ПОВЫШЕНИЕ ВОСПРОИЗВОДИТЕЛЬНОЙ ФУНКЦИИ СВИНЕЙ
advertisement
ФГБОУ ВПО СТАВРОПОЛЬСКИЙ ГОСУДАРСТВЕННЫЙ АГРАРНЫЙ УНИВЕРСИТЕТ Ю. Н. Меликова, Н. А. Писаренко, В. С. Скрипкин ПОВЫШЕНИЕ ВОСПРОИЗВОДИТЕЛЬНОЙ ФУНКЦИИ СВИНЕЙ Монография Ставрополь «АГРУС» 2011 УДК 636.4 ББК 46.5 М47 Рецензенты: заслуженный деятель науки РСФСР, республик Дагестан и Карачаево-Черкесии, доктор ветеринарных наук, профессор кафедры физиологии, хирургии и акушерства Ставропольского государственного аграрного университета В. Я. Никитин; заведующий лабораторией акушерства и гинекологии отдела ветеринарной медицины ГНУ СНИИЖК, доктор ветеринарных наук, профессор Э. Н. Грига М47 Меликова, Ю. Н. Повышение воспроизводительной функции свиней : монография / Ю. Н. Меликова, Н. А. Писаренко, В. С. Скрипкин. – Ставрополь : АГРУС, 2011. – 104 с. ISBN 978-5-9596-0753-1 Содержит материалы по усовершенствованию технологии стимулирования половой функции у свиноматок и сперматогенеза у хряковпроизводителей, стимуляции половой функции у свиней, что позволяет планировать и управлять процессами воспроизводства. Для научных работников, преподавателей вузов, аспирантов, зооветспециалистов свиноводческих хозяйств. УДК 636.4 ББК 46.5 ISBN 978-5-9596-0753-1 © Меликова Ю. Н., Писаренко Н. А., Скрипкин В. С., 2011 © ФГБОУ ВПО Ставропольский государственный аграрный университет, 2011 ОГЛАВЛЕНИЕ Введение . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . 4 Ведение свиноводства в Ставропольском крае . . . . . . . . . . . . . 7 Эффективность искусственного осеменения свиней . . . . . . . . . . 12 Оценка воспроизводительных качеств свиноматок для получения качественного потомства . . . . . . . . . . . . . . . . . 15 Использование высококачественной спермы хряков-производителей для получения потомства . . . . . . . 20 Повышение воспроизводительной функции свиней с применением добавок различного происхождения . . . . . . . . . . 24 Искусственное осеменение свиней в Ставропольском крае . . . . . . 34 Биологически активная добавка для повышения резистентности и воспроизводительной функции животных . . . . . . . . . . . . . . . 40 Оценка общей токсичности и безвредности лиофилизированной БАД . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . 45 Химический состав лиофилизированной БАД . . . . . . . . . . . . . 48 Применение лиофилизированной биологически активной добавки для кроликов . . . . . . . . . . . . . 54 Гистологические показатели семенника и его придатка контрольной группы самцов кроликов . . . . . . . . . . . . . . . . . . 62 Гистологические показатели семенника и его придатка подопытной группы самцов кроликов . . . . . . . . . . . . . . . . . . 67 Применение БАД в различных хозяйствах Ставропольского края и ее влияние на воспроизводительные качества свинопоголовья . . . . . . . . . . . 70 Заключение . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . 82 Библиографический список . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . 83 3 Введение Наиболее сложной отраслью сельскохозяйственного производства является животноводство. Благодаря плодовитости свиней, их скороспелости и высокой окупаемости затрат корма, а также общеизвестного диетического качества мяса эти животные имеют неоспоримое преимущество при создании и развитии мясного баланса страны (Елисеева Е., 2007). Развитие свиноводства в настоящее время характеризуется созданием крупных специализированных хозяйств с большой концентрацией поголовья как в общественном, так и в индивидуальном секторе. Если раньше в промышленном свиноводстве основное значение придавалось увеличению валового продукта и при этом мало внимания уделялось затратам на производство, то в наши дни на первый план выходит качество свинины при одновременном снижении ее себестоимости (Соколов Н. В., 2005; Мысик А. Т., 2006; Михайлов Н. В., Бараников А. И., 2007). Важнейшим резервом увеличения производства свинины, улучшения качества и снижения себестоимости является не только дальнейшее совершенствование отечественных пород свиней, но и широкое внедрение промышленного скрещивания, что является результатом плодотворной работы при применении сочетания пород свиней (Чохатариди Г. Н., 2001). Благодаря методу искусственного осеменения открылись широкие перспективы для углубленной селекционно-племенной работы, сохранения и рационального использования генофонда выдающихся производителей и свиноматок. Кардинальные изменения в селекционной работе с животными, компьютерные технологии, применение биологически активных веществ (БАВ) и стимуляторов позволяет улучшить воспроизводительные ка4 чества свиней (Третьякова О. Л., 2005; Шевченко А., 2005; Нарижный А. Г., 2008; Походня Г. С., 2008). Основополагающим при поточном производстве свинины является процесс получения поросят и воспроизводства стада, тесно связанный с функцией размножения свиноматок (Милованов В. К., 1962; Кузнецова Т. С., 2000; Айбазов А.-М. М. и др., 2006). Не менее важной проблемой является выявление на ранней стадии супоросности свиноматок и определение качества спермопродукции современными способами диагностики. Актуальность данной монографии состоит в изыскании эффективных методов стимуляции половой функции, позволяющих повысить оплодотворяемость, плодовитость и экономические показатели в свиноводстве. В Ставропольском крае насчитывается всего 397 тыс. свиней, в т. ч. свиноматок в общественном секторе – 19,9 тыс. голов, в индивидуальном – 18,4 тыс., в фермерском – 13 тыс. То есть в индивидуальном и фермерском хозяйствах существенно больше свиноматок, чем в общественном секторе. Их осеменение имеет важное значение. Проведенные исследования выявили преимущества искусственного осеменения свиней в общественном секторе и различные недостатки в индивидуальных и фермерских хозяйствах. Особую роль играют рационы кормления, выборка свиноматок в охоте, качество используемой спермы и другие показатели. В последнее десятилетие в животноводстве широко используются биологически активные добавки в целях повышения привесов, однако мы считаем, что немаловажное значение они имеют и для воспроизводства. Особенно важны экологически чистые добавки, которые не вредят организму животных. Для повышения половой активности, качества используемой спермы хряков-производителей, оплодотворяемости и плодовитости свиноматок была разработана экологически безопасная лиофилизированная биологически активная добавка (БАД), которая успешно применялась в общественном, фермерском и индивидуальном секторах. Установлена эффективность искусственного осеменения в различных секторах свиноводства, разработаны способ приго5 товления экологически безопасной лиофилизированной биологически активной добавки (БАД) и средство на его основе, состоящее из личинок трутней и тыквы, что способствует повышению резистентности и воспроизводительной функции животных. ВЕДЕНИЕ СВИНОВОДСТВА В СТАВРОПОЛЬСКОМ КРАЕ Животноводство в нашей стране является важнейшей отраслью сельскохозяйственного производства. Развитием животноводства во многом определяется полноценность питания населения в его жизненно необходимой части – потреблении животного белка. Согласно научно обоснованным нормам ежегодное потребление мясных продуктов питания должно составлять не менее 85 кг на душу населения. Наиболее экономически выгодным направлением животноводства является свиноводство, благодаря биологическим особенностям свиней (многоплодие, скороспелость, высокий выход мяса). Современное свиноводство – это высокоразвитая отрасль животноводства с огромным производственным