ИЗМЕНЕНИЕ МИКРОБОЦЕНОЗА КИШЕЧНИКА ЦЫПЛЯТ
advertisement
НТП: ЖИВОТНОВОДСТВО И КОРМОПРОИЗВОДСТВО УДК 636.087.8:636.5.084 ИЗМЕНЕНИЕ МИКРОБОЦЕНОЗА КИШЕЧНИКА ЦЫПЛЯТБРОЙЛЕРОВ КРОССА ISA F-15 ПРИ ПРИМЕНЕНИИ ВЕТОМА 3 И ВЕТОМА 3.22 Г.А. НОЗДРИН, доктор ветеринарных наук, зав. кафедрой Н.В. РЕВКОВ, аспирант Новосибирский ГАУ А.И. ЛЕЛЯК, директор А.А. ЛЕЛЯК, зав. лабораторией НПФ «Исследовательский центр» М.Г. ПЕТРАШ А.Н. ЛУКЬЯНОВ E-mail: lelaik2@yandex.ru Резюме. Исследования проводили с целью изучения влияние пробиотиков ветом 3 и ветом 3.22, в различных дозах, на состав микрофлоры кишечника цыплят. Ветом 3 представляет собой мелкодисперсный порошок, ветом 3.22 – жидкость. Для ее достижения было проведено две серии опытов. В 1-й серии цыплятам опытной группы ветом 3 задавали в дозе 100 мг/кг живой массы через автоматические поилки ежедневно до 34-х сут. возраста. Во второй серии опытов цыплятам задавали ветом 3.22 в дозе 3 мкл/кг живой массы до 34-х сут. возраста в I опытной группе ежедневно, во II опытной группе через день. В обоих опытах в первые 5 дн. кроме изучаемых препаратов давали антибиотики, цыплят-бройлеров контрольных групп выращивали по стандартной для предприятия схеме. Отбор фекалий для определения качественного и количественного состава микрофлоры проводили на 1-е, 15-е и 35-е сут. На 15-е сут. исследований при применении ветома 3 и ветома 3.22 титр Proteus vulgaris снизился на 2 порядка и приблизился к норме. Количество кишечной палочки с пониженной активностью (лактозонегативной) уменьшилось в 2,8 раза. Содержание бифидо- и лактобактерий в 10 раз превышало величину аналогичного показателя в контрольной группе. В возрасте 35 сут. картина в основном оставалась аналогичной. Таким образом, ветом 3 и ветом 3.22 позитивно влияли на показатели нормофлоры и способствовали более раннему формированию микробиоценоза у цыплят. Ключевые слова: бройлеры, пробиотики, бактериальные штаммы, микробоценоз. В последнее десятилетие в Российской Федерации успешно развивается отрасль птицеводства. Для обеспечения высокой эффективности и рентабельности выращивания птицы на многих предприятиях используют пробиотические препараты, которые стимулируют интенсивность роста и повышают качество получаемой продукции [1...3]. Широко применяются препараты, в состав которых входят аэробные спорообразующие бактерии рода Bacillus [4, 5]. Цель наших исследований – изучить влияние пробиотиков ветом 3 и ветом 3.22, задаваемых цыплятамбройлерам перорально с водой в различных дозах, на состав микрофлоры их кишечника. Условия, материалы и методы. Производственные эксперименты проводили в ЗАО «Алтайский бройлер» на цыплятах-бройлерах кросса ISA F-15 при их напольном содержании в период с мая 2009 г. по май 2010 г. Птица получала полнорационный комбикорм, сбалансированный по питательным и биологически активным веществам. Воду и корм задавали по технологической схеме принятой на предприятии. Для достижения поставленной цели было поставлено две серии опытов. Для первой сформировали 2 группы – опытная и контрольная – численностью 22758 и 22459 гол. соответственно. В опытной группе птице задавали препарат ветом 3 в дозе 100,0 мг/кг живой массы через 58 автоматические поилки ежедневно до 34-х сут. включительно. Первые 5 дн. препарат давали совместно с антибиотиками. Для второй серии опытов было сформировано 2 опытных и одна контрольная группа с численностью поголовья 23261, 23962 и 23951 гол. соответственно. Препарат ветом 3.22 задавали в дозе 3 