МЕТОДИЧЕСКИЕ РЕКОМЕНДАЦИИ по применению набора реагентов для типирования (идентификации субтипов H1N1 и H3N2) вирусов гриппа А (Influenza virus A) методом полимеразной цепной реакции (ПЦР) с гибридизационнофлуоресцентной детекцией «АмплиСенс® Influenza virus A-тип-FL» Вариант FEP ОГЛАВЛЕНИЕ НАЗНАЧЕНИЕ. ....................................................................................................................... 3 ПРОВЕДЕНИЕ АМПЛИФИКАЦИИ НА ПРИБОРАХ РАЗЛИЧНЫХ ПРОИЗВОДИТЕЛЕЙ ... 4 ПОРЯДОК ПРОВЕДЕНИЯ ДЕТЕКЦИИ РЕЗУЛЬТАТОВ С ПОМОЩЬЮ ФЛУОРЕСЦЕНТНОГО ПЦР ДЕТЕКТОРА АLА-1/4 (BioSan, Латвия) С ВЕРСИЕЙ ПРОГРАММНОГО ОБЕСПЕЧЕНИЯ 4.10.............................................................................. 5 ПОРЯДОК ПРОВЕДЕНИЯ ДЕТЕКЦИИ РЕЗУЛЬТАТОВ С ПОМОЩЬЮ ФЛУОРЕСЦЕНТНОГО ПЦР ДЕТЕКТОРА АLА-1/4 (BioSan, Латвия) С ВЕРСИЕЙ ПРОГРАММНОГО ОБЕСПЕЧЕНИЯ 5.1.0 И ВЫШЕ ............................................................. 8 ПОРЯДОК ПРОВЕДЕНИЯ ДЕТЕКЦИИ РЕЗУЛЬТАТОВ С ПОМОЩЬЮ ФЛУОРЕСЦЕНТНОГО ПЦР ДЕТЕКТОРА «Джин» («ДНК-Технология», Россия) ............ 12 Вариант FEP Форма 1: REF V54-50-R0,5-FEP; Форма 2: REF V54-50-R0,2-FEP / VER 16.07.13 / стр. 2 из 15 НАЗНАЧЕНИЕ Методические рекомендации описывают порядок действий при использовании набора реагентов для типирования (идентификации субтипов H1N1 и H3N2) вирусов гриппа А (Influenza virus A) методом полимеразной цепной реакции (ПЦР) с гибридизационно-флуоресцентной детекцией «АмплиСенс® Influenza virus A-типFL» вариант FEP совместно с трехканальными и четырехканальными детекторами конечной флуоресценции ALA-1/4 при использовании программного обеспечения версии 4.х и 5.х и четырехканальным детектором конечной флуоресценции «Джин». Перед проведением детекции необходимо провести этапы пробоподготовки, приготовления реакционных смесей и реакции амплификации согласно инструкции к набору реагентов. Детекция проводится с помощью флуоресцентного ПЦРдетектора (согласно инструкции к используемому прибору) путем измерения интенсивности флуоресцентного сигнала по каналам указанным в табл. 1. Таблица 1 Соответствие наименования ПЦР-смесь-1-FEP/FRT и каналов и порогов детекции Пороговые значения по каналу; привязка канала ПЦР-смесь-1 ПЦР-смесь-1FEP/FRT Influenza virus A H1N1 ПЦР-смесь-1FEP/FRT Influenza virus A H3N2 Название теста FAM Детекция ВКО HEX Детекция возбудителя «п-» - «п+» ROX Детекция возбудителя «п-» - «п+» «ГРИПП AH1N1» 2,5 2,0-2,5 (H1) 1,8-2,0 (N1) «ГРИПП AH3N2» 2,5 2,0-2,5 (H3) 1,8-2,0 (N2) Соответствие названий флуорофоров и каналов детекции Название канала детекции для Канал для флуорофора разных моделей приборов1 канал для флуорофора FAM FAM/Специфика канал для флуорофора JOE HEX/ВК канал для флуорофора ROX ROX Название каналов детекции для соответствующего детектора см. в соответствующем разделе методических рекомендаций к набору реагентов. Вариант FEP Форма 1: REF V54-50-R0,5-FEP; Форма 2: REF V54-50-R0,2-FEP / 1 VER 16.07.13 / стр. 3 из 15 ПРОВЕДЕНИЕ АМПЛИФИКАЦИИ НА ПРИБОРАХ РАЗЛИЧНЫХ ПРОИЗВОДИТЕЛЕЙ Амплификаторы с активным регулированием (по раствору в пробирке): Таблица 2а Программы амплификации для приборов «Терцик», опция точного регулирования температуры (precise) («ДНК-Технология») цикл 0 1 2 3 4 температура, °С 95 95 95 54 72 72 10 время циклов пауза 5 мин 1 10 с 20 с 42 10 с 1 мин 1 Хранение Таблица 2б Программы амплификации для приборов GeneAmp PCR System 2700 (Applied