Проведение лабораторных и практических работ на занятиях по биологии Введение

Проведение лабораторных и практических работ на занятиях по биологии
Введение
В системе обучения предметам естественнонаучного цикла лабораторные и
практические работы занимают одно из важнейших мест. Практическая деятельность
позволяет формировать у учащихся целостные представления об окружающем мире, умение
четко устанавливать причинно-следственные связи между объектами и явлениями. В первую
очередь, это обусловлено тем, что при выполнении учащимися лабораторного практикума
происходит формирование и развитие умений и навыков экспериментального изучения
живой природы, глубокого проникновения в закономерности ее существования.
Основы формирования умений и навыков выполнения лабораторных и практических
работ по биологии закладываются с 6 класса. Мы приводим пример первых лабораторных
работ по микроскопированию для 6-классников.
Основными задачами лабораторного практикума по общей биологии являются
развитие исследовательской культуры учащихся, их устойчивого познавательного интереса к
изучению биологии. Приведенные примеры лабораторных работ по общей биологии
соответствуют профильному уровню обучения.
Правила работы с микроскопом.
1.
Лабораторный микроскоп предназначен для изучения готовых или
изготовленных собственноручно микропрепаратов.
2.
Переносить микроскоп можно только за штатив, и, ни в коем случае, - за
тубус!
3.
Устанавливать микроскоп необходимо на расстоянии не менее 10 см от края
стала.
4.
Для улавливания световых лучей предназначено зеркальце, за поверхность
которого нельзя браться пальцами: поворачивать зеркальце можно только, держась за его
пластиковый ободок.
5.
Рассматривать препарат нужно сначала на малом увеличении. Исходное
расстояние от объектива малого увеличения до объекта – 1 см.
6.
По завершении работы, микроскоп необходимо вновь перевести на малое
увеличение, повернув барабан револьвера до щелчка, так чтобы объектив малого увеличения
оказался направленным на предметный столик.
7.
Оптику (линзы объектива и окуляра) трогать руками категорически
запрещено!
8.
При настройке резкости изображения необходимо очень осторожно работать
винтами.
9.
Настроенный микроскоп сдвигать с места нельзя!
10.
Зарисовывать препараты лучше всего в круге (диаметром не менее 3 см), так
как это соответствует полю видения при изучении препарата под микроскопом.
Успешной Вам работы!
Лабораторная работа №1.
Изучение особенностей строения растительной клетки
(на примере неокрашенного препарата кожицы лука).
Цели работы: освоить основные приемы изготовления неокрашенного препарата
кожицы лука и рассмотреть особенности строения растительной клетки.
Оборудование: предметное и покровное стекла, фильтровальная бумага,
препаровальная игла, стеклянная палочка, стаканчик с водой, чешуйка луковицы, лезвие.
Ход работы
1. Капнем на предметное стекло капельку воды, взяв ее стеклянной палочкой из
стаканчика. Отложим предметное стекло в сторону.
2. Возьмем чешуйку луковицы. Аккуратно, препаровальной иглой снимем кожицу с
внутренней поверхности чешуйки.
3. Поместим кусочек кожицы в каплю воды и расправим ее.
4. Если кусочек кожицы великоват, придерживая его препаровальной иголочкой,
вырезаем лезвием фрагмент размером 0,5см х 0,5 см.
5. Если необходимо, добавляем еще каплю воды и накрываем препарат покровным
стеклом: ставим его на ребро на предметное стекло на расстоянии около 0, 7 см от фрагмента
кожицы и аккуратно опускаем. Затем, легонько прижимаем покровное стеклышко по краям,
чтобы удалить пузырьки воздуха и излишки воды.
6. Помещаем препарат на предметный столик микроскопа и рассматриваем на малом,
а потом и на большом увеличении.
7. Зарисовываем препарат, обращая особое внимание на пристеночное положение
ядер. Почему они так располагаются? На рисунке даем обозначения тех компонентов клетки,
которые нам удалось увидеть в микроскоп, и делаем выводы по работе.
