Практикум по методам рыбохозяйственных исследований

Министерство образования и науки РФ
Дагестанский государственный университет
Биологический факультет
Кафедра ихтиологии
Практикум по методам рыбохозяйственных
исследований
Автор составитель:
Курбанова С.И.
Махачкала 2015
Работа 1: Пластические признаки рыб.
Цель работы: ознакомить с методами изучения пластических признаков у
различных видов рыб.
Оборудование и материалы: мерная доска, мерная лента, линейка,
штангенциркуль, карандаш, рыба.
Пластическими называют признаки, измеряемые с помощью линейных
инструментов, например, линейки или штангенциркуля. Для каждого таксона
высокого ранга (от семейства и выше) принято использовать адаптированную для
соответствующего таксона систему промеров пропорций тела, отражающую
специфику данной группы рыб.
Как правило, для ТОГО, чтобы проводить минимально искаженное сравнение
пластических признаков рыб разного размера в ихтиологических работах принято
использовать не абсолютные значения таких признаков, а их индексы, то есть
отношения величины признака к одной из длин тела (ее выбор зависит от
таксономической принадлежности объекта изучения) и длине головы. Пример
таблицы таких индексов также дан в приложении 4.
1. Особенности измерения карповых рыб
Схема промеров пластических признаков карповых рыб (рис. 7; прил. 4) может,
конечно, отличаться в некоторых деталях от приведенной ниже, но желательно,
чтобы такие отличия были не существенными для обеспечения в дальнейшем
возможности сравнительного анализа ваших данных другими исследователями.
Длина тела до конца чешуйного покрова (L) - одна из основных длин при
изучении многих групп рыб, в том числе и карповых. Измеряется от переднего края
рыла до конца чешуйного покрова.
Длина тела без хвостового плавника (SL; ad - стандартная длина тела) - от
переднего края рыла до основания средних лучей хвостового плавника.
Длина головы (ао) от переднего края рыла до наиболее удаленной точки
жаберной крышки (без учета жаберной перепонки).
Длина рыла (an) - от переднего края рыла до переднего края глаза (до переднего
наружного края глазного яблока).
Диаметр глаза (пр) измеряется горизонтальный диаметр роговицы» при этом
веки в расчет не принимаются.
Заглазничный отдел головы (ро) - от заднего края глаза до точки жа-» берной
крышки, наиболее удаленной от конца рыла. Жаберная нерспонкг не учитывается.
Высота головы у затылка (lm) - верхняя точка берется там, где оканчивается
череп, а нижняя находится на проходящей через нее вертикали.
Межглазничное расстояние или ширина лба - расстояние между глазами. то есть
наименьшая ширина черепа (на виде сверху) на участке между глазами (по их
середине).
Наибольший обхват тела * - измеряется с помощью сантиметровой ленты в месте
наибольшей толщины и наибольшей высоты тела. Понятно, что для маленьких рыб
этот промер, как правило, излишен.
Наибольшая толщина тела - наибольшее расстояние между боками рыбы при
виде сверху.
Наибольшая высота тела (gh) - измеряется по вертикали от самой высокой точки
спины рыбы (плавники не учитываются).
Наименьшая высота тела (ik) - находится, как правило, на XBOCTOBON стебле и
поэтому иногда называется высотой хвостового стебля.
Антедорсальное расстояние (aq) - от переднего края рыла до основани*. первого
луча спинного плавника.
Постдорсальное расстояние (rd) - от вертикали заднего конца OCHOBHHI
СПИННОГО плавника до основания хвоствого плавника по средней линии тела.
Антепекторальное расстояние * (av) - от переднего края рыла до передней точки
прикрепления грудного плавника.
Антевентральное расстояние * (аz) - от переднего края рыла до передней точки
прикрепления брюшного плавника.
Антеанальное расстояние * (аy) - от переднего края рыла до основания первого
луча анального плавника.
Длина хвостового стебля (fd) - от вертикали заднего края основания анального
плавника до основания хвостового плавника (или конца чешуй- ного покрова, но это
должно быть специально оговорено) по средней линии тела.
Длина основания D (qs) от основания переднего до основания последнего луча
спинного плавника.
Наибольшая высота Р (tu) - высота наибольшего луча спинного плавника. В тех
случаях, когда это необходимо, проводят дополнительное измерение других лучей
спинного плавника, что позволяет более точно описать профиль плавника.
Длина основания А (уу 1 ) - от основания переднего до основания последнего луча
анального плавника.
Высота А (ej) - длина наибольшего луча анального плавника.
Длина Р (vx) - от передней линии прикрепления грудного плавника до конца
наиболее длинного его луча.
Длина V (zzi) - от передней линии прикрепления грудного плавника до конца
наиболее длинного его луча.
Длина верхней лопасти хвостового плавника * - длина наиболее длинного луча
верхней лопасти С.
Длина нижней лопасти хвостового плавника * - длина наиболее длинного луча
нижней лопасти С.
Расстояние между Р и V (vz) - от передней точки прикрепления грудного
плавника до передней точки прикрепления брюшного плавника.
Расстояние между V и A (zy) - от заднего края основания брюшного плавника до
основания первого луча анального плавника.
Расстояние от V до ануса * - от заднего края основания брюшного плавника до
переднего края ануса. Используется при изучении пескарей.
Расстояние от А до ануса * - от основания первого луча анального плавника до
заднего края анального отверстия. Используется при изучении пескарей.
Звездочками отмечены признаки, которые не всегда используются на практике.
У некоторых групп карповых рыб (например, гольянов) измеряют толщину
хвостового стебля. У рыб, имеющих усики, измеряется их длина.
Для подуста принято давать расстояние между углами рта, с последующим
преобразованием в индекс «в процентах длины головы».
Необходимо подчеркнуть, что приведенная выше схема промеров карповых рыб
часто дополняется при изучении конкретных групп этого семейства, и в этих случаях
необходимо ориентироваться на узко адаптированные схемы промеров пластических
признаков, которые можно найти в специальной литературе, посвященной изучению
конкретных таксонов рыб.
2. Особенности измерения осетровых рыб
Линия промера высоты головы лежит на вертикали, проходящей по переднему
краю первой спинной жучки (рис. 8; при л. 4).
Высота костных жучек при измерении наибольшей и наименьшей ВЫсот тела не
учитываются.
Длина тела (основная) обычно измеряется как у сельдеобразных и лососевидных
- от переднего края рыла до конца средних лучей С (длина тела по Смитту).
Нужно давать описание формы усиков (усики в разрезе круглые сплющенные, с
листовидными придатками, как, например у белуги, и без придатков, как у калуги);
описание жаберных перепонок – приращены ли они к межжаберному промежутку, как
у рыб рода осетры, или срастаются между собой, образуя свободную складку, как у
рыб рода белуги. Морфологическое описание осетровых лучше давать по взрослым,
вполне сформировавшимся особям, так как некоторые признаки у молодых осетровых
довольно непостоянны.
3. Особенности измерения сельдевых рыб
В качестве основной длины тела при промерах сельдевых (рис. 9; прил. 4)
используется длина тела по Смитту. Необходимо обратить внимание на следующие
признаки: I) число брюшных шипиков между V и А, 2) наличие и степень развитости
выемки в верхнечелюстном отделе головы, 3) наличие нескольких прободенных
чешуи позади головы, 4) удлинение последних лучей А, 5) положение начала V
относительно вертикали начала D, 6) число и форма жаберных тычинок, особенно на
верхней части первой жаберной дуги.
