Северо-Кавказский зональный научно

РОССИЙСКАЯ АКАДЕМИЯ СЕЛЬСКОХОЗЯЙСТВЕННЫХ НАУК
ОТДЕЛЕНИЕ ВЕТЕРИНАРНОЙ МЕДИЦИНЫ
ГОСУДАРСТВЕННОЕ НАУЧНОЕ УЧРЕЖДЕНИЕ
СЕВЕРО-КАВКАЗСКИЙ ЗОНАЛЬНЫЙ НАУЧНО-ИССЛЕДОВАТЕЛЬСКИЙ
ВЕТЕРИНАРНЫЙ ИНСТИТУТ
(ГНУ СКЗНИВИ РОССЕЛЬХОЗАКАДЕМИИ)
КАТАЛОГ
НАУЧНО-ПРАКТИЧЕСКИХ РЕКОМЕНДАЦИЙ
И ИННОВАЦИОННЫХ РАЗРАБОТОК УЧЕНЫХ
ГНУ СКЗНИВИ РОССЕЛЬХОЗАКАДЕМИИ
г.Новочеркасск – 2014 г.
УДК
ББК
К
Каталог инновационных разработок ученых
Россельхозакадемии. – г. Новочеркасск, 2014 г.- 16с.
ГНУ
СКЗНИВИ
В каталоге представлены инновационные разработки, предлагаемые
учеными ГНУ СКЗНИВИ РАСХН, для внедрения в отрасль ветеринарной
медицины и сельскохозяйственное производство в рамках реализации Плана
фундаментальных
и
приоритетных
прикладных
исследований
Россельхозакадемии по научному обеспечению развития АПК Российской
Федерации на 2011-2015 гг., составляющей основу Государственного задания
на оказание государственных услуг и выполнение работ и Программы
фундаментальных научных исследований государственных академий наук на
2008-2012 годы, а также по: Областной целевой программе «Оздоровление
крупного рогатого скота от лейкоза в Ростовской области на 2005-2013гг.»,
«Областной целевой программе по ликвидации и предотвращению
распространения африканской чумы свиней на территории Ростовской
области на 2011-2014гг.», Государственному контракту №126 от 18 июня
2012г. с Министерством сельского хозяйства и продовольствия Ростовской
области на выполнение научно-исследовательских работ по теме:
«Исследование эпизоотического процесса африканской чумы свиней на
территории Ростовской области».
Рассмотрено, одобрено и рекомендовано к изданию на заседании
Ученого совета института ГНУ СКЗНИВИ РАСХН (протокол № 1 от 20
февраля 2014 г.).
ISBN
© Коллектив авторов, 2014
©ГНУ Северо-Кавказский зональный
научно-исследовательский
ветеринарный институт, 2014
СОДЕРЖАНИЕ
ВЕТЕРИНАРИЯ
КЛИМЕНКО А.И., ВАСИЛЕНКО В.Н., СОЛДАТЕНКО Н.А., КОВАЛЕНКО А.В., КАРЕВА
Э.П. ЭПИЗООТИЧЕСКАЯ СИТУАЦИЯ И МЕРЫ БОРЬБЫ С АФРИКАНСКОЙ ЧУМОЙ
СВИНЕЙ В РОСТОВСКОЙ ОБЛАСТИ……………………………………………………
СОЛДАТЕНКО Н.А., КОВАЛЕНКО А.В., ДРОБИН Ю.Д., БОКУН Е.А.
ДИАГНОСТИКА, ТЕРАПИЯ И ПРОФИЛАКТИКА ДИЗЕНТЕРИИ СВИНЕЙ
……………………………..
УРБАН Г.А., БАЖОВ Г.М., КЛИМЕНКО А.И, ПОГОДАЕВ В.А.
МЕТОДИЧЕСКИЕ ПОЛОЖЕНИЯ ПО ИСПОЛЬЗОВАНИЮ ЕСТЕСТВЕННЫХ
МЕТАБОЛИТОВ ДЛЯ ПОВЫШЕНИЯ ПРОДУКТИВНОСТИ, РЕПРОДУКТИВНОЙ
ФУНКЦИИ И РЕЗИСТЕНТНОСТИ
СВИНЕЙ……………………………………………………………………………………….
БУТЕНКОВ А.И., КАРТАШОВ С.Н., КАРТАШОВА Е.В., КЛИМЕНКО Р.В., КЛЮЧНИКОВ
А.Г.
ОПРЕДЕЛЕНИЕ ФУНКЦИОНАЛЬНОГО СТАТУСА КРУПНОГО РОГАТОГО СКОТА ПРИ
АДЕНОВИРУСНОЙ ИНФЕКЦИИ И ВИРУСНОЙ ДИАРЕЕ ПУТЕМ ИЗУЧЕНИЯ
СПЕЦИФИЧЕСКИХ ИЗМЕНЕНИЙ ВАРИАБЕЛЬНОСТИ СЕРДЕЧНОГО
РИТМА…………………………………………….…………………………………………
МОРКОВНИК А.С., ЗУБЕНКО А.А., ДИВАЕВА Л.Н., ФЕТИСОВ Л.Н., БОДРЯКОВ А.Н.,
КУЗЬМЕНКО Т.А.
