Диссертация - ФГБОУ ВО «Южно-Уральский государственный

МИНИСТЕРСТВО СЕЛЬСКОГО ХОЗЯЙСТВА РОССИЙСКОЙ ФЕДЕРАЦИИ
ФЕДЕРАЛЬНОЕ ГОСУДАРСТВЕННОЕ БЮДЖЕТНОЕ ОБРАЗОВАТЕЛЬНОЕ
УЧРЕЖДЕНИЕ ВЫСШЕГО ПРОФЕССИОНАЛЬНОГО ОБРАЗОВАНИЯ
«КАЗАНСКАЯ ГОСУДАРСТВЕННАЯ АКАДЕМИЯ ВЕТЕРИНАРНОЙ
МЕДИЦИНЫ ИМЕНИ Н.Э. БАУМАНА»
На правах рукописи
Шарафутдинов Динар Альфисович
РАЗРАБОТКА ЛЕЧЕБНЫХ МЕРОПРИЯТИЙ
ПРИ КОНЪЮНКТИВО-КЕРАТИТАХ ЖИВОТНЫХ
06.02.04 – ветеринарная хирургия
диссертация на соискание ученой степени кандидата
ветеринарных наук
Научный руководитель:
доктор биологических наук,
профессор Ф.А. Сунагатуллин
Казань – 2014
2
ОГЛАВЛЕНИЕ
Введение…..……………………………………………………………..…..………..4
1. Обзор литературы
1.1. Распространение и этиология конъюнктиво-кератитов у животных……….10
1.2. Клинические признаки и течение конъюнктиво-кератитов у животных…...20
1.3 Дифференциальная диагностика массовых конъюнктивокератитов крупного рогатого скота …………...…………………………………..23
1.4. Лечение и профилактика конъюнктиво-кератитов…………………..………27
2. Собственные исследования
2.1.Материалы и методы исследований…………...………….………..………….44
2.2.Результаты исследований.………………………………………………..…….58
2.2.1. Гельминтологические исследования смывов из
конъюнктивального мешка крупного рогатого скота……………….……………58
2.2.2. Микробиологические исследования содержимого
конъюнктивального мешка у подопытных животных……………........................59
2.2.3. Разработка препарата Конкерит. Изучение его действия
на внутренние органы ………………………………………..…………………….60
2.2.4. Определение антимикробной активности и
бактериостатического влияния различных растворов Конкерита………...……..61
2.2.5. Определение местного раздражающего действия
различных растворов Конкерита………...…………………….…………………..62
2.2.6. Лечение кроликов с экспериментальным
конъюнктиво-кератитом…………………….……………………………………...63
2.2.6.1. Исследования кроликов контрольной группы (1 группа)……………….63
2.2.6.2. Лечение кроликов опытных групп,
больных конъюнктиво-кератитом…………………………………………………64
2.2.7. Лечение домашних плотоядных (кошек и собак),
поступивших в лечебно-консультативный центр КГАВМ………………………78
3
2.2.8. Сравнительная эффективность лечения
конъюнктиво-кератита крупного рогатого скота, возникшего на
фоне телязиоза, Конкеритом и мазью Мизофен…………………………….…….91
2.2.9. Сравнительная эффективность лечения конъюнктиво-кератита
крупного рогатого скота, возникшего на фоне телязиоза,
Конкеритом и 1%-ной тетрациклиновой мазью………………………….……..101
2.2.10. Экономическая эффективность различных способов
лечения конъюнктиво-кератита крупного рогатого скота, возникшего
на фоне телязиоза..…...………………………………………………………...….123
3. Анализ и обсуждение результатов исследований…………………………….127
Выводы.....………………………………………………………………………….136
Практические предложения…………………………..…………………………...138
Список сокращений и условных обозначений……………………..…………….139
Список использованной литературы……………….………….…………………140
Список иллюстрированного материала…………….…………………………….160
Приложения…….…………………………………………………………………..164
4
Введение
Актуальность темы. Заболевания глаз являются одной из причин, резко
тормозящих
развитие
животноводства.
Конъюнктивиты
и
кератиты
у
сельскохозяйственных животных встречаются довольно часто, это объясняется
анатомо-физиологической особенностью оболочек и тесной анатомической
связью как между собой, так и с другими оболочками глаза. Конъюнктива и
роговица первыми подвергаются воздействию вредных факторов внешней
среды, и в
результате чего развиваются воспалительные процессы в виде
кератитов и конъюнктивитов, но чаще процесс захватывает обе оболочки вместе
и протекает в виде конъюнктиво-кератита. Эти заболевания называют
массовыми конъюнктиво-кератитами из-за поражения большого количества
животных,
что
чаще
всего
наблюдается
у крупного
рогатого
скота.
Конъюнктиво-кератит наносит серьезный экономический ущерб вследствие
высокой частоты проявления и широкой распространенности как в нашей
стране, так и за рубежом (А.Ф. Русинов, 1965; М.В. Плахотин и др., 1966; В.Н.
Авроров, 1966; К.А. Фомин, 1968; В.А. Черванев, 1995; Е.П. Копенкин, 2000;
Д.А. Шарафутдинов, 2013; Д.А. Шарафутдинов, Ф.А. Сунагатуллин, 2013; E.M.
Baldwin, 1945; J.B. Henson, L.B. Grumles, 1960; B.S. Cooper, 1960; J.A. Smith,
L.W. George, 1995 и др.). Потери от конъюнктиво-кератита складываются из
замедления роста и развития молодняка, снижения продуктивности, потери
живой массы. В среднем 25-30% переболевших животных остаются слепыми,
столько же теряют зрение на 50% и более (К.А. Фомин, 1968).
В ветеринарной офтальмологии вопросам лечения конъюнктиво-кератитов
посвящено большое количество работ и к настоящему времени предложено
множество методов и средств терапии различного характера (этиотропная,
патогенетическая, симптоматическая и т.д.). Данные средства и способы
лечения животных при данной патологии, в связи с широким распространением
резистентной к антибиотикам и другим бактерицидным препаратам патогенной
и условно-патогенной микрофлоры, в настоящее время полностью не
удовлетворяют
потребностям
производства.
Ввиду
этого
разработка
и
5
внедрение новых препаратов и методов терапии больных животных крайне
необходима.
В результате экспериментально клинических исследований, проведенных
коллективом кафедры ветеринарной хирургии Казанской государственной
академии ветеринарной медицины имени Н.Э. Баумана был изобретен
эффективный способ лечения конъюнктиво-кератита, а именно препарат
Конкерит,
обладающий
широким
спектром
местно-анестезирующего,
противомикробного, противовоспалительного действия.
Степень разработанности темы. В ветеринарной офтальмологии
известно большое количество работ и предложено множество средств и
методов терапии болезней глаз различного характера: этиотропная,
патогенетическая, симптоматическая и т.д. (К. Эльце и др., 1977; Е.П.
Копенкин, 2000; А.А. Габбасов, 2000). Используемые средства и способы
лечения животных при конъюнктиво-кератитах в связи с широким
распространением резистентной к антибиотикам и другим бактерицидным
препаратам патогенной и условно-патогенной микрофлоры недостаточно
эффективны, трудозатратны и поэтому не соответствуют потребностям
животноводства.
Препарат Конкерит с составными частями: новокаином, цефазолином и
дексаметазоном – до настоящего момента не был изучен и аналогичные
растворы при лечении конъюнктиво-кератитов не предлагались.
Цель и задачи исследования. Целью нашего исследования было
изучение этиологии и разработка лечебных мероприятий при конъюнктивокератитах животных.
В связи с этим перед нами были поставлены следующие задачи:
1. Изучить этиологию конъюнктиво-кератита в хозяйствах Республики
Татарстан.
2. Разработать препарат для лечения животных при конъюнктиво-кератите.
3. Определить антимикробную и бактериостатическую активность Конкерита.
6
4. Определить местно-раздражающее действие Конкерита.
5. Провести сравнительную оценку лечения конъюнктиво-кератитов кроликов и
домашних плотоядных.
6. Провести сравнительную оценку методов лечения конъюнктиво-кератита
крупного рогатого скота.
7. Рассчитать экономическую эффективность применения Конкерита при
лечении конъюнктиво-кератита крупного рогатого скота, возникшего на фоне
телязиоза.
Научная новизна. На экспериментальном и клиническом материале
впервые показана высокая эффективность как отдельного препарата Конкерит
при лечении конъюнктиво-кератита крупного рогатого скота, возникшего на
фоне телязиоза, так и в сочетании его с новокаиновой блокадой при лечении
поверхностного диффузного катарального кератита и острого конъюнктивита у
домашних плотоядных (кошек и собак).
Дана
клинико-морфологическая,
биохимическая,
иммунологическая
характеристика проявления и течения конъюнктиво-кератита крупного рогатого
скота, возникшего на фоне телязиоза, а также экспериментальной модели
воспалительного процесса конъюнктивы и роговицы кроликов.
На препарат и способ комплексного лечения животных с поражением
слизистых и кожных покровов различной этиологии оформлен патент в
госкомитет по изобретениям и получена приоритетная справка № 2012155913.
Теоретическая и практическая значимость работы. Разработан и
внедрен в практику животноводства новый эффективный и экономически
выгодный препарат Конкерит, обладающий широким спектром местноанестезирующего, противомикробного, противовоспалительного действия при
лечении конъюнктиво-кератитов животных. Результаты исследований внедрены
в отдельных хозяйствах Сармановского и Кайбицкого районов Республики
Татарстан.
Основные научные положения и выводы используются в учебном
процессе и научно-исследовательской работе на кафедре ветеринарной
7
хирургии ФГБОУ ВПО «Казанская государственная академия ветеринарной
медицины имени Н.Э. Баумана»; на кафедре ветеринарной хирургии,
акушерства и патоморфологии ФГБОУ ВПО «Уральская государственная
академия ветеринарной медицины»; на кафедре незаразных болезней ФГБОУ
ВПО «Государственный аграрный университет Северного Зауралья»; на
кафедре хирургии, акушерства и заразных болезней ФГБОУ ВПО «Вятская
Государственная сельскохозяйственная академия».
Соответствие диссертации паспорту научной специальности.
Научные положения, изложенные в диссертации, соответствуют паспорту
специальности 06.02.04 – ветеринарная хирургия по следующим пунктам:
2.
Изучение
общих
и
специфических
признаков
хирургических
заболеваний (семиотика); 5. Выяснение внутренних условий, тормозящих
и стимулирующих выздоровление; 7. Разработка методов и обобщение
опыта профилактики и лечения хирургических болезней; 10. Изучение
клинических, гематологических, морфологических, биохимических и
физиологических
показателей,
объективно
характеризующих
общее
состояние организма и обмена веществ при разных видах патологии.
Методология и методы исследования. Для решения поставленных задач
были проведены экспериментально-клинические и лабораторные исследования.
Предметом исследований явились кролики и крысы, принадлежащие кафедре
ветеринарной хирургии ФГБОУ ВПО «КГАВМ им. Н.Э. Баумана», а также
кошки и собаки, поступившие в лечебно-консультативный центр КГАВМ.
Результаты экспериментальных исследований были апробированы на крупном
рогатом скоте, принадлежащем животноводческим хозяйствам Сармановского и
Кайбицкого районов Республики Татарстан.
Исследования
проведены
с
использованием
гистологических,
биохимических, гематологических и иммунологических методов, хорошо
апробированных научной практикой в работах наших и других авторов.
8
Положения, выносимые на защиту:
1. Антимикробное, бактериостатическое и противовоспалительное действие
препарата Конкерит.
2. Эффективность препарата Конкерит и его различных растворов при
лечении экспериментальных конъюнктиво-кератитов кроликов.
3. Терапевтическая эффективность препарата Конкерита и новокаиновой
блокады при лечении конъюнктиво-кератита домашних плотоядных
(кошек и собак).
4. Терапевтическая эффективность препарата Конкерит при лечении
конъюнктиво-кератита крупного рогатого скота, возникшего на фоне
телязиоза.
Степень достоверности и апробация результатов. Исследования
проводились
на
достаточном
по
численности
материале
согласно
утвержденному плану исследований.
На
основании
результатов
исследований
разработано
временное
наставление по применению препарата Конкерит, которое утверждено 17
сентября 2013 г. Главным Управлением Ветеринарии при кабинете министров
РТ.
Основные материалы диссертационной работы доложены, обсуждены и
одобрены на Всероссийской научно-практической конференции «Актуальные
проблемы научного и кадрового обеспечения инновационного развития АПК»
(Казань, 2012 г.), на Международной научно-практической конференции
«Теоретические
и
практические
вопросы
развития
научной
мысли
в
современном мире» (Уфа, февраль, 2013 г.), на Международной научнопрактической конференции «Теоретические и практические вопросы развития
научной мысли в современном мире» (Уфа, март, 2013 г.), на Международной
научно-практической конференции «Интеграция науки и производства –
стратегия устойчивого развития АПК России в ВТО» (Волгоград, 2013 г.), на
Международной научно-практической конференции «Актуальные проблемы
агропромышленного производства» (Курск, 2013 г.).
9
По материалам диссертации опубликовано 8 научных работ, в том числе 4
– в рецензируемых изданиях, рекомендованных ВАК РФ, в которых отражены
основные положения и выводы диссертации.
Объем и структура работы. Диссертация изложена на 178 страницах
печатного текста, состоит из введения, обзора литературы, собственных
исследований, анализа и обсуждения результатов исследований, выводов,
практических предложений, списка сокращений и условных обозначений,
списка использованной литературы, список иллюстрированного материала и
приложений. Работа содержит 9 таблиц и 57 рисунков. Список литературы
включает 196 источников, в том числе 53 зарубежных автора.
10
1. Обзор литературы
1.1. Распространение и этиология конъюнктиво-кератитов
у животных
Воспаление конъюнктивы и роговицы глаз называют конъюнктивокератитом. Конъюнктива и роговица поражаются одновременно, и болезнь
проявляется в виде различных форм и тяжести воспаления.
Конъюнктиво-кератит у животных встречается часто и иногда принимает
массовый характер, поражая до 50-90% поголовья крупного рогатого скота
(Н.М. Богданов, 1927; М.В. Плахотин и др., 1966; В.А. Черванев, 1995, 1998;
Е.П. Копенкин, 2000; А.А. Габбасов, 2000; С.М. Воробьев, 2001; И.З. Зарипов,
2002; С.Э. Аветистов и др., 2008).
Конъюнктиво-кератиты
подразделяются
на
инфекционный
(риккетсиозный, диплобациллярный, хламидиозный, герпесвирусный и др.),
инвазионный (телязиоз), аллергические и А-гиповитаминозные.
Инфекционный конъюнктиво-кератит крупного рогатого скота наблюдали
и описывали в нашей стране В. Бенкевич (1900), А. Башкирцев (1901), М.С.
Малыгин (1938). К. Выржиковский в 1893 году описал это заболевание под
названием «повальная болезнь глаз у лошадей и крупного рогатого скота», а А.
Нифонтов в 1933 году как «инфекционный кератит крупного рогатого скота»
(К.А. Фомин,1968).
В
зарубежной
литературе
инфекционный
конъюнктиво-кератит
наблюдали и изучали во многих странах мира (J.D. Coles, 1936; E.M. Baldwin,
1945; J.B. Henson и L.B. Grumbles, 1960; B.S. Cooper, 1960; J. Dimic, 1960; J.A.
Sykes, 1964; J. Kita, 1975).
Долгие
годы
ученые
исследовали
этиологию
заболевания.
Этиологический фактор играл большую роль в определении патологии болезни
глаз.
По
мнению
исследователей
конъюнктиво-кератит
широко
распространенная и инфекционная офтальмопатия. Специфический возбудитель
11
инфекционного конъюнктиво-кератита полностью не определен (Е.П. Копенкин,
2000; Е.П. Щербакова, 2011,2012).
При исследовании секрета конъюнктивального мешка у больных
животных F. Jones, R. Little (1923); А.М. Растегаева, А.П. Прокофьев (1947); В.Г.
Андриасян (1989); Е.П. Копенкин (1970, 2000); M.A. Salisbury, R.L. Kaswan, J.
Brawn (1995); Е.П. Щербакова (2011, 2012) и др. находили различные микробы:
стафилококки,
стрептококки,
вульгарный
протей,
кишечная
палочка,
диплококки, аэробные спорообразующие бактерии и т.д.
J.A. Allen (1919) доказал возможность воспроизведения заболевания путем
введения тампона, пропитанного экссудатом из глаз и слезами больных
животных, в конъюнктивальный мешок здоровых. А.В. Макашев (1953) считал,
что этиологическая роль принадлежит не одному, а нескольким возбудителям.
Н.И. Крастин (1948) отметил, что “…массовые кератиты бактериальной
этиологии, как самостоятельное заболевание крупного рогатого скота в
практике не встречаются”. Первопричину массового конъюнктиво-кератита он
приписывал действию гельминтов-телязий, а микроорганизмы, находимые при
исследовании секрета конъюнктивы, по его мнению, играют секундарную роль
и являются фактором, осложняющим воспалительный процесс.
Большинство авторов за рубежом (M.N. Brawn и др., 1998; H. Bullan и др.,
1972; A. Furowicz, 1976; M. Oka, 1976; R.M. Dodt, 1977; D.H. Slatter и др., 1982;
G.W. Pugh и др., 1986; N. Vandergaast и др., 1989), придерживаясь
инфекционной
этиологии
массовых
конъюнктиво-кератитов,
отводят
главенствующую роль диплобацилле Моракса-Аксенфельда. F.S. Jones и R.B.
Little в 1924 году из конъюнктивального секрета больного конъюнктивокератитом крупного рогатого скота выделили диплобациллу Moraxella bovis.
Авторам удалось вызвать конъюнктивит, перенеся этот возбудитель в
конъюнктивальный мешок здорового теленка. Также из носовых истечений был
выделен этот возбудитель. E.M. Baidwin (1945) при бактериологическом
исследовании глаз здоровых животных M. bovis не обнаруживал. M. bovis - это
короткая с закругленными концами неподвижная грамотрицательная палочка
12
длиной 2 и шириной 0,4-0,5 мк. В окрашенном мазке из инфицированных глаз
располагается одиночно или короткими цепочками. Палочка культивируется на
кровяном агаре, где растет в виде мелких полупрозрачных колоний (B.S. Cooper,
1960; J.B. Henson и др., 1960). Две формы микроорганизмов: гемолитическая и
негемолитическая были выделены при развитии возбудителя на культуральной
среде (G.W. Pugh, D.E. Hughes, 1972). Исследователи экспериментальным путем
капельного заражения здорового крупного рогатого скота в конъюнктивальный
мешок небольшим количеством жизнеспособной чистой культуры Moraxella
bovis воспроизводили заболевание (E.M. Baldwin, 1945; B.S. Cooper, 1960; J.B.
Henson, L.C. Grumbles, 1960). При использовании этого метода у зараженных
животных развивались поражения, типичные для инфекционного конъюнктивокератита (J.B. Henson, L.C. Grumbles, 1960). Но, по результатам других опытов
(H. Farley, 1950), у крупного рогатого скота, зараженного в конъюнктивальный
мешок жизнеспособным инокулятом, при использовании нескольких штаммов
чистой культуры M. bovis, инфекция не развивалась. При проведении
эксперимента на развитие диплобациллярного конъюнктиво-кератита было
доказано положительное действие ультрафиолетовых лучей (D.E. Hughes и др.,
1965, 1968; G.W. Pugh, W. George, D.E. Hughes, 1968). Интенсивность
естественного ультрафиолетового излучения и число зафиксированных случаев
болезни в стаде крупного рогатого скота показало положительную корреляцию,
что было доказано исследованиями заболевания, проведенными в полевых
условиях в течение пяти лет (D.E. Hughes, G.W. Pugh, 1970). По вышесказанным
данным можно сделать вывод: совместное патологическое воздействие
солнечного ультрафиолетового излучения и бактерии M. bovis является
причиной инфекционного конъюнктиво-кератита крупного рогатого скота
бактериальной этиологии. По наблюдениям G.W. Pugh и др. (1984; 1986)
основным переносчиком диплобациллярного конъюнктиво-кератита крупного
рогатого скота являются мухи – Musca autumnalis. Хотя природные пути и
способы передачи этого заболевания долго оставались спорными.
В то же
13
время был указан контактный путь передачи инфекции (K.E. Kopecky и др.,
1986).
Из конъюнктивального мешка бактерии, экскреты и экссудат вымываются
и через слезно-носовой канал попадают в носовые полости. При сильном
дыхании и кашле инфицированные капельки оказываются в воздухе и на глазах
других животных. Причиной переноса инфекции также являются почесывание и
бодание больных и восприимчивых животных. По словам А.Ф. Русинова (1987),
инфекционный конъюнктиво-кератит развивается лишь в тех случаях, когда в
силу неблагоприятных факторов (облучение ультрафиолетовыми лучами, сухая
и жаркая погода, ветер, пыль и т.д.) снижаются резистентность конъюнктивы и
роговицы и создаются условия для размножения M. bovis. Наиболее часто это
происходит в весенне-осенний период. Он также считает, что Moraxella bovis
играет ведущую роль в возникновении болезни и вызывает секундарную
инфекцию.
Условно-патогенная
микрофлора,
содержащаяся
в
конъюнктивальном мешке глаза, осложняет инфекционный процесс и вызывает
гнойное воспаление.
Х.З. Гафаров и соавторы (2000) в хозяйствах Ростовской области и
Республики Татарстан диагностировали массовое заболевание молодняка и
взрослых животных и выделили возбудитель (M. bovis). По мнению авторов,
инфекция была завезена из Венгрии в 1991 году при завозе коров голштинофризской породы.
Инфекционный конъюнктиво-кератит развивается у крупного рогатого
скота и лошадей при лептоспирозе (Г.В. Дегтяров, К.Ф. Петрова,Ф.Л.
Гаджибалиев, 1965). Исследования М.В. Плахотина, В.И. Захарова и Р.С.
Алахвердиева (1966) лептоспирозную этиологию конъюнктиво-кератита не
установили. Лептоспироз при исследованиях секретов, соскобов с конъюнктивы
и роговицы, взятых от большого количества больных животных, а также путем
реакции
микроагглютинации,
не
обнаруживался.
По
мнению
авторов,
допускается возможность совпадения лептоспирозного поражения и массового
конъюнктиво-кератита другого происхождения. Не отрицается факт тяжелого
14
течения лептоспироза у крупного рогатого скота и лошадей, сопровождаемого
конъюнктивитом (Ю.А. Малахов, 1992). Ю.А. Малаховым (1992) описывается
как одно из осложнений лептоспироза у лошадей и периодическая офтальмия
(иридоциклит, периодическое воспаление глаз).
С целью поиска небактериального возбудителя конъюнктиво-кератита
были проведены исследования цитоплазмы эпителиальных клеток конъюнктивы
и роговицы. В которых обнаруживали включения различной формы. Было
установлено, что риккетсии могут быть возбудителями конъюнктиво-кератита.
В нашей стране риккетсиозный конъюнктиво-кератит был описан М.В. Рево
(1939); Г.Ф. Паниным (1953); В.Н. Барзенковым (1963); В.П. Громовым, И.И.
Вершининым Н.А. и др. (1963); И.А. Фарзалиевым и др. (1964); А.Ф. Русиновым
(1965); М.В. Плахотиным и др. (1977); В.Н. Авроровым (1973); Р.С.
Алахвердиевым (1978); В.А. Черваневым (1998), С.М. Воробьевым (2001).
По исследованиям М.В. Рево и Г.Ф. Панина (К.А. Фомин, 1968) Ricolesia
bovis (Ricketsiae conjunctivae) представляет собой мелкий, полиморфный
микроорганизм размером от 0,5 до 1 мкм кокко-, диско- и палочковидных форм
(кокковидной – величиной 0,3-0,6 мк, мелкой палочковидной - 0,7 -0,8 мк и
крупной
палочковидной
-
0,8-1,2
мк).
Крупные
формы
риккетсии
обнаруживаются чаще в ранней стадии, мелкие – позднее. Риккетсии проходят
через фильтр, размеры пор которых составляют 0,6-0,8 мк (Г.Ф. Панин, 1953).
Некоторым авторам удавалось экспериментально воспроизвести клинику
конъюнктиво-кератита у молодняка крупного рогатого скота отделяемым
конъюнктивального мешка больных, а также выделенной культурой риккетсий
(культивирующихся в желточном мешке развивающихся (6-7-дневных) куриных
эмбрионов) (И.А. Фарзалиев, 1964; М.В. Плахотин и др., 1971). П.Ф.
Здродовский и Е.М. Голиневич (1972) воспроизводили глазную форму
риккетсиозной инфекции у кроликов и морских свинок путем введения
соответствующей суспензии в переднюю камеру глаза с любым видом
риккетсий.
15
Все
виды
животных в
естественных
условиях
восприимчивы
к
риккетсиозному конъюнктиво-кератиту (Г.Ф. Панин, 1953; Р.С. Аллахвердиев,
Г.С. Ахаев, 1973; А.В. Ляушкин. М.И. Рыков, И.М. Крючков, 1973). По словам
К.А. Фомина (1968), в хозяйствах, имеющих животных разных видов,
риккетсиозный
конъюнктиво-кератит
распространяется
у
одного
вида
животных. Например, козы, выпасающиеся вместе с овцами с поражением глаз,
остаются здоровыми. При массовом поражении свиней конъюнктиво-кератитом,
заболевание не передается крупному рогатому скоту, и наоборот. По мнению
автора, эта особенность объясняется специфичностью возбудителя для каждого
вида животных.
Риккетсиозный
конъюнктиво-кератит
поражает
молодняк
крупного
рогатого скота 3-месячного и более старшего возраста. Реже болеют взрослые
животные (М.В. Плахотин, Р.С. Алахвердиев, Е.П. Копенкин, 1971). Основным
источником инфекции, по исследованиям А.Ф. Русинова (1967), являются
больные животные. Так же как и Moraxella bovis, возбудитель риккетсиозного
конъюнктиво-кератита выделяется с конъюнктивальным секретом и носовой
слизью.
Животные
заражаются
воздушно-капельным
путем
и
при
непосредственном контакте. Проследив определенную связь между сезонным
колебанием численности мух и динамикой заболевания скота риккетсиозным
конъюнктиво-кератитом, а также получив успешные результаты заражения
здоровых животных суспензией мух, многие авторы (В.С. Федосеев, Ж.М.
Исимбеков, Р.Д. Даутбаев, 1973) пришли к выводу, что при соответствующих
условиях синантропные мухи (Musca domestica) могут оказаться механическими
переносчиками риккетсий.
По словам М.В. Плахотина, Р.С. Алахвердиева, Е.П. Копенкина (1971),
механические и химические раздражения слизистой оболочки глаза (пыль, сухие
пыльные корма, повышенное содержание в воздухе аммиака и других газов,
повышенная солнечная радиация) и другие факторы, снижающие устойчивость
организма, могут способствовать появлению у крупного рогатого скота
риккетсиозного конъюнктиво-кератита. Авторами было установлено, при
16
риккетсиозе причиной секундарной инфекции, осложняющей течение данной
болезни, является банальная микрофлора наружного отдела глаза животных.
Инфекционный ринотрахеит может также вызывать острый конъюнктивит
и кератит (Е.П. Копенкин, 1988). Возбудитель этого заболевания относится к
группе
герпес-вирусов.
заболеванием
чаще
В
условиях
поражается
концентрации большого поголовья
крупный
рогатый
скот.
В
заражении
значительного количества животных этот фактор имеет важное значение. Вирус
паразитирует на слизистых оболочках дыхательных путей, половых органов и
глаз. Конъюнктивит является признаком заражения вирусом ринотрахеита,
кроме респираторного синдрома и поражения половых путей. Конъюнктивит
иногда бывает единственным признаком болезни (D.E. Hughes и др., 1964; В.
Анспай, 1973). Конъюнктивит может поражать в одном стаде молодняка до
годовалого возраста 60-70% животных. Несмотря на то, что вирус выделяется из
носовых и половых секретов, признаки респираторной инфекции при этом
отсутствуют (F.R. Abinati, G.J. Plumer, 1961).
Как отмечает В. Анспай (1973), при инфекционном ринотрахеите
образование слизисто-гнойного экссудата и вовлечение в патологический
процесс роговицы вызывается вторичной бактериальной инфекцией. Симптомы
поражения глаз, вызываемые Moraxella bovis, похожи на те, которые возникают
при инфекционном конъюнктиво-кератите. Однако другие исследователи
обнаружили: небольшое помутнение роговицы иногда предшествует вирусному
конъюнктивиту (G.W. Pugh, 1982; G.W. Pugh et al., 1982, 1982). Это доказывает
цитопатогенное действие вируса Herpes bovis на эпителий роговицы.
Конъюнктиво-кератит, вызываемый хламидиями, часто встречается у
животных. Возбудитель болезни – Chlamidia psittaсi. Обычно болеет крупный и
мелкий рогатый скот. Хламидии обнаруживаются в отделяемом слизистых
оболочек глаза, носа, слезах больных и переболевших животных. Это
облигатные внутриклеточные паразиты способные образовывать включения в
клетках. Хламидии похожи на риккетсии: обе имеют оболочку, содержат ДНК и
РНК, грамотрицательны, чувствительны к сульфаниламидам, одним и тем же
17
антибиотикам и размножаются простым делением. Но между ними есть и
различия. При размножении хламидий, как промежуточная форма, появляются
инициальные тельца, а потом и элементарные и ретикулярные тельца. Но
инфекционными являются только элементарные тельца, а у риккетсий все
формы инфекционны.
Животные всех возрастов восприимчивы к хламидиозу, которая при
облизывании животными друг друга передается контактным путем, также через
предметы ухода обслуживающего персонала, при чихании, кашле, разносится
мухами и, в основном, имеет местный характер. Хламидиоз первично поражает
органы дыхания, слизистую оболочку глаза и желудочно-кишечный тракт.
Хламидийная инфекция в чистом виде существует только в начальной стадии
болезни и, воздействуя на клетки слизистых оболочек глаза, хламидии создают
благоприятные условия для развития другой микрофлоры (И.Л. Обухов, 2000).
Результатом этого является смешанная или вторичная инфекция, протекающая
значительно тяжелее, чем “чистый” хламидиоз. По словам некоторых авторов,
при бактериологическом исследовании глаз животных, больных конъюнктивокератитом, также выявляется Chlamidia psittaсi и Moraxella bovis (M. Travnicek,
T. Dravecky, J. Balascak, 1982).
Инвазионный конъюнктиво-кератит. Это массовое заболевание, когда
поражается главным образом конъюнктива и роговица животных. Инвазионным
конъюнктиво-кератитом чаще заболевает крупный рогатый скот. Во время
пастбищного периода зараженность животных достигает 60-80%. Это связано с
активным летом мух-коровниц (Н.Г. Гусейнов, 2010).
Возбудителями являются нематоды – телязии, которые относятся к
семейству Thelaziidae подотряда Spirurata (В.Е. Соколов, 1987). Заболевание
называется телязиозом глаз. Телязии специфичны для каждого вида животных.
Наиболее подробно описан биологический цикл развития у трех видов телязий,
встречающихся в основном у крупного рогатого скота: Thelazia rhodesi, Thelazia
gulosa, Thelazia skrjabini, которые отличаются морфологическими признаками и
18
местом локализации (Н.И. Крастин, 1948, 1957; А.Я. Сапунов, А.Н. Турченко,
О.Б. Петрик, 2010).
Наиболее распространенная и патогенная форма – Th.rhodesi. Она бывает
желто-соломенного цвета. Длина нематоды составляет 11-20 мм. Кутикула
гельминта поперечно исчерчена и как бы зазубрена. Личинки имеют длину тела
0,2-0,25 мм. Головной конец у них обычно утолщен. На хвостовом конце
имеется ланцетовидный чехлик. У мертвых личинок серповидно изогнутая
форма. Обычно паразит локализуется в конъюнктивальном мешке, чаще за
третьим веком.
Второй вид – Th.gulosa – имеет большую ротовую капсулу в форме чаши.
Длина самца составляет 5,3-9,1 мм, самки 5-16 мм. Локализуется в выводных
протоках слезной железы (верхний свод конъюнктивального мешка). Личинки
Th.gulosa имеют длину тела 0,25-0,26 мм. Характерен скошенный головной
конец, не имеющий утолщений. Средняя часть тела не утолщена. В хвостовом
конце имеется шаровидный чехлик. Обычно мертвые личинки прямые.
Третий вид – Th.skrjabini – желто-соломенного цвета и имеет закругленные
концы. Кутикула нежно исчерчена в поперечном направлении. Рот без губ.
Очень маленькая ротовая капсула, которая постепенно расширяется к
основанию. Нематода имеет два латеральных и четыре субмедиальных
головных сосочка. Тело самца составляет в длину от 5 до 9 мм. Имеются две
спикулы. Длина самки обычно 11-19 мм. На хвостовом конце имеются две пары
сосочков. В длину личинки Th.skrjabini могут достичь 0,23-0,24 мм. Характерен
утолщенный головной конец. На хвостовом конце имеется шаровидный чехлик.