Рис. 9. Схема промеров пластических признаков сельдевых рыб (по Правдину, 1966).
Остальные обозначения даны в тексте (см. гл.1).
4. Особенности измерения лососевых, хариусовых и сиговых рыб
Наиболее широко используемая схема промеров пластических признаков
лососевых рыб приведена в работе Г X. Шапошниковой и Е. А. Дорофеевой, которая
и принимается в настоящей работе (рис. 10; прил. 4). При измерении длины головы в
качестве передней точки используется конец наиболее выдающейся вперед верхней
или нижней челюсти. Задней точкой стандартной длины тела является основание
лучей С, но на практике часто - край чешуйного покрова по средней линии тела.
Задней точкой измерения антедорсального расстояния является ямка у основания
первого луча D, появляющаяся при отгибании этого луча вперед. Задней точкой
измерения длины хвостового стебля является край чешуйного покрова по средней
линии тела. При измерении длины верхнечелюстной кости длина praemaxillare не
учитывается. Ширина лба - ширина frontale по скелетной основе. Бугорковидные
тычинки на первой жаберной дуге подсчитыдаются отдельно. Число позвонков
подсчитывается без рудиментарного, то есть от первого до последнего изогнутого
вверх). В боковой линии подсчитываются только прободенные чешуи, а несколько
остальных чешуй указываются через знак «+», например, запись 78+3 указывает, что
у данной особи име-стся 78 прободенных чешуи, позади которых лежат еще 3
непрободенные чешуи.
Для хариусовых рыб, как правило, используется та же схема промеров, что и
для лососевых (прилож. 4, табл. 5).
Для сиговых рыб (рис. 11) в качестве передней точки тела для измерения
пластических признаков, связанных с передним концом головы, используется не
передний край рыла, а передний край верхнечелюстной кости. Ширина рыльной
площадки - передняя наружная часть рыла между верхнечелюстными костями.
Высота рыльной площадки - посередине от верхнего до нижнего края.
5. Особенности измерения тресковых рыб
У налима - единственного пресноводного представителя данного семейства в
наших водоемах, у брюшного плавника измеряется длина его первого и третьего
лучей, а высота головы у места расхождения жаберных лучей, а не у затылка. В
остальном схема промеров налима соответствует таковой для других тресковых рыб
(рис. 12).
6. Особенности измерения окуневых и скорпеновых рыб
Образец таблицы для записи промеров пластических признаков окуневых и
скорпеновых рыб дан в приложении 4 (табл. 6), а особенности промеров показаны на
рисунке 13.
Рис. 13. Схема измерений окуневых (Percidae):
- ab —длина всей рыбы; ас — длина по Смитту; ad — длина без С; od—
длина туловища; an — длина рыла: пр — диаметр глаза (горизонгальный); ро
— заглазничный отдел головы; ао — длина головы; 1т - высота головы у
затылка; a 1 а 2 — длина верхнечелюстной кости; n 1 ,t 1 — ширина
верхнечелюстной кости; k 1 l 1 — длина нижней челюсти; gh — наибольшая
высота гела; ik — наименьшая высота тела; aq - антедорсальное расстояние;
rd – постдорсальное расстояние; az — антевентральное расстояние; ау антеанальное расстояние; fd — длина хвостового стебля; qs — длина
основания ID; q 1 s 1 — длина основания IID; tu — наибольшая высота ID;
t 1 u 1 — наибольшая высота IID; yyl — длина основания А; ej— наибольшая
высота A; vx — длина Р; vx 1 — ширина основания Р; zz 1 , — длина V, vy —
расстояние между Р и A; zy — расстояние между V и А; Ау — расстояние
между aнусом и А.
- Длина всей рыбы (аb) — от конца рыла до вертикали от самого длинного
луча хвостового плавника (чаще бывает длиннее нижняя лопасть).
- Длина рыбы без С, т. е. от конца рыла до конца чешуйного покрова (ad).
За конец чешуйного покрова принимают самые мелкие последние чешуйки по
средней линии тела, покрывающие и хвостовой плавник в его основании.
- Чешую в боковой линии надо просчитывать от жаберной щели до
последней (включительно) чешуи, имеющей отверстие; за этой чешуйкой
имеется еще несколько рядов менее правильно расположенных чешуек, но без
боковой линии, при просчете они не принимаются во внимание.
- При просчете позвонков уростиль считается за один (последний)
позвонок.
- Во втором спинном плавнике просчитываются и записываются отдельно
колючие лучи (обычно II), мягкие, невствистыс (обычно I) и мягкие ветвистые
(от 12 до 15). Пример записи: П.113 (колючие лучи от мягких отделяются
запятой).
- Обычно у окуня имеется по 7 жаберных лучей. Тычинки на первой
жаберной дуге просчитываются отдельно на нижней (длинной) и на верхней
(короткой) ветвях. Включать в просчёт нужно и зачаточные (рудиментарные)
тычинки, имеющие вид малозаметных бугорков. Образец записи: 18+6; 20+7 и
т. п.
- У жаберной дуги измеряются отдельно обе половины дуги, причем за
крайние точки измерений берутся зачаточные тычинки. Пример записи:
20+6=26.
- Длину наибольшей жаберной тычинки обычно измеряют у места
соединения верхней ветвей дуги.
- Длину головы измеряют от конца рыла до конца postoperculum, а высоту
— у затылка. Верхняя точка измерения лежит у начала чешуйного покрова.
- Длина рыла — от конца рыла до окрашенной части глаза — радужины.
- Диаметр глаза беру т горизонтальный — длина окрашенной части глаза.
- Длина верхнечелюстной кости измеряется как у лососевых (без
praemaxillare).
- Длина нижнечелюстной кости (dentale) — до точки ее сочленения с
articulare (в этом месте снаружи заметно небольшое углубление).
- Расстояние от ануса до А — от заднего края анального отверстия до
начала анального плавника.
- Хвостовая выемка — отношение линии от наружного края средних
лучей плавника до линии, соединяющей концы верхней и нижней лопастей
плавника к этой последней линии. При этом измерении необходимо развернуть
хвостовой плавник, придав ему естественное положение.
Задание: Провести промеры предложенной вам рыбы и занести
результаты в таблицу (см. приложение).
Работа 2: Методы определение возраста рыб.
Цель занятия: Ознакомить студентов с методами определения возраст
рыб.
Материал и инструменты: живая или консервированная рыба (2-3
экземпляра), мерная
лента, чешуйные препараты, костные срезы, пинцет,
скальпель, микроскоп, лупа.
Знание возраста рыб для специалистов рыбного хозяйства имеет такое же
значение, как и возраст млекопитающих животных, и возраст растений для
растениеводов. Возраст рыб необходимо знать при решении многих вопросов.
Без знания возраста рыб невозможно вести правильные хозяйственные расчеты.
Нужно знать, в каком возрасте промысловая рыба становится способной к
размножению, хорошо ли она растет, какие возрастные группы встречаются в
улове и какие возрасты можно ожидать в будущих уловах.
Различают скороспелые, быстрорастущие и медленно растущие виды рыб.
Знание возраста рыб помогает определить темпы роста. Оно дает возможность
судить о том, достаточно ли промысел использует природные запасы водоемов и
следует ли его сокращать или расширять, решить вопрос о недолове или
перелове рыбы и вообще о запасах рыб, установить наиболее рентабельные
сроки проведения рыбоводных процессов.