РЕГЛАМЕНТ ЛАБОРАТОРНЫЙ (ТЕХНОЛОГИЧЕСКИЙ) СИНТЕЗА И ОЧИСТКИ
АНТИБАКТЕРИАЛЬНЫХ ПРЕПАРАТОВ НА ОСНОВЕ 2-ИМИНОБЕНЗИМИДАЗОЛА
……………………………………………….
КАШИРИН В.В.
МЕТОД ЭКСПЕРИМЕНТАЛЬНОГО ЗАРАЖЕНИЯ ПТИЦ ПАСТЕРЕЛЛЕЗОМ
……………………………………………………………………
АКСЕНОВА П.В., БАГИРОВ В.А., АЙБАЗОВ А.-М.М., КЛИМЕНКО А.И., ЕРМАКОВ А.М.
ТЕХНОЛОГИЧЕСКИЙ РЕГЛАМЕНТ ПО КРИОКОНСЕРВАЦИИ СПЕРМЫ КОЗЛОВ В
ПАЙЕТАХ……………………………………………………………………….
АКСЕНОВА П.В., БАГИРОВ В.А., АЙБАЗОВ А.-М.М., КЛИМЕНКО А.И., ЕРМАКОВ А.М.
ИНСТРУКЦИЯ ПО ОРГАНИЗАЦИИ И ПРОВЕДЕНИЮ ИСКУССТВЕННОГО
ОСЕМЕНЕНИЯ КОЗ
…………………………….
ИВАНОВА Л.В., ЛАПИНА Т.И.
СРАВНИТЕЛЬНАЯ МОРФОФУНКЦИОНАЛЬНАЯ ОЦЕНКА ОРГАНОВ ПОЛОВОГО
АППАРАТА САМОК НОРОК ПРИ ПРИМЕНЕНИИ СЕЛЕНОСОДЕРЖАЩИХ
ПРЕПАРАТОВ………………
КЛЮЧНИКОВ А.Г., КАРТАШОВ С.Н., МИРОНОВА А.А., МИРОНОВА Л.П., РЕКУТИН Д.А.
ОБНАРУЖЕНИЕ ДНК DICROCOELIUM DENDRITICUM С ИСПОЛЬЗОВАНИЕМ
ПОЛИМЕРАЗНОЙ ЦЕПНОЙ РЕАКЦИИ
4-5
5-6
7-8
8-9
9-10
10-11
11-13
13-14
14-15
15-16
ВЕТЕРИНАРИЯ
ЭПИЗООТИЧЕСКАЯ СИТУАЦИЯ И МЕРЫ БОРЬБЫ С
АФРИКАНСКОЙ ЧУМОЙ СВИНЕЙ В РОСТОВСКОЙ ОБЛАСТИ
Разработчики: Клименко А.И., Василенко В.Н., Солдатенко Н.А.,
Коваленко А.В., Карева Э.П.
Цели и задачи разработки: методические положения содержат
сведения о возбудителе – вирусе африканской чумы свиней, характеристике
заболевания, особенностях клинического проявления, патогенетических
аспектах проблемы, а также освещены вопросы диагностики,
дифференциальной диагностики и организации мер борьбы. Положения
рассчитаны на широкий круг ветеринарных, зоотехнических специалистов,
руководителей АПК, владельцев КФХ и ЛПХ.
Краткое описание разработки (назначение и преимущество в
сравнении с аналогами): африканская чума свиней (АЧС) –
высококонтагиозная
болезнь,
характеризующаяся
лихорадкой,
геморрагическим диатезом, воспалительными, дистрофическими и
некротическими изменениями в различных органах и высокой летальностью.
Поражает только домашних и диких свиней, вызывается вирусом, который,
независимо от способа распространения поражает 100% животных всех
возрастов. Относится к группе особо опасных инфекций. Африканская чума
свиней стала известна только в XX веке и как самостоятельная
нозологическая единица введена Р.Монтгомери в 1921г., хотя первые
описания болезни с симптомами АЧС в некоторых странах Южной Африки
появились в 1903-1905гг. Вирус АЧС отличается большой устойчивостью,
обладает повышенной устойчивостью к щелочам и формалину, но
чувствителен к кислотам и окислителям. Диагноз на АЧС ставят комплексно
на основании анализа эпизоотологических данных, результатов клинических,
патологоанатомических и лабораторных исследований. Лабораторную
диагностику АЧС проводят специализированные ветеринарные лаборатории
по особо опасным инфекционным болезням животных или научноисследовательские учреждения, имеющие аккредитацию на работу с
возбудителями особо опасных инфекций (ГНУ «ВНИИВВиМ», г.Покров;
ФНУ «ВНИИЗЖ», г.Владимир). Прогресс в области диагностики, связан с
развитием высоко чувствительных методов, позволяющих надежно
диагностировать острую, хроническую и инапарантную форму болезни в
течение нескольких часов. Существует множество методов обнаружения
вируса и специфических антител. Наиболее часто используемыми в
настоящее время методами диагностики АЧС являются: ПЦР (стандартная и
в режиме реального времени) для обнаружения вируса; ИФА и
иммуноблотинг для исследования сывороток. Вирус при помощи ПЦР
удается обнаруживать в крови больных животных, начиная со 2 дня после
заражения и в течение нескольких недель. Данный метод основан на
применении праймеров комплементарных консервативному участку генома
АЧС и позволяет обнаруживать широкий диапазон известных изолятов
вируса АЧС, включая как гемадсорбирующие, так и не гемадсорбирующие
штаммы. При помощи ПЦР результаты могут быть получены в течение 5-6
часов. Метод ИФА используется для проведения широкомасшабного
эпизоотического мониторинга и исследований при программах контроля
болезни. Метод обладает высокой чувствительностью и специфичностью,
простотой и быстротой выполнения и экономичностью, хорошей
воспроизводимостью
результатов
и
легкостью
интерпретации.