Biosystems), MaxyGene (Axygen Scientific), Gradient Palm Cycler (Corbett Research), MyCycler (Bio-Rad) цикл 0 1 2 3 4 температура, °С 95 95 95 54 72 72 10 время циклов пауза 5 мин 1 10 с 25 с 42 25 с 1 мин 1 Хранение Амплификаторы с матричным регулированием температуры: Таблица 2в Программа амплификации для прибора Uno-2 (Biometra) цикл 0 1 2 3 4 температура, °С 95 95 95 54 72 72 10 время циклов пауза 5 мин 1 25 с 40 с 42 25 с 1 мин 1 Хранение Вариант FEP Форма 1: REF V54-50-R0,5-FEP; Форма 2: REF V54-50-R0,2-FEP / VER 16.07.13 / стр. 4 из 15 ПОРЯДОК ПРОВЕДЕНИЯ ДЕТЕКЦИИ РЕЗУЛЬТАТОВ С ПОМОЩЬЮ ФЛУОРЕСЦЕНТНОГО ПЦР ДЕТЕКТОРА АLА-1/4 (BioSan, Латвия) С ВЕРСИЕЙ ПРОГРАММНОГО ОБЕСПЕЧЕНИЯ 4.10 Настройка теста Для детекции и учета результатов используются следующие настройки тестов (таблица 1): Настройки теста можно просмотреть и изменить, выбрав опцию Список тестов в главном меню Настройки. После ввода указанных значений, следует нажать кнопку Сохранить. Проведение детекции 1. Включить прибор и запустить на компьютере, присоединенном к прибору, программное обеспечение ALA-1 (версия 4.1). 2. Выбрать в меню Протокол опцию Создать новый. Выбрать тип ротора (36 х 0,5 или 48 х 0,2). Выбрать в меню используемый тест. Ввести последовательность исследуемых образцов и контрольных фоновых образцов в колонке Образец (для обозначения фоновых пробирок в графе Образец используется сочетание клавиш Ctrl + F). Закрыть окно редактирования протокола детекции. 3. Поставить пробирки в ячейки предварительно снятого ротора прибора АLА-1/4 согласно заданной последовательности, установить ротор в модуль прибора, закрепить его фиксатором и закрыть крышку. Запустить измерение, нажав на значок детекции Детекция. По (вверху экрана) или выбрав в меню Протокол опцию окончании детекции на экран будет выведена таблица результатов. Примечание. Если в одном протоколе проводится детекция более 36 образцов, то после окончания детекции партии из 36 (48) образцов необходимо извлечь ротор, поместить в него следующую группу образцов, поставить ротор в прибор и для продолжения детекции нажать кнопку Продолжить в окне программы. Учет результатов 1. Полученные данные интерпретируются автоматически с помощью программы ALA_1. Результаты в таблице представляются с помощью следующих обозначений: «обнаружено» – положительный результат; «не обнаружено» – отрицательный результат; «сомнительно» – результат, который нельзя однозначно интерпретировать Вариант FEP Форма 1: REF V54-50-R0,5-FEP; Форма 2: REF V54-50-R0,2-FEP / VER 16.07.13 / стр. 5 из 15 (сигнал по каналу, отведенному для детекции специфической НК, превышает пороговое значение, допустимое для отрицательных образцов, но не превышает пороговое значение для положительных образцов (сигнал в так называемой «серой зоне»); «нд» – недостоверный результат (в образце не детектируется (не превышает заданного порогового значения) ни специфический сигнал, ни сигнал ВКО). 