А.М.Третьяков, П.И. Евдокимов, Ю.А.Кушкина, В.А.Шабаев Паразитозы свиней и меры борьбы с ними на промышленных комплексах и специализированных фермах Улан-Удэ 2007 г 1 ДЕПАРТАМЕНТ КАДРОВОЙ ПОЛИТИКИ И ОБРАЗОВАНИЯ ПРИ МСХ РФ ФГОУ ВПО Бурятская государственная сельскохозяйственная академия им. В.Р. Филиппова кафедра паразитологии и эпизоотологии А.М.Третьяков, П.И.Евдокимов, Ю.А.Кушкина, В.А.Шабаев Паразитозы свиней и меры борьбы с ними на промышленных комплексах и специализированных фермах Методические указания УЛАН-УДЭ Издательство ФГОУ ВПО БГСХА 2007 2 УДК: Печатается по решению Методического совета ФГОУ ВПО Бурятская государственная сельскохозяйственная академии имени В.Р.Филиппова РЕЦЕНЗЕНТ В.Ц.Цыдыпов – заведующий кафедрой микробиологии, вирусологии и ВСЭ, доктор ветеринарных наук, профессор. Т.И.Филиппова – начальник отдела РГУ ветеринарии БРСББЖ. Т 66 А.М. Третьяков, П.И.Евдокимов, Ю.А.Кушкина, В.А.Шабаев Методическое пособие по диагностике паразитарных заболеваний животных для самостоятельной работы студентов факультета ветеринарной медицины очного, ускоренного и заочного обучения, а также для практикующих ветеринарных врачей и работников ветеринарных лабораторий. – Улан-Удэ: Издательство ФГОУ ВПО БГСХА имени В.Р.Филиппова, 2007. - с. В методических рекомендациях приводятся краткие сведения о наиболее распространенных гельминтозах и протозоозах свиней, особенностях проявления их на крупных комплексах, способах диагностики, а также методах и средствах дегельминтизации свиней, дезинвазии помещений, почвы и навоза. Методические рекомендации рассчитаны на студентов ветеринарных учебных заведений, ветеринарных и зоотехнических специалистов, руководителей свинокомплексов и личных подсобных хозяйств. УДК © Третьяков А.М., Евдокимов П.И., КушкинаЮ.А., Шабаев В.А. 2008. © БГСХА им В.Р. Филиппова, 2008. 3 Содержание ВВЕДЕНИЕ …………………………………………….. 3 1. ОСНОВНЫЕ НЕМАТОДОЗЫ СВИНЕЙ…………………5 Аскаридоз………………………………………………………..5 Эзофагостомоз…………………………………………………7 Трихоцефалез…………………………………………………...7 Оллуланоз свиней ……………………………………………..12 2. Основные протозоозы свиней…………………………24 Эймериоз (кокцидиоз) свиней………………………………….24 Балантидиоз свиней…………………………………………….29 Амебиаз (амебная дизентерия)………………………………..33 Трихомоноз свиней (кишечная форма)………………………..35 ЛИТЕРАТУРА…………………………………………………….36 4 ВВЕДЕНИЕ Создание крупных специализированных хозяйств и дальнейшая деконцентрация свиноводства создают предпосылки для внедрения прогрессивной технологии ведения отрасли и повышения экономической эффективности производства свинины. Однако наряду с положительными сторонами уплотненное содержание животных затрудняет профилактику и борьбу с гельминтозами и создает совершенно новые экологические условия, определяющие во многом эпизоотологию протозойных болезней. В этих условиях даже небольшое число животных с субклинической формой паразитозов способствует значительному рассеиванию яиц, личинок и ооцист в помещениях и почве территории ферм. Инвазия может быстро распространиться и причинить ущерб хозяйствам. В желудочно-кишечном тракте свиней паразитируют несколько видов гельминтов. В Сибири чаще встречаются аскариды, трихоцефалы и эзофагостомы. Они регистрируются у свиней как в обычных, так и в специализированных хозяйствах и крупных комплексах. Результаты исследований, анализ данных ветеринарной отчетности, ветеринарных лабораторий показывают, что заболеваемость и падеж свиней от гельминтозов снижаются. Однако имеется ряд хозяйств, где аскаридоз, эзофагостомоз, трихоцефалез, эймериоз и балантидиоз еще распространены, поэтому борьба с гельминтозами свиней остается актуальной задачей [9, 13, 17, 18]. Протозоозы свиней сравнительно мало изученные болезни, которые довольно часто встречаются в свиноводческих хозяйствах Республики Бурятия. Необходимо отметить, что в практике на кишечные болезни свиней, вызываемые простейшими, не обращают серьезного внимания. Поэтому в ветеринарной отчетности эти заболевания не указываются. Это еще связано с тем, что нет эффективных копроскопических методов исследования для выявления таких кишечных простейших как ооцист кокцидий, балантидий, амеб и трихомонад. В результате неправильно поставленного диагноза (расстройство деятельности кишечника на почве погрешностей в кормлении, отравления, инфекционные заболевания и др.), применяемые лечебно-профилактические мероприятия не дают ожидаемого эффекта. I. ОСНОВНЫЕ НЕМАТОДОЗЫ СВИНЕЙ Аскаридоз Заболевание вызывается нематодой Ascaris suum. Длина самца 10-22 см, самки - 20-35 см. Гельминты паразитируют в тонком отделе кишечника. Заболевает преимущественно молодняк 1-7-месячного возраста. Вначале у них поражаются легкие, печень и лимфатические узлы, а затем - кишечник. Животные резко отстают в росте и развитии. Аскариды развиваются без участия промежуточного хозяина. Самки откладывают в просвет кишечника до 200 тыс. яиц в сутки, которые с фекалиями выделяются во внешнюю среду. В благоприятных условиях они в течение 20-40 дней становятся инвазионными, т.е. способными заражать животных. Инвазирование свиней происходит через корма и почву, содержащие инвазионные яйца, а также при поедании дождевых червей - резервуарных хозяев аскарид. 5 В тонком отделе кишечника личинки активно проникают в кровеносные сосуды и током крови заносятся в печень. Здесь, нарушал целостность паренхимы, попадают в малый круг кровообращения и мигрируют по легочной артерии в легкие. Из легочных капилляров они внедряются в ткань, попадают в бронхи и трахею и откашливаются со слизью в ротовую полость. Вместе со слюной личинки заглатываются. В тонком отделе кишечника за 1,5-3 месяца развиваются половозрелые аскариды. Источником инвазии служат больные свиньи, выделяющие яйца гельминтов с калом. Большую опасность представляют навоз, лежащей длительное время на территории ферм, и почва выгульных двориков. Инвазирование чаще происходит в свинарниках, где нерегулярно убирают фекалии, а помещение находится в антисанитарном состоянии. Поросята-сосуны заражаются через загрязненное вымя свиноматок, при облизывании окружающих предметов, особенно в стойловый период в свинарниках с деревянным полом, переполненных животными. На фермах, где свиньи находятся на одних и тех же выгульных площадках, летних лагерях, инвазированность животных летом бывает высокой. Массовому заражению поросят способствует неполноценное кормление, особенно при гипо- и авитаминозе А и В. На комплексах промышленного типа источником инвазии служат ремонтные свиньи, завозимые из хозяйств-поставщиков. При аскаридозе обычно маточное поголовье и хряки заражены в меньшей степени, чем ремонтные животные. Экстенсивность инвазии держится на одном уровне и не зависит от времени года. Хотя свиноматки и инвазированы аскаридами, при соблюдении технологии поросята на комплексе не заражаются. Распространению аскаридоза способствует весьма высокая устойчивость яиц к воздействию различных факторов внешней среды. В сырых свинарниках, навозе и почве яйца остаются живыми в течение 12 месяцев и более. Значительную роль в развитии яиц играет структура почвы. Лучше они развиваются в супесчаной и черноземной почвах. Благодаря защитным приспособлениям, непроницаемости оболочек, яйца аскарид устойчивы к воздействию и химических веществдезинфектантов. На промышленных комплексах в помещениях для свиноматок и хряков яйца аскарид разных стадий развития можно обнаружить на полу, решетках, кормушках, поилках. Инвазионной стадии в сырых местах достигают через 40-60 дней, в сухих - гибнут через 10-30 дней. Мигрирующие личинки аскарид вызывают бронхопневмонию. На 6-8-й день после заглатывания инвазионных яиц начинается мучительный кашель, затрудненное и учащенное дыхание. У животных повышается температура, появляется рвота. Поросята отказываются от корма, зарываются в подстилку. Могут быть случаи падежа от бронхопневмонии. Кишечная форма протекает разнообразно, но чаще хронически, без характерных клинических признаков. Наиболее часто наблюдают отставание в росте, недоразвитость, нарушение деятельности желудочно-кишечного тракта, рвоту, признаки рахита. При интенсивном заражении регистрируется закупорка кишечника и гибель животного от его разрыва. Аскариды, попадая в печень и поджелудочную железу, вызывают воспалительные процессы в этих органах. 6 Эзофагостомоз Известен под названием узелковая болезнь. Возбудители - Oesophagostomum dentatum и некоторые другие виды гельминтов рода Oesophagostomum. Тело самцов и самок от 7,5 до 13,5 мм. Заболевание чаще бывает у поросят группы откорма и взрослых свиней. Оно характеризуется глубоким поражением слизистой оболочки толстого отдела кишечника, образованием множества паразитарных узелков, профузным поносом и истощением. Свиньи с фекалиями выделяют во внешнюю среду яйца эзофагостом. Через 1-5 суток из яиц выходит личинка, которая через 8 дней становится инвазионной. Личинки попадают в организм свиньи с кормом, водой и активно проникают в толщу слизистой оболочки кишечника главным образом толстого отдела, где образуют узелки. Через 23 дня они возвращаются в просвет кишечника, спустя 15 дней превращаются в половозрелую стадию и начинают продуцировать яйца. Источником инвазии являются больные животные. Основной путь заражения - корма, водопои, почва выгульных площадок, летних лагерей и пастбищ. Яйца эзофагостом можно обнаружить уже у поросят в 2-месячном возрасте. В дальнейшем экстенсивность инвазии нарастает и максимальна зараженность у свиноматок и хряков. Поэтому для поросят-сосунов опасны инвазированные матки. На свиноводческих комплексах экстенсивность инвазии у взрослого поголовья значительно выше, чем у ремонтного. Это говорит о том, что в помещениях комплексов имеются условия для развития яиц эзофагостом и заражения животных, личинки достигают инвазионной стадии за 20-25 суток. Инвазирование профилактируется при строгом соблюдении ветеринарносанитарных правил и всей заданной технологии в помещении для опороса. Различают острое и хроническое течение болезни. Острое течение обусловлено внедрением личинок в слизистую оболочку кишечника. Животные отказываются от корда, появляется профузный донос, который приводит к истощению и гибели. Хроническое течение обычно бессимптомное. Трихоцефалез Вызывается нематодой Trichocephalus suis, длина тела 33-53 мм. Гельминты паразитируют в толстом, отделе кишечника, а заболевание характеризуется нарушением функций желудочно-кишечного тракта и истощением животных. Трихоцефалезом болеют в основном поросята отъемного возраста и групп откорма. Яйца трихоцефал выделяются во внешнюю среду с фекалиями, инвазионной стадии достигают через 30-45 дней. Свиньи заражаются при заглатываний яиц с кормом и водой. В желудочно-кишечном тракте личинки через 40-45 дней превращаются во взрослых особей и для фиксации прошивают тонким (головным) концом слизистую оболочку кишечника. Заражение животных, происходит преимущественно в теплых и влажных свинарниках, а также на выгульных двориках, летних лагерях и на пастбищах. Поросята-сосуны инвазируются с первых дней жизни через загрязненные соски матери и окружающие предметы. На комплексах промышленного типа зараженность маточного поголовья значительно ниже, чем у завозимых животных. Поросята в этих хозяйствах трихоцефалезом не болеют. 