Мертвые личинки бывают прямые. Часто паразитов этого вида находят в
протоках слезных желез и реже в конъюнктивальном мешке.
В 1948 году Н.И. Крастин расшифровал цикл развития нематоды. Самки
этих гельминтов рождают живых личинок, которые покрыты тонкой скорлупкой
яйца
в
местах
обычной
локализации
(В.Е.
Соколов,
1987).
Они
концентрируются в конъюнктивальном мешке. До инвазионной стадии
дальнейшее развитие личинок происходит в теле промежуточных хозяев,
19
которыми являются мухи нескольких видов из рода Musca (Н.И. Крастин, 1957).
Личинки телязий, проглоченные мухами, проникают в яйцевые фолликулы мух,
где развиваются до инвазионной стадии в течение одного месяца, потом
перемещаются в голову и хоботок насекомого при контакте хоботка
инвазированных мух с влажной конъюнктивой глаза происходит заражение
животных. Паразиты, попадая на конъюнктиву, проходят к месту своей обычной
локализации. В мае и первой половине июня в глазу животного появляются
первые молодые экземпляры телязий, а во второй половине августа –
половозрелые. 10-11 месяцев в глазу живут телязии одной генерации, после
этого они покидают глаз и погибают, уступая место личинкам нового поколения
(Н.И. Крастин, 1957). Это говорит о том, что возбудители заболевания могут
находиться в глазу до следующего лета. Исходя из этого, можно сказать, что
такие хозяйства становятся стационарно неблагополучными по телязиозу.
В конце девятнадцатого столетия в России впервые были обнаружены
телязии крупного рогатого скота. Научные исследования по выявлению
телязиоза у животных после 1928 года провел В.С. Ершов, до него эти находки
носили случайный характер (Н.И. Крастин, 1957).
По мнению Н.И. Крастина (1957), ареалы отдельных видов телязий в
большей степени не совпадают. В Азиатской
части России преобладают
Th.gulosa и Th.skrjabini,а в Европейской – Th.rhodesi. В результате исследований
Н.П. Попов (1960) выявил, что на территории Республики Татарстан встречается
Thelazia rhodesi, остальные виды телязий он не обнаружил.
О широком распространении телязиоза крупного рогатого скота имеются
сообщения и в зарубежной литературе. Также не совпадают ареалы отдельных
видов телязий. При исследовании глаз убойного крупного рогатого скота в
Великобритании, по исследованиям J.Arbukcle и L.Khalil (1976), выделенные
паразиты были определены как Th.gulosa и Th.skrjabini.
Аллергический конъюнктиво-кератит – это массовые поражения глаз
аллергического характера, представленные, в основном, поллинозами (pollin –
лат. пыльца). Поллинозы известны давно, ранее они назывались сенной
20
лихорадкой. При поллинозе происходит сенсибилизация организма животных
пыльцой цветущих растений. Растительная пыльца распространяется ветром на
значительные расстояния, так как она очень мелкая. Конъюнктива, роговица,
сосудистый тракт, сетчатка или одновременно несколько частей глаза могут
быть местом возникновения аллергического процесса. Такое комбинированное
проявление болезни может быть обусловлено одновременной сенсибилизацией
различных частей глаза, а также в связи с анатомическим единством возможен и
последующий переход процесса с одних частей глаза на другие. Аллергические
болезни глаз наиболее чаще проявляются конъюнктивитами и кератитами или
конъюнктиво-кератитами (В.Н. Авроров, 1991).
Причиной
А-гиповитаминозного
конъюнктиво-кератита
является
недостаток каротина в кормах или невозможность превращения его в организме
животного, в связи с нарушением обмена веществ и заболевания желудочнокишечного тракта и печени, в витамин А. Как отмечает C.Kaufman (1977), при
содержании крупного рогатого скота на рационе из свекловичной пульпы и
ячменной соломы, лишенных витамина А, возникают массовые поражения глаз
в виде кератита. Об А-гиповитаминозном конъюнктиво-кератите сообщали
W.G. Huber, G.S. Smith (1963), А.Ф. Русинов (1987); J. Van Donkergoed, E.G.
Clark (1988) и др. Из-за неправильной заготовки и хранения корма, при котором
теряется значительное количество каротина,
возникает гипоавитаминоз А.
Степень авитаминозного состояния животного прямо пропорциональна степени
клинического проявления болезни (К.А. Фомин, 1968). Гипоавитаминоз А
обычно характеризуется хроническим течением. По данным Г.А. Щуровича (по
А.В. Авророву, В.Н. Черваневу, 1991) заболеванием поражается от 9 до 12%
поголовья.
1.2. Клинические признаки и течение конъюнктиво-кератитов у животных
Исследователи М.В. Плахотин, Р.С. Алахвердиев, Е.П. Копенкин (1971) в
развитии инфекционного, инвазионного и
риккетсиозного конъюнктиво-
21
кератита выделяют шесть стадий развития: 1) серозно-катаральная, 2) эрозия
роговицы, 3) инфильтрация роговицы, 4) стадия абсцедирования, 5) изъязвление
роговицы, 6) стадия рубцевания, или клинического выздоровления. Каждой из
этих стадий, по мнению авторов, присущи характерные цитологические,
клинические и патоморфологические изменения в переднем отделе глаза.
В течение болезни, как утверждают исследователи, можно различить
строгую
последовательность
патологических
изменений
со
стороны
конъюнктивы и роговицы, также соответствующие клинические признаки. С
серозно-катарального конъюнктивита начинается воспалительный процесс
инвазионного и инфекционного конъюнктиво-кератита. Появляется светобоязнь
и слезотечение, а конъюнктива становится отечной, гиперемированной,
неровной, чрезмерно увлажненной. Позднее появляется серозной экссудат, к
которому примешивается слизь. После конъюнктивы в воспалительный процесс
вовлекается роговица, и ее изменения становятся ведущими. Роговица набухает
и слущивается, десквамируясь и эрозируясь, становится шероховатой и приобретает более выраженную в центре дымчатость.
Происходит осложнение серозно-катарального воспаления конъюнктивы и
роговицы вторичной инфекцией, что приводит к гнойному конъюнктивокератиту, после чего роговица становится отечной. Возникший ранее
лейкоцитарный инфильтрат постепенно меняет цвет, форму и величину,
превращаясь в гнойный. Инфильтрат серого цвета становится белым, а потом
желтым. Такие инфильтраты имеют округлую или звездчатую форму, края
которых четкие или стушеванные; величиной от 2-3 до 15 мм. Серознокатаральный экссудат становится слизисто-гнойным. В результате развития
перикорнеальной
конъюнктивальной
инъекции,
отмечается
смешанная
инъекция. Роговица васкуляризируется глубокими и поверхностными сосудами.
Блефароспазм
наблюдается
редко,
нарушается
повышается температура тела больного животного.
сферичность
роговицы,
22
В результате отторжения некротизированных пластинок роговицы в
заключительной фазе гнойного инфильтрата образуется язва. Вокруг язвы
роговица
отечная,
васкуляризованная.
Концевыми
разветвлениями
переплетаются кровеносные сосуды, охватывающие в виде красного кольца
язву, в результате образуется паннус («красный глаз», «pynk eye»), чаще
встречающийся при диплобациллярном конъюнктиво-кератите (М.Ока, 1976;
Р.С. Алахвердиев, М.В. Плахотин, 1982; Т.Wolf, 1984; A.J.Endmonson и др.,
1989). Потом, по причине очищения язв, происходит рубцевание. Если болезнь
протекает
в
острой
форме,
образуются
язвы
по
типу
катарального
конъюнктивита и гнойного паренхиматозного кератита. Реже у животных
процесс ограничивается поверхностным катаральным воспалением роговицы
без поражения конъюнктивы (К.А. Фомин, 1968). По мнению Г.С. Кузнецова и
К.И. Шакалова (1974) сходство клинического течения риккетсиозного и
телязиозного конъюнктиво-кератита выражается четырьмя стадиями: 1)
серозно-катаральное воспаление конъюнктивы и роговицы; 2) гнойная
инфильтрация роговицы; 3) изъязвление роговицы; 4) рубцевание язвы. По
исследованию Е.П. Копенкина (2000), клинические признаки и течение
инвазионных
(телязиоз)
и
инфекционных
(риккетсиоз,
диплобациллез,
ринотрахеит, хламидиоз) форм конъюнктиво-кератитов сходны между собой и
протекают стадийно.
Деление патологического процесса при конъюнктиво-кератитах на 3 стадии, предложенное еще в 1968 году Н.А. Подшиваловым, является наиболее
удобным и простым: 1) с признаками конъюнктивита; 2) конъюнктивит и
кератит; 3) преимущественно в виде кератита.
При
массовых
аллергических
поражениях
клинические
признаки
разнообразны и характеризуются одновременным поражением слизистых
оболочек глаз, носа, глотки, желудочно-кишечного тракта и кожи. Часто
поражается только глаз, при котором проявляется конъюнктивит, затем
кератит, распад конъюнктивы и роговицы, их изъязвление, васкуляризация
23
роговицы с последующим рубцеванием и образованием бельма. Зуд,
слезотечение, слизистое отделяемое, светобоязнь и отек области глаз также
являются признаками острого воспаления. Обычно поражаются оба глаза, если
отекает сетчатка, наблюдается частичная или полная потеря зрения. Если по
ходу течения болезни появляется нагноение, то аллергию трудно бывает
распознать.
В клинике А-гипоавитаминозного конъюнктиво-кератита имеется ряд
особенностей: сначала появляется сухость и шероховатость роговицы и
конъюнктивы; серые пятна, появляющиеся на поверхности роговицы, покрыты
тонкими, сухими и приподнятыми чешуйками, которые состоят из эпителий. По
Н. Минчеву (1958), они похожи на остатки засохшей мыльной пены, и эти
чешуйки легко отделяются от роговицы. Понижается чувствительность
конъюнктивы и роговицы, появляется тусклый оттенок, теряется зеркальность,
уменьшается слезоотделение. Дальше наблюдается помутнение роговицы,
десквамация покровного эпителия и образуются эрозии без воспалительной
гиперемии и васкуляризации. Затем происходит размягчение роговицы и
появление глубоких язв. Из-за развития гнойной микрофлоры роговица
принимает желтоватый оттенок, но при этом слабо выражаются гиперемия и
экссудация. Вследствие превращения язвы роговицы в прободную, развивается
панофтальмит.
Гипоавитаминозный
конъюнктиво-кератит
дегенеративной
стадии переходит в воспалительную.
1.3. Дифференциальная диагностика массовых конъюнктивокератитов крупного рогатого скота
Для
проведения
целенаправленных
мероприятий
по
лечению
и
профилактике конъюнктиво-кератитов крупного рогатого скота обязательна
диагностика. Так как в большинстве случаев параметры болезни похожи, на
основе клинико-эпизоотологических данных не всегда можно поставить
24
диагноз на диплобациллез, риккетсиоз, хламидиоз, герпесвирусную инфекцию
и телязиоз (А.Ф. Русинов, 1987; Е.П. Копенкин, 2000). По этой причине
необходимы лабораторные исследования, дифференциальная диагностика
болезни и постановка этиологического диагноза.
Для правильной постановки диагноза при этих заболеваниях надо
обязательно
Плахотин
учитывать
и
др.,
эпизоотологические,
1966;
Р.С.
клинические
Алахвердиев,
1978
и
данные
др.),
(М.В.
результаты
микробиологических исследований отделяемого из конъюнктивального мешка и
носа, с последующим культивированием возбудителя в куриных эмбрионах или
искусственных
питательных
средах
(М.В.
Плахотин
и
др.,
1966),
и
воспроизвести заболевание заражением здоровых животных (И.А. Фарзалиев,
1964; В.Н. Карайченцов и др., 1992; Е.П. Копенкин и др., 1988), а также
обнаружение в смывах из конъюнктивального мешка нематод из рода Thelasia
(Н.И. Крастин, 1948; Н.П. Попов, 1960; В.М. Ивашкин, Л.А. Хромова, 1984).
Установление преобладающей микрофлоры возможно при приготовлении из
секрета конъюнктивального мешка и с поверхности конъюнктивы и роговицы
мазков-отпечатков, окрашенных по Романовскому-Гимза.
Инфекционный
исследованиями.
ринотрахеит
При
диагностируют
серологических
серологическими
исследованиях
непрямой
гемагглютинации диагноз ставится на основании повышения титра антител к
вирусу в парных сыворотках крови, берущихся с интервалом 14 дней (Е.П.
Копенкин, 2000). Биохимические исследования крови при инфекционном и
инвазионном конъюнктиво-кератите крупного рогатого скота не играют
значительной роли. Как определил В.Н. Борзенков (по Р.С. Алахвердиеву,
1978), при значительной тяжести заболевания показатели каротина и кальция в
сыворотке крови мало отличаются у больных животных и здоровых животных.
Диплобациллярный конъюнктиво-кератит — это гнойно-некротическое
изъязвление
роговицы
характеризуется
острым
с
дальнейшим
течением,
развитием
угнетением
паннуса.
больного
Болезнь
животного,
25
лихорадкой. Диплобациллярный конъюнктиво-кератит состоит из следующих
стадий: эрозия роговицы, глубокая язва ("красный глаз"), грануляция с
рубцеванием и эпителизация. В холодное время года заболевание наблюдается
редко.
Полупрозрачные колонии серо-белого цвета с широкой зоной гемолиза, с
диаметром до 1-2 мм, округлой формы с ровными краями появляются после
посева отделяемых конъюнктивального мешка, посеянных на кровяном агаре и
24 часовой инкубации при температуре 37°С. Затем в мазках, приготовленных
из колоний после инкубации и окрашенных по Граму, появляются толстые,
короткие диплобациллы красного цвета. Молодняк крупного рогатого скота, по
сравнению с взрослыми особями, чаще восприимчив к диплобациллярному
конъюнктиво-кератиту, и заболеваемость составляет от 60 до 80% (Л.В.
Валебная, 2000).
Риккетсиозному конъюнктиво-кератиту чаще подвержен молодняк 2-8
месячного возраста, который болеет во все времена года. Болезнь охватывает до
90% поголовья и обычно протекает в тяжелой форме. Болезнь имеет шесть
клинических стадий: серозно-катаральный конъюнктивит, эрозия роговицы,
абсцедирование роговицы, язва роговицы со слизисто-гнойным истечением,
грануляция с рубцеванием и эпителизация. В цитоплазме эпителиальных
клеток, при микроскопии мазков-отпечатков с роговицы и конъюнктивы,
окрашенных по Романовскому-Гимза, находят фиолетовые клетки риккетсий.
При заражении отделяемым конъюнктивального мешка 6-дневные куриные эмбрионы погибают на 12-14 день (Н.С. Баженов, В.Н. Барзенков, 1969).
Инфекционный ринотрахеит (глазная форма) — болезнь животных всех
возрастов, но особенно восприимчив к инфекционному ринотрахеиту молодняк.
Сезонность
не
выражена,
заболеваемость
составляет
95%.
Болезнь
характеризуется общим угнетением животного, отеком конъюнктивы и
слизистой оболочки носа и выделяемым серозного характера, усилением
саливации. У молочных коров снижается удой и полностью прекращается
26
лактация, а у первотелок возможны аборты. По ходу развития заболевания
появляются симптомы поражения респираторной системы. Далее главными
клиническими признаками являются слезотечение, конъюнктивит, помутнение,
изъязвление роговицы и образование рубца. Риккетсии и диплобациллы в
мазках-отпечатках с конъюнктивы и роговицы отсутствуют. В цитоплазме
эпителиальных клеток обнаруживаются включения мелких вирусов, которые
отличаются от риккетсий своими размерами. С целью постановки диагноза
проводят вирусологические исследования: берут кровь, делают смывы со
слизистой
оболочки
носовой
полости
и
влагалища,
проводят
для
идентификации вируса в реакциях нейтрализации и иммунофлуоресценции три
последовательных пассажа на культуре клеток эмбриона коровы. Также для
ретроспективной диагностики исследуют парные сыворотки крови в реакциях
диффузной преципитации, непрямой гемагглютинации и в иммуноферментном
анализе (А.В. Лебедев, В.А. Черванев, 1997; Ю.Ф. Майчук, 2000).
Хламидиозный конъюнктиво-кератитом болеют взрослые и молодняк
крупного рогатого скота. Животные болеют в любое время года. Отмечается
невысокий процент заболеваемости. Наблюдаются конъюнктивиты и кератиты,
а также возможны аборты, лихорадка, угнетение кашель, истечения из носа,
пневмонии, поражения суставов. Для установления причины болезни проводят
лабораторные исследования: делают посевы на куриных эмбрионах, серологические исследования с групповым антигеном по РСК, РДСК, РИФ, ИФА
и ставят биопробу (С. Ямникова, И. Непоклонова, 2000). При сравнении
массовых заболеваний сложно отличить хламидиоз от риккетсиоза. При
хламидиозе в области свода конъюнктивы, на ее поверхности, особенно
нижнего века, отмечают отечность и мелкую зернистость, это объясняется
поражением лимфатических фолликул (А.В. Лебедев, В.А. Черванев, 1997;
Ю.Ф. Майчук, 2000).
Инвазионный конъюнктиво-кератит. Заболеваемость составляет до 80%,
связанная с мухами-переносчиками. По клиническим признакам похож на
27
диплобациллярный
конъюнктиво-кератит.
Основой
диагноза
является
обнаружение взрослых телязий и их личинок в смывах из конъюнктивального
мешка (Н.И. Крастин, 1948, 1957).
Аллергический
конъюнктиво-кератит.
При
диагностике
учитывают
массовость заболевания, сезонность, важен период цветения отдельных
растений и условия для внедрения пыльцы. У животных текущего года
рождения болезнь может повторяться ежегодно (В.Н. Авроров, 1991).
А-гипоавитаминозный конъюнктиво-кератит. Болезнь характеризуется
ксерозом и сухостью роговицы, что приводит к дегенеративным изменениям в
роговой оболочке. Отмечается помутнение роговицы в виде различных
оттенков белого цвета. Гиперемия конъюнктивы, экссудация, васкуляризация
выражены очень слабо. Поражаются оба глаза. При А-гипоавитаминозном
конъюнктиво-кератите
признаками
гипоавитаминоза
являются
снижение
упитанности, повышение сухости кожи и потеря эластичности, тусклость
шерстного покрова, появление аллопеций. Для точного определения диагноза
проводят лабораторные исследования сыворотки крови и кормов на содержание
каротина или витамина А (W.G. Huber, G.S. Smith, 1963; К.А. Фомин, 1968;
А.Ф. Русинов, 1987; J. Van Donkergoed, E.G. Clark и др., 1988).
1.4. Лечение и профилактика конъюнктиво-кератитов
Инфекция
является
основной причиной
в
патогенезе
воспаления
конъюнктивы и роговицы. Патогенез также развивается на фоне уже
нарушенной
трофики организма.
Таким
образом,
подавление
условно-
патогенной и патогенной микрофлоры является действенной этиотропной
формой терапии, которая направлена на устранение одной из основных
механизмов патогенеза болезни. При конъюнктиво-кератитах обязательным
является необходимость применения фармакологических средств терапии,
28
которые действуют на микроорганизмы бактериостатически или лучше
бактерицидно.
За исследования антибактериальных свойств р-sulfamylchysoididine в 1938
году Г. Догмак получил Нобелевскую премию в области медицины. Внедрение
сульфаниламидов стало первым достижением, которое коренным образом
изменило подходы к лечению инфекций глаз (И.Е. Мозгов, 1948; В.П. Громов и
др., 1963; С.П. Михнюк, 1966; К.А. Фомин, 1968; Н.С. Баженов, В.Н. Барзенков,
1969). При инфекционном конъюнктиво-кератите крупного рогатого скота были
получены положительные результаты В.И. Веселовым (1963), А.Н. Голиковым и
С.Т. Шитовым (1963), которые использовали в форме раствора (1:5000)
фурацилин, но однако Н.С. Баженов и др. (1969) не получали должного эффекта
при использовании этого раствора.
Открытие антибиотиков стало вторым принципиально новым шагом при
лечении болезней глаз. В 1947 году для лечения конъюнктивитов и кератитов у
животных первыми использовали антибиотик-пенициллина А.М. Растегаева и
А.П. Прокофьева (1947). Виды используемых антибиотиков в последующие
годы значительно расширились. От вида возбудителя и его чувствительности к
различным антибиотикам зависит выбор антибактериального препарата.
Эффективность того или иного антибиотика, действующего на специфического
возбудителя
конъюнктиво-кератита
или
вторичную
микрофлору,
по
сообщениям исследователей, очень разнообразна и противоречива.
При гнойных воспалительных процессах пенициллин, как известно,
обладает
профилактическим
применения
пенициллина
в
и
лечебным
глазной
свойством.
практике,
в
Эффективность
особенности
при
конъюнктивитах и кератитах, отмечают исследователи В.А. Фортумный, И.К.
Капустин (1961); В.Н. Барзенков (1963); В.И. Веселов (1963); В.П. Громов, И.И.
Вершинин и др. (1963); Н.С. Баженов и др. (1969); M. Oka (1976). Так как
пенициллин плохо проникает через гемато-офтальмический барьер, вследствие
этого концентрация его во внутренних частях глаз часто не соответствует
лечебной, о чем отмечают В.Н. Авроров и А.В. Лебедев (1985). К.А. Фомин
29
(1968) сообщил о том, что при инфекционном конъюнктиво-кератите у крупного
рогатого скота из всех антибиотиков пенициллин дает наименьший эффект.
Некоторые исследователи при инфекционном конъюнктиво-кератите
крупного рогатого скота, вызываемого M.bovis, рекомендуют использовать
хлорамфеникол (левомицетин) (К. Эльце и др., 1977; J.R. Blogg, 1991; E.L.
Dueger и др., 1999) или также клоксациклина бензатин (cloxaciclline benzathine)
(L.W. George, 1989). Доказана активность левомицетина в отношении
грамотрицательных и грамположительных бактерий, риккетсий, спирохет и
некоторых крупных вирусов. Он действует на штаммы бактерий, устойчивых к
пенициллину, сульфаниламидам, стрептомицину. 1-10%-ный линимент или
0,25%-ный водный раствор (глазные капли) могут быть использованы при
лечении конъюнктивитов, кератитов, блефаритов. Но при этом не исключаются
местные аллергические реакции.
Синтомицин – синтетический препарат, действующим началом которого
является левомицетин. Для профилактики и лечения гнойных кератитов,
риккетсиозного конъюнктиво-кератита используют синтомицин в виде 1, 5,
10%-ной эмульсии (линимента) и в виде других лекарственных форм (В.Н.
Барзенков, 1963; М.В. Плахотин, В.И. Захаров, Р.С. Алахвердиев, 1966; Р.С.
Алахвердиев, 1968; К.А. Фомин, 1968 и др.).
Об
эффективном
противоинфекционном
действии
тетрациклина
высказываются большинство авторов (Н.А. Подшивалов, 1968; В.Д. Гуневый,
1969; К.Эльце, Х.Мейер, Г. Штейнбах, 1977; J.A. Smith, L.W. George, 1995).
Почти ко всем микробам, а также риккетсиям и в некоторой степени вирусам,
тетрациклин проявляет активность. По мнению В.Н. Авророва и А.В. Лебедева
(1985), тетрациклин лучше всех антибиотиков всасывается с поверхности
слизистой оболочки глаза.
А.Ю. Гречиха (2013) рекомендует использование препарата сумамед в
сочетании
с
тетрациклиновой
мазью,
которые
показывают
высокую
терапевтическую эффективность при хламидийном конъюнктивите у кошек.
30
Ряд авторов (И.В. Галкина, М.В. Шакуров, Н.М. Шамилов, Е.В. Тудрий,
Т.А. Ахметова, С.Н. Егорова, 2010) предложили новый препарат «Астра-16»,
который
намного
превосходит
результаты
применения
известной
1%
тетрациклиновой глазной мази как по концентрации лекарственной субстанции,
так и по продолжительности и качеству лечения.
В ветеринарной офтальмологии биомицин и дибиомицин считаются
эффективными при лечении гнойных воспалений внутренних частей глаза,
конъюнктивы и роговицы. В отношении различных микробов, риккетсий и
некоторых вирусов биомицин и дибиомицин обладают широким спектром
действия (Е.М. Мастыко и др., 1967, 1967; Н.А. Подшивалов, 1968; Р.С.
Алахвердиев, 1968; Н.С. Баженов, В.Н. Барзенков, 1969 и др.).
Способ введения антибиотиков также влияет на эффективность их
применения. Высокую эффективность при инфекционном конъюнктивокератите крупного рогатого скота внутримышечного введения тетрациклина
один раз в сутки с курсом лечения 6 дней выявил В.Г. Андриасян (1988). При
гнойном
воспалении глаз
крупного
рогатого скота
на
необходимость
интракаротидного введения антибиотиков указывает и А.И. Дрончак (1972,
1973). Местное применение морфоциклина ликвидирует гнойный процесс в
основном на конъюнктиве и почти не оказывает действие на гнойное
воспаление роговицы. Применять этот метод в практике не позволяет сложность
выполнения введения антибиотиков в сонную артерию. По сравнению с
водными растворами, мазями и эмульсиями, как отмечает Н.А. Подшивалов
(1968), антибиотики в рыбьем жире и растворах поливинилового спирта имеют
следующие
преимущества:
отсутствие
различного
вида
раздражающего
действия на ткани глаза; пролонгирование и более высокий уровень
концентрации в конъюнктивальном мешке; повышенное проникновение в
жидкости глаза. Кроме того, рыбий жир при местном применении, являясь
маслянистым
веществом,
предупреждает
высыхание
роговицы,
что
используется для предупреждения ксероза роговицы при А-гипоавтиминозных
поражениях глаз (А.В. Макашов, 1953).
31
Для лечения некоторых глазных болезней животных предложены
государственным
институтом
глазных
болезней
имени
Гельмгольца
и
институтом полимеров и кафедрой общей и частной хирургии МВА
лекарственные пленки (ГЛП). Полимерная основа этих пленок обладает
пролонгирующим
действием
на
включенные
в
нее
антибиотики,
сульфаниламиды и другие фармакологические и биологические вещества, что
позволяет применять их с лечебной целью 1 раз в 3 дня. В некоторых случаях
после однократного введения пленки в конъюнктивальный мешок при
поверхностных
кератитах,
конъюнктивитах,
серозно-катаральной
стадии
риккетсиозного конъюнктиво-кератита наступает выздоровление. 2-3-кратное
применение пленок через каждые 3 дня бывает достаточным при последующих
стадиях риккетсиозного конъюнктиво-кератита. Пленки для ветеринарных
целей предлагаются двух размеров: лошадям и коровам – 13х9,0; 13х0,5 мм,
овцам, телятам, собакам – 9х4,5х0,35 мм.
Антимикробное
действие
лекарственных
веществ
пролонгируется
полимером, длительное время поддерживая этим высокую терапевтическую
концентрацию антибиотиков, также ускоряя регенерацию конъюнктивы и
роговицы.
Глазные лекарственные пленки с различными антибиотиками для лечения
массовых поражений глаз крупного рогатого скота были предложены
следующими
авторами:
диплобациллярном
Е.П.
Копенкиным
конъюнктиво-кератитах,
(2000)
а
при
при
телязиозном
риккетсиозном
и
М.В.
Плахотиным и др. (1977), Р.С. Алахвердиевым (1978, 1978, 1980).
Путем устранения основного источника инфекции и интоксикации и
путем применения методов и средств охранительного воздействия на нервную
систему, по мнению многих авторов, можно успешно бороться с инфекцией.
Внедрение в практику новокаиновой блокады является большим достижением
отечественных ученых. Разработанные учеными методы новокаиновых блокад и
выявленные механизмы их действия, позволили резко повысить эффективность
лечебной работы.
32
На
основании
анализа
большого
клинического
материала
А.В.
Вишневский (1948) отмечал, что нервная система определяет взаимоотношения
между макро- и микроорганизмом при всяком заболевании, вызванном
инфекцией. Развивающийся в организме любой воспалительный процесс не
может и не должен рассматриваться изолированно. Исход воспалительного
процесса, дальнейшее обострение процесса, его смещение или его полное
прекращение напрямую зависит от возможности сильного раздражения,
перенапряжения нервной системы, резкого истощения клеток мозговой коры,
определяющей собой не только развитие, но и характер инфекции.
Будучи уверенным, что в основе большинства заболеваний лежит нервнодистрофический процесс, он рекомендовал организовать лечебные мероприятия
в направлении охранения нервной системы от сильных раздражений. С этой
целью ученый разработал различные варианты новокаиновых блокад нервной
системы.
А.В.
Вишневский
(1933)
определил
в
механизме
действия
новокаиновой блокады двоякое влияние новокаина на нервную систему: вопервых, выключение, то есть перерыв в проведении по нервным проводникам в
центральную
нервную
систему
сильных
и
сверхсильных
раздражений
(импульсов), истощающих и ослабляющих нормальное ее функционирование.
Во-вторых, замена сильных раздражений, стимулирующих ее функцию,
слабыми.
Лечебный
эффект
новокаиновой
блокады,
по
данным
С.П.
Протопопова (1954), определяется не выключением, а улучшением в период
“последействия
блокады”
функциональных
свойств.
По
его
словам
парабиотическое состояние нерва можно снять не только в очаге парабиоза, но и
вне зоны поражения, это дает возможность делать лечебные инъекции
новокаина вдали от места болезненного очага.
Ветеринарные хирурги полностью поддержали идеи А.В. Вишневского.
Далее разные методы новокаиновой блокады нервной системы начали
разрабатывать и другие авторы – А.И. Федотов, В.Т. Кулик, В.К. Хохлачев, В.В.
Мосин, Н.А. Уразаев, Б.А. Башкиров, И.И. Магда, Д.Д. Логвинов, И.И. Воронин,
М.Ш. Шакуров, Р.З. Курбанов и т.д. (М.Ш. Шакуров, И.Г. Галимзянов, 2000).
33
Разнообразные новокаиновые блокады были предложены при воспалении
конъюнктивы и роговицы в качестве методов патогенетической терапии. П.П.
Гатиным (1952) в 1952 году была разработана подглазничная новокаиновая
блокада. В силу анатомических особенностей локализации и строения
подглазничного канала у крупного рогатого скота, подглазничная новокаиновая
блокада, по словам самого автора и других исследователей, менее приемлема,
чем у лошадей.
Методика ретробульбарной новокаиновой блокады 0,5%-ным раствором
новокаина в пространство, расположенное позади глазного яблока, была
разработана и предложена В.Н. Авроровым (1966).
Способ периневральных инъекций спиртово-новокаиновых растворов
представляет собой определенный интерес. В зависимости от концентрации
спирта, периневральная спирт-новокаиновая инъекция вызывает различные
степени дегенерации шванновских оболочек и осевых цилиндров, устраняя при
этом болевую реакцию, но вызывает за собой трофические расстройства в зоне
иннервации блокированного нерва. Но периневральная инъекция спирта, в
концентрации ниже 20%, в 0,5%-ном растворе новокаина вызывает длительное
обезболивание (3-4 суток), улучшает трофику и усиливает регенеративные
процессы, устраняет сосудистые спазмы, улучшает кровообращение в зоне
травмы (М.В. Плахотин и А.Н. Голиков, 1961).
Спирто-новокаиновую
блокаду
ресничного
узла
при
различных
воспалительных процессах глаз предложил Г.Л. Бурчуладзе (А.Н. Голиков, Г.Л.
Бурчуладзе, 1974).
Г.С. Мастыко, Е.М. Багриновская и В.М. Лакисов (1967) рекомендуют при
кератитах следующий метод новокаиновой терапии: применение 5%-ных
новокаиновых капель, вводимых в конъюнктивальный мешок двукратно с
интервалом 5 мин, с целью понижения чувствительности. Чувствительность
роговицы и конъюнктивы после введения раствора новокаина резко понижается.
При введении новокаина у животного раскрывается глазная щель и уменьшается
беспокойство. В некоторых случаях возможна замена раствора новокаина 5%-
34
ной мазью. После чего желательно произвести подглазничную новокаиновую
блокаду. При терапии животных с различной степенью поражения роговицы, в
том числе с глубокими язвенными кератитами и интенсивным прорастанием
сосудов в роговую оболочку, использовав такую схему лечения (применение
поверхностной
и
подглазничной
блокады),
авторы
получили
хорошие
результаты.
В.Н. Авроров и А.В. Лебедев (1985) при конъюнктиво-кератитах,
кератитах, конъюнктивитах и блефаритах рекомендуют вводить 0,5%-ный
раствор новокаина в дозе 10-15 мл у верхнего века или под кожу у наружного
угла глаза с интервалом в 2-3 дня. По сравнению с подглазничной и
ретробульбарной блокадами, по исследованиям М.Ш. Шакурова (1971,1990,
1991) при воспалениях роговицы инфильтрация век раствором новокаина менее
эффективна.