Иммуноблотинг – является иммуноферментным методом, основанном на
применении нитроцеллюлозных фильтров, несущих предварительно
сорбированные на них вирусных белки. Метод позволяет определить
реактивность антител против различных белков индуцируемых вирусом АЧС
в сыворотках свиней. Таким образом, наряду с высокой чувствительностью и
объективностью получаемых результатов, иммуноблотинг является
идеальным методом для подтверждения африканской чумы свиней. Этот
метод высокочувствительный, легко выполним, и не требует использования
специального оборудования. Время постановки реакции занимает около 3
часов. Другим преимуществом данного метода является возможность
хранения стрипов, содержащих антиген, при комнатной температуре, без
потери активности в течение более чем одного года, что означает безопасную
возможность транспортировки реагентов. Предварительный диагноз на АЧС
может быть поставлен на основании анализа клинико-эпизоотологических
данных и патологоанатомических исследований. При дифференциальном
диагнозе исключают классическую чуму свиней, пастереллез, сальмонеллез,
рожу, болезнь Ауески. Наиболее сложно отличить первые две болезни, т.к.
клиническое проявление у них очень сходное.
Разработчики и их контактные данные: научные сотрудники ГНУ
СКЗНИВИ Россельхозакадемии, телефон/факс – 8-(8635)-26-62-70.
ДИАГНОСТИКА, ТЕРАПИЯ И ПРОФИЛАКТИКА ДИЗЕНТЕРИИ
СВИНЕЙ
Разработчики: Солдатенко Н.А., Коваленко А.В., Дробин Ю.Д., Бокун
Е.А.
Цели и задачи разработки: методические положения содержат
сведения о возбудителе инфекции, характеристике заболевания,
особенностях клинического проявления, патогенетических аспектах
проблемы, а также освещены вопросы диагностики, дифференциальной
диагностики и организации мер борьбы. Положения рассчитаны на широкий
круг ветеринарных, зоотехнических специалистов, руководителей АПК,
владельцев КФХ и ЛПХ.
Краткое описание разработки (назначение и преимущество в
сравнении с аналогами): дизентерия свиней (Dysenteria suum) – это
инфекционное контагиозное заболевание, характеризуется катарально-
геморрагическим и некротическим колитом, изнурительной слизистокровавой диареей, исхуданием и гибелью животных. Заболевание
сопровождается поражением толстого отдела кишечника, рецидивирующим
расстройством пищеварения с наличием слизи и крови в фекалиях при
диареях, резким исхуданием и гибелью животных. Возбудителем этого
заболевания признана большая анаэробная спирохета Brahyspira
hyodysenteriae, грамотрицательная, обладающая сильной патогенностью для
свиней. Длина клеток составляет – 6-8,5мкм, ширина – 0,32-0,38мкм. Они
имеют извилистую форму, подвижные. Под электронным микроскопом у
микроорганизма обнаруживают внешнюю оболочку, протоплазму, осевые
фибриллы. Дизентерия занимает значительное место среди инфекционных
желудочно-кишечных болезней свиней. Она распространена во всех странах,
занимающихся свиноводством. В России и странах СНГ дизентерия свиней
регистрируется во всех регионах. Заболевание наносит значительный
экономический ущерб отрасли. Диагноз на заболевание дизентерией
устанавливают комплексно по эпизоотологическим, клиническим,
патологическим данным и результатам лабораторных исследований.
Дизентерию свиней необходимо дифференцировать от заболеваний, которые
сопровождаются сходными симптомами (диарея с примесью крови и слизи в
фекалиях), классическая чума свиней, сальмонеллез, анаэробная
энтеротоксимия, стрептококковая инфекция, кокцидиоз и трихоцефалез.
Эпизоотический процесс при дизентерии свиней включает восприимчивых
животных – свиней, крыс и мышей, животных клинически больных и
брахиспироносителей, факторы передачи. Лечение и профилактика
дизентерии свиней в хозяйствах основывается на применении препаратов,
которые включены в общую систему профилактики желудочно-кишечных
заболеваний и проводится в сочетании с дезинфекцией и дератизацией
помещений. В хозяйствах, независимо от технологии ведения свиноводства,
дератизацию необходимо проводить постоянно, а дезинфекцию - в течение
периода проведения лечебно-профилактических обработок и при
перегруппировках животных. Результаты научных исследований позволили
разработать новую систему противодизентерийных мероприятий для
свиноводческих предприятий, направленная на разрыв эпизоотической цепи,
ликвидацию заболевания, лечебно-профилактические обработки животных и
ветеринарно-санитарные мероприятия в соответствии с технологическим
циклом производства.
Разработчики и их контактные данные: научные сотрудники ГНУ
СКЗНИВИ Россельхозакадемии, телефон/факс – 8-(8635)-26-62-70.