У рыб возраст определяется по чешуе, костям и отолитам. Принцип
определения возраста рыб основан на свойстве чешуи и костей образовывать
наслоение в виде чередующих колец. Каждому году жизни рыбы соответствует
определенное кольцо на чешуе или кости, и оно хорошо видно иногда даже
невооруженным глазом.
Ход работы:
Чешую надо брать из спинной части (рядом со спинным плавником),
повыше боковой линии, а у рыб, не имеющих боковой линии, с середины бока
(рис. 1). Взять надо несколько чешуй (5-6). Это делается для того, чтобы
максимально исключить ошибки, зависящие от разных сроков закладки чешуи
на разных участках тела рыбы. Из чешуи надо приготовить чешуйные
препараты.
Рис. 1. Схема тела лососевой рыбы, на которой пунктирной линией
показана область, где рекомендуется брать чешую для определения возраста.
У окуневых в связи с высоким прохождением боковой линии следует брать
чешую из первого-третьего рядов под боковой линией. Обычно для определения
места взятия чешуйных проб используется 3 принципа: оно должно быть
максимально приближено к месту закладки первых чешуек у мальков, чешуя
должна быть достаточно крупной и наименее подверженной эрозии.
Далее отобранную чешую аккуратно очищают от кожного покрова,
используя для этого 4% раствор нашатырного спирта или просто теплой водой,
и очистить мягкой тряпкой или щеткой. После чего, как правило, изготавливают
специальные препараты - пригодную и очищенную чешую размещают между
двумя предметными стеклами, которые стягивают, но краям изолентой или
скотчем. Все такие препараты должны быть обязательно этикетированы, то есть
иметь все основные исходные данные об этой особи: вид рыбы, место и дату
лова, длину (одну из принятых за стандартную для данной группы рыб) и
порядковый номер особи в ведомости или чешуйной книжке, где содержится
дополнительная информация.
Приготовленные
таким
образом
чешуйные
препараты
можно
просматривать через лупу или под микроскоп при малом увеличении. Возраст
одних видов рыб определяют обычно по передней части, т. к. на задней части
годовые кольца незаметны (рис. 2). У других видов рыб годового кольца
расположены равномерно по всей поверхности чешуи.
В результате многочисленных эмпирических оценок были установлены
радиусы чешуи, наиболее точно отражающие рост в каждом из крупных
таксонов рыб: для карповых рыб рекомендуется использовать задний или
передний диагональный радиус чешуи; для лососевидных - передний
диагональный; для сельдевых - передний; для окуневых и скорпеновых передний.
На чешуе рыб принято измерять передний, задний, и для каждого из них
еще верхний и нижний диагональные радиусы (рис. 2).
Рис. 2. Схема структуры чешуи семигодовалой красноперки (по Галкину, 1958, с
изменениями): о - образовательный центр или ядро чешуи: от cd вниз - заднее
(свободное) поле чешуи; от cd вверх - переднее (прикрытое чешу иным
кармашком) поле чешуи; ab - длина всей чешуи (продольный диаметр); cd наибольшая ширина чешуи (поперечный диаметр); оа - задний (tcay дальний,
апикальный) радиус; ob - передний (базальный) радиус; ое - передний
диагональный радиус; of - задний диагональный радиус; ребрышки склеритов; l 1
l 2 l 3 и т.д. - границы годичных наслоений; + - незаконченный прирост.
Рис. 3. Чешуя лосося после первого
нереста
Рис. 4. Часть чешуи семилетнего сига
Рис. 5. Схема чешуи трехлетней рыбы.На чешуе выражены помимо годовых
колец (а, в и д), добавочные кольца (б, г и е).
У некоторых видов рыб (сом, линь, голый карп) на поверхности тела
отсутствует чешуя или она чрезмерно мелкая, поэтому их возраст определяется
по отолитам и различным костям.
Определение возраста по отолитам
Отолиты или слуховые камешки находятся в слуховой капсуле рыб. Их число,
форма и размеры в значительной степени зависят от таксономической
принадлежности рыбы. Для определения возраста и темпов роста используются
наиболее крупные отолиты, находящиеся в слуховом аппарате.
Рис. 6. Схема строения отолита судака (по Кафановой, 1984). А - нижний край; В верхний край; С - передний край; D - задний край; а - центр; ab - направление
измерения.
Для извлечение отолитов голову рыбы разрезают продольно или (чаще)
поперечно в затылочной области и пинцетам аккуратно извлекают отолиты из левой
и правой слуховых капсул. У очень крупных рыб, например судака, отолиты можно
извлечь из слуховой капсулы не делая разреза черепа сверху. Для этого сильно
оттягивают жаберную крышку, удаляют мышцы со слуховой капсулы, срезают ее
наружную стенку и извлекают отолит пинцетом. Далее их помещают в
соответствующий кармашек чешуйной книжки.
Мелкие отолиты изучают без предварительной шлифовки, помещая их в
просветляющие жидкости - ксилол, толуол, либо в глицерин, этиловый спирт,
скипидар, трансформаторное или репейное масло. Крупные отолиты, как правило,
шлифуют на самом мелком абразиве, после чего также рассматривают в
просветляющих жидкостях. Иногда отолиты предварительно слегка нагревают в
пламени спиртовки, что может увеличить контрастность их кольцевых структур. В
ряде случаев при изучении крупных отолитов их разламывают посередине,
предварительно покрыв его полностью асфальтовым лаком. Затем места разломов
шлифуют и рассматривают под увеличением. При этом хорошо видна картина
расположенная годовых колец на шлифах (рис. 57-58). На препаратах хорошо видны
светлые и темные полосы – кольца. Светлое кольцо вместе с темным составляет одно
годовое кольцо.
Определение возраста по костям
Для установления возраста рыб традиционно используются кости жаберной
крышки (operculum н suboperculum), челюстная кость (maxillare - ее поперечные
спилы). Обычно кости берут у свежих (реже фиксированных) рыб. В первом случае у
рыбы отрезают голову с плечевым поясом и грудными плавниками, заворачивают в
марлю и обваривают кипятком для отделения костей от мягких тканей (рис.
48,49,50,59, 60). Затем собранный костный материал сушат и помещают в
индивидуальные бумажные пакеты, имеющие тот же набор данных, что и чешуйные
книжки. Далее кости подвергают различным способам дополнительной обработки
для получения более контрастной картины кольцевых образований на них. Кости
крупных рыб предварительно обезжиривают эфиром, бензинам или раствором,
состоящим из 1/3 эфира и 2/3 бензина. Для особо крупных костей эта процедура
может быть весьма продолжительной - до нескольких недель. Обычно годовые
структуры на перечисленных выше костях изучают после выдерживания их в
этиловом спирте или ксилоле.
Определение возраста по спилам лучей плавников
Определение возраста рыб по спилам их лучей считается одним из наиболее
точных способов решения данной задачи. Для этой цели используют поперечные
спилы первого луча грудного, брюшного и спинного плавников, и выбирают радиус,
на котором годовые кольца наиболее четко выражены. Понятно, что наиболее просто
эту процедуру проводить на лучах крупных рыб, у которых спилы получают,
используя лобзик с двумя полотнами. Спил проводят на предварительно хорошо
просушенных лучах как можно ближе к их основанию. Некрупные плавники можно
размещать в чешуйных книжках, а очень большие в бумажных конвертах
соответствующего размера, имеющих тот же набор исходных данных, что и
чешуйные книжки. Спилы плавников обязательно шлифуют на самом мелком
абразиве, после чего рассматривают под микроскопом, помещая их в раствор
ксилола, толуола.