7 При высокой интенсивности инвазии отмечается угнетение, слабость, прогрессирующее исхудание, судорожные движения. Больные поросята чаще лежат. Наблюдается учащение пульса, кровавый понос, непроизвольная дефекация. ДИАГНОСТИКА Диагностика аскаридоза, эзофагостомоза и трихоцефалеза основана на обнаружении яиц при исследовании свежих фекалий свиньи в лабораториях или хозяйствах. Пробы массой 10-20 г берут в бумажные пакеты от 10% поголовья, но не менее 50 проб. В сопроводительном документе указывают хозяйство, бригаду, вид, группу, количество животных в группе, фамилию оператора, дату взятия материала и на какие гельминтозы требуется анализ. Фекалии свиньи исследуют с применением флотационных способов, при которых используют насыщенный раствор хлорида натрия или раствор гранулированной аммиачной селитры по методу Г. А. Котельникова - В. М. Хренова: 1,5 кг селитры растворяют в 1 л кипящей воды, фильтруют через вату или марлю и остужают. Плотность такого раствора при 18-20°С - 1,32. 3 г фекалий смешивают с 50 мл раствора и процеживают через сито. Поверхностную пленку для микроскопии можно снимать через 15-20 мин. Использование селитры дает более точные результаты, чем применение раствора хлорида натрия. Прижизненный диагноз на аскаридоз ставят и по обнаружению гельминтов в фекалиях. Посмертная диагностика основана на обнаружении гельминтов в кишечнике. Бронхопневмонию, вызванную мигрирующими личинками аскарид, определяют исследованием кусочков легочной и печеночной ткани по методу Бермана-Орлова. ПРОФИЛАКТИКА Эффективность противогельминтозных мероприятий в хозяйстве зависит от правильно выбранных антгельминтиков и средств обеззараживания объектов внешней среды, а также своевременного проведения всех хозяйственных и зоогигиенических мер. При планировании и организации противогельминтозных мероприятий учитывают и уточняют гельминтозную ситуацию в целом по ферме и в отдельности по возрастным группам, наличие необходимого антгельминтика и средств дезинвазии. Успех в борьбе и профилактике гельминтозов может быть обеспечен при высокой ветеринарно-санитарной культуре на фермах и полноценном кормлении свиней. Поэтому ветеринарные специалисты намечают и согласовывают с руководством хозяйств проведение зоотехнических и санитарных мероприятий, принимают меры для правильной подготовки свиноматок к опоросу. Кормление супоросных свиней производят по рационам, сбалансированным по аминокислотному составу, витаминам, минеральным и другим веществам. Это дает возможность получать молодняк с повышенной устойчивостью к инвазии. С учетом возрастных особенностей разрабатывают полноценные рационы и для молодняка. Профилактика и меры борьбы с аскаридозом, эзофагостомозом и трихоцефалезом складываются из дегельминтизации животных, дезинвазии помещений свинарников, инвентаря, мест кормления свиней, почвы, территории 8 ферм, навоза, а также общих мероприятий, направленных на повышение общей резистентности организма. В неблагополучном хозяйстве проводят текущую и заключительную дезинвазию объектов внешней среды. Профилактическую дезинвазию приурочивают к общим противоэпизоотическим мероприятиям, а заключительную - к лечебной дегельминтизации. Для предупреждения заражения поросят необходимо особо обратить внимание на дегельминтизацию свиноматок, используя с этой целью высокоэффективные препараты или схемы. Нельзя накапливать навоз на территории фермы. Его вывозят ежедневно на навозохранилище. Периодически убирают посторонние предметы из помещений и с территории ферм. Систематически уничтожают мух и грызунов. Дегельминтизация свиней Как показали наши исследования, по аскаридозу, эзофагостомозу и трихоцефалезу неблагополучны не только товарные свиноводческие фермы, но и хозяйства-поставщики Красноярского края ремонтного молодняка для крупных комплексов промышленного типа "Николаевский", "Усть-Кяхтинский", "Мостовский Талан-2". В результате завоза на комплексы и их репродукторные фермы свиней, инвазированных гельминтами, возникает необходимость в дополнительных противогельминтозных мероприятиях. Дегельминтизация - основное и важное звено в системе противогельминтозных мероприятий. Различают дегельминтизации диагностические, лечебные, лечебно-профилактические и профилактические. Лечебные дегельминтизации проводят в любое время года как вынужденную меру при высокой интенсивности инвазии. Они преследуют цель освободить животных от гельминтов и тем самым предотвратить клиническое проявление болезни или падеж, а также снизить экономический ущерб, причиняемый паразитами. Профилактические дегельминтизации предусматривают применение препаратов на ранних, не достигших половой зрелости, стадиях развития гельминтов. Это, в свою очередь, решает ряд вопросов санитарного плана. А именно, отпадает необходимость обеззараживания помещения, почвы, навоза после каждой дегельминтизации. Лечебно-профилактические дегельминтизации занимают промежуточное положение. Химиотерапия не только избавляет свиней от гельминтов, но и имеет большое профилактическое значение и должна сочетаться с мерами предупреждения распространения инвазии. Инструкция о мероприятиях по предупреждению и ликвидации заболевания животных гельминтозами, утвержденная 30 декабря 1981 г. рекомендует применять при аскаридозе пиперазин, гигроветин, нилверм, натрий кремнефтористый; при трихоцефалезе - хлорофос, гигроветин, тиабендазол, нафтамон, нилверм, а при эзофагостомозе - нилверм, тиабендазол, пиперазин адипинат и хлорофос. Нафтамон - зеленовато-желтый кристаллический порошок без запаха, горького вкуса, мало растворим в воде. Препарат проникает в тело аскарид через 9 кутикулу и пищеварительный тракт, вызывая сокращение мускулатуры, постепенно сменяющееся расслаблением. Нафтамон тормозит окисление малата и сукцината, потребление глюкозы, выделение летучих жирных кислот, снижает активность аланиновой и аспарагиновой трансаминаз, холинэстераз. Пиперазин выпускается в виде нескольких солей (адипинат, сульфат, фосфат, дитиокарбамат). В практике чаще применяют пиперазин адипинат бесцветные кристаллы без запаха, со слабым приятным вкусом, медленно растворяются в воде, не гигроскопичны, на воздухе не изменяются. Препарат вызывает чередование резких изгибов тела аскариды с периодом покоя. В действии пиперазина на гельминтов различают две фазы. Вначале он затормаживает выделение ацетилхолина в центральных ганглиях и наступает период возбуждения аскарид. Затем, действуя на мышцы гельминтов, подавляет миогенную ритмику. Нафтамон и пиперазин относятся к малотоксичным препаратам. Это позволяет применять их путем вольного группового скармливания. Сотрудником Института экспериментальной ветеринарии Сибири и Дальнего Востока В. И. Шайкиным у нафтамона и пиперазина не выявлены эмбриотоксические и тератогенное действия. Отсутствие у этих препаратов отрицательного влияния на репродуктивную функцию подтвердили также и многочисленные наблюдения за дегельминтизированными в терапевтической дозе свиноматками. Дегельминтизации по предлагаемой нами схеме как в различные до осеменения сроки, так и в разные периоды супоросности отрицательно не влияли на оплодотворяемость, течение беременности и развитие поросят. Сущность дегельминтизации свиней при смешанных инвазиях последовательным применением нафтамона и пиперазина заключается в следующем. Вначале лечат нафтамоном, затем через 10-12 ч пиперазином и через 10-12 ч нафтамоном. При кормлении свиней два раза в день дегельминтизацию проводят в следующие сроки: первую в утреннее кормление - нафтамоном; вторую вечером - пиперазином; третью утром следующего дня - нафтамоном. Воздействие сначала на активность ферментативных процессов гельминтов (нафтамон), затем через 10-12 ч на нервно-мышечный аппарат сходно с холинолитическими веществами (пиперазин) и через 10-12 ч снова на активность ферментативных процессов (нафтамон), вероятно, дестабилизирует обменные процессы паразитов и вызывает их гибель или вследствие контрактуры мускулатуры гельминты не могут прикрепиться к стенке кишечника и изгоняются перистальтическими движениями. Последовательное применение нафтамона в дозе 0,1 г/кг и пиперазина в дозе 0,15 г/кг, (максимальная доза 15 г на животное) обеспечивает 100%-ную эффективность при аскаридозе и 95-100%-ную при эзофагостомозе. Новый способ позволяет экономить антгельминтики и повышать эффективность дегельминтизации по сравнению с использованием одного препарата. Нафтамон с пиперазином задают с кормом индивидуальным, мелко- и крупногрупповым методами. При приготовлении лечебного корма в смесителях и подаче его по трубопроводу нужно дозу препаратов брать с учетом остающегося количества корма в трубах. Например, для 700 свиноматок на первую дачу требуется 7 кг нафтамона. В смесителе приготовили 5 т корма и раздали. Однако в 10 трубах осталась 1 т корма, поэтому нужно еще 1,5 кг нафтамона. Таким образом, для 700 свиноматок необходимо 8,5 кг нафтамона. Наиболее часто у свиней встречаются смешанные нематодозные инвазии, чаще аскаридоз, эзофагостомоз и трихоцефалез. Отсутствие до недавнего времени эффективных препаратов и схем дегельминтизаций, доступных для практики, приводило к тому что, в хозяйствах вначале проводили курс дегельминтизации против одного гельминтоза, спустя некоторое время - против второго и т.д. Эта работа очень громоздкая и малоэффективная. В настоящее время при ассоциативных нематодозах свиней успешно применяются такие антгельминтные средства как альбендазол, альбен, тенальбен, альбамелин, а также препараты авермектинового и ивермектинового ряда, это аверсект-2 1% и 6% концентрации, авертин, иверсект, рустомектин, авертин. По нашим данным применении препарата широкого спектра действия аверсект-2 позволяет снизить интес- и экстенс- инвазированность свиней при нематодозных инвазиях на 98-100%. Однако применение антгельминтиков широкого спектра действия приводит к нарушению количественного и качественного состава энтеробиоценоза (микрофлоры кишечника) животных, поэтому мы рекомендуем одновременно с введением антгельминтиков назначать животным внутрь с кормом пробиотические средства такие как коредон, био-бифивит, бифидумбактерин, и.