мкл/кг живой массы в I опытной группе ежедневно, во II опытной группе через день. В остальном схема и продолжительность эксперимента аналогичны ранее изложенным. В контроле в обоих экспериментах цыплят-бройлеров выращивали по стандартной для предприятия схеме. Отбор фекалий для определения качественного и количественного состава микрофлоры проводили на 1-е, 15-е и 35-е сут. Посевы и идентификацию микроорганизмов осуществляли согласно общепринятым методикам. Используемые в производственных опытах лечебнопрофилактические препараты для ветеринарного применения ветом 3 и ветом 3.22 содержат в качестве действующего начала бактерии Bacillus amyloliquefaciens штамм ВКПМ В-10642 в концентрации не менее 106 КОЕ/г и 109 КОЕ/см3 соответственно, а также наполнитель. Ветом 3 представляет собой мелкодисперсный порошок, ветом 3.22 – жидкость. Данные, полученные в ходе эксперимента, обрабатывали с использованием стандартных компьютерных программ. Достоверность определяли с помощью критерия Стьюдента. Результаты и обсуждение. До применения препаратов микрофлора кишечника цыплят-бройлеров в опытных и контрольных группах достоверно не различалась (табл. 1). У всех цыплят наблюдали повышенное содержание лактозонегативной кишечной палочки – (172…246)×105, что в 100 раз превосходит норму. Кроме того, при изучении условно-патогенных энтеробактерий, в образцах фекалий у всех цыплят выявлен Proteus vulgaris в высоких титрах – не менее 1×107 КОЕ/г (в норме 1×104 КОЕ/г). Содержание бифидо- (28…44×108 КОЕ/г) и лактобактерий (10×108 КОЕ/г), энтерококков (62…101×108 КОЕ/г) и кишечной палочки с нормальной ферментативной активностью (19…21×109 КОЕ/г), а также прочих представителей нормофлоры (клостридии, сапрофитный стафилококк, грибы рода Candida) в исследованных образцах соответствовало норме. На 15-е сутки в 1-й серии опытов при использовании ветома 3 содержание бифидо- и лактобактерий у цыплят в опытной группе было выше величины аналогичного показателя в контроле в 10 раз (1×108 и 1×107 КОЕ/г; 1×109 и 1×108 КОЕ/г соответственно), энтерококков – в 4,2 раза, кишечной палочки с нормальной ферментативной активностью – в 2,3 раза. Численность кишечной палочки с пониженной активностью (лактозонегативной) на 15-е сут. опыта в опытной группе снизилась, по сравнению с контрольной, в 2,8 раза, а титр P. vulgaris – на 2 порядка и приблизился к норме (1×105 КОЕ/г). Во 2-й серии опытов в случае применения ветома 3.22 на 15-е сут. содержание бифидобактерий и лактобактерий в кишечнике птицы I и II опытных групп в 10 Достижения науки и техники АПК, №10-2012 НТП: ЖИВОТНОВОДСТВО И КОРМОПРОИЗВОДСТВО Таблица 1. Количественный состав микрофлоры кишечника цыплятбройлеров кросса ISA F-15* 1 серия опытов 2 серия опытов Группа микроорганизмов I опытная I опытная II опытная конконтроль группа группа группа троль до применения препаратов Бифидобактерии 28×108 44×108 33×108 40×108 37×108 Лактобактерии 10×108 10×108 10×108 10×108 10×108 Энтерококки 101×108 81×108 62×108 74×108 66×108 Клостридии 1×105 1×105 1×105 1×105 1×105 E. coli с нормальной ферментативной активностью 21×109 17×109 21×109 19×109 20×109 E. coli с пониженной активностью (лактозонегативные) 172×105 246×105 209×105 195×105 195×105 Другие условно-патогенные энтеробактерии и бактерии P. vulgaris P. vulgaris P. vulgaris P. vulgaris P. vulgaris 1×107 1×107 1×107 1×107 1×107 Стафилококк сапрофитный, эпидермальный 1×102 1×102 1×102 1×102 1×102 Грибы рода Candida 1×103 1×103 1×103 1×103 1×103 15-е