Определение возраста по позвонкам.
Для определения возраста рыб по позвонкам используют позвонки передней
части туловищного отдела позвоночника, чем ближе к голове, тем лучше. И позвонки
и гипуральные элементы скелета хвостового плавника вырезают и очищают от
мягких тканей, затем высушивают и помещают в бумажные пакеты, этике
тированные так же, как и чешуйные книжки. У позвонков исследуют сочленовные
ямки, на которых, как правило, имеются кольцевые структуры, соответствующие
периодам быстрого и медленного роста. Гипуральные элементы хвостового плавника
изучают так же, как и кости жаберной крышки.
По годовым кольцам рыб можно определить не только возраст рыбы, но и
темпы ее роста в различные периоды жизни. Для этого увеличенное при помощи
проектора изображение чешуи зарисовывают на бумаге. Уточняют длину рыбы.
Известно, что изменения длины чешуи происходит пропорционально увеличению
длины тела рыбы. Измерив, расстояние от центра чешуи до каждого годового кольца,
получают представление о темпах роста в различные периоды жизни.
Допустим длина пойманного сазана равна 600 мм, а увеличенный радиус чешуи
50 мм. Найти увеличение длины тела рыбы (Х) в последнюю вегетацию можно по
формуле:
;
где Кn - расстояние от предпоследнего годовалого кольца до края чешуи, мм;
Кn – расстояние от центра до края чешуи, мм;
Х- длина рыбы, мм;
Определение возраста и особенностей роста рыбы является необходимым
условием при изучении биологии рыб, а также в племенной работе с ними.
Задание:
1. Приготовить препарат для определения возраста рыб.
2. Определить возраст, предложенной вам рыбы, используя существующие
методы.
3. По годовым кольцам рыб определите темпы ее роста в различные
периоды жизни.
1.
2.
3.
4.
5.
6.
Контрольные вопросы:
На чем основаны методы определения возраста и темпа роста рыб?
Кратко охарактеризовать технику сбора материала для изучения возрастного состава и
темпа роста рыб.
Перечислить и кратко охарактеризовать методы определения возраста рыб.
Охарактеризовать чешую, отолит, кости как регистрирующие рос структуры.
Используя препараты годовых колец показать признаки годового кольца, добавочных
колец разного типа.
Рассказать об особенностях методик определения возраста и темпа роста по костным
структурам и отолитам
Работа 3: Изучение питания и пищевых отношений рыб.
Цель занятия: ознакомить с методами изучения питания и пищевых
отношений рыб.
При изучении питания рыб с целью разработки мероприятий по
рациональному использованию природных ресурсов водоема — акклиматизации, рыборазведения, определения минимального промыслового размера,
выявления факторов, определяющих колебание запасов рыб, и других вопросов,
из улова берут пробы от рыб всех видов.
Существуют два метода сбора и обработки материала по питанию: метод
индивидуального сбора и обработки желудочно-кишечных трактов, когда
каждая рыба анализируется отдельно, и метод группового сбора и обработки,
когда кишечники собираются от группы рыб и содержимое их обрабатывается
как единое целое. Метод группового анализа менее трудоемкий, но им можно
пользоваться только для выяснения видового состава пищи, размеров съеденных
объектов, т. е. для получения качественных данных по питанию.
Сбор материала. Материал по питанию собирают активными орудиями
лова: тралом, обкидным неводом. Объячеивающие орудия лова (сети) мало
пригодны для изучения питания, так как в них пойманная рыба долго остается в
воде.
Одновременно с ихтиологическими сборами на питание берут
гидробиологические пробы (планктон, бентос, нектон), а также проводятся
гидрохимические и гидрологические исследования.
Перед
извлечением
желудочно-кишечного
тракта
проводится
биологический анализ, т. е. каждую рыбу, подлежащую вскрытию, измеряют
(определяют всю длину - L и длину до конца чешуйчатого покрова - l),
взвешивают (общая масса - Р и масса выпотрошенной рыбы - р), определяют
пол и стадию зрелости половых продуктов, упитанность, жирность по
шестибалльной системе по количеству жирков на кишечнике. Затем берется
материал для определения возраста и темпа роста: у сомовых - первые лучи
грудных плавников, у окуневых - чешую и жаберные крышки. У судака, трески,
ставриды, шпрота и пр. - чешую и отолиты, у прочих рыб в молодом возрасте чешую, у старых - отолиты.
Полученные данные заносятся в журнал. Желудочно-кишечный тракт
отрезают от пищевода до ям анального отверстия и помещают вместе с
этикеткой в марлевую салфетку. Этикетку надписывают простым карандашом
средней твердости. На этикетку заносятся следующие данные: вид рыбы, место
и дату лова, время суток, орудие лова, длину (Z, /), вес рыбы (Р и р), номер
рыбы в журнале, от которой взят желудочно-кишечный тракт (Таблица 1).
При вскрытии рыбы и при взятии ее пищи нужно соблюдать большую
тщательность: Скальпель и ножницы должны быть чисты, чтобы содержимое
кишечника одной рыбы через скальпель или ножницы не могло попасть в
другую рыбу. Бывают случаи, когда прилипшая к скальпелю чешуя попадает в
баночку с пищей рыбы и при обработке материала по питанию может привести
исследователя к ошибке. Наполнение желудочно-кишечного тракта
записывается в графе карточки трехзначным числом, например, 321, что
означает наполнение пищевода - 3, желудка - 2, кишечника - 1 у желудочных
рыб или переднего, среднего и заднего отделов у безжелудочных.
Затем желудочно-кишечный тракт разрезают на три указанных отдела и из
каждого отдела извлекают содержимое в чашку Петри. Пищевой комок
необходимо обсушить фильтровальной бумагой и взвесить на торсионных,
аптекарских или технических весах. После взвешивания содержимое каждого
отдела пищеварительного тракта исследуется под бинокуляром или под
микроскопом. Все желудочно-кишечные тракты из одной пробы помещают в
общую марлевую салфетку, куда кладут общую этикетку на всю пробу.
Материал (личинки, молодь рыб, мелкие виды рыб и желудочно-кишечные
тракты взрослых особей) фиксируют 4% формалином (1 часть 40 %-ного
формалина на 9 частей морской или пресной воды) в стеклянной или
металлической посуде. Раствор формалина перед фиксацией нейтрализуют
толченым мелом или содой (1-2 чайных ложки на 1 л раствора).
Задание: заполнить индивидуальную карточку по питанию предложенной
вам рыбы (таб. 1).
Образец индивидуальной карточки по питанию рыб
Вид
Судно
Проба №
Район лова
Ихт. №
Год
№ по пищевому журналу
Время лова
Таблица 1
Орудие лова
Масса рыбы
Масса содержимого желудка, г
Пол и зрелость
Степень наполнения кишечника
Степень наполнения
желудка
Масса содержимого кишечника,
г
Длина рыбы, см L /l
Индекс наполнения Наполнение
ЖКТ Цвет пищи
Степень переваренности
Возраст
Жирность
Содержимое
ЖКТ
Размер Кол-во, Масса,
мг
, мм шт.
