фитосанитарный экологический мониторинг

МИНИСТЕРСТВО СЕЛЬСКОГО ХОЗЯЙСТВА РФ
НОВОСИБИРСКИЙ ГОСУДАРСТВЕННЫЙ
АГРАРНЫЙ УНИВЕРСИТЕТ
АГРОНОМИЧЕСКИЙ ФАКУЛЬТЕТ
ФИТОСАНИТАРНЫЙ ЭКОЛОГИЧЕСКИЙ
МОНИТОРИНГ
Методические указания
к лабораторно-практическим занятиям
и контрольной работе
Новосибирск 2012
Кафедра фитопатологии и систем защиты растений
Составители: проф. Е. Ю. Торопова,
доц. А. А. Кириченко
Рецензент: доцент, д-р биол. наук И. Г. Воробьева
Фитосанитарный экологический мониторинг: метод указания к лаб.-практ. занятиям и контрольной работе/Новосиб. гос. аграр. ун-т.; сост.: Торопова Е. Ю., Кириченко А. А. – Новосибирск: Изд-во НГАУ, – 2012. – 41 с.
Методические указания предназначены для бакалавров и магистров направления агрономия по профилю защита растений.
Утверждены и рекомендованы к изданию методической комиссией агрономического факультета (протокол
№ 2 от 27 января 2011 г.).
© Новосибирский государственный
аграрный университет, 2012
ВВЕДЕНИЕ
Системно-экологическое направление развития защиты
растений повышает значимость мониторинга вредных организмов для принятия решений по разработке и применению
систем интегрированной защиты растений. Фитосанитарный
мониторинг и в его составе фитосанитарная диагностика служат исходной предпосылкой для разработки фитосанитарных
технологий с целью долговременной и оперативной фитосанитарной оптимизации агроэкосистем.
Фитосанитарная диагностика является составной частью мониторинга. Понятие «диагностика» (от гр.
diagnostikos – способный распознавать) обозначает методы
распознавания вредных организмов (фитопатогены, фитофаги, сорные растения), определение вредоносности отдельных и сообщества вредных организмов.
Фитосанитарная диагностика включает диагностику
объектов фитосанитарного мониторинга (фитопатогенов,
фитофагов, сорных растений) и диагностику складывающейся фитосанитарной ситуации в агроэкосистемах, севооборотах и агроландшафтах.
Кроме определения больных и поврежденных растений, в диагностику объектов входит идентификация качественного состава популяций: видов, форм, рас, штаммов,
структуры генома растений и вредных организмов, а также
вирулентности, агрессивности вредных организмов, их резистентности к пестицидам и фитотоксичности. При этом
используются методы микологической, вирусологической,
бактериологической, энтомологической индикации, а также
биологического, биохимического, молекулярно-генетического тестирования биообъектов и анализа их свойств (Санин, Ибрагимов, 2001).
Из многочисленных методов фитосанитарной диагностики, разработанных в фитопатологии, энтомологии, гер3
бологии, нематодологии и зоологии особое значение имеют
методы, по результатам применения которых принимают
решения по фитосанитарной оптимизации функционирования агроэкосистем в периоды формирования основных элементов структуры урожая с целью стабильного получения
экологически безопасной сельскохозяйственной продукции.
Цель лабораторно-практических занятий – формирование знаний и умений по определению фитосанитарного состояния почвы, семян и посевов по периодам формирования
элементов структуры урожая сельскохозяйственных культур.
Данные методические указания предназначены для бакалавров и магистрантов направления «Агрономия», может
использоваться в лекционных курсах, при проведении лабораторно-практических занятий, в период летней практики
и в научных исследованиях.
Методы фитосанитарной диагностики и принимаемые
по результатам мониторинга решения важны для оптимизации технологий возделывания сельскохозяйственных культур и могут быть использованы также специалистами по защите растений и агрономами в практической работе.
4
РАЗДЕЛ 1
ФИТОСАНИТАРНАЯ ДИАГНОСТИКА СЕМЯН
Семена служат основной или дополнительной экологической нишей вредных организмов, обеспечивая вертикальную передачу их от одного поколения растений к другому.
По существу, все биологические (фитопатогены, фитофаги, сорные растения) и все экологические (почвенные, или
корнеклубневые, наземно-воздушные, или листостеблевые,
семенные и трансмиссивные) группы вредных организмов
адаптированы в той или иной степени к передаче из года
в год через семена и посадочный материал. Из биологических групп вредных организмов в массе (более 70 % видов)
передаются через семена культурных растений фитопатогены грибной и бактериальной природы. Из экологических групп вредных организмов семена служат основным
фактором передачи группы семенных фитопатогенов и фитофагов. К ним относятся подгруппа типичных семенных
инфекций – пыльная и твердая головня зерновых культур
(пшеница, ячмень, овес) и подгруппа наземно-семенных
(спорынья, гороховая зерновка). Для остальных экологических групп вредных организмов (почвенные, листостеблевые, трансмиссивные) семена являются дополнительным
фактором передачи.
Методы фитоэкспертизы семян разработаны довольно обстоятельно. С практической точки зрения важно применять наиболее простые и информативные методы для
принятия решений о фитосанитарном оздоровлении семян
и посадочного материала по группам вредных организмов –
экологических эквивалентов.
Общая цель фитоэкспертизы семян – разработка систем фитосанитарных мероприятий, обеспечивающих создание фонда семян свободных от вредных организмов или
зараженных (заселенных) ими ниже требований регламентов ГОСТов и ПВ.
5
Лабораторная работа 1
ОТБОР СРЕДНЕЙ ПРОБЫ СЕМЯН
ДЛЯ ОПРЕДЕЛЕНИЯ ИХ ПОСЕВНЫХ
КАЧЕСТВ
Общие положения. Качество семян во многом определяет будущий урожай. Существуют государственные
стандарты на основные показатели качества семян. Семена,
не отвечающие требованиям стандартов, считаются некондиционными и не допускаются к посеву. Партии семян, предназначенные для посева, проверяют на посевные качества
в Государственных семенных инспекциях (ГСИ). От правильности отбора средних проб зависит качество анализа
семян и обоснованность рекомендаций по использованию
партии семян. Специалисты отбирают пробы и определяют
посевные качества по единой методике в соответствии с государственными стандартами на метод отбора проб и определения посевных качеств семян (ГОСТ 12036–85).
От каждой контрольной единицы берут точечные пробы. При хранении семян насыпью точечные пробы отбирают в пяти местах с трех глубин: в верхнем слое на глубине
10 …20 см от поверхности, в среднем – на глубине, равной
половине высоты насыпи, и в нижнем – у пола. Всего берут
15 проб. При хранении семян в мешках пробы берут вверху, в середине и внизу мешка (рис. 1). Для отбора точечных
проб в зависимости от способа хранения семян применяют
щупы различных систем или пробоотборники. Щуп желобом вниз вводят через ткань, затем поворачивают желобом
вверх, и по нему семена через отверстие в ручке ссыпаются в подставленную тару. Отбор проб и оформление актов
на них осуществляет комиссия, состоящая из агронома, руководителя хозяйства и ответственного за хранение семян.