сутки опыта Бифидобактерии 1×108 1×107 10×108 10×108 1×108 Лактобактерии 10×108 1×108 1×108 1×108 1×107 Энтерококки 5×108 0,8×108 1×108 8×108 0,4×108 Клостридии 1×105 1×105 1×105 1×105 1×105 E. coli с нормальной ферментативной активностью 21×109 9×109 40×109 80×109 9×109 E. coli с пониженной активностью (лактозонегативные) 57×105 61×105 12×105 2×105 162×105 Другие условно-патогенные P. vulgaris P. vulgaris P. vulgaris P. vulgaris P. vulgarэнтеробактерии и бактерии 1×105 1×107 1×104 1×105 is 1×107 Стафилококк сапрофитный, эпидермальный 1×102 1×102 1×104 1×104 1×104 Грибы рода Candida 1×103 1×103 11,4×103 11,7×103 1×104 35-е сутки опыта Бифидобактерии 1×108 1×107 10×108 10×108 1×108 Лактобактерии 3×108 1×108 2×108 3×108 2×108 Энтерококки 1×106 1×106 7×106 8×106 0,4×106 Клостридии 1×105 1×105 1×105 1×105 1×105 E. coli с нормальной ферментативной активностью 1,5×109 0,3×109 4×109 8×109 9×109 E. coli с пониженной активностью (лактозонегативные) 3,2×105 15×105 22×105 18×105 160×105 Другие условно-патогенные P. vulgaris P. vulgaris P. vulgaris P. vulgaris P. vulgarэнтеробактерии и бактерии 1×104 1×107 1×104 1×104 is 1×107 Стафилококк сапрофитный, эпидермальный 1×102 1×102 1×104 1×104 1×104 Грибы рода Candida 1×103 1×103 1×103 1×103 1×103 ло 10×10 8 КОЕ/г. Количество лактобактерий у птицы опытных групп изменялось в пределах от 1…3×108 КОЕ/г. Содержание энтерококков в фекалиях выровнялось и составляло в среднем по группам 0,4…7×106 КОЕ/г. Численность кишечной палочки с нормальной ферментативной активностью у 35-суточных цыплят, как и у птицы в возрасте 15 сут., соответствовало норме и составляло в среднем по группам (8…9×109 КОЕ/г). Титры P. vulgaris, в сравнении с 15суточными цыплятами, изменились незначительно. Содержание протея во всех опытных группах составляло 104 КОЕ/г, тогда как в контроле в обоих сериях опытов оно оставалось на исходном уровне. Содержание лактозонегативной кишечной палочки у цыплят в 1-й серии опытов было ниже, чем в контроле, в 4,7 раза, во 2-й серии опытов у птицы I опытной группы – в 7,3, II – в 8,9 раза. Количество клостридий, сапрофитного стафилококка и грибов рода Candida во все сроки исследований в обоих сериях опытов не отличалось от установленного до начала опыта у суточных цыплят и соответствовало норме, а гемолитическая кишечная палочка и золотистый стафилококк выявлены не были. Таким образом, ветом 3 и ветом 3.22 изменяют микробиоз в кишечнике с одина*Содержание в норме: бифидобактерии – не менее 1×108, лактобактерии – не менее 1×106, ковой закономерностью. энтерококки – не менее 1×106, клостридии – 1×105, E. coli с нормальной ферментативной активно- Обеспечивая увеличение стью – не менее 1×107, E. coli с пониженной активностью (лактозо-негативные) – 1×105, E. coli гемоколичества бифидо- и лактолитические – 0, другие условно-патогенные энтеробактерии и бактерии – 1×104, стафилококк зобактерий, они способствуют 4 4 лотистый – 0, стафилококк сапрофитный, эпидермальный – 1×10 , грибы рода Candida – 1×10 . образованию в кишечнике раз превышало величины аналогичных показателей в цыплят антагонистического барьера и формируют контроле (1×109 и 1×108 КОЕ/г; 1х108 и 1х107 КОЕ/г соколонизационную резистентность, которая предотответственно). Количество энтерококков в опытных вращает заселение условно-патогенными и патогени контрольной группах различалось незначительно и ными микроорганизмами. Постоянное присутствие в варьировало в пределах (0,4…8)×108 КОЕ/г. кишечнике адгезированных на его