потенциалом. На основании научных достижений в области свиноводства во многих странах мира были усовершенствованы существующие и созданы новые высокопродуктивные породы свиней, разработаны эффективные технологии производства свинины в условиях поточного производства на крупных промышленных комплексах и в мелких фермерских хозяйствах. Большие достижения были получены в области разведения, кормления и содержания свиней, что позволило значительно повысить продуктивность животных. Одним из важнейших путей интенсификации свиноводства является наиболее полная реализация генетического потенциала этого вида животных. Наиболее важный технологический прием в свиноводстве – воспроизводство поголовья, один из способов интенсификации которого – использование искусственного осеменения. Широкие перспективы в племенной работе со свиньями у метода длительного хранения спермы, при этом имеется воз7 можность широкого племенного использования наиболее выдающихся пород хряков (Ескин Г. В., 2007). В настоящее время развитие свиноводства должно быть направленно на интенсификацию отрасли, выражающуюся в улучшении использования маточного стада, повышении интенсивности выращивания и откорма свиней, увеличении производства продукции в расчёте на каждое животное путём эффективной селекционно-племенной работы по совершенствованию существующих и созданию новых высокопродуктивных пород (Кабанов В. Д., Терентьева А. С., 1985; Коваленко В. А., Степанов В. И. и др. 1989). Интенсификация свиноводства на современном этапе развития отрасли предъявляет повышенные требования к совершенствованию систем воспроизводства поголовья свиней. Поэтому в последние годы усилия отечественных и зарубежных специалистов были направлены на поиск и внедрение оптимальных, более эффективных приемов выращивания, содержания и отбора ремонтного молодняка свиней, а также способов повышения воспроизводительных качеств свиноматок и хряков (Рачков И. Г., Корнилов В. А., 2009). Резерв повышения эффективности свиноводства на общеотраслевом уровне заключается в повышении репродуктивных качеств животных (Кононов В. А., 2000). Экономическая эффективность свиноводства во многом определяется качественным потенциалом стада. По данным И. П. Шейко (2005), за последние годы рост производства свинины вырос, при этом интенсивнее рост наблюдается в Бразилии и Канаде (в среднем 8–10 % в год). Свинина в настоящее время занимает 35–50 % в мире в общих заготовках мяса. При этом более 50 % мирового производства приходится на Китай – 42,4 млн т, в США – 8,7 млн т (10,4 %), в странах ЕС – 17,6 млн т (25,6 %), в России – 1,670 млн т за 2004 г. В нашей стране свинина занимает 28 % от общего числа заготовки мяса. При правильном кормлении, содержании и уходе от одной свиноматки с помощью искусственного осеменения можно получить 18–20 и даже 25–30 поросят в год, вырастив которых при интенсивном откорме, можно получить 1,8–3,0 тонны свинины с минимальными затратами труда и кормов. В ближайшие годы структура российского рынка существенно изменится в сто8 рону увеличения спроса на отечественное мясо, а свиноводство станет одной из важнейших отраслей животноводства. Это связано с тенденцией развития сельского хозяйства. Поэтому в ряде стран произошли изменения в породной структуре поголовья, теперь удельный вес свиней мясного направления продуктивности составляет 85–95 %, а производители стараются уйти от сальных пород свиней (Клёмин В. П., 1988). Резервы повышения эффективности отрасли свиноводства очень большие. На основании научных разработок и передового опыта лучших хозяйств мира, страны и края можно считать научно обоснованным следующий уровень продуктивности свиней: многоплодие – 12 поросят, сохранность их до 2-х месяцев – 88–90 %, средняя живая масса поросенка в 2-месячном возрасте – 18–22 кг, в 6-месячном возрасте – 100 кг, среднесуточный прирост живой массы молодняка на доращивании – 350–450 г, на откорме – 800–900 г, затраты кормов на 1 кг прироста 3,0–3,5 кормовых единиц. По эффективности производства свиньи выгодно отличаются от других видов сельскохозяйственных животных. Так, по сравнению с крупным рогатым скотом и овцами они в 1,5–2 раза затрачивают меньше кормов на прирост, на 25–30 % имеют больший убойный выход. Удельный вес костей в тушах свиней в 2 раза меньше, чем у крупного рогатого скота (Походня Г. С., Ескин Г. В., Нарижный А. Г., Водянников В. И., Засуха Ю. В., Федорчук Е. Г., 2004). Дальнейшее повышение эффективности свиноводства будет полностью зависеть от повышения продуктивности свиней за счет совершенствования методов разведения, улучшения условий кормления, содержания и ухода за ними. Все это позволит значительно увеличить производство мяса, сократить расход кормов на единицу продукции, более рационально использовать производительность труда и экономику свиноводства. Эффективное развитие свиноводства зависит от многих факторов. Многоплодие, скороспелость и высокий уровень продуктивности животных, зависящий от грамотно поставленной работы: вовремя выбранных свиноматок в охоте, правильно проведенного искусственного осеменения при соответствующем 9 содержании, кормлении и уходе. Такие факторы являются основополагающими. Вместе с тем рост темпов производства свинины вызывает необходимость интенсификации свиноводства (Шейко И. П., Шабунин Н. М., Давыдов А. Ф., 1989; Багиров В. А., 2005). Интенсификация отрасли предполагает повышение многоплодия свиноматок и их интенсивное использование, сокращение потерь при выращивании поросят, увеличение скорости роста молодняка, эффективное использование кормов и улучшение качества получаемой продукции. В производственных условиях в среднем на одну свиноматку в год необходимо получать не менее двух опоросов, повышать среднесуточный прирост на откорме до 600 граммов (Походня Г. С., Ескин Г. В., Нарижный А. Г., Водянников В. И., Засуха Ю. В., Федорчук Е. Г., 2004). Как отмечают А. Филатов (1999), Н. В. Михайлов, В. И. Степанов, А. И. Баранников (2000), Г. А. Каратунов (2001), неправильные принципы оценки заложены в Инструкции «Бонитировка свиней» (1976). Методы оценки устарели и не соответствуют международным стандартам (Лабинов В. В., Крикун Т. М., 2000; Самойлов B. C., 2002; Сидорова В., 2006; Чинаров Ю., Зиновьева Н., Эрнст Л., 2007). В результате разработка методов оценки племенной ценности свиней, которые в настоящее время предложены наукой, на несколько шагов опережает устаревшие нормы. В связи с этим стала очевидной необходимость кардинального изменения системы оценки племенных качеств животных и приведение ее в соответствие с существующими научными разработками. Следует отметить, что племенная информация используется не в полном объеме, около 90 % не включается в обработку при оценке племенной ценности свиней (Рудь А. И., 2006). Кроме того, оценка свиней основана на различных принципах в зависимости от пола, возраста, что делает ее несопоставимой в разные периоды жизни. Практически не изученным является вопрос о степени точности оценки воспроизводительных качеств хряков-производителей. По результатам эксперимента, проведенного О. Л. Третьяковой (2001), установлено, что приоритетными признаками отбо10 ра, которые оказывают максимальное влияние на товарную массу гнезда в 6 мес. являются: многоплодие, число поросят в 2 мес, масса гнезда в 2 мес. Остальные признаки имеют меньшее значение. Как отмечают Н. В. Михайлов, Н. И. Казакова, Э. В. Костылев (1997); Н. Захарова, В. Гарай (1999); А. И. Каширский (2000); В. Н. Василенко, Н. В. Михайлов, А. А. Белик (2003); Д. В. Самсонов, А. Л. Резников (2006), интенсификация воспроизводства свинопоголовья требует научно обоснованных подходов при проведении племенной работы с использованием компьютерных программ. Э. Р. Штапельберг (2001) предложил способ определения генотипов свиней по репродуктивным качествам. А. Филатов с соавторами (1990) предлагают для оценки воспроизводительной способности включать массу гнезда в 21 и 60 дней. Масса при отъеме несет в себе информацию как о количестве отнятых поросят, так об и их массе. Она является показателем молочности и материнских качеств свиноматок, а также жизнеспособности и скорости роста поросят. 