Один экземпляр акта остается в хозяйстве, а другой вместе
с пробой направляют в контрольно-семенную инспекцию.
6
Рис. 1. Схема отбора точечных проб семян:
1 – партия не более контрольной единицы; 2 – партия превышает контрольную
единицу; 3 – в партии до 25 мешков
Особенности отбора средней пробы по отдельным
культурам, как и методы определения качества семян, указаны в ГОСТе.
Массу контрольной единицы для отдельных культур
находят по табл. 1.
Таблица 1
Масса партий и масса средних проб семян
Масса пар- Масса (объем) пробы для анализа
тии, от котовлажность, зараКультура
чистота,
рой отбираженность возбудивсхожесть, г
ют пробу, т
телями, мл
Пшеница, рожь,
60
1000
500
ячмень, овес
Кукуруза
40
1000
500
Просо, лен,
конопля, клевер,
10
500
250
донник, люцерна,
суданская трава
Цель работы: освоить методы отбора проб зерна для
фитоэкспертизы.
Приборы и материалы: семена сельскохозяйственных культур.
Задание: 1. Из образца семян зерновой культуры выделить средние пробы методом креста (рис. 2).
7
2. Оформить этикетки к средним пробам семян по форме
1 (прил. 1), занести их в тетрадь, сделать пояснительные записи.
Рис. 2. Крестообразный метод отбора семенных проб
Лабораторная работа 2
ОПРЕДЕЛЕНИЕ ЧИСТОТЫ ПАРТИИ СЕМЯН
Общие положения: Чистота семян – содержание в семенном материале семян основной культуры, выраженное
в процентах по массе. Определение чистоты партии семян
является необходимым элементом определения посевных
качеств. Результаты анализа используют для определения
класса зерна, его стоимости, пригодности на посевные цели.
Результаты анализа чистоты партии семян документируются по установленным правилам.
Чистоту семян определяют по двум навескам, выделенным из средней пробы. Размер навески зависит от крупности семян (табл. 2). Анализ на чистоту заключается в разделении навески на семена основной культуры и отход.
Цель работы: провести анализ чистоты и полновесности партии семян.
Ход работы:
1. Выделить из средней пробы семян зерновых культур навеску 50 г.
8
Таблица 2
Масса навески семян для определения чистоты
Культура
Масса навески, г
Кукуруза, горох, фасоль
200
Подсолнечник, соя, люпин
100
Пшеница, рожь, рис, ячмень, овес, гречиха
50
Свекла, просо, сорго, эспарцет, суданская трава
20
Клевер, люцерна, донник, морковь
4
2. Пробу высыпать на стол, установить цвет, блеск, запах семян, и эти данные занести в табл. 3.
3. Выделить крупные посторонние примеси (комочки
земли, камешки, обломки стеблей), которые не могут равномерно распределяться по всей массе семян, взвесить и вычислить их количество в процентах к массе пробы. Посторонними примесями являются семена других культурных
растений: головневые образования, склероции спорыньи
и других грибов, галлы пшеничной нематоды, комочки земли, камешки, песок, обломки растений, живые и мертвые
вредители семян и их личинки.
4. Разобрать навеску на семена основной культуры
и отход. К семенам основной культуры относят целые семена различной окраски, а так же битые (более половины
семени). К отходу относят дефектные семена исследуемой
культуры и посторонние примеси. Дефектными семенами
считаются мелкие и щуплые семена, раздавленные, проросшие с корешком и ростком, загнившие, битые и поврежденные вредителями.
5. Отход взвесить. Из отхода подсчитать количество
семян сорняков и других растений.
6. Установить массу семян основной культуры, вычитая из массы навески, массу отхода.
7. Определить к какой категории относятся семена
по чистоте и отходу, используя данные приложения 3. По результатам работы заполнить табл. 3.
9
8. Документировать результаты анализа партии семян.
Используя полученные данные заполнить удостоверение
о кондиционности семян форма 2 (прил. 2).
9. Письменно составить рекомендации по результатам
анализа.
Таблица 3
Результаты анализа образца семян (название образца)
№
Показатель
Значение
Чистота, %
Отход, всего, %
Семян других растений, шт.
Семян других культурных растений, шт.
Семян сорных растений, шт.
Головневых образований, %
Склероциев, %
Масса 1000 семян, г
Заселенность вредителями, %
Данные внешнего осмотра пробы семян:
цвет (нормальный, потемневший)
запах (нормальный, затхлый)
Посевные качества семян
Отход
Семян других
Семян
основной растений на 1 кг,
основной
Категокультуры
не более, шт.
Культукультуры
рия
и примера
к массе
семян *
си к массе
в т. ч.
не мевсего
не босорняков
нее, %
лее, %
1
2
3
4
5
6
ОС
99
1
8
3
ЭС
99
1
10
5
Яровая
пшеница
РС
98
1,5
40
20
РСт
97
3
200
70
10
Таблица 4
Всхожесть
не менее, %
7
92
92
92
87
1
Ячмень
Овес
2
ОС
ЭС
РС
РСт
ОС
ЭС
РС
РСт
3
99
99
98
97
99
99
98
97
4
1
1
1,5
3
1
1
1,5
3
5
8
10
80
300
8
10
80
300
Окончание табл. 4
6
7
3
92
5
92
20
92
70
87
3
92
5
92
20
92
70
87
Примечание. *ОС – оригинальные семена, первичных звеньев семеноводства, питомников размножения и суперэлиты, предназначенные для дальнейшего размножения. ЭС – элитные семена, полученные
от последующего размножения оригинальных семян. РС – репродукционные семена, полученные от последовательного пересева элитных
семян. РСт – репродукционные семена, предназначенные для производства товарной продукции.
Лабораторная работа 3
ФИТОЭКСПЕРТИЗА СЕМЯН
Общие положения. Качество семян является основой
для прохождения растениями первого критического периода развития и формирования такого основополагающего
элемента структуры урожая, как густота стояния растений.
Фитоэкспертиза партий семян, проводимая заблаговременно в зимний или ранний весенний период, предоставляет
необходимую информацию для принятия решения по планированию следующих технологических мероприятий:
1) выбор оптимального для данной партии семян срока
посева по степени физиологической зрелости зародышевых
органов;
2) определение оптимальной глубины заделки семян
по максимальной длине колеоптиле сорта;
11
3) определение нормы высева по показателю лабораторной всхожести семян для обеспечения оптимальной густоты стояния растений;
4) о необходимости протравливания и выбору препарата по видовому составу возбудителей;
Цель занятий: освоить методы фитоэкспертизы семян макроскопическим методом и методом влажных рулонов, научиться принимать решения по оптимизации технологии посевных работ.