стенке резидентных Содержание кишечной палочки с нормальной фермикроорганизмов предотвращает размножение патоментативной активностью в I и II опытных группах было генов, их внедрение в энтероциты и прохождение через выше, чем в контроле, соответственно в 4,4 и 8,8 раз, кишечную стенку. Кишечные бактерии нормофлоры а лактозонегативной – ниже в 13,5 и 7,3 раза. Титр P. защищают хозяина от патогенов, а также формируют vulgaris у птицы I и II опытных групп уменьшился на 2… переднюю линию слизистой защиты [6]. Ветом 3 и ве3 порядка (1×104 и 1×105 КОЕ/г соответственно). том 3.22 способствовали более раннему становлению На 35-е сутки опыта количественный и качественнормофлоры у цыплят опытных групп. ный состав микрофлоры кишечника цыплят-бройлеров Выводы. Производственный опыт, в рамках котоопытных групп существенно не изменился. Содержание рого антибиотики использовали только в первые 5 дн., бифидобактерий у цыплят опытной группы в 1-й серии а в дальнейшем применяли лечебно-профилактические опытов было в 10 раз выше, чем в контроле, во 2 серии препараты для ветеринарного применения Ветом 3 в опытов оно находилось на одном уровне и составлядозе 100 мг/кг живой массы тела (ежедневно) и ветом Достижения науки и техники АПК, №10-2012 59 НТП: ЖИВОТНОВОДСТВО И КОРМОПРОИЗВОДСТВО 3.22 в дозе 3 мкл/кг массы тела (ежедневно и через день), показал, что изученные пробиотики положительно воздействуют на количественный и качественный со- став микрофлоры кишечного тракта цыплят-бройлеров, увеличивая содержание нормофлоры и снижая численность потенциально патогенных микроорганизмов. Литература. 1. Антипов В.А. Пробиотики в ветеринарии // Новые фармакологические средства в ветеринарии: Тез. докл. – Ленингр. вет. ин-т., 1989. – с. 7-8. 2. Малик Н.И., Панин А.Н. Ветеринарные пробиотические препараты // Ветеринария. – 2001. – № 1. – с. 46-51. 3. Ноздрин Г.А., Леляк А.И. и др. Влияние ветома-1.1. и ветома-2 на интенсивность роста и развития поросят в подсосный период// Атуальные вопросы ветеринарии: Тез. докл. 1-й науч.-практ. конф. фак. вет. мед. НГАУ. – Новосибирск, 1997. – с. 9-10. 4. Ноздрин Г.А., Иванова А.Б., Шевченко А.И., Ноздрин А.Г. Научные основы применения пробиотиков в птицеводстве. – Новосибирск: Новосиб. гос. аграр. ун-т., 2005. – с 5. Смирнов В.В. и др. Современные представления о механизме лечебно-профилактического действия пробиотиков из бактерий рода Bacillus // Микробиология. – 1993. – Т. 55. – № 4. – с. 92-112. 6. Тараканов Б.В. Механизмы действия пробиотиков на микрофлору пищеварительного тракта и организм животных // Ветеринария. – 2000. – № 1. – с. 47-54. CHANGE MICROBOCINOSIS OF THE INTESTINE OF BROILERS CHIKCENS CROSS ISA F-15 WITH VETOM 3 AND VETOM 3.22 G.A. Nozdrin, N.V. Revkov, A.I. Lelyak, A.A. Lelyak, M.G. Petrash, A.N. Lukjanov Summary. The purpose of research is to study the effect of probiotics vetom 3, & vetom 3.22, at various doses, on the composition of intestinal microflora of chickens. Vetom 3 is a fine powder vetom 3.22 in liquid. To achieve this goal included two series of experiments. In one series of experimental group chickens vetom 3 asked in a dose of 100 mg/kg body weight through automatic waterers daily to 34 day old. The 1st 5 days of preparation specified together with antibiotics. Broiler controls were grown in a standard scheme for the company. In the 2nd series - chickens 1st experimental group asked vetom 3.22 daily at a dose of 3 ml/kg body weight up to 34 day old, the 1st 5 