11 ЭФФЕКТИВНОСТЬ ИСКУССТВЕННОГО ОСЕМЕНЕНИЯ СВИНЕЙ Искусственное осеменение сельскохозяйственных животных – одно из самых значительных научных и технических достижений ХХ века в области животноводства. Исследования о физиологии размножения животных и создании метода искусственного осеменения были начаты в России в конце XIX – начале XX столетия. Организатором и руководителем первых научных исследований, а затем научно-производственных опытов был выдающийся ученый-биолог профессор Илья Иванович Иванов. Многочисленными трудами И. И. Иванова была подготовлена почва для последующего прогресса науки в области физиологии воспроизводства и искусственного осеменения животных (Ф. В. Ожин и др., 1983). И. И. Иванов разработал и внедрил в практику новую технику размножения сельскохозяйственных животных. В отличие от других исследователей и практических работников, стремившихся в то время принять искусственное осеменение как средство борьбы с бесплодием в коневодстве, И. И. Иванов рассматривал его как важное мероприятие массового улучшения поголовья сельскохозяйственных животных. Основное назначение метода он видел в возможности наиболее рационального использования лучших племенных производителей. Поэтому И. И. Иванова заслуженно считают основоположником метода искусственного осеменения животных (Stamm G. W., 1954). Искусственное осеменение свиней, так же как и других видов сельскохозяйственных животных, имеет значение для массового улучшения в короткий срок породных и продуктивных качеств поголовья, ликвидации прохолоста и снижения затрат на производство свинины. 12 Искусственное осеменение в настоящее время является одним из основных методов воспроизводства сельскохозяйственных животных в хозяйствах и частном секторе. Оно проводится как важнейшее хозяйственное мероприятие с целью интенсивного использования высококлассных племенных производителей (особенно проверенных по качеству потомства) для дальнейшего улучшения породных и повышения продуктивных качеств сельскохозяйственных животных с наименьшей затратой времени и средств. Искусственное осеменение – прогрессивный метод воспроизводства поголовья, позволяющий за счет максимального использования хряков-производителей быстро и массово повысить продуктивные качества свиней. Этот метод дает высокую зоотехническую и экономическую эффективность и по праву стал основным методом воспроизводства свиней во многих крупных специализированных свиноводческих хозяйствах. Благодаря методу искусственного осеменения спермой высокоценного хряка-производителя можно осеменить в 12–18 раз больше свиноматок, чем при естественном осеменении. Таким образом, этот метод позволяет широко использовать ценных полновозрастных хряков для осеменения молодых свинок, улучшить качество получаемого от них потомства и значительно сократить затраты в хозяйствах на содержание производителей. Так, при наличии в хозяйстве 500 свиноматок вместо 25–30 хряков можно держать 5–6 и более ценных в племенном отношении хряков. Вместо выбракованных хряков можно иметь дополнительно такое же количество свиноматок. Кроме того, искусственное осеменение предупреждает прохолосты и служит методом профилактики заразных заболеваний. Искусственное осеменение свиней обеспечивает получение большого количества потомства от ценных хряков. Тщательно соблюдая установленные технические правила искусственного осеменения, можно получить оплодотворяемость не ниже, чем при естественном. Проведенная работа в хозяйствах Ставропольского края показывает, что правильная организация искусственного осеменения свиней обеспечивает хорошую оплодотворяемость и повы13 шенную плодовитость маток. Техник по искусственному осеменению должен уметь правильно подготовить и провести работу по осеменению свиноматок для получения качественного потомства с хорошими генетическими показателями. Кроме того, техники по искусственному осеменению животных должны знать основы зоотехнии, быть знакомы с вопросами ветеринарной гинекологии и ветеринарно-санитарными правилами работы на станциях и пунктах по искусственному осеменению. Успешно продолжающиеся научные исследования по физиологии и патологии размножения свиней и усовершенствованию техники искусственного осеменения требуют от специалистов глубоких и всесторонних знаний по основным процессам размножения животных, квалифицированного владения новейшей техникой получения спермы от производителей, оценки, разбавления, хранения и введения ее в половые органы самок с последующей диагностикой их беременности. Разработанные в нашей стране способы хранения спермы производителей вне организма, а также транспортировки ее позволили улучшить организационные формы искусственного осеменения свиней и племенной работы в хозяйствах страны и края. Искусственное осеменение проводится по двум организационным формам. В крупных специализированных свиноводческих хозяйствах организуются внутрихозяйственные пункты, где содержат хряков-производителей. В хозяйствах с небольшим количеством свиноматок искусственное осеменение проводят транспортированной спермой хряков, содержащихся на племпредприятиях, в которых содержатся выдающиеся высокоценные племенные производители различных пород, проверенные по качеству потомства, от которых регулярно получают сперму. 14 ОЦЕНКА ВОСПРОИЗВОДИТЕЛЬНЫХ КАЧЕСТВ СВИНОМАТОК ДЛЯ ПОЛУЧЕНИЯ КАЧЕСТВЕННОГО ПОТОМСТВА Известно, что на нормальное функционирование органов размножения свиней, воспроизводительные и продуктивные качества самок, а также на качество потомства, полученное от них, влияет множество факторов (Сивожелезова Н., Стручкова Т., 2007). Эффективность использования свиноматок зависит в первую очередь от продолжительности их эксплуатации и получения от них максимального количества поросят. Оплодотворяемость и многоплодие – от точности времени искусственного осеменения. Для полноты оценки качеств в свиноводстве необходимо учитывать воспроизводительное и экономическое значение свиней, принимая во внимание условия содержания и кормления (Фалконер Д. С., 1985; Peterson G., Irvin К., 1989; Bussallen E., Pinart E., Yeste M., Briz M., Sanceho S., 2005; Munsterhjelm C., Valros A., Heinonen M., Halli O., 2006, Joel H. Brendemuhl, Peter J. Hansen, 2006). По мнению К. Irvin (1982), с биологической точки зрения на воспроизводительный потенциал влияет ряд компонентов (число овулированных яйцеклеток, оплодотворяемость, перинатальная смертность) и факторов (возраст, кондиция, гормональный статус, генетические факторы, возраст осеменения, качество спермы, инфекции, величина матки). Н. Р. Donald, W. S. Russel, St. C. S. Taylor (1962) отмечают, что репродуктивный процесс характеризуется через выход поросят на свиноматку в год, что влияет на производительность стада и рентабельность производства. 