
3) Получения бабочек и яиц ситотроги.
4) Хранение яиц зерновой моли.
5) Размножение и хранение трихограммы.
6) Обновление и накопление маточного материала.
Подготовка зерна ячменя для разведения зерновой моли. Обеззараживают
зерно ячменя различными способами: термический – с помощью горячей воды,
в автоклавах и путем химической фумигации. Влажное термическое
обеззараживание предпочтительнее, так как оно обеспечивает получение
мягкого зерна, более благоприятного для внедрения и развития гусениц
зерновой моли. Его проводят путем погружения зерна в горячую воду (90-95оС)
на 40-60с. Предварительно в воду добавляют марганцовокислый калий (1 г на
10 л воды), чтобы предотвратить появление плесени.
Обеззараженное зерно рассыпают в кюветы слоем не более 4 см и в
течение 1-2 дней доводят до оптимальной (15-16%) влажности, поддерживая ее
в течение всего периода развития зерновой моли. Влажность зерна определяют
влагомером, а расчет необходимого количества воды в литрах проводят по
формуле:
где: а – количество зерна в кювете, кг;
b – требуемая влажность зерна, %;
c – фактическая влажность зерна, %.
10
Заражение зерна ситотрогой. Для заражения зерна используют яйца
зерновой моли, отложенные бабочками на 2-3-й день жизни, причем возраст
всей партии яиц не должен отличаться более чем на сутки. Яйца помещают в
термостат при температуре (24±1)оС и относительной влажности воздуха
(85±5)% на 4-5 суток. При появлении первых паутинок всю партию яиц
рассыпают тонким слоем на поверхности зерна из расчета 100 г яиц на 100 кг.
Через 4-5 суток, когда гусеницы бабочек внедрятся в зерно, его тщательно
перемешивают и в случае необходимости дополнительно увлажняют. В
помещении поддерживают температуру (20±2)оС и влажность (80±5)%.
Получение бабочек и яиц зерновой моли. Через 2-3 дня после начала лёта
бабочек зерно пересыпают в кассеты и устанавливают их в боксы. В одном
боксе размещают десять кассет по 13-15 кг зерна в каждой. Обычно массовый
лет бабочек начинается через 3-5 дней после загрузки кассет и продолжается в
течение 15-18 дней. Выходящие из зерна бабочки через перфорацию кассет
проникают в бокс, скапливаются в его нижней конической части и через
открываемый клапан попадают в общий насекомопровод. Отсюда они
воздушным потоком переносятся в молеприемники.
Бабочек собирают два раза в сутки, из молеприемников дозатором
расфасовывают в вытяжном шкафу в малые контейнеры, закрывают сменной
подложкой и поддоном и помещают на 4-5 суток в ячеистый термостат.
Очистку малых контейнеров проводят ежедневно с помощью вакуумного
устройства, смонтированного в вытяжном шкафу.
Собранные яйца очищают от примесей с помощью сит, вибратора, а затем
– пневматического классификатора. Очищенные яйца суточного сбора
взвешивают, расфасовывают в этикетированные бумажные пакеты (до 50 г в
каждый), кассеты или чашки Петри и используют для воспроизводства моли
(10-20%), разведения трихограммы или закладывают на хранение.
Средний выход яиц зерновой моли на биофабриках должен составлять
600 г со 100 кг зерна при длительности цикла сбора бабочек и яиц с одной
партии заселенного зерна 35-45 дней и степени заселенности зерна около 75%.
Хранение яиц зерновой моли. Кратковременное хранение яиц при
температуре 1-3оС и относительной влажности воздуха 85-90% для партии,
предназначенной к воспроизводству, допускается не более 3-4 суток; для
заселения трихограммой – не более 10 суток.
Для долгосрочного хранения, необходимого при круглогодичной работе
биофабрики, разработан способ глубокого охлаждения яиц. При помощи
специального устройства их помещают в жидкий азот в сосудах Дьюара и
хранят в течение 6-12 месяцев при температуре –196оС. Затем яйца
размораживают в воде, подогретой до 44-45оС, высушивают на гидрофильных
плитах в течение 25-40 мин при 25-30оС и используют для разведения
трихограммы. После расконсервации яиц зерновой моли трихограмма заселяет
58-60% яиц, отрождение паразита составляет 60-75%, а плодовитость
соответствует уровню контроля.
11
Размножение трихограммы. Яйца зерновой моли наклеивают на
стеклянные пластины или трехлитровые банки. Пластины или банки
предварительно увлажняют конденсатом влаги при переносе пластин из
холодильника, тонким слоем воды из увлажнителя воздуха или влажным
паром. Яйца рассыпают на обе стороны пластины или по окружности банки, не
приклеившиеся удаляют легким встряхиванием. Пластины вставляют в
контейнеры (виварии) из органического стекла, а в имеющиеся в каждом из них
пеналы помещают имаго трихограммы из расчета одна самка паразита на 20
яиц ситотроги. Контейнеры или банки ставят в климатическую камеру с
автоматически регулируемой температурой, влажностью и фотопериодом,
оптимальными для популяции, обитающей в данной географической зоне.
Яйца зерновой моли заселяют в течение 1-2 суток. Равномерности
заселения достигают за счет поочередного включения ламп в автоматическом
режиме. Трихограмма обладает положительным фототаксисом и скапливается
на более освещенных участках пластин. После почернения яиц (фаза
предкуколки трихограммы) их очищают в вытяжном шкафу с помощью набора
сит, взвешивают и расфасовывают в этикетированные пакеты для реализации
(для поля или воспроизводства) или в кассеты на хранение. На пакете или
кассете указывают вид трихограммы, дату заселения и начала хранения,
процент заселения и число особей. Обычно в 1 г содержится около 70-80 тысяч
яиц, паразитированных трихограммой.
Обновление и накопление маточного материала. В целях обогащения
генофонда исходной популяции трихограммы и повышения качества
биоматериала рекомендуется проводить следующие мероприятия.
1) Сбор в природе большого числа (не менее 1500) яиц насекомых,
паразитированных трихограммой.
2) Накопление трихограммы на маточном участке (0,5-1 га),
расположенном на территории биофабрики. Этот участок ежегодно засевают
сельскохозяйственными культурами с различным сроком созревания, которые
искусственно заселяют фитофагами из отряда чешуекрылых и трихограммой.
По периметру участок засевают нектароносными растениями.
3) Сбор с маточного участка кладок яиц, заселенных трихограммой, в
августе-сентябре, выведение паразита, проведение двух осенних пассажей
через яйца хозяев из расчета одна самка на десять яиц и введение трихограммы
в диапаузу для длительного хранения.
4) Реактивация диапаузирующей трихограммы, групповое скрещивание в
целях получения популяционного эффекта гетерозиса, сопровождаемое 2-3
пассажами через яйца основных хозяев.
5) Массовое разведение трихограммы с таким расчетом, чтобы в яйцах
зерновой моли проходило развитие не более 3-4 поколений трихограммы.
Если маточного участка на территории биофабрики создать не удается,
популяцию трихограммы обновляют ежегодно за счет сбора паразитированных
яиц основных хозяев в агробиоценозах, где не проводили выпуска паразита.
12
Работа по обновлению и накоплению маточного материала должна
сопровождаться таксономическим контролем видовой принадлежности
трихограммы и оценкой ее качества.
2.2 Технология массового производства бракона
На биофабриках массовое размножение бракона осуществляется
комплектом оборудования механизированной линии в соответствии c
техническим описанием и инструкцией по эксплуатации.
Бракон разводят, используя в качестве лабораторного хозяина большую
вощинную огневку (Galleria melonella L.). Разведение бракона состоит из
следующих этапов: разведение хозяина, разведение паразита и хранение
паразита.
Для разведения гусениц большой вощинной огневки используется
питательная среда, в состав которой входит: кукурузная мука – 700 г.,
пшеничная мука – 350 г., сахар – 300 г., маргарин – 70 г., молоко – 350 г.,
дрожжи – 30 г., сухофрукты – 260 г., мерва – 100 г.. Из вышеуказанных
ингредиентов готовят питательную смесь в духовом шкафу, периодически
перемешивая массу для получения рассыпчатой смеси. Охлаждают смесь.
Мерву и сухофрукты стерилизуют отдельно. Смешивают мерву, сухофрукты и
мучную смесь, помещают в трехлитровые банки по 100-150 грамм смеси и
закладывают в банки по 100 штук гусениц пятого-шестого возраста. Накрывают
банки тканью и устанавливают банки в установку для разведения большой
вощинной огневки. На мониторе компьютера задают температурный режим 320
С и относительную влажность 70%.Через 10-15 дней в банках появляются
бабочки. В банки с вылетевшими бабочками закладывают приспособление для
откладки яиц, состоящее из соединенных между собой деревянных планок.