Внутрисосудистые инъекции растворов новокаина, которые рассчитаны на
воздействие анестетика на ангиорецепторные зоны, также рекомендованы при
лечении воспалительных процессов глаза. Новокаин проникает в межклеточное
пространство, где блокирует рецепторный аппарат и влияет на клеточные
мембраны
соединительной
и
функциональной
ткани,
действуя
и
на
капиллярную систему органа-мишени, в данном случае - глаза. По мнению А.К.
Кузнецова (1965) внутривенные введения 0,25-0,5%-ных растворов новокаина
оказывают положительное влияние на течение иридо-хориоидитов и кератитов.
При этом уменьшаются и исчезают признаки воспаления сосудистого тракта,
просветляется роговица, рассасываются выпоты в переднюю камеру глаза,
исчезают отеки век и конъюнктивы. При этом лечебный эффект проявляется
клинически абортивным течением воспалительного процесса.
М.Ш. Шакуров и И.Г. Галимзянов (2000) предлагают при применении
новокаиновой
блокады
подведение
раствора
анестетика
к
нервным
образованиям, учитывая сегментарность строения нервной системы, потому, что
эффективность ее более выражена в том сегменте, в который был подведен
раствор
новокаина.
Симпатическую
иннервацию
глаза
получают
от
35
краниального шейного симпатического узла, ветви которого входят в глаз
вместе с чувствительными и глазодвигательными нервами. Новокаиновую
блокаду краниального шейного симпатического узла (НБКШСУ) предложили
А.Н. Голиков и С.Т. Шитов (1963). По мнению авторов НБКШСУ является
более эффективной блокадой для крупного рогатого скота, лошадей и собак при
таких заболеваниях органов зрения, как конъюнктивит, увеит, блефарит,
кератит, циклит (особенно при острых формах воспаления). Эта новокаиновая
блокада создает благоприятный фон для этиологического и симптоматического
лечения.
Лечебный эффект вышеперечисленных новокаиновых блокад, с течением
времени и переходом воспаления в хроническую форму, особенно в ранних
стадиях воспалительного процесса, несмотря на выраженное терапевтическое
действие, уменьшается. Применение только новокаиновой блокады при
гнойных воспалениях не имеет полного успеха потому, что причиной
воспаления является инфекция (А.Н. Голиков, 1964). Более эффективно
совместное
применение
блокады
и
противомикробных
средств
(этиопатогенетическое лечение).
Методы патогенетической терапии, которые направлены на мобилизацию
и стимуляцию защитных сил организма для ликвидации патологического
процесса, то есть действующие на механизмы развития болезни, наряду с
новокаиновой блокадой, занимают важное место при лечении конъюнктивитов
и кератитов у животных. Патогенетическая терапия устраняет и ослабляет
патологические механизмы, таким образом способствуя восстановлению
нарушенной саморегуляции организма, что приводит к выздоровлению.
Неспецифическая стимулирующая терапия занимает важное место в
патогенетической терапии. Она основана на парентеральном введении в
организм органических веществ, преимущественно растительного и животного
происхождения в стерильном виде. Тканевая терапия и лечение пирогенными
веществами, относящимися к группе неспецифической терапии в ветеринарной
36
офтальмологии,
используются для повышения регенераторной способности
тканей и стимулирования функции защиты организма.
Тканевая терапия получила широкое распространение в ветеринарии
после опубликования работ В.П. Филатова (1946, 1953). Многие исследователи
также отмечают успешное применении в ветеринарии растительных тканевых
препаратов (М.И. Рабинович, 1988). Н.И. Кобянова (1947) достигла высоких
результатов при лечении конъюнктивитов и кератитов лошадей, собак, крупного
и мелкого рогатого скота с применением экстракта из листьев свеклы.
Экстракты, приготовленные из оболочки глаза или его содержимого, которые
рекомендует В.Н. Авроров (1954), оказывают положительное терапевтическое
действие при иритах, конъюнктивитах, циклитах и кератитах. Тканевая терапия,
по его мнению, не дает каких-либо отрицательных последствий. При лечении
конъюнктиво-кератитов телязиозной этиологии В.К. Тихов (1959, 1959, 1963)
использовал экстракт алоэ.
Воспаление, которое является основным механизмом в патогенезе
конъюнктиво-кератитов,
обуславливает
патологические
и
защитно-
приспособительные явления, также и внешнее проявление болезни. Гиперемия,
отек, повышение местной температуры, боль и нарушение функций, которые
определяются изменениями сосудистой проницаемости, инфильтрацией тканей
лейкоцитами являются клиническими признаками воспаления. В этом процессе
задействованы сразу несколько типов клеток с рядом специфических
медиаторов
воспаления.
При
этом
желательно
применение
средств
противовоспалительного действия, которые тормозят развитие воспалительного
процесса.
Поэтому
Противовоспалительное
кортикостероиды
действие
имеют
большое
кортикостероиды
значение.
осуществляют
одновременно несколькими путями. Они подавляют миграцию лейкоцитов,
образование и некоторую активность медиаторов воспаления, а также
функционирование иммунокомпетентных клеток в области воспаления (И.А.
Лоскутов, 2000). А.Ф. Русинов (1967) в своих работах отмечал положительное
действие кортикостероидов, особенно гидрокортизона, при терапии болезней
37
глаз животных. При лечении глубоких, поверхностных и острых кератитов,
конъюнктиво-кератитов крупного рогатого скота автор рекомендует в виде
капель один раз в день в течение 2-5 дней применять 1%-ный раствор
гидрокортизона
на
1%-ном
растворе
новокаина.
При
этом
методе
эффективность лечения составляет 98-99%.
Так как гидрокортизон не обладает антибактериальным действием,
отмечает
А.Ф.
гидрокортизонотерапию
Русинов
в
(1967),
комплексе
с
необходимо
антибиотиками
примененять
и
средствами
патогенетической терапии. Как утверждает Р.С. Алахвердиев (1968), при
риккетсиозном конъюнктиво-кератите гидрокортизон в виде капель и мазей
менее эффективен. Тоже самое отмечают К.А. Фомин и С.Т. Шитов (1972): при
легких формах конъюнктиво-кератитов у животных гидрокортизон в виде
глазных капель недостаточно эффективен. Они применяли гидрокортизон путем
инъекции
под
конъюнктиву.
Чаще
всего
при
остром
катаральном
конъюнктивите и кератите достаточно 1-2 инъекций препарата через 3-5 дней.
Несмотря на хорошее терапевтическое действие, гидрокортизон обладает
и отрицательными качествами. Как и многие кортикостероиды гидрокортизон
угнетает регенерацию тканей, поэтому он противопоказан при изъязвлении
роговицы (К.А. Фомин, 1968). Долгосрочное применение стероидов, как
известно, подавляет местный иммунный ответ. Это приводит к присоединению
к патологическому процессу вторичной инфекции. Стероиды могут вызвать
перфорацию ткани роговицы, и поэтому надо быть крайне осторожным при
назначении стероидных препаратов при состояниях, сопровождающихся
истончением ткани роговицы (И.А. Лоскутов, 2000).
Литературный обзор показывает, что в настоящее время для лечения
конъюнктиво-кератитов
в
ветеринарной
офтальмологии
используется
значительный арсенал терапевтических средств и методов. Многими авторами
отдается предпочтение комплексному лечению, при котором в разных
сочетаниях
используются
все
вышеперечисленные
средства
и
этиологического, патогенетического и симптоматического направления.
методы
38
Антибиотики используются в основном как этиотропные средства,
которые
наряду
с
положительными
качествами,
также
оказывают
и
отрицательное воздействие. Отрицательной стороной антибиотиков является то,
что в последние годы наблюдается увеличение числа микроорганизмов,
устойчивых к антибиотикам и химиотерапевтическим средствам (С.М.
Навашин, И.П. Фомина, 1982; Л.Е. Бриан, 1984). Так же нужно отметить резкое
повышение
агрессивности
условно-патогенной
микрофлоры
и
иммунодепрессивное действие большинства антибиотиков (Д.Н. Лазарева, К.К.
Алехин, 1985; В.И. Горшукова, 1973). Лечение пораженных болезнью животных
только антибиотиками занимает длительное время.
Использование
потенциальным
органических
соединений
противовоспалительным
сотрудников
кафедры
фармакологии
медицинского
университета
имени
С.В.
фосфора
средством.
По
Казанского
Курашова,
является
исследованиям
государственного
по
определению
биологической активности и механизмов действия новых фосфороорганических
соединений с низкой токсичностью, органические соединения фосфора
представляют интерес, как с теоретической, так и практической точки зрения
(Л.А. Блатун и др., 1991; Л.Е. Зиганшина, И.А. Студенцова, А.У. Зиганшин,
1991).
В 1950 году Б.А. Арбузовым и А.Н. Пудовиком (1950) впервые был
синтезирован первый из представителей фосфороорганических соединений
мефопран – диметиловый эфир 2-карбометоксипропилфосфорной кислоты.
Сотрудниками Казанской государственной академии ветеринарной медицины
активно
проводились
экспериментально-клинические
исследования
биологической активности мефопрана.
Под руководством профессора М.Ш. Шакурова, Р.Е. Данелия (1988)
проводил изучение моделей инфицированных ран, которые показали высокую
терапевтическую
результативность
за
счет
противовоспалительного,
бактериостатического и бактерицидного действия наружного применения 20%ного раствора в первой фазе раневого процесса и 20%-ного масляного раствора
39
данного вещества во второй фазе. В результате научно-производственных
испытаний мефопран был допущен Ветфармсоветом при ГУВ МСХиП СССР к
широким
производственным
испытаниям
как
средство
для
лечения
эндометритов сельскохозяйственных животных и ран гнойно-некротических
процессов пальцев (протокол №7 от 23 мая 1989 года). Эти разработки
реализованы совместными усилиями сотрудников Института органической и
физической химии имени А.Е. Арбузова Российской академии наук, Казанской
государственной
академии
ветеринарной
медицины
и
Казанского
государственного медицинского университета. В результате экспериментов
мефопран оправдал целесообразность его практического применения как
лекарственное средство для местного лечения инфекционно-воспалительных
заболеваний наружной локализации.
Подсолнечное масло, которое является лекарственной основой для
приготовления 20% масляного раствора мефопрана, по исследованиям Р.Е.
Данелия (1988), обладает раздражающим действием на ткани глаз животных.
Продолжив
изучение
мефопрана
в
виде
его субстанций на
моделях
конъюнктиво-кератитов собак, А.А. Габбасов (2000) выяснил, что мефопран
совместно с методами патогенетической терапии, особенно с новокаиновыми
блокадами оказывает большое эффективное действие. Он также в условиях
производства апробировал результаты экспериментальных исследований при
лечении массовых конъюнктиво-кератитов крупного рогатого скота.
Результатом исследований ученых Института органической и физической
химии имени А.Е. Арбузова Казанского Филиала Академии Наук Российской
Федерации стал синтезированный препарат под условным названием МК-1. Это
химическое соединение – диэтиламмониевая соль N-бензилиденамино-1фенилметансульфоновой кислоты – белый мелкокристаллический порошок, со
слабым запахом миндаля, хорошо растворимый в органических растворителях и
в воде, рН раствора=8. На данный препарат был получен патент. В настоящее
время получены данные об эффективности лекарственных форм этого препарата
при гнойно-воспалительных состояниях тканей и органов, в частности, при
40
болезнях органов дыхания и желудочно-кишечных заболеваниях телят, также
его высокая антимикробная активность (А.А. Тимохин, Х.Н. Макаев и др., 1999;
Тимохин А.А., 2002). МК-1 по своим токсическим показателям является
препаратом III класса (слаботоксичным). Тимохин А.А. (2000) установил, что
МК-1 проявляет слабые кумулятивные свойства (в зависимости от вида и
возраста
коэффициент
кумуляции
составляет
4,74-6,21),
не
обладает
эмбриотоксическим, тератогенными и мутагенным свойствами (А.А. Тимохин и
Х.Н. Макаев, 2001).
Имея ввиду длительное нахождение возбудителя в патологическом
процессе при инфекционном конъюнктиво-кератите, учитывая затруднение
индивидуального
лечения
в
хозяйствах,
при
энзоотическом
характере
заболевания рекомендуется регулярно проводить плановые профилактические
мероприятия. Один раз в месяц систематически необходимо клинически
обследовать поголовье. Нужно чаще дезинфицировать и очищать помещения (U.
Schnurrbusch и др., 1969), прилегающие к ним территории, инвентарь и
предметы ухода, кормушки; навоз для биотермического обеззараживания
необходимо вывозить в навозохранилище; вести борьбу с насекомымипереносчиками; улучшать условия содержания и кормления животных.
Животных, вновь поступающих в благополучные хозяйства, необходимо
держать в карантине и периодически проводить их клинический осмотр.
Восприимчивым животным, при завозе из неблагополучных хозяйств для
племенных и пользовательных целей, надо проводить микроскопию с роговицы
мазков-отпечатков на наличие риккетсий (В.Н. Авроров, А.Н. Лебедев, 1985).
При возникновении болезни необходимо осмотреть всех восприимчивых
животных, изолировать условно здоровых от больных и организовать их
лечение. Если своевременно поставлен диагноз и назначено соответствующее
лечение, животные выздоравливают в течение 8-14 дней (А.Ф. Русинов, 1965).
Е.П. Копенкин (2000) для профилактики инфекционного конъюнктиво-кератита
(диплобациллез, риккетсиоз) в неблагополучных хозяйствах в период с марта по
сентябрь
рекомендует
введение
глазных
лекарственных
пленок
с
41
антимикробными средствами в конъюнктивальный мешок животных 1-2 раза в
месяц.
Если обнаружен инфекционный ринотрахеит,
надо обязательно
проводить вакцинацию молодняка крупного рогатого скота.
В начале XX века, многие исследователи проводили опыты, с целью
создания вакцин для профилактики инфекционных заболеваний глаз животных.
Например, Е. Николасом (1928) был получен положительный результат
применения стафило-стрептококковых фильтрат-бульонных вакцин по Безредко
и Урбану с профилактической и лечебной целью. Далее предпринимались
попытки использования рибосом, изолированных из Moraxella bovis, в качестве
антигенных структур, для изготовления вакцин (G.W. Pugh и др., 1982, 1982). D.
Hughes и G. Pugh (1975) предложили, для профилактики инфекционного
конъюнктиво-кератита
внутримышечную
крупного
вакцинацию
рогатого
скота,
восприимчивых
вызванного
животных
M.bovis,
вирулентной
культурой возбудителя, убитой формалином. Но после таких вакцинаций были
зафиксированы
случаи
заболевания
животных
диплобациллярным
конъюнктиво-кератитом. Anon (1985) получил положительные результаты
применения вакцины против диплобациллеза под торговым названием “Piliguard
Pinkeye”, которая предотвращает прикрепление возбудителя к слизистой
оболочке глаза. Препарат содержит волосковые антигены M. bovis. Для лечения
M.bovis
предпринимались
профилактического
средства.
попытки
В
использования
полевых
условиях
бактерина
были
как
проведены
профилактические мероприятия на эффективность бактерина, вследствие чего
наблюдалась устойчивость животных к заражению (T.Wolf, 1984). Вакцины,
изготовленные в результате исследований зарубежных ученых (G.W. Pugh, D.E.
Hughes, 1972; D.E. Hughes, 1976; A. Arora, 1976, 1976; J.J. Webber и др., 1981;
G.W. Pugh и др., 1982, 1982, 1986; P.C. Smith и др., 1990) против инфекционного
конъюнктиво-кератита, вызываемого M. bovis, имели положительный результат.
Такие же исследования проводятся и в нашей стране. Так, штамм
Moraxella bovis “Г97-ВНИВИ” (патент Российской Федерации №2145353),
который используется для изготовления диагностикумов и вакцин против
42
инфекционного конъюнктиво-кератита крупного рогатого скота выделили,
идентифицировали и путем селекции получили Х.З. Гафаров и Л.В. Валебная
(2000).
Профилактика телязиозного конъюнктиво-кератита отличается своими
особенностями. Во-первых, профилактические мероприятия должны быть
направлены на ликвидацию паразитоносительства (дегельминтизация), вовторых, на борьбу с переносчиками, которые являются и промежуточными
хозяевами в цикле биологического развития паразита (мухами) и, в-третьих, на
выявление заболевших животных, их изоляцию и лечение.
Профилактической
ликвидации
паразитоносительства
необходимо
подвергать всех животных без исключения, так как несколько необработанных
зараженных животных могут вновь стать причиной возникновения болезни. Для
дегельминтизации предложено несколько способов. Но в настоящее время
некоторые из этих способов, считавшихся раньше эффективными, нельзя
применять в широкой практике. Например, способ механического удаления
ватным тампоном, смоченным антисептическим раствором, личинок телязий из
конъюнктивального мешка не обеспечивает полной дегельминтизации (К.А.
Фомин, 1968). Также способ промывания конъюнктивального мешка струей
высокого давления или антисептическим раствором (В.Д. Мудриченко, 1963)
нельзя считать результативным, потому, что при небрежном промывании
личинки паразитов не погибают, а попав на почву, предохраняются от
высушивания и тем самым продлевают жизнь во внешней среде (П.П. Гатин,
1952, 1958).
Учитывая ряд недостатков этих способов, некоторые авторы, для
обеспечения полной дегельминтизации, рекомендуют применение средств,
полностью убивающих паразитов у основного хозяина на месте их локализации.
Н.М. Городович (по В.Н.Авророву и А.В. Лебедеву; 1985) проводил
дегельминтизацию путем инъекции раствора дитразина-сульфата в мышцы,
окружающие слезные железы по 5 мл на одну инъекцию. А также M.J. Kenedy и
др., (1992, 1993, 1994) использовали подкожное введение ивермектина и
43
дорамектина. Трудоемкость подготовки и выполнения процедуры являются
основными
недостатками
этих
методов.
А
способ
промывания
конъюнктивального мешка 1%-ным водным раствором хлорофоса – более
простая, легко выполнимая дегелминтизация. Раствор хлорофоса проникает в
слезные канальца, слезный мешок и носослезный канал и убивает находящихся
там всех видов телязий.
Из
литературного
обзора
видно,
что
современная
ветеринарная
офтальмология имеет в своем арсенале множество терапевтических средств и
методов лечения конъюнктиво-кратитов (Е.П. Щербакова, 2013). По мнению
большинства авторов, необходимо комплексное лечение в который входят все
перечисленные средства и методы этиологической, патогенетической и
симптоматической терапии. В качестве этиотропных средств в основном
используются антибиотики, которые при всех своих положительных качествах,
имеют и недостатки: увеличение числа устойчивых к антибиотикам и
химиотерапевтическим средствам микроорганизмов (С.М. Навашин, И.П.
Фомин, 1982; Л.Е. Бриан, 1984). Также, применение токсичных лекарств
существенно снижает качество получаемой продукции животноводства и как
следствие вызывает развитие целого ряда заболеваний у человека, а именно
пищевые аллергии (Е.П. Щербакова, 2013).
В хозяйствах Республики Татарстан у крупного рогатого скота данные по
этиологии, клиническим признакам, дифференциальной диагностике, лечению и
профилактике конъюнктиво-кератита не изучены.
Таким образом, существующие в данное время препараты и методы
лечения конъюнктиво-кератита животных не дают быстрого и эффективного
выздоровления от данной патологии. Поэтому разработка, внедрение и
апробация новых препаратов и методов лечения, доступных для массового
применения, крайне необходима для ветеринарии.
44
2. Собственные исследования
2.1. Материал и методы исследований
Диссертационная работа была выполнена в течение 2011 – 2014 годов.
Нами проведены экспериментально-клинические и лабораторные исследования
на кафедре ветеринарной хирургии ФГБОУ ВПО КГАВМ, в лечебноконсультативном центре КГАВМ. Результаты экспериментальных исследований
были
апробированы
на
животных,
принадлежащих
животноводческим
хозяйствам Сармановского и Кайбицкого районов Республики Татарстан.
Отдельные лабораторные исследования были выполнены в ФГБУ «Татарская
межрегиональная
ветеринарная
лаборатория»
(ФГБУ
«ТМВЛ»),
ФГБУ
«Федеральный центр токсикологической, радиационной и биологической
безопасности» (ФГБУ «ФЦТРБ-ВНИВИ») и в Районном Государственном
Ветеринарном Объединении Сармановского района РТ. Объем и характер
исследований представлен в таблице 1, схема опыта - на рисунке 1.
На кафедре ветеринарной хирургии Казанской государственной академии
ветеринарной медицины им. Н.Э. Баумана был разработан препарат под
условным названием Конкерит. В качестве местно-анестезирующего средства
берется новокаин, в качестве противомикробного цефазолин, а дексаметазон в
качестве противовоспалительного средства.
Препарат
получают
при
соблюдении
необходимых
санитарно-
гигиенических требований и правил антисептики следующим образом: в
ампулу, содержащую 1 грамм цефазолина, добавляют 4,5 мл 0,5%-го новокаина
и обратно в 10 мл шприц набирают 1,5 мл цефазолина. В этот же шприц
набирают 7 мл 0,5%-го новокаина и 1,5 мл дексаметазона (4мг/мл) и тщательно
взбалтывают. Тем самым достигается соотношение массовых долей: цефазолин
15%, новокаин 70% и дексаметазон 15%.
Для определения воздействие препарата Конкерит на сердце, печень,
почки и селезенку были проведены гистологические исследования. Белых
лабораторных мышей, перед введением Конкерита, держали на голодной диете
45
Таблица 1 - Объем и характер исследований
№
п/п
1
2
3
4
5
6
7
8
Животные, гол
Воздействие
препарата
Конкерит на сердце, печень,
почки и селезенку
Гельминтологические
исследования
смыва
из
конъюнктивального мешка
Микробиологические
исследования микрофлоры
глаза
Определение
раздражающего
действия
Конкерита
Определение
лечебного
действия Конкерита при
экспериментальных
конъюнктиво-кератитах
Определение
лечебной
эффективности Кокерита у
домашних плотоядных:
-Конкерит и общий курс
препаратов
-Конкерит и новокаиновая
блокада по А.Н. Голикову и
С.Т. Шитову
Сравнительная
оценка
методов лечения:
- Мизофен
- Конкерит
Сравнительная
оценка
методов лечения:
- 1% тетрациклиновая мазь
- Конкерит
Всего:
мыши
крысы
кролики
кошки
собаки
круп.
рог.
скот
3
-
-
-
-
-
-
-
-
-
-
86
-
-
-
6
6
16
-
15
15
-
-
-
-
-
15
-
-
-
-
-
-
7
5
-
-
-
-
6
5
-
-
-
-
-
-
26
26
-
-
-
-
-
17
3
15
30
19
16
17
188
46
Рисунок 1 - Схема опыта
47
16-18 часов, потом внутрижелудочно вводили препарат в количестве 1мл при
помощи изогнутой иглы и шприца. Затем мышей под эфирным наркозом
подвергали декапитации согласно требованиям, предъявляемым организацией
по гуманному отношению к животным, и в стерильных условиях извлекли
сердце, печень, почки и селезенку. Из органов, по методике описанной З.С.
Кацнельсоном и И.Д. Рихтером (1979), приготовили гистологические препараты
и окрасили их по Романовскому-Гимза.
В первой серии опытов определяли этиологию конъюнктиво-кератита
крупного рогатого скота. Диагноз на телязиоз крупного рогатого скота
устанавливали на основании результатов гельминтологического исследования
содержимого конъюнктивального мешка, полученного после промывания глаза
больного конъюнктиво-кератитом животного из спринцовки физиологическим
раствором. При этом сильную струю раствора направляли от наружного угла
глазной щели в сторону медиального, стремясь, чтобы он попал за третье веко.
При обратном токе раствор собирали в ванночку. Отобранные пробы выливали
в пробирки, доставляли в ветеринарную лабораторию в день взятия, где их
центрифугировали при 1,5 тыс. об./мин в течение 2 мин. Осадок от
центрифугированных проб выливали на предметное стекло и исследовали под
микроскопом для обнаружения половозрелых гельминтов и личинок телязий.
Видовая принадлежность обнаруженных телязий определяли по характерным
морфологическим признакам (Б.И. Антонов и др., 1987).
При положительных результатах гельминтологических исследований,
конъюнктивальный мешок животных обрабатывали спринцеванием 3%-ной
борной кислоты. Контроль эффективности дегельминтизации проводили через 7
дней путем повторного исследования смыва содержимого конъюнктивального
мешка.
Для изучения микробного пейзажа глаз у здоровых и больных
конъюнктиво-кератитом животных (кошки, собаки и крупный рогатый скот),
были
проведены
микробиологические
исследования
содержимого
конъюнктивального мешка. Слезу или отделяемое глаза с конъюнктивы нижней
48
переходной складки забирали бактериологической петлей, тонко размазывали
на предметном стекле и фиксировали трехкратным проведением через пламя
спиртовой горелки. Для определения видовой принадлежности бактерий мазки
окрашивали по Граму. Изучали морфологию бактерий, учитывали их
дифференциальную окраску. Также взятый материал высевали на чашки Петри
с питательной средой (МПА), которые помещали в термостат для инкубации на
24 часа. Для выделения чистых культур микробов делали пересевы из МПА на
чашки с различными элективными питательными средами. Для первичного
получения бактериологических колоний использовали мясопептонный агар, 5%ный кровяной агар, среду Эндо, желточносолевой агар, висмут-сульфит агар.
При этом в первую чашку с соответствующей питательной средой вносили одну
петлю смешанной культуры и равномерно распределяли ее стерильным
стеклянным
шпателем
по
всей
поверхности
среды.
Затем
шпатель
последовательно переносили во вторую и третью чашку Петри и также
производили распределение материала по поверхности среды в этих чашках.
Посев исследуемого материала производился на трех чашках Петри с каждой
питательной средой. Чашки Петри с посевами помещали для инкубации при
37°С в термостат на 24 часа. Через сутки проводили первичную идентификацию
выросших культур путем изучения культуральных свойств и посредством
микроскопии
мазков,
которые
готовили
общепринятым
способом
из
бактериологических колоний и окрашивали по Граму. Одновременно с окраской
по Граму, в целях более детального изучения морфологии бактерий выделенных
культур, использовали метод окраски микробов для выявления спор. При этом
препарат, приготовленный обычным способом, окрашивали 2 мин карболовым
фуксином при нагревании, промывали водой и обесцвечивали погружением
предметного стекла в 1%-ный водный раствор серной кислоты. Затем препарат
промывали водой и докрашивали 0,1%-ным раствором метиленового синего.
Споры окрашивались в красный цвет.
На 5%-ном кровяном мясопептонном агаре учитывали тип гемолиза
выросших культур, производили отбор характерных изолированных колоний.
49
На среде Эндо определяли характер роста, размер, цвет и форму колоний. На
желточносолевом агаре отмечали рост колоний, их лецитиназную активность,
которая характеризовалась образованием мутного венчика вокруг них. Сухой
висмут-сульфит агар использовался для выделения паратифозных бактерий.
Выделенные чистые культуры для изучения культуральных свойств
высевали в пробирки с мясопептонным бульоном (МПБ), которые инкубировали
в термостате при 37°С в течение 24 часов.
Для дальнейшего исследования и идентификации изучаемых микробных
культур, характерные изолированные колонии высевали на специальные среды.
Окончательное заключение родовой и видовой принадлежности выделенных
микроорганизмов делали по характерным биохимическим признакам, которые
выявляли с помощью тестовых наборов СИБ. Набор тестов включал в себя СИБ
с сорбитом, лизином, маннитом, инозитом, орнитином, цитратом Симонса,
лактозой, малонатом натрия; для выделения индола, уреазы, сероводорода,
оксидазы,
каталазы;
для
реакции
Фогес-Проскауэра;
для
определения
расщепления глюкозы с кислотой или газом. Подлежащие тестированию
культуры бактерий предварительно выращивали в пробирках с МПБ при
температуре 37°С в течение 4 часов. После выращивания, микробную взвесь по
одной капле вносили в пробирки с 0,3 мл 0,85%-ного раствор хлорида натрия и
внесенными
туда
индикаторными
дисками.
Для
чтения
результатов
идентификации бактерий с помощью набора СИБ использовали специальный
ключ и определитель микробов (Дж. Хоулт, 1980).
Во второй серии опытов определение антимикробной активности
Конкерита и его растворов на S. aureus штамма 209Р и E. coli штамма 0126
проводили методом диффузии в агар с применением дисков (Ф.З. Андросов и
др., 1981), пропитанных препаратом Конкерит и его водными 15, 25, 50, 75%ными растворами. Чувствительность микробов к Конкериту определяли по зоне
задержки их роста: более 25 мм – высокочувствительный, 11-14 мм –
малочувствительный и менее 11 мм – устойчивый. Учет результатов проводили
измерением зоны задержки роста микробов вокруг дисков (с учетом диаметра
50
диска) с помощью миллиметровой линейки. В качестве контроля использовали
диски,
пропитанные
физиологическим
раствором
и
водным
раствором
тетрациклина гидрохлорид с концентрацией 10 тыс. ЕД в 1мл.
Оценку контактного бактериостатического влияния различных растворов
Конкерита на микробные культуры S. aureus штамма 209Р и E. coli штамма 0126
проводили следующим образом: к 1мл смыва суточной культуры бактерий с
МПА, с титром 1x10 6 микробных тел, добавляли 1 мл нативного препарата и
его водные 15, 25, 50, 75%-ные растворы, смеси инкубировали в термостате при
37 ˚С в течение 1, 3, 6, 12, 24 часа, после чего делали высевы в пробирки с
питательной средой (МПА, среда Эндо). Посевы, в свою очередь помещали в
термостат при 37 ˚С и в течение 7 дней регистрировали в них рост микробов.
Контролем служили такие же микробные культуры, контактирующие с
физиологическим раствором и дистиллированной водой содержащих 10 тыс. ЕД
тетрациклина гидрохлорид в тех же соотношениях и временных интервалах.
В третьей серии опытов при экспериментальных исследованиях местного
раздражающего действия различных растворов Конкерита было создано 5 групп
по 3 кролика и 3 крысы в каждой. Был приготовлен препарат Конкерит и его
водные 15, 25, 50, 75%-ные растворы. Создание определенных процентных
растворов
достигали
разбавлением
препарата
дистиллированной
водой.
Препарат Конкерит закапывали по 3 капли на слизистую оболочку (под нижнее
веко) правого глаза, левый был оставлен в качестве контроля. Исследования
местного раздражающего действия Конкерита проводили в течение трех дней,
препарат закапывали на слизистую глаза два раза в день.
В четвертой серии опытов изучали лечебное действие препарата Конкерит
и его водных 50 и 75%-ных растворов при экспериментальных конъюнктивокератитах. Опыты проводили на 15-ти кроликах обоего пола, 2-3-летнего
возраста, со средней массой тела 3,94±0,31 кг, принадлежащих кафедре
ветеринарной хирургии КГАВМ.
Экспериментальный поверхностный диффузный катаральный кератит и
катаральный конъюнктивит правого глаза воспроизводили наложением на
51
роговицу кусочка фильтровальной бумаги, смоченной 25%-ным водным
раствором
аммиака
с
экспозицией
20 секунд,
после
предварительной
поверхностной анестезии роговой оболочки 2%-ным раствором новокаина.
Перед началом лечения, которое начиналось на 3-и сутки после
экспериментального
воспроизведения
конъюнктиво-кератита,
подопытных
животных разделили на 5 групп по 3 кролика в каждой.
Для изучения изменений клинических признаков при экспериментальных
конъюнктиво-кератитах первая группа животных служила контролем. Лечение
этой группы не проводилось. Животных второй группы лечили общепринятым
способом – 1%-ной глазной тетрациклиновой мазью. Третью группу лечили
водным 50%-ным раствором препарата Конкерит. В четвертой группе лечение
проводили водным 75%-ным раствором препарата Конкерит. Пятую группу
лечили нативным препаратом.
Апробацию результатов экспериментальных исследований по изучению
влияния препарата Конкерит на течение конъюнктиво-кератитов проводили на
клинически
больных
консультативный
центр
кошках
КГВАМ
и
собаках,
и
больном
поступивших
крупном
в
лечебно-
рогатом
скоте,
принадлежащем хозяйствам Сармановского и Кайбицкого районов Республики
Татарстан (таблица 1).
В пятой серии опытов эффективность предлагаемого метода лечения
клинических случаев конъюнктиво-кератита определяли у кошек и собак,
поступивших в лечебно-консультативный центр КГАВМ. В серию были
включены 13 кошек и 10 собак, которые были разделены на 2 группы.
Первая группа – 7 кошек и 5 собак с гнойным и катаральным
конъюнктиво-кератитом. Лечение их проводили Конкеритом и общим курсом
препаратов, в который входят цефазолина натриевая соль и раствор
аскорбиновой кислоты внутримышечно в соответствующих дозах.
Вторая группа – 6 кошек и 5 собак с гнойным и катаральным
конъюнктиво-кератитом, лечение предлагаемым препаратом и новокаиновой
52
блокадой краниального шейного симпатического ганглия по А.Н. Голикову и
С.Т. Шитову (1963), блокаду повторяли через каждые 3 дня.