МАКРОСКОПИЧЕСКИЙ АНАЛИЗ СЕМЯН
Общие положения: Одним из показателей товарности
зерна является его чистота от черноты зародыша. Вредоносность черноты зародыша проявляется в физиологической
недоразвитости семян, низкой энергии прорастания и всхожести, что ведет к гибели всходов, изреживанию посевов,
отмиранию продуктивных стеблей и белоколосости (Чулкина, 1985). В результате происходит снижение урожая, а полученные семена не могут быть реализованы на продажу
или же их стоимость весьма занижается (Кириченко, 2007).
Возбудителями черноты зародыша яровой пшеницы
являются Bipolaris sorokiniana Sacc. и грибы рода Alternaria,
которые являются основными токсиногенными грибами поражающие вегетирующие растения и зерно в Западной Сибири (Торопова, 2005).
Цель работы: проанализировать семена зерновых культур на пораженность чернотой зародыша по шкале Троповой.
Приборы и материалы образцы партий семян зерновых культур, пинцеты.
Ход работы:
1. Отобрать случайным образом по 100 семян из каждого образца; 2. Распределить семена в соответствии с баллами шкалы на белом листе бумаги (табл. 5, рис. 3);
12
Таблица 5
Условная шкала по оценке зараженности семян черным
зародышем (Тропова, 1955)
Балл
Степень поражения
Внешние признаки
Равномерная окраска зерновки, харак0
Здоровые
терная для сорта
Едва заметное побурение в области
0,1
Очень слабая
зародыша или бороздки в виде отдельных точек
Зона побурения охватывает до 1/3 зер1
Слабая
новки
2
Средняя
Зона побурения до 1/2 зерновки
3
Сильная
Зона побурения более 1/2 зерновки
3. Подсчитать индекс развития и распространенность
(балл выше 1 включительно) заболевания по формулам:
P
где
n 100
,
N
Р – распространенность болезни, %;
N –общее количество зерновок в учете;
n –количество зерновок пораженных на 1 балл и выше;
100 – коэффициент пересчета в проценты.
Рис. 3. Трафаретная шкала по оценке зараженности семян чернотой
зародыша
ИРБ = (∑а · в) · 100/NK,
где ИРБ – индекс развития болезни, %;
∑ – сумма произведений пораженных всходов в баллах
(а) на количество всходов (в);
13
N – общее число растений в пробе;
K – высший балл учетной шкалы;
100 – коэффициент пересчета в проценты.
4. Сравнить полученные значения с ПВ (5 %), сделать
заключение.
Лабораторная работа 4
ОПРЕДЕЛЕНИЕ ВСХОЖЕСТИ СЕМЯН
Общие положения: семена проращивают в оптимальных условиях в соответствии с требованиями ГОСТ
12038–84. Семена зерновых культур (пшеницы яровой мягкой, ржи, ячменя, овса, проса) а также вики, рапса, клевера
проращивают при постоянной температуре 20 °C, определение энергии прорастания проводят после 3 суток, всхожести – после 7 суток. Энергия прорастания характеризует
дружность и быстроту прорастания семян. Определяют её
в одном анализе со всхожестью.
Всхожесть – процент семян данной партии, способных сформировать нормально развитые проростки. Существует несколько способов проращивания семян: на бумаге, между бумагой, в рулонах, на песке, в песке. При учете
энергии прорастания подсчитывают и удаляют только нормально проросшие и явно загнившие семена, а при учете
всхожести отдельно подсчитывают нормально проросшие,
набухшие, твердые, загнившие и ненормально проросшие
семена. К нормально развитым проросткам относят такие,
у которых все важнейшие структуры (корешки, подсемядольное и надсемядольное колено, почечка) развиты и имеют к моменту учета длину не менее 1 см.
Цель работы: определить энергию прорастания
и всхожесть партии семян.
Приборы и материалы: семена сельскохозяйственных культур, пинцеты, вата, растильни, кипяченая вода.
14
Ход работы:
1. Из семян основной культуры отсчитать 100 шт.;
2. Наполнить растильни ватой, смочить вату кипяченой водой;
3. Разложить по 50 семян в одну растильню, поместить
этикетку;
4. Закрыть растильню с семенами в стерильный полиэтиленовый пакет и поставить в термостат с температурой 22 °C;
4. Определить энергию прорастания через 3 суток,
подсчитать и удалить нормально проросшие семена, непроросшие и ненормально проросшие семена оставить для
дальнейшего проращивания;
5. Определить всхожесть. Разобрать все проросшие
и непроросшие семена на группы: нормально проросшие,
ненормально проросшие, набухшие, но не проросшие, загнившие, подсчитать число семян в каждой группе;
6. Полученные данные занести в табл. 6;
7. По результатам работы сделать заключение, составить рекомендации.
№
1
2
3
4
5
Таблица 6
Определение энергии прорастания и всхожести семян
(название партии), %
Энергия прорастания Всхожесть
Показатель
(3 сутки)
(7 сутки)
Нормально проросшие
Непроросшие
Ненормально проросшие
Набухшие
Загнившие
15
Лабораторная работа 5
ФИТОЭКСПЕРТИЗА СЕМЯН МЕТОДОМ ВЛАЖНЫХ
РУЛОНОВ
Общие положения: Качество семян является основой
для прохождения растениями первого критического периода развития и формирования такого основополагающего
элемента структуры урожая, как густота стояния растений.
Фитоэкспертиза партий семян, проводимая заблаговременно в зимний или ранний весенний период, предоставляет необходимую информацию для принятия решения
по планированию следующих агротехнических и защитных
мероприятий:
1) выбор оптимального для данной партии семян срока
посева по степени физиологической зрелости зародышевых
органов;
2) определение оптимальной глубины заделки семян
по максимальной длине колеоптиле сорта;
3) определение нормы высева по показателю лабораторной всхожести семян для обеспечения оптимальной густоты стояния растений;
4) о необходимости протравливания и выбору препарата по видовому составу возбудителей.
Цель работы: освоить метод анализа фитосанитарного состояния партии семян.
Приборы и материалы: образцы семян зерновых
культур, проглаженная с обеих сторон фильтровальная бумага шириной 2,5–3,0 см и длиной 50 см., крупнопористая
фильтровальная бумага шириной 25 см и длиной 50 см,
перегнутая вдоль пополам и проглаженная утюгом с обеих
сторон, 0,5 %-й раствор перманганата калия для стерилизации семян, пинцеты, марля размером 15х15 см, бумажная
этикетка 2х2 см, весы, калькулятор.
16
Ход работы:
1. На этикетке написать название культуры, сорт, дату
закладки образца, фамилию студента, номер группы;
2. Отсчитать 100 семян из среднего образца партии;
3. Семена вместе с этикеткой завернуть в марлевый мешочек и опустить в раствор 0,5 % перманганата калия на 10
(пшеница), на 15 (ячмень, овес) минут для стерилизации;
4. Простерилизованные семена промыть в проточной
воде до исчезновения розового окрашивания;
5. Смочить широкую полосу бумаги в кипяченой воде
до насыщения;
6. Разложить равномерно 50 простерилизованных семян на расстоянии 3 см от сгиба фильтровальной бумаги,
укладывая их бороздкой на бумагу, зародышем вниз;
7. Наложить узкую полоску фильтровальной бумаги,
смоченную в воде, на семена и аккуратно свернуть рулон,
вложив этикетку между слоями фильтровальной бумаги;
8. Положить рулон вертикально в стерильный полиэтиленовый пакет и оставить инкубироваться в темноте при
25…30 о С на 7 суток.