др. Профилактические дегельминтизации необходимо включать в план противоэпизоотических мероприятий хозяйства. В зависимости от типа и принятой технологии гельминтокопроскопические обследования и дегельминтизации свиней проводят в разные сроки: -на комплексах промышленного типа: свиней, завезенных из хозяйствпоставщиков, - в период нахождения в карантине; свиноматок – в первой половине супоросности; поросят в 3,5-месячном возрасте - за 10 дней до перевода в группы откорма; поросят групп откорма - в возрасте 4,5 месяца. -на фермах-репродукторах комплексов промышленного типа: свиней, завезенных из племенных хозяйств, - в период нахождения в карантине; свиноматок – в первой половине супоросности; поросят в 1,5-месячном возрасте за 10 дней до формирования групп отъемышей; поросят в 4-месячном возрасте, хрячков-кастратов - за 10 дней до перевода в группы откорма, а свинок - при формировании групп ремонтного молодняка; ремонтных свинок - за 10 дней до перевода в цех воспроизводства комплекса; ремонтных свинок - за 10 дней до перевода в летние лагеря и за 10 дней до перевода из летних лагерей в зимние помещения. -в репродукторных и плененных хозяйствах: свиноматок - за месяц до массовых опоросов, перед переводом в летние лагеря и осенью перед постановкой на зимнее содержание; молодняк в возрасте 35-40, 50-55 и 90 дней. -в откормочных хозяйствах: животных, поступивших на откорм из других хозяйств, - в период профилактического карантина. Оллуланоз свиней в последние годы стал диагностироваться повсеместно на Дальнем Востоке, в Сибири, Удмуртии и Ростовской области. Широкому распространению и формированию крупных очагов этого малоизученного заболевания способствует высокая концентрация поголовья на специализированных фермах и комплексах промышленного типа. Несмотря на большое количество неблагополучных ферм по оллуланозу, в настоящее время 11 многие вопросы, касающиеся как самого гельминта, так и вызываемого им заболевания, почти не изучены. Основной причиной такого положения является отсутствие методик исследования. Так как оллуланам присуща своеобразная биология, очень редко встречающаяся у стронгилят, многие известные в гельминтологии методы исследования оказались непригодными, а другие для повышения их точности требовали той или иной модификации. Учитывая это, в ИЭВСиДВ в течение 7 лет велась разработка новых, модифицировались известные методики применительно к оллуланам. В частности, разработаны методы взятия проб, диагностики, определения жизнеспособности, интенсивности инвазии, эффективности антгельминтиков при оллуланозе. ОЛЛУЛАНОЗ СВИНЕЙ ОБЩИЕ СВЕДЕНИЯ Оллуланоз свиней - заболевание, вызываемое моноксенными нематодами Ollulanus tricuspis, сем. Ollulanidae. Гельминты паразитируют в просвете и в толще слизистой оболочки желудка, в выводных протоках желез желудка, а также в двенадцатиперстной кишке. Наиболее часто гельминты регистрируются у взрослых свиней, вызывая гипертрофический гастрит, эрозии и повреждения слизистой оболочки. Первые случаи спонтанного оллуланоза наблюдаются у поросят в двухмесячном возрасте, однако экспериментально легко вызывается заболевание и в более раннем возрасте (28-30 дней). Экономический ущерб от оллуланоза складывается из снижения среднесуточных приростов поросят, молочности маток, рождения от больных маток поросят с низкой живой массой. Поросята от этих маток хуже развиваются, а падеж среди них в два раза выше, чем у поросят, полученных от здоровых свиноматок [3-8]. Оллуланы обнаружены у домашних и диких кошек, лисиц, тигров, львов, домашних свиней в Европе, Азии, Америке, Австралии, Новой Зеландии, а у свиней они зарегистрированы только в Европе и Азии. Морфология нематод рода Ollulanus Leuckart, 1865 Оллуланы - мелкие (0,7-1,3 мм) нежные раздельнополые нематоды [19]. Тело свернуто в спираль или в кольцо. Кутикула тонко продольно и поперечно отчетливо исчерчена. Ротовая капсула небольшая, образованная нависающей кутикулой. Ротовая полость без зубов и других хитиновидных образований. Имеются крупные шейные сосочки на уровне пищевода (рис. 1-4). Самец. Бурса не разделена на лопасти. Антеро-вентральные и постеровентральные ребра самостоятельны, тонкие и длинные; антеро-латеральное ребро удлиненное, объединяется общим стволом с другими латеральными; дорзальное ребро утолщенное, подразделяется на дистальном конце на два нерасщепленных ствола; энтеродорзальное отходит от дорзального ствола примерно на уровне 12 середины его длины. Спикулы короткие, равного размера, раздвоены на конце на острую и притуплённую ветви. Рулек отсутствует. Самка. Хвост притуплённый, оканчивается 3-4 короткими отростками, к которым могут присоединяться дополнительно 1-2 выроста. Вульва лежит на уровне задней части тела паразита. Вагина короткая. Матка и яичник одинарные, живородящие, яйца крупные, личинок 3-5 шт. Рис. 1. Самка оллулан Рис. 2. Хвостовой конец самки: А – анус, В – вульва Типичный вид: Ollulanus tricuspis Leuckart, 1865. В настоящее время описано четыре вида оллулан (таблица). Гельминты развиваются по эндоциклу [11, 21], т.е. все стадии развития протекают в одном хозяине. Яйца развиваются в матке самки. Здесь же вылупляются личинки, которые трижды линяют, после чего покидают тело самки, еще несколько раз линяют и превращаются в половозрелых особей. Заражение свиней происходит при поедании рвотных масс или желудков убитых (павших) животных. Полный цикл развития нематод Ollulanus suis от яйца до половозрелой стадии составляет 12-13 дней. Из яиц личинки формируются за сутки. В 13 следующие сутки они дважды линяют. От яйца до формирования личинки третьей стадии проходит около трех суток. До появления половозрелых самок от личинки четвертой стадии требуется около 10 дней, а на 11-й день у самок формируются личинки. Эпизоотологические данные Заболевание распространяется при межхозяйственных перевозках свиней. Инвазированию способствует скученное содержание. Экстенсивность и интенсивность инвазии у животных возрастает до 2-2,5-леьнего возраста, а затем идет постепенно снижение. Стойкие очаги оллуланоза формируются в хозяйствах, где в одной группе содержатся свиньи разного возраста, особенно когда среди откормочного поголовья находятся выбракованные свиноматки и хряки. Интенсивность инвазии колеблется в очень больших пределах – от единичных до 100 тыс. и более экземпляров. Средняя интенсивность инвазии у взрослых свиней 1050-2900 экземпляров. Резкой разницы в инвазированности животных оллуланами в зависимости от сезона года не наблюдается. Среди оллулан во все сезоны года доминируют самки (53,5-63,3%), несколько меньше в процентном отношении самцов (18,9-26,8%) и еще меньше ювенильных форм (6,5-19,9%). Резких сезонных колебаний в соотношении полов и стадий развития не отмечается, хотя с конца зимы – начала весны несколько увеличивается процент личинок за счет снижения числа самцов. Рис. 3. Половая бурса оллулан Рис. 4. Хвостовой конец личинки самца 14 Определения вида нематод рода Ollulanus: Ollulanidae, Strongylata Показатель Длина тела, мм: самец самка Ширина тела, мм: самец самка Длина пищевода, мм Количество хвостовых отростков у самок Отношение длины тела к хвостовой части Длина вентральных ребер половой бурсы Длина спикул, мм Место расщепления спикул на ветви Чехлик на дистальном конце спикулы Крылья спикул O. Suis O. Tricuspis O. Skrjabini 0,7-0,8 0,8-1,0 1,07-1,15 1,12-1,25 0,8-1,0 0,9-1,2 0,968-1,023 0,78-1,1 0,04 0,04 0,2 0,038-0,045 0,035-0,059 0,245-0,315 0,035-0,050 0,038-0,050 0,193-0,248 0,031-0,046 0,036-0,046 0,145-0,334 3 4 4 4 5:1 8:1-9:1 7:1 (6,5:1-7,5:1) 7:1 Не описано Длиннее остальных 0,050 0,056-0,063 Середина Дистальная треть Нет Нет Нет Есть 15 Одинаковой длины с остальными 0,05-0,058 Дистальная треть O. Angarica 0,052 Трезубец Есть Мембрана Есть Не описано Патогенез Оллуланы механически повреждают ткани желудка. Местами их паразитирования являются слизистая оболочка, протоки желез, содержимое желудка и двенадцатиперстной кишки. Нематоды расселены в слизистой оболочке желудка неравномерно, имеются участки, сплошь пронизаны оллуланами. Особенно много таких колоний встречается в зоне желез дна желудка. На этих местах появляются эрозии и возникают воспалительные процессы. В начале заболевание характеризуется острым течением, затем переходит в хроническую форму и протекает в виде гипертрофического гастрита. Патологические изменения При спонтанном оллуланозе в желудке у свиней находится вязкая слизь с серовато-белыми сгустками. Слизистая оболочка мозговидно складчатая. Иногда складчатость приобретает сосочковидность с красными пятнышками на вершинах. Стенка желудка утолщена в 1,5-3 раза. Гистологически обнаруживают гипертрофический гастрит с формированием на месте локализации гельминтов гранулезного воспаления [8, 11]. Методики диагностики оллуланоза свиней Взятие проб Местами паразитирования оллулан у свиней являются все зоны желудка и двенадцатиперстной кишки. Однако нематоды локализуются в этих органах неравномерно. Поэтому при работе, когда требуется учитывать все экземпляры паразитов, пробы берут из всей поверхности слизистой оболочки, желудка и двенадцатиперстной кишки, а также их содержимое. Для определения благополучия хозяйства по оллуланозу достаточен материал из слизистой оболочки зоны желез дна желудка [3]. Оборудование и материал: нож, кишечные ножницы, кювета, пинцет, баночки с крышечкой объемом 10-500 мл, жидкость Барбагалло, ведро, приспособление для снятия слизистой оболочки желудка. Ход работы: у убитых или павших свиней желудок разрезают по малой кривизне от входа пищевода до пилоруса. Содержимое выливают в ведро, слизистую оболочку слегка промывают водой. Эту жидкость сливают в емкость с содержимым органа. Желудок выворачивают и кладут на приспособление для сбора слизистой оболочки. Соскобы с поверхности слизистой оболочки делают ножом, а материал собирают в кювету. Во время взятия проб учитывают следующие зоны – желез дна, кардиальных, пилорических желез, безжелезистой зоны, дивертикула и пилоруса. Пробы помещают в баночки и консервируют жидкостью Барбагалло. Двенадцатиперстную кишку разрезают ножницами продольно, содержимое помещают в отдельную посуду, затем кишку разворачивают, вытянув по длине, и ножом берут глубокие соскобы с поверхности слизистой оболочки. Пробы помещают в посуду и консервируют. 16 Компрессорный метод обнаружения оллулан Применяется при исследовании на трихинеллез и полном гельминтологическом вскрытии мелких органов или животных [13]. Исследуемые объекты под микроскопом по-разному поглощают и отражают свет. Кроме того, происходит его преломление отдельными участками препарата. Эти свойства обуславливают разницу в амплитуде и фазе световых волн, а от этого зависит контрастность и четкость изображения. Вследствие особых свойств слизистой оболочки желудка (наличие кормовых масс, текучести) и оллулан (мелкие размеры, цвет близкий к тканям отдельных зон и участков слизистой оболочки) требуется несколько иная методика исследования. Исследование материала в проходящем свете приводит к ошибкам, так как обнаружить оллулан на фоне ткани бывает сложно. Часто бывают пропуски нематод, особенно при низкой интенсивности. Кроме этого, из-за наличия в тканях остатков корма, земли сдавливать материал до необходимой толщины невозможно. На этих участках свет не проходит, это затрудняет исследование и приводит к ошибкам. При сжатии слизистой оболочки желудка обычным компрессорием часть ткани и жидкость вытесняются за края стекол и попадают на предметный столик микроскопа. Это мешает и удлиняет проведение исследований. Поэтому следует использовать компрессорий, основание которого шире верхней пластины на 5-10 мм. В этом случае весь выдавливаемый субстрат концентрируется на площадке основания, свободной от верхней пластины [6]. Сущность метода. Метод основан на исследовании материала отраженным светом от темной поверхности предметного столика микроскопа. Причем отражающая поверхность находится за пределами фокуса микроскопа на расстоянии толщины основания компрессория. Используется компрессорий с пластинами разных размеров. Оборудование и материалы. Компрессорий, основание которого шире верхней пластины на 5-10 мм, ножницы, пинцет, препаровальные иглы, микроскоп МБС. Ход работы. Кусочки слизистой оболочки желудка помещают на основание компрессория, иголками расправляют по длине, удаляют крупные частички корма, накрывают верхней пластиной и зажимают. Компрессорий помещают на темный предметный столик микроскопа МБС и исследуют в искусственном свете, падающем сверху. Увеличение микроскопа 2x8. Методика переваривания в искусственном желудочном соке Освобождение гельминтов из тканей с помощью переваривания в искусственном желудочном соке нашло широкое применение при исследовании на трихинеллез [13]. Оллуланы паразитируют в тканях, отличающихся по своим свойствам от мышц. Поэтому требуется несколько иной подход к перевариванию этого материала, чем мышечной ткани. Методика разработана совместно с М.