У всех животных исследовали общее клиническое состояние, температуру
тела, пульс и число дыхательных движений в минуту, определяли клинические
признаки конъюнктиво-кератита в динамике.
Шестая серия опытов была проведена на базе а/ф «Сарман» отделение
Янурусово
Сармановского
района
Республики
Татарстан.
Провели
сравнительную оценку общепринятого и предлагаемого методов лечения.
Были созданы две группы животных по 26 голов больных конъюнктивокератитом по принципу пар аналогов. Первую группу лечили общепринятым
методом в хозяйстве – мазью Мизофен. Вторую группу лечили препаратом
Конкерит. Мазь закладывали в конъюнктивальный мешок, а Конкерит
закапывали два раза в день.
За животными вели клинические наблюдения, при этом обращали
внимание на общее состояние, пищевую возбудимость, температуру тела,
частоту пульса и число дыхательных движений в минуту, а также качественные
характеристики их глаз.
В обеих группах провели забор крови для биохимических исследований,
который исследовали в Районном Государственном Ветеринарном Объединении
Сармановского района. Кровь взяли как фоновый показатель у здоровых
животных, на 6-е и 12-е сутки лечения Конкеритом, на 6-е и 12-е сутки лечения
Мизофеном. При биохимическом исследовании крови определяли содержание
общего белка в сыворотке крови на рефрактометре ИРФ-22, кальция –
трилонометрическим методом с мурексидом, неорганического фосфора по В.Ф.
Коромыслову и А.П. Кудрявцевой (1972), каротина по Ф. А. Рачевскому (Ф.З.
Андросов, 1981).
Седьмая серия опытов была проведена на базе а/ф «Ак барс холдинг»
отделение Р. Берлибаш Кайбицкого района Республики Татарстан. Провели
сравнительную оценку общепринятого и предлагаемого способов лечения.
53
Были созданы две группы животных по 17 голов больных конъюнктивокератитом по принципу пар аналогов. Первую группу лечили общепринятым
методом в хозяйстве – 1%-ной тетрациклиновой мазью. Вторую группу лечили
предлагаемым препаратом Конкерит. В конъюнктивальный мешок закладывали
мазь, а Конкерит закапывали два раза в день.
В процессе опытов за животными вели клинические наблюдения. При
этом обращали внимание на общее состояние, пищевую возбудимость,
температуру тела, частоту пульса и число дыхательных движений в минуту, а
также характеристики их глаз.
Течение воспалительного процесса роговицы и конъюнктивы у животных
шестой и седьмой серии опытов изучали путем клинико-офтальмологических
исследований по методике, описанной В.Н. Авроровым, А.В. Лебедевым (1985).
Исследования состояли из осмотра, пальпации, исследования кератоскопом,
боковым фокусным освещением, офтальмоскопии. Эффективность методов
лечения определяли по результатам снижения острых воспалительных явлений,
срокам исчезновения клинических признаков конъюнктиво – кератита и полного
клинического выздоровления животного.
Провели
забор
крови
для
проведения
морфологических
и
иммунологических исследований. Исследования проводили на базе ФГБУ
«Федеральный центр токсикологической, радиационной и биологической
безопасности» (ФГБУ «ФЦТРБ-ВНИВИ»). Кровь стабилизировали гепарином
(25 ЕД на 1 мл крови). Кровь получали общепринятым способом из яремной
вены путем прокола ее иглой и для наполнения вены кровью прижимали ниже
места прокола.
Морфологические
лейкограмму,
показатели
гемоглобин
крови:
определяли
количество
общепринятыми
лейкоцитов,
методами
(И.П.
Кондрахин, 2004).
Оценку специфического иммунного статуса проводили стандартными
методами,
включающими
периферической
крови
в
определение
реакции
содержания
спонтанного
Т-лимфоцитов
в
розеткообразования
с
54
эритроцитами барана (М.А. Бажин, 1989; Р.В. Петров и др., 1992), Влимфоцитов – методом спонтанного розеткообразования с эритроцитами мыши
(Д.К. Новиков, В.И. Новикова, 1996). Количество «активных» форм Тлимфоцитов определяли в реакции спонтанного розеткообразования (Е-РОК)
без холодовой инкубации. Количество Т-хелперов и Т-супрессоров определяли
в
реакции
розеткообразовании
(Е-РОК)
с
теофилином,
коэффициент
дифференцировки Т-лимфоцитов (КДТЛ) (Д.К. Новиков, В.И. Новикова, 1996).
Для обработки лимфоцитов теофилином в пробирку поместили 0,2 мл
взвеси лейкоцитов и равный объем 0,01 мл раствора теофилина (0,2 мл среды
Хенкса, подогретой до 60˚С, добавили 0,36 мг теофилина), перемешали и
выдержали при 37˚С 60 минут. По окончании инкубации смесь разбавили
средой и осаждали при 500 об. в течение 10 мин. Супернатант удалили, объем
взвеси довели до 0,2 мл.
Для получения лейкоцитарной взвеси и определения Т- и В- лимфоцитов
взяли 2 мл венозной крови в пробирку с 50 ед. гепарина. Антикоагулянт
приготовили на физрастворе в соотношении 1:10 и добавили в объеме 0,15 мл.
В пробирки Флоренского внесли по 0,6 мл крови и 5 мл 0,83% раствора
хлористого аммония. Спустя 15-20 минут пробирки центрифугировали при 1500
об/мин. 4-5 мин. Надосадочную жидкость слили, к осадку добавили 0,5 мл
хлористого аммония, спустя 15-20 минут добавили 2,5 мл раствора Хенкса.
Лейкоциты с осадка перевели во взвесь пипетированием. Затем 2 пробирки
объединили в одну и центрифугировали при 1500 об/мин 4-5 мин.
Надосадочную жидкость слили, а к осадку добавили 1мл среды 199. Лейкоциты
перевели во взвесь, после чего определили процент живых и мертвых клеток.
Для этого равные объемы краски (смесь равных объемов 0,1%-го водного
раствора эозина и трепанового синего) и взвеси лейкоцитов смешали и держали
в термостате 5 мин. В камере Горяева подсчитывали количество окрашенных
(погибших) и неокрашенных (живых) клеток (лейкоцитов) и устанавливали
процент (из 200 клеток), а затем довели концентрацию лейкоцитов 2х10 6 клеток
в 1мл (А.А. Кудрявцев, Л.А. Кудрявцева, 1974).
55
Для консервирования эритроцитов и приготовления индикаторных систем,
кровь у барана взяли из яремной вены с соблюдением правил асептики в сосуд
со стеклянными бусами. К 5мл дифибринированной крови прибавили 5 мл
стерильного физраствора и центрифугировали при 1500 об/мин в течение 10
мин. Жидкую часть слили, а осадок дважды отмыли в стерильном физрастворе
при том же режиме, 5 мл перенесли в стерильную пробирку с 50 мг
стрептомицина сульфата и перемешали в течение 40-50 сек. вращательными
движениями пробирки. Пробирку закрыли ватной пробкой и поставили в
холодильник.
Перед
постановкой
реакции
кровь,
консервированную
указанным
способом смешивали в равных соотношениях с физиологическим раствором и
отмыли их при 1500 об/мин 15-20 мин. до полного обесцвечивания
надосадочной жидкости, после чего приготовили суспензию эритроцитов
необходимой концентрации.
Для постановки реакции и определения В-лимфоцитов к 0,4 мл
лейкоцитарной взвеси добавили 0,4 мл индикаторной системы и инкубировали
при 37˚С 30 минут. После этого пробы поместили в холодильник на 10 часов для
стабилизации.
Для приготовления и подсчета мазков в пробы добавили 0,1 мл
охлажденного 0,6%-го раствора ГА (глутарового альдегида) и фиксировали 20
минут. Часть среды высосали, осторожно перемешали осадок и сделали мазки,
после чего их зафиксировали абсолютным спиртом 10 минут и покрасили по
Романовскому-Гимза 30-40 мин. Подсчет розеткообразующих клеток произвели
под иммерсионной системой микроскопа. Розеткообразующей считали клетку к
которой прикреплено не менее 3-х эритроцитов. Подсчитали 200 клеток.
Для постановки реакции на определение Т-лимфоцитов к 0,4 мл
лейкоцитарной взвеси добавили 0,4 мл индикаторной системы и инкубировали
при 37˚С 30 минут. После этого пробы поместили в холодильник на 10 часов для
стабилизации. Для приготовления и подсчета мазков в пробы добавили 0,05 мл
3%-го раствора ГА в фосфатном буфере рН 7,4. Фиксацию осуществили в
56
течение 20 минут при комнатной температуре, прекратили добавлением избытка
дН 2 О (1,0мл). Клетки осадили центрифугированием 1500 об/мин 5 минут,
высосали
большую
часть
надосадочной
жидкости.
Оставшуюся
смесь
тщательно ресуспензировали, сделали мазки, зафиксировали абсолютным
спиртом
и
покрасили
по
Романовскому-Гимза
30-40
мин.
Подсчет
розеткообразующих клеток произвели под иммерсионной системой микроскопа.
Розеткообразующей считали клетку к которой прикреплено не менее 3-х
эритроцитов. Подсчитали 200 клеток.
Для учета Т- и В- клеток произвели как в процентах (по отношению ко
всем лимфоцитам), так и в абсолютных (1 мм²
крови) показателях.
Относительное содержание лимфоцитов в крови не является достаточно
объективным показателем, т.к. количество этой популяции, в значительной
степени зависит от общего количества лимфоцитов в 1 мм² крови и процента
всех лимфоцитов среди них. Абсолютное количество Т- и В-лимфоцитов
рассчитывали по формуле:
A B  C
1000 , где
А – количество лейкоцитов в 1 мм² крови,
В – процент всех лимфоцитов среди лейкоцитов,
С - % лимфоцитов сформировавших «розетки».
Фагоцитарную активность нейтрофилов (ФАН) и фагоцитарное число
(ФЧ) определяли по методу Е.А. Коста и М.И. Стенко (1981) с использованием
тест-культуры Staphylococcus aureus. В стеклянную пробирку налили 0,1мл
крови с антикоагулянтом и добавили 0,05 мл убитой суточной культуры
стафилококка в концентрации 1-2 млрд./мл. Смесь инкубировали в термостате
при 37˚С в течение 30 минут. Затем приготовили мазки на предметном стекле.
Мазок высушили на воздухе при комнатной температуре, зафиксировали
спиртом и окрасили по Романовскому-Гимза (Азур-Эозин). Подсчитали 100
нейтрофилов, вычислили из них процент фагоцитирующих. Для определения
57
ФЧ подсчитали общее количество микробов, захваченных фагоцитирующими
нейтрофилами, и делили это число на процент фагоцитоза.
Для определения бактерицидной активности сыворотки крови St. аureus
пользовались методикой О.В. Смирновой, Т.А. Кузминой и И.Б. Исиченко
(1981), а для определения лизоцимной активности методикой В.Г. Дорофейчука
(1968).
Для определения бактерицидной активности сыворотки крови в пробирки
с 4,5 мл стерильного бульона Хоттингера добавили по 1 мл испытываемой
сыворотки. Затем пастеризованной пипеткой во все пробирки внесли по капле
24-х часовой
бульонной культуры E.coli. Контролем служит пробирка с
бульоном и культурой без сыворотки. Содержимое пробирок перемешали и
определили оптическую плотность (ОП) на ФЭКе. Смесь поместили в термостат
на 3 часа при 37 ˚С, снова определили ОП.
100
D1  D 2
 100 , где
D3  D 4
D1 – данные опыта через 3 часа,
D2 – данные опыта сразу,
D3 – данные контроля через 3 часа,
D4 – данные контроля сразу.
Для определения лизоцимной активности сыворотки крови к 1,47 мл
приготовленной микробной взвеси добавили по 0,03 мл исследуемой сыворотки,
пробирку встряхивали, определили оптическую плотность. Далее смесь
инкубировали 1 час при 37 ˚С, определяли оптическую плотность.
Д1  Д 2
 100 , где
Д1
Д1 – оптическая плотность до инкубации,
Д2 – оптическая плотность после инкубации.
Результаты клинических и лабораторных исследований регистрировали в
специальных журналах. Достоверность различий средних двух выборок
оценивали при помощи t-критерия Стьюдента (А.М. Кушнирская, 1984).
58
2.2 Результаты исследований
2.2.1. Гельминтологические исследования смывов из конъюнктивального
мешка крупного рогатого скота
Для выявления этиологии конъюнктиво-кератитов крупного рогатого
скота были проведены клинические и лабораторные исследования на базе ОАО
«Заволжье», отделение Р.Берлибаш Кайбицкого района Республики Татарстан,
агрофирмы «Сарман», отделение Янурусово Сармановского района Республики
Татарстан и кафедры ветеринарной хирургии КГАВМ им. Н.Э. Баумана.
Все
происследованные
животные
имели
клинические
признаки
конъюнктиво-кератита.
В отделении Р.Берлибаш Кайбицкого района Республики Татарстан было
происследовано 34 животных, из них все 34 имели признаки телязиозного
конъюнктиво-кератита. На предметных стеклах с центрифугированным
осадком, под микроскопом, обнаруживали половозрелые гельминты и личинки
телязий (Ф.А. Сунагатуллин, Д.А. Шарафутдинов, 2013; Д.А. Шарафутдинов,
2013)
В отделении Янурусово Сармановского района Республики Татарстан
было происследовано 52 животных и все из них имели признаки телязиозного
конъюнктиво-кератита. В осадках смыва из глаз так же были обнаружены
половозрелые гельминты и личинки телязий, которые по видовым признакам
были определены как Th. rhodesi (Д.А. Шарафутдинов, Ф.А. Сунагатуллин,
2013).
У всех больных животных отмечалось угнетение общего состояния,
понижение пищевой возбудимости. Пульс заметно не изменялся. Поражения
глаз носили односторонний характер, заболевание проявлялось слезотечением,
выделением из глаз слизисто-гнойного экссудата. Поверхность роговицы была
шероховатой
и
имела
диффузный
инфильтрат
от
серовато-белого
до
59
интенсивно-молочного цвета. Отмечались сильно выраженный блефароспазм,
болезненность глазного яблока при пальпации, инъекция сосудов роговицы.
Таким
образом,
результаты
гельминтологических
исследований
содержимого конъюнктивального мешка крупного рогатого скота показали
наличие половозрелых гельминтов и личинок телязий, которые и послужили
причиной развития конъюнктиво-кератита.
2.2.2. Микробиологические исследования
содержимого конъюнктивального мешка
у подопытных животных
При исследовании видового состава микроорганизмов содержимого
конъюнктивального мешка здоровых и больных конъюнктиво-кератитом кошек,
собак и крупного рогатого скота были определены следующие виды условнопатогенных
микроорганизмов:
стафилококки,
стрептококки,
диплококки,
кишечная палочка и протей. Из здоровых глаз в основном выделяли кокковую
микрофлору (S. aureus, S. epidermidis, Str. Epidermidis, Diplococcus septicus). Из
глаз крупного рогатого скота, как здоровых, так и больных конъюнктивокератитом, наряду с кокками, были обнаружены и грамотрицательные (P.
vulgaris, E. coli) и спорообразующие грамположительные палочки. По родовым
признакам спорообразующие грамположительные палочки, которые могли быть
отнесены к роду Bacillus, по имеющимся тестам не удалось идентифицировать
до вида. Стафилококки, стрептококки, диплококки, кишечную палочку и протей
идентифицировали
по
характерным
морфологическим,
культуральным,
биохимическим и тинкториальным свойствам.
Не идентифицированные грамположительные палочки образовывали
центрально расположенные споры, обладали подвижностью при температуре 22
и 37 °С, способностью аэробного и анаэробного роста. На МПА росли в виде
морщинистых, серовато-белых, вросших в агар колоний. На МПБ отмечалось
образование полупрозрачной, грубой, морщинистой пленки и крошковидного
60
осадка. Бульон был чистым. На СИБ бациллы сбраживали глюкозу с
образованием кислоты без газа, лактозу и не сбраживали сорбит и маннит.
Также обладали каталазной и оксидазной активностью.
2.2.3. Разработка препарата Конкерит
Изучение действия препарата Конкерит на внутренние органы
Нами на кафедре ветеринарной хирургии Казанской государственной
академии ветеринарной медицины им. Н.Э. Баумана были разработан препарат
под условным названием Конкерит. Полученный препарат обладает широким
спектром
местно-анестезирующего,
противомикробного
и
противовоспалительного действия. Входящий в состав предлагаемого препарата
дексаметазон подавляет активность фибробластов и образование коллагена.
Новокаин угнетает возникновение и проведение центростремительных нервных
импульсов путем нарушения проницаемости клеточных мембран для ионов
натрия и калия, оказывает местно-анестезирующее действие, при всасывании
тормозит синтез ацетилхолина и понижает реактивность периферических
холинореактивных
систем,
спазмолитический эффект,
блокирует
вегетативные
ганглии,
уменьшает возбудимость миокарда,
дает
угнетает
моторные зоны коры большого мозга. Цефазолин взаимодействует со
специфическими
пенициллинсвязывающими
белками
на
поверхности
цитоплазматической мембраны, тормозит синтез пептидогликанового слоя
клеточной
стенки
(ингибирует
транспептидазу,
угнетает
образование
поперечных сшивок цепочек пептидогликана), высвобождает аутолитические
ферменты клеточной стенки, вызывая ее повреждение и гибель бактерий.
Гистологические исследования сердца и паренхиматозных органов
мышей, при внутрижелудочном введении препарата Конкерит в дозе 1мл,
деструктивных изменений в строении органов не показали. В печени структура
дольчатого и балочного строения была сохранена. Центральные вены долек
61
умеренно полнокровные, триады печени проходят вокруг дольки, состоят из
ветвей печеночной артерии, воротной вены и желчного протока. В почках
граница между корковым и мозговым веществом выражена. Корковое вещество
состоит из клубочков, сосудов, канальцев и интерстиция. Миокард состоит из
поперечнополосатой сердечной мышечной ткани, межмышечной рыхлой
соединительной ткани, многочисленных сосудов и капилляров. В миокарде
отмечается полнокровие кровеносных сосудов. Умеренно выраженный отек
интерстиции. Селезенка снаружи покрыта капсулой, состоящей из мизотелия,
волокнистой соединительной ткани и гладких миоцитов. От капсулы внутрь
отходят перекладины-трабекулы, анастомозирующие между собой. Капсула и
трабекулы
трабекулами
образуют
опорно-сократительный
находится
пульпа
селезенки,
аппарат
основу
селезенки.
которой
Между
составляет
ретикулярная ткань.
Таким образом, внутрижелудочное введение препарата Конкерит не
вызывает деструктивных изменений в строении сердца и паренхиматозных
органов (печень, почки и селезенка).
2.2.4. Определение антимикробной активности
и бактериостатического влияния различных
растворов Конкерита
Определение антимикробной активности различных растворов Конкерита
методом диффузии в агар с применением дисков пропитанных нативным
препаратом Конкерит и его водными 15, 25, 50, 75%-ными растворами
проводили на S. aureus штамма 209Р и E. coli штамма 0126 показало, что диски,
пропитанные соответствующими водными растворами препарата, задерживают
рост микробов обеих культур, который при измерении составил 25 мм и более.
Вокруг диска, пропитанного водным раствором тетрациклина гидрохлорида с
концентрацией 10 тыс. ЕД в 1 мл наблюдалась задержка роста микробов,
которая при измерении составила 25 мм и более.
62
Определение контактного бактериостатического влияния проводили на
препарате Конкерит и его водных 1, 5, 15, 25, 50, 75%-ных растворах. Водные 1
и 5%-ные растворы препарата Конкерит при посеве их с микробной культурой
на питательные среды в течение 1, 3, 6, 12 и 24 часов не подавлял рост
микробных культур, что можно было судить по прорастанию их на питательной
среде. Тогда как нативный препарат и его водные 15, 25, 50, 75%-ные растворы
обладают выраженными антимикробными свойствами и при посеве растворов с
микробными культурами на питательные среды (МПА, среда Эндо) приводят к
полному подавлению роста микробных культур.
Водный раствор тетрациклина гидрохлорида с концентрацией 10 тыс. ЕД
в 1 мл, использованный в качестве контроля, полностью подавлял рост
микробных культур на питательных средах.
Таким образом, исследования показали, что препарат Конкерит и его
водные 15, 25, 50, 75%-ные растворы обладают выраженными антимикробными
свойствами и приводят к полному подавлению роста микробных культур S.
aureus штамма 209Р и E. coli штамма 0126 (Д.А. Шарафутдинов, 2013).
2.2.5. Определение местного раздражающего действия различных
растворов Конкерита
В результате опытов на 15 крысах и 15 кроликах по изучению местного
раздражающего действия на конъюнктиву и роговицу различных растворов
препарата Конкерит было установлено, что нативный препарат и его водные 15,
25, 50, 75%-ные растворы не оказывают раздражающего действия. В процессе
наблюдения за испытуемыми крысами и кроликами было замечено, что у всех
животных
конъюнктива была бледно-розовой, влажной, слабо бархатистой,
блестящей, а роговица – зеркальной. Так же не отмечалось каких-либо
воспалений, блефароспазма и истечений из конъюнктивы и роговицы.
63
2.2.6. Лечение кроликов с экспериментальным
конъюнктиво-кератитом
2.2.6.1. Исследования кроликов контрольной группы
(1 группа)
После химического раздражения конъюнктивы и роговицы, контрольной
группы аппликацией фильтровальной бумаги, смоченной 25%-ным раствором
аммиака, клинические признаки были следующими: в течение 1-2-е суток
наблюдалась
сильная
гиперемия
и
отек
конъюнктивы,
блефароспазм,
поверхность конъюнктивы и роговицы теряла блеск, была с помутнением.
Общее клиническое состояние животных, температура тела, частота пульса и
число дыхательных движений в минуту были без существенных изменений.
На третий день наблюдений отечность конъюнктивы век и роговицы
уменьшились. Отделяемое из глаз приобретало серозно-слизистый характер и
накапливалось в углах глаз. Была выражена конъюнктивальная инъекция
сосудов. Роговица была дымчатой, по периферии появился диффузный
инфильтрат серого, а в середине – интенсивно-белого цвета.
На 4-6-е сутки конъюнктива оставалась сильно гиперемированной, отек
век отсутствовал. Отделяемое из глаз уменьшилось и носило серознокатаральный характер. На роговице увеличивался рост кровеносных сосудов
которые имели ярко-красный цвет, анастомозировали друг с другом, древовидно
ветвились и охватывали роговицу сетью мелких петель. Рост кровеносных
сосудов переходил с конъюнктивы склеры на роговицу.
На 15-е сутки наблюдалось угнетенное состояние кроликов. Гиперемия
конъюнктивы
была
умеренной.
Конъюнктивальная
инъекция
сосудов
сохранялась. Отделяемое из глаз уменьшилось и носило серозно-катаральный
характер. Роговица была полностью покрыта пленкой, поверхность была
шероховатой, инфильтрат носил интенсивно-белый цвет. Также на роговице
обнаруживались кровеносные сосуды. По периферии роговицы обнаруживалась
64
тонкая линия перикорнеальной инъекции сосудов конъюнктивы, которая была
более выражена к лимбу и убывала к своду конъюнктивы.
У всех животных этой группы на 18-21-е сутки острый катаральный
конъюнктивит переходил в хронический, который осложнялся глубоким
воспалением роговицы с глубокой васкуляризацией роговой оболочки.
2.2.6.2. Лечение кроликов опытных групп, больных
конъюнктиво-кератитом
У опытных животных, в течение первых суток, в результате клинических
наблюдений
было
установлено,
что
после
химического
раздражения
конъюнктивы и роговицы 25%-ным водным раствором аммиака, отмечалось
незначительное угнетение общего клинического состояния. У кроликов
развивался сильный блефароспазм и слезотечение, конъюнктива была умеренно
гиперемированной и отечной. На 3-и сутки наблюдений отечность конъюнктивы
век и блефароспазм уменьшились, истечения носили серозно-катаральный
характер, роговица была мутной. Серовато-белая инфильтрация была более
выражена в центре.
Течение воспалительного процесса конъюнктивы и роговицы при лечении
1%-ной тетрациклиновой мазью (2 группа)
При лечении 1%-ной тетрациклиновой мазью у всех животных этой
группы наблюдалось угнетенное состояние, понижение пищевой возбудимости,
а изменений показателей пульса, температуры тела и числа дыхательных
движений в минуту до 3-х суток не происходило. На 6-е сутки лечения
гиперемия конъюнктивы и отек уменьшались, истечения из глаз отсутствовали.
Конъюнктивальная инъекция сосудов роговицы отсутствовала. Инфильтрат
роговицы был интенсивно-белым. Роговица была охвачена небольшим
количеством сетью мелких петель. На 8-9-е сутки улучшилось общее состояние
65
опытных
кроликов.
Конъюнктива
была
умеренно
гиперемирована.
Интенсивность инфильтрата роговицы уменьшилась и имела сероватый оттенок,
по ее периферии образовалась полоска перикорнеальной инъекции сосудов
красного цвета. К 12-м суткам лечения помутнение роговицы ослабевало и по
периферии приобретала дымчатость. Гиперемия конъюнктивы сохранилась, а
перикорнеальная инъекция сосудов истончилась. К 16-17-м суткам наблюдалось
отсутствие гиперемии конъюнктивы и перикорнеальной инъекции сосудов.
Исчезло дымчатое помутнение роговицы. Радужка была без патологических
изменений, передняя камера глаза хорошо просматривалась. Клинические
признаки исчезали и полное клиническое выздоровление наступало на 16,33+
0,58 сутки лечения мазью.
Выписка из истории болезни № 4
Кролик – самец, белого окраса, 2,4 года, кличка «Белый 1», масса тела 4,03
кг, принадлежит кафедре ветеринарной хирургии КГАВМ им. Н.Э. Баумана.
15.01.12г. у животного экспериментально было вызвано раздражение
роговицы 25%-ным водным раствором аммиака.
18.01.12г. Клиника: Т-38,7˚С; П-126; Д-53. Общее состояние угнетенное,
аппетит у животного сохранен. Наблюдается сильный блефароспазм правого
глаза, конъюнктива век сильно гиперемирована и отечна. Наблюдаются
истечение серозного характера в небольшом количестве. Роговица носит
диффузно
помутневший
характер.
Цвет
инфильтрата
интенсивно-белый
(рисунок 2).
Диагноз: Поверхностный диффузно-катаральный кератит и катаральный
конъюнктивит правого глаза.
Лечение:
Промывание
физиологическим
раствором
скопившегося
экссудата и ежедневное двукратное закладывание 1%-ой тетрациклиновой мази
в конъюнктивальный мешок.
25.01.12г. Клиника: Т-38,8˚С; П-123; Д-58. Общее состояние животного
угнетенное, а пищевая возбудимость сохранена. Блефароспазм правого глаза
66
Рисунок 2 - Кролик «Белый 1», правый глаз перед началом лечения при
поверхностном диффузно-катаральном кератите и катаральном конъюнктивите
Рисунок 3 - Кролик «Белый 1», правый глаз на 7-й день лечения при поверхностном
диффузно-катаральном кератите и катаральном конъюнктивите
67
отсутствует, но сохраняется сильная гиперемия конъюнктивы век. Инфильтрат
роговицы имеет сероватый оттенок, который при переходе к центру роговой
оболочки
выражается
интенсивнее.
Конъюнктивальная
васкуляризация
роговицы сохранена (рисунок 3).
Лечение: Такое же, как 18.01.12г.
29.01.12г. Клиника: Т-39,0˚С; П-117; Д-52. Общее состояние животного без
существенных
изменений, аппетит сохранен. Конъюнктива век бледно-
красного цвета и слабо геперемирована. По периферии роговицы широкая
полоса просветления, инфильтрат сохраняется лишь по центру роговой
оболочки. В доступных для исследования боковым фокусным освещением
участках радужка, передняя камера глаза без патологических изменений.
Сосуды конъюнктивальной васкуляризации роговицы истончились и утратили
древовидный рисунок (рисунок 4).
Рисунок 4 - Кролик «Белый 1», правый глаз на 11-й день лечения при поверхностном
диффузно-катаральном кератите и катаральном конъюнктивите
Лечение: Такое же, как 18.01.12г.
68
02.02.12г. Клиника: Т-39,1˚С; П-122; Д-54. Общее состояние животного не
угнетенное, аппетит сохранен. Конъюнктива век не гиперемирована. Роговица
влажная, блестящая, прозрачная и без помутнений. Отсутствует васкуляризация
роговицы. Передняя камера глаза не имеет патологических изменений. Зрачок
реагирует на свет, радужка без изменений. Дно глаза при офтальмоскопии
просматривается (рисунок 5).
Исход: Полное клиническое выздоровление.
Рисунок 5 - Кролик «Белый 1», правый глаз на 15-й день лечения при поверхностном
диффузно-катаральном кератите и катаральном конъюнктивите
Течение воспалительного процесса конъюнктивы и роговицы при лечении
водным 50%-ным раствором препарата Конкерит (3 группа)
При лечении водным 50%-ным раствором препарата Конкерит улучшение
наступило на 4-е сутки, и исчезли такие клинические признаки как: истечение из
глаз, блефароспазм и отечность, но конъюнктива век оставалась умеренно
гиперемированной. Инъекция сосудов роговицы была выражена, помутнение
69
роговицы присутствовало. На 8-10-е сутки произошло просветление роговицы
по периферии, но в центре наблюдалось небольшое помутнение белого цвета.
Гиперемия конъюнктивы уменьшилась. Полное клиническое выздоровление
кроликов этой группы происходило на 13,67+1,53 сутки. О полном клиническом
выздоровлении судили по исчезновению таких признаков конъюнктивокератита как: гиперемия конъюнктивы век, помутнения роговицы, инъекции
сосудов роговицы. Осложнение патологического процесса и воспаление
сосудистого тракта и радужной оболочки не происходило. Передняя камера
глаза при боковом фокусном освещении хорошо просматривалась.
Выписка из истории болезни № 7
Кролик – самка, серого окраса, возраст 2,4 года, кличка «Серый 3», масса
тела 4,14 кг, принадлежит кафедре ветеринарной хирургии КГАВМ им. Н.Э.
Баумана.
Рисунок 6 - Кролик «Серый 3», правый глаз перед началом лечения при
поверхностном диффузно-катаральном кератите и катаральном конъюнктивите
70
15.01.12г. у животного экспериментально было вызвано раздражение
роговицы 25%-ным водным раствором аммиака.
18.01.12г. Клиника: Т-39,1˚С; П-131; Д-59. Общее состояние животного
угнетенное. Пищевая возбудимость сохраняется. Правый глаз полузакрыт,
наблюдается слезотечение, сильная гиперемия конъюнктивы и ее отек.
Помутнее носит диффузный характер, цвет серовато-белый (рисунок 6).
Диагноз: Поверхностный диффузно-катаральный кератит и катаральный
конъюнктивит правого глаза.
Лечение:
Промывание
физиологическим
раствором
скопившегося
экссудата и ежедневное двукратное закапывание 2-3-х капель водного 50%-ного
раствора препарата Конкерит в конъюнктивальный мешок.
25.01.12г. Клиника: Т-39,0˚С; П-125; Д-50. Общее состояние животного
угнетенное, аппетит сохранен. Гиперемия и отек конъюнктивы умеренные. По
периферии
роговицы
наблюдается просветление, а в центре небольшое
Рисунок 7 - Кролик «Серый 3», правый глаз на 7-й день лечения при поверхностном
диффузно-катаральном кератите и катаральном конъюнктивите
71
помутнение белого цвета. При исследовании боковым фокусным освещением
роговицы конъюнктивальная инъекция обнаруживается с трудом (рисунок 7).
Лечение: Такое же, как 18.01.12г.
31.01.12г. Клиника: Т-39,1˚С; П-122; Д-54. Общее клиническое состояние
не угнетенное. Аппетит сохранен. При исследовании боковым фокусным
освещением роговица глаза гладкая, блестящая, прозрачная, зеркальная. Зрачок
реагирует на свет, радужка и передняя камера глаза без изменений. Зрительная
способность глаза восстановлена. При офтальмоскопии дно глаза без
патологических изменений (рисунок 8).
Рисунок 8 - Кролик «Серый 3», правый глаз на 13-й день лечения при поверхностном
диффузно-катаральном кератите и катаральном конъюнктивите
Исход: Полное клиническое выздоровление.
Течение воспалительного процесса конъюнктивы и роговицы при лечении
водным 75%-ным раствором препарата Конкерит (4 группа)
Клинические наблюдения за кроликами этой группы показали, что
72
состояние животных в течение первых трех дней было угнетенным, но пищевая
возбудимость сохранялась. Температура тела, пульс и число дыхательных
движений в минуту были без видимых изменений. Наблюдался умеренный
блефароспазм, гиперемия конъюнктивы и ее отечность. Роговица была покрыта
дымчатой
пленкой
интенсивно-белого
цвета.