Лабораторная работа 6–7
АНАЛИЗ РУЛОНОВ ПО ФИТОЭКСПЕРТИЗЕ СЕМЯН
Цель работы: Сделать полный анализ рулонов, вычислить средние показатели.
Приборы и материалы: рулон с пророщенными семенами, заложенный на предыдущем занятии, линейка, калькулятор.
Ход работы:
1. Придерживая проростки левой рукой, правой развернуть рулон и снять верхнюю полоску фильтровальной
бумаги (рис. 4);
2. Подсчитать число проросших семян. Проросшим
считается семя, имеющее проросток и корни размером
не менее 1 см;
17
3. Подсчитать процент пораженных проростков. Пораженным считается проросток, имеющий бурые пятна или
штрихи на корнях и стебле;
Рис. 4. Внешний вид влажных рулонов
4. Осторожно снять проростки с бумаги и по оставшимся на фильтровальной бумаге пятнам определить в процентах количество проростков, зараженных грибами возбудителями корневых гнилей (темно-бурая пигментация),
родов Fusarium (розовая пигментация пятен) и Penicillium
(желто-зеленая пигментация);
5. Данные занести в табл. 7.
Таблица 7
Результаты фитоэспертизы семян (название образца)
Показатель
Число семян в анализе, шт.
Всхожесть семян, %
Доля пораженных проростков, %
Зараженность семян патогенами, %:
Bipolaris sorokiniana, Alternaria tenuissima
Fusarium spp.
Penicillium spp.
Длина колеоптиле, см
Разница между длиной побега и корней, см
18
Число
6. Измерить у всех проростков длину самого длинного
корня, длину колептиле, высоту ростка, подсчитать среднее.
Данные занести в табл. 8.
Таблица 8
Длина зародышевых органов семян (название образца)
Длина, см
№
Корней
Колеоптиле
Проростка
1
2..
25
Среднее
Лабораторная работа 7
РАЗРАБОТКА РЕКОМЕНДАЦИЙ ИСПОЛЬЗОВАНИЯ
ПАРТИЙ СЕМЯН ПО РЕЗУЛЬТАТАМ ФИТОЭКСПЕРТИЗЫ
Принимаемые решения:
а) о целесообразности и технологии протравливания. Протравливание следует проводить в том случае, если
зараженность их возбудителем B. sorokiniana превышает
10 (пшеница) – 15 % (ячмень) или суммарная зараженность
этим патогеном и грибами рода Fusarium превышает 20
(пшеница) – 25 % (ячмень). На основании фитоэкспертизы
выбирают препарат для протравливания семян соответствующего спектра действия. Если всхожесть не достигает 95 %,
в любом случае следует рекомендовать стимулирующий
обогрев семян в сушилках с температурой носителя 45–
50 ºС до температуры вороха 25–30 ºС минимум в течение
2 ч. или на открытых площадках при теплой погоде.
б) по определению оптимальной глубины посева
и глубины предпосевной подготовки почвы.
При посеве следует соблюдать следующие правила:
• заделывать семена во влажный слой почвы на глубину, не превышающую длину колеоптиле сорта;
19
• предпосевную подготовку почвы проводить на глубину, не превышающую глубину посева, с тем, чтобы семена ложились на твердое ложе и были покрыты «пуховым
одеялом» из почвы с комками не более 1 см в диаметре;
• во время посева в сухую погоду проводить предпосевное и послепосевное прикатывание, во влажную – только предпосевное.
в) по биологическому обоснованию оптимальных
сроков посева по степени физиологической зрелости зародышевых органов. Определение оптимальных сроков посева проводят по табл. 9. Методика основана на том, что при
ранних сроках посева, характеризующихся относительно
более низкими температурами почвы и достаточным увлажнением, создаются условия, стимулирующие ускоренное
развитие корневой системы. При поздних сроках условия
больше благоприятствуют развитию наземной части.
Таблица 9
Биологическое обоснование выбора оптимального срока посева
по длине корней и проростка
Биологически обосноСоотношение длины корней и проростка
ванный срок посева
Разница не превышает 3 см
Средний
Корни длиннее на 3 см и более
Поздний
Проростки длиннее на 3 см и более
Ранний
Лабораторная работа 8
ФИТОПАТОЛОГИЧЕСКИЙ АНАЛИЗ ПОСАДОЧНОГО
МАТЕРИАЛА (КЛУБНИ КАРТОФЕЛЯ)
Общие положения. Передача возбудителей болезни
через клубни обусловливает возникновение и течение эпифитотического процесса почвенных (ризоктониоз, обыкновенная и порошистая парша, фомоз и др.), воздушно-капельных (фитофтороз, альтернариоз, макроспориоз и др.)
20
и других болезней. Поэтому фитосанитарная диагностика
посевных клубней имеет большое практическое значение.
Цель работы: Освоить методику клубневого анализа
картофеля, разработать рекомендации по оптимизации фитосанитарного состояния анализируемой партии.
Приборы и материалы: клубни картофеля, микроскоп, нож
Ход работы:
1. С поверхности клубней смывают приставшие частицы почвы.
2. Подсчитать количество пораженных болезнями
клубней в следующем порядке:
• поражение мокрой и сухой гнилями;
• с ожогами, задохшиеся, подмороженные;
• уродливые и с легко обламывающимися наростами;
• раздавленные, порезанные, а также половинки и части клубней;
• с ободранной кожурой, составляющей в сумме ¼ поверхности;
• покрытые язвами ризоктониоза, обыкновенной и порошистой парши ( 1/8, ¼ и более ¼ поверхности).
• покрытые склероциями ризоктониоза ( 1/8, ¼ и более
¼ поверхности);
3. Разрезать клубни в продольном направлении;
4. Определить поражение внутренних тканей клубня
черной ножкой, кольцевой, бурой гнилями, фитофторозом,
потемнением сосудистого кольца, железистой пятнистостью;
5. Полученные данные занести в табл. 10.
6. На основании полученных данных сделать заключение, используя значения параметров ГОСТ (табл. 11), и составить рекомендации об использовании семян картофеля.
Если партии поражены болезнями выше параметров ГОСТа, их бракуют как семенные для указанных классов посадочного материала.
21
Таблица 10
Результаты клубневого анализа посадочного материала картофеля
Значение
Показатель
абс. значение
%
Количество здоровых клубней
Число поврежденных клубней
Обнаруженные заболевания:
Черная ножка
Кольцевая гниль
Фитофтора
Фузариозная гниль
Фомоз
Ризоктония
Парша
Прочие
Физиологические нарушение
Механические повреждения
Потемнение мякоти
Потемнение сосудистого кольца
Подмороженные
Разрабатывают системы оздоровления клубней картофеля, включая их протравливание или обработку биологическими препаратами согласно Каталогу пестицидов, разрешенных для применения на территории РФ.