15 М. И. Голубев, Ю. Ф. Красавцев (1985) изучали взаимосвязь репродуктивных признаков в эмбриогенезе свиней. Н. М. Кертиева (1990) установила зависимость репродуктивных качеств свиноматок от живой массы при рождении. Концепция жизненных циклов, выдвинутая первоначально Mak Arthur, Wilson (1967) и развитая Pianka (1970), Myers J. M., Krebs C. J. (1971), подразумевает совокупный результат непосредственных реакций организма на среду, в которой он обитает. Традиционные способы учета и оценки продуктивности свиней при бонитировке в недостаточной мере отражают комплекс репродуктивных показателей, они отражают только часть его компонентов. Для проверки воспроизводительных качеств необходимо использовать все три основных его компонента. При высоком уровне продуктивности только учет всех потенциалов продуктивности позволит улучшить воспроизводительность свинопоголовья (Thomson G., 1977; Peters R. H., 1983). Оценка комплексного показателя воспроизводства должна быть обусловлена структурными, физиологическими и биохимическими свойствами организма (Кабанов В., 2004). Большое экономическое значение в аспекте оценки общей воспроизводительной продуктивности имеет масса молодняка при убое. Она включает в себя все оцениваемые показатели (Аль-Кейси Т., 2008). Учет количества поросят в гнезде основывается не только на экономических соображениях, но и на качестве воспроизводительной способности свиноматок (Каратунов Г. А., 2001). В практических условиях оценка качества воспроизводительной функции животных, как правило, проводится по собственной продуктивности (Михайлов Н. В., Колосов Ю. А., Каратунов Г. А., Третьякова О. Л., 1999; Князев С. П., Ермолаев В. И., Савина М. А., Горелов И. Г., 2000). В связи с этим стала очевидной необходимостью кардинальное применение системы оценки племенных животных и приведение ее в соответствие с принятыми за рубежом принципами и нормами в целях получения сопоставимых результатов (Захарова Н., Гарай В., 2000; Третьякова О. Л., 2001; Мысик А. Т., 2001, 2006; Fadiel A., Anidi 1. 2005; Смирнов Д., 2007). Дальнейшее совершенствование методов оценки должно опираться на глубокий анализ основных параметров воспроизводи16 тельных качеств свиноматок (Lenoir H., Luguet M., Mercat М., 2002; Hunter R., 2002). Все это необходимо для значительного повышения точности оценки племенных качеств животных (Михайлов Н. В. и др., 1999). Внешние факторы, такие, как кормление и содержание, воздействуя на функцию различных органов, в том числе и внутренних, изменяют направление и уровень продуктивности животных. Немаловажным условием правильного развития всех органов животного и повышения его продуктивности является моцион. При движении развивается весь организм животного в целом. У свиней отсутствие моциона отражается отрицательно не только на развитие опорно-двигательного аппарата, но и на развитие воспроизводительных органов. Это подтверждается результатами многочисленных исследований, в которых показано, что при правильном построении режима содержания (полноценное кормление, уход, наличие моциона) у свиней значительно повышается воспроизводительная функция (Походня Г. С., Ескин Г. В., Нарижный А. Г., Водянников В. И., Засуха Ю. В., Федорчук Е. Г., 2004). По данным трехлетних исследований В. А. Володина (1992) доказано, что в летних лагерях целесообразно содержать только супоросных свиноматок, у которых отмечается повышение многоплодия. Основных же маток, которые длительное время находились на комплексах, переводить в летние лагеря во время супоросности не рекомендуется, так как это приводит к снижению многоплодия. Специалисты университета штата Джорджия (США, 1978) установили, что в условиях безвыгульного содержания наступление половозрелости у свинок задерживается на 30–90 дней, отсутствие охоты наблюдается у 30 % животных, оплодотворяемость по первому опоросу не превышает 50 % (Козловский В. Г., 1984). По данным исследований П. И. Лымарь, Г. С. Походня (1980), было установлено, что свинки, выращенные с моционом (на выгульных площадках), были покрыты на 22 дня раньше, чем их сверстницы, не имевшие моциона. Многоплодие и крупноплодность были почти одинаковыми, независимо от условий содержа17 ния, однако число мертворожденных поросят было на 4 % больше при безвыгульном содержании. Кроме того, при свободновыгульном содержании молочность маток была выше на 6 кг, или на 10 %, сохранность молодняка к отъему на 7,3 % выше, чем при безвыгульном содержании. Как показывают данные науки и практики, в настоящее время в промышленных комплексах значительная часть взрослых свиноматок имеет низкую воспроизводительную способность. Это выражается в пониженой половой активности, значительном прохолосте и потере молочности, рождении большего числа слабых и мертвых поросят и в заболеваемости конечностей. Эти проблемы, как правило, возникают после первого или второго опоросов при безвыгульном содержании (Походня Г. С., Ескин Г. В., Нарижный А. Г., Водянников В. И., Засуха Ю. В., Федорчук Е. Г., 2004). Основная задача подготовки свиноматок к осеменению заключается в том, чтобы повысить их оплодотворяемость, многоплодие, создать благоприятные условия для развития потомства в утробный и подсосный периоды (Lenoir H., Luguet M., Mercat М., 2002; Hunter R., 2002). Для улучшения воспроизводительных качеств свиноматок нередко используют различные стимуляторы. Так, по данным Г. С. Походня, Г. В. Ескина, А. Г. Нарижного, В. И. Водянникова, Ю. В. Засухи, Е. Г. Федорчука, применение синтетического феромона хряка «Суидор» может эффективно использоваться для повышения воспроизводительных функций свиноматоки технологичности осеменения – ускорения введения спермы и предотвращения попыток маток лечь во время осеменения. Однако в условиях безвыгульного содержания свиноматок стимуляция феромоном не устраняет полностью отрицательных воздействий гиподинамии. По данным В. Григорьева и В. Сафроновой (2008), сезон года оказывает самое непосредственное влияние на воспроизводительную функцию животных. По результатам исследований необходимо отметить, что самыми высокопродуктивными животными оказались свиноматки крупной белой породы и помеси, осемененные в осенний и зимний периоды года. 18 При проведении производственных опытов ряд авторов (Семенов В. В., Казачок Г. Е., Марченко Н. И., Мытарев Н. И., Пьянов С. В., 2002) отмечали, что дозированный контакт хряковпробников в течение двух часов во время утреннего моциона со свиноматками крупной белой породы обеспечивает 100-процентное оплодотворение. У ремонтных свинок процент оплодотворения составлял 73,7–89,0 %, в то время как в контрольных группах данный показатель соответствовал у свиноматок 83,7 %, а у ремонтных свинок – 64,7 %. По данным Н. В. Михайлова с соавторами (2009), между продуктивностью и развитием свиноматок установлена прямая связь. Лучшее развитие органов размножения наблюдается у свинок, выращенных при групповом содержании. Известно, что при недостатке микро-, макроэлементов, витаминов, заменимых и незаменимых аминокислот нарушается развитие как всего организма животных в целом, так и отдельных систем. При таком недостатке нарушается развитие полового аппарата свиней, что отрицательно влияет на воспроизводительную функцию. 