На
5-6-е
сутки
лечения
блефароспазм носил не существенный характер, гиперемия и отек конъюнктивы
уменьшились. Дымчатое помутнение роговицы исчезало по краям, но
оставалось по центру и имело сероватый оттенок. На 12,67+1,53 сутки
происходило полное клиническое выздоровление животных, и роговица глаза
просветлела, гиперемия и отек конъюнктивы спали. Поверхность роговицы
была гладкой, зеркальной и блестящей. Зрачок реагировал на свет и был
подвижным.
Выписка из истории болезни № 11
Кролик – самка, белого окраса, возраст 2,3 года, кличка «Белый 6», масса
тела 4,23 кг, принадлежит кафедре ветеринарной хирургии КГАВМ им. Н.Э.
Баумана.
15.01.12г. у животного экспериментально было вызвано раздражение
роговицы 25%-ным водным раствором аммиака.
18.01.12г. Клиника: Т-39,0˚С; П-122; Д-50. Общее состояние животного
удовлетворительное, пищевая возбудимость сохранена. Блефароспазм правого
глаза сильный, наблюдается сильная гиперемия и отек конъюнктивы век.
Истечения из глаз небольшие, носят серозный характер. Роговица глаза
диффузно помутневшая, помутнение интенсивно-белое (рисунок 9).
Диагноз: Поверхностный диффузно-катаральный кератит и катаральный
конъюнктивит правого глаза.
Лечение:
Промывание
физиологическим
раствором
скопившегося
экссудата и ежедневное двукратное закапывание 2-3-х капель водного 75%-ного
раствора препарата Конкерит в конъюнктивальный мешок.
73
Рисунок 9 - Кролик «Белый 6», правый глаз перед началом лечения при
поверхностном диффузно-катаральном кератите и катаральном конъюнктивите
22.01.12г. Клиника: Т-38,9˚С; П-130; Д-60. Общее клиническое состояние
животного
угнетенное,
аппетит
сохранен.
Сохраняется
незначительное
гиперемия и отек конъюнктивы. Помутнение роговицы носит дымчатый
характер и находится в центре, по краям помутнение отсутствует. Истечение из
глаз отсутствует. Конъюнктивальная васкуляризация роговицы отсутствует
(рисунок 10).
Лечение: Такое же, как 18.01.12г.
29.01.12г. Клиника: Т-38,9˚С; П-136; Д-53. Общее клиническое состояние
животного не угнетенное, пищевая возбудимость сохранена. Цвет конъюнктивы
бледно-розовый,
роговица
зеркальная,
блестящая,
без
помутнений.
Патологическое состояние роговицы не обнаруживается. Зрачок реагирует на
свет, картина дна глаза соответствует норме (рисунок 11).
74
Рисунок 10 - Кролик «Белый 6», правый глаз на 4-й день лечения при поверхностном
диффузно-катаральном кератите и катаральном конъюнктивите
Рисунок 11 - Кролик «Белый 6», правый глаз на 11-й день лечения при поверхностном
диффузно-катаральном кератите и катаральном конъюнктивите
75
Исход: Полное клиническое выздоровление.
Течение воспалительного процесса конъюнктивы и роговицы при лечении
нативным препаратом Конкерит (5 группа)
После начала лечения животных этой группы в течение первых трех дней
наблюдалась
сильная
гиперемия
конъюнктивы
век
и
блефароспазм.
Наблюдалось слезотечение серозно-катарального характера. Роговица на вид
была шероховатой, сосуды конъюнктивы инъецировались. Роговица была
диффузно-помутневшей. На 6-7-е сутки у животных наблюдалось уменьшение
отека и небольшая гиперемия конъюнктивы. Слезотечение из глаза и
блефароспазм отсутствовали. Сосуды роговицы постепенно облитерировались.
Роговица была мутной и шероховатой только в центре, а цвет помутнения был
сероватый.
Полное
клиническое
выздоровление
кроликов этой группы
наступало на 12,33+1,53 сутки. Роговица была без помутнений и блестящей.
Конъюнктива была бледно-розовой. Зрачок реагировал на свет, и при
офтальмоскопии дно глаза было в норме.
Выписка из истории болезни № 14
Кролик – самец, черного окраса, возраст 2,3 года, кличка «Черный 3»,
масса тела 4,01 кг, принадлежит кафедре ветеринарной хирургии КГАВМ им.
Н.Э. Баумана.
15.01.12г. у животного экспериментально было вызвано раздражение
роговицы 25%-ным водным раствором аммиака.
18.01.12г. Клиника: Т-39,0˚С; П-125; Д-51. Общее клиническое состояние
животного
угнетенное,
аппетит
сохранен.
Наблюдается
гиперемия
конъюнктивы и отек правого глаза. Из больного глаза наблюдаются истечения
серозного характера, также наблюдается блефароспазм. Роговица помутневшая,
помутнение диффузное, инфильтрат интенсивно-белый (рисунок 12).
76
Диагноз: Поверхностный диффузно-катаральный кератит и катаральный
конъюнктивит правого глаза.
Лечение:
Промывание
физиологическим
раствором
скопившегося
экссудата и ежедневное двукратное закапывание 2-3-х капель нативного
препарата Конкерит в конъюнктивальный мешок.
24.01.12г. Клиника: Т-38,8˚С; П-119; Д-57. Общее состояние кролика
угнетенное, а аппетит сохранен. Конъюнктива глаза бледно-розовая, не
гиперемирированная, без отеков. Роговица по краям просветлела, по центру
наблюдается помутнение. Радужка и передняя камера глаза, в доступных для
исследования боковым фокусным освещением местах, без патологических
изменений. Сосуды конъюнктивальной васкуляризации
роговицы утратили
древовидный характер (рисунок 13).
Рисунок 12 - Кролик «Черный 3», правый глаз перед началом лечения при
поверхностном диффузно-катаральном кератите и катаральном конъюнктивите
77
Рисунок 13 - Кролик «Черный 3», правый глаз на 6-й день лечения при поверхностном
диффузно-катаральном кератите и катаральном конъюнктивите
Лечение: Такое же, как 18.01.12г.
30.01.12г. Клиника: Т-38,8˚С; П-119; Д-57. Общее состояние животного не
угнетенное. Аппетит сохранен. Конъюнктива глаза бледно-розовая, роговица
влажная,
блестящая,
васкуляризация
без
патологических изменений.
конъюнктивы
отсутствует.
Конъюнктивальная
Помутнения
роговицы
не
проявляется. При исследовании боковым фокусным освещением передняя
камера глаза без изменений, зрачок реагирует на свет, радужка без
патологических изменений. Дно глаза при офтальмоскопии просматривается
(рисунок 14).
Исход: Полное клиническое выздоровление.
Таким образом, при лечении экспериментально вызванных конъюнктивокератитов у кроликов общепринятым методом 1%-ной тетрациклиновой мазью
выздоровление наступало на 16,33+0,58, водным 50%-ным раствором препарата
Конкерит на 13,67+1,53, водным 75%-ным раствором препарата Конкерит на
78
12,67+1,53, нативным препаратом Конкерит на 12,33+1,53 сутки (Д.А.
Шарафутдинов, 2013).
Рисунок 14 - Кролик «Черный 3», правый глаз на 12-й день лечения при
поверхностном диффузно-катаральном кератите и катаральном конъюнктивите
2.2.7. Лечение домашних плотоядных (кошек и собак), поступивших в
лечебно-консультативный центр КГАВМ
Лечение препаратом Конкерит и общим курсом препаратов, в который
входят цефазолина натриевая соль внутримышечно и аскорбиновая кислота в
соответствующих дозах (1 группа)
Клинические признаки у животных первой группы были следующими: в
первый день наблюдался сильный блефароспазм, гиперемия конъюнктивы век и
ее отечность. Выделения носили гнойный характер. Роговица была диффузно
помутневшей интенсивно грязно-белового цвета. На 3-5-е сутки
лечения
конъюнктива век и склеры были умеренно гиперимированы, а интенсивность
79
лейкоцитарного инфильтрата уменьшилась и приобрела дымчатость по
периферии роговицы. Перикорнеальная инъекция сосудов была сохранена. К
10,33+0,98 суткам конъюнктива приобрела бледно-розовый цвет, а склера
беловатый оттенок. Роговица без помутнений, зеркальная и блестящая. При
исследовании боковым фокусным освещением внутриглазная жидкость в
передней камере глаза была прозрачной, радужка без патологических изменений,
зрачок реагировал на свет.
Выписка из истории болезни № 19
Собака – сука, черно-белого окраса, 2 года, кличка «Месси», беспородная,
масса тела 5 кг.
Анамнез:
Собака
содержится
дома,
условия
кормления
удовлетворительные. Животное заболело 18.11.12г. По словам хозяйки, правый
глаз покраснел и начались истечения.
20.11.12г. Клиника: Т-38,9°С; П-98; Д-24. Общее состояние животного
угнетенное, пищевая возбудимость сохранена. Наблюдается блефароспазм
правого глаза средней степени, из него наблюдается выделение серозного
характера. Конъюнктива век усиленно отечна и гиперимирована. Роговица
помутневшая, серовато-белого цвета, с интенсивной окраской по центру.
Передняя камера глаза и зрачок не просматриваются (рисунок 15).
Диагноз:
Поверхностный
диффузный
катаральный
конънктиво-
кератит правого глаза.
Лечение: Ежедневное
тампонами,
пропитанными
удаление
скопившегося
физиологическим
экссудата
раствором,
ватными
последующее
закапывание препарата Конкерит и внутримышечное введение антибиотика –
цефазолин натриевой соли в дозе 2,5 мл и аскорбиновой кислоты в дозе 0,8мл.
Препараты вводили внутримышечно в бедренную мышцу, а глазные капли
Конкерит закапывали 2 раза в день.
80
Рисунок 15 - Собака «Месси», правый глаз перед началом лечения при
поверхностном диффузном катаральном конънктиво-кератите
24.11.12г. Клиника: Т-38,5°С; П-84; Д-24. Общее состояние животного
без изменений, пищевая возбудимость сохранена. Конъюнктива век и склеры
умеренно
гиперимирована.
уменьшилась
и
Интенсивность
приобрела
лейкоцитарного
дымчатость
по
периферии
инфильтрата
роговицы.
Перикорнеальная инъекция сосудов роговицы обнаруживается в виде темнокоричневой полосы по периферии роговицы, около лимба (рисунок 16).
Лечение: Такое же, как 20.11.12г.
28.11.12г. Клиника: Т – 38,3°С; П-72; Д-20. Общее состояние животного
бодрое, аппетит хороший. Гиперемия конъюнктивы век и склеры отсутствует.
Инфильтрат роговицы остался только в центральной части в виде слабого
дымчатого облачка, периферия прозрачная, можно свободно осматривать
переднюю
камеру
глаза,
зрачок
реагирует
на
свет.
Корнеальная
перикорнеальная инъекция сосудов обнаруживается с трудом.
и
81
Лечение: Такое же, как 20.11.12г.
Рисунок 16 - Собака «Месси», правый глаз на 4-й день лечения при поверхностном
диффузном катаральном конънктиво-кератите
30.11.12г. Клиника: Т-38,4°С; П-78; Д-26. Общее состояние животного не
угнетенное, пищевая возбудимость сохранена. Конъюнктива век бледнорозового цвета, склера приобрела беловатый оттенок. Роговица прозрачная,
блестящая, зеркальная, помутнений при исследовании боковым фокусным
освещением не обнаруживается. Васкуляризация роговицы отсутствует.
Внутриглазная жидкость в передней камере глаза прозрачная, радужка без
изменений, зрачок реагирует на свет (рисунок 17).
Исход: Полное клиническое выздоровление.
82
Рисунок 17 - Собака «Месси», правый глаз на 10-й день лечения при поверхностном
диффузном катаральном конънктиво-кератите
Выписка из истории болезни № 25
Кот – шоколадного окраса, 3 года, масса тела 3,5 кг, кличка «Браун».
Анамнез: Кот содержится дома, условия кормления удовлетворительные.
Животное заболело 04.12.12. По словам хозяина из правого глаза начал
выделяться экссудат, глаз покраснел.
07.12.12г. Клиника: Т-38,5°С; П-119; Д-25. Общее состояние животного
угнетенное.
Пищевая
возбудимость
сохранена.
Наблюдается
сильный
блефароспазм правого глаза, обильное выделение экссудата серозного
характера. Конъюнктива век отечна и гиперимирована. Роговица диффузно
помутневшая, всю роговицу больного глаза покрывает инфильтрат сероватобелого цвета (рисунок 18).
83
Рисунок 18 - Кот «Браун», правый глаз перед началом лечения при поверхностном
диффузном гнойно-катаральном конъюнктиво-кератите
Диагноз:
Поверхностный
диффузный
гнойно-катаральный
скопившегося
экссудата
конъюнктиво-кератит правого глаза.
Лечение:
тампонами,
Ежедневное
пропитанными
удаление
физиологическим
раствором,
ватными
последующее
закапывание препарата Конкерит и внутримышечное введение антибиотика –
цефазолин натриевой соли в дозе 1,5 мл и аскорбиновой кислоты в дозе 0,4 мл.
Препараты вводили внутримышечно в бедренную мышцу, а глазные капли
Конкерит закапывали 2 раза в день.
10.12.12г. Клиника: Т-38,6°С; П-114; Д-24. Общее состояние животного
без изменений, пищевая возбудимость сохранена. Наблюдается блефароспазм
правого глаза, гиперемия конъюнктивы век и склеры уменьшилась, отечность
век незначительная. Выделения из больного глаза слабые, лейкоцитарный
инфильтрат роговицы стал интенсивно белым (рисунок 19).
84
Рисунок 19 - Кот «Браун», правый глаз на 3-й день лечения при поверхностном
диффузном гнойно-катаральном конъюнктиво-кератите
Лечение: Такое же, как 07.12.12 г.
17.12.12г. Клиника: Т-38,6°С; П-114; Д-26. Общее состояние животного
бодрое, пищевая возбудимость сохранена. Конъюнктива век бледно-розового
цвета, склера приобрела беловатый оттенок. Роговица прозрачная, зеркальная,
блестящая,
помутнения
не
обнаруживаются.
Васкуляризация
роговицы
отсутствует, внутриглазная жидкость в передней камере глаза прозрачная,
радужка без патологических изменений. Зрачок реагирует на свет (рисунок 20).
Исход: Полное клиническое выздоровление.
85
Рисунок 20 - Кот «Браун», правый глаз на 10-й день лечения при поверхностном
диффузном гнойно-катаральном конъюнктиво-кератите
Лечение препаратом Конкерит и новокаиновой блокадой краниального
симпатического ганглия по А.Н. Голикову и С.Т. Шитову (2 группа)
Клинические признаки у животных второй группы были следующие: в
первый день наблюдался сильный блефароспазм, гиперемия конъюнктивы век и
ее отечность, выделения носили серозно-катаральный характер. Роговица была
диффузно помутневшая, интенсивно-белого цвета.
На 3-4-е сутки наблюдалась незначительная гиперемия конъюнктивы век
и склеры, инфильтрат роговицы приобрел дымчатость по всей площади
роговицы с уменьшением прозрачности в сторону краев роговицы. Полоска
перикорнеальной инъекции сосудов истончилась и приобрела местный
характер. К 7,62+1,03 суткам конъюнктива приобрела бледно-розовый цвет, а
склера беловатый оттенок. Рогвица была без помутнений, блестящая и
86
зеркальная, а васкуляризация роговицы отсутствовала. При исследовании
боковым фокусным освещением радужка была без патологических изменений,
зрачок реагирует на свет. Полоски перикорнеальной инъекции сосудов не
наблюдалось.
Выписка из истории болезни № 28
Собака – кобель, порода шпиц, желтовато-коричневого окраса, 2 года,
кличка «Чарльз», масса тела 6 кг.
Анамнез:
Собака
содержится
дома,
условия
кормления
удовлетворительные, животное заболело 04.01.13г. По словам хозяина собака
заболела внезапно, появились истечения из глаза и сильно покраснел левый
глаз.
06.01.13г. Клиника: Т-38,8°С; П-101; Д-24. Общее состояние животного
угнетенное. Аппетит хороший. Наблюдается блефароспазм левого глаза,
выделения носят серозный характер. Конъюнктива век отечна и сильно
гиперимирована. Слизистая роговицы мутная, цвет серовато-белый, окраска по
центру более интенсивная. Зрачок и передняя камера глаза не просматриваются
(рисунок 21).
Диагноз: Поверхностный диффузный катаральный конъюнктиво-кератит
левого глаза.
Лечение: Ежедневное
тампонами,
пропитанными
удаление
скопившегося
физиологическим
экссудата
раствором,
ватными
последующее
закапывание 2-х раз в день препарата Конкерит и выполнение новокаиновой
блокады краниального симпатического ганглия по А.Н. Голикову и С.Т.
Шитову в дозе 6 мл 0,5%-го раствора новокаина.
10.01.13г. Клиника: Т-38,9°С; П-89; Д-25. Общее состояние животного
угнетенное,
аппетит
гиперимирована,
сохранен.
инфильтрат
Конъюнктива
роговицы
век
наблюдается
и
склеры
в
центре,
слабо
цвет
интенсивно-белый, по периферии роговица прозрачная, передняя камера по
87
краям роговицы просматривается. Полоска перикорнеальной инъекции сосудов
истончилась и приобрела местный характер.
Рисунок 21 - Собака «Чарльз», левый глаз перед началом лечения при поверхностном
диффузном катаральном конъюнктиво-кератите
Лечение: Такое же, как 06.01.12г.
14.01.13г. Клиника: Т-38,5°С; П-85; Д-24. Общее состояние животного не
угнетенное, аппетит сохранен. Поверхность роговицы влажная, зеркальная,
помутнений
Конъюнктива
не
обнаруживается.
бледно-розовая,
без
Передняя
отека.
камера
Склера
глаза
прозрачная.
беловатого
оттенка,
васкуляризация роговицы отсутствует. Радужка при исследовании без
патологических изменений, а зрачок реагирует на свет (рисунок 22).
Исход: Полное клиническое выздоровление.
88
Рисунок 22 - Собака «Чарльз», левый глаз на 8-й день лечения при поверхностном
диффузном катаральном конъюнктиво-кератите
Выписка из истории болезни № 29
Собака – кобель, порода мопс, черно-белого окраса, кличка «Бакс», масса
тела 4 кг, 4 года.
Анамнез:
Собака
содержится
дома,
условия
кормления
удовлетворительные, животное заболело 14.02.13г. По словам хозяина левый
глаз покраснел и начались истечения.
16.02.13г. Клиника: Т-38,7°С; П-93; Д-20. Общее состояние кобеля
угнетенное, аппетит сохранен. Наблюдается сильный блефароспазм левого
глаза, гиперемия и отек конъюнктивы присутствуют в сильной степени.
Роговица помутневшая и имеет серовато-белый оттенок. Передняя камера глаза
и зрачок не просматриваются (рисунок 23).
89
Диагноз: Поверхностный диффузный катаральный конъюнктиво-кератит
левого глаза.
Рисунок 23 - Собака «Бакс», левый глаз перед началом лечения при поверхностном
диффузном катаральном конъюнктиво-кератите
Лечение: Ежедневное
тампонами,
пропитанными
удаление
скопившегося
физиологическим
экссудата
раствором,
ватными
последующее
закапывание 2-х раз в день препарата Конкерит и выполнение новокаиновой
блокады
краниального
симпатического
ганглия
по А.Н. Голикову и
С.Т. Шитову в дозе 6 мл 0,5%-го раствора новокаина.
20.02.13г. Клиника: Т-38,6°С; П-90; Д-21. Общее состояние животного
угнетенное. Аппетит сохранен. Отек и гиперемия конъюнктивы развита в
слабой степени. Помутнения роговицы только по центру и имеет белый цвет.
Полоска перикорнеальной инъекции сосудов истончилась и приобрела местный
характер (рисунок 24).
Лечение: Такое же, как 16.02.13г.
90
Рисунок 24 - Собака «Бакс», левый глаз на 4-й день лечения при поверхностном
диффузном катаральном конъюнктиво-кератите
Рисунок 25 - Собака «Бакс», левый глаз на 8-й день лечения при поверхностном
диффузном катаральном конъюнктиво-кератите
91
24.02.13г. Клиника: Т-38,6°С; П-85; Д-20. Общее состояние животного не
угнетенное. Аппетит сохранен. Отек и гиперемия конъюнктивы
отсутствуют,
конъюнктива бледно-розового цвета. Роговица без помутнений, блестящая,
зеркальная, влажная. При исследовании боковым фокусным освещением
жидкость в передней камере глаза без патологических изменений, зрачок
подвижный. Радужка без патологий. Склера беловатого цвета. Васкуляризация
роговицы отсутствует (рисунок 25).
Исход: Полное клиническое выздоровление.
Таким образом, лечение больных конъюнктиво-кератитом домашних
плотоядных препаратом Конкерит и новокаиновой блокадой краниального
шейного симпатического ганглия по А.Н. Голикову и С.Т. Шитову приводит к
более быстрому выздоровлению (7,62+1,03 сутки), чем лечение общим курсом
препаратов (цефазолин натриевая соль и аскорбиновая кислота) и Конкеритом
(10,33+0,98 сутки) (Д.А. Шарафутдинов, Ф.А. Сунагатуллин, 2012).
2.2.8. Сравнительная эффективность лечения
конъюнктиво-кератита крупного рогатого скота, возникшего
на фоне телязиоза, Конкеритом и мазью Мизофен
Были созданы две группы животных по 26 голов больных инвазионным
конъюнктиво-кератитом по принципу пар аналогов. Первую группу лечили
общепринятым методом в хозяйстве – мазью Мизофен. Вторую группу лечили
предлагаемым препаратом Конкерит. Мазь закладывали, а препарат закапывали
в конъюнктивальный мешок 2 раза в день.
Лечение мазью Мизофен (1 группа)
На начало лечения общее состояние животных этой группы было
угнетенным, пищевая возбудимость пониженная, температура тела была
повышена в среднем на 1°С. Количество и характер пульса не изменялось.
92
Поражения глаз носили односторонний характер. Наблюдалось слезотечение,
выделения из глаз были слизисто-гнойные. Отмечались блефароспазм,
инъекция сосудов роговицы, поверхность роговицы была шероховатой, а
диффузный инфильтрат был от серовато-белого до интенсивно молочного
цвета, проявлялась болезненность глазного яблока при пальпации.
В первый день лечения конъюнктивальный мешок обрабатывали
спринцеванием 3%-ной борной кислоты, после закладывали мазь Мизофен два
раза в день до исчезновения клинических признаков конъюнктиво-кератита
(рисунок 26).
Рисунок 26 - Корова № 43, правый глаз перед началом лечения при поверхностном
диффузно-катаральном кератите и катаральном конъюнктивите
На 6-8-е сутки
лечения конъюнктива век и склеры были умеренно
гиперимированы. Интенсивность лейкоцитарного инфильтрата уменьшилась и
приобрела дымчатость по периферии роговицы, но перикорнеальная инъекция
сосудов была сохранена (рисунок 27).
93
Рисунок 27 - Корова № 43, правый глаз на 8-й день лечения при поверхностном
диффузно-катаральном кератите и катаральном конъюнктивите
Рисунок 28 - Корова № 43, правый глаз на 14-й день лечения при поверхностном
диффузно-катаральном кератите и катаральном конъюнктивите
94
К 13-14-м суткам конъюнктива приобрела бледно-розовый цвет. Склера
носила беловатый оттенок. Роговица без помутнений, блестящая и зеркальная.
Васкуляризация роговицы отсутствовала. Внутриглазная жидкость в передней
камере глаза была прозрачной, радужка при исследовании боковым фокусным
освещением
без
патологических изменений,
зрачок реагирует
на
свет
(рисунок 28).
Полное клиническое выздоровление при лечении мазью Мизофен наступило на
14,35+1,77 сутки.
Лечение препаратом Конкерит (2 группа)
У животных этой группы на начало лечение общее состояние было
угнетенным, температура тела была повышена в среднем на 1°С. Наблюдался
сильный
блефароспазм,
болезненность
при
пальпации,
роговица
была
помутневшей и шероховатой, сильное слезотечение, а выделения носили
Рисунок 29 - Корова № 3000я, правый глаз перед началом лечения при поверхностном
диффузно-катаральном кератите и катаральном конъюнктивите
95
слизисто-гнойный характер. Смешанная иньекция сосудов присутствовала
(рисунок 29).
Перед началом лечения провели обработку конъюнктивального мешка
спринцеванием 3%-ной борной кислоты.
На 5-6-е сутки наблюдалась незначительная гиперемия конъюнктивы
век и склеры. Инфильтрат роговицы приобрел дымчатость по всей площади
роговицы, с уменьшением прозрачности в сторону центра роговицы, полоска
перикорнеальной инъекции сосудов истончилась и приобрела местный характер
(рисунок 30).
Рисунок 30 - Корова № 3000я, правый глаз на 6-й день лечения при
поверхностном диффузно-катаральном кератите и катаральном конъюнктивите
К 11-12-м суткам конъюнктива приобрела бледно-розовый цвет. Склера
имела беловатый оттенок. Роговица была без помутнений, блестящая и
зеркальная,
а
васкуляризация
роговицы
отсутствовала.
Полоска
96
перикорнеальной инъекции сосудов исчезла. Внутриглазная жидкость в
передней камере глаза была прозрачной. Радужка при исследовании боковым
фокусным освещением без патологических изменений, а зрачок реагировал на
свет (рисунок 31).
При лечении препаратом Конкерит полное клиническое выздоровление
наступало на 12,12+1,27 сутки.
Параллельно клиническому течению болезни у животных этой серии
возникали изменения и в параметрах крови.
Рисунок 31 - Корова № 3000я, правый глаз на 12-й день лечения при поверхностном
диффузно-катаральном кератите и катаральном конъюнктивите
Исследования биохимического состава крови первой группы, таких как
общий белок, общий кальций, неорганический фосфор и каротин показали, что
до лечения показатели имели заниженные значения по сравнению с
физиологической нормой (таблица 2). На 6-е сутки лечения имело место
97
недостоверное
повышение
неорганического
фосфора,
(р>0,05)
а
общего
повышение
белка,
каротина
общего
было
кальция
и
статистически
достоверным (р<0,05). На 12-е сутки лечения значения общего белка, общего
кальция, неорганического фосфора и каротина повышались до физиологической
нормы и было достоверным (р<0,05).
Таблица 2 - Некоторые биохимические показатели крови у коров 1 группы,
(М+m, n=26)
Сроки исследования, дни
Показания
Фоновый показатель
6
12
7,78
7,84
8,04
+
+
+
0,10
0,14
0,06*
9,08
9,24
9,72
Общий кальций,
+
+
+
мг%
0,11
0,08
0,11*
3,94
4,10
5,28
Неорганический
+
+
+
фосфор, мг%
0,19
0,15
0,27*
0,29
0,36
0,44
+
+
+
0,03
0,01*
0,02*
здоровых животных
Общий белок, %
Каротин, мг%
Примечание: * - отличие от группы здоровых животных статистически
достоверно (р<0,05)
Биохимические показатели крови второй группы животных показали, что
до лечения значения общего белка, неорганического фосфора, общего кальция и
каротина было меньше физиологической нормы (таблица 3). На 6-е сутки
98
лечения показатели общего белка, общего кальция, неорганического фосфора
повышались не достоверно (р>0,05), а значение каротина было достоверным
(р<0,05), но все значения не достигали до физиологической нормы. На 12-е
сутки лечения все значения исследуемых биохимических показателей крови
достигали
физиологической
нормы,
а
повышение
было
статистически
достоверным (р<0,05).
Таблица 3 - Некоторые биохимические показатели крови у коров 2 группы,
(М+m, n=26)
Сроки исследования, дни
Показания
Фоновый показатель
6
12
7,78
7,56
8,10
+
+
+
0,10
0,10
0,08*
9,08
9,16
10,3
Общий кальций,
+
+
+
мг%
0,11
0,08
0,23*
3,94
4,04
5,18
Неорганический
+
+
+
фосфор, мг%
0,19
0,14
0,28*
0,29
0,35
0,50
+
+
+
0,03
0,01*
0,04*
здоровых животных
Общий белок, %
Каротин, мг%
Примечание: * - отличие от группы здоровых животных статистически
достоверно (р<0,05)
99
%
8,5
8,3
8,1
7,9
1 группа
7,7
2 группа
7,5
фон
7,3
7,1
6,9
фон
6 сутки
12 сутки
Рисунок 32 - Динамика изменения общего белка
мг%
10,5
10,2
9,9
9,6
9,3
1 группа
9
2 группа
фон
8,7
8,4
8,1
фон
6 сутки
12 сутки
Рисунок 33 - Динамика изменения общего кальция
100
мг%
6
5,7
5,4
5,1
4,8
4,5
4,2
3,9
3,6
3,3
3
1 группа
2 группа
фон
фон
6 сутки
12 сутки
Рисунок 34 - Динамика изменения неорганического фосфора
мг%
0,8
0,7
0,6
0,5
1 группа
2 группа
фон
0,4
0,3
0,2
0,1
0
фон
6 сутки 12 сутки
Рисунок 35 - Динамика изменения каротина
101
2.2.9. Сравнительная эффективность лечения конъюнктиво-кератита
крупного рогатого скота, возникшего на фоне телязиоза,
Конкеритом и 1%-ной тетрациклиновой мазью
Для сравнительной оценки этих методов лечения крупного рогатого скота
при конъюнктиво-кератите Конкеритом и 1%-ной тетрациклиновой мазью были
созданы две группы животных по 17 голов в каждой больных конъюнктивокератитом, возникшем на фоне телязиоза, по принципу пар аналогов. В первой
группе лечение проводили общепринятым в хозяйстве методом – 1%-ной
тетрациклиновой мазью, которую закладывали в конъюнктивальный мешок два
раза в день. Вторую группу лечили предлагаемым препаратом Конкерит,
который закапывали в конъюнктивальный мешок больного глаза два раза в
день.
Лечение 1%-ной тетрациклиновой мазью (1 группа)
Общее состояние больных на начало было угнетенным, температура тела
была повышена в среднем на 1°С, пищевая возбудимость понижена, характер и
количество пульса не изменялось. Все поражения глаз носили односторонний
характер, наблюдалось сильное слезотечение, блефароспазм, инъекция сосудов
роговицы, при пальпации присутствовала болезненность в области глаза,
поверхность роговицы была шероховатой, дно глаза не просматривалось.
Диффузный инфильтрат был от серовато-белого до молочного цвета с
уменьшением интенсивности от центра к краям (рисунок 36).
Перед началом лечения провели обработку конъюнктивального мешка
спринцеванием 3%-ной борной кислоты, после чего закладывали мазь два раза в
день до исчезновения клинических признаков конъюнктиво-кератита.
На 7-8-е сутки лечения общее состояние животного улучшалось, склера и
конъюнктива век были умеренно гиперемированы, уменьшилась интенсивность
лейкоцитарного инфильтрата, которая приобрела дымчатость по периферии
102
Рисунок 36 - Корова № 10, правый глаз перед началом лечения при поверхностном
диффузно-катаральном кератите и катаральном конъюнктивите
роговицы с уменьшением интенсивности от центра к краям. Перикорнеальная
инъекция сосудов была сохранена (рисунок 37).
На 15-16-е сутки лечения пищевая возбудимость была сохранена, общее
состояние удовлетворительное, температура тела в пределах физиологической
нормы. Роговица была без помутнений, блестящая и зеркальная. Блефароспазм и
васкуляризация роговицы отсутствовали. Радужка была без патологических
изменений, зрачок реагировал на свет, внутриглазная жидкость в передней
камере глаза была прозрачной (рисунок 38).
Полное
клиническое
выздоровление
животных
при
лечении
1%-ной
тетрациклиновой мазью наступило на 15,53+1,23 сутки (Д.А. Шарафутдинов,
2013).
103
Лечение препаратом Конкерит (2 группа)
Общее
состояние у животных этой группы на начало лечения было
угнетенным, наблюдалось повышение температуры в среднем на 1°С, пищевая
возбудимость
была
пониженной.
Наблюдалось
сильное
слезотечение,
блефароспазм, смешанная инъекция сосудов. Выделения из глаз носили
слизисто-гнойный характер, а роговица была шероховатой и помутневшей. При
пальпации глазного яблока была болезненность (рисунок 39).
До начала лечения провели обработку конъюнктивального мешка
спринцеванием 3%-ной борной кислоты.
Рисунок 37 - Корова № 10, правый глаз на 8-й день лечения при поверхностном
диффузно-катаральном кератите и катаральном конъюнктивите
104
Рисунок 38 - Корова № 10, правый глаз на 16-й день лечения при поверхностном
диффузно-катаральном кератите и катаральном конъюнктивите
Рисунок 39 - Корова № 265, правый глаз перед началом лечения при поверхностном
диффузно-катаральном кератите и катаральном конъюнктивите
105
На 5-6-е сутки лечения общее состояние животных улучшалось,
конъюнктива век и склеры были умеренно гиперемированы, блефароспазм
уменьшился, болезненность глазного яблока при пальпации присутствовала.