2. Результат считается достоверным только в случае получения правильных результатов исследования отрицательного и положительного контролей амплификации и экстракции НК (см. табл. 3). Таблица 3 Оценка результатов анализа контрольных образцов Результат автоматической интерпретации Контроль Контролируемый этап ПЦРисследования К- ПЦР ВКО – ОК Экстракция НК ВКО + ВК+ ПЦР ВКО + FAM HEX Детекция Детекция гена-мишени ВКО (Н1/Н3) Для всех ПЦР-смесей-1-FEP/FRT ROX Детекция гена-мишени (N1/N2) «нд» «нд» «не обнаружено» «не обнаружено» «не обнаружено» «не обнаружено» Для соответствующей ПЦР-смеси-1-FEP/FRT K+ H1N1 ПЦР ВКО – K+ H3N2 ПЦР ВКО – «H1 обнаружено» «H3 обнаружено» «N1обнаружено» «N2 обнаружено» ИНТЕРПРЕТАЦИЯ РЕЗУЛЬТАТОВ ИССЛЕДОВАНИЯ ОБРАЗЦОВ В исследуемом образце идентифицирован вирус гриппа А субтип H1 (или А/H3), если уровень флуоресценции по каналу HEX выше порогового значения («H1 обнаружено» или «H3 -обнаружено»). В исследуемом образце идентифицирован вирус гриппа А/N1 (или А/N2), если уровень флуоресценции по каналу по каналу ROX выше порогового значения («N1 обнаружено» или «N2 -обнаружено»). Если в исследуемом образце уровень флуоресценции по обоим или одному из каналов (HEX и ROX) ниже порогового значения отрицательного результата («H1 – не обнаружено» и/или «N1 – не обнаружено»; «H3 – не обнаружено» и/или «N2 –не обнаружено»), а уровень сигнала по ВКО (канал FAM) выше порогового значения (ВКО+), следует считать, что в этом образце данный субтип А/H1N1 (или А/H3N2) эпидемического вируса гриппа не идентифицирован (не обнаружен). Вариант FEP Форма 1: REF V54-50-R0,5-FEP; Форма 2: REF V54-50-R0,2-FEP / VER 16.07.13 / стр. 6 из 15 Образцы, для которых получен результат «нд» (кроме «К-»), требуют повторного проведения анализа, начиная с этапа выделения НК из исследуемого материала. В случае повторения аналогичного результата рекомендовать повторный сбор материала для анализа. Для образца «K-» результат «нд» является нормой. Образцы, для которых получен результат «сомнительно», требуют повторного проведения анализа, начиная с этапа выделения НК из исследуемого материала. В случае повторения аналогичного результата образцы считать положительными. При получении отрицательного результата при повторной постановке образец считать сомнительным и рекомендовать повторный сбор материала для анализа. Если для положительного контроля ПЦР (К+) сигнал флуоресценции по соответствующему каналу ниже порогового значения положительного результата, необходимо повторить амплификацию для всех отрицательных клинических образцов. Если для отрицательного контроля экстракции РНК/ДНК (ОК) и/или отрицательного контроля ПЦР (К-) сигнал детекции возбудителя выше порогового значения положительного результата необходимо повторить исследование для всех образцов, в которых обнаружен данный ген-мишень, начиная с этапа экстракции, чтобы исключить следствие возможной контаминации, а также предпринять меры по выявлению источника контаминации. Вариант FEP Форма 1: REF V54-50-R0,5-FEP; Форма 2: REF V54-50-R0,2-FEP / VER 16.07.13 / стр. 7 из 15 ПОРЯДОК ПРОВЕДЕНИЯ ДЕТЕКЦИИ РЕЗУЛЬТАТОВ С ПОМОЩЬЮ ФЛУОРЕСЦЕНТНОГО ПЦР ДЕТЕКТОРА АLА-1/4 (BioSan, Латвия) С ВЕРСИЕЙ ПРОГРАММНОГО ОБЕСПЕЧЕНИЯ 5.1.0 И ВЫШЕ 1. Включить прибор и запустить программу ALA_1 на компьютере, присоединенном к прибору. 2. Создать новый протокол, нажав кнопку «Новый протокол» на панели задач. В Окне настройки протокола выбрать тип ротора, который будет использоваться. Из списка доступных тестов выбрать нужный тест, нажать стрелку Добавить тест. Если тест не был предустановлен в программе АLА-1, то для проведения детекции и учета результатов необходимо создать новый тест или импортировать его через архивный файл в список тестов, используемых на программе ALA_1. ВНИМАНИЕ! Импорт или создание новых тестов в программе ALA_1 возможно только для пользователей с правами