Ю. Паскальской, Л. А. Тимукиной, Е. В. Михеевой [4, 6]. Сущность метода. Метод основан на переваривании слизистой оболочки желудка или двенадцатиперстной кишки в искусственном желудочном соке. 17 Оборудование и материалы. Магнитная мешалка или лабораторный встряхиватель типа 358 S, термостат, соляная кислота, пепсин, конические колбы емкостью 200 и 300 мл, измерительные пипетки объемом 5-10 мл, термометр со шкалой от О до 100°С,ситечко с ячейками 2x2 или 3x3 мм, стаканы по 1-2 л, чашки Петри, микроскоп МБС. Ход работы. Готовят искусственный желудочный сок, содержащий 1% соляной кислоты и 3% пепсина. В колбу помещают пробу слизистой оболочки массой 15-20 г и заливают желудочным соком, имеющим температуру 35-39°С. Соотношение навески пробы к объему раствора не менее 1:15 - 1:20. Колбу помещают на магнитную мешалку или лабораторный встряхиватель, или в термостат. Степень переваривания определяют визуально. Время переваривания 25 и более минут. Оно зависит от многих факторов: температуры, скорости встряхивания или вращения, наличия кормовых остатков, наполняемости желудка в момент убоя. Работают на магнитной мешалке при малых или средних оборотах, так как при больших оборотах оллуланы разрушаются. Осаждение и сбор оллулан проводят в стаканах емкостью 1-2 л. В сосуд наливают теплую воду (35-39°С) и дают отстоять не менее 15 минут. Переваренный материал процеживают через сито и перемешивают с водой в стакане. После 15-20-минутного отстаивания верхний слой воды сливают, а осадок наливают в чашки Петри и просматривают под микроскопом МБС. Комбинированный метод диагностики На исследование осадка одной пробы после переваривания слизистой оболочки желудка в искусственном желудочном соке требуется до 5-20 минут. Исследованию мешает наличие земли, песка и кормовых осадков. Предлагаемый комбинированный метод ускоряет диагностику в 10-20 раз. Он может быть применен при определении экстенсивности инвазии. Сущность метода. Вначале пробу слизистой оболочки переваривают с помощью искусственного желудочного сока. Осадок после отстаивания исследуют методом флотации. При этом оллуланы всплывают, а посторонние частички, имеющие удельную массу выше плотности раствора, оседают. Стаканчик помещают под микроскоп и просматривают поверхностную пленку. Оборудование и материалы те же, что и для переваривания в искусственном желудочном соке. Дополнительно необходимы конические или цилиндрические стаканчики на 30-50 мл. Реактивы - раствор гранулированной аммиачной селитры (на 1 л воды 1,5 кг препарата). Ход работы. Материал переваривают в искусственном желудочном соке, процеживают, отстаивают, воду сливают, а осадок помещают в конические (цилиндрические) стаканчики и разводят в 8-10 раз раствором для флотации. Спустя 15-30 минут стаканчик помещают на предметный столик микроскопа МБС и просматривают поверхностную пленку. Интенсивность инвазии этим способом определить нельзя, так как частицы земли часть оллулан увлекают на дно. 18 Методика определения жизнеспособности оллулан Жизнеспособность оллулан нужно определять при изучении выживаемости и изучении антгельминтной эффективности препаратов. В этих случаях эта методика является пока единственной, так как вследствие особенностей биологии оллулан другие методы, используемые в гельминтологии, неприемлемы. Оллуланы во внешней среде малоподвижны, а при комнатной температуре неподвижны. Поэтому для искусственной стимуляции подвижности требуется создать для оллулан необычные условия - применять раздражающе средства. Методика разработана совместно с М. Ю. Паскальской и В. И. Офицеровым [ 22 ] . Сущность метода. Метод основан на том, что оллулан помещают в растворы химических веществ, которые вызывают раздражение нервных рецепторов кутикулы или же проникают в тело нематод. Оборудование: микроскоп МБС или МБИ, предметные стекла, чашки Петри, глазные пипетки, препаровальные иглы, измерительные пипетки от 1 до 10 мл, колбы емкостью 10-50 мл. Реактивы: диметилсульфоксид, диметилформамид, сернистый натрий. Ход определения. Готовят 0,5-1%-ный раствор сернистого натрия на физиологическом растворе; 50%-ный раствор диметилсульфоксида или диметилформамида. Жизнеспособность определяют индивидуально у каждого гельминта или же одновременно у оллулан нескольких экземпляров. В первом случае матрикс помещают в чашки Петри. С помощью микроскопа МБС и препаровальной иглы вылавливают одну оллулану, помещают в каплю одного из растворов (сернистого натрия, диметилсульфоксида или диметилформамида) и наблюдают под микроскопом в течение 3-5 минут. Во втором случае исследуемый материал помещают в чашку Петри и заливают тонким слоем раствора диметилформамида или диметилсульфоксида. Дифференцированно регистрируют живых и погибших самок, самцов, личинок. Работа с реактивами. Оллуланы, помещенные в раствор сернистого натрия, начинают двигаться не одновременно. Некоторые экземпляры приобретают подвижность сразу же после погружения в раствор, другие - через 3-5 минут. Отдельные экземпляры после помещения в раствор быстро погибают. Поэтому при подсчете живых и мертвых нематод надо быть достаточно внимательным, так как вследствие гибели ошибочно можно насчитать больше мертвых оллулан. Сернистый натрий вступает в реакцию с металлами. При этом образуются сульфиды металлов, и. происходит почернение исследуемого материала, инструментов. Сернистый натрий в растворе диссоциирует с выделением сероводорода, который относится к токсическим веществам. В работе с ним надо быть осторожным, рекомендуется работать с небольшим количеством раствора (на предметных стеклах). Препарат чаще применяется для эксцистирования адолескарий трематод [23]. Диметилсульфоксид и диметилформамид более удобны в работе и безопасны. Методика определения интенсивности инвазии Определение интенсивности инвазии при оллуланозе - очень трудоемкая работа, так как в большом матриксе приходится выбирать мелких гельминтов, 19 которых может быть свыше 50 тыс. экземпляров. Порциальный метод в данном случае может дать большие ошибки, т.к. оллуланы в слизистой оболочке расположены очень неравномерно. Нет сомнения в том, что при проведении опытов, в которых учитывается каждый экземпляр оллулан, незаменимым является анализ всех тканей и содержимого желудка. В этом случае точность исследования превалирует над трудоемкостью. В практических условиях приходится проверять большое количество проб с достаточно высокой точностью. Это необходимо, например, при изучении сезонной и возрастной динамики, при сравнении инвазированности свиней двух ферм, хозяйств, при анализе патологических изменений и т.д. В этом случае может быть использовано исследование определенных зон с математической поправкой [7]. Обоснование метода. Экспериментально на 330 пробах установлено, что оллуланы в разных зонах желудка и двенадцатиперстной кишки расположены крайне неравномерно. Количество оллулан в содержимом желудка составило 33,3±5,4%, в слизистой оболочке зоны желез дна 61,9±4,9%, в зоне кардиальных желез 2,1±0,2%, в зоне пилорических желез 2,1±0,6%, в безжелезистой зоне 0,2±0,06%, в зоне дивертикула 0,2±0,08%, в зоне пилоруса 0,1±0,04%, в двенадцатиперстной кишке 0,1±0,01%. Расчеты статистически достоверно показали, что в содержимом и зоне желез дна желудка локализуется 95,29±0,85% оллулан, а в остальных зонах - 4,71±0,83%. Ход определения. Для исследования берут по две пробы из желудка содержимое и слизистую оболочку желез дна. Подсчитывают всех оллулан. Полученное число увеличивают на 4,7%. Методика инвазирования оллуланами поросят Поросят инвазируют при изучении биологии оллулан, патогенеза, испытании антгельминтиков, определении ущерба и т.д. Для опытов берут поросят из благополучных по оллуланозу хозяйств или выращенных в условиях, исключающих инвазирование оллуланами, т.е. изолированно от свиней старших возрастов. Оборудование: нож, кишечные ножницы, кювета, пинцет, банки или колбы емкостью 500 мл, приспособление для взятия слизистой оболочки желудка, весы, колбочки на 50 мл, разновесы, микроскоп МБС, чашки Петри, магнитная мешалка, встряхиватель, пипетки 1-10 мл, холодильник, препаровальные иглы, глазная пипетка, шприц, резиновая груша, ситечко, стаканы 1-2 л. Реактивы: соляная кислота, пепсин. Ход работы. Экспериментально установлено, что одинаково успешно можно инвазировать поросят оллуланами, взятыми как из слизистой оболочки, так и содержимого желудка свиней. В качестве доноров лучше использовать свиноматок 2-2,5-летнего возраста. Группу свиноматок, предназначенных для убоя и взятия от них материала для искусственного воспроизведения оллуланоза, выдерживают 5-10 часов на голодной диете. Водопой не ограничивают. Желудок вскрывают ранее описанным способом сразу же после нутровки туши. Содержимое желудка и соскобы слизистой оболочки собирают в одну 20 посуду. От каждого животного пробу помещают в отдельную емкость. Пробу взвешивают. Затем определяют количество оллулан в материале. Для этого от каждой свиньи берут в отдельные три колбы одинаковые навески пробы (от 3 до 10 г). Методом переваривания определяют среднее количество оллулан в одной пробе, а затем делают пересчет и узнают число оллулан во всем материале. Инвазируют свиней оллуланами в день убоя донора, только в крайнем случае - на следующий день. Материал хранят в холодильнике при 4-5°С. Поросят до инвазирования выдерживают 5-6 часов на голодной диете. Материал перемешивают с молоком и задают индивидуально при небольшой (3-5 голов) группе поросят. Инвазирование поросят повторяют не менее 2-3 раз с интервалами 2-3 дня. В зависимости от целей работы одному животному в возрасте 30-35 дней задают до 10 тыс. экземпляров оллулан, однако лучше они приживаются при даче от 1 до 2 тыс. экземпляров. Инвазирование животных. С помощью микроскопа МБС и препаровальных игл выбирают из свежего материала оллулан и помещают в пробирки с водой. После накопления нужного количества гельминтов их задают лабораторным животным с помощью глазной пипетки, шприца или резиновой груши. Методика определения эффективности антгельминтиков Оборудование то же, что и для предыдущей методики [5]. Реактивы: антгельминтики, диметилсульфоксид, диметил-формамид. Сущность метода. Метод основан на том, что большинство оллулан паразитирует в толще слизистой оболочки желудка. Поэтому даже в случае гибели от воздействия препарата гельминты длительное время остаются в местах обитания. Спустя определенное время животных убивают, а обнаруженных оллулан исследуют на жизнеспособность. Ход работы. Опыты проводят в неблагополучных по оллуланозу хозяйствах на свиноматках. Животных делят на две группы - подопытную и контрольную. Подопытным маткам задают препарат с кормом индивидуально или групповым способом. Контрольные животные антгельминтик не получают. Содержание и кормление обеих групп свиней одинаковое. Через 5-7 дней животных убивают и берут по две пробы из одного желудка содержимое и соскобы слизистой оболочки. В этот же день проводят исследования на наличие оллулан и определяют их жизнеспособность. Содержимое исследуют методом последовательного промывания, а слизистую оболочку - методом переваривания в искусственном желудочном соке. Жизнеспособность определяют с помощью диметилсульфоксида или диметилформамида. Учет результатов. Для учета берут только тех свиней, у которых обнаружены оллуланы. Свободных животных от этих нематод из опыта исключают. Жизнеспособность оллулан определяют дифференцированно в содержимом и в слизистой оболочке желудка, а также ведут учет в отдельности погибших и живых самок, самцов и личинок. При определении жизнеспособности учитывают не менее 100 самцов, самок и их личинок в содержимом и отдельно в слизистой оболочке желудка. 