Каждые два-три дня меняют планки на чистые. С планок с помощью лезвия
аккуратно снимают яйца большой вощинной огневки, которые дозируют по
одному грамму. В чистые трехлитровые банки засыпают по 100 грамм
простерилизованной мервы и по 1 грамму яиц, закрывают тканью и
устанавливают во вторую установку для разведения большой вощинной
огневки. Задается температурный режим и режим влажности. Когда гусеницы
достигают второго и третьего возраста, гусениц пересыпают в садки по 5 банок
на садок, или 25 банок на одну установку. Постепенно производят загрузку
всех семи шкафов.
Садки накрывают плотной черной тканью, по мере необходимости (2-3
раза в неделю) подкармливают гусениц питательной смесью. Ежедневно
собирают гусениц старших возрастов с поверхности ткани. Через 10-15 дней
после закладки в шкаф №1 гусениц начинают отделять от питательной смеси
на установке для деления гусениц по возрастам. Гусениц вместе с питательной
смесью засыпают в кюветы, устанавливают вертикально в делитель, закрывают
двери, включают температурный режим. Под действием температуры гусеницы
покидают питательную смесь и падают в нижний отсек установки, где
происходит их разделение на возрастные группы. Гусениц старших возрастов
13
отправляют на заражение браконом, гусениц младших возрастов отправляют в
шкаф №2 на доращивание.
Собранных гусениц старших возрастов фасуют в банки по 250 штук, куда
вкладывают листы предварительно заготовленной на установке для
гофрирования бумаги. Банки накрывают крышками из ткани, закрывают
темной тканью и оставляют до тех пока гусеница не сплетет кокон.
Бракон фасуют в чистые банки на установке для сбора и счета бракона по
100 штук, подкармливают медом. Кассеты с окуклившимися гусеницами
переносят в банки с браконом, закрывают крышками из ткани и размещают в
установку для разведения бракона. На мониторе компьютера устанавливают
температурный режим, режим фотопериода и режим влажности. Постепенно
загружают все шкафы, на 10 день после заражения начинается вылет бракона.
Часть бракона оставляют на воспроизводство, а основную часть используют
для выпуска в поле.
2.3 Технология массового производства златоглазки
На биофабриках массовое размножение златоглазки осуществляется
комплектом оборудования механизированной линии в соответствии c
техническим описанием и инструкцией по эксплуатации.
Для личинок златоглазки полноценным заменителем естественного корма
могут служить яйца, погибшие имаго зерновой моли – ситотроги, которую в
массе размножают биофабрики при производстве трихограммы.
Ниже дается описание отдельных процессов массового разведения
златоглазки, в основе которых лежит содержание энтомофага в благоприятных
гидротермических условиях, выкармливание личинок яйцами ситотроги и
подкормка взрослых насекомых медом и автолизатом пивных дрожжей.
Технология разведения златоглазки состоит из следующих основных
производственных процессов:
1) Сбор природных популяций.
2) Подготовка корма.
3) Содержание взрослых насекомых в садках или банках.
4) Сбор яиц златоглазки.
5) Инкубация яиц златоглазки.
6) Индивидуальное выращивание личинок.
7) Съем и сбор коконов златоглазки.
8) Размещение коконов в банки.
9) Воспроизводство биоматериала.
10) Хранение биоматериала до использования.
Получение маточной культуры златоглазки. Лабораторное разведение
начинается с приобретения маточного материала из биофабрики или со сбора
непосредственно в природе. Сбор златоглазки лучше всего производить в конце
лета, отлавливая взрослых насекомых на светоловушки или путем кошения
сачком по полевым культурам, где в массе имеется тля, или стряхивая в сачок с
древесной растительности. Перед зимовкой взрослые особи встречаются на
14
плодовых культурах, в садах и в парках, на деревьях и кустарниках, где
обитают до ухода на зимовку в ноябре. Собранные во второй половине октября
взрослые особи златоглазки уже начинают диапаузировать и менять свою
окраску от интенсивно зеленой до бледно зеленой, а затем с понижением
температуры они становятся желто-зелеными с коричнево-красными пятнами
на теле.
Технологический процесс производства златоглазки. Имаго златоглазки
фасуют в трехлитровые банки по 150 штук или в специальные садки по 3,5
тысяч имаго. Банки или садки помещают на стеллажи в термостатируемую
комнату с регулируемым фотопериодом или климатический шкаф.
Оптимальная температура содержания златоглазки 24-26°С, относительная
влажность воздуха 65-70%. Ежедневно златоглазку подкармливают медом и
автолизатом пивных дрожжей. В банки закладывают полоски темной
хлопчатобумажной ткани. При выращивании златоглазки в банках через день
полоски с отложенными на них яйцами златоглазки удаляются из банки и
закладывают чистые полоски, с части полосок аккуратно ножницами срезают
яйца златоглазки, остальные яйца представляют товарную продукцию.
Срезанные яйца златоглазки смешивают с яйцами ситотроги в соотношении 5
мг ситотроги на 1 яйцо и в расчете 17-20 г яиц ситотроги, смешанных с яйцами
златоглазки, засыпают на дозирующую плиту установки для дозирования
корма. После засыпки дозы яиц вместе с кормом закрывают гексель крышкой.
Гексели помещают в термостатируемую комнату с регулируемым
фотопериодом при температуре 24-26°С их содержат в течение 15-17 дней.
Через 7 дней после закладки вторично подкармливают дозой 17-20 грамм яиц
ситотроги на 1 гексель. Через 15-17 дней открывают крышку гекселя. Собирают
коконы златоглазки на установке для съема коконов и по 150 штук
раскладывают в банки. Личинки, которые не успели окуклиться, раскладывают
в пробирки по 1 штуке и подкармливают ситотрогой. После начала вылета
имаго процесс воспроизводства повторяют. Один раз в 4-5 дней банки с имаго
златоглазки меняют на чистые, так как личинки, отродившиеся из яиц,
отложенных на стенках банок занимаются каннибализмом и поедают
свежеотложенные яйца.
15
3 РАЗРАБОТКА
РЕКОМЕНДАЦИЙ
ПО
СОДЕРЖАНИЮ
И
ХРАНЕНИЮ БИОАГЕНТОВ (ТРИХОГРАММЫ, БРАКОНА, ЗЛАТОГЛАЗКИ)
ПРОТИВ
ОСОБО
ОПАСНЫХ
ВРЕДНЫХ
ОРГАНИЗМОВ
В
БИОЛАБОРАТОРИЯХ
3.1 Оптимальные условия для содержания и хранения трихограммы
Трихограмма относиться к насекомым, легко изменяющим свои
качественные показатели в зависимости от условий содержания. Несоблюдение
требуемых гигротермических условий, обязательности диапаузного развития в
осеннее-зимний период, подкормки имаго, пассажа через природных хозяев и
других условий технологии разведения приводят к ухудшению качественных
показателей трихограммы, ее жизнеспособности.
Содержание при сменных температурах. Оптимальным условием для
развития трихограммы определена температура 25ºС и относительная
влажность воздуха 75%. Однако под влиянием разведения при константных
условиях изменяются качественные и количественные показатели трихограммы
и вырабатываются популяции паразита с узкой экологической пластичностью.
«Изнеживание» трихограммы приводят к тому, что при выпусках на поля
яйцееды оказываются слабо активными, плохо переносят сменные температуры
дня и ночи, в результате чего сильно уменьшается эффективность
биологической борьбы. Эту проблему можно решить содержанием паразитов в
условиях максимально приближенным к природным. В трихограммных цехах
биофабрик температуру днем необходимо поддерживать в пределах 25-30 оС,
ночью около 16оС. Создание модернизированных биофабрик оснащенных
кондиционерами и биоклиматическими камерами позволяют автоматически
регулировать гигротермические условия и длину светового дня в
трихограммном цехе. Это дает возможность правильно содержать трихограмму
не только перед полевыми выпусками, но и на всем протяжении лабораторного
разведения.
Повышение плодовитости и продолжительности жизни самок путем
углеводной подкормки. Питание взрослых самок трихограммы углеводной
пищей увеличивает их плодовитость в 1,5-2 раза, а продолжительность жизни
до 10-15 дней. Это безусловно способствует более полной реализации
потенциальной плодовитости самок. Для подкормки паразитов при
лабораторном разведении, а также перед выпуском на поля в фазе имаго
используют 20%-ный сахарный сироп. Он подается на ватных или поролоновых
тампонах, располагаемый на верхней матерчатой крышке садков. Утреннюю
подкормку сахарным сиропом чередуют с подачей воды вечером.
Хранение трихограммы, введение в диапаузу и реактивация.
Кратковременное хранение активной трихограммы на преимагинальных
стадиях (предкуколки и куколки) осуществляют при необходимости перед
выпуском сроком до 1 месяца при температуре 3оС и влажности воздуха 80%.
16
После 20 дней хранения при указанных условиях увеличивается смертность
яйцееда.
Длительное хранение трихограммы (до 6 месяцев) в осенне-зимний
период или с целью накопления в другие периоды года возможно в состоянии
диапаузы. В лаборатории трихограмму вводят в диапаузу тремя способами:
1) Заражение яиц ситотроги трихограммой проводится при 18-20оС в
течение дня, ночью ее переносят в условия 10оС при 85-90% влажности
воздуха. На следующий день заражение яиц производят снова при 18-20оС,
после чего их помещают в камеры с температурой 10оС на 20-24 дня до
образования предкуколки. В это время наступает почернение оболочки яйца.