Таблица 11
Требования к качеству клубней семенного картофеля
Допустимые параметры по классам
репродукция
Показатель
супер-суперэлиэлита
та, суперэлита
1‑я
2‑я
1
2
3
4
5
Наличие клубней других соНе допускается
ртов, не более, %
Наличие клубней поражен1,5
2,5
4,5
8,5
ных болезнями, не более, %
В том числе: черной ножкой
Не допускается
0,5
22
Окончание табл. 11
2
3
4
5
Не допускается
0,5
0,5
0,5
1,0
1,0
Не допускается
0,5
1
кольцевой гнилью
фитофторозом
стеблевой нематодой
паршой (обыкновенной,
серебристой) более ¼ поверхности
ризоктониозом
от 1/8 до ¼ поверхности
ризоктониозом более ¼
поверхности
0,5
1,5
2,0
3,0
0,5
1,0
1,5
2,5
Не допускается
Контрольная работа
Задание для контрольной работы
На основании параметров заданных в таблице составить рекомендации по использованию партии семян.
В рекомендациях должны быть приняты решения
с подробным обоснованием следующих показателей:
1. Определение кондиционного класса зерна;
2. Расчет весовой нормы высева (кг/га);
3. Выбор оптимального срока посева;
4. Определение глубины посева;
5. Определение глубины предпосевной подготовки почвы;
6. Необходимость предпосевного и послепосевного
прикатывания;
7. Решение о необходимости протравливания, выбор
препарата;
8. Решение о необходимости обогрева и выборе его параметров.
23
РАЗДЕЛ 2
ФИТОСАНИТАРНАЯ ДИАГНОСТИКА ПОЧВЫ
Общие положения. Определение фитосанитарного состояния почвы необходимо для составления фитосанитарных (фитопатологических) почвенных картограмм
(ФПК). Используют как прямые методы определения плотности популяций (подсчет покоящихся структур – цист,
спор, склероциев, личинок, семян сорняков или вредящих
фаз (проволочники)) в расчете на 1–100 г или 1 м 2–1 га, так
и суммарные косвенные методы (оценка поражения индикаторных биообъектов – восприимчивых растений).
Прямые методы позволяют судить о численности популяции покоящихся структур вредных организмов или
вредящих фаз фитофагов в почве, а косвенные – о их паразитической активности. Обе группы методов могут использоваться в комплексе, особенно для учета таких широко распространенных и вредоносных почвенных фитопатогенов
как возбудители корневых гнилей, гнилей клубне- и корнеплодов сельскохозяйственных культур.
Лабораторная работа 9
ОПРЕДЕЛЕНИЕ ЗАСЕЛЕННОСТИ ПОЧВЫ
КОНИДИЯМИ ВОЗБУДИТЕЛЯ ОБЫКНОВЕННОЙ
КОРНЕВОЙ ГНИЛИ ЗЕРНОВЫХ КУЛЬТУР – Bipolaris
sorokiniana Sacc.
Общие положения. Вред, причиняемый почвенными
вредными организмами, проявляется в нарушении нормального функционирования подземных и связанных с ними
надземных органов растений. Вследствие этого происходит
нарушение формирования всех основных элементов структуры урожая. Метод флотации конидий доминирующего
возбудителя гельминтоспориозных корневых гнилей яро24
вой пшеницы, ячменя и др. зерновых культур широко используется в практике сельского хозяйства для составления
фитопатологических почвенных картограмм с целью оздоровления почв.
Цель работы: освоить метод определение фитосанитарного состояния почвы и уровня ее супрессивности.
Приборы и материалы: образцы почвы, сито, масло
вазелиновое, вода, склянки, шпатель, предметные стекла,
спирт, пипетки.
Ход работы:
1. Просушенную до воздушно-сухого состояния почву просеять через почвенные сита с отверстиями 0,5–1 мм
и сделать навеску в 10 г;
2. Почву поместить в пробирку объемом 100 мл и добавить 1 мл дистиллированной воды;
3. Тщательно перемешать шпателем с помощью пипетки добавить 5 мл вазелинового масла и снова перемешать;
4. К подготовленному образцу добавить 49 мл воды (общий объем 50 мл) и, плотно закрыв крышкой, энергично встряхивать вертикальными движениями руки в течение 10 мин;
5. После отстаивания в течение 1,5–2 часов до четкого расслоения жидкостей из поверхностного слоя масляной
эмульсии отобрать пробы пипеткой объемом 0,1 мл и перенести по 5–10 капель на предметное стекло. По каждому
образцу проанализировать по 2 предметных стекла под
микроскопом с увеличением 50–80 раз и подсчитать число
конидий B. sorokiniana;
6. Полученное содержание конидий пересчитать на 1 г
воздушно-сухой почвы по формуле:
Х = А·В/С·Н,
где Х – число конидий/г почвы; А – число обнаруженных
конидий в 10 каплях эмульсии; В – общий объем масляной
эмульсии (обычно 5 мл); С – количество просмотренной
эмульсии (обычно 0,1 мл); Н – навеска почвы (обычно 10 г);
7. По результатам анализа заполнить табл. 12;
25
Таблица 12
Число конидий возбудителя обыкновенной корневой гнили
Bipolaris sorokiniana в почве (название образца)
Количество конидий в состоянии
Общая
Повторение
числендеградированфунгистазис проросшие
ность
ные
1
2
8. Полученные данные сравнить с пороговыми значениями, указанными в табл. 13, сделать заключение, составить рекомендации по оздоровлению почвы и оптимизации
технологии возделывания зерновых культур.
Таблица 13
Классификация почв по заселенности их возбудителем
гельминтоспориозной корневой гнили для черноземных почв
(выщелоченный, обыкновенный)
Число конидий Характеристика фитосанитарного
Группа почв
в 1 г воздушно
состояния посевов
сухой почвы
и вредоносности болезни
Инфицированные растительные
1. Здоровые
0
остатки отсутствуют, симптомы
почвы
корневой гнили не проявляются
2. Почвы заМогут быть единичные инфициселены возбурованные растительные остатки,
дителем ниже
1–20
индекс развития болезни ниже
порога вредо10 %, урожайность зерна практиносности
чески не снижается
3. Почвы засеМогут быть инфицированы растилены возбудитетельные остатки, индекс развития
лем умеренно,
21–100
болезни 10–15 %, распространо выше порога
ненность до 60 %, урожайность
вредоносности
снижается на 7–13 %
4. Почвы засеМогут быть инфицированы растилены возбудитетельные остатки; индекс развития
лем значительболее 100
болезни более 15 %, распространо выше порога
ненность более 60 %, урожайность
вредоносности
снижается на 15 % и более
26
Лабораторная работа 10
ОПРЕДЕЛЕНИЕ ЗАПАСА СЕМЯН СОРНЯКОВ В ПОЧВЕ
Общие положения. Сорные растения относятся к свободноживущим видам естественных и агроэкосистем, поэтому не специализированы к отдельным культурам. Размножаются они рядом с растениями сельскохозяйственных
культур, занимая свободные экологические ниши – междурядья, просевы, изреженные рядки. Особенно сильно развиваются сорные растения в посевах малоконкурентных культур (лен, сахарная свекла, и др.). Засорение почвы семенами
сорняков происходит после их созревания в конце вегетации, нередко в период уборки зерновых и других сельскохозяйственных культур (Чулкина и др., 2010).