МЕТОДИЧЕСКИЕ ПОЛОЖЕНИЯ ПО ИСПОЛЬЗОВАНИЮ
ЕСТЕСТВЕННЫХ МЕТАБОЛИТОВ ДЛЯ ПОВЫШЕНИЯ
ПРОДУКТИВНОСТИ, РЕПРОДУКТИВНОЙ ФУНКЦИИ И
РЕЗИСТЕНТНОСТИ СВИНЕЙ
Разработчики: Урбан Г.А., Бажов Г.М., Клименко А.И., Погодаев
В.А.
Цели и задачи разработки: методические положения содержат
сведения о формировании репродуктивной функции у ремонтных свинок при
использовании естественных метаболитов, об эффективности применения
естественных метаболитов супоросным и подсосным свиноматкам, показана
экономическая эффективность от применения естественных метаболитов в
свиноводстве. Положения предназначены для ветеринарных специалистов,
зооинженеров,
руководителей
сельскохозяйственных
предприятий,
сотрудников научно-исследовательских институтов и студентов высших
учебных заведений, обучающихся по специальностям «Ветеринария» и
«Зоотехния».
Краткое описание разработки (назначение и преимущество в
сравнении с аналогами): в промышленном свиноводстве одним из
важнейших вопросов в осуществлении поставленных задач по увеличению
производства продукции свиноводства является рациональная организация
воспроизводства свиней. Важным биологическим свойством свиней является
их высокая воспроизводительная способность. Рассматривая проблему
воспроизводства в свиноводстве, необходимо разделить ее на две части и
каждую рассматривать и решить самостоятельно – с учетом возрастных,
морфофизиологических, биохимических и прочих особенностей животных. В
связи с этим, серьезного внимания заслуживает изучение важнейших
физиологических, иммунологических, биохимических процессов, связанных
с репродуктивной функцией свиноматок во время супоросности и лактации.
В исследованиях, выполненных в этом направлении, воспроизводительная
функция рассматривается как сложный нейрогуморальный процесс,
сопровождающихся функциональными сдвигами в половой сфере и во всем
организме животного в целом. Весьма важной для современных хозяйств
промышленного типа остается также проблема выращивания ремонтных
свинок, поскольку от их качества зависят темпы производственного развития
отрасли в целом. В связи с этим, изучение различных способов выращивания
ремонтного
молодняка
и
разработка
приемов
повышения
воспроизводительных качеств свиноматок-первоопоросок представляет
большой научный и практический интерес. В данных методических
положениях излагаются результаты исследований по изучению влияния
активных естественных метаболитов (селен, янтарная кислота, бета-каротин,
токофеол) при использовании их порознь и в комплексе на продуктивность,
репродуктивную и защитную функцию, на интенсивность обменных
процессов и иммунно-гормональный статус организма ремонтных свинок,
супоросных, подсосных свиноматок и их потомства. Прибыль, получаемая от
использования естественных метаболитов в качестве подкормки супоросным
и подсосным свиноматкам, во много раз превышает затраты на приобретение
препаратов. Учитывая экономическую эффективность, повышение
продуктивности свиней и качество получаемой продукции, изучаемые
добавки могут быть рекомендованы в испытанных комбинациях для
широкого применения.
Разработчики и их контактные данные: научные сотрудники ГНУ
СКЗНИВИ Россельхозакадемии, телефон/факс – 8-(8635)-26-62-70;
«Карачаево-Черкесская
государственная
технологическая
академия»
г.Черкесск, телефон – 8-(87822)-7-54-34, факс – 8(87822)-7-46-48.
ОПРЕДЕЛЕНИЕ ФУНКЦИОНАЛЬНОГО СТАТУСА КРУПНОГО
РОГАТОГО СКОТА ПРИ АДЕНОВИРУСНОЙ ИНФЕКЦИИ И
ВИРУСНОЙ ДИАРЕЕ ПУТЕМ ИЗУЧЕНИЯ СПЕЦИФИЧЕСКИХ
ИЗМЕНЕНИЙ ВАРИАБЕЛЬНОСТИ СЕРДЕЧНОГО РИТМА
Разработчики: Бутенков А.И., Карташов С.Н., Карташова Е.В.,
Клименко Р.В., Ключников А.Г.
Цели и задачи разработки: в данной методике дана характеристика
определения адаптационных возможностей организма крупного рогатого
скота при аденовирусной инфекции и вирусной диареи различной степени
тяжести по изменению функционального состояния вегетативной нервной
системы. Методика предназначена для научных работников, практикующих
ветеринарных врачей, студентов вузов ветеринарного и зооветеринарного
профиля.