2) Заражение яиц ситотроги трихограммой производится при
среднесуточной температуре 15оС и коротком световом дне (6-8 часов) или
полной темноте.
3) Яйца ситотроги однодневного возраста заражают трихограммой в
течение 1-2 суток при 23-25оС, относительной влажности воздуха 70-80% и 16часовом фотопериоде. Затем их переносят в камеры с той же влажностью,
температурой 10оС и 12-часовым фотопериодом до начала почернения яиц.
Хранят диапаузирующую трихограмму в тех же условиях, что и
активную. Следует учесть, что трихограмме свойственна также обязательная
диапауза, которая продолжается в течение 2 месяцев. Поэтому вылет паразитов
до истечения этого срока снижается, однако после диапаузы вылет повышается
до 70-80%. Обязательное введение в диапаузу маточного материала
трихограммы способствует получению жизнеспособных паразитов с высокой
плодовитостью,
высокой
поисковой
способностью
и
отсутствием
деформированных особей.
Для реактивации (не ранее чем через два месяца) температуру повышают
на неделю до 14-15оС, а затем до 22-25ºС). Лет реактивированной трихограммы
начинается через 7-9 дней и продолжается примерно четыре дня.
3.2 Оптимальные условия для содержания и хранения бракона
Высокая пластичность бракона позволяет паразиту выдерживать
константную температуру 35ºС и влажность воздуха 30-50%. Но оптимальным
условием для максимальной плодовитости самок является температура 28-30ºС
и относительная влажность воздуха 60-70%.
Хранение бракона – важный этап в процессе его накопления. Особей
бракона, не участвующих в процессе дальнейшего размножения, следует
хранить до их выпуска на поля в условиях, приближенных к природным.
Длительно хранить бракона в искусственных условиях можно в
состоянии диапаузы, причем в той же фазе, что и в природе, учитывая, что
насекомые готовятся к ней питаясь осенью белково-углеводной пищей.
Свежевылетевших паразитов вводят в диапаузу при содержании их в течение 7
дней при 8-ми часовом фотопериоде, сменных дневных и ночных температурах
и подкормке сахарным сиропом с автолизатом пивных дрожжей. После этого
паразитов в стеклянных банках с гофрированной бумагой помещают на
длительное хранение при 5ºС и относительной влажностью воздуха 70%.
17
Насекомых периодически кормят сахарным сиропом, для чего их раз в две
недели извлекают на 2-3 часа из холодильника и ставят в светлую комнату.
Сохраняют только оплодотворенных самок, самцы практически полностью
погибают.
Хранение бракона с целью накопления его в летнее время возможно при
содержании в холодильнике при температуре до 7ºС и относительной
влажностью воздуха 70% в фазе имаго до 30 дней при дополнительном питании
и фазе куколок до 15 дней. Кратковременное хранение без подкормки
допускается до 10 дней, так как на 15 день смертность самок составляет 75%
3.3 Оптимальные условия для содержания и хранения златоглазки
У златоглазки обыкновенной яйца, личинки второго-третьего возрастов и
предкуколки нормально развиваются при температуре 20-30ºС и относительной
влажности воздуха 50-80%. Для личинок первого возраста оптимальны 25ºС и
80% влажности, для имаго 20ºС и 80% влажности воздуха.
В лабораторных условиях возможно хранение златоглазки во всех фазах,
каждая из которых отличается определенной длительностью хранения.
Наиболее подходящими являются диапаузирующие имаго, срок хранения
которых составляет до 6 месяцев, срок хранения яиц до 10 дней, а личинок и
куколок – 20 дней. Для хранения биоматериала можно использовать бытовые
холодильники, холодильные камеры. Яйца, личинки и куколки златоглазки
хранятся при температуре 4-8ºС и относительной влажности воздуха 50-90%.
Для успешного применения златоглазки важно располагать достаточным
запасом хищника, чтобы при необходимости иметь возможность выпуска
энтомофага на значительные площади. Для этого предлагается методика
хранения златоглазки в различных фазах ее развития.
Хранение яиц. Оптимальными условиями для хранения яиц златоглазки
является температура 5ºС и относительная влажность воздуха 80-90%. Для
хранения пригодны только свежеотложенные яйца. В зависимости от фазы
эмбрионального развития степень выживаемости яиц в процессе хранения
изменяется. Наиболее приемлемо хранение, продолжительность которого не
превышает 20 дней. За этот период 76-96% эмбрионов сохраняют
жизнеспособность. Более длительное хранение практического значения не
имеет, так как большая часть яиц за это время утрачивает жизнеспособность.
Так, при хранении яиц в течение 30-35 дней гибнет 36-50% эмбрионов.
Хранение личинок. Как и яйца, личинки златоглазки непригодны для
продолжительного хранения. При пониженных температурах 6-8ºС их хранят в
течение 30-40 дней. Более пригодны для этой цели личинки первого возраста.
Личинки второго и третьего возраста хранятся не более 20 дней. При более
продолжительном хранении снижается их жизнеспособность.
Хранение коконов. Хранят только те коконы, в которых сформировались
куколки, то есть через 7 дней после образования кокона. Коконы с
18
несформировавшимся куколками даже при 10-дневном хранении погибают (3036%). Куколок хранят при температуре 2ºС и относительной влажности воздуха
75%. Однако наибольшее влияние на их выживаемость оказывает
продолжительность хранения, которая не должна превышать 10 дней. Более
длительное пребывание в условиях пониженных температур приводит к
значительной гибели насекомых. Так, при хранении в течение 20 дней
жизнеспособность сохраняется лишь у 41-52% куколок.
Хранение взрослых репродуктивных особей. Лучшими условиями для
хранения взрослых активных насекомых являются температура 4ºС и
относительная влажность воздуха 70-90%. Взрослых златоглазок хранят в
круглых садках-ситах или в стеклянных пол-литровых или литровых банках.
Для увеличения общей полезной площади в банки помещают крестовину из
листового картона, которая делит банку на 4 сектора.
Для хранения используют молодых насекомых (самцов и самок). В поллитровую банку помещают до 200 насекомых, в банках большей емкостью
количество их увеличивают в соответствии с объемом. Перед хранением
насекомых кормят в течение 5-7 дней медом. В период хранения энтомофагов
периодически (1 раз в 5 дней) подкармливают медом или сахарным сиропом.
Это необходимо для поднятия плодовитости у самок. Такие условия позволяют
обеспечить продолжительное хранение активных энтомофагов (выживаемость
85-90%) при удовлетворительной их репродуктивной способности.
Хранение диапаузирующих златоглазок. Златоглазка обыкновенная в
жизненном цикле имеет имагинальную диапаузу, эту особенность используют
при хранении насекомых. Для них предварительно создают условия (короткий
день продолжительностью 10-12 ч в течение 22-34 дней), необходимые для
индукции у хризоп диапаузы. Чтобы ускорить процесс ухода насекомых в
состояние диапаузы, из их рациона в этот период исключают белковый корм и
подкармливают только сахарным сиропом. В период диапаузы златоглазки не
откладывают яиц. Внешне от активных хризоп они отличаются более светлой
окраской тела. Хранят диапаузирующих златоглазок при пониженной
положительной температуре 5ºС и относительной влажности воздуха 70%.
Диапаузирующие насекомые более пригодны для хранения, чем активные
энтомофаги. Даже через 150 дней после хранения выживает более 70%
златоглазок, а из отложенных ими яиц отрождается до 93% жизнеспособных
личинок. Реактивируются насекомые при световом периоде 16 часов.
19
4 СТАНДАРТ
И
МЕТОДИКА
БИОАГЕНТОВ (ЭНТОМОФАГОВ)
ОПРЕДЕЛЕНИЯ
КАЧЕСТВА
Решающее значение для эффективного подавления популяции вредителей
имеет качество используемого биоагента, которое зависит как от исходной
маточной культуры, так и от строгого соблюдения режима микроклимата при
разведении, а также качества корма. Соблюдение стандартных показателей
качества биоагентов позволяют поддерживать производство качественного
биоматериала, следовательно их биологическую и экономическую
эффективность. Для сохранения качественных показателей нарабатываемого
биоматериала необходимо также проводить регулярное обновление популяции
биоагентов и проведение пассажа через природного хозяина.
4.1 Стандарт и методика определения качественных показателей
трихограммы
Основные
стандартные
показатели
качества
трихограммы:
плодовитость самок, соотношение полов, выживаемость, количество
деформированных особей, продолжительность жизни самок, зараженность яиц
зерновой моли (ситотроги) трихограммой, количество яйцекладущих самок
(таблица 1).
Таблица 1 - Стандартные показатели качества трихограммы, размножаемой на
яйцах зерновой моли - ситотроги (Sitotroga cerealella Oliv.)*
№ п/п
1
2
3
4
5
6
7
8
Наименование показателя
Значение
показателя
Установить
видовую
принадлежность
Trichogramma sp.