19 ИСПОЛЬЗОВАНИЕ ВЫСОКОКАЧЕСТВЕННОЙ СПЕРМЫ ХРЯКОВ-ПРОИЗВОДИТЕЛЕЙ ДЛЯ ПОЛУЧЕНИЯ ПОТОМСТВА Воспроизводительные качества хряков-производителей связаны с качественными и количественными показателями спермы. На уровень оплодотворяющей способности хряков-производителей влияет множество факторов (физиологическое состояние организма, точность определения охоты, время осеменения, число яйцеклеток, эмбриональная смертность плодов, патология полового аппарата и т. д.). Важную роль имеют также наследственные качества производителя (объем эякулята, концентрация спермы, общее число спермиев) (Мамонтов Н. Т., Михайлов Н. В., Шарнин В. Н., 2009). Длительное использование хряков-производителей зависит от их правильной эксплуатации. Чем больше спермы удается получить от производителя, тем большее число свиноматок можно ею осеменить. Кроме того, повышение уровня спермопродукции производителей позволяет сократить число хряков и, следовательно, снизить затраты кормов, труда и других средств, то есть получить прямой экономический эффект (Нарижный А. Г., Водянников В. И., Поморова Е. Г., Бреславец В. М., Походня Г. С., 2001). Необходимо улучшать генетический потенциал свинопоголовья, что положительно скажется на количественные и качественные показатели получаемого жизнеспособного, устойчивого к воздействию внешних факторов приплода (Третьякова О. Л., 1998). Установленные взаимоотношения между признаками совместно определяются уровнем продуктивности. В систему оценки 20 племенной ценности хряков должны включаться те признаки, которые определяют все составные части потенциала. Как отмечает С. Лучко (2000), такая оценка может быть успешной на основании комплекса мероприятий по повышению воспроизводительных качеств самцов. Отсюда следует, что необходимо использовать все возможные методы разведения животных для повышения воспроизводительных качеств хряков. Теоретические основы такого метода обоснованы в работах В. А. Погодаева (2000); О. Л. Третьяковой (1992, 1998, 1999) и др. При оценке оптимальных режимов полового использования самцов важным показателем является суточный уровень их спермопродукции. К. Л. Левин (1990) составил схему зависимости спермопродукции хряков от режимов их полового использования. С увеличением интенсивности использования хряков уменьшается общее число спермиев в эякуляте. Происходит не только уменьшение объема эякулята, но и снижение концентрации спермиев. С увеличением интенсивности использования хряков подвижность и выживаемость спермиев не меняется, а в некоторых случаях повышается, резистентность спермы при этом не снижается и не меняется её осмотическое давление, повышается рН спермы. Однако решающим показателем качества спермы является ее оплодотворяющая способность (Малышев В., 1989; Беляков О., Сердюк Г., 2008). Оплодотворяющая способность спермы оказалась выше при использовании хряков 1 раз в день 88,5 %, чем при использовании 1 раз в 3–4 дня – 70 %. От высокоценных хряков-производителей необходимо получать сперму через день, так как при этом от них за счет активного спермиогенеза получают максимальное количество спермопродукции. Не следует использовать хряков реже, чем раз в 7–8 дней, в связи с тем, что такой режим отрицательно сказывается на количестве и качестве потомства. А. М. Шостак (2004); Л. Тимофеев, М. Шкатов, Н. Шкатова (2004); А. В. Ковров (2005); Д. В. Самсонов, О. Л. Третьякова (2006) изучали породные различия по качественному составу спермопродукции. Половое созревание хряков крупной белой породы наступает в возрасте 4-6 месяцев. По мнению К. Л. Ле21 вина (1990), использование хряков с момента наступления половой зрелости не сказывается отрицательно на развитии у них половых органов, на последующем уровне спермопродукции, длительности использования, приростах массы и развитии. Раннее использование хрячков позволяет получить дополнительно спермопродукцию, раньше закончить оценку по качеству потомства, провести своевременную выбраковку хряков в целях рационального использования лучших самцов-производителей. При задержке использования молодых хряков происходит ожирение, отсутствие полового возбуждения, отмечаются нарушения в половых органах. Так, в результате импотенции – выбраковывается до 25 % хрячков сальных пород, около 15 % хрячков крупной белой породы. Хрячки в возрасте 5–6 месяцев легко приучаются к получению спермы на чучело свиноматки. Известно, что молодые производители обладают более высокой половой активностью, чем взрослые самцы. Так, сотрудниками ВИЖ А. Г. Нарижным и А. Ч. Джамалдиновым был проведен эксперимент по приучению молодых хрячков к садке на чучело свиноматки с помощью феромонного препарата «Пасо». Полученные результаты свидетельствуют о положительном влиянии данного препарата на приучение хрячков к садке на чучело и получение высококачественной спермы на искусственную вагину. Основным фактором, определяющим режим использования самцов, является уровень спермопродукции (Гегамян Н., Шичкин Г., Шарнин В., 2003; Zahan M., Micleg V., Man I., Roman I., 2006; Langendijk P., Schams P., Soede N., Kemp В., 2006). У хрячков в возрасте 7–9 месяцев суточное количество выделяемых в эякуляте спермиев примерно в 1,5 раза ниже, чем у производителей в возрасте 24 месяцев. Как у молодых, так и у взрослых производителей с уменьшением интенсивности использования повышается количество спермиев в эякуляте, но снижается количество спермиев, выделяемых в среднем за сутки. Всё это указывает на то, что рекомендуемые в нашей стране режимы использования молодых хряков раз в 7–10 дней являются недостаточными. В Германии для искусственного осеменения сперму от хрячков с 10- до 12-месячного возраста получают регулярно, 2 раза в неделю. 22 Если наиболее рациональным режимом использования взрослых хряков является 1 раз в два дня, то для хрячков с 6–7-месячного возраста наиболее рациональным следует признать режим, при котором они используются раз в 3–4 дня. При этом их спермопродукция будет соответствовать количественным и качественным показателям спермы взрослых производителей. Исследования P. Calow (1981), Woolhead (1983), J. Cerovsky, J. Hajek, F. Kratky (1998) подтверждают, что жизненные циклы часто отражают непосредственную реакцию организма на прошлые и настоящие условия существования. Необходимо отметить, что, поскольку условия среды изменчивы, воспроизводительная функция и качество спермопродукции хряков-производителей тоже изменяются (Gadgil P. M., Solbrig O. T., 1972; Lewis J. R., 1976; Красавцев Ю. Ф., 1991). Длительное хранение спермиев вне организма в состоянии анабиоза в значительной степени расширило возможности искусственного осеменения свиней (Tang Guoliang и др., 2006). Проведенные исследования свидетельствуют о высокой жизнеспособности белков половых клеток самцов. Хачапуридзе Э. (2002); Mutembei Н. М., Pesch S., Schuler G., Haffmann В. (2005) были разработаны экспресс-тесты оценки спермы. 23 ПОВЫШЕНИЕ ВОСПРОИЗВОДИТЕЛЬНОЙ ФУНКЦИИ СВИНЕЙ С ПРИМЕНЕНИЕМ ДОБАВОК РАЗЛИЧНОГО ПРОИСХОЖДЕНИЯ В Российской Федерации большинство свиноводческих хозяйств применяют искусственное осеменение свиноматок и ремонтных свинок. В свиноводстве, как одной из скороспелых отраслей животноводства, в настоящее время большое значение приобретают работы по повышению общей резистентности организма самцов и самок путем применения стимуляторов, кормовых и биологически активных добавок различного происхождения. Применение таких добавок способствует образованию у животных более стойкого иммунитета, повышению продуктивности. Немаловажным при искусственном осеменении свиней является рациональное использование хряков-производителей и свиноматок, полноценное кормление животных – введение в рацион необходимых питательных веществ, витаминов, микроэлементов, таких как витамины А, Е, кальций, селен, которые участвуют в регуляции окислительно-восстановительных процессов, способствуют повышению репродуктивной функции животных. А.