Краткое описание разработки (назначение и преимущество в
сравнении с аналогами): метод анализа вариабельности сердечного ритма
(ВСР) применяется для оценки состояния механизмов регуляции
физиологических функций в организме человека и животных. Данный метод
позволяет оценить общую активность регуляторных механизмов,
нейрогуморальной регуляции сердца, соотношения между симпатическим и
парасимпатическим отделами вегетативной нервной системы. При этом
активность как симпатического, так и парасимпатического отделов в любой
момент времени является результатом многоконтурной и многоуровневой
реакции системы регуляции кровообращения. Параметры последней
лабильны во времени, что необходимо для достижения оптимального для
организма приспособительного ответа. Параметры системы регуляции
кровообращения интегральны по функции и усреднены по времени, что
отражает адаптационную реакцию целостного организма. Адаптационные
реакции индивидуальны и реализуются у разных животных с различной
степенью участия функциональных систем, которые обладают в свою
очередь обратной связью изменяющейся во времени и имеющей переменную
функциональную организацию. Метод анализа вариабельности сердечного
ритма считается неспецифичным по отношению к нозологическим формам
патологии. Однако высокая чувствительность метода анализа ВСР к самым
разнообразным внутренним и внешним воздействиям позволяет его
использовать для скринингового выявления больных животных. Метод
основан на распознавании и измерении временных интервалов между RRинтервалами электрокардиограммы, построении динамических рядов
кардиоинтервалов и последующего анализа полученных числовых рядов
различными математическими методами. При этом наряду с использованием
простого метода съема информации реализуется возможность извлечения из
получаемых данных обширной и разнообразной информации о
нейрогуморальной регуляции физиологических функций и адаптационных
реакциях целостного организма, в том числе и об адаптационных резервах
как отдельно взятых животных, так и группы.
Разработчики и их контактные данные: научные сотрудники ГНУ
СКЗНИВИ Россельхозакадемии, телефон/факс – 8-(8635)-26-62-70.
РЕГЛАМЕНТ ЛАБОРАТОРНЫЙ (ТЕХНОЛОГИЧЕСКИЙ) СИНТЕЗА
И ОЧИСТКИ АНТИБАКТЕРИАЛЬНЫХ ПРЕПАРАТОВ НА ОСНОВЕ
2-ИМИНОБЕНЗИМИДАЗОЛА
Разработчики: Морковник А.С., Зубенко А.А., Диваева Л.Н., Фетисов
Л.Н., Бодряков А.Н., Кузьменко Т.А.
Цели и задачи разработки: Регламент предназначен для
специалистов научных учреждений, предприятий химико-фармацевтической
промышленности и лабораторий по химическому синтезу. Разработка нового
лекарственного средства представляет сложный, многостадийный процесс:
определение потребности в препарате, замысел и конструирование лекарства,
синтез химических соединений, фармакологический скрининг и
доклиническое изучение (лабораторные испытания), клиническая проверка,
разработка технологии промышленного производства. Целью и задачами
исследований явилось - разработка, синтез и испытание препаратов,
позволяющих решать проблемы лекарственной устойчивости.
Краткое описание разработки (назначение и преимущество в
сравнении
с
аналогами):
основой
избирательности
действия
противомикробных
препаратов
являются
следующие
факторы:
преимущественного накопление веществ в очаге поражения – существенные
принципиальные различия биохимических процессов в различных живых
клетках, цитологические различия. Особенности процесса поиска
потенциальных противомикробных средств позволяют сделать вывод о его
динамичности и сложности, обусловленных множеством разнородных
параметров и противоречивых критериев. Поиск предполагает наличие цели
и нескольких вариантов ее достижения, из которых следует избрать наиболее
результативный и информативный. Цель в данном случае заключается в
выявлении веществ с априорно заданными свойствами, а итогом поиска
являются индивидуальные химические соединения или их комплекс. В
процессе скрининга веществ с нужным биологическим воздействием принято
выделять две стадии: молекулярный дизайн потенциально активных веществ
и изучение биологической активности синтезированных. Конечным итогом
может быть достаточно полная информация об искомом средстве, например,
структурная формула соединения или фармакофора, предполагаемые
физико-химические свойства соединения или его активность. Оптимальным
можно считать результат, когда путем минимальных затрат на получение
экспериментальных данных и моделированием реальных явлений удается
обеспечить эффективный и надежный поиск требуемых веществ в пределах
известных химических групп. Успехи в профилактике и лечении
большинства заболеваний находятся в тесной зависимости от достижений в
области разработки новых высокоэффективных лекарственных средств.
Разработка последних и рациональное их использование в значительной
степени связаны с уровнем развития фармацевтической науки и
практической фармации. В связи с этим представляют интерес основные
направления поиска новых антибактериальных средств и их лекарственных
форм.
Разработчики и их контактные данные: научные сотрудники ГНУ
СКЗНИВИ Россельхозакадемии, телефон/факс – 8-(8635)-26-62-70;
ФГБОУ ВПО «ЮФУ» г.Ростов-на-Дону, телефон 8-863-305-19-90,
факс 8-863-263-87-23.
МЕТОД ЭКСПЕРИМЕНТАЛЬНОГО ЗАРАЖЕНИЯ ПТИЦ
ПАСТЕРЕЛЛЕЗОМ
Разработчики: Каширин В.В.