(определение)
Зараженность яиц ситотроги трихограммой (не
80
менее, %)
Выход имаго трихограммы из яиц ситотроги,
80-85
т.е. выживаемость (не менее, %)
Соотношение полов (самцов и самок, не менее)
1:2
Продолжительность жизни самок (не менее,
5
суток)
Плодовитость самок (количество яиц, не менее,
30
штук)
Яйцекладущих самок (не менее, %)
90
Деформированные особи имаго (не более, %)
5
*Примечание: при соответствии вышеуказанным стандартным показателям качества,
производимая партия трихограммы считается качественной.
20
Таблица 2 – Класс качества и расчетная биологическая эффективность
трихограммы, %
Класс качества трихограммы
Расчетная эффективность
трихограммы, %
I
свыше 78-80%
II
56-78%
III
33-56%
Нестандартная
ниже 33%
Зараженность яиц зерновой моли (ситотроги) трихограммой
Из анализируемой партии зараженных яиц зерновой моли отбирают
пробу, состоящую примерно из 1000 яиц. Под бинокулярным
стереомикроскопом с подсветкой (например, Микромед МС-2) на белой бумаге
препаровальными иглами отделяют черные (зараженные) яйца от
покрасневших (незараженных) яиц. Затем подсчитывают число незараженных
яиц и определяют процент зараженности по формуле:
Х=
А В
*100%, (2)
А
где: Х – зараженность яиц зерновой моли, %;
А – общее число яиц;
В – число покрасневших (незараженных) яиц.
Выход имаго трихограммы из яиц ситотроги, т.е. выживаемость
Не из всех почерневших яиц ситотроги выходит трихограмма. По разным
причинам часть трихограммы погибает на преимагинальных стадиях развития.
Для подсчета выживаемости трихограммы, из числа зараженных яиц
отобранных для определения зараженности яиц ситотроги отбирают 400
экземпляров и помещают их по 100 штук в пробирки, на которых отмечают
номер партии и дату заражения. Пробирки закрывают плотной тканью и
закрепляют резиновым кольцом. После естественной гибели всех особей
трихограммы подсчитывают число вылетевших из яиц паразитов в каждой
пробирке. Посчитывают процент выживаемости по формуле:
Х=
А1  А2  А3  А4
*100% , (3)
400
где: Х – процент выживаемости;
А1 …А4 – количество вылетевших особей в каждой пробирке.
Соотношение полов
На материале предыдущего анализа подсчитывают в каждой пробирке
под бинокуляром количество самцов и самок. Различие между самцами и
самками определяют по усикам. У самок они короткие, булавовидные, 5члениковые, заканчивающиеся утолщенной булавой, покрыты короткими
редкими волосками. У самцов усики продолговатые, на вершине
неутолщенные, последние членики усиков слиты между собой, покрыты
густыми длинными волосками.
21
После подсчета числа самцов и самок в каждой пробирке определяют
общее соотношение полов путем деления большего количества особей по
половой принадлежности к меньшему количеству:
где: А – общее количество самцов;
В – общее количество самок.
Плодовитость, продолжительность жизни и число яйцекладущих самок
Из производимой партии трихограммы берут пробу около 3500
зараженных трихограммой яиц ситотроги (или около 50 мг), помещают их в
поллитровую банку и накрывают плотной тканью. Банку содержат при
температуре 20-30ºС и относительной влажности воздуха 50-70%. Первыми
начинают вылетать самцы, затем самки. Спаривание происходит в течение 3-5
часов после вылета. После спаривания отсаживают в 10 пробирок по одной
самке. В каждую пробирку помещают тонкую полоску белой бумаги с
наклеенными на нее свежеотложенными яйцами ситотроги из расчета 100-150
экземпляров. Пробирки закрывают тканью и затягивают резиновым кольцом.
Ежедневно самок дважды в сутки подкармливают 20% сахарным сиропом,
путем смачивания ватных тампонов. Ежедневно просматривают пробирки,
отмечая погибших самок.
Среднюю плодовитость самок (P) трихограммы в партии определяют по
формуле:
где: Е – количество отложенных яиц каждой самкой в отдельной
пробирке;
n – общее количество самок.
Среднюю продолжительность жизни самок (L) определяют по формуле:
где: Dn – продолжительность жизни отдельной самки;
n – общее количество самок.
Процент яйцекладущих самок (F) вычисляют по формуле:
где: S – количество стерильных самок (то есть пробирка с самкой, где не
произошло заражение яиц ситотроги);
n – общее количество самок.
Деформированные особи имаго трихограммы
22
Частично или полностью бескрылые особи трихограммы появляются в
результате длительного разведения потомства исходной популяции, нарушения
технологического режима размножения яйцеедов. Для определения процента
деформированных особей в поллитровую банку помещают 1000 зараженных
трихограммой яиц ситотроги. После полного вылета и естественной гибели
паразитов отбирают произвольно 500 экземпляров, просматривают их под
бинокуляром, отмечая отсутствие крыльев или их деформацию. Вычисляют
процент деформированных особей по формуле:
А
В
Х= * 100% , (8)
где: Х – процент деформированных особей;
А – количество деформированных особей;
В – общее количество просмотренных особей.
4.2 Стандарт и методика определения качественных показателей
бракона
Основные стандартные показатели качества бракона: размеры имаго и
коконов, соотношение полов, плодовитость самок и их продолжительность
жизни, выживаемость, деформированные имаго, особи бракона, получивших
свое развитие на одной гусенице (таблица 3).
Таблица 3 - Стандартные показатели качества бракона, размножаемого на
гусеницах большой вощинной огневки (Galleria melonella L.)*
№
Значение
Наименование показателя
п/п
показателя
1
2
3
Установить видовую принадлежность
1
Braсon sp.
(определение)
2
Длина тела самки (не менее, мм)
2,2-2,5
3
Длина тела самца (не менее, мм)
2,0-2,2
4
Длина кокона (не менее, мм)
3-3,6
Плодовитость самок (количество яиц, не менее,
5
65
штук)
6
Продолжительность жизни самок (не менее, суток)
10
Отрождение имаго из коконов, т.е. выживаемость
7
85
(не менее, %)
Количество бракона, получивших свое развитие на
8
5
одной гусенице (не менее)
9
Соотношение полов (самцов и самок, не менее)
1:1
10 Деформированные особи имаго (не более, %)
5
*Примечание: при соответствии вышеуказанным стандартным показателям качества,
производимая партия бракона считается качественной.
Размеры бракона
23
Из размножаемой партии бракона отбирают произвольно 10 самок, 10
самцов и 10 коконов. Самок от самцов различают по морфологическим
признакам. Размер самцов меньше, чем самок. Усики самки 16-17-члениковые,
а у самцов 23-26-члениковые. У самок на конце брюшка внутри специального
отростка имеется рыжевато-коричневый яйцеклад длиной до 1 мм. Затем под
бинокуляром на масштабно-координатной бумаге измеряют размеры
отобранных самок, самцов и коконов, затем подсчитывают средний размер.
Плодовитость самок
Из свежевылетевшей партии бракона через два дня после спаривания
отбирают произвольно 10 самок, помещают их в отдельную пробирку по одной,
закрывают тканью, закрепляют резиновым кольцом. Туда же закладывают по 5
гусениц большой вощинной огневки на гофрированной бумаге. Ежедневно
подкармливают 20% сахарным или медовым сиропом. После того, как самка
парализует гусеницы и отложит на них яйца, на 5-ый день самок переводят в
другие пробирки, куда также закладывают по 5 гусениц на гофрированной
бумаге. На 5-ый день снова переводят бракон в другие пробирки и повторяют
процедуру до полной гибели самок. После этого подсчитывают общее
количество отложенных яиц во всех пробирках и определяют среднюю
плодовитость самок по формуле:
Х=
А
, (9)
В
где: Х – средняя плодовитость самок;
А – общее количество отложенных яиц;
В – количество самок.
Продолжительность жизни самок
При определении показателя плодовитости самок одновременно
отмечают продолжительность жизни самок в каждой из 10 пробирок, затем
подсчитывают среднюю продолжительность по формуле:
Х=
А1  А 2  .....А n
, (10)
N
где: Х – средняя продолжительность жизни самок;
А1 ….Аn – продолжительность жизни каждой самки;
N – количество самок.
Отрождение имаго из коконов
На пораженных гусеницах большой вощинной огневки, полученных при
определении показателя плодовитости самок, подсчитывают общее количество
коконов на всех гусеницах. Пробирки с коконами помещают в термостат и
содержат при температуре 28ºС и относительной влажности 65-70% до полного
вылета бракона. Подсчитывают количество имаго и определяют процент
отрождения имаго по формуле:
Х=
АВ
*100% , (11)
А
24
где: Х – отрождение имаго из коконов;
А – общее количество коконов;
В – коконы, из которых не вылетел бракон.
Количество бракона, получивших свое развитие на одной гусенице
Среднее количество бракона, получивших свое развитие на одной
гусенице, вычисляют соотношением общего количества бракона, полученных в
процессе определения показателя плодовитости самок на всех учетных
гусеницах, к общему количеству парализованных гусениц по формуле:
С=
A
, (12)
B
где: С – среднее количество бракона получивших свое развитие на одной
гусенице;
А – общее количество бракона;
В – общее количество парализованных гусениц.