Цель работы: определение банка семян сорняков
в почве.
Приборы и материалы: образцы почвы, почвенные
сита, проточная вода, пинцеты.
Ход работы:
1. Навеску массой 200 г, или два образца по 100 г, перенести в набор сит с отверстиями 3; 1; 0,5; 0,25 мм, последовательно вставленные одно в другое, и отмывают в воде;
2. Семена сорняков выбрать из общей массы, подсчитать общее количество семян сорняков и отдельно по видам
сорняков;
3. Используя определители установить видовую принадлежность семян сорняков;
4. Пересчитать численность семян сорняков на 1 га через объёмный вес (объёмную массу) почвы, которая может
составлять в среднем 1,2 г/см 3 (суглинистый выщелоченный
чернозём). В таком случае масса почвы в пахотном горизонте
1 м 2 составляет 240 кг, а на 1 га – 2400 т; определив численность семян сорных растений в 100 г почвы, делают пересчёт
их на 1 м 2 и на 1 га, полученные данные занести в табл. 14;
27
Таблица 14
Содержание семян сорняков в почве (название образца)
№ Вид сорного растения
Количество семян
1
в пробе, шт. на 1 м 2, шт. на 1 га, млн
2
3…
ИТОГО, шт/га
5. Результаты анализа сравнить с пороговыми значениями:
а) почвы свободные от семян сорных растений или заселённые ниже ПВ (0–30 млн шт./га);
б) почвы, засорённые семенами сорных растений выше
ПВ в степени:
* слабой (31–200 млн шт./га);
* средней (201–500 млн шт./га); ‘
* высокой (более 500 млн шт./га).
Оценка степени засоренности почвы
Число семян
в пахотном
слое, млн/га
менее 5
6–10
11–50
51–100
более 100
Таблица 15
Балл
засоренности
Степень
засоренности
ПВ
1
2
3
4
5
Очень слабая
Слабая
Средняя
Сильная
Очень сильная
Ниже
Выше
-”-”-”-
6. По результатам анализа составить рекомендации
по снижению запаса семян сорняков в почве.
Лабораторная работа 11
ОПРЕДЕЛЕНИЕ ФИТОТОКСИЧНОСТИ ПОЧВЫ
Общие положения. Почвенные фитопатогены, микроорганизмы, загрязнение почв пестицидами и другими от28
равляющими веществами способны подавлять ростовые
процессы растений и даже вызывать их гибель. Определение фитотоксичности существенно дополняет результаты
оценки фитосанитарного состояния почв. В качестве индикаторных биотестов при определении фитотоксичности
служат хлорелла, салат, белая горчица, редис, пшеница, огурец, вика и др.
Цель работы: освоить методы определения фитотоксичности почвы с помощью индикаторных биотестов.
Приборы и материалы: образцы почвы, почвенные
сита, чашки Петри, вода, замоченные семена индикаторных
культур, пинцеты.
Ход работы:
1. Навеску почвы массой 60 г поместить в чашки Петри;
2. Почву увлажнить до состояния густой пасты (7–
10 мл) и тщательно распределяют по чашке Петри;
3. Предварительно замоченные в течение суток стерильные семена редиса или кресс-салата разложить по 10–
50 штук на каждую чашку (не менее 100 семян);
4. Контрольные семена разложить на увлажненной
стерильной вате покрытой фильтровальной бумагой;
5. Семена проращивают 7 дней при температуре 20–
25 0 С, ежедневно увлажняя равным объемом воды;
6. По результатам анализа заполнить табл. 16;
Таблица 16
Оценка фитотоксичности почвы (название образца)
на тест-растении (название).
Показатель
Контроль
Биотест
%, +;Количество проростков, %
Длина проростков, см
Длина корней, см
Фитомасса, г
7. Определить степень фитотоксичности почвы по разнице в количестве проросших семян, длине проростков,
29
корней и общей фитомассе проростков, используя следующую шкалу:
• почва не фитотоксична (ингибирование ростовых
процессов проростков до 20 %)
• почвы фитотоксичны в степени:
– слабой (ингибирование на 21–30 %);
– средней (ингибирование на 31–60 %);
– высокой (ингибирование более 60 %).
РАЗДЕЛ 3
ФИТОСАНИТАРНАЯ ДИАГНОСТИКА
АГРОЭКОСИСТЕМ В ПЕРИОД ВЕГЕТАЦИИ
Фитосанитарный экологический мониторинг агроэкосистем входит в состав фитосанитарных технологий, разрабатываемых по периодам формирования элементов структуры урожая и в сезонно-фенологической последовательности
(Чулкина, Торопова, Стецов, 2009).
Лабораторная работа 12
УЧЕТ ОБЫКНОВЕННОЙ КОРНЕВОЙ ГНИЛИ
ДИФФЕРЕНЦИРОВАННО ПО ОРГАНАМ
Общие положения. В Западной Сибири большое
распространение имеет гельминтоспориозная корневая
гниль зерновых культур, возбудитель которой Bipolaris
sorokiniana. Вредоносность этого заболевания заключается
в нарушении формирования элементов структуры урожая.
Заболевшие растения обладают меньшей кустистостью,
снижается озерненность колоса, уменьшается масса тысячи
зерен. Кроме того, значительно снижаются их посевные качества (всхожесть, энергия прорастания).
Формами проявления болезни являются корневая
гниль, бурая пятнистость листьев и черный зародыш зерна,
30
которые необходимо рассматривать как формы единой болезни, обусловленные разными механизмами передачи возбудителя: через почву, семена, воздушно-капельным путем.
На большинстве подземных и надземных органов пшеницы (первичные и вторичные корни, эпикотиль, колеоптиле, пластинка прикорневых листьев, стебель) появляются
светло-бурые, затем темно-коричневые пятна и полоски,
которые, сливаясь, охватывают значительную часть органа.
На листовой пластине пятна более яркие со светлеющей зоной в центре и темной каймой (накапливается вегетативная
масса гриба). На генеративных органах (колосок, зерновка)
темно-коричневая, почти черная окраска пораженных тканей чаще локализована в области зародыша, как на брюшной, так и спинной стороне.