21 Вычисляют экстенс-, лярвоцидную эффективность. интенсэффективность, нематодоцидную и Мероприятия по профилактике нематодозов свиней Дезинвазия помещений и предметов ухода Для обеззараживания свинарников, подсобных помещений и выгульных площадок с твердым покрытием при смешанных гельминтозах инструкцией рекомендуется обработка поверхностей 10%-ной горячей эмульсией ксилонафта при экспозиции 3 ч, 5%-ным горячим раствором едкого натрия или едкого калия при экспозиции 6 ч. Растворы применяют двукратно с интервалом 1 ч из расчета 0,5 л на 1 м2. Используют также 3%-ную эмульсию технического ортохлорфенола (1 л на 1 2 м ) однократно при экспозиции 3 ч. Дезинвазию помещений проводят перед каждым туром опоросов, в санитарные разрывы - перед очередной постановкой животных, а также после каждой лечебной или лечебно-профилактической дегельминтизации. В борьбе с гельминтозами очень важно предупредить инвазирование поросят-сосунов. Свиноматок в день перевода в родильное помещение моют. Помещение и инвентарь родильных отделений готовят заранее: тщательно чистят, дезинвазируют, просушивают, ремонтируют, белят или красят стены, перегородки, оборудуют емкости с растворами дезинфектантов для хранения метел, скребков и других предметов ухода. Дезинвазия почвы Для уничтожения в почве яиц аскарид, эзофагостом, трихоцефалов, личинок эзофагостом, а также дождевых червей, которые являются промежуточными хозяевами метастронгилов и резервуарными хозяевами аскарид, применяют карбатион, N-метилдитиокарбамат натрия. Это однородная жидкость зеленоватожелтого или темно-оранжевого цвета, с резким запахом, хорошо растворяется в воде. Относится к среднетоксичным веществам: ЛД50 для крыс - 820 мг/кг, для белых мышей - 294 мг/кг. Карбатион выпускают в форме водного раствора с содержанием 33-40% N-метилдитиокарбамата натрия. Препарат при внесении в почву разлагается с образованием газообразного метилизотиоцианата, который обладает высокой биологической активностью, в том числе и овоцидным действием, разлагается в почве в течение пяти суток. Почву территорий ферм обрабатывают в комплексе с другими противогельминтозными мероприятиями - через 3-5 суток после дегельминтизации животных или в период санитарных разрывов при смене партий свиней, а также весной за 10 дней до выпуска свиней на выгульные площадки, летние лагеря или же осенью после прекращения пользования ими. Рабочие растворы готовят перед использованием. Карбатион 3%-ной концентрации наносят на обрабатываемую почву с помощью любой дезустановки при температуре почвы 10-20°С. Норма, расхода рабочего раствора 4 л на 1 м2. На обработанную территорию свиней разрешается выпускать через 10 дней. В жаркое солнечное время дня, когда температура воздуха достигает 25° и выше и сразу после дождя, применять карбатион не рекомендуется. 22 При работе с карбатионом нужно соблюдать меры предосторожности: обязательны фартуки, резиновые сапоги, перчатки, защитные очки и респираторы Ф-46-К с противогазовым патроном А, либо противогазы с патроном А. Нельзя допускать попадания раствора на людей, животных, дезустановку. Дезинвазия навоза Скопление навоза, содержащего инвазионные яйца и личинки, на территории ферм представляет постоянную угрозу инвазирования свиней. Он растаскивается около свинарников, яйца и личинки гельминтов могут быть занесены в помещение с обувью, предметами ухода или заглочены свиньями на прогулке. Существует несколько способов обеззараживания навоза от яиц и личинок гельминтов. На крупных комплексах промышленного типа жидкий бесподстилочный навоз подвергается двухступенчатой биологической очистке. При равномерной подаче отходов и отсутствии перегрузки очистных сооружений в стоках яиц и личинок гельминтов не содержится. Поэтому достаточно, наряду с химическими анализами, раз в месяц проконтролировать качество дезинвазии стоков, особенно в периоды ухудшения показателей химического анализа. При обнаружении зародышей гельминтов в осветленных стоках принимают меры по экономному расходованию воды при уборке навоза, а также устраняют неисправности водопровода. Пробы стоков (1-2 л) берут в контактном резервуаре и помещают на 24-48 ч в холодильник. Надосадочную жидкость сливают, к 25-30 мл осадка в коническом стакане емкостью 250 мл доливают раствор гранулированной аммиачной селитры до образования выпуклого мениска и покрывают обезжиренным стеклом. Через 3045 мин с помощью микроскопа на стеклах определяют наличие яиц и личинок гельминтов. Кроме этого, стоки можно исследовать по методике Н. А. Романенко [7]. Твердую фракцию навоза, которую получают в процессе переработки жидких стоков, можно обеззараживать двумя методами. В одном случае навоз подвергают термической обработке в специальных агрегатах. При температуре в горелке 500-700° и высушивании навоза до 3-20% погибают все яйца и личинки гельминтов. Высушенный продукт с гельминтологической точки зрения не опасен. Он напоминает отруби и используется в качестве кормовой добавки крупному, рогатому скоту. В другом случае твердую фракцию обеззараживают биотермическим способом. Навоз укладывают в кучи высотой 1,5-1,7 м. В буртах весной, летом и осенью протекают активные биологические процессы. Резкий подъем температуры в бурте с 19° до 50° наблюдается через 72-86 ч после закладки бурта. Максимальная температура (65-67°) достигается на 11-17-e сутки. За это время большинство яиц и личинок гельминтов, находящихся в буртах глубже 15 см, погибает. Зимой биотермические процессы проходят вяло, и температура в них не превышает 42-45°. Поверхность бурта покрывается коркой из замерзшего навоза толщиной до 15 см. В этих условиях гибели яиц гельминтов не происходит, поэтому зимой твердую фракцию следует обеззараживать термически или складировать в бурты. 23 II. Основные протозоозы свиней Эймериоз (кокцидиоз) свиней Одним из наиболее распространенных протозойных болезней свиней в Республики Бурятия является кокцидиоз. Процент инвазирования животных в свиноводческих хозяйствах республики составляет от 9 и более при интенсивности от единичных экземпляров ооцист кокцидий до 1280 в 20 полях зрения микроскопа. Кокцидиоз свиней протекает подостро или хронически. Болеют поросята, начиная с 10-14-дневного возраста и старше. Болезнь проявляется общим угнетением, отставанием в росте молодняка, анемией, расстройствами желудочнокишечного тракта и истощением. У свиней установлено 6 видов кокцидий из рода Eimeria и 2 вида из рода Isospora, которые локализуются в эпителиальных клетках кишечника. На территории Советского Союза встречаются 6 видов, морфологические особенности которых представлены в табл. 1 и рис. 1 [14]. Биологический цикл кокцидий рода Eimeria характеризуется тремя стадиями: шизогонией, гаметогонией и спорогонией. Шизогония и гаметогония совершаются в эпителиальных клетках кишечника и относятся к эндогенным стадиям развития. Спорогония происходит во внешней стадии и относится к экзогенной стадии развития кокцидий. Вместе с фекалиями больных животных ооцисты кокцидий выделяются во внешнюю среду. Свежевыделенные ооцисты не инвазионны. Во внешней среде при наличии благоприятных условий (тепла, влаги и воздуха) ооцисты проходят стадию спорогонии и через 4-12 дней превращаются в инвазионную стадию – ооцисту с 8-ю спорозоитами. Заражение свиней происходит при попадании зрелых ооцист вместе с кормом или водой в кишечник животного, подсосные поросята заражаются через загрязненное кокцидиями вымя свиноматок. В кишечнике животных спорозоиты выходят из ооцист и внедряются в эпителиальные клетки слизистой оболочки кишечника, где растут увеличиваясь в объеме и образуют многоядерные клетки-шизонты. Внутри шизонта формируются мелкие паразитымерозоиты, которые освобождаются от оболочки и вновь проникают в эпителиальные клетки кишечника, образуя шизонты второй, третьей генерации. Такой процесс называется шизогонией или бесполым множественным размножением. Шизогония сменяется половым процессом – гаметогонией. При этом мерозоиты внедряются в эпителиальные клетки и образуют макрогаметоциты и микрогаметоциты. Затем макрогаметоциты превращаются в крупные макрогаметы, а микрогаметоциты – в микрогаметы. В дальнейшем микрогаметы проникают в макрогаметы, сливаются, образуя новые клетки – зиготы. Зиготы окружаются оболочками и превращаются в ооцисты, которые вместе с фекалиями выделяются во внешнюю среду [20]. Эпизоотология. Кокцидиоз свиней встречается почти во всех странах. Источником инвазии являются больные или переболевшие животные. Резервуаром возбудителей кокцидиоза могут быть скотные дворы, где ранее содержались больные свиньи, выгульные площадки, корма, завозимые в свинарники, подстилка и т.д. Возбудители кокцидиоза могут быть занесены при завозе ремонтного молодняка из других хозяйств, неблагополучных по данному заболеванию. Подсосные поросята заражаются через загрязненное вымя свиноматок. 24 Инвазированность свиней в различных хозяйствах неодинакова. Это в первую очередь объясняется разными условиями содержания, кормления, а также природно-климатическими особенностями. В условиях специализированных хозяйств высокая зараженность животных определяется еще тем, что комплектование поголовья свинокомплексов производят за счет нескольких хозяйств. При этом животные иногда копрологически не исследуются. Наибольшая зараженность кокцидиозом в Республики Бурятия наблюдается у холостых и супоросных свиноматок – 60%, у поросят 20-месячного возраста – 50%. Кроме того, кокцидиоз довольно часто встречается в виде смешанной инвазии с эзофагостомозом, аскаридозом, трихоцефалезом и др [15]. Патогенез. Кокцидии, проникнув в эпителиальные клетки кишечника, размножаются путем бесполого множественного деления и вызывают массовую гибель клеток. Но разрушаются не только клетки, в которых размножаются паразиты, а и соседние с ними клетки, капилляры, сосуды. При таком массовом распаде клеточных элементов хозяина нарушается целостность кишечника. В пораженные его участки проникает микрофлора, которая обостряет течение болезни, вызывая обширные некрозы слизистой оболочки, поэтому многие участки кишечника не участвуют в пищеварении. Все это приводит к хроническому голоданию организма животного, застойным явлениям, отекам в различных органах и тканях, что выражается гидремией, лейкопенией и т.