% (спектр питания)
1.
2.
3.
4.
Всего:
Обработка содержимого желудочно-кишечного тракта.
Фиксированных рыб или желудочно-кишечные тракты, подлежащих анализу
пищевого комка, помещают в сосуд с водой для отмывки от формалина.
Отмоченный желудочно-кишечный тракт перед вскрытием очищают от
обрывков внутренностей и жирков и измеряют его длину. Затем желудочно-
кишечный тракт растягивают, определив на глаз и отметив в соответствующей
графе карточки данной рыбы степень наполнения пищей отделов (пищевод,
желудок, кишечник у желудочных рыб или передняя, средняя и задняя части у
безжелудочных) по 5-бальной шкале: 0 - пусто, 1 - единично, 2 - малое
наполнение, 3 - среднее наполнение, 4 - много пищи (пищеварительный тракт
полный), 5 - масса (пищеварительный тракт растянут).
У многих рыб, в частности у карповых, часто в фиксированных
формалином кишечниках кроме пищи бывает плотная, нелипкая, белесоватая,
легко разламывающаяся на куски масса, представляющая собой
фиксированную формалином слизь кишечного тракта. Перед взвешиванием
пищевого комка необходимо удалить эту массу. Разрушить слизь можно также
обработкой пищевого комка 25 - 30 % раствором едкого калия или натрия в
течение 20 мин.
В случае изучения питания рыб, потребляющих искусственные корма, иногда
возникает затруднение в определении содержимого кишечника - является оно
остатком искусственного корма или фиксированной формалином слизи. Слизь
имеет бесклеточную структуру и значительно, светлее пищевого комка.
На глаз определяют цвет пищевого комка и степень переваренности пищи в
разных отделах кишечника по следующей схеме:
1.организмы не разрушены;
2.организмы слегка переварены;
3.полупереваренные организмы, определение которых возможно поотпавшим
частям;
4.сильно переваренные организмы, но определение возможно поотдельным
частям тела;
5.совершенно неопределимая масса.
Полученные данные по окраске и степени переваренности пищи заносятся
в соответствующую графу карточки в виде цифровых выражений: например,
045, т. е. в переднем отделе пищи нет, в среднем и заднем - сильно
переваренная, но в различной степени.
Исследование питания крупных хищников ихтиолог может производить на
месте, но с обязательным указанием следующих моментов:
1. Наполнение желудка (хорошее, среднее, ниже среднего, желудок пустой).
2. Число заглоченных рыб и их видовой состав.
3. Длина заглоченных рыб.
4. В случае нахождения, кроме рыб, другой пищи, остатки ее помещаются в
пробирку со спиртом и этикеткой (например: «к питанию судака №...»).
5. Хорошо сохранившиеся остатки рыб из желудка хищников в случае целости
желудка также могут быть законсервированы для исследования питания
(особенно ерши, окуни, сижки, карповые. и т. д.).
Помимо полевых определений питания хищных рыб необходимо взять
некоторое количество проб обычным порядком для исследования в лаборатории.
Цифровая обработка полученных материалов.
Существуют четыре основных способа количественной обработки
цифровых материалов по питанию рыб:
- просчет количества экземпляров отдельных пищевых компонентов;
- определение процента встречаемости пищевых компонентов;
- определение объема пищевых компонентов;
- определение их массы.
Качественная обработка пищевого кома представляет неотъемлемую часть
любого количественного метода.
Из количественных методов цифровой обработки материалов по питанию
наиболее прост и распространен метод определения частоты встречаемости
отдельных компонентов в пище. При вычислении необходимо учитывать только
кишечники с пищей. Количество кишечников, содержащих какой-либо
кормовой компонент, выражают в процентах к общему количеству
исследованных кишечников данного вида.
Наиболее точен весовой метод. На основе массы отдельных компонентов
пищи вычисляется процентный состав пищи (спектр питания) от массы всего
пищевого комка.
Неопределимая масса желудочно-кишечного тракта, если это возможно,
взвешивается или определяется на глаз в процентном отношении к массе всего
пищевого комка и распределяется пропорционально весовому значению
обнаруженных пищевых компонентов. Количественным выражением
интенсивности питания являются общий и частный индексы наполнения
желудочно-кишечного тракта.
Рекомендуемая литература по теме:
1. Калайда М.Л., Говоркова Л.К. Методы рыбохозяйственных исследований:
Учебгое пособие для вузов. СПб.: Проспект Науки, 2013. – 288с.
2. Пряхин Ю.В., Шкицкий В.А. Методы рыбохозяйственных исследований:
Учебгое пособие для вузов. -Ростов н/Д : ЮНЦ РАН, 2008. - 256с.
3. Моисеев П.А., Азизова Н.М., Куранова И.И. Ихтиология. - М.: Легкая и
пищевая промышленность, 1981. - 383 с.
4. Никольский Г.В. Экология рыб. - М.: Высшая школа, 1961. - 336 с.
5. Методическое пособие по изучению питания и пищевых отношений рыб в
естественных условиях. - М.: Наука, 1974. - 253 с.
Вопросы для самоконтроля:
1. На какие группы делят рыб по характеру питания ?
2. В чем заключается избирательная способность рыб в питании?
3. Какие изменения в питании происходят у рыб в зависимости от
возраста, сезона и районов обитания?
4. Каков суточный ритм питания у различных видов рыб?
5. Что является показателем интенсивности питания рыб?
6. Как меняется интенсивность питания в зависимости от сезона и
температурного режима?
7. Что такое суточный и годовой рацион?
8. От чего зависит кормовой коэффициент?
9. Каковы индексы наполнения желудочно-кишечного тракта?
10. В чем заключается методика изучения питания, рыб?
Работа 4: Форма, размер и строение икринок.
Цель занятия: изучить особенности строение и форму икринок.
Ознакомится с методами изучения пола и стадий зрелости рыб.
Материалы и оборудование: фиксированные препараты, микроскоп,
рисунки, таблицы.
Икринки у рыб обычно шаровидные, хотя есть и другие формы. Строение
икринок является характерным признаком не только для рода, семейства, но и
более крупных категорий. Например, у большинства представителей
сарганообразных наблюдается шаровидная икринка с нитевидными выростами
или выступами; у бычковидных грушевидные икринки на нижнем конце
снабжены розеткой нитей для прикрепления к субстрату; у анчоусовых икринки
эллипсовидные (Рис. 5).
Икринки рыб различаются не только формой, но и размером, цветом,
наличием или отсутствием жировых капель, строением оболочки.
Величина икринок, как и другие морфологические признаки, является
стабильным признаком вида. Крупные рыбы откладывают икру большего
диаметра, чем мелкие, но амплитуда колебаний размера икринок остается
постоянной для вида даже в разных водоемах, хотя средние значения их
могут смещаться в ту или иную сторону.
Размеры икринок зависят от содержания в них питательного вещества
- желтка - и значительно колеблются (в мм):
Бычок-пандака
Русский осетр
3,0-3,5
Камбала-лиманда 0,6- 0,98
Семга
5,0 - 6,0
Тюлька
0,8- 1,05
Кета
6,5-9,1
Сазан
1,4- 1,5
Полярная
акула
80 (без капсулы)
Сельдь
атлантическая
1,6- 2,1
Китовая акула 670 (в длину с
капсулой)
Белый амур
2,0- 2,5
0,3
Среди многочисленных костистых рыб наиболее мелкие икринки
характерны для камбалы-лиманды, самые крупные - для лососевых, особенно
для кеты. Большой объем желтка в икринках лососевых в отличие от других
рыб обеспечивает более длительный период развития, появление более
крупных личинок, способных на первом этапе активного питания потреблять
более крупные кормовые организмы.