Лабораторная работа № 2.
Тема: "Крахмальные зерна".
Цели: изучить форму и строение крахмальных зерен различных растений.
Оборудование: стаканчик с дистиллированной водой, раствор I в КI, 3
препаровальные иголки, стеклянная палочка, предметное стекло (3), покровное стекло (3),
клубень картофеля, зерновки пшеницы и овса, микроскоп.
Примечание 1: предварительно зерновки пшеницы и овса замачивают на 24 часа для
набухания.
Примечание 2: крахмальные зерна имеют разную величину, структуру и форму. В
зависимости от числа центров крахмалообразования и степени сложности различают
простые, сложные и полусложные зерна. Для простых зерен характерен один центр
крахмалообразования и концентрическое нарастание слоев крахмала вокруг него. В сложных
зернах присутствует несколько связанных друг с другом центров крахмалообразования,
вокруг которых самостоятельно концентрируется крахмал. В полусложных зернах исходно
закладывается несколько центров крахмалообразования, то есть, сначала зерна формируются
как сложные, а затем покрываются общими несколькими слоями
Ход работы.
1. На предметное стекло капнуть воду из стаканчика с дистиллированной водой.
2. Разрезать клубень картофеля и место разреза поскоблить препаровальной иглой.
Соскоб на кончике иглы перенести в каплю воды. Осторожно, не надавливая, соскоб накрыть
покровным стеклом.
3. Препарат поместить на столик микроскопа, рассмотреть при малом увеличении, а
затем - при большом.
4. Рассмотреть мелкие и крупные крахмальные зерна. Уменьшая толщину светового
пучка с помощью ирисовой диафрагмы, рассмотреть слоистость зерен.
Примечание 3: слоистость зерен крахмала объясняется разной степенью
оводненности слоев: при высушивании зерен их слоистость пропадает.
5. Не снимая состолика препарат окрасить его раствором I в КI: при небольшой
концентрации красителя зерна окрашиваются в голубой цвет, если красителя много, то зерна
приобретают почти черный цвет. Препарат зарисовать, указав тип зерен крахмала, сделать
выводы.
6. Изготовить препарат с крахмальными зернами овса посевного. Вскрыв
препаровальной иглой набухшую зерновку, взяв на кончик иголки немного ее содержимого,
поместить частицы на предметное стекло и осторожно прикрыть покровным стеклом.
7. Рассмотреть препарат на малом и большом увеличении, определить тип
крахмальных зерен овса, зарисовать их, сделать выводы.
8. Аналогичным образом провести манипуляции с зерновкой пшеницы, определить
тип крахмальных зерен, зарисовать препарат, сделать выводы.
Лабораторная работа № 3.
Тема: "Растительные масла".
Цели: убедиться в наличие масел в семенах подсолнечника.
Оборудование: препаровальные иголки, стеклянная палочка, краситель судан-III,
предметное стекло (2), семена подсолнечника.
Ход работы.
1. Очистить семечко подсолнечника, разделить его на две части препаровальной
иголкой.
2. Поврхностью разделения провести по покровному стеклу несколько раз.
3. Стеклянной палочкой нанести на мазок краситель судан –III. Мазок должен
фрагментарно окраситься в оранжевый цвет, что будет свидетельствовать о наличие в пробе
масла.
4. Сделать выводы по работе.
Лабораторная работа №4
Тема: "Наблюдение уголкового и колпачкового плазмолиза".
Цели: изучить на примере явления уголкового и колпачкового плазмолиза и деплазмолиза
участие клеточной мембраны в осморегуляции; сформировать навыки изготовления
микропрепаратов и работы с микроскопом.
Оборудование: микроскоп, предметное стекло, покровное стекло, стаканчик с
дистиллированной водой, стеклянная палочка, лук, 1М раствор NaCl, раствор I2 в KI (для
окрашивания), лезвие, препаровальные иголки.