администратора. Вариант 1. Импортировать новый тест. Импорт новых тестов в программе ALA_1 осуществляется через выбор основного меню Настройки → Импорт тестов. Далее выбрать архивный файл в формате *.zip и импортировать его в программу. Вариант 2. Создать новый тест. Выбрать в основном меню программы Настройки → Настройка тестов. В появившемся окне Окно настройки тестов добавить название нового теста кнопкой Добавить в таблице Список тестов. В поле Каналы для данной реакционной смеси и их обозначения задать каналы детекции. Для этого в таблице Список каналов выбрать канал детекции и нажать стрелку Добавить. Выбранный канал появится в таблице Каналы и обозначения, под таблицей в поле Обозначения задать обозначения по этому каналу, в поле пороги для + и – задать пороги (см. таблицу 1). Далее в таблице Список каналов выбрать канал FAM и обозначить с помощью галочки, что по этому каналу будет детектироваться ВК (внутренний контрольный образец), задать для ВК пороговое значение 2.5. Далее в поле Введите/измените тип теста выбрать тип теста Генотипирующий. Отметить контроли, подлежащие интерпретации по умолчанию: ОК – отрицательный контроль выделения НК (В-) (все отрицательные, ВК-любой); K- отрицательный контроль аплификации (все отрицательные). В поле «Таблица интерпретации результатов» нажать кнопку Создать. Вариант FEP Форма 1: REF V54-50-R0,5-FEP; Форма 2: REF V54-50-R0,2-FEP / VER 16.07.13 / стр. 8 из 15 Программой ALA_1 будет автоматически создана таблица возможных вариантов сочетаний результатов детекции для всех каналов и итоговый результат для каждого из этих вариантов. Продолжением этой таблицы являются возможные варианты сочетаний результатов контролей. Результаты детекции клинических образцов и контролей будут выдаваться после измерения в соответствии с этой таблицей. Сохранение теста и закрытие окна осуществляется кнопкой ОК. Создать протокол измерения. В основном окне программы нажать кнопку Новый протокол. В появившемся окне Окно настройки протокола выбрать тест из списка доступных тестов и нажать стрелку Добавить. Выбранный тест появится в списке Тесты протокола. В поле Количество образцов задать количество исследуемых образцов без фоновых пробирок и контрольных образцов, нажать кнопку Добавить. В поле Количество фоновых пробирок выбрать необходимое количество фона (рекомендуется постановка двух фоновых пробирок). В Таблице имён образцов, фоновых пробирок и контролей задать имена образцов и необходимое количество контролей. В поле Тип ротора выбрать ротор, который будет использоваться в данном протоколе. Сохранение протокола и закрытие окна осуществляется кнопкой ОК. Поставить пробирки в ячейки модуля прибора АLА-1/4 в соответствии с заданной последовательностью. Запустить измерение, нажав на кнопку Измерить в панели активных кнопок (вверху экрана). Учет результатов 1. Результат измерения выдаётся программой после завершения измерения протокола в окне Окно результатов. Полученные данные интерпретируются программой автоматически в соответствии с Таблицей интерпретации результатов. При необходимости просмотра исходных данных со значениями флуоресценции необходимо закрыть Окно Результатов, нажав Закрыть внизу окна. Повторно открыть окно результатов - нажать кнопку кнопку . 