д. Массовое размножение кокцидий в слизистой кишечника, распад ее клеточных элементов приводит к тому, что на мертвом белковом субстрате размножается гнилостная микрофлора, что еще больше осложняет воспалительные процессы в кишечнике, вызывая расстройство его всасывающей и двигательной функции. Интоксикация организма происходит вследствие выделения кокцидиями токсинов или ядовитых веществ, образующихся под влиянием микрофлоры и протеолитических процессов. 25 Таблица 1 Кокцидии свиней Вид ооцист Форма Цвет Величина, мкм Спорогония, дней Eimeria debliecki овальная светло-коричневая или бесцветная 11,6-32,2×8,7-20,3 5-9 Eimeria scabra эллипсовидная или овальная коричневая 23,2-34,8×17,4-23,7 9-12 Eimeria perminuta овальная или круглая желтоватая или коричневая 11,2-16×9,6-12,8 10-11 Eimeria spinosa овальная или вытянутая коричневая 16-22,4×12,8-16 12 Isospora suis овальная или круглая светло-желтая 17,4-22,3×14,5-20,3 4 Isospora almaataensis то же Темно- или светлосерая 24,6-31,9×23,2-29 5 26 Рис. 1. Ооцисты кокцидий свиней 1-2 – Eimeria perminuta 3-4 – Eimeria spinosa 5-6 – Eimeria scabra Клиника. Инкубационный период при спонтанном заражении составляет 1012 дней. Наиболее остро протекает болезнь при заражении Eimeria debliecki и Eimeria scabra. Подострое течение заболевания характеризуется общим угнетением, поросята зарываются в подстилку, больше лежат. Аппетит вялый или отсутствует. Перистальтика кишечника усилена. Акт дефекации учащенный, фекальные массы вначале разжижены, с незначительным количеством слизи, затеи они становятся водянистыми, количество слизи увеличивается, могут появляться прожилки крови. Сильные поносы вызывают истощение, развивается анемия. Больные отстают в росте и развитии. Массовое размножение кокцидий в кишечнике приводит к геморрагическому воспалению слизистых оболочек тонкого и толстого отделов пищеварительного тракта, в связи с этим повышается температура тела. При этом больные лежат, отказываются от корма, понос усиливается и может быть кровавым. 27 Хроническая форма встречается у молодняка старшего возраста и взрослых свиней. Она сопровождается истощением, снижением привесов, при ухудшении кормления могут появляться поносы. Падеж от кокцидиоза бывает в основном только среди поросят. Патологоанатомические изменения. Туши павших поросят истощены. Слизистая оболочка тонкого отдела кишечника катарально воспалена; при длительном и тяжелом течении болезни имеет место геморрагическое воспаление не только тонких, но и толстых кишок. Там же обнаруживаются беловатые узелки величиной с просяное зерно. Диагноз. При постановке диагноза следует учитывать эпизоотические особенности хозяйства, клинические признаки болезни и патологоанатомические данные. Необходимо исследовать под микроскопом содержимое узелков с тонкого и толстого отделов кишечника на обнаружение ооцист, а если из соскобов приготовить мазки, то можно обнаружить шизонты и мерозоиты. Для прижизненной диагностики применяются копроскопические методы Дарлинга и Фюллеборна. Необходимо отличать носительство от заболевания. При носительстве в поле зрения микроскопа обнаруживаются (в препарате) единичные ооцисты кокцидий, при заболевании все поле зрения в микроскопе усеяно ооцистами. Лечение. Терапия кокцидиоза свиней пока еще недостаточно разработана. В настоящее время при данном заболевании рекомендованы следующие препараты: Биомицин солянокислый в дозе 10 мг/кг живой массы два раза в сутки в течение 3-5 дней индивидуально или групповым методом; Осарсол – 20-30 мг/кг живой массы два раза в сутки в течение 4-6 дней, перорально; Фуразолидон – 10 мг/кг живой массы, двукратно в течение 4-7 дней; Сульфадимезин в сочетании с зоаленом по 0,03 г/кг в течение 4 дней и сульфадимезин в сочетании с биомицином по 0,06-0,08 г/кг два раза в сутки в течение 4-5 дней. При смешанной инвазии (кокцидиоз, балантидиоз) применяют фуразолидон в дозе 20 мг/кг и фенотиазин 0,1 г/кг живой массы или фуразолидон, фенотиазин в тех же дозах и ятрен 30 мг/кг живой массы. Препараты применяют один раз в день в течение 5 дней групповым методом. Наряду с данными препаратами мы рекомендуем применять ампролиум, сульфодимезин, сульфодиметоксин, сульфомонотоксин, кокцисан, кокцивит, химкокцид в рекомендуемых дозах. Меры борьбы и профилактики. В профилактике кокцидиоза свиней имеет большое значение правильное их содержание и полноценное кормление. Чаще всего это заболевание появляется в тех хозяйствах, где имеют место перегруженность помещений животными, отсутствие регулярной уборки навоза и биотермического его обезвреживания. При переводе животных в лагеря, свинарники очищают от навоза, промывают и тщательно дезинфицируют горячим 3%-ным раствором едкого натра. Осенью перед постановкой свиней (после лагерного содержания) помещения вторично моют и дезинфицируют горячим 3%-ным раствором едкого натра, а стены и потолки белят известью. После побелки помещений полы необходимо протереть свежегашеной известью, кормушки и полы промыть водой. С целью химиопрофилактики в хозяйствах, где имеется кокцидиоз или смешанная инвазия (кокцидиоз и балантидиоз) необходимо применять 28 фуразолидон уже в первые месяцы жизни поросят. Для этого фуразолидон скармливают в течение месяца с мелом в соотношении 1:1000 и водой в виде сметанообразной массы. Кроме того для профилактики кокцидиоза свиней в неблагополучных хозяйствах можно применять и биоветин в дозе 25 тыс. ЕД на 1 кг живой массы в течение 20 дней [16]. Балантидиоз свиней Возбудитель балантидиоза свиней инфузория Balantidium coli, паразитирует на слизистой или в слизистой оболочке толстого отдела кишечника. Кроме того его можно обнаружить и в других отделах пищеварительного тракта. Балантидии имеют овальную или яйцевидную форму, величиной 47-120 мк в длину и 27-85 мк в ширину. Тело балантидий покрыто ресничками, при помощи которых паразиты передвигаются и могут проникать в слизистую кишечника и даже в подслизистый слой. В цитоплазме паразита два ядра (макронуклеус и микронуклеус) и различные вакуоли (рис. 2). Биология возбудителя. Балантидии в кишечнике свиней размножаются прямым делением, которое сменяется половым процессом – конъюгацией. Подвижные балантидии в кишечнике или во внешней среде инцистируются и принимают овальную или круглую форму, покрываются плотной, толстой оболочкой и превращаются в цисты величиной 58-88 мк. Они очень устойчивы во внешней среде и могут сохраняться вне организма животных до года. Питаются балантидии в кишечнике свиней бактериями, грибками, крахмалом и другими компонентами пищи. При возникновении вирулентных штаммов паразитов они становятся более агрессивными и начинают питаться эритроцитами, лейкоцитами, а также продуктами воспаления. Эпизоотология. Балантидиоз встречается повсеместно. В Западных регионах России зараженность свиней данным заболеванием колеблется от 52% и более, которое протекает в виде смешанной инвазии с кокцидиозом (48,7%). Источником заражения служат взрослые свиньи – паразитоносители. Кроме того, в природе основными хозяевами балантидий являются дикие кабаны, серые крысы, обезьяны и человек. Заражение происходит алиментарно при заглатывании цист паразитов с загрязненной водой или кормом. 29 Б A Рис. 2. – Balantidium coli: А – вегетативная форма; Б - циста Появлению и распространению балантидиоза свиней в хозяйствах способствуют нарушение оптимального микроклимата, переуплотненное содержание животных в грязных и сырых помещениях, неполноценное их кормление, несвоевременная подкормка поросят, особенно молочными продуктами, нарушение правил отъема молодняка. Балантидиозом заболевают преимущественно поросята-отъемыши в возрасте 2-2,5 месяца. В стационарных очагах балантидиозом могут заболеть поросята под матками, подсвинки в возрасте 4-6 месяцев и даже свиньи в 9 месяцев. Особенно восприимчив к балантидиозу молодняк в возрасте от 1-1,5 до 6 месяцев. Патогенез. У больных поросят возбудитель паразитирует не только в просвете кишечника, но и проникает глубоко в слизистую и в подслизистый слой, механически травмирует стенку толстого отдела кишечника. Балантидии, проникая глубоко в кишечную стенку, открывают ворота инфекции, осложняют течение болезни, в результате чего воспаляется и изъязвляется слизистая кишечника. Возникшее воспаление и некрозы нарушают функциональную работу желудочнокишечного тракта и приводят к тяжелому заболеванию. Клиника. Течение этой болезни может быть острым, хроническим и латентным. Инкубационный период длится от 5 до 27 дней. Острая форма заболевания у свиней протекает тяжело и характеризуется следующими признаками: повышение температуры тела на 1-2°С, общее состояние угнетенное, животные больше лежат, зарывшись в подстилку, отказываются от корма, иногда может быть извращенный аппетит, больные пьют навозную жижу при наличии воды и корма. Перистальтика кишечника усиливается. Акт дефекации частый, испражнения становятся жидкими, содержат слизь и прожилки крови. Больные животные сильно худеют, волосяной покров взъерошенный, теряет блеск. Продолжительность болезни при острой форме 2-3 недели. Особенно тяжело балантидиозные энтероколиты протекают у подсвинков при одновременном поражении их другими простейшими (ооцистами кокцидий) и гельминтами (аскаридами, эзофагостомами, трихоцефалами и др.). При хроническом течении болезнь затягивается до двух месяцев. Температура чаще нормальная или субнормальная. Аппетит вялый и извращенный. 30 Понос менее выражен, чем при остром течении, в жидких фекалиях обнаруживают только следы крови. Поросята худеют, отстают в росте, развивается анемия, слабость и полное истощение. Латентная форма балантидиоза – паразитарная реакция значительная, в фекалиях обнаруживаются преимущественно вегетативные формы балантидий, которые очень подвижны. У больных такой формой животных наблюдается легкое катаральное воспаление слизистой оболочки ободочной и слепой кишок. Это течение болезни может переходить в острую хроническую форму. В таких случаях в хозяйстве за несколько дней происходит массовое заболевание животных. Патологоанатомические изменения наблюдаются в основном в местах локализации балантидий, а именно в слепой и ободочной кишках. При остром течении болезни в выходной части слепой кишки и у основания ее, а у ободочной кишки – на начальных участках и боковых изгибах образуются язвы величиной от горошины до лесного ореха. На отдельных участках или на большом протяжении слепой и ободочной кишок отмечается геморрагическое воспаление. При острой балантидиозной дизентерии на отдельных участках или на большом протяжении слепой и ободочной кишок слизистая оболочка отечна, резко гиперемирована, окрашена в вишнево- или темно-красный цвет. Иногда на слизистой имеются кровоизлияния различной величины и формы, местами она покрыта слизью, и на ней выделяются узелки сероватого цвета, величиной с просяное зерно и больше. Каловые массы жидкие, темно-красноватого цвета с примесью крови. Печень, селезенка и почки незначительно увеличены. Почки дряблые, на разрезе – сочные. Селезенка уплотненная, на разрезе сочная, пульпа темно-коричневого цвета, рисунок нечеткий. Сердце увеличено за счет расширения правых полостей [12]. Диагноз. При постановке диагноза учитывают эпизоотическую ситуацию в хозяйстве, клиническую картину, копрологические исследования, патологоанатомические изменения. Для микроскопии берут свежие фекалии от больных животных, делают нативный мазок и просматривают под микроскопом на наличие подвижных форм балантидий или цист. Для обнаружения ооцист можно брать и несвежие фекалии, так как цисты животного вне организма сутками не меняют своей формы и сохраняют жизнеспособность. Наличие в десяти полях зрения микроскопа до двух балантидий свидетельствует о слабой степени инвазированности, 5-8 балантидий говорит уже о начале заболевания животного. При остром течении болезни обнаруживают от 7-15 до 25-40 балантидий в одном поле зрения микроскопа. Нативный мазок приготовляют так: если фекалии слизистые, кровавослизистые или водянистые, то тонкой деревянной палочкой или спичкой берут небольшой комочек слизи, помещают на предметное стекло, накрывают покровным стеклом, слегка его придавливают и микроскопируют. Если фекалии кашицеобразные или полуоформленные, то сначала на предметное стекло наносят каплю физиологического раствора, затем концом палочки прикасаются к фекалиям. После этого палочку обмывают в капельке раствора до появления равномерной мути и накрывают каплю покровным стеклом. Мазок должен быть равномерно тонким, прозрачным. 