Г. Нарижный с соавторами (2006) в результате исследования препарата «Селемаг», содержащего комплекс витамина Е и селена, на свиноматках, доказал, что животные одновременно приходят в охоту и оплодотворяемость повышается на 6,8 %. А. Шевченко с соавторами (2005), доказал, что 2-хмесячное применение стимуляторов для хряков, таких как биологически активная яичная масса (БАЯМ), комплексный иммуномодулятор (КИМ) и 5 %-ное прополисное молочко, эффективно влияет на количество, качество спермопродукции и биохимические показатели крови хряков-производителей. 24 По данным В. Авдеенко с соавторами (2008), при искусственном осеменении свиноматок спермой хряков-производителей, получаемых в рационе селеноорганический препарат «ДАФС-25», оплодотворяемость и плодовитость повышаются. Для получения жизнеспособного приплода, его сохранности, а также для окупаемости затрат на содержание племенных животных необходимо сбалансированное полноценное кормление, хороший уход и содержание производителей (Вишняков М., Мошкутело И., Епифанов В., 2008; Ухтверов А., Ухтверов М., Мордвинова Е., 2008). Количество и качество приплода в значительной степени зависит от воспроизводительных качеств хряков-производителей. Они должны быть здоровыми, иметь высокую половую активность. Ожирение хряков, как и истощение, отрицательно отражается на их половой активности и качестве спермопродукции. В период интенсивного полового использования у хряковпроизводителей повышается общий обмен веществ, вследствие чего потребность в питательных веществах возрастает. При недокорме у хряков снижается спермопродукция, половая активность, ухудшается оплодотворяющая способность спермиев. Поэтому кормление хряков должно быть полноценным и направленным, отмечали в своих работах А. П. Калашников, Н. И. Клейменов, В. Н. Баканов и др. (1986). Применение кормовых добавок в рационах хряковпроизводителей обеспечивает увеличение объема эякулята, количество спермиев и их оплодотворяющую способность, при этом снижаются затраты кормов на одну спермодозу до 16 %, отмечали исследователи В. А. Крохина, А. П. Калашников, В. И. Фесин (1990). О применении нетрадиционных кормов в рационах свиноматок, ремонтных свинок, хряков-производителей описывал в своих работах А. Е. Чиков (2000). С этой целью объектом изучения был Эприн (кормовые дрожжи), при замене им в традиционных рационах мясокостной муки. Если на традиционном рационе суточный прирост живой массы у свинок составил 668 г при затрате 4,78 кормовых единиц и 573 г перевариваемого протеина на 1 кг прироста массы, то при использовании Эприна эти показа25 тели составили соответственно 638 г, 4,92 кормовые единицы и 592 г перевариваемого протеина при большем убойном выходе на 1,8 % (Д. Гайирбегов, Т. Кандрашкина, 2006; Р. Засеев, В. Каиров, М. Кебеков, 2008). По данным В. Дикусарова, Д. Пилипенко, И. Водянникова, А. Сивко, П. Подзолкова (2008), за счет повышения воспроизводительных качеств свиноматок и продуктивности полученного от них потомства при использовании Бишаса себестоимость 1 ц живой массы поросят-отъемышей 2, 3 и 4 групп снизилась на 5,51– 11,42 %. При кормлении хряков-производителей объем эякулята у подопытных животных был выше по отношению к контрольной группе на 10,2 мл, активность спермиев – на 0,7 балла, не наблюдалось патологических форм спермиев, в то время как в контрольных группах количество мертвых спермиев составляло 0,4 %. Применение в рационах хряков-производителей как традиционных добавок, так и нетрадиционных, витаминов, микроэлементов, а также витаминизированных кормов растительного происхождения описывали в своих трудах исследователи И. Миколайчик (2004), Г. Бажов, Л. Бахирева (2004), Л. Тимофеев, Н. Шкатова (2004), Е. Джунельбаев, В. Рясков (2004), А. Хохлов (2006). Так, в результате применения витаминной тыквы в консервированном виде по 250 г ежедневно объем эякулята увеличился на 21,0 мл, концентрация спермиев – на 14,5 % соответственно, общее количество спермиев возросло на 14,3 млрд, а выживаемость – на 21 единицу. Кроме этого, положительное влияние на качество спермы оказывало и облучение ультрафиолетовыми лучами в течение 4-х часов ежедневно, при этом объем эякулята увеличился на 3,4 %, концентрация спермиев – на 6,8 %, переживаемость – на 13,3 %. По расчетам авторов, полученной спермой можно дополнительно осеменить 40–45 свиноматок в год. В качестве одного из источников биологически активных веществ могут быть использованы микроводоросли, типичным представителем которых является хлорелла. Это микроскопическая зеленая водоросль, содержащая в себе достаточно большое количество белка, с полным набором незаменимых аминокислот, 26 углеводов, жиров, витаминов и биологических стимуляторов, которые оказывают положительное влияние на жизнеспособность и резистентность организма животного. На основании проведенного опыта Л. Гамко, В. Подольников, Д. Уфимцев (2008) делают заключение о том, что скармливание суспензии микроводоросли в дозе 125 мл/кг сухого вещества рациона молодняку свиней в период их доращивания стимулирует развитие процессов пищеварения и способствует повышению прироста живой массы, а также лучшему развитию репродуктивных органов. Для трансплантации эмбрионов был разработан метод гормонального вызывания суперовуляции. С этой целью применялись сыворотка жеребых кобыл (СЖК, сывороточный гонадотропин) и особенно очищенный препарат гонадотропных гормонов гипофиза. Поэтому дальнейшие исследования в этой области были направлены на изучение эффективных воздействий различных гипофизарных и плацентарных гормонов, выявление оптимальных доз гонадотропинов и их сочетаний, обеспечивающих возможность контроля уровня полиовуляции. Ученые выбирали наилучшее время обработки, а также наиболее приемлемую сочетаемость различных гормонов. Было выявлено, что число овуляций увеличивается в определенной степени под действием хорионического гонадотропина (ХГ) в дозе 1000 И. Е. (Тurman E. J., 1971). Однако многие авторы показали, что хорионический гонадотропин имеет отрицательные стороны: снижает оплодотворяемость животных, вызывает преждевременную регрессию желтых тел, повышает эмбриональную смертность, способствует разновременному приходу животных в охоту и удлинению ее протяженности (Booth W. D., 1975). М.Е.К. Harper, M.C. Chang (1975) выяснили, что высокая концентрация эстрогенов стимулирует сократительные движения яйцеводов и матки, ускоряет продвижение яйцеклеток и способствует преждевременному сбрасыванию оболочки эмбрионов, что ведет к их дегенерации. Различия в реакции яичников на эстрогенные гормоны обусловливается изменением эндогенного гормонального фона, который непосредственно влияет на процесс оплодотворения и развития зародыша (Rosenfeld M. G., 1977). 27 Кроме того, было выяснено, что ни одна из проверенных схем гормональной обработки не обеспечивает стабильного ответа на одну и ту же дозу гонадотропина. Реакция животных на простагландин зависит от способа и места его введения (Elsden R. D., 1978). Так, после введения 1500 и.