Тема №4: «Инъекции и пункции. Местное обезболивание». Цель

Тема №4: «Инъекции и пункции. Местное обезболивание».
Цель занятия: ознакомить студентов с наиболее распространенными в
ветеринарии методами и способами введения лекарственных веществ, а
также отработать технику инъекций, пункций и вливаний; Изучить значение
местного обезболивания в момент хирургического вмешательства;
отработать
методику
введения
животным
местноанастеризующих
препаратов.
Материал и оборудование: животные (лошадь, крупный рогатый скот,
собака, кролик); медикаменты; хирургический инструментарий, шприцы.
Методика проведения занятия. Преподаватель опрашивает студентов
по пройденному материалу, после чего объявляет тему и содержание занятия.
Знакомит студентов с различными системами шприцев и игл, после чего
показывает, как правильно пользоваться шприцами и фиксировать иглу при
инъекции. Знакомит с методом заполнения шприца жидкими
лекарственными средствами, сливанием первых порций раствора из колбы в
тазик, затем, не касаясь стенок цилиндра шприца, заполнением его,
введением поршня в цилиндр шприца. Демонстрирует различные способы
инъекций
лекарственных
веществ:
подкожные,
внутрикожные,
внутримышечные, внутривенные, обращая при этом внимание студентов на
необходимость предварительной подготовки операционного поля и рук
хирурга.
Техника инъекций. Для инъекций используют шприцы разных
конструкций и полые иглы. Для взятия крови и внутривенных инъекций чаще
применяют иглы Боброва, Сайковича, различные аппараты. Шприц берут в
правую руку так, чтобы большой, средний и безымянный пальцы удерживали
цилиндр шприца, а конец указательного пальца находился на головке
рукоятки поршня. В некоторых случаях удобно брать шприц как скальпель, в
положении троакара. Иглу вводят в ткани не более чем на две трети ее
длины.
Подкожные инъекции делают в любом участке тела животного, но
чаще всего в области шеи, внутренней поверхности бедер, грудной стенки,
вентральной брюшной стенки, т. е. там, где имеется значительный слой
подкожной клетчатки и, следовательно, введение жидкости менее
болезненно и она быстро рассасывается. Шерсть в области инъекции
выстригают ножницами Купера (брить не следует!) и протирают спиртом.
Пальцами левой руки захватывают кожу в складку так, чтобы между
указательным и большим пальцами образовалась ямка, в которую и вводят
иглу. Этим приемом исключается опасность прокола иглой обеих стенок
кожной складки. После инъекции место прокола кожи смазывают спиртовым
раствором йода. Крупным животным вводят в одно место не более 20 мл,
мелким - 5 мл препарата.
Внутрикожные инъекции выполняют при инфильтрационном
обезболивании и при некоторых видах прививок. В области инъекции шерсть
при прививках выстригают, при операциях выбривают и дезинфицируют
спиртом. Тонкую иглу вводят в толщу кожи срезом вверх на глубину 2-3 мм
и впрыскивают 0,2-0,3 мл жидкости. Контролем правильности
внутрикожного введения служит образование небольшого желвака с резкими
границами - «лимонной корочки» (при подкожном введении границы
желвака всегда расплывчаты).
Внутримышечные инъекции делают чаще всего в толщу ягодичных
мышц, трехглавую мышцу плеча, ключичную часть поверхностной грудной
мышцы, заднебедренную группу мышц. После подготовки места инъекции
плотно прижимают кожу к подлежащим тканям и вводят иглу строго
перпендикулярг но к поверхности тела на глубину 4-5 см, но не более чем на
две трети длины иглы. По окончании впрыскивания вновь прижимают кожу
левой рукой и извлекают иглу. Место инъекции дезинфицируют.
Обращают
внимание
на
возможность
осложнений
при
внутримышечных инъекциях при нарушении правил асептики или введения
лекарственных средств, которые нельзя простерилизовать - развитие
межмышечных флегмон.
Внутривенные вливания у крупного и мелкого рогатого скота
производят в наружную яремную, наружную грудную или подкожную вену
живота (в «молочную» вену), у лошади - в яремную или наружную грудную
вену, у свиней - в вену ушной раковины, у собак и кошек - в бедренную,
яремную, плюсневую передненаружную или подкожную вену предплечья, у
свиней - в большую ушную вену. После подготовки места инъекции
сжимают жгутом или рукой центральный участок вены. Иглу продвигают в
сосуд наискось. Раствор вводят медленно – 20-50 мл в 1 мин. Преимущество
этого способа введения - быстрота действия лекарственных средств на
организм животного. Крупным животным вливание производят в их
естественном положении, прибегая к отвлекающим средствам (закрутка,
носовые щипцы). Место инъекции готовят по всем правилам асептики.