Инфильтрат роговицы приобрел дымчатость по всей площади роговицы с
увеличением интенсивности к центру. Полоска перикорнеальной инъекции
сосудов
истончилась
и
приобрела
местный
характер.
Радужка
не
просматривалась (рисунок 40).
Рисунок 40 - Корова № 265, правый глаз на 6-й день лечения при поверхностном
диффузно-катаральном кератите и катаральном конъюнктивите
К 11-12-м суткам общее состояние животного было удовлетворительным,
пищевая
возбудимость
сохранена,
температура
тела
в
пределах
физиологической нормы. Конъюнктива приобрела бледно-розовый цвет, склера
имела беловатый оттенок, роговица зеркальная и блестящая. Блефароспазм и
слезотечение отсутствовали.
Полоска перикорнеальной инъекции сосудов
106
исчезла.
Васкуляризация
роговицы
отсутствовала.
Радужка
глаза
без
патологических изменений, жидкость в передней камере глаза прозрачная,
зрачок реагирует на свет (рисунок 41).
При лечении препаратом Конкерит полное клиническое выздоровление
животных этой группы наступало на 11,06+1,20 сутки (Д.А. Шарафутдинов,
2013).
Течение болезни отразилось на морфологических и иммунологических
показателях крови.
Рисунок 41 - Корова № 265, правый глаз на 12-й день лечения при поверхностном
диффузно-катаральном кератите и катаральном конъюнктивите
Морфологические исследования у животных первой группы показали, что
количество лейкоцитов на 1-й день лечения было больше на 29,5% чем у
здоровых животных (таблица 4). После чего на 6 сутки показатель достоверно
(р<0,05) снижался. На 12-е сутки лечения количество лейкоцитов уменьшилось
107
Таблица 4 - Морфологические показатели у коров 1 группы, (М+m, n=17)
Сроки исследования, сутки
Показатели
Здор. жив-е
1
6
12
8,01
10,37
9,63
7,80
+
+
+
+
0,39
0,55*
0,46*
0,31
113,33
98,33
101,67
111,67
+
+
+
+
4,08
7,36*
5,40
2,04
54,67
49,33
53,67
46,33
+
+
+
+
2,27
1,47*
2,48
4,02*
2,33
6,33
4,33
1,00
+
+
+
+
0,41
1,47*
1,78
0,00*
Сегментояд.
31,33
40,67
28,33
30,33
нейтроф.
+
+
+
+
Лейкоци-
4,60
6,10
3,89
2,04
тарная
8,33
6,00
6,00
9,00
+
+
+
+
1,08
1,22
0,71*
1,87
1,67
0,67
1,00
1,33
+
+
+
+
0,82
0,82
0,71
0,41
2,00
2,00
3,33
2,33
+
+
+
+
1,41
0,00
0,41
0,41
Лейкоциты, х10 9 л
Гемоглобин, г/л
Лимфоциты
Палочкояд.
нейтроф.
формула,%
Эозинофилы
Базофилы
Моноциты
Примечание: * - отличие от группы здоровых животных статистически достоверно
(р<0,05)
108
и достигло показателя здоровых животных, но снижение было не достоверным.
Гемоглобин на 1-е сутки лечения был понижен в среднем на 13% по сравнению
со здоровыми животными. А на 6-е и 12-е сутки имело место быть постепенное
недостоверное (р>0,05) увеличение до показателя здоровых животных. В
лейкоцитарной формуле до 6 суток отмечалось увеличение палочкоядерных и
сегментоядерных нейтрофилов, а концу опытов лейкограмма приходила в норму
и соответствовала показателям здоровых животных.
Исследования крови у животных второй группы показали, что количество
лейкоцитов на 1-е сутки лечения по сравнению со здоровыми животными было
больше на 31% и этот показатель достоверно (р<0,05) понижался на 6-е сутки и
недостоверно (р>0,05) на 12-е сутки и соответствовал показателю здоровых
животных (таблица 5). Показатель гемоглобина на 1-е и 6-е сутки лечения был
понижен на 11% и имел тенденцию к достоверному (р<0,05) повышению на 6-е
сутки и недостоверному (р>0,05) на 12-е сутки, а показатель гемоглобина
соответствовал показателю здоровых животных. В лейкоцитарной формуле до
6-х суток имело место соответственное уменьшение лимфоцитов и достоверное
(р<0,05) увеличение палочкоядерных и недостоверное (р>0,05) увеличение
сегментоядерных нейтрофилов. К концу опытов лейкограмма соответствовала
показателям здоровых животных.
109
Таблица 5 - Морфологические показатели у коров 2 группы, (М+m, n=17)
Сроки исследования, сутки
Показатели
Здор. жив-е
1
6
12
8,01
10,50
9,33
8,43
+
+
+
+
0,39
0,94*
0,54*
0,36
113,33
100,00
103,33
114,00
+
+
+
+
4,08
6,12*
2,04*
1,22
54,67
47,67
47,33
44,00
+
+
+
+
2,27
1,78*
2,68*
2,55*
Палочкояд.
2,33
6,00
4,00
1,67
нейтроф.
+
+
+
+
0,41
1,22*
0,71*
0,41
31,33
38,33
30,67
29,67
+
+
+
+
Лейкоци-
4,60
2,04
1,08
2,94
тарная
8,33
6,67
5,57
8,67
+
+
+
+
1,08
1,47
0,82*
2,86
1,67
1,00
1,67
2,00
+
+
+
+
0,82
0,71
0,41
0,71
2,00
1,67
2,67
2,00
+
+
+
+
1,41
0,41
0,41
0,71
Лейкоциты, х10 9 л
Гемоглобин, г/л
Лимфоциты
Сегментояд.
нейтроф.
формула,%
Эозинофилы
Базофилы
Моноциты
Примечание: * - отличие от группы здоровых животных статистически достоверно
(р<0,05)
110
х10 9 л
10,5
10
9,5
9
8,5
1 группа
2 группа
8
7,5
7
6,5
6
здор. жив-е
1 сутки
6 сутки
12 сутки
Рисунок 42 - Динамика изменения лейкоцита
г/л
115
113
111
109
107
1 группа
2 группа
105
103
101
99
97
95
здор. жив-е
1 сутки
6 сутки
12 сутки
Рисунок 43 - Динамика изменения гемоглобина
111
Исследования иммунологических показателей крови животных первой
группы показали, что Т-лимфоциты как относительные так и абсолютные на 6-е
сутки лечения имели достоверный (р<0,05) скачок показателя на 26 и 40%
соответственно по сравнению с показателями физиологически здоровых
животных, а на 12-е сутки лечения этот показатель приближался к исходному
значению здоровых животных, но результаты носили недостоверный (р>0,05)
характер (таблица 6). Значение В-лимфоцитов относительных и В-лимфоцитов
абсолютных за период лечения значительно не изменялось и соответствовало
показателю здоровых животных. Т-лимфоциты относительные (Е-РОК) и Тлимфоциты абсолютные (Е-РОК) на начало лечения имели пониженный
показатель на 13 и 20% соответственно, а на 6-е сутки достоверно (р<0,05)
повышался выше уровня показателя здоровых животных, но к 12-м суткам
лечения недостоверно (р>0,05) соответствовал показателю здоровых животных.
На 6-е сутки лечения показатели Т-лимфоцитов-хелперов относительных и Тлимфоцитов-хелперов абсолютных повысились в среднем на 27 и 40%
соответственно по сравнению с показателями здоровых животных и имели
112
Таблица 6 - Иммунологические показатели крови у коров 1 группы,
(М+m, n=17)
Показатели
Т-лимфоциты относит.,
Сроки исследования, сутки
Здор. жив-е
1
6
12
42,67+1,63
38,67+2,94
54,00+1,41*
41,67+4,26
1,36+0,18
2,36+0,15*
1,66+0,30
%
Т-лимфоциты абсолют,
1,68+0,11
х10 9 л
В-лимфоциты относ,%
23,67+1,78
24,00+1,87
24,67+2,16
24,00+2,83
В-лимфоциты абсол,
0,94+0,08
0,87+0,22
1,07+0,04
0,95+0,18
22,33+0,41
19,33+1,63*
25,33+0,82*
24,33+2,27
абсолют,х10 9 л(Е-РОК)
0,88+0,06
0,70+0,18
1,11+0,09*
0,97+0,16
Т-лимфоциты –хелп.
13,33+0,41
12,00+1,41
17,00+1,22*
15,33+1,63
0,53+0,04
0,43+0,12
0,74+0,09*
0,61+0,11
9,00+0,00
7,33+0,82*
8,33+0,41
9,00+0,71
0,35+0,02
0,27+0,07
0,36+0,00
0,36+0,06
ФАН
38,33+2,04
49,33+1,08*
43,67+1,63*
39,33+1,08
ФЧ
4,63+0,04
5,10+0,14*
4,87+0,15
3,83+0,50
БАСК
42,67+3,89
36,67+4,08
44,00+2,55
40,07+4,49
ЛАСК
7,03+0,57
7,93+0,41
7,00+0,83
7,18+0,58
х10 9 л
Т-лимфоциты относит.,
% (Е-РОК)
Т-лимфоциты
относ.,% (Е òð -РОК)
Т-лимфоциты –хелп.
абсол.,х10 9 л(Е òð -РОК)
Т-лимфоциты –супр.
относ.,% (Е òð -РОК)
Т-лимфоциты –супр.
абсол.,х10 9 л(Е òð -РОК)
Примечание: * - отличие от группы здоровых животных статистически достоверно
(р<0,05)
113
достоверный (р<0,05) характер. Те же показатели на 12-е сутки приходили в
физиологическую норму здоровых животных, но показания не носили
достоверных (р>0,05) результатов. Т-лимфоциты-супрессоры относительные и
Т-лимфоциты-супрессоры абсолютные имели пониженные значения на 1-й день
лечения, по сравнению с показателями здоровых животных, к 12-м суткам
соответствовали физиологической норме, но результаты не имели достоверный
(р>0,05) характер.
Фагоцитарная активность нейтрофилов на 1-й день лечения была
повышена на 29% по сравнению с показателями здоровых животных, но к 6-м
суткам показатель понижался до 14% и показатель был достоверным (р<0,05), а
к 12-м суткам соответствовал показателю здоровых животных.
Фагоцитарное число к началу опытов имело повышенное значение на 10%
по сравнению с показателем здоровых животных, а в конце опытов
соответствовал
уровню
здоровых
животных,
но
результаты
носили
недостоверный (р>0,05) характер.
Бактерицидная активность сыворотки крови на 1-е сутки была понижена
на 14%, на 6-е сутки имело место недостоверное (р>0,05) повышение этого
показателя, который на 12-е сутки приходил в норму по сравнению с
показателями физиологически здоровых животных.
Лизоцимная активность сыворотки крови на 1-е сутки лечения была
повышена на 13% по сравнению с показателем здоровых животных, а к концу
лечения этот показатель приходил в соответствие показателей здоровых
животных, но данные носили недостоверный характер (р>0,05).
114
Таблица 7 - Иммунологические показатели крови у коров 2 группы,
(М+m, n=17)
Показатели
Т-лимфоциты относит.,
Сроки исследования, сутки
Здор. жив-е
1
6
12
42,67+1,63
38,67+1,63
47,67+1,08*
42,67+2,94
1,00+0,14*
2,80+0,48*
1,85+0,04
%
Т-лимфоциты абсолют,
1,68+0,11
х10 9 л
В-лимфоциты относ,%
23,67+1,78
27,00+0,71
26,67+0,82
18,67+3,27
В-лимфоциты абсол,
0,94+0,08
0,69+0,09*
1,57+0,30*
0,81+0,13
22,33+0,41
19,33+0,82*
23,33+2,94
23,67+1,47
абсолют,х10 9 л(Е-РОК)
0,88+0,06
0,49+0,05*
1,40+0,43
1,03+0,08
Т-лимфоциты –хелп.
13,33+0,41
12,33+0,41
15,00+1,87
14,67+0,41*
0,53+0,04
0,31+0,04*
0,91+0,29
0,57+0,04
9,00+0,00
8,33+0,41
8,33+1,08
9,00+1,22
0,35+0,02
0,21+0,03*
0,50+0,16
0,39+0,05
ФАН
38,33+2,04
45,33+1,47*
42,33+1,08
34,00+1,22*
ФЧ
4,63+0,04
5,13+0,18*
5,07+0,35
4,33+0,20
БАСК
42,67+3,89
45,00+3,54
50,33+4,26
43,03+5,79
ЛАСК
7,03+0,57
8,03+0,39
8,27+1,12
7,90+0,88
х10 9 л
Т-лимфоциты относит.,
% (Е-РОК)
Т-лимфоциты
относ.,% (Е òð -РОК)
Т-лимфоциты –хелп.
абсол.,х10 9 л(Е òð -РОК)
Т-лимфоциты –супр.
относ.,% (Е òð -РОК)
Т-лимфоциты –супр.
абсол.,х10 9 л(Е òð -РОК)
Примечание: * - отличие от группы здоровых животных статистически достоверно
(р<0,05)
115
Из иммунологических показателей крови коров второй группы видно, что
Т-лимфоциты относительные и Т-лимфоциты абсолютные на 1-е сутки лечения
имеют показатель ниже чем у здоровых животных на 9% и 40% соответственно,
но уже к 6-м суткам этот показатель достоверно (р<0,05) повышается на 12% и
66%, и приходят в соответствие показателям здоровых животных на 12-е сутки
лечения, но значения имеют недостоверный (р>0,05) характер (таблица 7). Влимфоциты относительные на 1-й день лечения имеют показатель выше нормы
на 14%, а к 12-м суткам приходят в норму показателей здоровых животных, но
показатели недостоверны (р>0,05). В-лимфоциты абсолютные на 1-е сутки
лечения имеют показатель ниже нормы здоровых животных на 27%, но уже к 6м суткам имеют достоверный (р<0,05) скачок на 67%, а к 12-м суткам
недостоверно (р>0,05) приходят в норму показателей здоровых животных. Тлимфоциты относительные (Е-РОК) и Т-лимфоциты абсолютные (Е-РОК) на 1-е
сутки лечения имеют показатель ниже уровня здоровых животных, на 6 сутки
имеют недостоверный (р>0,05) скачок, а уже на 12-е сутки недостоверно
(р>0,05) приходят в норму показателя здоровых животных. Т-лимфоцитыхелперы относительные и Т-лимфоциты-хелперы абсолютные на начало
лечения имеют показатель ниже нормы здоровых животных на 8 и 71%
соответственно, к 6-м суткам начинают недостоверно (р>0,05) становиться
выше уровня здоровых животных, а к 12-м суткам недостоверно (р>0,05)
приходят в норму показателя здоровых животных. Т-лимфоциты-супрессоры
относительные с 1-х суток до 6-х суток имеют недостоверный (р>0,05)
пониженный показатель, а к 12 суткам недостоверно (р>0,05) приходит в норму
показателя здоровых животных. Т-лимфоциты-супрессоры абсолютные на
начало лечения имеют показатель ниже нормы здоровых животных на 40%, к 6м суткам начинают недостоверно (р>0,05) становиться выше уровня показателя
здоровых животных, а на 12-е сутки лечения приходит в норму.
Уровень фагоцитарной активности нейтрофилов на 1-е сутки лечения
выше уровня здоровых животных на 18%, на 6-е сутки лечения начинает
116
недостоверно (р>0,05) понижаться, а уже к 12-м суткам достоверно (р<0,05)
соответствует показателю здоровых животных.
Фагоцитарное число на 1-е сутки был повышен по сравнению со
здоровыми животными на 11%, но уже к 6-м и 12-м суткам имел тенденцию к
понижению и достиг уровня здоровых животных, но результаты были
недостоверные (р>0,05).
Бактерицидная активность сыворотки крови на 1-е сутки лечения была
повышена на 5%, на 6-е сутки имел недостоверный (р>0,05) повышенный
скачок на 18%, но 12-м суткам лечения недостоверно (р>0,05) приходил в норму
показателя здоровых животных.
Лизоцимная активность сыворотки крови на начало лечения была
повышена на 14%, на 6-е сутки – до 17% (р>0,05). К 12-м суткам
соответствовала
показателю
здоровых животных,
но
показатель
носил
недостоверный характер (р>0,05).
%
55
52,5
50
47,5
1 группа
2 группа
45
42,5
40
37,5
35
исход
1 сутки
6 сутки 12 сутки
Рисунок 44 - Динамика изменения Т-лимфоцитов относительных
117
х10 9 л
3
2,5
2
1 группа
2 группа
1,5
1
0,5
исход
1 сутки
6 сутки 12 сутки
Рисунок 45 - Динамика изменения Т-лимфоцитов абсолютных
%
27
26
25
24
23
22
21
20
19
18
17
1 группа
2 группа
исход
1 сутки
6 сутки 12 сутки
Рисунок 46 - Динамика изменения В-лимфоцитов относительных
118
х10 9 л
1,7
1,5
1,3
1 группа
2 группа
1,1
0,9
0,7
0,5
исход
1 сутки
6 сутки 12 сутки
Рисунок 47 - Динамика изменения В-лимфоцитов абсолютных
%
26
25
24
23
1 группа
2 группа
22
21
20
19
18
исход
1 сутки
6 сутки 12 сутки
Рисунок 48 - Динамика изменения Т-лимфоцитов относительных (Е-РОК)
119
х10 9 л
1,6
1,4
1,2
1
1 группа
2 группа
0,8
0,6
0,4
0,2
0
исход
1 сутки
6 сутки 12 сутки
Рисунок 49 - Динамика изменения Т-лимфоцитов абсолютных (Е-РОК)
%
16
15,5
15
14,5
14
13,5
13
12,5
12
11,5
11
10,5
10
1 группа
2 группа
исход
1 сутки
6 сутки 12 сутки
Рисунок 50 - Динамика изменения Т-лимфоцитов-хелперов относительных
120
х10 9 л
1
0,9
0,8
0,7
0,6
0,5
0,4
0,3
0,2
0,1
0
1 группа
2 группа
исход
1 сутки
6 сутки 12 сутки
Рисунок 51 - Динамика изменения Т-лимфоцитов-хелперов абсолютных
%
10
9,7
9,4
9,1
8,8
8,5
8,2
7,9
7,6
7,3
7
1 группа
2 группа
исход
1 сутки
6 сутки 12 сутки
Рисунок 52 - Динамика изменения Т-лимфоцитов-супрессоров относительных
121
х10 9 л
0,6
0,5
0,4
1 группа
2 группа
0,3
0,2
0,1
0
исход
1 сутки
6 сутки 12 сутки
Рисунок 53 - Динамика изменения Т-лимфоцитов-супрессоров абсолютных
%
50
48
46
44
42
40
38
36
34
32
30
1 группа
2 группа
исход
1 сутки
6 сутки 12 сутки
Рисунок 54 - Динамика изменения фагоцитарной активности нейтрофилов
122
5,5
5,3
5,1
4,9
4,7
4,5
4,3
4,1
3,9
3,7
3,5
1 группа
2 группа
исход
1 сутки
6 сутки 12 сутки
Рисунок 55 - Динамика изменения фагоцитарного числа
%
52
50
48
46
44
42
40
38
36
34
1 группа
2 группа
исход
1 сутки
6 сутки 12 сутки
Рисунок 56 - Динамика изменения бактерицидной активности сыворотки крови
123
%
8,4
8,2
8
7,8
7,6
7,4
7,2
7
6,8
6,6
6,4
6,2
6
1 группа
2 группа
исход
1 сутки
6 сутки 12 сутки
Рисунок 57 - Динамика изменения лизоцимной активности сыворотки крови
2.2.10. Экономическая эффективность различных способов
лечения конъюнктиво-кератита крупного рогатого скота, возникшего на
фоне телязиоза
Многообразие объектов ветеринарной деятельности, разные направления
ветеринарной
работы
обусловили
разработку
системы
специальных
экономических показателей, позволяющих выявить эффективность затрат труда
ветеринарных специалистов, целесообразность использования тех или иных
средств и методов борьбы с различными болезнями животных. Отсюда следует,
что ветеринарное обслуживание животноводства должно быть экономически
эффективным, целесообразным, финансово выгодным для хозяйства. Перед
ветеринарной наукой ставятся актуальные задачи по поиску и внедрению в
производство эффективных, доступных и дешевых лекарственных средств и
методов терапии.
124
Экономическую эффективность рассчитывали (И.Н. Никитин, В.А.
Апалькин, 2006) по предлагаемому методу лечения – Конкеритом и
общепринятому в хозяйстве – 1%-ной тетрациклиновой мазью.
Таблица 8 - Ветеринарные затраты на применение лекарственных
препаратов на одну корову
Препараты
Доза на
одну
голову
Кратность
применения,
раз
2
Продолжительность
применения,
дни
11,06
Израсходовано препарата
на курс
лечение
2,2 мл.
Затраты на
курс
лечения,
руб.
16,28
Конкерит
1%-ная
тетрациклин
овая мазь
0,1 мл.
0,5 гр.
2
15,53
15,5 гр.
23,25
Таблица 9 - Затраты на лечение коров, больных конъюнктиво-кератитом,
возникшем на фоне телязиоза, руб.
Группа животных
1 группа
2 группа
Количество
животных в группе,
гол.
17
17
Конкерит
276,76
-
1%-ная
тетрациклиновая
мазь
395,25
Определение экономического ущерба от снижения продуктивности
У=Мз*(Вз-Вб)*Т*Ц, где
Мз – количество животных в группе;
Вз – удой здоровых животных;
Вб – удой больных животных;
Т – количество дней лечения;
Ц – цена реализации 1кг. молока.
У1 – ущерб от снижения продуктивности животных 1-ой группы.
125
У2 – ущерб от снижения продуктивности животных 2-ой группы.
У1 = 17*(7-6,5)*11,06*12 = 1128,12 руб.
У2 = 17*(7-6,5)*15,53*12 = 1584,06 руб.
Определение предотвращенного ущерба в результате
лечения больных животных
Пу = Мп*Клв*Ж*Ц+Мп*Кп*Ц+Мз*Ц-У, где
Мп – количество переболевших животных;
Клв – коэффициент возможной летальности животных;
Ж – средняя живая масса животных;
Кп – удельная величина потерь основной продукции в расчете на одно
животное;
Ц – цена реализации единицы продукции;
Мз – количество животных в группе;
У – фактический экономический ущерб.
Пу1 = предотвращенный ущерб в 1-ой группе.
Пу2 = предотвращенный ущерб во 2-ой группе.
Пу1 = 17*0,09*450*12+17*3,3*12+17*12-1128,12 = 8011,08 руб.
Пу2 = 17*0,09*450*12+17*3,3*12+17*12-1584,06 = 7555,14 руб.
Определение экономической эффективности проведенных мероприятий
Эв = Пу-Зв, где
Пу – предотвращенный ущерб;
Зв – ветеринарные затраты на лечение больных животных;
Эв1 – экономическая эффективность мероприятий в 1-ой группе.
Эв2 – экономическая эффективность мероприятий во 2-ой группе.
Эв1 = 8011,08-3594,76 = 4416,32 руб.
Эв2 = 7555,14-5054,25 = 2500,89 руб.
126
Определение экономической эффективности в расчете
на 1 рубль затрат
Эр = Эв : Зв
Эр1 – экономическая эффективность на 1 рубль затрат в 1-ой группе.
Эр2 – экономическая эффективность на 1 рубль затрат во 2-ой группе.
Эр1 = 4416,32 : 3594,76 = 1,2 руб.
Эр2 = 2500,89 : 5054,25 = 0,5 руб.
Анализируя полученные данные, можно сделать вывод, что применение
Конкерита при конъюнктиво-кератите крупного рогатого скота экономически
целесообразно. Экономическая эффективность на 1 рубль затрат при лечении
коров больных конъюнктиво-кератитом, возникшем на фоне телязиоза,
Конкеритом составила 1,2 рубля, а при лечении общепринятым в хозяйстве
методом 1%-ной тетрациклиновой мазью – 0,5 рублей.
127
3. Анализ и обсуждение результатов исследований
Из всех болезней сельскохозяйственных животных, а именно среди
крупного рогатого скота и
его
молодняка,
наиболее
распространенными
являются инвазионные и инфекционные конъюнктиво-кератиты. Они, как
правило, вызывают серьезные патологические изменения в средах глаз,
ухудшают зрительную способность, приводят к слепоте и часто принимают
характер эпизоотий, и поэтому наносят огромный экономический ущерб
животноводческим хозяйствам (А.Ф. Русинов, 1965; М.В. Плахотин и д.р., 1966;
К.А. Фомин, 1968; Г.С. Кузнецов, К.М. Шакалов, 1974; В.Н. Авроров, А.В.
Лебедев, 1985; В.А. Черванев, 1995; Е.П. Копенкин, 2000 и др.). При сильных
патологических процессах и потере зрения содержание животных становится
экономически не выгодными, так как часто получают травмы, требуют
специального ухода и становятся опасными для обслуживающего персонала.
Если посмотреть процентное соотношение, то 25-35% больных животных
остаются слепыми, 25-35% теряют зрение на 50% и только остальные сохраняют
зрительную способность (К.А. Фомин, 1968). Так как переболевшие животные
часто являются носителями возбудителя и являются очагом инвазии и
инфекции, вместе с профилактическими мероприятиями, для уменьшения
экономического ущерба от конъюнктиво-кератита животных, особо важное
место занимает эффективное и своевременное лечение больных животных.
Существующие
конъюнктиво-кератита
в
данное
животных
время
не
препараты
дают
и
быстрого
методы
и
лечения
эффективного
выздоровления от данной патологии. Поэтому разработка, внедрение и
апробация новых препаратов и методов лечения, доступных для массового
применения, крайне необходима для ветеринарии.
Для определения этиологии конъюнктиво-кератитов крупного рогатого
скота были проведены клинические и лабораторные исследования. Все
происследованные животные имели клинические признаки конъюнктиво-
128
кератита. На предметных стеклах с центрифугированным осадком под
микроскопом обнаруживали половозрелые гельминты и личинки телязий.
У всех больных животных отмечалось угнетение общего состояния,
понижение пищевой возбудимости, температура тела повышалась на 0,5 – 1,0°С.
Пульс заметно не изменялся. Поражения глаз носили односторонний характер,
заболевание проявлялось слезотечением, выделением из глаз слизисто-гнойного
экссудата. Поверхность роговицы была шероховатой и имела диффузный
инфильтрат от серовато-белого до интенсивно молочного цвета. Отмечались
сильно выраженный блефароспазм и болезненность глазного яблока при
пальпации.
По мнению Н.И. Крастина (1948, 1957), инвазионный конъюнктивокератит это массовое заболевание крупного рогатого скота, когда главным
образом поражается конъюнктива и роговица глаза. Он же первым расшифровал
цикл развития нематоды. Возбудители заболевания могут находиться в глазу до
следующего лета и, поэтому, можно сделать вывод, что такие хозяйства
становятся стационарно неблагополучными.
Изучение этиологии конъюнктиво-кератита показало, что причиной
развития данной болезни глаз крупного рогатого скота в некоторых хозяйствах
Республики Татарстан является Thelazia rhodesi. Так же в содержимом
конъюнктивального мешка больных конъюнктиво-кератитом животных были
выделены стафилококки, стрептококки, диплококки, протей и кишечная
палочка, которые осложняют течение болезни.
С этой целью нами был предложен новый препарат Конкерит и способ
комплексного лечения животных с поражением слизистых покровов различной
этиологии, и были проведены экспериментальные исследования по изучению
терапевтических свойств данного препарата.
Препарат Конкерит был разработан на кафедре ветеринарной хирургии
Казанской государственной академии ветеринарной медицины им. Н.Э.
Баумана. Конкерит готовится следующим образом. В качестве местно-
129
анестезирующего средства берется новокаин, в качестве противомикробного
цефазолин, а дексаметазон в качестве противовоспалительного.
Преппарат
получают
при
соблюдении
необходимых
санитарно-
гигиенических требований и правил антисептики следующим образом: в
ампулу, содержащую 1 грамм цефазолина, добавляют 4,5 мл 0,5%-го новокаина
и обратно в 10мл шприц набирают 1,5 мл цефазолина. В этот же шприц
набирают 7мл 0,5%-го новокаина и 1,5 мл дексаметазона(4мг/мл) и тщательно
взбалтывают. Тем самым достигается соотношение массовых долей: цефазолин
15%, новокаин 70% и дексаметазон 15%. Полученный препарат обладает
широким
спектром
противовоспалительного.
местно-анестезирующего,
Входящий
в
состав
противомикробного,
предлагаемого
препарата
дексаметазон подавляет активность фибробластов и образование коллагена.
Новокаин угнетает возникновение и проведение центростремительных нервных
импульсов путем нарушения проницаемости клеточных мембран для ионов
натрия и калия, оказывает местно-анестезирующее действие, при всасывании
тормозит синтез ацетилхолина и понижает реактивность периферических
холинореактивных
систем,
спазмолитический эффект,
блокирует
вегетативные
ганглии,
уменьшает возбудимость миокарда,
дает
угнетает
моторные зоны коры большого мозга. Цефазолин взаимодействует со
специфическими
пенициллинсвязывающими
белками
на
поверхности
цитоплазматической мембраны, тормозит синтез пептидогликанового слоя
клеточной
стенки
(ингибирует
транспептидазу,
угнетает
образование
поперечных сшивок цепочек пептидогликана), высвобождает аутолитические
ферменты клеточной стенки, вызывая ее повреждение и гибель бактерий.
Перед применением препарата Конкерит в терапевтических целях мы
изучили его воздействие на сердце, печень, почки и селезенку белых
лабораторных мышей. Внутрижелудочное введение Конкерита показало, что
раствор не оказывает деструктивные изменения на паренхиматозные органы и
сердце.
130
Так же нами была изучена антимикробная активность различных
растворов Конкерита методом диффузии в агар с применением дисков
пропитанных нативным препаратом Конкерит и его водными 15, 25, 50, 75%ными растворами, которые проводили на S. aureus штамма 209Р и E. coli
штамма
0126.
Исследования
показали,
что
диски,
пропитанные
в
соответствующих дозах водными растворы препарата Конкерит, задерживают
рост микробов обеих культур. Вокруг диска, пропитанного водным раствором
тетрациклина гидрохлорида с концентрацией 10 тыс. ЕД в 1 мл, наблюдалась
задержка роста микробов, которая при измерении составила 25 мм и более.
Определение контактного бактериостатического влияния проводили на
нативном препарате Конкерит и его водных 15, 25, 50, 75%-ных растворах.
Исследования показали, что нативный препарат Конкерит и его водные 15, 25,
50, 75%-ные растворы обладают выраженными антимикробными ствойствами, и
при посеве растворов с микробными культурами на питательные среды (МПА,
среда Эндо) приводит к полному подавлению вышеуказанных микробных
культур. Водные 1 и 5%-ные растворы препарата Конкерит при посеве их с
микробной культурой на питательные среды в течение 1, 3, 6, 12 и 24 часов не
подавляли рост микробных культур, о чем можно было судить по прорастанию
их на питательной среде. Тогда как водный раствор тетрациклина гидрохлорида,
с концентрацией 10 тыс. ЕД в 1 мл, использованный в качестве контроля,
полностью подавлял рост микробных культур на питательных средах.
Учитывая
результаты,
полученные
при
изучении
антимикробной
активности и бактериостатического влияния препарата Конкерит, были
проведены испытания его местно-раздражающего действия. В качестве
испытуемых моделей были выбраны крысы и кролики: 5 групп по 3 кролика и 3
крысы в каждой. Был приготовлен нативный препарат Конкерит и его водные
15, 25, 50, 75%-ные растворы. Создание определенных процентных растворов
достигали
разбавлением
нативного
препарата
дистиллированной
водой.
Конкерит закапывали по 3 капли на слизистую оболочку (под нижнее веко)
правого испытуемого глаза, левый был оставлен в качестве контроля.
131
Исследования
местного
раздражающего
действия
препарата
Конкерит
проводили в течение трех дней, препарат закапывали на слизистую глаз два раза
в день. К концу опытов ни в одной группе не было обнаружено видимых
изменений в состоянии глаз.
После испытания местного раздражающего действия препарата Конкерит
провели
испытание
лечебного
действия
растворов
препарата
при
экспериментальных конъюнктиво-кератитах. Опыты проводили на кроликах
обоего пола, в возрасте 2-3-лет, со средней массой тела 3,94±0,31 кг.
Экспериментальный
поверхностный
диффузный
катаральный
кератит
и
катаральный конъюнктивит правого глаза воспроизводили наложением на
роговицу кусочка фильтровальной бумаги, смоченной 25%-ным водным
раствором аммиака с экспозицией 20 сек, после предварительной поверхностной
анестезии роговой оболочки 2%-ным раствором новокаина.
Перед началом лечения, которое начиналось на 3-и сутки после
экспериментального
воспроизведения
конъюнктиво-кератита,
подопытных
животных разделили на 5 групп по 3 кролика в каждой.