Ход работы
1. Снять с выпуклой стороны чешуи лука препаровальной иголкой кусочек эпидермиса.
Отделить с помощью лезвия фрагмент площадью 5 мм х 5 мм. На середину предметного стекла
поместить каплю воды.
2. Поместить в каплю воды кусочек эпидермиса лука, накрыть покровным стеклом,
положить на предметный столик микроскопа и рассмотреть препарат на малом увеличении.
3. Окрасить препарат раствором I2 в KI: каплю раствора на стеклянной палочке перенести к
краю покровного стекла, а с противоположной стороны оттянуть воду фильтрованной бумагой.
Примечание: окрашивание необходимо проводить, не снимая препарата с предметного
столика микроскопа. Таким же образом проводят плазмолиз и деплазмолиз.
4. Рассмотреть окрашенный препарат сначала на малом, а потом на большом увеличении.
Зарисовать препарат, обозначить части клетки – ядро, цитоплазму, вакуоли и клеточную стенку.
5. Каплю 1М раствора NaCl на стеклянной палочке перенести к краю покровного стекла, а с
противоположной стороны оттянуть жидкость фильтрованной бумагой.
6. Наблюдать за клетками сначала при малом, а затем при большом увеличении. Зарисовать
отдельную клетку с уголковым или колпачковым плазмолизом.
7. Произвести деплазмолиз: каплю дистиллированной воды на стеклянной палочке
перенести к краю покровного стекла, а с противоположной стороны оттянуть жидкость
фильтрованной бумагой.
8. Наблюдать за клетками сначала при малом, а затем при большом увеличении. Зарисовать
отдельную клетку с деплазмолизом. Сделать выводы по проведенной работе.
Лабораторная работа №5
Тема: "Наблюдение уголкового и колпачкового плазмолиза".
Цели: изучить на примере явления уголкового и колпачкового плазмолиза и деплазмолиза
участие клеточной мембраны в осморегуляции; сформировать навыки изготовления
микропрепаратов и работы с микроскопом.
Оборудование: микроскоп, предметное стекло, покровное стекло, стаканчик с
дистиллированной водой, стеклянная палочка, лук, 1М раствор NaCl, раствор I2 в KI (для
окрашивания), лезвие, препаровальные иголки.
Ход работы
1. Снять с выпуклой стороны чешуи лука препаровальной иголкой кусочек эпидермиса.
Отделить с помощью лезвия фрагмент площадью 5 мм х 5 мм. На середину предметного стекла
поместить каплю воды.
2. Поместить в каплю воды кусочек эпидермиса лука, накрыть покровным стеклом,
положить на предметный столик микроскопа и рассмотреть препарат на малом увеличении.
3. Окрасить препарат раствором I2 в KI: каплю раствора на стеклянной палочке перенести к
краю покровного стекла, а с противоположной стороны оттянуть воду фильтрованной бумагой.
Примечание: окрашивание необходимо проводить, не снимая препарата с предметного
столика микроскопа. Таким же образом проводят плазмолиз и деплазмолиз.
4. Рассмотреть окрашенный препарат сначала на малом, а потом на большом увеличении.
Зарисовать препарат, обозначить части клетки – ядро, цитоплазму, вакуоли и клеточную стенку.
5. Каплю 1М раствора NaCl на стеклянной палочке перенести к краю покровного стекла, а с
противоположной стороны оттянуть жидкость фильтрованной бумагой.
6. Наблюдать за клетками сначала при малом, а затем при большом увеличении. Зарисовать
отдельную клетку с уголковым или колпачковым плазмолизом.
7. Произвести деплазмолиз: каплю дистиллированной воды на стеклянной палочке
перенести к краю покровного стекла, а с противоположной стороны оттянуть жидкость
фильтрованной бумагой.
8. Наблюдать за клетками сначала при малом, а затем при большом увеличении. Зарисовать
отдельную клетку с деплазмолизом. Сделать выводы по проведенной работе.