Ослабление растений в области эпикотиля обусловлено глубокой заделкой семян (глубже 5 см для районированных сортов в Сибири), в области вторичных корней –
с дефицитом подвижных форм фосфора или влаги в почве,
в области первичных корней – с низким фитосанитарным
качеством семян или нехваткой влаги в почве в период формирования этих органов, в области прикорневых листьев
и стебля – с резкими перепадами влажности и температуры
на границе почва-воздух после фазы кущения.
Цель работы: освоить анализ степени поражения подземных органов зерновых культур обыкновенной корневой
гнилью диффиринцированно по методу В. А. Чулкиной
(1978).
Приборы и материалы: стерневые образцы зерновых
культур, кювета, вода.
Ход работы:
1. Промытую корневую систему помещают в белую
кювету с водой и анализируют состояние подземных органов у 100 растений по шкале:
0 – здоровые,
31
1 балл – повреждено (поражено) до 25 % поверхности
органов (ниже ПВ),
2 балла – повреждено (поражено) 26–50 % поверхности органов (выше ПВ в умеренной степени),
3 балла – повреждено (поражено) 51–75 % поверхности органов (выше ПВ в сильной степени),
4 балла – повреждено (поражено) 75–100 % поверхности органов, всходы погибли (выше ПВ в очень сильной
степени)
2. Результаты анализа занести в табл.17;
№
Таблица 17
Развитие корневой гнили на подземных органах
(название образца)
Первичные
Вторичные
Основание
Эпикотиль
корни
корни
растения
1
2..
25
Среднее
3. Подсчитать индекс развития болезни, распространение заболевания по формулам
P
n 100
,
N
где Р – распространенность болезни, %;
N – общее количество зерновок в учете;
n – количество зерновок пораженных на 1 балл и выше;
100 – коэффициент пересчета в проценты.
ИРБ = (∑а · в) · 100/NK,
где ИРБ – индекс развития болезни, %;
∑ – сумма произведений пораженных всходов в баллах
(а) на количество всходов (в);
N – общее число растений в пробе;
K – высший балл учетной шкалы;
100 – коэффициент пересчета в проценты.
32
4. Сравнить полученные результаты с пороговыми
значениями (ПВ ИРБ=15 %, ПВ по распространенности –
30 %), сделать выводы и составить рекомендации.
Лабораторная работа 13–14
ОПРЕДЕЛЕНИЕ ПРИЧИН НИЗКОЙ УРОЖАЙНОСТИ
ЗЕРНОВЫХ КУЛЬТУР
Общие положения. В общем валовом сборе зерна доля яровой пшеницы в РФ составляет более 25 %. Эта
культура лидирует по значимости в числе первостепенных
продовольственных культур. Доля Сибири в общем валовом
сборе товарного зерна в РФ составляет более 30 %.
Яровая пшеница может формировать урожайность
в европейских регионах более 1 00 ц/га, а в Сибири – около
60 ц/га. При этом каждому уровню урожайности зерна соответствуют определенные параметры основных элементов
структуры урожая (табл. 18).
Таблица 18
Параметры основных элементов структуры урожая яровой
пшеницы в различных регионах
Европейский
Сибирский регион
регион
Элементы
структуры урожая
Урожайность зерна, ц/га
18,2–112,7
7,2–57,5 17,0–23,0 25,0–40,0
Число продуктивных стеблей на 1 м 2
350–700
220–610 350–400
450–500
Число зерен
в колосе
20–35
13–23
17–18
20–23
Масса 1000 зерен, г
26–46
25–41
30–33
32–37
По сравнению с европейскими странами в Сибири самым малореализуемым параметром структуры урожая является число зерен в колосе: он реализуется в хозяйствах Западной Сибири только в 24 % случаев из 100, тогда как доля
33
реализаций густоты продуктивного стеблестоя составляет
40 %, а массы 1000 зерен – 46 %. Самым изменчивым элементом структуры урожая является озерненность колоса.
Наиболее часто в степных районах Сибири формируется урожайность зерна при следующих параметрах:
У1 = 350 колосьев на 1 м 2 х 18 зерен в колосе х 25 г (масса
1000 зерен)/10000 = 15,8 ц/га.
В лесостепных районах несколько иные параметры
элементов структуры урожая: У2 = 450 колосьев на 1 м 2 х
20 зерен в колосе х 30 г (масса 1000 зерен)/10000 = 27,0 ц/га.
Для получения урожайности зерна выше 40 ц/га в лесостепи и в подтайге важно иметь следующие элементы
структуры урожая:
У3 = 500 колосьев на 1 м 2 х 25 зерен в колосе х 36 г (масса 1000 зерен)/10000 = 45,0 ц/га.
Цель работы: на основании данных по учету элементов структуры урожая определить отклонение от заданных
параметров.
Ход работы:
1. Сноповые образцы разобрать на элементы структуры урожая и подсчитать их количество. Число зерен в колосе посчитать по 10 колосьям из каждого повторения;
2. Полученные данные записать в табл. 19.
№
Таблица 19
Элементы структуры урожая (название образца)
Число Число Число
Число
Масса
Вес
Повтостеколозерен
растений,
1000 се- зерна,
рение
блей,
сьев,
в колошт.
мян, г
г
шт.
шт.
се, шт.
1
2
3
4
Итого, м 2
34
3. Сравнить полученные данные с оптимальными параметрами элементов структуры урожая для зоны (табл. 20).
Таблица 20
Оптимальные параметры элементов структуры урожая
Показатели
Лесостепная зона Степная зона
Густота продуктивного
500–600
350–400
стеблестоя, шт/м 2
Число зерен в колосе, шт
20–25
17–18
Масса 1000 семян, г
34–36
30–33
Урожай, ц/га
34–54
17,8–23,7
5. Подсчитать коэффициент продуктивной кустистости;
6. Расчитать биологическую урожайность по формуле
и сделать вывод:
У = Г · Ч · М/10000,
где У – биологическая урожайность, ц/га;
Г – густота продуктивного стеблестоя, колосьев
на 1 м 2;
Ч – число зерен в колосе;
М – масса 1000 зерен, г;
10000 – коэффициент пересчета.
Лабораторная работа 15
ОПРЕДЕЛЕНИЕ ФИТОСАНИТАРНОГО
НЕБЛАГОПОЛУЧИЯ АГРОЭКОСИСТЕМ
Общие положения. В терминологии фитосанитарии
характеристику экологического неблагополучия агроэкосистем обозначают следующие понятия: норма – спорадическая заболеваемость, означающая варьирование численности вредных организмов в пределах порога вредоносности
(ПВ – биологического порога вредоносности, ЭПВ – экономического порога вредоносности); фитосанитарный
риск – эпифитотическая вспышка, повышение численности
35
вредных организмов в 1,5–3 раза по сравнению с нормой;
фитосанитарная катастрофа – эпифитотия, массовая
численность вредных организмов, превышающая норму
в 4–7 раз; фитосанитарное бедствие – панфитотия, максимальная численность вредных организмов, превышающая
норму в 8–10 раз и более.
* Норма – состояние системы, отвечающее области ее
равновесия, устойчивости.
* Риск – вероятность деградации экологической системы (окружающей среды) или перехода ее в неустойчивое
состояние.