Самые крупные яйца наблюдаются у хрящевых рыб. Развитие эмбрионов у
некоторых из них (катран) длится почти 2 года.
Окраска икринок специфична для каждого вида. У ряпушки они
желтые, у лососей оранжевые, у шуки темно-серые, у сазана зеленоватые, у
терпугов изумрудно-зеленые, голубые, розовые и фиолетовые. Желтоватые
и красноватые тона обусловлены наличием дыхательных пигментов каротиноидов. Икра, развивающаяся в менее благоприятных кислородных
условиях, обычно окрашена интенсивнее. Из лососевых у нерки наиболее
яркая малиново-красная икра, развивающаяся в воде, относительно бедной
кислородом. Пелагические икринки, развивающиеся при достаточном
содержании кислорода, пигментированы слабо.
Икринки многих рыб содержат одну или несколько жировых капель,
которые наряду с другими способами, например, обводнением,
обеспечивают плавучесть икринок.
Икринки снаружи покрыты оболочками, которые могут быть первичными,
вторичными и третичными.
Первичная - желточная, или лучистая (zona radiata), оболочка,
образованная самим яйцом, пронизана многочисленными порами, по
которым в яйцо поступают питательные вещества во время его развития в
яичнике. Эта оболочка достаточно прочная, причем у осетровых
двухслойная.
Над первичной оболочкой у большинства рыб развивается вторичная
оболочка, студенистая, липкая, с разнообразными выростами для
прикрепления яиц к субстрату (Рис. 6).
На анимальном полюсе обеих оболочек расположен особый канал микропиле, по которому сперматозоид проникает в яйцо. У костистых
имеется один канал, у осетровых их может быть несколько.
Существуют также третичные оболочки - белковая и роговая. Роговая
оболочка развивается у хрящевых рыб и миксин, белковая - только у
хрящевых.
У миног, как и у костистых рыб, икринки мелкие, у миксин они
эллипсовидной формы диаметром 2-3 см. На роговой оболочке имеются
крючкообразные отростки, с помощью которых яйца прикрепляются друг к
другу и к подводным предметам.
Роговая оболочка хрящевых рыб значительно больше самого яйца, не
соответствует ему по форме, сплюснута и слегка сжимает яйцо. Часто от нее
отходят роговые нити, с помощью которых яйцо прикрепляется к водным
растениям. У яйцеживородящих и живородящих видов роговая оболочка очень
тонкая, исчезающая вскоре после начала развития.
Задание: Зарисовать строение икринок рыб (рис.6). Обозначить оболочки
икринок (рис.6)
Работа 5: Изучение пола и стадий зрелости рыб.
Прежде, чем вскрыть рыбу с целью определения пола и стадии зрелости
половых продуктов, необходимо произвести обычный биологический анализ, т.
е. измерить и взвесить рыбу, взять чешую, отолиты или кости для определения
по ним возраста рыбы.
На следующем этапе необходимо изучить макроскопические признаки
гонад исследуемой рыбы:
- степень прозрачности половых желез;
- степень прозрачности икринок;
- форму икринок (яйцеклеток) для невооруженного глаза и размер их;
- видимость невооруженным глазом отдельных яйцеклеток (икринок);
- видимость невооруженным глазом ядра в икринках (яйцеклетках);
- степень легкости выделения половых продуктов;
- выделение спермы при разрезе семенников;
- степень заполнения половыми железами полости тела.
Необходимо обратить внимание на ведущие макроскопические признаки:
- массу половых желез (в процентах к массе тела);
- цвет половых желез;
- упругость половых желез;
- степень развития и расположение кровеносных сосудов.
Для гистологических исследований берутся половые железы от свежей
рыбы. Яичники извлекают целиком, взвешивают и, если они парные и
небольшого размера, то одну лопасть фиксируют в формалине, другую в
жидкости Буэна. Из средней части крупных гонад вырезают 1-2 кусочка длиной
до 1 см.
В качестве фиксирующей жидкости обычно применяется раствор Буэна:
300 см3 насыщенного раствора пикриновой кислоты с прибавлением 100 см3 40
% нейтрализованного формалина и 20 см3 ледяной уксусной кислоты (посуда
должна быть с притертой пробкой). Для получения 300 см3 насыщенного
раствора пикриновой кислоты берут 10 г пикриновой кислоты, причем раствор
приготовляется в горячей воде. Жидкость Буэна нестойка, поэтому ее следует
готовить только перед употреблением. Фиксация гонад в жидкости Буэна
продолжается сутки или немногим более, затем их помещают на 1 - 2 суток в 70
% спирт, после чего в 80 % спирт и в нем сохраняют (кроме зрелой икры).
Фиксированную зрелую икру помещают для хранения в смесь спирта с
глицерином (50 % спирта и 50 % глицерина).
Хорошим фиксатором, в котором сохраняются гонады, является 10 %
раствор нейтрализованного формалина. Чтобы получить 10 % формалин, берут
1 часть 40 %. формалина и 3 части воды. Нейтрализация формалина достигается
прибавлением на 1 л раствора 1-2 чайных ложек измельченного мела или соды.
После взбалтывания жидкости нужно дать ей отстояться. Формалин
необходимо держать в темной склянке, так как на свету в нем образуется
муравьиновая кислота.
Рекомендуемая литература по теме:
1. Пряхин Ю.В., Шкицкий В.А. Методы рыбохозяйственных исследований:
Учебное пособие для вузов. -Ростов н/Д : ЮНЦ РАН, 2008. - 256с.
2. Калайда М.Л., Говоркова Л.К. Методы рыбохозяйственных исследований:
Учебное пособие для вузов.- СПб.: Проспект Науки, 2013. – 288 с.
3. Воловик С.П., Корпакова И.Г. Методы рыбохозяйственных и
природоохранных исследований в Азово-Черноморском бассейне:
Сборник научно-методических работ / ФАР, Азовский НИИ рыбного
хозяйства (ФГУП) - Краснодар: АзНИИРХ 2005. - 351с.
4. Моисеев П.А., Азизова Н.М., Куранова И.И. Ихтиология. - М.: Легкая и
пищевая промышленность, 1981. - 383 с.
5. Никольский Г.В. Экология рыб. -М.: Высшая школа, 1961. - 336 с.
Вопросы для самоконтроля:
1. Дайте характеристику способов размножения рыб.
2. На какие две группы по характеру размножения, разделяют рыб?
3. От чего зависит возраст наступления полового зрелости рыб?
4. В чем проявляется половой диморфизм у рыб?
5. Каковы типы размерно-половых соотношений в нерестовых популяциях
рыб?
6. Как меняется соотношение полов у рыб под воздействием различных
факторов?
7. С чем связаны различные сроки размножения каждого вида рыб?
8. Каковы особенности определения плодовитости у рыб с порционным
икрометанием?
9. Охарактеризуйте стадии зрелости по макроскопическим признакам,
используя шестибальную шкалу зрелости.