Соотношение полов
Из партии свежевылетевшего бракона произвольно отбирают 100 особей
бракона. Подсчитывают отдельно количество самцов и самок, различая их по
морфологическим признакам. Размер самцов меньше, чем самок. Усики самки
16-17-члениковые, а у самцов 23-26-члениковые. У самок на конце брюшка
внутри специального отростка имеется рыжевато-коричневый яйцеклад длиной
до 1 мм.
После подсчета общего числа самцов и самок определяют
соотношение полов А:В, где А – общее количество самцов, В – общее
количество самок, путем деления большего количества особей по половой
принадлежности к меньшему количеству.
Деформированные особи имаго
Из партии свежеотродившихся имаго бракона отбирают 100 особей,
умертвляют их уксусным эфиром или хлороформом и под бинокуляром
просматривают и подсчитывая отдельно особи с деформированными
недоразвитыми крыльями. Подсчитывают процент деформированных особей по
формуле:
Х=
AB
*100% , (13)
A
где: Х – процент деформированных особей;
А – общее количество имаго;
В – недоразвитые особи.
4.3 Стандарт и методика определения качественных показателей
златоглазки
Основные стандартные показатели качества златоглазки: плодовитость
самок, продолжительность жизни самок, соотношение полов, выживаемость,
масса коконов, количество деформированных особей, размеры имаго (таблица
4).
25
Таблица 4 - Стандартные показатели качества златоглазки обыкновенной
(Chrysopa cаrnea Steph.), размножаемой на яйцах зерновой моли - ситотроги*
№
Значение
Наименование показателя
п/п
показателя
1 Установить видовую принадлежность (определение)
Chrysopa sp.
2 Плодовитость самок (количество яиц, не менее, штук)
250
3 Выживаемость от стадии яйца до имаго (не менее, %)
70
4 Деформированные особи имаго (не более, %)
8
5 Продолжительность жизни самок (не менее, суток)
20
6 Масса коконов (не менее, мг)
7
7 Соотношение полов самцов и самок (не менее)
1:1
8 Размеры имаго (не менее, мм):
самки
10
самца
7
*Примечание: при соответствии вышеуказанным стандартным показателям качества,
производимая партия златоглазки обыкновенной считается качественной.
Плодовитость самок
Из произведенной партии златоглазки произвольно отбирают 10 самок и
10 самцов и помещают их по одной паре в 10 однолитровых банок, куда
закладывают лоскуты темной ткани. Имаго подкармливают 10% медовым
сиропом и автолизатом пивных дрожжей, содержат при температуре 24-26ºС и
относительной влажности 60-65%. Ежедневно подсчитывают количество яиц,
отложенных всеми самками, меняя лоскуты с отложенными яйцами на чистые.
Процедуру повторяют до полной гибели самок во всех банках. При случае если
в одной из банок самка не откладывает яйца, то ее исключают из учета.
Определяют плодовитость самок по формуле:
П=
А
, (14)
n
где: П – средняя плодовитость самки;
А – общее количество яиц, отложенных всеми самками;
n – количество яйцекладущих самок;
Выживаемость
Из партии отложенных яиц отбирают 50 штук и раскладывают в
пробирки по одному яйцу. Пробирки закрывают ватными тампонами и
содержат при температуре 24-26ºС и относительной влажности 60-65%. После
отрождения личинок их подкармливают яйцами ситотроги из расчета 20 мг на
одну личинку. После образования коконов и вылета имаго подсчитывают
выживаемость по формуле:
Х=
AB
*100% , (15)
A
где: Х – выживаемость;
26
А – общее количество отобранных яиц;
В – количество неотродившихся личинок или погибших.
Деформированные особи имаго
Из производимой партии златоглазки отбирают произвольно 100 коконов
и помещают их в трехлитровую банку до выхода имаго златоглазки. Затем
подсчитывают число деформированных особей имаго (деформированные и
недоразвитые крылья, отсутствие или деформация усиков). Определяют
процент деформированных особей по формуле:
Х=
AB
*100% , (16)
A
где: Х – процент деформированных особей;
А – общее количество имаго;
В – недеформированные особи.
Продолжительность жизни самок
Учет продолжительности жизни самок ведут одновременно при
определении плодовитости самок и подсчитывают по формуле:
П=
П1  П 2  ....П n
, (17)
N
где: П – средняя продолжительность жизни самок;
П1 ….Пn – продолжительность жизни каждой самки;
N – общее количество самок.
Масса коконов
При отборе из производимой партии златоглазки 100 коконов для
определения процента деформированных особей производят одновременное их
суммарное взвешивание и определяют среднюю массу коконов по формуле:
М=
Mn
, (18)
n
где: М – средняя масса коконов;
Мn – общий вес коконов;
n – количество коконов.
Соотношение полов
Из произведенной партии отбирают произвольно 100 особей имаго.
Подсчитывают отдельно количество самцов и самок, различая их по
морфологическим признакам. Самцы размером меньше самок и брюшко у них
более узкое. После подсчета общего числа самцов и самок определяют
соотношение полов путем деления большего количества особей по половой
принадлежности к меньшему количеству:
где: А – общее количество самцов;
В – общее количество самок.
Размер имаго
При определении показателя соотношения полов одновременно под
бинокуляром на масштабно-координатной бумаге определяют размеры
отобранных имаго, затем подсчитывают средний размер самок и самцов.
27
5 КРИТЕРИЙ БИОЛОГИЧЕСКОЙ ЭФФЕКТИВНОСТИ БИОАГЕНТОВ
(ЭНТОМОФАГОВ) ПРИ ПОЛЕВОМ ПРИМЕНЕНИИ С УЧЕТОМ НОРМ И
КРАТНОСТИ ИХ ВЫПУСКОВ
Для определения численности хлопковой совки необходимо проводить
регулярный мониторинг лета бабочек используя феромонные ловушки,
периодические обследования полей на обнаружение яйцекладок и гусениц, а
также составлять график динамики лета бабочек с указанием начала, пика и
спада массового лета. На основании этих данных принимают решение о
проведении конкретных биологических мер борьбы с яйцами и гусеницами
совок. Выпуски имаго трихограммы проводят в утренние или вечерние часы,
расселение паразитированных ею яиц ситотроги – в любое время. Начинают эту
работу в начале лета бабочек вредителей или при наличии на 100 растениях 1-2
яиц совок.
Исходя из численности яиц и гусениц хлопковой совки на посевах
хлопчатника, выпускают также бракон и златоглазку, а также применяют
микробиологические препараты. При численности 2-3 яиц или гусениц
хлопковой совки на 100 растениях проводят выпуск златоглазки (в стадии яиц)
в соотношении хищник : вредитель - 1 : 10. Отродившиеся личинки хищника
активно снижают численность яиц и гусениц совок. При численности гусениц
младших возрастов совки после выпусков трихограммы, превышающей ЭПВ в
полтора и более раза (ЭПВ 8-12 яиц или гусениц хлопковой совки на 100
растений), проводят обработку одним из биопрепаратов: лепидоцид,
битоксибациллин, ак кобелек, бинорам, ж., биотурин аспорогенный паста,
греен голд, 0,3% масс.э., дипел, с.п. с соответствующей нормой расхода, либо
используют химические инсектициды согласно «Списку пестицидов
(ядохимикатов) разрешенных ….».
Если после выпусков трихограммы численность отродившихся гусениц
совки небольшая, то не применяя биологические препараты, по достижению
гусеницами 3-го возраста целесообразно проводить выпуск бракона. Его
расселяют 3 раза против каждого поколения вредителя в соотношении паразит:
вредитель - 1 : 20; 1 : 10; 1 : 5 с интервалом 7-8 дней против каждого поколения.
Учеты численности комплекса сосущих вредителей проводят во II и III
декадах апреля. Вредители первоначально появляются очагами, поэтому
проводят осмотр полей по краям и в диагонально-шахматном порядке.
Найденные очаги отмечают красными флажками. Для определения
численности паутинного клеща на полях, в первую очередь осматривают места
прошлогодних очагов, так как вероятность появления клеща здесь значительно
выше. Причем подавление численности клеща необходимо произвести до
начала яйцекладки.
5.1 Критерий биологической эффективности биоагентов хлопковой
совки
28
Трихограмму против яиц хлопковой совки выпускают не менее чем
трехкратно против каждого поколения вредителя: первый в начале яйцекладки
каждой генерации, последующие два – через 4-5 дней до конца яйцекладки
каждой генерации, а при растянутых сроках лета бабочек и яйцекладки
проводят еще 2-3 дополнительных выпуска. В апреле-мае паразита выпускают
на сорняки, люцерну, кукурузу, томаты, с III декады мая и по 1 сентября – на
хлопчатник.