2. Для образцов, в которых обнаружен ген-мишень указывается «ОБНАРУЖЕНО». Для образцов, в которых не обнаружен ген-мишень указывается «НЕ ОБНАРУЖЕНО». При получении результата детекции, который нельзя однозначно интерпретировать (сигнал по каналу, отведенному для детекции специфической Вариант FEP Форма 1: REF V54-50-R0,5-FEP; Форма 2: REF V54-50-R0,2-FEP / VER 16.07.13 / стр. 9 из 15 НК, превышает пороговое значение, допустимое для отрицательных образцов, но не превышает пороговое значение для положительных образцов, сигнал в так называемой «серой зоне»), образец указывается как «СОМНИТЕЛЬНЫЙ». Для таких образцов требуется повторное проведение анализа, начиная с этапа выделения НК из исследуемого материала. В случае повторения аналогичного результата образцы считаются положительными. При получении отрицательного результата при повторной постановке образец считать сомнительным и рекомендовать повторный сбор материала для анализа. 3. Результаты исследования считаются достоверными только в случае получения правильных результатов исследования отрицательного и положительного контролей амплификации и экстракции НК. При автоматической интерпретации для контролей К-, ОК (В-), прибор выдает результат ОК - в случае корректного прохождения контролей. Для оценки результатов положительных контролей ВК+ и соответствующего К+ необходимо обратиться к таблице 4. Таблица 4 Оценка результатов анализа контрольных образцов Результат автоматической интерпретации Контроль Контролируемый этап ПЦРисследования К- ПЦР - (ОК) - (ОК) - (ОК) ОК Экстракция НК + (ОК) - (ОК) - (ОК) ВК+ ПЦР + - (не обнаружено) - (не обнаружено) FAM HEX Детекция Детекция Гена-мишени ВКО (Н1/Н3) Для всех ПЦР-смесей-1-FEP/FRT ROX Детекция Гена-мишени (N1/N2) Для соответствующей ПЦР-смеси-1-FEP/FRT K+ H1N1 ПЦР – K+ H3N2 ПЦР – «H1 обнаружено» «H3 обнаружено» «N1обнаружено» «N2 обнаружено» ИНТЕРПРЕТАЦИЯ РЕЗУЛЬТАТОВ ИССЛЕДОВАНИЯ ОБРАЗЦОВ В исследуемом образце идентифицирован вирус гриппа А субтип H1 (или А/H3), если уровень флуоресценции по каналу HEX выше порогового значения («H1 обнаружено» или «H3 -обнаружено»). В исследуемом образце идентифицирован вирус гриппа А/N1 (или А/N2), если уровень флуоресценции по каналу по каналу ROX выше порогового значения («N1 обнаружено» или «N2 -обнаружено»). Вариант FEP Форма 1: REF V54-50-R0,5-FEP; Форма 2: REF V54-50-R0,2-FEP / VER 16.07.13 / стр. 10 из 15 Если в исследуемом образце уровень флуоресценции по обоим или одному из каналов (HEX и ROX) ниже порогового значения отрицательного результата («H1 – не обнаружено» и/или «N1 – не обнаружено»; «H3 – не обнаружено» и/или «N2 –не обнаружено»), а уровень сигнала по ВКО (канал FAM) выше порогового значения (ВКО+), следует считать, что в этом образце данный субтип А/H1N1 (или А/H3N2) эпидемического вируса гриппа не идентифицирован (не обнаружен). Если в образце не детектируется (не превышает заданного порогового значения) ни специфический сигнал, ни сигнал ВКО, то такой образец указывается как «НЕВАЛИДНЫЙ» и требует повторного проведения анализа, начиная с этапа выделения НК из исследуемого материала. В случае повторения аналогичного результата рекомендовать повторный сбор материала для анализа. Образцы, для которых ВК положительный, а значения специфического сигнала лежат в диапазоне значений выше отрицательного порога, но не превышают положительного порога для данного канала, требуют повторного проведения ПЦР и детекции. В случае повторения аналогичного результата образцы считать положительными. При получении при повторной постановке