е. СЖК и через 48 часов – дробного внутримышечного двукратного введения простагландина отмечено снижение результатов у 50 % животных. Часть животных не приходили в охоту после гормональной обработки. День введения гонадотропина и интервал между инъекциями СЖК и ПГФ2-α имеют большое значение при вызывании суперовуляции после спонтанной охоты (Hahn J., 1979). Большинство исследователей (Shea В. Т., 1976; Beeham D., 1977; Greve Т., 1979) пришли к выводу, что оптимальным сроком введения ПГФ2-α является начало третьих суток после инъекции гонадотропина. Более ранние инъекции ПГФ2-α, хотя и обеспечивают в какой-то степени стабильный уровень суперовуляции, но снижают число созревших фолликулов (Anderson G. В., 1979). С целью увеличения индекса оплодотворяемости яйцеклеток в ряде стран делали попытки использовать кроме СЖК другие гонадотропные препараты и аналоги простагландина Ф2-альфа. Так, Kopecny M., Stratil A., Cepica S., Moser G. (2000) овец-доноров обрабатывали СЖК в дозе 1500–2000 м. е. и неочищенным препаратом ФСГ из гипофиза свиней в дозе 25 мг два раза в день между 10 и 14 днями полового цикла. Спустя 24 часа после введения гонадотропинов вводили ПГФ2-альфа. Инъекции СЖК в разные дни полового цикла давали разные результаты, и они оказались значительно ниже, чем при применении ФСГ. Хорошую реакцию суперовуляции обеспечивает наличие выраженного желтого тела в момент обработки гонадотропином. Наличие фолликула в яичнике одновременно с желтым телом снижает результат гормональной обработки. В этих случаях часто наблюдаются отрицательные результаты в уровне полиовуляции (Bacze J., 1979). Так, 19 донорам для суперовуляции на 12 день полового цикла вводили фоллигон в дозе 1000 И. Е. с последующей обработкой простагландином Ф2-α (эстрофан) в дозе 28 250 мкг. Число овуляций в среднем на одного донора составило 10,2, на одного положительного донора получено 6,9 яйцеклеток, из них полноценных 4,7. При использовании нативного препарата СЖК в дозе 1200 м. е. число животных, реагирующих суперовуляцией, повышалось до 89,5 %. Лиофилизированный нативный препарат СЖК обеспечивал охоту у всех обработанных животных, но при множественном росте фолликулов у 12,5 % животных не было овуляции. Аналогичные результаты авторы получили при использовании ФСГ в дозе 25 мг (4- или 5-дневные обработки). При такой схеме обработки не было овуляции в яичниках у 15,7 % животных. От применения различных типов гонадотропина был получен разный уровень овуляций: стандартного препарата СЖК – в среднем 10,1, нативного СЖК – 8,5, лиофилизированного нативного препарата СЖК – 6,7, а при использовании ФСГ на положительного донора получено 11,7 овуляций. В. К. Калпокас и соавт. (1990) считают, что из существующих способов вызывания полиовуляции у свиней наиболее приемлем способ, основанный на введении в лютеиновую фазу полового цикла СЖК, пролазана, фоллигона, ФСГ, с последующей инъекцией простагландинов, обеспечивающий 10–18 желтых тел у одной свиньи. Основными факторами, которые влияют на уровень полиовуляции при таком способе, являются доза вводимого гормонального препарата и время введения гонадотропинов. Наилучшие результаты, по мнению авторов, получены при введении СЖК в дозе 1400 И. Е. на 11 день полового цикла, при этом количество желтых тел на одного донора было 10,8. При введении фоллигона в дозе 1500 И. Е. на 11 день цикла – 8,8 желтых тел; при инъекции ФСГ на 9 день полового цикла в дозе 20 мг желтых тел насчитывалось 12,4. Таким образом, полученные данные по вызыванию множественной овуляции свидетельствуют о том, что реакция яичников на введение экзогенных гормонов непредсказуема и может разниться в отношении числа овуляций и выхода нормальных эмбрионов. Э. Е. Острикова (2001) указывает, что разработка способов синхронизации охоты началась с применения простагландинов, обеспечивающих удлинение срока существования желтого тела в яичниках. 29 После прекращения введения прогестерона (12–14 дни) желтое тело лизируется. При этом число животных, пришедших в охоту одновременно увеличивается, а оплодотворяемость их снижается (Betteridge K. J., 1977). Поэтому в дальнейшем стали пользоваться кратковременными (8–10 дней) обработками простагландином (Armstrong D. T., 1983). Единственной отрицательной стороной применения простагландинов является то, что животные с более «молодыми» желтыми телами (до 5 дней) не реагируют на введение простагландина (Thimonier J., 1976). Соответственно под влиянием препаратов простагландинов регрессии подвергаются только вполне сформировавшиеся, зрелые желтые тела. Известно, что рост и развитие животных на всех этапах онтогенеза контролируется генами, а процесс их индивидуального развития программируется генетической информацией, передающейся от родителей. В то же время реализация генотипа, заключенного в оплодотворенной яйцеклетке, осуществляется под влиянием факторов внешней среды, поэтому считается, что в самой генетической программе заложены не готовые решения, а определенные генотипом лимиты реализации признаков. Экспериментально доказана возможность оплодотворения и в дальнейшем развитие зиготы вне организма. Это же подтверждается опытами с пересадкой яйцеклеток и зигот. В настоящее время метод трансплантации яйцеклеток применяют в животноводстве, что даёт возможность эффективно использовать ценных высокопродуктивных животных (Мадисон В., 2007). Естественно, хранение половых клеток в несвойственных им условиях далеко не безразлично для качественного состояния белка и их способности передавать наследственные признаки и свойства. Еще в работах A. M. Питушкина (1970); Мэйнард Смит Дж. (1981) приводятся данные последовательности процессов, связанных с оплодотворением. Зарубежными учеными продолжаются исследования по изучению влияния сигментов яйцевода на процесс оплодотворения (Jiwakanon J., Persson E., Dalin А., 2006). Проводятся исследования по выявлению факторов, стимулирующих продвижение спермиев в матке (Maltaris I., Dittrich 30 R., Widjaja W., Sind-huwinata C., Hoffmann L., Beckmann M.W., Mueller А., 2006). Активность яичников и симптомы эструса изучали Hulten F., Wallenbeek A., Rydhmer L. (2006). Контакт спермиев со слизистой оболочкой шейки матки и самой матки вызывает раздражение и гиперемию тканей половых путей и рефлекторно повышение сократительной активности матки, обусловливающей транспортировку половых клеток. По данным А. В. Квасницкого (1983), яйцеклетка не имеет двигательного аппарата и проделывает свой путь не самостоятельно, а благодаря воздействию на неё ряда факторов (разрыв фолликула, жидкость, мерцательные движения клеток яйцевода и др.). Оценкой хряков по оплодотворяющей способности занимались И. И. Соколовская, Н. М. Решетникова, Л. Я. Бабичева (1972); В. А. Медведев, Р. А. Файзуллин (1989); F. Clement, Y. Ladonnet, M. Maqistrini (2001); M. Magistrini, M. Vidament, С. Labbe, A. Genneyieve, G. Stradaioli (2001); P. Ratk (2002); А. Мухамедшина (2006); Н. Мытарев, К. Юрченко, И. Рачков, Д. Мытарев (2007), в своих работах они изучали морфологию спермы и оплодотворяемость. В. Д. Кабанов (1992); M. Magistrini, M. Vidament, С. Labbe, A. Gennevieve, G. Stradaioli (2001); Е. Дудка (2002); Поморова Е.