Для изучения течения клинических признаков при экспериментальных
конъюнктиво-кератитах первая группа животных служила контролем. Лечение
этой группы не проводилось. Животных второй группы лечили общепринятым
способом – 1%-ной глазной тетрациклиновой мазью. Третью группу лечили
50%-ным раствором препарата Конкерит. В четвертой группе лечение
проводили 75%-ным раствором препарата Конкерит. Пятую группу лечили
нативным препаратом.
Результаты опыта показали, что у кроликов контрольной группы без
лечения острый катаральный конъюнктивит на 18-21-е сутки переходит в
хронический. Оценку лечебной эффективности испытуемого препарата при
лечении животных с конъюнктиво-кератитом проводили в сравнении с
общепринятым методом – 1%-ной тетрациклиновой мазью (Н.А. Подшивалов,
1968; В.Д. Гуневый, 1969; К. Эльце, Х. Мейер, Г. Штейнбах, 1977; J.A. Smith,
L.W. George, 1995 и др.). При лечении 1%-ной тетрациклиновой мазью
132
клинические признаки конъюнктиво-кератита постепенно исчезали, полное
клиническое выздоровление животных наступало на 16,33+0,58 сутки. Полное
клиническое выздоровление кроликов при лечении водным 50%-ным раствором
Конкерита происходило на 13,67+1,53 сутки. При лечении водным 75%-ным
раствором препарата Конкерит полное клиническое выздоровление кроликов
наступало на 12,67+1,53 сутки. При лечении нативным препаратом полное
клиническое выздоровление кроликов наступало на 12,33+1,53 сутки. О полном
клиническом выздоровлении судили по исчезновению таких основных
признаков конъюнктиво-кератита как: гиперемия конъюнктивы век, помутнения
роговицы, инъекции сосудов роговицы. Осложнение патологического процесса
и воспаление сосудистого тракта и радужной оболочки не происходило. При
исследовании боковым фокусным освещением передняя камера глаза хорошо
просматривалась.
Исходя
из
результатов
лечения
экспериментальных конъюнктиво-
кератитов у кроликов различными растворами препарата Конкерит сделали
вывод, что нативный препарат дает более быстрые сроки выздоровления, чем
все остальные растворы. В дальнейших исследованиях использовали нативный
препарат Конкерит.
Апробацию результатов экспериментальных исследований по изучению
влияния препарата Конкерит на течение конъюнктиво-кератита проводили на
клинически
больных
кошках
и
собаках,
поступивших
в
лечебно-
консультативный центр КГАВМ. Для полного изучения терапевтической
ценности препарата Конкерит его применяли с другими комплексными
методами терапии. Лечение препаратом Конкерит и общим курсом препаратов,
в который входят цефазолина натриевая соль и аскорбиновая кислота
внутримышечно в соответствующих дозах. Полное клиническое выздоровление
у животных этой группы наступало на 10,33+0,98 сутки. При лечении
препаратом Конкерит и новокаиновой блокадой краниального шейного
симпатического ганглия по А.Н. Голикову и С.Т. Шитову полное клиническое
выздоровление кошек и собак этой группы наступало на 7,62+1,03 сутки.
133
Результаты полученные нами основываются на исследованиях А. Н. Голикова
(1964), который считает, что механизм действия новокаиновой блокады
смешанных и симпатических нервов различен, и если при новокаиновой блокаде
смешанных
и
охранительный,
соматических
то
при
нервов
новокаиновой
механизм
действия
блокаде
в
основном
симпатических
нервов
происходит ограничение сосудистой проницаемости и усиление регенеративных
процессов. Также при данной новокаиновой блокаде происходит уменьшение
гиперемии, лейкоцитоза, стимулируется выработка антител.
Симпатический эффект короткой новокаиновой блокады слабее выражен,
чем при воздействии на основные пути симпатической нервной системы (А.Н.
Голиков, С.Т. Шитов, 1963; В.Н. Авроров, 1966).
В процессе экспериментальных исследований нами было установлено, что
препарат
Конкерит
при
местном
применении
обладает
хорошим
терапевтическим эффектом, оказывает антимикробное и противовоспалительное
действие, что приводит к более быстрому выздоровлению, чем при лечении
другими препаратами.
Терапевтическую эффективность препарата в сравнении с другими
общепринятыми препаратами проверяли на крупном рогатом скоте, больном
конъюнктиво-кератитом, возникшем на фоне телязиоза. У животных в
отделении «Р. Берлибаш» Кайбицкого района РТ полное клиническое
выздоровление при лечении 1%-ной тетрациклиновой мазью наступило на
14,35+1,77 сутки, а при лечении препаратом Конкерит полное клиническое
выздоровление наступало на 12,12+1,27 сутки. После полного выздоровления
конъюнктива приобретала бледно-розовый цвет, склера имела беловатый
оттенок, роговица без помутнений, блестящая и зеркальная, васкуляризация
роговицы отсутствовала. Внутриглазная жидкость в передней камере глаза была
прозрачной, радужка при исследовании боковым фокусным освещением без
патологических
изменений,
зрачок
реагирует
на
свет.
Исследованный
биохимический состав крови, а именно общий белок, общий кальций,
неорганический фосфор и каротин у больных животных восстанавливается до
134
нормы на 12-е сутки, но при лечении 1%-ной тетрациклиновой мазью не все
клинические признаки исчезают к этому сроку.
У животных в отделении «Янурусово» Сармановского района РТ полное
клиническое выздоровление при лечении мазью Мизофен наступило в среднем на
15,53+1,23 сутки, а при лечении препаратом Конкерит полное клиническое
выздоровление наступало на 11,06+1,20 сутки.
На последний день лечения конъюнктива приобрела бледно – розовый
цвет. Склера имела беловатый оттенок. Роговица была без помутнений,
блестящая
и
зеркальная,
а
васкуляризация
роговицы
отсутствовала.
Внутриглазная жидкость в передней камере глаза была прозрачной. Радужка при
исследовании боковым фокусным освещением без патологических изменений, а
зрачок подвижный. Полоска перикорнеальной инъекции сосудов исчезла.
О более благоприятном течении болезни у подопытных животных этой
серии судили по морфологическим и иммунобиологическим показателям крови.
При лечении Конкеритом у животных более выражено проявились защитноприспособительные
функции
нормализация
лейкоцитарной
восстановление
уровня
активности
нейтрофилов,
организма,
наблюдалась
более
формулы,
уменьшение
лейкоцитов
гемоглобина,
увеличение
уменьшение
уровня
уровня
быстрая
и
фагоцитарной
бактерицидной
активности
сыворотки крови. Фагоцитарное число и лизоцимная активность сыворотки крови
видимых различий при разных методах лечения не имели.
В.Г. Дорофейчук (1968) считает, что изменения соответствуют тяжести
воспалительного процесса, следовательно, в результатах, полученных нами,
видна быстрая нормализация показателей крови у больных животных, которая
свидетельствует о быстром снижении воспалительных процессов в организме.
При применении препарата Конкерит полученные нами результаты
экспериментальных исследований имеют большое значение для лечения
животных больных конъюнктиво-кератитом, так как значительно сокращают
сроки выздоровления животных и более быстро нормализуют показатели крови.
135
Из расчетов видно, что экономическая эффективность на 1 рубль затрат
при лечении коров, больных конъюнктиво-кератитом, возникшем на фоне
телязиоза, Конкеритом составила 1,2 рубля, а при лечении общепринятым в
хозяйстве методом 1%-ной тетрациклиновой мазью – 0,5 рублей.
Анализируя результаты наших исследований, мы пришли к выводу, что при
лечении конъюнктиво-кератитов домашних плотоядных более эффективным
является применение комплексного метода лечения глазными каплями Конкерит
и новокаиновой блокадой. При лечении крупного рогатого скота, больного
конъюнктиво-кератитом, возникшем на фоне телязиоза, наиболее доступным,
дешевым и эффективным методом является применение препарата Конкерит.
Возможность того, что при применении предлагаемого нами препарата и
новокаиновой блокады для лечения конъюнктиво-кератита крупного рогатого
скота, окажется эффективной и целесообразной не отрицается.
136
Выводы
1. В отделениях «Р. Берлибаш» и «Янурусово» Кайбицкого и Сармановского
районов Республики Татарстан основным этиологическим фактором
возникновения конъюнктиво-кератита крупного рогатого скота является
Thelazia rhodesi.
2. При микробиологических исследованиях микрофлоры со слизистой
конъюнктивы животных больных конъюнктиво-кератитом в содержимом
конъюнктивального
стрептококки,
мешка
диплококки,
были
обнаружены
протей и кишечная
стафилококки,
палочка,
которые
осложняют течение болезни.
3. Разработанный нами препарат Конкерит и его водные 15, 25, 50, 75%-ные
растворы при посеве на питательные среды (МПА, среда Эндо) приводят к
полному подавлению роста микробных культур S. aureus штамма 209Р и
E. coli штамма 0126, что свидетельствует о выраженном антимикробном
свойстве.
4. Препарат Конкерит и его водные 15, 25, 50, 75%-ные растворы при
закапывании в конъюнктивальный мешок у лабораторных животных не
раздражают слизистую оболочку глаза.
5. При лечении экспериментально вызванных конъюнктиво-кератитов у
кроликов общепринятым методом 1%-ной тетрациклиновой мазью
выздоровление наступало на 16,33+0,58, водным 50%-ным раствором
препарата Конкерит на 13,67+1,53, водным 75%-ным раствором препарата
Конкерит на 12,67+1,53, нативным препаратом Конкерит на 12,33+1,53
сутки.
6. Лечение
больных
конъюнктиво-кератитом
домашних
плотоядных
препаратом Конкерит и новокаиновой блокадой краниального шейного
симпатического ганглия по А.Н. Голикову и С.Т. Шитову приводит к
более быстрому выздоровлению (7,62+1,03 сутки), чем при лечении
137
цефазолин натриевой солью, аскорбиновой кислотой и Конкеритом
(10,33+0,98 сутки).
7. При лечении крупного рогатого скота, больного конъюнктиво-кератитом,
возникшем на фоне телязиоза, препаратом Конкерит по сравнению с
общепринятым методом – 1%-ной тетрациклиновой мазью выздоровление
наступает на 4,7 суток раньше.
8. Применение препарата Конкерит при конъюнктиво-кератите крупного
рогатого скота, возникшего на фоне телязиоза, приводит к выздоровлению
на 12,12+1,27, а Мизофеном на 14,35+1,77 сутки.
9. Применение Конкерита при лечении конъюнктиво-кератита крупного
рогатого
скота,
возникшего
на
фоне
телязиоза,
экономически
целесообразно. Экономическая эффективность на 1 рубль затрат при
лечении Конкеритом составила 1,2 рубля, а при лечении общепринятым в
хозяйстве методом 1%-ной тетрациклиновой мазью – 0,5 рублей.
138
Практические предложения
1. При конъюнктивито-кератите домашних плотоядных рекомендуется
совместное применение препарата Конкерит и новокаиновой блокады
краниального шейного симпатического ганглия по А.Н. Голикову и С.Т.
Шитову.
2. При лечении крупного рогатого скота, больного конъюнктиво-кератитом,
возникшем на фоне телязиоза, рекомендуется комплекс мероприятий,
состоящий из дегельминтизации спринцеванием конъюнктивального
мешка 3%-ной борной кислоты и дальнейшим закапыванием 3-5 капель
препарата Конкерит. В дальнейшем, после полного клинического
выздоровления, для профилактической дегельминтизации рекомендуем
применение ивермека согласно инструкции.
3. Материалы диссертации рекомендуются для использования при чтении
лекций
и
проведении
практических
занятий
по
офтальмологии в других ВУЗах Российской Федерации.
ветеринарной
139
Список сокращений и условных обозначений
М – средняя арифметическая
m – ошибка
РТ – Республика Татарстан
РФ – Российская Федерация
МПА – мясо-пептонный агар
ЕД – единиц
об/мин – оборотов в минуту
круп. рог. скот – крупный рогатый скот
здор. жив-е – здоровые животные
руб. – рублей
гол. – голов
Т – температура
П – пульс в минуту
Д – дыхательных движений в минуту
140
Список использованной литературы
1. Аветистов,
С.Э.
Офтальмология:
национальное
руководство
/
С.Э.
Аветистов, Е.А. Егорова, Л.К. Мошетова, В.В. Нероев, Х.П. Тахчиди // – М.:
ГЭОТАР-Медиа, 2008. – 944с.
2. Авроров, В.Н. Тканевая терапия по методу акад. В.П. Филатова при
заболеваниях глаз у домашних животных: автореф. дисс. … канд. вет. наук :
16.00.05 / Авроров Владимир Николаевич. – Киров, 1954. – 20с.
3. Авроров, В.Н. Массовые заболевания глаз у крупного рогатого скота и их
лечение ретробульбарной новокаиновой блокадой в сочетании с синтомицином
и сульфацилом натрия / В.Н. Авроров //Тезисы докладов по итогам НИР за 1965
год. Воронеж. – 1966. – С. 12-13.
4. Авроров, В.Н. Состояние гемато-энцефалитического барьера в норме и при
патологии
глаза
и
этиопатогенетическая
терапия
риккетсиозного
кератоконъюнктивита у крупного рогатого скота: автореф. дисс. … док. вет.
наук : 16.00.05 / Авроров Владимир Николаевич – Воронеж, 1973. – 30с.
5. Авроров, В.Н. Ветеринарная офтальмология / В.Н. Авроров, А.В. Лебедев –
М.: Агропромиздат, 1985. – 271 с.
6. Авроров,
В.Н.
Аллергические
болезни
глаз
сельскохозяйственных
животных: Лекция. / В.Н. Авроров // - Воронеж: - ВГАУ, - 1991. – 19 с.
7. Авроров, В.Н. Электронно-микроскопические исследования при риккетсиозе
крупного рогатого скота / В.Н. Авроров, В.А. Черванев // Ветеринария. – 1991. № 10. - С. 29-31.
8. Аллахвердиев,
Р.С.
Клинико-морфологические
параллели
при
риккетсиозном кератоконъюнктивите крупного рогатого скота: автореф. дис. …
кан. вет. наук : 16.00.05 / Р.С. Аллахвердиев. – М., - 1968. – 22 с.
9. Аллахвердиев, P.C. Изучение кератоконъюнктивитов у жвачных животных /
P.C. Аллахвердиев, Г.А. Ахаев // Ветеринария. 1973. - № 11. - С. 58.
141
10. Аллахвердиев, P.C. Применение глазных лекарственных пленок при риккетсиозном конъюнктиво-кератите крупного рогатого скота / P.C. Аллахвердиев
// Информ. листок, Дагестанский ЦНТИ. 1978. - № 6-78.
11. Аллахвердиев,
инфекционного
P.C.
Эпизоотологические
кератоконъюнктивита
и клинические
мелкого
рогатого
особенности
скота
/
P.C.
Аллахвердиев // Информ. листок, Дагестанский ЦНТИ. 1978. - № 61-78.
12. Аллахвердиев, P.C. Лизоцимотерапия и профилактика керато-конъюнтивита
/ P.C. Аллахвердиев // Ветеринария. - 1980. - № 5. - С. 50.
13.
Аллахвердиев, P.C. Научно-практические и методические рекомендации
по борьбе с инфекционным (риккетсиозным) конъюнктиво-кератитом крупного
рогатого скота / P.C. Аллахвердиев, М.В. Плахотин // - Махачкала, - 1982. – 22
с.
14. Андриасян,
В.Б.
Лечебно-профилактические
мероприятия
при
инфекционном керато-конъюнктивите крупного рогатого скота / В.Б. Андриасян
// Информ. листок, Ленинградский ЦНТИ. Л., 1988. - № 529-88.
15. Андриасян, В.Б. Инфекционный кератоконъюнктивит крупного рогатого
скота в северо-западных областях нечерноземной зоны РСФСР : автореф. дисс.
… канд. вет. наук : 06.00.05 / Андриасян В.Б. – Ленинград, 1989. – 22 с.
16. Андросов, Ф.З. Справочник ветеринарного лаборанта / Ф.З. Андросов и др. //
– М.: - 1981. - 248 с.
17. Анспай, В. Инфекционный ринотрахеит крупного рогатого скота / В. Анспай
// Ветеринария. - 1973. - № 3. - С. 114.
18. Антонов, Б.И. Лабораторные исследования в ветеринарии: Вирусные,
риккетсиозные и паразитарные болезни: Справочник. / Б.И. Антонов, В.В.
Борисова, Л.П. Каменева и др. – М.: Агропромиздат, - 1987. – 184 с.
19. Арбузов, Б.А., Присоединение диалкилфосфористых кислот к неправильным
кетонам, нитрилам и эфирам кислот / Б.А. Арбузов, А.Н. Пудовик // Доклады
АН СССР. - 1950. - Т. 73. - № 2. - С. 327-330
142
20. Баженов, Н.С. Лечение риккетсиозного керато-конъюнктивита крупного
рогатого скота / Н.С. Баженов, В.Н. Барзенков // Ветеринария. - 1969. - № 7. - С.
42-43.
21. Бажин, М.А. Методы оценки Т и В систем иммунитета у крупного рогатого
скота при бруцеллезе и туберкулезе / М.А. Бажин // Методические
рекомендации ВАСХНИЛ в НИИ БТЖ Омск. - 1989. - 36 с.
22. Барзенков, В.Н. Кератоконъюнктивит крупного рогатого скота / В.Н.
Барзенков // Ветеринария. - 1963. - № 7. - С. 23-25.
23. Башкирцев, А. Повальная болезнь глаз / А. Башкирцев // Ветеринарное
обозрение. – 1901. - т. З. - С. 1062.
24. Бенкевич, В. Повальная болезнь у крупного рогатого скота / В. Бенкевич //
Вестник общественной ветеринарии - 1900. - № 18. – С. 841-842.
25. Блатун, Л.А. Димефосфон – новый отечественный лекарственный препарат
для местного лечения ран во второй фазе раневого процесса / Л.А. Блатун, Л.Е.
Зиганшина, И.А. Студенцова // Тезисы докладов 7 съезда хирургов Молдовы. –
Чинисау: Стиинта, - 1991. – С. 303-304.
26. Богданов, Н.М. Глазные болезни домашних животных / Богданов Н.М. //
Харьков: Книжный магазин "Научная мысль". - 1927. - 150 с.
27. Бриан,
Л.Е.
Бактериальная
резистентность
и
чувствительность
к
химиопрепаратам / Л.Е. Бриан // Пер. с англ. М.: Медицина, 1984. - 272с.
28. Валебная, Л.В.
Клинико-эпизоотологические особенности проявления ин-
фекционного керато-конъюнктивита крупного рогатого скота / Л.В. Валебная //
Мат. Междун. науч. конференции, посв. 70-летию образования зооинж.
факультета. - Казань. - 2000.- С. 20-21.
29. Веселов, В.И. Лечебные свойства фурацилина при инфекционном кератоконъюнктивите крупного рогатого скота / Веселов В.И. // Ветеринария. - 1963. № 3. - С. 42.
30. Вишневский, А.В. Новокаиновый блок нервной системы как метод
воздействия на трофические расстройства тканей / А.В. Вишневский // Архив
биол. наук. – т.34. – вып.4. – 1933. – С. 377 - 384.
143
31. Вишневский,
A.B.
Неспецифическая
терапия
в
лечении
ран
и
воспалительных процессов / A.B. Вишневский // Труды 25-го съезда хирургов. М.: Медгиз. - 1948. – С. 64-73.
32. Воробьев,
С.М.
Иммунокоррекция
при
лечении
риккетсиозного
конъюнктиво-кератита у крупного рогатого скота : дисс. … канд. вет. наук :
06.00.05 /Воробьев Сергей Михайлович – Троицк, 2001. – 163 с.
33. Габбасов, А.А. Этиопатогенетическая терапия конъюнктиво-кератитов у
животных : дисс. … канд. вет. наук : / Габбасов Айваз Ахнафович – Казань,
2000. – 256 с.
34. Галкина,
И.В.
Эффективность
препарата
«Астра-16»
при
лечении
экспериментально вызванного конъюнктиво-кераита у овец / И.В. Галкина, М.В.
Шакуров, Н.М. Шамилов, Е.В. Тудрий, Т.А. Ахметова, С.Н. Егорова //
Ветеринарный врач. – 2010. - №1. – С. 42-44.
35. Гатин П.П. К патогенетической терапии кератитов у животных : дисс. …
канд. вет. наук : / Гатин П.П. – Казань, 1952 – 148 с.
36. Гатин, П.П. К лечению заболеваний глаза новокаиновой блокадой / П.П.
Гатин // Ученые записки Казанского ветеринарного института - т. 68, - 1958. - С.
28-35.
37. Гафаров, Х.З. Морфологические и биохимические особенности штамма
Moraxella bovis / Х.З. Гафаров, JI.B. Валебная // Мат. Междун. науч.
конференции, поев. 70-летию образования зооинж. факультета. - Казань. - 2000.
- С. 35-36.
38. Голиков, А.Н. Новокаиновая блокада краниального шейного симпатического
узла при лечении заболеваний органов зрения / А.Н. Голиков, С.Т. Шитов //
Ветеринария. - 1963.- № 10. - С. 42-44.
39. Голиков, А.Н. Новокаиновая блокада в ветеринарной практике / А.Н.
Голиков // Ветеринария. - 1964. - № 9. - С. 67-70.
40. Голиков, А.Н. Электроэнцефалография воспалительного процесса глаз / А.Н.
Голиков, Г.Л. Бурчуладзе // Ветеринария. - 1974. - № 4. - С. 105.
144
41. Горшукова,
В.И.
Влияние
сочетанного
действия
антибиотиков
на
антимикробную активность и иммунологические показатели : диссер. ... канд.
вет. наук : / Горшукова В.И. Казань, 1973 - 189 с.
42. Гречиха,
А.Ю.
Сумамед
для
лечения
кошек
с
хламидийным
конъюнктивитом / А.Ю. Гречиха // Ветеринария. – 2013. - №1. – С.55-56.
43. Громов, В.П. Риккетсиозный конъюнктивит крупного рогатого скота / В.П.
Громов, И.И. Вершинин и др. // Ветеринария. - 1963.- № 8. - С. 33-34.
44. Гуневый, В.Д. Эффективность мероприятий против телязиоза крупного
рогатого скота / В.Д. Гуневый // Ветеринария. - 1969. - № 2. - С. 41.
45. Гусейнов, Н.Г. Телязиоз крупного рогатого скота / Н.Г. Гусейнов //
Ветеринария. – 2010. - №2. – С. 33-35.
46. Данелия Р.Е. Эффективность мефопрана в сочетании с новокаиновой
блокадой
при
лечении
животных
с
инфицированными
ранами
и
их
осложнениями : диссер. … канд. вет. наук : 06.00.05 / Данелия Р.Е. – Казань,
1988, - 201 с.
47. Дегтяров, Г.В. О частоте и формах поражения глаз у крупного рогатого
скота и лошадей при лептоспирозе / Г.В. Дегтяров, К.Ф. Петров, Ф.Л.
Гаджибалиева // Ветеринария. - 1965. - № 5. - С. 49-52.
48. Дорофейчук, В.Г. Определение активности лизоцима нефелометрическим
методом / В.Г. Дорофейчук // Лаб. дело. - 1968. - №1. - С. 28-30.
49. Дрончак, А.И. Динамика морфоциклина в жидких средах и тканях головы и
шеи животных при различных методах введения препарата / А.И. Дрончак // Сб.
науч. трудов “Исследования в области ветеринарии”. – Одесса, - 1972. – С. 205218.
50. Дрончак, А.И. Лечение крупного рогатого скота при гнойно-некротических
заболеаниях
области
головы
и
шеи
внутриартериальным
введением
морфоциклина и новокаина : автореф. дисс. … канд. вет. наук : 06.00.05 /
Дрончак А.И. – Одесса, 1973.
145
51. Зарипов, И.З. Эффективность озонотерапии в сочетании с новокаиновыми
блокадами при конъюнктиво-кератитах у животных : диссер. … канд. вет. наук :
06.00.05 / Зарипов Ильнар Зуфарович – Казань, 2002. – 170 с.
52. Здродовский, П.Ф., Учение о риккетсиях и риккетсиозах / П.Ф. Здродовский,
Е.М. Голиневич // – М., “Медицина” - 1972. – 496 с.
53. Зиганшина,
Л.Е.
Экспериментальное
обоснование
использования
димефосфона для местного лечения ран / Л.Е. Зиганшина, И.А. Студенцова,
А.У. Зиганшин // Мат. Всесоюзной конференции “Местное лечение ран”. – М.,
1991. – С. 213-214.
54. Ивашкин, В.М. Телязиоз крупного рогатого скота / В.М. Ивашкин, Л.А.
Хромова // Ветеринария. - 1984. - № 3. - С.52-53.
55. Карайченцов, В.Н. Изоляция Moraxella bovis от молодняка крупного
рогатого скота при инфекционном керато-конъюнктивите / В.Н. Караченцов,
А.Ф. Русинов и др. // Ветеринария. - 1992. - № 2. - С.26-21
56. Кацнельсон, З.С. Практикум по циологии, гистологии и эмбриологии / З.С.
Кацнельсон, И.Д. Рихтер // – Л.: - Колос. - 1979. – 312 с.
57. Кобянова, Н.И. Применение экстракта из листьев сахарной свеклы в
ветеринарной практике / Н.И. Кобянова // Ветеринария. - 1947. - № 8. - С.34.
58. Кондрахин
И.П.
Методы
ветеринарной
клинической
лабораторной
диагностики: Справочник / И.П. Кондрахин // – М.: КолосС, 2004. – 502 с.
59. Копенкин Е.П. Лечебная эффективность ß-излучения радиоактивного
фосфора-32 и прополиса при риккетсиозном кератоконъюнктивите крупного
рогатого скота: автореф дисс. … канд. вет. наук : 06.00.05 / Копенкин Е.П. –
Москва, 1970. – 25 с.
60. Копенкин, Е.П. Течение кератоконъюнктивита у телят при ринотрахеите.
Лечение и профилактика / Е.П. Копенкин // Хирургическая патология
животных: Межвуз. сб. науч. трудов / Московская вет. академия. - 1988. - С. 1315.
146
61. Копенкин Е.П. Диагностика, лечение и профилактика инфекционного и
инвазионного кератоконъюнктивитов крупного рогатого скота : автореф. дисс.
… док. вет. наук : 06.00.05 / Копенкин Е.П. – Москва, 2000. – 38 с.
62. Коромыслов В.Ф. Быстрый способ определения неорганического фосфора в
сыворотке крови / В.Ф. Коромыслов, Л.A. Кудрявцева // Ветеринария. - 1972. № 7. - С. 17-18.
63. Кост, Е.А., Определение фагоцитарной активности лейкоцитов / Е. А. Кост,
М. И. Стенко // Методическое пособие к лабораторным занятиям по основам
научных исследований. - Саратов, 1981. - С. 98.
64. Крастин, Н.И. Диагностика и терапия телязиозов крупного рогатого скота
при возбудителях Th.skrjabini и Th.gulosa / Н.И. Крастин // Ветеринария. – 1948.
- №8. – С. 19-21.
65. Крастин, Н.И. Инфекционная и инвазионная теория этиологии массовых
конъюнктиво-кератитов / Н.И. Крастин // «Телязиозы и их возбудители» Благовещенск, - 1957.- С. 96-102.
66. Кудрявцев, А.А. Клиническая гематология животных / А.А. Кудрявцев, Л.А.
Кудрявцева // – М.: - Колос, - 1974. – 399 с.
67. Кузнецов, А.К. Новокаиновая терапия хирургических заболеваний у
животных : автореф. дисс. … док. вет. наук : 06.00.05 / Кузнецов А.К. –
Ленинград, - 1965. – 40 с.
68. Кузнецов, Г.С., Хирургическая патология сельскохозяйственных животных /
Г.С. Кузнецов, К.И. Шакалов // - Л.: Колос, 1974 – 86 с.
69. Кушнирская, A.M. Сборник таблиц для статической обработки результатов
эксперимента / A.M. Кушнирская // Методические рекомендации. М.: МВА. 1984. - 19 с.
70. Лазарева, Д.Н. Стимуляторы иммунитета / Д.Н. Лазарева, К.К. Алехин // М.:
- Медицина, - 1985. – 255 с.
71. Лебедев, А.В. Частная ветеринарная хирургия / А.В. Лебедев, В.А. Черванев
// - М.: Колос, 1997. - 496 с.
147
72. Лоскутов, И.А. Стероидные мази в современной офтальмологической
практике / И.А. Лоскутов // Русский медицинский журнал. Internet (2000):
http:/www.rmi.net/7 07/14.htm
73. Ляушкин, A.B. Вспышка инфекционного кератоконъюнтивита овец / A.B.
Ляушкин, М.И. Рыков, И.М. Крючков // Ветеринария. - 1973. - № 2. - С. 55-56.
74. Майчук, Ю.Ф. Новое в эпидемиологии и фармакотерапии глазных
инфекций. / Ю.Ф. Майчук // Клин, офтальмология. 2000. - Т.1, - №2. -С. 48-51.
75. Макашов, A.B. Глазные болезни домашних животных / A.B. Макашов // - М.:
Сельхозгиз. - 1953. - 240 с.
76. Малахов Ю.А. Лептоспироз животных / Ю.А. Малахов // – М.:
Агропромиздат, 1992. – С. 118-120, 151.
77. Малыгин, М.С. Из практики / М.С. Малыгин // Ветеринария. - 1938. - № 7. С. 55.
78. Мастыко, Г.С. Лечение при керато-конъюнктивитах у животных / Г.С.
Мастыко, Е.М. Багриновская, В.М. Ланисов // Ветеринария. - 1967. - № 6. - С.
76-77.
79. Мастыко, Г.С. Материалы Всесоюзной межвузовской конференции по
вопросам ветеринарной хирургии / Г.С. Мастыко, Е.М. Багриновская, В.М.
Ланисов // - 1967. - С. 267-269.
80. Минчев, Н. Ветеринарная офтальмология / Н. Минчев // - София: - Земиздат,
- 1958.
81. Михнюк, С.П. Конъюнктиво-кератит крупного рогатого скота неуточненной
этиологии / С.П. Михнюк // Ветеринария. - 1966. - № 9. - С. 37.
82. Мозгов, И.Е. Сульфаниламидные препараты / Мозгов И.Е. // Ветеринария. 1948. - № 7. - С. 41.
83. Мудриченко, В.Д. Терапия телязиоза крупного рогатого скота струей
высокого давления / В.Д. Мудриченко // Ветеринария. - 1963. - № 4. - С. 46.
84. Навашин, С.М. Рациональная антибиотикотерапия / С.М. Навашин, И.П.
Фомин // - М.: Медицина, - 1982. - 496 с.
148
85. Никитин, И.Н., Организация и экономика ветеринарного дела / И.Н.
Никитин, В.А. Апалькин // – М.: КолосС, 2006. – 368 с.
86. Николас, Е. Профилактика и лечение глазных инфекций животных во
французской
армии
соединенными
стафило-стрептококковыми
фильтрат-
бульонными вакцинами по Безредко и Урбану. Пер. с англ. / Е. Николас //
Практическая ветеринария. – 1928. - №3. – С. 80.
87. Новиков, Д.К. Оценка иммунного статуса / Д.К. Новиков, В.И. Новикова // М.: Медицина. - 1996. - 281 с.
88. Обухов, И.Л. Опасный невидимка / И.Л. Обухов // Bimka. Internet (2000):
http://www.dogs.mu.ru/vet/catdog/hlamidii.html
89. Панин, Г.Ф. Стойкость возбудителя риккетсиозного конъюнктиво-кератита
овец / Г.Ф. Панин // Труды Вологодского молочного института. - 1953. - вып. 12.
- С. 125-135.
90. Петров,
Р.В.
Оценка
иммунологической
системы
при
массовых
обследованиях. Методические рекомендации / Р.В. Петров, P.M. Хаитов, Б.В.
Пинегин, И.В. Орадовская // Иммунология. - 1992. - № 6. - С. 51-62.
91. Плахотин, М.В. О лечебном применении невроктомии и периневральных
инъекций растворов новокаина, спирт-новокаина / М.В. Плахотин, А.Н. Голиков
// Ветеринария. - 1961. - № 11. - С. 32.
92. Плахотин, М.В. К диагностике, лечению и профилактике риккетсиозного
керато-конъюнктивита крупного рогатого скота / М.В. Плахотин, В.И. Захаров,
P.C. Аллахвердиев // Ветеринария. - 1966. - № 9. - С. 33-36.
93. Плахотин, М.В. Риккетсиозный кератоконъюнктивит крупного рогатого
скота / М.В. Плахотин, P.C. Алахвердиев, Е.П. Копенкин // Ветеринария. - № 11.
- 1971. - С. 50-51.
94. Плахотин,
М.В.
Лечебная
эффективность
применения
глазных
лекарственных пленок при риккетсиозном кератите крупного рогатого скота /
М.В. Плахотин, К.А. Фомин, Е.П. Копенкин,
Г.Л.