Цели и задачи разработки: Метод предназначен для специалистов
научных учреждений, предприятий биологической промышленности и
диагностических лабораторий. Метод экспериментального заражения птиц
пастереллезом (биологический метод или биологическая проба) в основном
применяют для прямого измерения вирулентности возбудителя болезни
(штаммов бактерий Pasteurella multocida) по общепринятым показателям:
абсолютной, минимальной и 50-процентной летальным дозам (ЛД100, МЛД
и ЛД50). Метод применим для восстановления (стандартизации) штаммов
пастерелл при длительном поддержании в коллекции. Он – один из основных
в постановке диагноза на заболевание, в контроле качества вакцины (на
иммуногенность) и вакцинации (на напряженность специфического
иммунитета). Учитывая вышеизложенные проблемные вопросы, были
изучены морфогенез (формообразование) и вирулентность пастерелл в
организме птицы и трупе в зависимости от пути заражения. Впервые
установлено, пастереллы – функционально морфо- и термолабильные
бактерии, инфекционная природа которых в варианте капсульной и
бескапсульной микробной клетки зависит от пути заражения
восприимчивого организма, температуры и жидкой фазы окружающей среды.
На
основе
установленных
закономерностей
разработан
метод
экспериментального заражения птиц пастереллезом с позиции эволюционно
сложившихся условий восстановления микроба и пути проникновения его в
восприимчивый организм - интраназально на слизистую оболочку носовой и
ротоглоточной полостей в зависимости от температуры окружающей среды.
Краткое описание разработки (назначение и преимущество в
сравнении с аналогами): метод экспериментального заражения птиц
пастереллезом включает в себя: клонирование микроорганизма,
последовательное восстановление микроорганизма в двух пассажах через
особо восприимчивый организм голубя при установленном стандарте
условий, биологическую изоляцию восстановленного микроорганизма и
временное сохранение его в собственной капсуле в анабиозе, без доступа
атмосферного воздуха и питательного субстрата, при постоянной
оптимальной температуре окружающей среды, получение для заражения
птицы бульонной культуры пастерелл, стандартизированной по морфологии,
вирулентности и численности микробной клетки, заражение птицы на
слизистую оболочку носовой и ротоглоточной полостей при определенной
температуре окружающей среды. Экспериментальное заражение птиц
пастереллезом близко к природному заражению. Метод в основном
применяют для выделения возбудителя болезни от павшей птицы и
определения его вирулентности с диагностической целью, для
восстановления (стандартизации) штамма пастерелл при длительном
поддержании в коллекции, для контроля качества вакцины (на
иммуногенность) и вакцинации (на напряженность специфического
иммунитета у птиц).
Разработчики и их контактные данные: научный сотрудник ГНУ
СКЗНИВИ Россельхозакадемии, телефон/факс – 8-(8635)-26-62-70.
ТЕХНОЛОГИЧЕСКИЙ РЕГЛАМЕНТ ПО КРИОКОНСЕРВАЦИИ
СПЕРМЫ КОЗЛОВ В ПАЙЕТАХ
Разработчики: Аксенова П.В., Багиров В.А., Айбазов А.-М.М.,
Клименко А.И., Ермаков А.М.
Цели и задачи разработки: технологический регламент предназначен
для специалистов племпредприятий, станций по искусственному осеменению
сельскохозяйственных животных и козоводческих хозяйств различных форм
собственности. Искусственное осеменение сельскохозяйственных животных
является важнейшим инструментом реализации селекционных программ. В
условиях новых экономических отношений и открытых международных
связей метод искусственного осеменения, как важнейший инструмент
массового улучшения продуктивности, приобрел неоценимое значение.
Метод неразрывно связан с технологией криоконсервации спермы. Спермии
млекопитающих сохраняют генетическую информацию и биологическую
полноценность после хранения в глубокозамороженном (-196˚С) состоянии,
благодаря чему стало возможно накапливать большие запасы генетического
материала, длительно хранить и перевозить его на любые расстояния. Более
целесообразно и с экономической, и с ветеринарной точек зрения, не
закупать генетически ценных животных, т.к. при этом возникает ряд
трудностей (сложность транспортировки, необходимость содержать
завезенных животных в карантине и их слабая адаптируемость), а
обмениваться генетическим материалом. Эффективность селекционноплеменной работы в первую очередь зависит от интенсивности
использования наиболее ценных производителей, стойко передающих свои
продуктивные качества потомству, значение метода искусственного
осеменения криоконсервированной спермой будет непрерывно возрастать.
Краткое описание разработки (назначение и преимущество в
сравнении с аналогами): каждый полученный эякулят предварительно
оценивают визуально, устанавливая, нет ли в сперме примесей гноя, крови,
мочи или хлопьев (наличие последних указывает на воспалительный процесс
в придаточных половых железах). Сперма с такими примесями к
использованию не допускается. Способы оценки качества спермы применяют
при оценке воспроизводительной способности козлов во время предслучной
подготовки однократно и при покупке производителей, а также в случае
заметных изменений качества спермы в период их эксплуатации. При
ежедневном исследовании каждого эякулята во время осеменения или
заготовки спермы ограничиваются визуальной оценкой, определением
объема эякулята, глазомерной оценкой концентрации и определением
процента подвижных спермиев. Для длительного хранения спермы
производителей применяют метод глубокого замораживания в жидком азоте
(до температуры - 196˚С). К преимуществам замораживания спермы в
пайетах относят возможность подбора оптимального автоматического
режима замораживания, обеспечивающего максимальное сохранение
спермиев, маркировка каждой дозы спермы и более высокая
результативность осеменения при экономном расходовании ценнейшего
генетического материала. Длительное хранение замороженной спермы
производителей в жидком азоте осуществляется в специальных хранилищах
или в стационарных емкостях. Для перевозки спермы и хранения ее на
пунктах искусственного осеменения в жидком азоте применяют сосуды
Дьюара. Для разбавления и замораживания используют свежую сперму с
подвижностью не ниже 8 баллов и концентрацией не менее 2,5млрд/см3.