Количество зараженных трихограммой яиц, необходимое для
обеспечения нормы выпуска самок на гектар, определяют по формуле:
, (20)
где: N- норма выпуска самок/га;
N1- количество яиц, зараженных трихограммой;
а – доля почерневших яиц хозяина при массовом разведении
трихограммы;
b1- доля яиц (из числа почерневших), из которых отрождается
трихограмма;
b2- процент самок;
m – среднее число яиц, откладываемых трихограммой в одно яйцо
хозяина.
Нормы выпуска трихограммы (60х80х60 тыс. особей/га или 0,75х1,0х0,75
грамм/га), выражены в числе самок на гектар. Если яйцекладка совки
продолжается, то рекомендуется проводить и четвертый выпуск трихограммы с
нормой 60 тысяч особей/га. Биологическая эффективность трихограммы при
указанных нормах выпуска может достигать до 35%.
Выпуск бракона против гусениц средних и старших возрастов совки
следует проводить в утренние или вечерние время при тихой, безветренной
погоде. Норма выпуска на 1 га зависит от плотности гусениц вредителя. В
период весеннего развития хлопковой совки при появлении первых гусениц
эффективно соотношение 1 : 20 (1 самка наездника на 20 гусениц совки), при
повторном выпуске – 1 : 10, при третьем – 1 : 5.
Зараженность гусениц вредителя естественной популяцией бракона не
превышает 15%, при массовых выпусках – 40-50%. Использование паразита
целесообразно в комплексе с другими энтомофагами.
Против хлопковой совки следует воздержаться от применения
инсектицидов при наличии 200-250 особей хищников на 100 растений и
заражении яиц и гусениц вредителя паразитами и болезнями в пределах 6080%. Экономический порог вредоносности хлопковой совки 9-12 яиц, гусениц
на 100 растений.
5.2 Критерий биологической эффективности биоагентов паутинного
клеща
При определении численности паутинного клеща на полях в первую
очередь осматривают места прошлогодних очагов. Энтомоакарифаги способны
подавить численность клеща только к концу I декады июля, когда он нанесет
29
ощутимый вред. С целью подавления численности фитофага в ранний период
появления (I декада мая) необходимо двух кратное расселение яиц или личинок
златоглазки первого или второго возраста при обнаружении даже единичных
особей клеща. При этом биологическая эффективность златоглазки может
достигать 15-20%.
Сначала определяют количество вредителя на одном растении и среднее
количество зараженных растений в очаге, а затем проводят расселение яиц
златоглазки.
Норма выпуска златоглазки составляет в среднем 250-300 яиц на 1 га.
Эффективность златоглазки зависит от плотности жертвы. Выпуск яиц
златоглазки проводят при соотношении хищник : жертва 1:5; 1:10; 1:15.
Интервалы между выпусками составляют 7 дней.
Химические обработки не следует проводить против паутинного клеща,
если на 100 растениях хлопчатника имеются - 150-200 особей различных
биоагентов, включая 30-35% клещеядного трипса.
В районах многолетнего возделывания хлопчатника в случае заражения
сосущими и грызущими вредителями следует воздерживаться от применения
химических средств при наличии на 100 растений 250-300 особей различных
энтомоакарифагов.
Экономический порог для паутинного клеща является численность 140150 особей на 100 листьев.
Значения экономических порогов вредоносности особо опасных
вредителей хлопчатника должны постоянно уточняться.
30
6 НОРМАТИВ
ПО
ОПРЕДЕЛЕНИЮ
БИОЛОГИЧЕСКОЙ
ЭФФЕКТИВНОСТИ БИОАГЕНТОВ (ЭНТОМОФАГОВ) – ТРИХОГРАММЫ,
БРАКОНА И ЗЛАТОГЛАЗКИ ПРОТИВ ХЛОПКОВОЙ СОВКИ И
ПАУТИННОГО КЛЕЩА НА ПОСЕВАХ ХЛОПЧАТНИКА
При проведении защитных мероприятий с помощью биоагентов
(трихограмма, бракон и златоглазка) необходимо учитывать и фиксировать
сроки, уязвимые стадии и первоначальная плотность вредителя (хозяина),
соотношение хищник : жертва, фаза развития растения, нормы и кратность
применения биоагентов.
Для биологической защиты хлопчатника от яиц и гусениц хлопковой
совки используют Trichogramma pintoi, Chrysopa carnea и Bracon hebetor,
размноженные в биофабриках или биолабораториях.
Биологическую эффективность (Э) данных биоагентов определяют по
формуле:
Мо * Пк  Мк * По
Э
*100 , (21)
( Пк  Мк ) * По
где: По - число собранных яиц или гусениц на опытном поле;
Пк - тоже на контрольном поле;
Мо - число зараженных яиц или гусениц на опытном поле;
Мк - тоже на контрольном поле.
На посевах хлопчатника и др. сельскохозяйственных культурах учеты
зараженности яиц хлопковой и других совок трихограммой проводят в точках
наблюдения (учетные площадки). На хлопчатнике берут 10 растений,
расположенных в двух смежных рядах по 5 растений в каждом. Учетные
площадки не размещаются на «защитной полосе». Ширина полосы – от 5 до 20
м в зависимости от культуры и площади поля. Учетные площадки размещаются
равномерно по полю в шахматном порядке, либо по двум диагоналям.
Первый учет количества яиц вредителя и зараженности их паразитами
проводят накануне или в день выпуска трихограммы на поле.
При проведении полевых учетов необходимо руководствоваться
следующими правилами: число точек наблюдения (учетных площадок) зависит
от площади трихограммированного поля (таблица 5).
При учете на растениях собирают и подсчитывают все яйца,
обнаруженные на культурных растениях и сорняках (вьюнок, осот и др.), а
также на сухих остатках. Собранные яйцекладки вместе с частями растений или
сухими остатками помещают в отдельные пробирки, нумеруют и этикетируют.
Пробирки завязывают тонкой материей и содержат их в условиях,
близких к природным (на стеллажах, под навесом, на открытой веранде и др.)
ежедневно ведут наблюдения за развитием яиц в каждой пробирке. Зараженные
паразитом яйца (почерневшие) отделяют. Когда из собранных незараженных
яиц отродятся гусеницы, их также отделяют. В дальнейшем подсчитывают
количество зараженных и незараженных яиц и определяют процент заражения
на каждую дату учета отдельно.
31
Таблица 5 – Количество учетных площадок в зависимости от площади
Площадь поля, га
Число точек наблюдений (учетных
площадок)
до 5
10
5-15
15
15-35
20
35-40
30
40-50
40
50-75
50
75-100
70
100-150
100
150-200
140
свыше 200
150
Биологическую эффективность выпусков бракона, златоглазки
устанавливают при обследованиях, проводимых до и после их выпуска. При
этом подсчитывают общее число гусениц, в том числе здоровых,
парализованных и погибших на 100 учетных растениях на поле. Полученные
данные позволяют определить биологическую эффективность применения
бракона и златоглазки (Э) по формуле:
Э
АБ
*100, (22)
А
где: А – численность гусениц на 100 растений до выпуска бракона или
златоглазки;
Б – численность здоровых гусениц на 100 растений после выпуска
паразита или хищника.
Например: до выпуска на 100 растениях на поле было 4 здоровых
гусеницы, после выпуска бракона – 1 гусеница.
Определяют биологическую эффективность:
Э
4 1
*100  75%
4
Учеты эффективности выпусков бракона проводят через 5-6 дней после
каждого выпуска, при этом осмотр растений и подсчет гусениц проводят
осторожно, так как при резких колебаниях растений парализованные и
зараженные гусеницы осыпаются.
Биологическую эффективность выпуска златоглазки определяют путем
подсчета количества яиц, гусениц младших возрастов до и после выпуска
хищника.
Биологическую эффективность применения биологического препарата
против вредителей устанавливают, как и при использовании инсектицидов (с
наличием контроля), на 3-и, 7-ые и 14-ые сутки.
Количество взрослых гусениц и поврежденность генеративных органов
(бутоны, цветы, коробочки) учитывают однократно, в конце развития каждого
поколения хлопковой совки.
32
Хозяйственную эффективность применения биологических средств
против совок-вредителей на хлопчатнике устанавливают путем сбора урожая
хлопка-сырца вручную (1-ый, 2-ой сборы) или комбайном на всей площади.
Более простым, но менее точным способом величину сохраненного
урожая можно определить путем сбора урожая на модельных площадках.
Модельная площадка представляет собой два смежных ряда длиною 10 м,
площадью 1,8 м х 10 м = 18 м2. Таких модельных площадок на поле с
применением биологических, химических средств должно быть не менее 8 на
каждом варианте.
В Казахстане против паутинного клеща целенаправленно не применяют
златоглазок. Хотя они также является регуляторами численности данного
вредителя.
Определение биологической эффективности златоглазки проводят путем
сравнения количества паутинного клеща на 100 листьях хлопчатника.
Соответствующие расчеты для получения количественной оценки
биологической эффективности проводят по вышеописанной формуле (21).