31 Для исследования кишечных простейших (кроме кокцидий) в нативных мазках используют витальные окраски – раствор Люголя, нейтральрот и метилблау в разведении 1:1000, 1:5000. Препараты, окрашенные раствором Люголя, рассматривают под микроскопом через 3-5 минут. Вегетативные формы простейших и их цисты, окрашиваются в желтый, коричневый или зеленовато-желтый цвет. Отличаются они характерной формой, размерами, содержанием цитоплазмы, а также наличием ядер. Балантидиоз необходимо дифференцировать от паратифа поросят, который протекает остро у молодняка до 20-дневного возраста, температура тела при этом повышается до 41-42°С. Нередко отмечают коликоподобные явления, поросята взвизгивают, ложатся на живот, затем вскакивают и беспокоятся. Появляется конъюнктивит, слизистый экссудат засыхает в виде желто-грязных корочек на краях век или склеивает веки. При балантидиозе таких явлений не бывает. При подостром и хроническом течении паратифа наблюдают слабо выраженные септические явления, температура непостоянная, учащается сердечный толчок, появляется понос, который нередко сменяется запором, а затем фекалии приобретают жидкую консистенцию, иногда регистрируют признаки пневмонии. При бактериологическом исследовании обнаруживают сальмонеллы, которых при балантидиозе не бывает. Лечение. Для лечения балантидной дизентерии применяются следующие препараты: Осарсол дается с кормом в дозе 0,03-0,05 г/кг живой массы, два раза в день – утром и вечером – в течение 3 дней. С целью полного излечения и исключения рецидивов болезни рекомендуется курс лечения повторить через 5-6 дней. Ятрен в дозе 0,05 г/кг живой массы, два раза в день, три дня подряд, внутрь. При комбинированном лечении осарсол дают вместе с ятреном. Препараты назначают в течение шести дней, причем в первые три дня больные животные получают осарсол два раза в день (утром и вечером) в вышеуказанной дозе, а в три последующие дня – ятрен внутрь и в виде клизмы. Доза ятрена внутрь 0,05 г/кг живой массы с одновременными водными клизмами (1:500) два раза в день. Фуразолидон – задают с малым количеством корма в дозе 0,5 мг поросятам сосунам, 2 мг – отъемышам и 6 мг – взрослым 2 раза в день в течение 5 дней. Дополнительно назначают витамины А, Д и Е. Трихопол (метронидазол) – 0,25 г поросятам весом 12-20 кг, свыше – 0,5 г два раза в день (утром и вечером), три дня подряд, индивидуально. Биомицин солянокислый – задают внутрь из расчета 20 мг/кг живой массы, два раза в сутки с интервалом в 12 часов, разводят в кипяченой воде. Кальциевую соль биомицина дают с учетом ее активности, обозначенной на этикетке. Курс лечения животных продолжается 3-7 дней, при этом молочная диета ускоряет положительное действие биомицина. Мицерин (неомицин сульфат) – в дозе 5 тыс. ед. на 1 кг живой массы в виде водного раствора внутрь два раза в день – утром и вечером. Курс лечения 3-5 дней. Суточная доза мицерина поросятам до 10 дней – 5-10 тыс.ед., от 11-20 дней – 15-20 тыс. ед., от 21-30 дней – 40 тыс. ед [10]. . 32 Профилактика и меры борьбы. Ежедневная уборка навоза в помещениях и его биотермическое обеззараживание. Кормушки, водопойные корыта и предметы ухода за свиньями ежедневно моют горячей водой и дезинфицируют. Станки, кормовые проходы и столовые тщательно очищают и дезинфицируют. Для этого применяют 2-3%-ный раствор каустической соды или 4%-ный раствор формалина. Можно применять и негашеную известь – пушонку, которую наносят тонким слоем на поверхность пола и через 1-2 дня ее нужно вымести. Для получения здоровых, хорошо развитых и крепких поросят важное значение имеет организация правильного кормления не только молодняка, но и свиноматок, а также хряков в течение всего года с включением в кормовой рацион всех видов кормов, необходимых для животных. В период отъема поросят проводят химиопрофилактику, скармливая фуразолидон с мелом, из расчета 1 г препарата на 1 кг мела. Также можно давать ятрен в лечебной дозе, а затем три дня – осарсол. Все люди, имеющие контакт со свиньями, должны периодически проверяться на кишечные простейшие, в частности на балантидии. В случае установления балантидионосительства или расстройства пищеварения необходимо немедленно обратиться к врачу. В хозяйствах необходимо проводить ветеринарно-просветительную работу как среди животноводов, выделенных для ухода за свиньями, так и среди населения, так как люди также восприимчивы к балантидиозу и могут заражаться от свиней. Амебиаз (амебная дизентерия) Амебиаз – это кишечно-протозойное заболевание свиней, вызываемое Entamoeba polecki. Различают две формы энтамеб: вегетативную (подвижную, или активную) и инцистированную (неподвижную, или неактивную). В свою очередь вегетативная форма подразделяется на просветную форму, обитающую в просвете толстого отдела кишечника, и тканевую форму, которая паразитирует в слизистом и подслизистом слоях стенки толстой кишки животных, вызывая глубокие язвенные поражения. Энтамеба полески имеет величину 10-18 мк, малоподвижна, обычно округлой формы. Ядро имеет сферическую форму, величиной от 3 до 6 мк. Периферический хроматин лежит под оболочкой ядра в виде мелких зерен в один ряд. В ядре имеется ахроматиновая кариосома. Цисты энтамеб величиной 10-16 мк имеют сферическую форму, окружены двухконтурной оболочкой, одноядерные, размер ядра 3-5 мк, хроматидные включения палочкообразной формы с закругленными концами. Амебная дизентерия чаще всего бывает в жаркое время года и наиболее подвержены заболеванию поросята в возрасте от 7-15 дней и более. Появлению амебной дизентерии способствует неблагоустроенность свинарников, скученность животных, однообразное кормление, плохой уход и отсутствие профилактических и санитарных мероприятий. Клиника. Инкубационный период длится от 11 до 18 дней. Течение амебной дизентерии – острое, подострое и хроническое. Для острой амебной дизентерии характерны следующие клинические признаки: температура 41-42°С, пульс 99-100, дыхание 26-28 в минуту, 33 изнурительный понос. Фекалии жидкие, желтовато-сероватого цвета, затем водянистые желто-зеленого цвета с примесью слизи и крови, после 2-3 суток фекалии становятся зеленовато-бурого или кроваво-бурого цвета. Состояние угнетенное, аппетит извращенный, некоторые из них совершенно отказываются от корма, видимые слизистые оболочки анемичны, щетина взъерошена, тяжело больные больше лежат, зарываются в подстилку. Наблюдаются тенеземы, колики и болезненность толстых кишок при пальпировании. Клинические признаки при подострой и хронической дизентерии в основном те же, что и при острой, но менее выражены. Патологоанатомические изменения. При вскрытии трупов павших животных характерные и наиболее выраженные патологоанатомические изменения наблюдаются в желудочно-кишечном тракте, особенно в толстом отделе кишечника. При острой и подострой формах слизистая оболочка слепой, ободочной кишок геморрагически воспалена, местами имеются некротические изменения. В начальной части ободочной кишки обнаруживаются язвочки размером от булавочной головки до 10-копеечной монеты. Они отличаются глубиной и подрытостью краев, полости их наполнены желтоватым некротическим распадом. Наблюдается также гиперемия и увеличение печени, почек, селезенки. При хронической форме болезни слизистые оболочки желудка и слепой кишки катарально воспалены. В слизистой оболочке ободочной кишки, в дистальной части ее встречаются очаги геморрагического воспаления. Диагноз. С целью установления диагноза необходимо учитывать клинические и эпизоотологические данные, копроскопические исследования, патологоанатомические изменения. Для прижизненной диагностики применяют метод нативного мазка. Если нет возможности исследование провести в хозяйстве, то можно фекалии от животных поместить в пробирку или банку с притертой пробкой, залить раствором Барбагалло и отправить в лабораторию. В этом растворе как вегетативные формы, так и их цисты сохраняются месяцами и даже годами. Лечение. При амебной дизентерии свиней применяют следующие препараты: Биомицин в дозе 25000 ед. на 1 кг живой массы 2-5 раз в день в течение 3-7 дней, внутрь Аминарсон – 0,05 г/кг два раза в день в течение 4 дней. Осарсол – 0,03 – 0,05 г/кг два раза в день – утром и вечером в течение 3 дней. Курс лечения повторить через 5-6 дней. Профилактика в основном такая же, как и при балантидиозе свиней. С профилактической целью в неблагополучных по амебной дизентерии хозяйствах надо давать биомицин так же и здоровым поросятам один раз в сутки в течение 2-3 дней. Доза препарата: поросятам в возрасте до 15 дней – 7 мг поросятам в возрасте 15-20 дней – 15 мг поросятам в возрасте 20-30 дней – 20 мг поросятам в возрасте 30-45 дней – 25 мг поросятам в возрасте 46-60 дней – 50 мг подсвинкам – 10 мг/кг живой массы [1]. 34 Трихомоноз свиней (кишечная форма) Трихомоноз – это протозойное заболевание, возбудителем которого является простейшее – Trichomonas suis. Местом локализации этого вида являются все отделы кишечника и желудка. Кишечная трихомонада свиней имеет овальную форму, размер 5-8 мк, снабжена четырьмя жгутиками, в ядре имеется одно или несколько базальных зерен (рис. 3). Размножаются путем простого деления материнской клетки на две дочерние особи, а так же путем бесполого множественного деления. Эпизоотология. Основным источником инвазии являются больные животные и свиньи-носители трихомонад. Они постоянно выделяют в большом количестве вегетативные формы возбудителя во внешнюю среду, заражая других свиней (особенно молодняк), окружающую местность, пастбища, водоемы и т. д. Рис. 3. Trichomonas suis Заражение новорожденных поросят может происходить через вымя и соски больных свиноматок, загрязненные экскрементами, содержащими возбудителей. 