Пайеты представляют собой полые пластиковые трубочки, изготовленные из
спермодобротного материала, с хлопковой пробкой на одном конце. Для
криоконсервации спермы в пайетах необходим комплект оборудования:
аппарат для маркировки пайет, автоматическая или полуавтоматическая
фасовочная система, для расфасовки рассчитанных доз спермы в соломинки
и укупорки их специальными пробками-шариками, либо запаивания
ультразвуком, плавучая морозильная рама или управляемая компьютером,
программированная
линия
заморозки.
Допускается
применение
замороженной – оттаянной спермы с подвижностью не ниже 4 баллов, с
содержанием в дозе 80-100 млн.спермиев с прямолинейным поступательным
движением. Оттаивание и повторное замораживание, а также колебания
температуры во время хранения замороженной спермы не допускаются.
Разработчики и их контактные данные: научные сотрудники ГНУ
СКЗНИВИ Россельхозакадемии, телефон/факс – 8-(8635)-26-62-70; научные
сотрудники ГНУ ВИЖ Россельхозакадемии г.Москва, телефон/факс – 8(4967)-65-11-63.
ИНСТРУКЦИЯ ПО ОРГАНИЗАЦИИ И ПРОВЕДЕНИЮ
ИСКУССТВЕННОГО ОСЕМЕНЕНИЯ КОЗ
Разработчики: Аксенова П.В., Багиров В.А., Айбазов А.-М.М.,
Клименко А.И., Ермаков А.М.
Цели и задачи разработки: инструкция предназначена для
специалистов
племпредприятий,
организаций
по
искусственному
осеменению и козоводческих хозяйств Российской Федерации различных
форм собственности. Настоящая инструкция содержит основные положения,
которые должны соблюдаться при организации и проведении искусственного
осеменения овец и коз в племенных и товарных животноводческих
хозяйствах. На основе накопленных экспериментальных материалов и
научных разработок, а также передового практического опыта разработана
технология искусственного осеменения, включающая рекомендации по
предслучной подготовке и технике осеменения коз, рекомендации по
содержанию и разработке козлов-производителей и технике получения
спермы, оригинальные криопротекторные среды для разбавления и
замораживания спермы, современные и классические методики
криоконсервации, оригинальные среды для разбавления спермы, список
необходимых приборов, материалов и реактивов соответствующей
квалификации, а также ветеринарно-санитарные правила и нормативные
документы по содержанию и транспортировке козлов-производителей и
генетического материала. В настоящем издании изложены основные
требования и методики по технологии искусственного осеменения коз с
учетом последних достижений отечественной и зарубежной науки и
передовой практики.
Краткое описание разработки (назначение и преимущество в
сравнении с аналогами): осеменение коз должно проводиться в типовых
пунктах искусственного осеменения или переоборудованных под пункты
помещениях, отвечающих необходимым зоотехническим и ветеринарносанитарным требованиям. Пункты искусственного осеменения могут быть
стационарными или передвижными. С пунктом искусственного осеменения
могут быть сблокированы помещения для производителей, а также бытовые
помещения для обслуживающего персонала фермы. Кроме того, необходимо
оборудовать загоны для неосемененных и осемененных коз, а также загон
для проведения выборки. Пункты искусственного осеменения оборудуются
отоплением, вентиляцией, холодным и горячим водоснабжением,
канализацией. В манеже устраивается трап для удаления мочи в местную
канализационную сеть. Располагаются пункты искусственного осеменения на
территории фермы на сухом незатопляемом месте с уклоном,
обеспечивающим надежный отвод поверхностных вод, по рельефу местности
выше животноводческих построек и канализационных сооружений.
Передвижные малогабаритные пункты искусственного осеменения состоят
из небольшого навеса на колесах со станком и помещением для осеменатора.
На пункте должен быть весь необходимый комплект оборудования,
инструментов и материалов. В данной инструкции дано полное содержание
по основным вопросам, касающимся кормления, содержания, предслучной
подготовки и режима использования производителей, получение, оценка и
сохранение спермы, организация искусственного осеменения, а также
ветеринарно-санитарные правила.
Разработчики и их контактные данные: научные сотрудники ГНУ
СКЗНИВИ Россельхозакадемии, телефон/факс – 8-(8635)-26-62-70; научные
сотрудники ГНУ ВИЖ Россельхозакадемии г.Москва, телефон/факс – 8(4967)-65-11-63.
СРАВНИТЕЛЬНАЯ МОРФОФУНКЦИОНАЛЬНАЯ ОЦЕНКА
ОРГАНОВ ПОЛОВОГО АППАРАТА САМОК НОРОК ПРИ
ПРИМЕНЕНИИ СЕЛЕНОСОДЕРЖАЩИХ ПРЕПАРАТОВ
Разработчики: Иванова Л.В., Лапина Т.И.
Цели и задачи разработки: в данной монографии изучены вопросы
репродуктивной функции самок норок и качественных показателей их
потомства, представлены гематологические показатели крови самок норок с
недостатком селена и после применения препаратов Е-селен и Селенолин,
биохимические показатели сыворотки крови норок с недостатком селена и
после применения селенсодержащих препаратов.