В том случае, когда показатели численности паутинного клеща или
повреждения хлопчатника до обработки установить трудно, определение
биологической эффективности проводят по изменению численности вредителя
или повреждению растений в процентах к контролю:
Эок 
(К к  Ко)
*100, (23)
Кк
где: Эок – биологическая эффективность (смертность или снижение
численности вредителя или повреждения растений), в % к контролю;
Ко – количество живых вредителей или количество поврежденных
растений после выпуска энтомоакарифага в опыте;
Кк – то же в контроле, где выпуски не проводились.
При проведении учетов количества поврежденных растений или листьев
пользуется 5 балльной шкалой:
1 балл – повреждения листьев или растений отсутствуют;
2 балл – повреждения листьев или растений слабые (до 10%);
3 балл – повреждения листьев или растений средние (от 10 до 25%);
4 балл – значительные повреждения листьев или растений (от 25 до 50%);
5 балл – сильные повреждения листьев или растений (свыше 50%).
Установив процент поврежденных листьев или растений по
соответствующим баллам, можно определить суммарную площадь
поврежденных растений или площадь в среднем на 1 лист, а по формуле
вычислить процент снижения поврежденности в опыте.
Там, где возможно получение количественных показателей численности
вредителей, не следует заменять непосредственное определение количества
клещей балльной оценкой заселения ими растений.
Для определения оптимальных кратностей выпуска златоглазки (с одно-,
двух-трехкратным выпуском) учет проводится как по началу нарастания
33
численности клеща после каждого выпуска, так и в единый для всех вариантов
срок – по завершении выпусков в варианте с максимальным количеством
кратностей, обеспечивающих сдерживание развития вредителей на
хозяйственно-неощутимом уровне.
В связи с этим, против хлопковой совки и паутинного клеща наиболее
эффективно сочетание трихограммы против яиц, златоглазки против яиц,
гусениц младших возрастов и паутинного клеща, бракона против гусениц
средних и старших возрастов. Если после выпуска трихограммы, численность
отродившихся гусениц младших возрастов на 100 растений выше показателя
ЭПВ в полтора раза, то применяют один из биологических или химических
препаратов, согласно «Списку пестицидов (ядохимикатов), разрешенных ….».
При численности яиц, гусениц ниже ЭПВ проводят выпуски биоагентов.
Таким образом, путем чередования биологических агентов против
хлопковой совки и паутинного клеща можно с успехом сдерживать
численность вредителя ниже ЭПВ без использования химических средств.
34
СПИСОК ИСПОЛЬЗОВАННЫХ ИСТОЧНИКОВ
1 Абашкин А.С. и др. Руководство по массовому разведению и
применению трихограммы//-Москва. -1979. -С. 132.
2 Агасьева И.С., Исмаилов В.Я. Коллекции энтомоакарифагов и их
значение в биологической защите растений // Информационный бюллетень
ВПРС МОББ 42. – Санкт-Петербург. -2011. – С. 15-18.
3 Адашкевич Б.П. Биологическая защита крестоцветных овощных
культур от вредных насекомых. – Ташкент: ФАН. -1983. – 200 с.
4 Адашкевич Б.П., Умарова Г.М., Сорокина А.П. Виды энтомофага в
Узбекистане.// Защита растений. -М. -1987. -№9. -С. 34-36.
5 Адашкевич Б.П., Шапова А.П., Саидова З.Х., Нурмухамедова С.Ш.
Перспективы применения бракона в борьбе с вредителями хлопчатника. –
Ташкент. -1988. – 51 с.
6 Алимкулов Д.М. Испытание трихограммы эмбриофагум против
гроздевой листовертки в Алма-Атинской плодовой зоне // В сборнике
«Биологические методы борьбы с вредителями, болезнями и сорняками в
Казахстане». КазНИИЗиКР. -1992. – С. 63-72.
7 Ашикбаев Н.Ж. и др. Энтомофаги вредных насекомых и гербифаги
сорных растений./Учебное пособие в 2-х частях. –Алматы. -1996.-115 с.
8 Бегляров Г.А. и др. Методические указания по массовому разведению
и испытанию эффективности златоглазки обыкновенной./ВНИИФ. –Москва,
Колос. -1972.-32 с.
9 Бегляров Г.А. Состояние и перспективы применения в СССР
биологического метода защиты растений в закрытом грунте // В сб. статей:
Биологические средства защиты растений. – М.: Колос, 1974. – С. 200-209.
10 Бегляров Б.А., Ущеков А.Т. Методические указания по
биологическому методу борьбы с тлями в защищенном грунте. – Москва:
Колос, 1983. – 29 с.
11 Белякова Н.А., Павлюшин В.А. Современные тенденции в развитии
технологий разведения и применения многоядных энтомоакарифагов в
защищенном грунте // Информационный бюллетень ВПРС МОББ 42. – СанктПетербург. -2011. – С. 27-32.
12 Булыгинская М.А. и др. Рекомендации по практическому применению
полового феромона хлопковой совки в интегрированной защите хлопчатника// Москва. -1987. -С.16.
13 Воронин К.Е. и др. Временные методические указания по
использованию критериев эффективности природных популяций энтомофагов
и энтомопатогенов.//-Москва. -1986.-66 с.
14 Викторов Г.А. Экология паразитов-энтомофагов. – Изд.: Наука. 1976. – 152 с.
15 ВНИИБМЗР. Применение трихограммы в борьбе с комплексом
вредителей полевых культур // Рекомендации. М.: Агропромиздат. -1990. – 48 с.
16 Голышин Н.М., Гринберг Ш.М. Трихограмма в защите растений // Сб.
научных трудов: Агропромиздат. -1988. – 145 с.
35
17 ГосАгроПром СССР. Комплексное применение биологических
средств в интегрированной защите хлопчатника от вредителей // Рекомендации.
М.: Агропромиздат. -1989. – 19 с.
18 Гринберг Ш.М., Подберезская Л.В. Верификация лабораторного
показателя качества трихограммы с ее технической эффективностью //
Массовое разведение насекомых. – Кишинев: Тимпул. -1984. – С. 29-32.
19 Гринберг Ш.М., Боубэтрын И.Н., Пынзарь Б.В., Воротынцева А.Ф. О
результатах лабораторного разведения и использования разновозрастной
трихограммы // Массовое разведение насекомых. – Кишинев: Тимпул. -1984. –
С. 60-64.
20 Гринберг Ш.М. Рекомендации по применению трихограммы на
зерновых, технических и овощных культурах в СССР // ВАСХНИЛ. – Москва. 1985. – 86 с.
21 Гринберг Ш.М., Боубэтрын И.Н. Биологическое обоснование
применения трихограммы в борьбе со стеблевым мотыльком на кукурузе // В
сб. «Трихограмма в защите растений». – М.: Агропромиздат. -1988. – С.103-120.
22 Гринберг Ш.М., Никонов П.В. Трихограмма: возможности,
перспективы. //Защита растений. -М. -1988. -№7. -С. 23-27.
23 Гринберг Ш.М. и др. Применение трихограммы в борьбе с
комплексом вредителей полевых культур (рекомендации)./ -Москва, ВО
«Агропромиздат». -1990.-47 с.
24 Дуйсембеков Б.А., Исмухамбетов Ж.Д. Состояние и перспективы
развития биологического метода защиты хлопчатника от основных вредителей
в Южном Казахстане.// Труды Междунар. научно-практ. конференции
«Казахстан в новом мире и проблемы национального образования»,
посвященная 10-летию ун-та «Сырдария», –Жетысай. -2008. -том III
(Естественные науки). -С.419-423.
25 Дуйсембеков Б.А., Исмухамбетов Ж.Д. Биологическая эффективность
нового отечественного биопрепарата ақ көбелек с.п. против хлопковой совки.
Материалы междунар. науч.-практич. конф. «Казахстан в новом мире и
проблемы национального образования», посвященная 10-летию университета
«Сырдария». – Жетысай. -2008. -том III (Естественные науки). -C. 424-428.
26 Дюрич Г.М. Методические указания по сбору и определению
хозяйственно важных видов рода Trichogramma Westw. в Молдавской ССР //
ВНИИБМЗР. – Кишинев, 1979. – 24 с.
27 Ермичева Ф.М., Верещагина А.Б., Агеева Л.И., Дюрич Г.Ф.,
Язловецкий И.Г. В сб. «Трихограмма в защите растений». – М.:
Агропромиздат. -1988. – С. 63-72.
28 Зильберг Л.П. Пути повышения эффективности применения
трихограммы // В книге «Биологическая защита растений». – Кишинев:
Штиинца. -1976. – С. 28-33.
29 Зубков А.Ф. Естественный биометод в естественной агроэкосистеме //
Информационный бюллетень ВПРС МОББ 42. – Санкт-Петербург. -2011. –
С.83-88.
36
30 Ижевский С.С. Опыт массового разведения насекомых в зарубежных
странах // В сборнике «Массовое разведение насекомых». – Кишинев:
Штиинца. -1981. – С.7-10.
31 Исмухамбетов Ж.Д., Сагитов А.О. Актуальные задачи защиты и
карантина растений в Казахстане. // Защита и карантин растений в Казахстане.
–Алматы. -2005. -№2. – С.2-7.