отрицательного результата образец считать сомнительным и рекомендовать повторный сбор материала для анализа. Если для положительного контроля ПЦР (К+) сигнал флуоресценции по соответствующему каналу ниже порогового значения положительного результата, необходимо повторить амплификацию для всех отрицательных клинических образцов. Если для отрицательного контроля экстракции РНК/ДНК (ОК) и/или отрицательного контроля ПЦР (К-) сигнал детекции возбудителя выше порогового значения положительного результата необходимо повторить исследование для всех образцов, в которых обнаружен данный ген-мишень, начиная с этапа экстракции, чтобы исключить следствие возможной контаминации, а также предпринять меры по выявлению источника контаминации. Вариант FEP Форма 1: REF V54-50-R0,5-FEP; Форма 2: REF V54-50-R0,2-FEP / VER 16.07.13 / стр. 11 из 15 ПОРЯДОК ПРОВЕДЕНИЯ ДЕТЕКЦИИ РЕЗУЛЬТАТОВ С ПОМОЩЬЮ ФЛУОРЕСЦЕНТНОГО ПЦР ДЕТЕКТОРА «Джин» («ДНК-Технология», Россия) Настройка теста Для детекции и учета результатов используются следующие настройки тестов (таблица 1). Настройки теста можно просмотреть и изменить, выбрав опцию Список тестов в главном меню Настройки. После ввода указанных значений, следует нажать кнопку Сохранить. Проведение детекции 1. Включить прибор и запустить программу Gene на компьютере, присоединенном к прибору. 2. Задать протокол измерения. Ввести количество измеряемых образцов и количество фоновых пробирок (2), выбрать соответствующий тест в графе Тест, нажать кнопку OK (кнопкой мыши) и ввести последовательность детектируемых образцов (в колонке Образец). 3. В качестве образцов, обозначенных «ФОН» использовать пробирки с образцами «ФОН». 4. Поставить пробирки в ячейки модуля прибора «Джин» в соответствии с заданной последовательностью и запустить детекцию, нажав кнопку, обозначенную значком цветной призмы, в панели активных кнопок (вверху экрана). По окончании детекции первой группы, вынуть пробирки и заменить следующей группой пробирок и продолжить измерения, нажав кнопку OK. По окончании детекции вынуть пробирки и нажать кнопку OK. Обозначения ПЦР-детектора при автоматической интерпретации результатов «+» – положительный результат; «–» – отрицательный результат; «?» – результат, который нельзя однозначно интерпретировать (сигнал по каналу, отведенному для детекции специфической ДНК, превышает пороговое значение, допустимое для отрицательных образцов, но не превышает пороговое значение для положительных образцов (сигнал в так называемой «серой зоне»); «нд» – недостоверный результат (в образце не детектируется (не превышает заданного порогового значения) ни специфический сигнал, ни сигнал ВКО). Учет результатов 1. Результаты исследования считаются достоверными только в случае получения правильных контролей результатов амплификации исследования и отрицательного экстракции НК. Для и положительного оценки результатов Вариант FEP Форма 1: REF V54-50-R0,5-FEP; Форма 2: REF V54-50-R0,2-FEP / VER 16.07.13 / стр. 12 из 15 положительных контролей ВК+ и соответствующего К+ необходимо обратиться к таблице 5. Таблица 5 Оценка результатов анализа контрольных образцов Результат автоматической интерпретации Контроль Контролируемый этап ПЦРисследования К- ПЦР - «нд» «нд» ОК Экстракция НК + - - ВК+ ПЦР + - - Fam Hex Детекция Детекция Гена-мишени ВКО (Н1/Н3) Для всех ПЦР-смесей-1-FEP/FRT Rox Детекция Гена-мишени (N1/N2) Для соответствующей ПЦР-смеси-1-FEP/FRT