Краткое описание разработки (назначение и преимущество в
сравнении с аналогами): биологическая значимость селена и его влияние на
организм давно является предметом пристального внимания. Селен играет
важную роль в минеральном питании животных. В практике для повышения
продуктивности и профилактики целого ряда заболеваний применяют
неорганические и органические соединения селена. В настоящее время
селеноорганические препараты считаются наиболее приемлемыми
неорганических соединений селена. Органические соединения селена
обладают малой токсичностью, высокой биологической доступностью и
способностью к пролонгации в организме. При недостаточности селена в
организме самок норок изменяются гематологические показатели и
биохимические параметры сыворотки крови. В яичниках наблюдается
атрезия
антральных
фолликулов,
прорастание
их
полости
соединительнотканными клетками, фолликулярные клетки подвергаются
дегенеративным изменениям, происходит гибель ооцита. Не обнаружены
зрелые фолликулы и желтые тела. Имеют место дегенеративные изменения в
стенке яйцевода, рогов и тела матки. После применения селенсодержащих
препаратов у норок выявлена нормализация гематологических и
биохимических показателей: повышение уровня общего белка и его фракций,
кальция, фосфора и витамина Е. В яичниках происходит увеличение
количества примордиальных фолликулов и повышение их функциональной
активности. Клетки покровного эпителия яйцевода, рогов и тела матки,
эпителиоциты маточных желез находятся в состоянии высокой
функциональной активности - усиливается синтез белка, увеличивается
количество ДНК в клетках, и как следствие, ядерно-протоплазменное
отношение.
Наилучшие
показатели
получены
при
применении
селеноорганического препарата Селенолина.
Разработчики и их контактные данные: научные сотрудники ГНУ
СКЗНИВИ Россельхозакадемии, телефон/факс – 8-(8635)-26-62-70.
ОБНАРУЖЕНИЕ ДНК DICROCOELIUM DENDRITICUM С
ИСПОЛЬЗОВАНИЕМ ПОЛИМЕРАЗНОЙ ЦЕПНОЙ РЕАКЦИИ
Разработчики: Ключников А.Г., Карташов С.Н., Миронова А.А.,
Миронова Л.П., Рекутин Д.А.
Цели и задачи разработки: в настоящих рекомендациях впервые в
отечественной ветеринарной практике показана эффективность применения
ПЦР в диагностике дикроцелиоза жвачных животных. Рекомендации
рассчитаны на научных работников, практикующих ветеринарных врачей,
студентов вузов ветеринарного и зооветеринарного профиля. Предложен
комплексный метод прижизненной диагностики, позволяющий обнаружить
ДНК возбудителя дикроцелиоза в предварительно обогащенной методом
последовательных промываний образце фекалий с использованием
молекулярно-биологических технологий. Такой вариант диагностики не
только повышает эффективность, но и обладает очень высокой видовой
чувствительностью, что исключает ложноотрицательные результаты.
Краткое описание разработки (назначение и преимущество в
сравнении с аналогами): дикроцелиоз – хроническое гельминтозное
заболеваний животных, характеризующееся поражением желчного пузыря и
протоков печени. Возбудителем являются небольшие, до 14 мм длиной
сосальщики, паразитирующие в желчных протоках печени многих видов
млекопитающих и, в том числе, человека. Промежуточным хозяином
является наземный моллюск (Bradybaena, Helicella), в котором развиваются
мирацидий, два поколения спороцист и церкарии. Дополнительным хозяином
является муравей (Formica), в котором из церкариев формируются
метацеркарии. Заражение происходит при поедании животными травы с
муравьями или при случайном проглатывании муравья человеком.
Существующие методы прижизненной диагностики основаны на
обнаружении яиц в фекалиях животных. В настоящее время предложено
множество методов копрологической диагностики дикроцелиоза жвачных
животных. Однако, сегодня по-прежнему, существуют определенные
трудности в выборе наиболее эффективного и простого в применении
метода, которым могли бы легко воспользоваться ветеринарные врачи
лабораторий при исследовании жвачных животных на дикроцелиоз. Данная
методика предназначена для прижизненной диагностики дикроцелиоза путем
выявления ДНК возбудителя, яйца которого выделяются с фекалиями
больных животных. В основе метода лежит амплификация специфического
участка за счет многократного повторения циклов денатурации ДНК в
исследуемой пробе, отжига специфических олигонуклеотидных затравок
(праймеров) и синтеза цепей ДНК с помощью фермента Таg-полимеразы.
Обнаружение яиц D.dendriticum в фекалиях крупного и мелкого рогатого
скота проводится методом полимеразной цепной реакции (ПЦР), в которой
используются праймеры на область генома, консервативную для
представителей данного вида. По наличию в реакционной смеси
специфического фрагмента ДНК делают заключение о присутствии в
исследуемом материале возбудителя дикроцелиоза. Преимущества метода
являются возможность прижизненной диагностики, мониторинг пастбищ
путем исследования муравьев на предмет носительства метацеркариев, более
чувствительный метод прижизненной диагностики при низкой степени
инвазии.
Разработчики и их контактные данные: научные сотрудники ГНУ
СКЗНИВИ Россельхозакадемии, телефон/факс – 8-(8635)-26-62-70.