days with antibiotics. In 2nd test vetom 3.22 bird wondered at 3 ml/kg body weight every other day to 34 day old, the 1st 5 days with antibiotics. Chickens - broilers controls were grown in a standard scheme for the company. Tackling feces to determine the qualitative and quantitative composition of microflora was performed on the 1st, 15th, & 35th day. On the 15th day of studies in experimental chickens in applying vetom 3, & vetom 3.22 titer of Proteus vulgaris decreased by 2 orders of magnitude and close to normal. Number of Escherichia coli with reduced activity (lactosonegative) decreased by 2.8 times. The content of Bifidobacteria, & Lactobacillus in 10 times higher than in the control group. Thus, vetom 3, & vetom 3.22 positively influence your normal flora, & promote better early formation microbiota in chickens. Key words: broiler chickens, probiotic, bacterial strains, mikrobocenoz. УДК 619:612-08+636.237.21 ПРОФИЛАКТИЧЕСКАЯ И РОСТОСТИМУЛИРУЮЩАЯ ЭФФЕКТИВНОСТЬ ЖИДКИХ ФОРМ ВЕТОМОВ ПРИ ПРИМЕНЕНИИ ИХ НОВОРОЖДЕННЫМ ТЕЛЯТАМ Г.А. НОЗДРИН, доктор ветеринарных наук, зав. кафедрой А.Г. НОЗДРИН, кандидат ветеринарных наук, доцент А.Б. ИВАНОВА, доктор ветеринарных наук, профессор Новосибирский ГАУ А.И. ЛЕЛЯК, директор А.А. ЛЕЛЯК, кандидат биологических наук, зав. лабораторией НПФ «Исследовательский центр» E-mail: leliak2@yandex.ru Резюме. Исследования проводили с целью изучения профилактической и ростостимулирующей эффективности жидких форм пробиотиков ветом 2.26 (действующее начало – Bacillus subtilis штамм ВКПМ В-10641 и Bacillus amyloliquefaciens штамм ВКПМ В-10643 в количестве не менее 1×109 КОЕ/мл) и ветом 4.24 (действующее начало – Bacillus amyloliquefaciens штамм ВКПМ В-10643 в количестве не менее 1×109 КОЕ/мл) при выращивании телят чёрно-пёстрой породы. Были сформированы 4 опытных и контрольная группы из новорожденных животных черно-пестрой породы. Телятам I и II опытных групп назначали соответственно ветом 2.26 и ветом 4.24 внутрь с молоком в дозе 0,5 мкл/ кг массы тела, а III и IV групп – в дозе 1 мкл/кг массы, 2 раза в 60 сутки первые 5 сут. подряд, затем с однодневным интервалом в течение месяца. Животным контрольной группы препарат не применяли. Исследование крови и взвешивание проводили до применения препарата и на 30-е, 60-е и 90-е сутки опыта. За опытный период у животных I-IV опытных групп среднесуточный прирост живой массы был выше аналогов из контрольной группы на 19,0; 19,2; 39,3 и 38,3 % соответственно. Изменение интенсивности роста телят при скармливании ветома 2.26 и ветома 4.24 происходило с одинаковой закономерностью. В период введения препаратов регистрировали самый низкий прирост живой массы. Наибольшую интенсивность роста отмечали у телят опытных групп на 30-е сут. после прекращения назначения препаратов. Более выраженный ростостимулирующий эффект отмечен при применении пробиотиков в дозе 1 мкл/кг массы. За период эксперимента среди телят опытных групп заболеваний не регистрировали. В контроле нарушение функционального состояния органов пищеварения с диарейным синдромом регистрировали у 80 % животных. Ключевые слова: ветом 2.26, ветом 4.24, пробиотики, абсолютная масса, среднесуточный прирост. В связи со вступлением Российской Федерации в ВТО необходимо пересмотреть традиционно сложившиеся технологии выращивания животных с использованием фармакологических препаратов и биологически активных добавок. На сегодняшний день одно из перспективных Достижения науки и техники АПК, №10-2012