Лабораторная работа № 6.
Тема: "Хлоропласты. Движение цитоплазмы (на примере элодеи канадской)".
Цели: изучить форму и расположение хлоропластов; пронаблюдать за движением
цитоплазмы по перемещению хлоропластов.
Оборудование: кювета с элодеей канадской, кисточка, стаканчик с
дистиллированной водой, препаровальные иголки, стеклянная палочка, предметное стекло,
покровное стекло, микроскоп.
Примечание 1: предварительно кювету с элодеей нужно подержать под лампой
около 2-3 часов, чтобы стимулировать движение цитоплазмы.
Ход работы.
1. На предметное стекло капнуть воду из стаканчика с дистиллированной водой.
2. Из кюветы кисточкой взять лист элодеи канадской и перенести в каплю воды на
предметное стекло. Осторожно накрыть препарат покровным стеклом.
3. Препарат поместить на столик микроскопа таким образом, чтобы был виден край
листовой пластинки. Рассмотреть препарат сначала при малом, а затем при большом
увеличении. Препарат зарисовать при большом увеличении.
Примечание 2: по краю листовой пластинки клетки расположены в один слой,
поэтому их легко рассматривать, не делая среза. При рассматривании хлоропластов сверху
они выглядят как округлые зеленые тельца. Те, которые видны сбоку, имеют вид
двояковыпуклой линзы.
4. Перевести микроскоп на малое увеличение. Передвинуть препарат так, чтобы
хорошо были видны удлиненные клетки, расположенные вдоль серединной жилки.
Зафиксировать внимание на одном хлоропласте и несколько минут наблюдать за его
перемещением в токе цитоплазмы.
Примечание 3: если в клетке есть одна крупная центральная вакуоль, то цитоплазма
расположена пристеночно и ее движение будет ротационным, то есть, круговое. Если
вакуолей несколько, то цитоплазма образует между ними тяжи, в которых движется
струйчато.
5. Зарисовать одну клетку и показать в ней стрелками направление движения
цитоплазмы (по движению хлоропласта). Сделать выводы.
Лабораторная работа № 7.
Тема: "Хромопласты. Лейкопласты".
Цели: изучить форму и расположение хромопластов в клетках мякоти зрелых плодов
(рябины, шиповника или томатов) и лейкопластов в клетках эпидермиса листьев
традесканции виргинской.
Оборудование: стаканчик со слабым раствором сахара, раствор глицерина, 2
препаровальные иголки, стеклянная палочка, предметное стекло (2), покровное стекло (2),
микроскоп, зрелые плоды (рябины, шиповника или томатов), листья традесканции
виргинской.
Ход работы.
1. На предметное стекло капнуть раствор глицерина (он служит просветляющей
жидкостью).
2. Препаровальной иглой вскрыть плод и взять на ее кончик немного мякоти,
поместить ее в каплю глицерина на предметное стекло. Растерев мякоть, осторожно накрыть
препарат покровным стеклом.
3. При малом увеличении найти место, где клетки лежат наименее скученно, перевести
микроскоп на большое увеличение. С помощью ирисовой диафрагмы добиться четкого
изображения. Рассмотреть хромопласты. Препарат зарисовать при большом увеличении с
обозначениями. Сделать выводы.
4. На предметное стекло капнуть раствор сахара (он препятствует разбуханию
лейкопластов)
5. С нижней стороны листа традесканции виргинской препаровальной иглой снять кусочек
эпидермиса. Поместить его в каплю раствора сахара на предметное стекло. Осторожно накрыть
препарат покровным стеклом.
6. При малом увеличении найти бледно-лиловые клетки (в них вакуоли заполнены
клеточным соком, содержащим антоциан). Перевести микроскоп на большое увеличение и
расмотреть одну клетку. Лейкопласты видны в цитоплазме как мелкие светопреломляющие
гранулы.
7. Зарисовать препарат с обозначениями на большом увеличении. Сделать выводы.