* Катастрофа – неравновесное нестационарное состояние экологической системы (окружающей среды), следствием которого становится потеря устойчивости.
* Бедствие – последствия катастрофы, равновесное
состояние экологической системы (окружающей среды)
на предельно низком энергетическом уровне.
Цель работы: освоить метод определения фитосанитарного неблагополучия агроэкосистем зерновых культур
в Западной Сибири
Приборы и материалы: учебно-практическое пособие, учебник.
Ход работы:
1. На основании полученных данных в лабораторной
работе 11 оценить состояние элементов структуры урожая
сравнив со значениями в табл. 15. В соответствии с градациями неблагополучия фитосанитарного состояния агроэкосистем адекватно изменяются параметры основных элементов
структуры урожая и биологической урожайности. При этом
изменение параметров в пределах 5–10 % рассматривается
как норма, 15–30‑риск, 35–50 % – катастрофа, а более 50 % –
бедствие (табл. 21).
36
Таблица 21
Количественные показатели оценки состояния элементов
структуры урожая и биологической урожайности (яровая
пшеница, лесостепь Западной Сибири)
Показатели
Норма Риск Катастрофа Бедствие
Густота продуктивного
500
380
270
200
стеблестоя, колосьев на 1 м 2
Число зерен в колосе
20
17
14
12
Масса 1000 зерен, г
36,0
33,0
30,0
24,0
Биологическая урожайность,
36,0
21,3
11,3
5,8
ц/га
2. Сделать заключение и составить рекомендации
по оптимизации элементов технологии выращивания культуры для достижения заданных параметров элементов
структуры урожая.
Итоговый тест
Тест состоит из 45 вопросов, включающих разделы
фитосанитарной диагностики агроэкосистем сельскохозяйственных культур.
Основные темы для подготовки к тесту:
1. Выявление причин фитосанитарного неблагополучия агроэкосистем;
2. Особенности экологического и биологического мониторинга;
3. Методы оценки количественных параметров элементов структуры урожая;
4. Приуроченность вредных организмов к фазам развития культуры;
5. Методы диагностики фитопатогенов в почве, на семенах и в период вегетации сельскохозяйственных культур;
6. Методы диагностики фитофагов в почве, на (в) семенах и в период вегетации сельскохозяйственных культур;
7. Методы диагностики сорных растений в почве
и в период вегетации сельскохозяйственных культур
37
Приложение 1
Форма 1
Этикетка к средней пробе семян
Название хозяйства____________________
Культура_____________________________
Сорт_________________________________
Репродукция__________________________
Год урожая___________________________
Партия №____________________________
Масса партии_________________________
Вид анализа__________________________
Приложение 2
Форма 2
УДОСТОВЕРЕНИЕ
о кондиционности семян №__
действительно до____________________
число, месяц, год
Выдано____________________________________________
наименование сельскохозяйственной организации,
местонахождение
на партию №___ семян________________________________
культура, сорт
полученных от ___________________
репродукции___________________________,
год урожая________
массой_____тонн, фракции №___
представленных на анализ при акте №______от______20___г.
хранящихся_________________________________________
№ бригады, отделение хозяйства
Число мест (мешков), склад №__, закром №___, вагон №___
Назначение семян ___________________________________
Качество семян соответствует _____________ категории
прописью
38
Список литературы
1. Торопова Е. Ю. Эпифитотиологические
основы
систем защиты растений: монография/Е. Ю. Торопова,
Г. Я. Стецов, В. А. Чулкина. – Новосибирск, 2002. – 579 с.
2. Горбачев И. В. Защита растений от вредителей.
учеб./И. В. Горбачев, В. В. Гриценко, Ю. И. Захваткин и др.;
под ред. проф. В. В. Исаичева. – М.: Колос, 2002. – 472 с.
3. Чулкина В. А. Фитосанитарная оптимизация растениеводства в Сибири: учеб. пос. I. Зерновые культуры, II.
Крупяные, зернобобовые, кормовые культуры, III. Технические культуры /В. А. Чулкина, В. М. Медведчиков, Е. Ю. Торопова и др.; Под ред. академика РАСХН П. Л. Гончарова. –
Новосибирск, 2001. – Т. 1. – 136 с.; Т. 2. – 192 с.; Т. 3. – 196 с.
4. Чулкина В. А. Фитосанитарная оптимизация растениеводства в Сибири: учеб. пос. IV. Овощные культуры
/ В. А. Чулкина, Е. Ю. Торопова, Г. Я. Стецов и др. – Новосибирск, 2003. – 314 с.
5. Чулкина В. А. Фитосанитарная оптимизация агроэкосистем плодовых и ягодных культур: учеб. пос./В. А. Чулкина, Л. Д. Шаманская, Е. Ю. Торопова и др. – Новосибирск,
2006. – 240 с.
6. Чулкина В. А., Торопова Е. Ю., Чулкин Ю. И., Стецов Г. Я. Агротехнический метод защиты растений: учеб.
пос./В. А. Чулкина, Е. Ю. Торопова, Ю. И. Чулкин, Г. Я. Стецов/под ред. А. Н. Каштанова. – М.: ИВЦ Маркетинг, ЮКЭА,
2000. – 336 с.
7. Чулкина В. А. Фитосанитарная диагностика агроэкосистем: учеб.-прак. пос./В. А. Чулкина, Е. Ю. Торопова,
Г. Я. Стецов, Е. Ю. Мармулева, А. А. Кириченко, В. М. Гришин; под ред. проф. Е. Ю. Тороповой. – Новосибирск. –
2010. – 127 с.
8. Чулкина В. А. Интегрированная
защита
растений
фитосанитарные системы и технологии: учеб. с грифом
МСХ РФ/В. А. Чулкина, Е. Ю. Торопова, Г. Я. Стецов/под ред.
М. С. Соколова и В. А. Чулкиной М.: Колос, 2009. – 670 с.
39
9. Пилипова Ю. В. Методы диагностики фитосанитарного состояния картофеля: метод. указ. /Ю. В. Пилипова, Е. М. Шалдяева. – Новосиб. гос. аграр. ун-т. – Новосибирск. – 2003. – 30 с.
40
Составители:
Торопова Елена Юрьевна
Кириченко Альбина Александровна
ФИТОСАНИТАРНЫЙ ЭКОЛОГИЧЕСКИЙ
МОНИТОРИНГ
Методические указания
к лабораторно-практических занятиям
и контрольной работе
Публикуется в авторской редакции
Компьютерная вёрстка Т. А. Измайлова
Подписано в печать 26 марта 2012 г. Формат 60х84 1/16.
Объем 1,4 уч.-изд. л., 2,5 усл. печ. л.
Тираж 100 экз. Заказ № 491.
_________________________________________________________
Отпечатано в издательстве
Новосибирского государственного аграрного университета
630039, Новосибирск, ул. Добролюбова, 160, каб. 106.
Тел./факс (383) 267–09–10. E‑mail: 2134539@mail.ru