ПЦР ПЦР K+ H1N1 K+ H3N2 – – + + + + ИНТЕРПРЕТАЦИЯ РЕЗУЛЬТАТОВ ИССЛЕДОВАНИЯ ОБРАЗЦОВ В исследуемом образце идентифицирован вирус гриппа А субтип H1 (или А/H3), если уровень флуоресценции по каналу Hex выше порогового значения («H1 +» или «H3 +»). В исследуемом образце идентифицирован вирус гриппа А/N1 (или А/N2), если уровень флуоресценции по каналу по каналу Rox выше порогового значения («N1 +» или «N2 +»). Если в исследуемом образце уровень флуоресценции по обоим или одному из каналов (Hex и Rox) ниже порогового значения отрицательного результата («H1 –» и/или «N1 –»; «H3 –» и/или «N2 –»), а уровень сигнала по ВКО (канал Fam) выше порогового значения (ВКО+), следует считать, что в этом образце данный субтип А/H1N1 (или А/H3N2) эпидемического вируса гриппа не идентифицирован (не обнаружен). Образцы, для которых получен отрицательный результат по всем каналам (кроме К-), требуют повторного проведения ПЦР и детекции. В случае если данный результат получен повторно, требуется повторить анализ образца, начиная с этапа выделения НК из исследуемого материала. При получении отрицательного результата при повторной постановке рекомендовать повторный сбор материала для анализа. Для образца K- отрицательный результат по всем каналам является нормой. Образцы, для которых ВК положительный, а значения специфического сигнала лежат в диапазоне значений выше отрицательного порога, но не превышают положительного порога для данного канала, требуют повторного проведения ПЦР и Вариант FEP Форма 1: REF V54-50-R0,5-FEP; Форма 2: REF V54-50-R0,2-FEP / VER 16.07.13 / стр. 13 из 15 детекции. В случае повторения аналогичного результата образцы считать положительными. При получении при повторной постановке отрицательного результата образец считать сомнительным и рекомендовать повторный сбор материала для анализа. Если для положительного контроля ПЦР (К+) сигнал флуоресценции по соответствующему каналу ниже порогового значения положительного результата, необходимо повторить амплификацию для всех отрицательных клинических образцов. Если для отрицательного контроля экстракции РНК/ДНК (ОК) и/или отрицательного контроля ПЦР (К-) сигнал детекции возбудителя выше порогового значения положительного результата необходимо повторить исследование для всех образцов, в которых обнаружен данный ген-мишень, начиная с этапа экстракции, чтобы исключить следствие возможной контаминации, а также предпринять меры по выявлению источника контаминации. Вариант FEP Форма 1: REF V54-50-R0,5-FEP; Форма 2: REF V54-50-R0,2-FEP / VER 16.07.13 / стр. 14 из 15 Лист вносимых изменений Редакция 10.11.10 12.11.10 11.01.12 VV 16.02.12 LA 14.08.12 IvI 16.07.13 РЕ Место внесения Суть вносимых изменений изменений Нижний колонтитул Добавлен каталожный номер R-V54(iQ,Dt). Удалены каталожные номера, соответствующие Нижний колонтитул варианту FRT Титульная Добавлены подпись и печать директора ФБУН ЦНИИ страница Эпидемиологии В.И. Покровского Нижний «Кат. №» и «дата изменения» заменены на колонтитул соответствующие символы Титульная Добавлены новые подпись и печать директора ФБУН страница ЦНИИ Эпидемиологии В.И. Покровского Добавлена таблица «Соответствие названий Назначение флуорофоров и каналов детекции» Исправлены названия каналов в соответствии с По тексту протоколом № 20 от 26.02.13 Вариант FEP Форма 1: REF V54-50-R0,5-FEP; Форма 2: REF V54-50-R0,2-FEP / VER 16.07.13 / стр. 15 из 15