35 Наиболее восприимчивы поросята-сосуны 7-50-дневного возраста, затем поросята-отъемыши. Подсвинки и взрослые животные менее восприимчивы и редко заболевают. Заболевание чаще наблюдается среди слабых поросят, отстающих в росте и развитии. При неблагоприятных условиях содержания и неудовлетворительного кормления резко снижается резистентность организма поросят и находящиеся в их кишечнике трихомонады начинают усиленно размножаться и вызывают заболевание. Вегетативные формы трихомонад при температуре воздуха +13-20°С могут сохраняться до 3 часов, а при температуре -20-30°С до 2 часов и более. Клиника. Инкубационный период от 8 до 15 дней. Одним из первых признаков болезни является понос и кратковременное повышение температуры тела до 40-41°С, общее состояние угнетенное, отмечается понижение аппетита и повышается жажда. На 3-5 день появляется непрекращающийся изнурительный понос, тенеземы. Фекалии вначале сероватые, затем темно-коричневые от примеси крови. Испражнения часто содержат слизь, хлопья фибрина и даже чистую кровь. При продолжительном течении болезни фекалии водянистые, зловонные, акт дефекации непроизвольный. Быстрое исхудание поросят приводит к истощению и общему упадку сил. Больные животные больше лежат. Продолжительность болезни 2-3 недели и более. Выздоровление наблюдается в основном у взрослых свиней и реже у поросят. Смерть наступает от интоксикации и истощения после нескольких недель болезни. Оставшиеся в живых поросята имеют вид заморышей, не поддаются откорму и не пригодны к дальнейшему выращиванию. Патогенез. У животных – трихомонадоносителей не всегда и не у всех возникают болезни. Заболевание начинается в том случае, когда трихомонады размножаются в большом количестве и выделяют токсические вещества (эндотоксины), которые всасываются в стенку кишечника и в кровь хозяина. Заражение трихомонозом в естественных условиях происходит в результате проникновения трихомонад в желудочно-кишечный тракт свиней вместе с кормом или водой. Паразиты длительное время находятся в полости пищеварительного тракта, как безвредные обитатели (коменсалы), не вызывая клинически выраженного заболевания. Патологоанатомические изменения. Слизистая оболочка желудка набухшая, темно-красного цвета, с кровоизлияниями. Кишечник, в основном толстый отдел, наполнен жидким содержимым со слизью и хлопьями фибрина. Стенки кишечника инфильтрированы, слизистая его складчатая, местами гиперемирована и пронизана множественными кровоизлияниями, подвергается некрозу и при хроническом течении болезни характеризуется некротизированной тканью (в виде гнезд творожистой массы). Печень незначительно увеличена, паренхима неравномерно окрашена и дрябловатой консистенции. Желчный пузырь расширен, заполнен желтокоричневой густоватой желчью. Селезенка незначительно увеличена, плотной консистенции, на разрезе сочная, пульпа темно-коричневого цвета, рисунок нечеткий. Почки несколько увеличены, дрябловаты, на разрезе сочные, корковый слой бледно-коричневого, а мозговой – темно-красного цвета. Сердце увеличено за счет расширения правых полостей, коронарные сосуды кровенаполнены, миокард дряблый, бледно-серого или серо-красного цвета. 36 Легкие, как правило, увеличены, тестоватой консистенции, на разрезе сочные от светло-красного до темно-красного цвета, при надавливании на паренхиму стекает прозрачная красноватая пенистая жидкость. В полости бронхов и трахеи имеется также значительное количество пенистой жидкости. Диагноз на трихомоноз свиней ставится на основании эпизоотологических, клинических, копроскопических и патологоанатомических данных. Основным копроскопическим методом диагностики является исследование фекалий методом нативного мазка. Лучше всего микроскопировать нативный препарат из свежих фекалий непосредственно в хозяйстве. Трихомонады в свежих фекалиях очень подвижные и встречаются в значительном количестве. Можно исследовать и окрашенный мазок, который делают из свежевыделенных фекалий или взятых из прямой кишки. Исследуемый материал тонким слоем размазывают на стекле и дают подсохнуть, затем фиксируют метиловым спиртом или спиртом-ректификатом. После того, как мазок подсохнет, его окрашивают по Романовскому-Гимза (на 1 мл дистиллированной воды 3-4 капли основного раствора краски) в течение 40-50 мин., затем промывают водой, дают подсохнуть и микроскопируют под иммерсией. В сомнительных случаях при отрицательной микроскопии можно применять метод культивирования на среде Петровского. Необходимо проводить и дифференциальную диагностику трихомоноза от паратифа поросят, диспепсии, балантидиоза, амебной дизентерии, кокцидиоза. Паратифом поросята заражаются с первых дней жизни до 4-месячного возраста, чаще болезнь возникает после отъема, особенно в зимне-весенний период. Балантидиозом молодняк заражается с 15-20-дневного возраста, заболевание возникает больше всего после отъема в весенний период. Амебная дизентерия чаще наблюдается в жаркое время года и зараженность отмечается у молодняка в возрасте 7-15 дней и более. Кокцидиозом заражаются поросята в возрасте от 10 до 20 дней и более, заболевание отмечается в различное время года. При трихомонозе поросят определенной сезонности не отмечается, заболевание чаще возникает среди слабых поросят в возрасте 7 дней и до отъема поросят от матерей [2]. Лечение. Для лечения применяются добавки и корма, содержащие микроэлементы. Сухой тканевый препарат, содержащий микроэлементы: медь сернокислую, калий йодистый, кобальт хлористый. Препарат задается с комом в дозе 1 г на 10 кг живой массы в течение 7 дней. Комбикорма, обогащенные микроэлементами – медью сернокислой, йодистым калием, цинком сернокислым, кобальтом сернокислым, железом сернокислым, витаминами В2, В12 и антибиотиком биомицином. Комбикорма, обогащенные микроэлементами, применяются как обычный корм: взрослым больным свиньям – до 3 кг на голову, молодняку – от 200 до 600 г в день в течение 7-12 дней. Микроэлементы можно задавать и с другими кормами (молоком – для молодняка или кашей для взрослых свиней) в следующем количестве: Суточные дозы микроэлементов (мг) следующие: 37 Взрослые животные Молодняк Йодистый калий 0,3 0,1 Хлористый марганец 1,5 0,3 Хлористый кобальт 5 2 Цинк сернокислый 0,5 0,2 Медь сернокислая 10 3 Такие обогащенные микроэлементами корма также применяются в течение 7-12 дней. Трихопол обладает сильным действием на простейших. Подавляет развитие трихомонад, балантидий, амеб и других простейших. Препарат применяют перорально 2 раза в день (утром и вечером) три дня подряд в дозах; поросятам живым весом 5-40 кг – 0,25 г, подсвинкам 40 кг и выше – 0,5 г. Через 7-10 дней курс лечения поросятам от 5 до 40 кг повторяют. Профилактика. Профилактику трихомонозных энтероколитов поросят необходимо строить в комплексе мероприятий: полноценное кормление, хорошее содержание свиней, периодические дезинфекции помещений для молодняка, а также организация выгулов и пастбищного содержания свиней. В хозяйствах неблагополучных по трихомонозу необходимо поросятам-сосунам вводить феррадекс и задавать биоветрин. Феррадекс вводят поросятам в возрасте 2-5 дней внутримышечно однократно, а с 10-дневного возраста задают биоветрин с кормом (на животное по 15-20 тыс.ед. однократно) в течение 50-60 дней. Можно рекомендовать применение фуразолидона с мелом из расчета 1 г фуразолидона на 1 кг мела. Для лучшей поедаемости мела с фуразолидоном его нужно разводить в воде до получения сметанообразной массы. Помещения, где выявили животных больных трихомонозом, нужно тщательно очистить и продезинфицировать 5%-ным горячим раствором каустической соды или 10%-ным раствором формалина. Навоз подвергать биотермическому обеззараживанию. Использовать лагерное содержание свиней. 38 ЛИТЕРАТУРА 1. Аппасов Р. Н. – Амебная дизентерия свиней в Казахстане. Паразиты сельскохозяйственных животных Казахстана. Изд-во Академии Наук Казахской ССР, Алма-Ата, 1962, с. 53-55 2. Аппасов Р. Н. – Патогенные простейшие – трихомонады животных юга и запада Казахстана. Каз. НИИНТИ, Алма-Ата, 1974, с. 51. 3.Волков Ф. А. - К обнаружению оллулан у свиней в Сибири. - Науч.-техн. бюл./ВАСХНМ, Сиб. отд-ние, ИЭВСиДВ. - Новосибирск, 1979, вып. 13, с. 17-22. 4. Волков Ф. А. - Диагностика оллуланоза свиней с помощью искусственного желудочного сока. - В кн.: Профилактика болезней сельскохозяйственных животных. Новосибирск, 1980,с. 85-89. 5. Волков Ф. А. - Изыскание средств дегельминтизации свиней при оллуланозе. - В кн.: Незаразные и паразитарные болезни сельскохозяйственных животных. - Новосибирск, 1981, с. 166-168. 6. Волков Ф. А. - Диагностика оллуланоза свиней - Ветеринария, 1983, №2, с. 42-43. 7. Волков Ф. А. - Оллуланоз свиней. - Ветеринария, 1983, № 11, с. 40-42. 8. Воронкова 3. Г., Алтапова Г. П., Попов М. А. - Оллуланоз свиней (гистологические изменения в желудке). - Ветеринария, 1985, №1, с. 4647. 9. Демидов Н. В., Потемкина В. А. - Справочник по терапии и профилактике гельминтозов животных. – М.: Колос, 1980. - 240 с. 10. Ершов В. С. - Справочник по ветеринарной гельминтологии. - М.: Колос, 1964. - 367 с. 11. Казелло А. В., Симаков В. Е. - Патоморфологические изменения в желудке свиней при спонтанном оллюлянозе. - В кн.: Профилактика болезней сельскохозяйственных животных. - Новосибирск, 1976, с. 189193. 12. Карпенко И. Г. – Балантидиоз свиней. Москва, Россельхозиздат, 1974, с. 63. 13. Котельникова Г. А.- Диагностика гельминтозов животных. - М.: Колос, 1974. - 240 с. 14. Колабский Н. А., Пашкин П. И. – Кокцидиозы сельскохозяйственных животных. Ленинград, «Колос», 1974, с. 48-54 15.Корнишина М. Д. - Распространение кокцидиоза свиней в Татарской АССР. Научные труды Казанского ордена Ленина ветеринарного института имени Н. Э. Баумана, том 132, Казань, 1979, с. 105-107. 16. Корнишина М. Д. – Возрастная динамика кокцидиоза свиней в условиях специализированного хозяйства. Там же, с. 107-109. 17. Мозговой А. А. - Гельминты домашних и диких свиней и вызываемые ими заболевания. - М.: Наука, 1967. - 540 с. 18. Романенко Н. А. – Санитарная гельминтология. - М.: Медицина, 1982. 175с. 39 19. Скрябин К. И., Шихобалова Н. П., Шульц Р. С. - Основы нематодологии, т.4, Диктиокаулиды, гелигмозоматиды и оллуланиды животных. - М.: Изд-во АН СССР, 1954. - 323 с. 20. Хейсин Е. М. – Жизненные циклы кокцидий домашних животных. Изд-во «Наука», Ленинград, 1967, с. 194. 21. Cameron Т. W, Observations on the life history of Ollulanus tricuspis Leuck., the stomach worm of the cat. - J. Helminthol., 1927, 5, p. 67-80. 22. А.С. 967471 (СССР). - Способ определения жизнеспособности гельминтов и их личинок / Ин-т эксперим. ветеринарии Сибири и Дальнего Востока; Авт. изобрет. М. Ю. Паскальская, Ф. А. Волков, В. И. Офицеров. - Заявл. 07.08.80. № 2972561/30-15; Опубл. в Б.И., 1982, №39; МКИ А 61 В 10/00. - УДК 612.072. 23. А.С. 550156 (СССР). - Способ определения жизнеспособности зародышей гельминтов / Белорус, науч.-исслед. ин-т эксперим. ветеринарии; Авт. изобрет. И. В. Сафронов, В. И. Орловский. - Заявл. 28.03.75; Опубл. в Б.И. 1977, №19; МКИ А 61 В 10/00. - УДК 616.995.1-093. 40 Методические указания Алексей Михайлович Третьяков Петр Иванович Евдокимов Юлия Алексеевна Кушкина Василий Александрович Шабаев Паразитозы свиней и меры борьбы с ними на промышленных комплексах и специализированных фермах Редактор Компьютерная верстка Лицензия ЛР № 021274 от 26.03.98 г. Сдано в печать Бум. тип. №1. Формат 60х84 1/16. Усл. печ.л. . Уч.-изд. л. 5,09. Заказ № Тираж 100. Цена договорная Издательство Бурятской государственной сельскохозяйственной академии им. В.Р. Филиппова, 670024, г. Улан-Удэ, ул. Пушкина, 8 41 42