10. На какие группы разделяют рыб в зависимости от места откладки икры?
Работа 6: Жизненный цикл рыб
Цель занятия: ознакомится с особенностями размножения и эмбриогенеза
рыб различных видов.
Материалы и оборудование: рисунки, фиксированный материал,
микроскоп, предметные стекла.
Жизненный цикл рыб, т. е. вся жизнедеятельность организма в течение
онтогенеза от момента оплодотворения до естественной смерти, распадается на
различные периоды, каждый из которых характеризуется определенными
морфологическими и физиологическими особенностями.
В жизненном цикле рыб выделяют следующие периоды: эмбриональный
(зародышевый), личиночный, мальковый, ювенильный (юношеский), взрослого
организма, старческий.
Эмбриональный (зародышевый) период характеризуется эндогенным
питанием(за счет собственного желтка), длится от момента оплодотворения до
момента перехода на внешнее (экзогенное) питание и подразделяются на 2
подпериода: собственно эмбриональный, когда развитие совершается внутри
яйцевой оболочки, а у живородящих рыб протекает внутри тела самки;
предличиночный
(свободного
эмбриона),
когда
выклюнувшиеся
свободноживущие особи питаются за счет желтка (Рис. 9).
Личиночный период характеризуется переходом на активное внешнее
питание с сохранением личиночных органов и признаков. По внешнему и
внутреннему строению организм еще далек от взрослого. В частности,
плавниковая складка еще не дифференцирована на зачатки парных и непарных
плавников. Мальковый период характеризуется тем, что по внешнему строению
организм приобретает сходство со взрослым. Непарная плавниковая складка
дифференцируется на плавники. Закладывается чешуя, дифференциация пола
началась, но половые органы неразвиты. Малек - это молодая
сформировавшаяся рыбка данного года рождения.
Ювенильный (юношеский) период характеризуется усиленным развитием
половых желез, но рыбы еще неполовозрелые. Начинают развиваться вторичные
половые признаки (если они имеются). Период взрослого организма начинается
с момента наступления половой зрелости, и рыбы обладают всеми признаками,
характерными для полностью сформировавшегося организма. Старческий
период характеризуется замедлением роста или полным прекращением его.
Рыба теряет способность размножаться.
Теория этапного развития рыб, позволившая изучить периоды, этапы,
стадии развили и их продолжительность у многих видов рыб, была разработана
В.В. Васнецовым, затем дополнена и развита другими исследователями.
Периоды - это довольно длительные интервалы индивидуального развития,
слагающиеся из последовательных этапов.
Этапами называются такие интервалы в развитии рыбы, в течение которых
происходит рост и медленные, постепенные изменения организма, однако
никаких существенных изменений ни в строении, ни в физиологии, ни в
поведении рыбы не происходит. Сохраняются ведущие взаимоотношения
организма со средой, остается тот же способ движения, захвата пищи и т. д.
Смена этапов у рыб происходит в течение всей жизни. В первые периоды этапы
обычно короткие, продолжающиеся от нескольких часов до нескольких суток, а
у взрослых рыб длительность этапов может измеряться годами. Переход от
одного этапа к другому осуществляется скачкообразно с резкими изменениями в
строении и обычно происходит при достижении определенных размеров.
Скачки (морфологические изменения) совершаются очень быстро, иногда менее
чем за 3-4 ч, и неразрывно связаны с изменением биологии. Незначительные
морфологические изменения, отражающие каждый момент развитая организма,
называются стадиями.
У трески, например, период собственного эмбрионального развития
подразделяют
на
несколько
стадий
(Рис.
10).
Ia - начальная стадия дробления (от 2 до 8 бластомеров); I - стадия дробления и
обрастания; II- стадия образования зародышевой полоски; III - стадия
неоформившегося эмбриона; IV— стадия оформившегося эмбриона.
Iа стадия - начало дробления (от 2 до 8 бластомеров).
I стадия - дальнейшее дробление, обрастание желтка зародышевым слоем гаструляция. Длится до появления зародышевой полоски,
II
стадия
образование
зародышевой
полоски.
Продолжается
дифференцировка туловищных миотомов. Стадия заканчивается отделением
хвостовой почки от желтка.
III стадия - неоформившегося эмбриона. Начинается от момента обособления
хвоста и продолжается до охвата эмбрионом всего желтка.
IV стадия - оформившегося эмбриона. Начинаются пульсация сердца и
подергивание эмбриона. Длится от момента охвата эмбрионом всего желтка
до выхода его из икринки. На этой стадии у эмбрионов многих рыб глаза
пигментированы.
Однако не все авторы вкладывают в термины "стадия", "этап" одинаковое
содержание, что затрудняет сравнение данных о развитии рыб. К тому же у
разных рыб наблюдается разное количество этапов развития, причем
содержание их также различно. У щуки, например, три личиночных этапа
развития, у литофилов - четыре, у фитофилов - шесть.
Знание этапов развития рыб необходимо для совершенствования биотехники
разведения и перевозки икры и личинок, понимания причин колебаний
численности популяций.
В качестве примера приведем описание развития камчатской пресноводной
микижи Salmo mykiss , выполненное согласно теории этапности развития
(приведены не все стадии).
Эмбриональный период
А. Подпериод собственно эмбриональный. Зародыш в это время называется
эмбрионом.
Этап I. Набухание икринки, появление перивителлинового пространства.
Образование бластодиска.
Этап II. Дробление от двух бластомеров до бластулы
включительно.
Стадии: 2 бластомеров; 16 бластомеров; ранней морулы; поздней
морулы; бластулы.
Этап III. Гаструляция.
Этап IV. Органогенез.
Стадии: Образования глазных пузырей; образования 7 сомитов; образования
глазных бокалов и появления слуховых капсул; образования желточной пробки,
обособления хвостового отдела от желтка.
Этап V. Начало подвижного состояния зародыша.
Этап VI. Начало зародышевого кровообращения.
Стадии: Образования
подкишечно-желточной
системы
кровообращения; печеночно-желточного кровообращения;
запустевания подкишечно-желточной вены. Зародыш готов к
вылуплению.
Б. Подпериод развития зародыша вне оболочки. После вылупления зародыш
продолжает питаться за счет желтка и называется свободным эмбрионом, или
предличинкой.
Этап VII. Вылупление зародыша из оболочки. Длина
вылупившегося эмбриона 11-12 мм.
Этап VIII. Образование подвижного челюстно-жаберного
аппарата.
Стадии: Начала подвижного состояния жаберно-челюстного аппарата;
окончания дифференциации непарных плавников и др. Длина зародыша 13-22
мм.
Личиночный период.
Этап IX. Смешанное питание личинки длиной 24 мм.
Этап X. Переход личинок длиной 25 - 26 мм на полное
экзогенное питание.
Мальковый период. Рыбка приобретает черты взрослого организма и
называется мальком. Длина ее в начале периода около 27 мм.
Задание: Изучить и зарисовать стадии эмбрионального развития трески
(рис. 10).
1.
2.
3.
4.
5.
Вопросы для самоконтроля:
Как различия в размерах икры и содержании в них жира влияет
выживаемость потомства и его качество?
Какие периоды выделяют в жизненном цикле рыб? Дайте их
характеристику.
Каковы стадии эмбрионального развития рыб?
Какова зависимость между температурой воды и продолжительностью
развития икры некоторых видов рыб?
Основные факторы, влияющие на выживаемость эмбрионов.