Для вливаний используют специальные инфузионные иглы Сайковича
и другие диаметром 1-2 мм с острым умеренно скошенным концом и особой
канюлей, вставляемой в муфту иглы, а также инфузионные аппараты
Боброва, Конькова или цилиндры шприца Жанэ без поршня с
присоединенной к нему резиновой трубкой, на конце которой находится
канюля для соединения с иглой. Преподаватель показывает правило
заполнения инфузионных аппаратов растворами, приемы пункции яремной
вены: пережатие вены рукой ниже места ее пункции, прокол вены,
присоединение канюли к игле после появления первой струйки крови
(канюля должна быть на уровне жидкости, находящейся в цилиндре, а в ней
должен быть раствор), затем яремную вену освобождают от пережатия, а
цилиндр с жидкостью поднимают выше уровня яремного желоба. После
введения препарата яремную вену повторно пережимают ниже иглы,
отсоединяют канюлю цилиндра, промывают иглу кровью для
предупреждения попадания раствора в периваскулярную и подкожную
клетчатку, вену пережимают выше иглы и последнюю извлекают. После
извлечения иглы поле операции смазывают 5%-ным спиртовым раствором
йода.
Преподаватель объясняет, что при внутривенных введениях некоторых
лекарственных веществ (хлоралгидрата, хлорида кальция, новарсенола,
флавакридина и др.) в случае попадания последних в подкожную и
периваскулярную
клетчатку
могут
быть
осложнения
в
виде
параперитромбофлебитов.
Внутриартериальные инъекции выполняют в пальцевые артерии,
общую сонную артерию, аорту. Положение артерии определяют
прощупыванием и исследованием пульса. Внутриартериальные инъекции
применяют редко.
Внутрикостные инъекции чаще всего производят в грудную кость,
наружный угол подвздошной кости (маклок), эпифизы большеберцовой,
лучевой, бедренной, плечевой костей. Специальную иглу вкалывают в кость
после подготовки операционного поля без предварительного разреза кожи.
Вливание выполняют медленно, лучше всего капельным способом.
Внутрисуставные инъекции осуществляют с диагностической и
лечебной целями. Они требуют хорошей анатомо-топографической
ориентировки.
Внутрибрюшинные и внутриплевральные инъекции производят с
диагностической и лечебной целями.
Кроме перечисленных способов инъекций могут осуществляться еще
такие, как внутрикожные, внутриартериальные, внутриплевральные,
внутрикостные и внутрисуставные.
Преподаватель демонстрирует внутривенное, внутриаортальное
введения, пункцию аорты по Воронину. После показа преподавателем всех
способов инъекций и вливаний студенты сами проводят их на подопытных
животных.
Местное обезболивание. Студенты знакомятся с различными
средствами обезболивания животных; практически на животных разных
видов отрабатывают различные методы обезболивания.
Анестезирующие средства (вещества, вызывающие местное
обезболивание). Представляют собой сложные эфиры парааминобензойной
кислоты с алкиламином.
Новокаин (антагонист сульфаниламидов). Используют в 0,25-0,5%-ных
концентрациях для инфильтрационной анестезии, в 2-4%-ных - для
проводниковой и в 1-3%-ных - для спинномозговой анестезии.
Дикаин (пантокаин). Очень токсичен. Используют в глазной практике в
0,5-2 %-ной концентрации.
Совкаин (перкаин). В 30 раз токсичнее новокаина, используется в
глазной практике в растворе от 1:2000 до 1: 3000. В отличие от новокаина
совкаин не обладает антисульфамидным действием.
Ксикаин (ксилокаин, лидокаин). Сильное местноанестезирующее
средство. Действует значительно быстрее, сильнее и длительнее новокаина.
В полевых (нестационарных) условиях необходимо применять также
поверхностную (плоскостную) анестезию для обезболивания кожи,
слизистых, синовиальных и серозных оболочек. С этой целью используют
хролэтил, лидокаин, тримекаин.
В зависимости от места введения и действия анестетика на отделы
периферической нервной системы различают: поверхностную (плоскостную),
инфильтрационную, проводниковую и эпидуральную анестезии.
Студенты под руководством преподавателя практически отрабатывают
методику:
поверхностной анестезии. Обезболивают конъюнктиву 50-10%-ным
раствором новокаина или 1%-ным раствором дикаина. Наблюдают эффект;
инфильтрационной анестезии.
Пропитывают послойно ткани
животного 0,25-0,5%-ным раствором новокаина и наблюдают за угасанием
болевой чувствительности;
проводниковой анестезии. Инъецируют 2-3%-ный раствор новокаина в
окружающие нервный ствол ткани и следят за выключением проводимости
чувствительного нервного ствола;
эпидуральной анестезии. Используют сакральную эпидуральную
анестезию, вводя 1-2%-ный раствор новокаина в эпидуральное пространство
крестцового отдела позвоночника. Наблюдают за результатом анестезии.
К общему глубокому наркозу в полевых (вне стационара) условиях
следует прибегать очень редко, так как для этого необходимо располагать
известным временем и соответствующей обстановкой. Поэтому даже при
сложных операциях чаще приходится обращаться к сочетанному
обезболиванию - использованию местной анестезии на фоне действия
нейролептиков или нейролептаналгетиков.