Хромов // Важнейшие
исследования по изучению заболеваний сельскохозяйственных животных: Сб.
науч. тр./ Московская ветеринарная академия. – М., 1977. – т. 90. – С. 58-61.
149
95. Подшивалов, Н.А. Диагностика и антибиотикотерапия при инфекционном
кератоконъюнктивите крупного рогатого скота : автореф. дисс. … канд. вет.
наук : 06.00.05 / Подшивалов Н.А. – Витебск, - 1968. – 20 с.
96. Подшивалов, H.A. Поливиниловый спирт и рыбий жир лекарственная основа
антибиотиков в офтальмологии / H.A. Подшивалов // Ветеринария. - 1968. - №
11. - С. 66-67.
97. Попов, Н.П. Гельминтозы сельскохозяйственных животных, пушных зверей
и птиц Татарстана и смежных с нею республик Среднего Поволжья / Н.П. Попов
// Ученые записки Казанского ветеринарного института. - т. 75. -1960. - С. 239241.
98. Протопопов, С.П. Анестезия нерва новокаина в свете учения Н.Е.
Введенского о парабиозе / С.П. Протопопов // Хирургия. - 1954. - №4. - С.3-7.
99. Рабинович, М.И. Ветеринарная фитотерапия / М.И. Рабинович // - М.:
Росагропромиздат. - 1988. - 174 с.
100. Растегаева, A.M. Пенициллин при керато-конъюнктивите крупного
рогатого скота / A.M. Растегаева, А.П. Прокофьева // Ветеринария. - 1947. -№8. С. 26.
101. Рево, М.В. Риккетсиозы сельскохозяйственных животных // Ученые
записки Казанского ветеринарного института / М.В. Рево // т. 51. - 1939. - С.
142-143.
102. Русинов, А.Ф. О риккетсиозном керато-конъюнктивите крупного рогатого
скота / А.Ф. Русинов // Ветеринария. - 1965. - № 10. - С. 29-31.
103. Русинов, А.Ф. Материалы Всесоюзной межвузовской конференции по
вопросам ветеринарной хирургии / А.Ф. Русинов // - 1967. - С. 270-274.
104. Русинов,
А.Ф.
Дифференциальная
диагностика
массовых
керато-
конъюнктивитов у крупного рогатого скота в животноводческих комплексах /
А.Ф.
Русинов
//
Материалы
науч.
конф.
«Диагностика
и
лечебно-
профилактические мероприятия при бесплодии и травматизме в промышленном
животноводстве». – М., - 1987. – С. 64-67.
150
105. Сапунов А.Я. Телязиоз импортного герефордского скота в СеверноЗападном регионе Кавказа / А.Я. Сапунов, А.Н. Турченко, О.Б. Петрик //
Ветеринария. – 2010. - №12. – С. 31-32.
106. Смирнова, О.В. По поводу критических замечаний относительно метода
определения бактерицидной активности сыворотки крови при использовании
фотонефелометра / О.В. Смирнова, Т.А. Кузьмина, И.Б. Исиченко // Лаб. дело.
1981. - №10. - С. 626-628.
107. Соколов, В.Е. Жизнь животных / В.Е. Соколов // В 7 т. 1 - М.: Просвещение, 1987 – 326 с.
108. Сунагатуллин, Ф.А. Распространение и этиология конъюнктивитокератита крупного рогатого скота в ОАО «Заволжье» Кайбицкого района РТ /
Ф.А. Сунагатуллин, Д.А. Шарафутдинов // Ученые записки Казанской
государственной академии ветеринарной медицины им. Н.Э. Баумана. – Казань.
- 2013. - Том 213. - С. 273-278.
109. Тимохин, А.А. Оценка бактерицидной активности вновь синтезированных
химиотерапевтических препаратов / А.А. Тимохин,
Х.Н. Макаев и др. //
Ветеринарный вестник. - 1999. - № 11-12 – С. 47-48.
110. Тимохин, А.А. Токсичность нового химиотерапевтического соединения
МК–1 / А.А. Тимохин // Материалы Международной науч. конф. посвященной
70-летию образования зооинженерного факультета. - Казань, 2000. – С. 302-303.
111. Тимохин, А.А. Изучение отдаленных последствий соединения МК-1 / А.А.
Тимохин,
Х.Н. Макаев // Материалы научно-производственной конф. по
актуальным проблемам ветеринарии и зоотехнии. - Казань, 2001. – ч. 1. – С. 84.
112. Тимохин,
диэтиламмониевой
А.А.
соли
Лечебно-профилактическая
эффективность
N-бензилиденамино-1-фенилметансульфоновой
кислоты при эшерихиозе телят : автореф. дисс. … канд. вет. наук : 16.00.04 /
Тимохин Андрей Анатольевич. – Казань, 2002. – 19с.
113. Тихов, В.К. Лечение телязиозного кератоконъюнктивита у крупного
рогатого скота экстрактом алоэ / В.К. Тихов // Труды Омского ветеринарного
института. - т.16.- 1959.- С. 36-38.
151
114. Тихов, В.К. Эффективность лечения и изменения в крови в результате
применения экстракта алоэ при некоторых заболеваниях глаз у собак // В.К.
Тихов // Труды Омского ветеринарного института. - т.16. - 1959. – С. 5-7.
115. Тихов, В.К. Экстракты алоэ при некоторых заболеваниях глаз животных :
автореф. дисс. … канд. вет. наук : 06.00.05 / Тихов В.К. – Омск, - 1963.
116. Фарзалиев, И.А. Риккетсиозный конъюнктивит крупного рогатого скота
Текст. / И.А. Фарзалиев, В.Д. Сафаралиев, Г.Г. Гасанов // Ветеринария. - 1964. №6. - С. 25-26.
117. Федосеев, B.C. О роли мух в распространении риккетсиозного кератоконъюнтивита / B.C. Федосеев, Ж.М. Исимбеков, Р.Д. Дуатбаева // Ветеринария.
- 1973. - № 7. - С. 50-51.
118. Филатов, В.П. Инструкция по изготовлению и применению тканевых
препаратов для лечения биогенными стимуляторами / В.П. Филатов и др. // Одесса, - 1946.
119. Филатов, В.П. Основные теоретические вопросы тканевой терапии / В.П.
Филатов // Тканевая терапия. - Киев, - 1953. – С. 46-62.
120. Фомин, К.А. Глазные болезни животных / К.А. Фомин // М.: Колос. - 1968.
- 272 с.
121. Фомин, К.А. Гидрокортизон при заболеваниях глаз у животных / К.А.
Фомин, С.Т. Шитов // Ветеринария. 1972. - № 5. - С. 70.
122. Фортумный, В.А. Пенициллин в глазной практике / В.А. Фортумный, И.К.
Капустин // Ветеринария. - 1961. - № 10. - С. 88.
123. Хоулт Дж. Краткий определитель бактерий Берги / Дж. Хоулт //
Издательство «Мир». - Москва, - 1980. – 496с.
124. Черванев, В.А. Лечение при риккетсиозном конъюнктиво-кератите
крупного рогатого скота / В.А. Черванев // Ветеринария. - 1995. - № 8. - С. 31-33.
125. Черванев,
В.А.
Ультраструктурные
изменения
роговицы
при
риккетсиозном конъюнктиво-кератите крупного рогатого скота / В.А. Черванев
// Ветеринария. - 1998. - № 1. - С. 26-28.
152
126. Шакуров, М.Ш. Сравнительное изучение влияния различных методов
применения новокаина на защитно-приспособительную реакцию организма
овец / М.Ш. Шакуров // Ученые записки Казанского ветеринарного института т. 110, - 1971. - С. 105-109.
127. Шакуров, М.Ш. Среда обитания и массовые хирургические болезни
животных / М.Ш. Шакуров // Материалы науч. - произв. конф. «Экологические
проблемы фармакологии и токсикологии». - Казань. - 1990. - С. 121-122.
128. Шакуров М.Ш., Ретробульбарная новокаиновая блокада при кератоконъюнктивитах животных / М.Ш. Шакуров,
А.И. Фролова // Материалы
Респуб. науч. - произв. конф. «Достижения Казанской вет. школы – в практику
животноводства» - Казань. – 1991.
129. Шакуров, М.Ш. Новокаиновые блокады в ветеринарии / М.Ш. Шакуров,
И.Г. Галимзянов // - Казань, - 2000. - 41 с.
130. Шарафутдинов, Д.А. «Новцевдек» - новый препарат при конъюнктивокератите кошек и собак / Д.А. Шарафутдинов, Ф.А. Сунагатуллин // Ученые
записки Казанской государственной академии ветеринарной медицины им. Н.Э.
Баумана. – Казань. - 2012. - Том 212. - С. 206-209.
131. Шарафутдинов,
Д.А.
Комплексное
лечение
кроликов
при
экспериментальном конъюнктивито-кератите / Д.А. Шарафутдинов // Ученые
записки Казанской государственной академии ветеринарной медицины им. Н.Э.
Баумана. – Казань. - 2013. - Том 213. - С. 318-322.
132. Шарафутдинов, Д.А. Сравнительная оценка методов лечения коров при
конъюнктивито-кератите в условиях агрофирмы «Сарман», Сармановского
района РТ / Д.А. Шарафутдинов // Материалы Междунар. научно-практической
конференции «Теоретические и практические вопросы развития научной мысли
в современном мире».- Уфа. - 2013г. - Том 11. – С. 19-21.
133. Шарафутдинов, Д.А. Определение антимикробной активности различных
концентраций препарата Конкерит и его бактериостатического влияния на
микробные культуры / Д.А. Шарафутдинов // Материалы Междунар. научно-
153
практической конференции «Теоретические и практические вопросы развития
научной мысли в современном мире».- Уфа. - 2013г. - Том 12. – С. 238-240.
134. Шарафутдинов,
Д.А.
Распространение,
клинические
признаки
конъюнктиво-кератита крупного рогатого скота и экономический ущерб в ОАО
«Заволжье» Кайбицкого района Республики Татарстан / Д.А. Шарафутдинов //
Ученые записки Казанской государственной академии ветеринарной медицины
им. Н.Э. Баумана. – Казань. - 2013. - Том 215. - С. 359-362.
135. Шарафутдинов, Д.А. Этиология конъюнктиво-кератита коров в условиях
агрофирмы «Сарман» Сармановского района Республики Татарстан / Д.А.
Шарафутдинов,
Ф.А.
Сунагатуллин
//
Материалы
междунар.
научно-
практической конференции: «Интеграция науки и производства – стратегия
устойчивого развития АПК России в ВТО». – Волгоград. – 2013. – Том. 2. – С.
86-88.
136. Щербакова, Е.П. Изучение этиологии керато-конъюнктивита крупного
рогатого скота в животноводческих хозяйствах Челябинской и Курганской
областей / Е.П. Щербакова, А.В. Минин, Т.Н. Шнякина // Материалы
международной научно-практической конференции «Инновационные подходы в
ветеринарии, биологии и экологии». – Троицк: УГАВМ, - 2011. – С. 254-256.
137. Щербакова,
Е.П.
Определение
этиологического
фактора
керато-
конъюнктивита в животноводческих хозяйствах Челябинской и Курганской
областей / Е.П. Щербакова, А.В. Минин, П.Н. Щербаков // Тезисы 2-й
Всероссийской межвузовской конференции по ветеринарной хирургии. –
Москва: МГАВМ им. К.И. Скрябина, - 2011. С. 169-171.
138. Щербакова, Е.П. Этиология и меры профилактики конъюнктиво-кератита
в
животноводческих хозяйствах Челябинской области / Е.П. Щербакова //
Материалы международной научно-практической конференции, посвященной
90-летию со дня рождения Рабиновича Моисея Исааковича. Троицк: УГАВМ, 2012. – С. 172-178.
139. Щербакова, Е.П. Этиология конъюнктиво-кератита в ООО «Варшавское»
Карталинского и ООО «ПЗК-Птицефабрика Челябинская» Верхнеуральского
154
районов Челябинской области / Е.П. Щербакова // Труды Кубанского
государственного аграрного университета. – Краснодар, - 2012. – С. 371-373.
140. Щербакова, Е.П. Совершенствование и повышение эффективности
специфической профилактики конъюнктиво-кератита крупного рогатого скота:
автореф. дисс. … канд. вет. наук : 06.02.04 / Щербакова Елена Павловна –
Троицк, - 2013. – 19 с.
141. Эльце, К. Керато-конъюнктивит / К. Эльце, X. Мейер, Г. Штейнбах //
Болезни молодняка сельскохозяйственных животных. Пер. с нем. - М.: - Колос, 1977. – С. 96-99.
142. Ямникова С, Хламидиоз кошек и собак / С. Ямникова, И. Непоклонова //
- Internet (2000) : http://www.users.kharkiv.eom/gaseta/4/infec.html.
143. Abinanti, F.R. The isolation of infectious bovine rhinotracheitis virus from
cattle affected with conjunctivitis observations on the experimental infection / F.R.
Abinanti, G.J. Plummer // Am. J. Vet. Res. - 1961, Aug. 22(8). - P. 13-17.
144. Allen, J.A. A Preliminary Note on Infectious Keratitis / J.A. Allen // J. Am.
Vet. Med. Assoc.: - 1919. - vol. 54. - P. 307-313.
145. Anon. USDA Licenses first pink eye vaccine for cattle health care // Beef. –
1985. - t. 21. - P. 69.
146. Arbukcle, J. Thelazia worms in the eyes of British cattle / J. Arbukcle, L. Khalil
// Vet. Rec. – 1976. - vol. 99, 19. - P. 376-377.
147. Arora, A. Bacteriologic and vaccination studies in a field epizootic of infectious
bovine keratoconjunctivitis in calves / A. Arora // Am. J. Vet. Res. – 1976. - vol.
37(7). - P. 803-805.
148. Arora,
A.
Detection of M.
Bovis
antibodies
in infectious
bovine
keratoconjunctivitis by a passive hemagglutination test / A. Arora // Am. J. Vet. Res. –
1976. - 37(12). - P. 1489.
149. Baldwin, E.M. A Study of Bovine Infectious Keratitis / E.M. Baldwin // Am. J.
Vet. Res. – 1945. - vol. 6. - P. 180-187.
150. Blogg, J.R. Chloramphenicol 4. Responsible topical use ophthalmology / J.R.
Blogg // Aust. Vet. J. - 1991, Jan. 68(1). - P. 8-9.
155
151. Brawn, M.N. Infectious bovine keratoconjunctivitis: a review / M.N. Brawn,
A.N. Brightman, B.W. Fenwick, M.N. Rider // J. Vet. Intern. Med. - 1998, Jul-Aug.
12(4). - P. 259.
152. Bullan, H. Bekamp fund der infectiosen keratokonjunctivitis in groben
Rinderherden unter der Beningungen der Weidewirtschaft / H. Bullan, A. Mann, J.
Gruner, O. Dietz // Mh. Vet. Med. - 27, - 1972.
153. Coles, J.D. Rickettsia like organism of the conjunctival epithelium of cattle /
J.D. Coles // The J. So. Afr. Vet. Med. Assoc. - vol. 4. – 1936. - P. 221-225.
154. Cooper, B.S. Treatment of conjunctivokeratitis of cattle and sheep with
ethidium bromide Part J. Infectious bovine keratitis / B.S. Cooper //Vet. Rec. - 1960. vol. 72. - P. 589-594.
155. Dimic, J. et al. // Vet. Glasn. – 1960. - vol. 14. P. 81-86.
156. Dodt, R.M. The prevalence bovine keratoconjunctivitis in beef cattle herd in
north eastern Queensland / R.M. Dodt // Aust. Vet. J. - 1977 Mar. - vol. 53(3). - P.
128.
157. Dueger, E.L. Efficacy of florfenicol in the treatment of experimentally induced
infectious bovine keratoconjunctivitis / E.L. Dueger, J.A. Angelos, L.W. George et al.
// Am. J. Vet. Res. - 1999, Aug. - vol. 53(3). - P. 960.
158. Farley H. Infections keratitis of Catlle a preliminary report / H. Farley, J.O.
Kliewer, C.C. Person et al. // Am. J. Vet. Res. – 1950. - vol. 11. - P. 17-21.
159. Furowicz, A. Investigaciones serologicas de M.bovis aisloda en casos de
queratoconjundivitis infecciosa bovina / A. Furowicz // Gac. Veter. - 1976, 38, 313 –
P. 312-328.
160. Endmonson, A.J. Survival analysis for evaluation of corneal ulcer healing times
in calves with naturally acquired infectious bovine keratoconjunctivitis / A.J.
Endmonson, L.W. George, T.B. Farver // Am. J. Vet. Res. - 1989, Jun. - vol. 50(6). P. 960.
161. George, L.W. Effectiveness of two bensathine cloxacilline formulations of
treatment of naturally of occurring infectious bovine keratoconjunctivitis / L.W.
George // Am. J. Vet. Res. - 1989, Jul. - vol. 51(7). - P. 1170.
156
162. Jones, F.S. An Infectious Ophthalmia of Cattle / F.S. Jones, R.B. Little // J. Exp.
Med. - 1923. - vol. 38. - P. 139-148.
163. Jones, F.S. The Transmission and Treatment of infectious Ophthalmia of Cattle
/ F.S. Jones, R.B. Little // J. Exp. Med. – 1924. - vol. 39. - P. 803-810.
164. Henson, J.B. Infectious bovine keratoconjunctivitis. I. Etiology / J.B.Henson,
L.C. Grumbles // Am. J. Vet. Res. - 1960. - vol. 21. - P. 761-766.
165. Huber, W.G., Smith G.S. // Vet. Med. – 1963. - vol. 58. - P. 875.
166. Hughes, D. E. Effect of vaccination with a Moraxella bovis / D. E. Hughes //
Am. J. Vet. Res. - 1976, Nov. - vol. 37 (11). - P. 1291-1292.
167. Hughes, D.E. Ultraviolet radiation and Moraxella bovis in the etiology of
bovine infectious keratoconjunctivitis / D.E. Hughes, G.W. Pugh, TJ.Mc. Donald //
Am. J. Vet. Res. - 1965. - vol. 26. - P. 1331-1338.
168. Hughes, D. E. et al. // Am. J. Vet. Res. – 1968. - vol. 29. - P. 829-833.
169. Hughes, D.E. A five-year study of Infectious bovine keratoconjunctivitis in a
beef herd / D.E. Hughes, G.W. Pugh. // Am. J. Vet. Med. Assoc. 1970. - vol. 157. - №
4 - P. 443-451.
170. Hughes, D.E. Experimentally induced infectious bovine keratoconjunctivitis:
Relationship of vaccination schedule to protection against exposure with homologous
Moraxella bovis culture / D.E. Hughes, G.W. Pugh //Am. J. Vet. Res. – 1975. - vol.
36. - P. 263-265.
171. Hughes,
J.P.
Keratoconjunctivitis
associated
with
infectious
bovine
rhinotracheitis / J.P. Hughes, H.J. Olander, M. Wada // Am. J. Vet. Med. Ass. – 1964.
- vol. 145. - P. 32-39.
172. Kaufman, C. Eye diseases lower profits / C. Kaufman // Big Farm Manag. 1977, May. - vol. 66.
173. Kennedy, M.J. The efficacy of ivermectin against the worm, Thelazia skrjbini,
in experimentally infected cattle / M.J. Kennedy // Veterinary Parasitilogy. – 1992. vol. 45(1-2). - P.127-131.
157
174. Kennedy, M.J. The efficacy of doramectin against the eye worms (Thelazia
spp.) in naturally and experimentally infected cattle / M.J. Kennedy, F.E. Phillips //
Veterinary Parasitilogy. – 1993. - vol. 49(1). - P. 61-66.
175. Kennedy, M.J. The efficacy of ivermectin (pour-on) against the eye worms,
Thelazia gulosa and Thelazia skrjbini, in naturally infected cattle / M.J. Kennedy, J.E.
Holste, J.A. Jacobsen // Veterinary Parasitilogy. – 1994. - vol. 55(3). - P. 263-266.
176. Kita, J. Badania nad etiologia keratoconjunctivitis cielat / J. Kita // Med.
wetwer. - 1975, 31, 10. – P. 593-597.
177. Kopecky, K.E. Infectious bovine keratoconjunctivitis: contact transmission /
K.E. Kopecky // Am. J. Vet. Res. - 1986, Mar. - vol. 47(3). - P. 662.
178. Oka, M. Pink eye (infectious keratoconjunctivitis) in grazing cattie / M. Oka //
J.A.R.Q. – 1976. - vol. 10(1). - P. 37-41.
179. Pugh, G.W. Experimental bovine Infectious keratoconjunctivitis caused by
Sunlamp Irradiation of Hemolytic Ability and Pathogenicity / G.W. Pugh, W. George,
D.E. Hughes // Am. J. Vet. Res. - 1968. - vol. 29. - P. 835-839.
180. Pugh, G.W. Infections bovine кerato-conjnctivitis: Moraxella bovis as the sole
etiologic agent in winter epizootic / G.W. Pugh, D.E. Hughes // J. Am. Vet. Med.
Assn. – 1972. - vol. 161. - P. 481-486.
181. Pugh, G.W. Infectious bovine keratoconjunctivitis in cattle vaccinated and
medicated against Moraxella bovis before parturition / G.W. Pugh // Am. J. Vet. Res.
- 1982, Feb. - vol. 43(2). - P. 320.
182. Pugh, G.W. Isolation of Moraxella bovis ribosomes and their subsequent us in
vaccine against infectious bovine keratoconjunctivitis / G.W. Pugh et al. // Am. J. Vet.
Res. - 1982, Mar. - vol. 42(3). - P. 516.
183. Pugh, G.W. Experimental infectious bovine keratoconjunctivitis: efficacy of a
vaccine prepared from nonhemolytic strains of Moraxella bovis / G.W. Pugh et al. //
Am. J. Vet. Res., - 1982, Jun. - vol. 46(6). - P. 1084.
184. Pugh, G.W. Infectious bovine keratoconjunctivitis: enhancement of Moraxella
bovis pili immunogenicity with diphtheria-tetanus toxoids and pertussis vaccine /
G.W. Pugh et al. // Am. J. Vet. Res. - 1984, Apr. - vol. 45(4). - P. 661.
158
185. Pugh, G.W. Infectious bovine keratoconjunctivitis: evidence for genetic
modulation of resistance in pure-bred Hereford cattle / G.W. Pugh et al. // Am. J. Vet.
Res. - 1986, Apr. - vol. 47(4). - P. 885.
186. Salisbury, M.A. Microorganisms isolated from the corneal surface before and
during topically cyclosporine treatment in dogs with keratoconjunctivitis sicca / M.A.
Salisbury, R.L. Kaswan, J. Brawn // Am. J. Vet. Res. - 1995, Jun. - vol. 59(7). - P.
880.
187. Schnurrbusch,
U.
Erfahrungen
in
der
Behandlung
der
infektiösen
keratokonjunctivitis des Rinder mit Chloronitritrin Spray / U. Schnurrbusch, P.
Rommel, K.H. Chemnitius // Mh. Vet. Med.: 1969, 24.
188. Slatter, D.H. A national survey of the occurrence of infectious bovine
keratoconjunctivitis / D.H. Slatter, M.E. Edwards, C.D. Hawkins, G.E. Wilcox // Aust.
Vet. J. - 1982, Sep. - vol. 59(9). - P. 65.
189. Smith, J.A. Treatment of acute ocular Moraxella bovis infectious in calves with
a parenterally administered long-active Oxytetracycline formulation / J.A. Smith,
L.W. George // Am. J. Vet. Res. - 1995, Apr. - vol. 46(4). - P. 804.
190. Smith,
P.C.
Effectiveness
of
two
commercial
infectious
bovine
keratoconjunctivitis vaccines / P.C. Smith et al. // Am. J. Vet. Res. - 1990, Jul. - vol.
51(7). - P. 1147.
191. Sykes, J. A. Experimental induction of infection bovine keratoconjunctivitis /
J.A. Sykes, M. Scanlon, W.O. Russel, L. Dmochowski // Tex. Rep. Biol. Med. - 1964.
- vol. 22. - P. 741-755.
192. Travnicek, M. Isolation of Chlamydia psittaci and Moraxella bovis from
infectious keratoconjunctivitis in lambs / M. Travnicek, T. Dravecky, J. Balascak //
Vet. Med. (Praha). - 1982, Aug. - vol. 27(8). – P. 491.
193. Vandergaast, N. Infectious bovine keratoconjunctivitis epizootic associated with
area-wide emergence of a new Moraxella bovis pilus type / N. Vandergaast, R.F.
Rosenbusch // Am. J. Vet Res. - 1989, Sep. - vol. 50(9). - P. 1437-1441.
194. Van Donkersgoed, J. Blindness caused by hypovitaminosis A in feedlot cattle /
J. Van Donkersgoed, E.G. Clark // Canad. Vet. J. – 1988. - vol. 11. - P. 925-927.
159
195. Webber, J.J. Effect of Moraxella bovis vaccination schedules on experimentally
induced infectious bovine keratoconjunctivitis / J.J. Webber et al. // Am. J. Vet. Res. 1981, Jul. - vol. 42(7). - P. 1181.
196. Wolf,
T.
Piliated
pinkeye
bacterin
for
the
prevention
of
keratoconjunctivitis in cattle / T. Wolf // Agri-Pract. – 1984. - vol. 8. - P. 34-40.
bovine
160
Список иллюстрированного материала
Рисунки:
1. Схема опыта (с. 46).
2. Кролик
«Белый
поверхностном
1»,
правый
глаз
перед
диффузно-катаральном
началом
кератите
и
лечения
при
катаральном
конъюнктивите (с. 66).
3. Кролик «Белый 1», правый глаз на 7-й день лечения при поверхностном
диффузно-катаральном кератите и катаральном конъюнктивите (с. 66).
4. Кролик «Белый 1», правый глаз на 11-й день лечения при поверхностном
диффузно-катаральном кератите и катаральном конъюнктивите (с. 67).
5. Кролик «Белый 1», правый глаз на 15-й день лечения при поверхностном
диффузно-катаральном кератите и катаральном конъюнктивите (с. 68).
6. Кролик
«Серый
поверхностном
3»,
правый
глаз
перед
диффузно-катаральном
началом
кератите
и
лечения
при
катаральном
конъюнктивите (с. 69).
7. Кролик «Серый 3», правый глаз на 7-й день лечения при поверхностном
диффузно-катаральном кератите и катаральном конъюнктивите (с. 70).
8. Кролик «Серый 3», правый глаз на 13-й день лечения при поверхностном
диффузно-катаральном кератите и катаральном конъюнктивите (с. 71).
9. Кролик
«Белый
поверхностном
6»,
правый
глаз
перед
диффузно-катаральном
началом
кератите
и
лечения
при
катаральном
конъюнктивите (с. 73).
10. Кролик «Белый 6», правый глаз на 4-й день лечения при поверхностном
диффузно-катаральном кератите и катаральном конъюнктивите (с. 74).
11. Кролик «Белый 6», правый глаз на 11-й день лечения при поверхностном
диффузно-катаральном кератите и катаральном конъюнктивите (с. 74).
12. Кролик «Черный 3», правый глаз перед началом лечения при
поверхностном
диффузно-катаральном
конъюнктивите (с. 76).
кератите
и
катаральном
161
13. Кролик «Черный 3», правый глаз на 6-й день лечения при поверхностном
диффузно-катаральном кератите и катаральном конъюнктивите (с. 77).
14. Кролик
«Черный 3»,
поверхностном
правый глаз
диффузно-катаральном
на
12-й день лечения
кератите
и
при
катаральном
конъюнктивите (с. 78).
15. Собака «Месси», правый глаз перед началом лечения при поверхностном
диффузном катаральном конънктиво-кератите (с. 80).
16. Собака «Месси», правый глаз на 4-й день лечения при поверхностном
диффузном катаральном конънктиво-кератите (с. 81).
17. Собака «Месси», правый глаз на 10-й день лечения при поверхностном
диффузном катаральном конънктиво-кератите (с. 82).
18. Кот «Браун», правый глаз перед началом лечения при поверхностном
диффузном гнойно-катаральном конъюнктиво-кератите (с. 83).
19. Кот «Браун», правый глаз на 3-й день лечения при поверхностном
диффузном гнойно-катаральном конъюнктиво-кератите (с. 84).
20. Кот «Браун», правый глаз на 10-й день лечения при поверхностном
диффузном гнойно-катаральном конъюнктиво-кератите (с. 85).
21. Собака «Чарльз», левый глаз перед началом лечения при поверхностном
диффузном катаральном конъюнктиво-кератите (с. 87).
22. Собака «Чарльз», левый глаз на 8-й день лечения при поверхностном
диффузном катаральном конъюнктиво-кератите (с. 88).
23. Собака «Бакс», левый глаз перед началом лечения при поверхностном
диффузном катаральном конъюнктиво-кератите (с. 89).
24. Собака «Бакс», левый глаз на 4-й день лечения при поверхностном
диффузном катаральном конъюнктиво-кератите (с. 90).
25. Собака «Бакс», левый глаз на 8-й день лечения при поверхностном
диффузном катаральном конъюнктиво-кератите (с. 90).
26. Корова № 43, правый глаз перед началом лечения при поверхностном
диффузно-катаральном кератите и катаральном конъюнктивите (с. 92).
162
27. Корова № 43, правый глаз на 8-й день лечения при поверхностном
диффузно-катаральном кератите и катаральном конъюнктивите (с. 93).
28. Корова № 43, правый глаз на 14-й день лечения при поверхностном
диффузно-катаральном кератите и катаральном конъюнктивите (с. 93).
29. Корова № 3000я, правый глаз перед началом лечения при поверхностном
диффузно-катаральном кератите и катаральном конъюнктивите (с. 94).
30. Корова № 3000я, правый глаз на 6-й день лечения при поверхностном
диффузно-катаральном кератите и катаральном конъюнктивите (с. 95).
31. Корова № 3000я, правый глаз на 12-й день лечения при поверхностном
диффузно-катаральном кератите и катаральном конъюнктивите (с. 96).
32. Динамика изменения общего белка (с. 99).
33. Динамика изменения общего кальция (с. 99).
34. Динамика изменения неорганического фосфора (с. 100).
35. Динамика изменения каротина (с. 100).
36. Корова № 10, правый глаз перед началом лечения при поверхностном
диффузно-катаральном кератите и катаральном конъюнктивите (с. 102).
37. Корова № 10, правый глаз на 8-й день лечения при поверхностном
диффузно-катаральном кератите и катаральном конъюнктивите (с. 103).
38. Корова № 10, правый глаз на 16-й день лечения при поверхностном
диффузно-катаральном кератите и катаральном конъюнктивите (с. 104).
39. Корова № 265, правый глаз перед началом лечения при поверхностном
диффузно-катаральном кератите и катаральном конъюнктивите (с. 104).
40. Корова № 265, правый глаз на 6-й день лечения при поверхностном
диффузно-катаральном кератите и катаральном конъюнктивите (с. 105).
41. Корова № 265, правый глаз на 12-й день лечения при поверхностном
диффузно-катаральном кератите и катаральном конъюнктивите (с. 106).
42. Динамика изменения лейкоцита (с. 110).
43. Динамика изменения гемоглобина (с. 110).
44. Динамика изменения Т-лимфоцитов относительных (с. 116).
45. Динамика изменения Т-лимфоцитов абсолютных (с. 117).
163
46. Динамика изменения В-лимфоцитов относительных (с. 117).
47. Динамика изменения В-лимфоцитов абсолютных (с. 118).
48. Динамика изменения Т-лимфоцитов относительных (Е-РОК) (с. 118).
49. Динамика изменения Т-лимфоцитов абсолютных (Е-РОК) (с. 119).
50. Динамика изменения Т-лимфоцитов-хелперов относительных (с. 119).
51. Динамика изменения Т-лимфоцитов-хелперов абсолютных (с. 120).
52. Динамика изменения Т-лимфоцитов-супрессоров относительных (с. 120).
53. Динамика изменения Т-лимфоцитов-супрессоров абсолютных (с. 121).
54. Динамика изменения фагоцитарной активности нейтрофилов (с. 121).
55. Динамика изменения фагоцитарного числа (с. 122).
56. Динамика изменения бактерицидной активности сыворотки крови
(с. 122).
57. Динамика изменения лизоцимной активности сыворотки крови (с. 123).
Таблицы:
1. Объем и характер исследований (с. 45).
2. Некоторые биохимические показатели крови у коров 1 группы (с. 97).
3. Некоторые биохимические показатели крови у коров 2 группы (с. 98).
4. Морфологические показатели у коров 1 группы (с. 107).
5. Морфологические показатели у коров 2 группы (с. 109).
6. Иммунологические показатели крови у коров 1 группы (с. 112).
7. Иммунологические показатели крови у коров 2 группы (с. 114).
8. Ветеринарные затраты на применение лекарственных препаратов на одну
корову (с. 124).
9. Затраты на лечение коров, больных конъюнктиво-кератитом телязиозного
происхождения (с. 124).
164
Приложения
165
166
167
168
169
170
171
172
173
174
175
176
177
178