Работа 7: Определение плодовитости рыб
Цель занятия: изучить основные методы определения плодовитости.
Материал и оборудование: рисунки, несколько экземпляров живых или
фиксированных рыб (3-5), пинцеты, ножницы, мерная лента.
При взятии пробы на плодовитость каждую рыбу необходимо измерить,
взвесить, взять чешую, плавниковый луч или другой объект для определения
возраста. Затем рыбу вскрывают, взвешивают весь яичник и отделяют пробу для
просчета. Навеску берут из передней, средней и задней частей яичника.
Пробу взвешивают на аптекарских весах, помещают в баночку,
снабженную этикеткой и заливают 4 % формалином. В журнале фиксируют
вид рыбы, время и место поимки, орудие лова, стадию зрелости, длины тела (l,
L), массу всей рыбы и икры, массу пробы икры (навески).
Затем путем просчета определяют количество икринок в навеске и во всем
яичнике, а также диаметр икринок. Для определения средних размеров
икринок берут 10 икринок, располагают их по прямой, определяют длину этой
линии и, разделив ее на 10, получают средний диаметр икринок. Можно
определять диаметр икринок с помощью окуляр-микрометра. Так как икра в
воде набухает, необходимо измерять только что изъятые из яичников или
фиксированные в формалине икринки. Если икринки в яичниках овальные
(хамса), то у них измеряют большой и малый диаметр и указывают, например,
что икринки имеют размер 1,9 х 1,2 мм.
Полученные данные заносят в таблицу и вычисляют индивидуальную,
относительную плодовитость и коэффициент зрелости гонад.
Таблица 1.
№
Абсолю ОтноОтношение
тсительная массы
ная
плодояичника
индивид витость, к массе
у
шт.
рыбы,
альная
%
плодови(коэффициен
тость,
т
шт.
зрелости)
У рыб с порционным икрометанием диаметр икринок неодинаков, поэтому
очень сложно подразделить отдельные икринки на число порций, особенно
когда их больше двух-трех.
Во-первых, икра у таких рыб мелкая, диаметр ее от 0,2 - 0,3 мм до 1,0 - 1,5
мм и подсчет приходится производить под лупой. Во-вторых, соответствующей
дифференциацией на группы весьма трудно подтвердить, что, например, у
уклеи происходит 5-6 или у кильки 8-9 выметов, как это следует из наблюдений
за нерестом. Поэтому приходится предполагать, что у таких видов еще в
текущий нерестовый сезон совершается, по-видимому, неоднократный переход
ооцитов юношеского периода (безжелтковых) в созревающие.
Отсюда следует, что притом состоянии изученности порционного
икрометания, которое имеется на сегодняшний день, можно определить
плодовитость лишь у тех видов, у которых наблюдается не более двух-трех
порций.
При определении плодовитости видов рыб, выметывающих две-три порции
икры, до начала первого нереста берется определенная навеска, как и у рыб с
единовременным икрометанием. Икру измеряют при помощи окулярмикрометра, учитывая только созревающие (желтковые) ооциты. Затем строятся
вариационный ряд и график, и по числу вершин определяется количество
порций икры.
L, l
м м
рыбы
м м
Возрас Масс Масса Навеск Число
т
а
яичник а,
яиц в
рыб а,
г
1г
ы,
г
г
Далее вычисляется средний диаметр и процент икры каждой порции. Зная
общий вес яичников и количество икринок каждой порции в навеске,
вычисляют абсолютную индивидуальную плодовитость рыб с порционным
икрометанием.
Задание: Определить плодовитость предложенного вида рыбы и занести
результаты в таблицу 1
Контрольные вопросы к теме:
1. Для чего необходимо знать и определять плодовитость рыб?
2. Какие виды плодовитости существуют?
3. Как определяется индивидуальная плодовитость рыб?
4. По каким параметрам определяется относительная плодовитость рыб?
5. Как определяется плодовитость у порционно нерестующих рыб?
6. От каких параметров зависит определение видовой и популяционной
плодовитости рыб?
7. Расскажите о графическом и объемном методах.
Работа 8: Определение жирности и упитанности рыб.
Цель занятия: Ознакомить студентов с методами определения
жирности и упитанности рыб.
Материал и оборудование: рыба живая или фиксированная, весы, пинцет,
ножницы, скальпель.
Жирность и упитанность являются показателями биологического состояния
и условий откорма рыб, и находится в зависимости от возраста, пола, условий
нагула, степени зрелости гонад рыб, времени года. Жир характеризует
процентное содержание жира в теле.
Шкала жирности (по Прозоровской):
Балл 0 - Жира на кишечнике нет. Иногда кишечник покрыт тонкой белой
соединительной пленкой. Между петлями кишечника видны
нитевидные образования этой пленки.
Балл 1 - Тонкая шнуровидная полоска жира расположена между вторым и
третьим отделами кишечника. Иногда по верхнему краю второго
отдела проходит очень узкая прерывающаяся полоска жира.
Балл 2 - Неширокая полоска довольно плотного жира между вторым и третьим
отделами кишечника. По верхнему краю второго отдела идет узкая
непрерывная полоска жира. По нижнему краю третьего отдела кое-где
виден жир отдельными небольшими участками.
Балл 3 - Широкая полоса жира в середине между вторым и третьим отделами
кишечника. В петле между вторым и третьим отделами эта полоска
расширяется. По верхнему краю второго отдела и нижнему краю
третьего идут широкие жировые полосы. У первого изгиба кишечника,
если считать от головного конца, имеется жировой вырост в виде
треугольника. Анальный конец кишечника в подавляющем
большинстве случаев залит тонким слоем жира.
Балл 4 - Кишечник почти целиком покрыт жиром за исключением маленьких
просветов, где видна кишка. Эти просветы обычно бывают на второй
петле и на третьем отделе кишечника; иногда можно встретить такие
просветы и на втором отделе. Жировые выросты на обеих петлях очень
мощные.
Балл 5 - Весь кишечник залит толстым слоем жира. Нет никаких просветов.
Мощные жировые выросты на обеих петлях.
Определение упитанности рыбы
Упитанность рыбы обычно выражают коэффициентом упитанности по
Фультону:
К= р / l3,
где: К- коэффициент упитанности,
р- масса рыбы,
l- ее длина до конца чешуйного покрова.
С помощью этого коэффициента можно выявлять сезонные изменения
упитанности, связанные с полом и возрастом и т.п. Для устранения влияния
массы гонад и пищи, содержащейся в кишечнике вычисляется коэффициент
упитанности по Кларку, используя массу рыбы без внутренностей, однако
при этом удаляется и внутренний жир, количество которого в значительной
мере связано с упитанностью.
Задание: Определить жирность различных видов рыб. Вычислить по
формуле коэффициент упитанности.
Вопросы для самоконтроля:
1. Что такое жирность рыбы?
2. Для чего в организме рыб служат жиры с преобладанием предельных
кислот?
3. Какие способы используют для определения жирности?
4. Что такое коэффициент жирности?
5. Охарактеризуйте шкалу жирности по Прозоровской?
6. На какие группы по содержанию жира подразделяются рыбы?
7. От чего зависит коэффициент жирности?
8. Как определяется упитанность по Фультону?
9. Какие существуют модификации формулы Фультона?
10. Какой из методов определения упитанности позволяет получить более
объективную характеристику упитанности рыб?