32 Исмухамбетов Ж.Д. Пути развития биологического метода защиты
растений. //Вестник с-х науки Казахстана. –Алматы. -2011. -№ 5. –С.3-8.
33 Исмұхамбетов Ж.Д., Сағитов А.О., Айтбаев Ж.А. және т.б. Оңтүстік
Қазақстанда мақтаны зиянкестерден, аурулар мен арам шөптерден қорғау
жөніндегі ұсыныстар.// -Алматы, Бастау. -2002. -30 б.
34 Исмухамбетов Ж.Д., Сагитов А.О., Б.А. Дүйсембеков, Н.К.Кашкенов.
Оңтүстік Қазақстанда мақтаны зиянкестерден қорғау жөніндегі ұсыныстар.// Алматы. -2009. -21б.
35 Ismuchambetov Zh., Duisembekov B. Biological method of cotton
protection in Kazakhstan. Сб. Современные проблемы защиты и карантина
растений. //Междунар. научно-прак. конф., посвящ. 90-летию со дня рождения
Ж.Т. Джиембаева. -Алматы: Алейрон. -2005. -С.107-111.
36 Карелин В.Д., Белоусов Ю.В., Шийко Э.С., Непомнящая А.М.
Выращивание златоглазки семиточечной Chrysopa septempunctata Wesm. на
естественном и искусственном корме с целью использования ее против
комплекса вредителей огурцов в защищенном грунте // Массовое разведение
насекомых. – Кишинев: Тимпул. -1984. – С. 25-29.
37 Коваленков В.Г., Мещерякова Т.В. Маточник - резерватор
трихограммы и хабробракона.// Защита растений. -М. -1983. -№12. -С. 16-17.
38 Коваленков В.Г., Козлова Н.В. Применение габробракона в
интегрированной системе защиты растений // В сборнике «Массовое
разведение насекомых». – Кишинев: Штиинца. -1981. – С. 30-32.
39 Коваленков В.Г., Тюрина Н.М. Местные энтомофаги более
жизнеспособны.// Защита растений. -1995. -№3. -С.17.
40 Коваленков В.Г., Тюрина Н.М., Казадаева С.В. Энтомофаги как
фактор стабилизации агроэкосистем // Информационный бюллетень ВПРС
МОББ 42. – Санкт-Петербург. 2011. – С.104-108.
41 Кодиров А. Перспективы совместного использования биологических
и химических методов в сельском хозяйстве.// Агро Илим. –Ташкент. -2010. -№
4. -С. 28-29.
42 Кравцов А.А. Потенциал биологического метода // Ж. Защита
растений. –1978. – № 5. – С. 2-3.
43 Матпаева Б.Б. Использование златоглазок в биологическом методе
защиты растений // В сборнике «Биологические методы защиты
сельскохозяйственных культур в Казахстане». КазНИИЗР. – Алма-Ата. -1983. –
С.22-30.
44 Матпаева Б.Б., Кожахметова Ф.К., Асылова Р.Н. Энтомофаги в
защищенном грунте // Ж. Защита растений. – 1990. – №5. – С. 10-12.
37
45 Мирзалиева Х.Р. Биологический метод борьбы с вредителями
сельскохозяйственных культур // Учебное пособие. ТСИ. – Ташкент. -1986. – 54
с.
46 Миронова М.К. Европейские стандарты по интродукции и
применению полезных насекомых // Информационный бюллетень ВПРС МОББ
42. – Санкт-Петербург. -2011. – С.132-135.
47 МСХ УзССР. Методические указания по массовому разведению и
применению габробракона // ГУСХН. – Ташкент. -1976. – 20 с.
48 Назарбаев Н.А. Процветание сельского хозяйства – это процветание
народа. Выступление на республиканском совещании по вопросам АПК.
/Казахстанская правда за 31.01.2005.
49 Непомнящая А.М., Кушнир Д.М. Язловецкий И.Г. Экологические
исследования в целях оптимизации массового разведения златоглазки
обыкновенной Chrysopa carnea Steph. (Neuroptera, Chrysopidae) // В книге
«Применение
биологических
методов
защиты
растений
в
сельскохозяйственном производстве». – Кишинев: Штиинца. -1988. – С.88-93.
50 Попов Г.А. Биологические основы массового разведения энтомофагов
и их хозяев // В книге «Биологические средства защиты растений». – Москва:
Колос. -1974. – С. 95-103.
51 Резник С.Я., Умарова Т.Я. Причины и последствия отказа от
заражения у трихограммы // В сб. «Трихограмма в защите растений». – М.:
Агропромиздат. -1988. – С. 46-52.
52 Савойская Г.И. Кокцинеллиды. – Алма-Ата: Кайнар. -1988. – 247 с.
53 Сагитов А.О. Будущее за биологической защитой растений // Ж.
Жаршы. - 2011. – №3. – C. 3-7.
54 Сорокина А.П., Кот И.И. Трихограмма в агроценозах Туркмении. //
Защита растений. -М. -1986. -№12. -С. 16-18.
55 Супранович
Р.В.
Факторы,
определяющие
эффективность
трихограммы в борьбе с вредителями сельскохозяйственных культур //
Экспресс-информация. БелНИИЗР. – Минск. -1978. – 10 с.
56 Талпалацкий П.Л., Паруткина М.Ф., Рыбак В.Л. Массовое разведение
хлопковой совки Heliothis armigera Hb. для пассажирования трихограммы // В
сборнике «Массовое разведение насекомых». – Кишинев: Штиинца. -1985. – С.
3-11.
57 Танский В.И. Методические указания по разработке экономических
порогов вредоносности насекомых./-Ленинград. -1977. -16 с.
58 Танский В.И. Биологические основы вредоносности насекомых./ Москва, ВО «Агропромиздат». -1988. -183 с.
59 Твердюков А.П. и др. Биологический метод борьбы с вредителями и
болезнями в защищенном грунте // Справочник. – М.: Колос. -1993. – 159 с.
60 Тешлер М.П., Гринберг Ш.М. Построение обобщенного критерия
эффективности энтомофагов в борьбе с вредителями сельскохозяйственных
культур // Методические указания. ВАСХНИЛ. – Москва. -1990. – 19 с.
38
61 Титаев В.Н. и др. Методические рекомендации по планированию,
учету и отчетности в производственных лабораториях биологического метода
защиты растений // ВНИИБМЗР. – Кишинев. -1983. – 51 с.
62 Тобиас В.И. Значение систематики для интегрированных методов
защиты растений // В книге «Биологические средства защиты растений». –
Москва: Колос. -1974. – С. 41-60.
63 Тобиас В.И. Среднеазиатские виды браконид (Hymenoptera,
Braconidae), собранные на свет кварцевой лампы// В книге «Полезные
насекомые – опылители и энтомофагт». – Москва: Наука. -1967. – 382 с.
64 Тряпицын В.А. и др. Паразиты и хищники вредителей
сельскохозяйственных культур. – Л.: Колос. -1982. – С. 224-228.
65 Умбетаев И., Батькаев Ж.Я. Система возделывания хлопчатника на
юге Республики Казахстан. -2000. – 202 с.
66 Умбетаев И. Научные основы сортовой технологии возделывания
хлопчатника на мелиорируемых почвах юга Казахстана. //Автореф. дисс. на
соискание ученой степени д.с.-х.н. –Алматы. -2004, -52 с.
67 Успенский Ф.М. и др. Энтомофаги вредителей сельскохозяйственных
культур Узбекистана. / -Ташкент, «Фан» УзССР. -1980. -88 с.
68 Фадеев Ю.Н. (общее руководство над коллективом авторов).
Руководство по массовому разведению и применению трихограммы //
ВАСХНИЛ, ВНИИБМЗР. – Москва. -1979. – 132 с.
69 Чалков А.А. Биологическая борьба с вредителями овощных культур
защищенного грунта. – Москва: Россельхозиздат. -1986. – 95 с.
70 Щепетильникова В.А. Применение трихограммы в СССР // В книге
«Биологические средства защиты растений». – Москва: Колос. -1974. – С. 138158.
71 Щепетильникова В.А. (под редакцией). Методическое руководство по
выявлению, определению и изучению трихограммы // ВАСХНИЛ. – Москва. 1979. – 58 с.
72 Шийко Э.С. Массовое развитие паразита персиковой тли афидиус
(Aphidius matricariae Hal.). – Кишинев. -1986. – 15 с.
73 Шувахина Е.Я. Испытание экспериментального бокса для разведения
маточных культур обыкновенной и китайской златоглазок // В сборнике
«Массовое разведение насекомых». – Кишинев: Штиинца. -1985. – С.41-47.
74 Шувахина Е.Я. Златоглазки и их использование в борьбе с
вредителями сельскохозяйственных культур // В книге «Биологические
средства защиты растений». –Москва:Колос. -1974. – С.185-199.
75 Яковчук Т.Н., Сазонов А.П. Применение ювеноида при массовом
разведении златоглазки обыкновенной (Chrysopa carnea Steph.) // В сборнике
«Массовое разведение насекомых». – Кишинев: Штиинца. -1981. – С. 23-24.
39