Г. (2003) установили корреляции между различными критериями качества спермы (плодовитость, выживаемость, состояние акросомы, гипоосматический тест ГОТ и оплодотворяемость). Л. В. Тимофеев (1984); J. Udala, P. Gaczazewicz, B. Lasota, B. Basrczyk, B. Seremak, T. Stankinkiewicz (2005) исследовали качество спермопродукции хряков разных пород и линий. А. Нарижный, Н. Гнеушева (2008) установили, что при стимуляции воспроизводительных функций хряков с помощью препарата Апилактон (подкожные инъекции хрякам с периодичностью 3 раза в неделю из расчета 5 мг на 1 кг живой массы) наблюдается положительное влияние на проявление половых рефлексов, качественные и количественные показатели спермы, а также на показатели воспроизводительной способности свиноматок. Огромное значение в процессе оплодотворения имеет не только качество, но и количество спермиев, которые выполняют са31 мые разнообразные функции: активизируют моторику маточной мускулатуры; создают активную гиперемию эндометрия, благодаря чему улучшается питание матки и обеспечивается ее подготовка к принятию зиготы; вырабатывают фермент-гиалуронидазу и осуществляют разрушение лучистого венца, подготавливая яйцеклетку к оплодотворению; проникая в яйцеклетку, стимулируют ее дозревание и участвуют в оплодотворении, в дальнейшем служат питательным материалом для зиготы. В процессе оплодотворения принимают участие множество спермиев. Содержание в эякуляте огромного количества спермиев – биологически обусловленное приспособление, обеспечивающее высокий процент оплодотворения. Очень важно также и то, что процесс оплодотворения – это процесс создания биологически нового организма. В процессе оплодотворения значительное место отводится избирательности гамет. Еще Аристотель отмечал, что избирательная способность оплодотворения рассматривается как наследственное, постоянно изменяющееся свойство, обусловленное эволюцией видов и средой их обитания. Экспериментальное подтверждение этого закона отражено в работах К. И. Либизова (1973); R. H. F. Hunter (2002); J. Реlaez, J. A. Riol, В. Aleqre, F. J. Репа, J. C. Pominquez (2006). В последние годы в литературе биологический процесс оплодотворения рассматривается как чередование последовательных периодов, зависящий от множества факторов и в первую очередь от правильного содержания, кормления, ухода, ежедневного моциона, своевременного выявления свиноматки в охоте и осеменения ее качественной спермой производителя. При отборе производителей необходимо учитывать их генетический потенциал, для объективного прогноза племенной ценности производителей проводить соответствующую оценку (Жебровский Л. С., 1987; Бетляев Ф. О., 1987; Левонтин Д., 2000; Мирошников В., 2001; Третьякова О. Л., 2005; Юдина О. П., 2002; Свинарёв И. Ю., 2005). Эти признаки являются теоретически обоснованными критериями оценки и отбора животных, учитывающими экономические, фенотипические и генетические характеристики признаков. В. К. Милованов, И. И. Милованов (1959); К. Л. Левин (1986); В. А. Медведев, Р. А. Медведев (1989); Ю. Д. Медве32 дев, Г. Ф. Медведев, В. Н. Григоренко, (1998); Г. Походня, Е. Федорчук, О. Попова (2008) и др. подтверждают прямую зависимость между жизненностью самца, условиями его жизни, живучестью его гамет и оплодотворяющей их способностью, с одной стороны, и жизненностью приплода – с другой. Поэтому для повышения оплодотворяемости свиноматок необходимо вести отбор наиболее крепких, с выраженным мужским типом высокоценных производителей, с наивысшей семяпроизводящей способностью и живучестью семени. Р. И. Мильчевская, З. С. Красикова (1995) изучали сроки оценки и отбора хряков по комплексу признаков. Таким образом, несмотря на достаточно большой объем исследований, посвященных изучению вопроса повышения воспроизводительных функций свиней, следует отметить, что разработано много БАД, однако их эффективность не достаточно высока и, на наш взгляд, изыскание новых БАД является перспективным. 33 ИСКУССТВЕННОЕ ОСЕМЕНЕНИЕ СВИНЕЙ В СТАВРОПОЛЬСКОМ КРАЕ Искусственное осеменение в настоящее время является одним из основных методов воспроизводства сельскохозяйственных животных. Оно проводится как важнейшее народнохозяйственное мероприятие с целью интенсивного использования высококлассных племенных производителей (проверенных по качеству потомства) для дальнейшего улучшения породных и повышения продуктивных качеств сельскохозяйственных животных с наименьшей затратой времени и средств. Искусственное осеменение свиней, так же как и других видов сельскохозяйственных животных, имеет значение для массового улучшения в короткий срок породных и продуктивных качеств поголовья, ликвидации бесплодия и снижения затрат на производство свинины. Искусственное осеменение свиней обеспечивает получение большого количества потомства от ценных хряков. Тщательно соблюдая установленные технические правила искусственного осеменения, можно получить оплодотворяемость не ниже, чем при естественном спаривании. Нас интересовала работа по искусственному осеменению свиней в исследуемых общественных хозяйствах: СПК колхозе «Терновский», Труновского, и ЗАО ПЗ «Артезианское», Новоселицкого районов, Ставропольского края. В исследуемых хозяйствах отбор ремонтных свинок для основного стада ведут по следующим показателям: по молочности (хотя на данный момент этот показатель отсутствует в бонитировке), энергии роста, количеству поросят от одной свиноматки, количеству рабочих сосков (на сегодняшний день не менее 14–16). 34 Обязательной в хозяйствах является витаминизация поголовья для синхронизации половых циклов у свиноматок. Для хряковпроизводителей используют «Рексвитал-комплекс» и «Рексвиталаминокислотный», содержащие незаменимые аминокислоты, макро-, микроэлементы и необходимые витамины для увеличения объема эякулята и повышения концентрации спермиев в нем. А также Рексвитал используют для ремонтных свинок в 4 месяца во время бурного развития половой системы, в 6–8 месяцев «Рексвитал» и препараты Е-селена. Для свиноматок во второй половине супоросности Рексвитал. За два дня до отъема поросят свиноматкам выпаивают Рексвитал, а в первые дни после отъема поросятам необходима дача препаратов Е-селена. Колхоз «Терновский» имеет в основном зерноводческое направление и отличается высокими урожаями на протяжении многих лет. Свиноводство в хозяйстве получило развитие в последние годы и в настоящее время является доходной отраслью. В хозяйстве насчитывается 12 000 поголовья свиней различного возраста. Однако искусственно осеменяется только более 1000 голов проверяемых свиноматок и 300 голов основных. Для осеменения в хозяйстве содержится 75 хряков-производителей, из них 15 подготовлено для получения спермы на искусственную вагину. Все свинопоголовье относится к породе СМ-1, которая отличается скороспелостью и многоплодностью. Качество сельскохозяйственной продукции ЗАО «Артезианское» удовлетворяет самым высоким стандартам. Свиньи содержатся на 3-х фермах: селекционный центр с современнейшим пунктом искусственного осеменения, племенным репродуктором и фермой для откормочного поголовья. Целенаправленный, скрупулезный труд, научный подход к селекционной работе и технологическому переоснащению хозяйство на протяжении 5 лет позволяет поддерживает статус племенного завода и имеет для этого государственную лицензию. ЗАО «Артезианское» занимает 3 место в России по производству свинины. В хозяйстве насчитывается около 16 тысяч поголовья свиней различного возраста. Искусственно осеменяется более 1000 голов проверяемых и около 200 голов основных свиноматок. Для 35 осеменения в хозяйстве содержится 45 хряков-производителей, подготовленных для получения спермы мануальным методом. В ПЗ ЗАО «Артезианское» 30 % свинопоголовья относится к крупной белой породе, 70 % эстонской беконной и ландрас. Долгое время в хозяйстве выращивали свиней породы СМ-1, но затем отказались от этих животных, так как качество продукции во многом уступает породе крупная белая. Рационы кормления свиноматок и хряков-производителей в СПК колхозе «Терновский» и ЗАО ПЗ «Артезианское» достаточно полноценны. Они состоят из комбикорма, зеленой подкормки, корнеплодов и подкормки от производителя (в зависимости от возраста животных и их назначения). При искусственном осеменении свиней используется отечественная технология. Выборка свиноматок в охоте осуществляется путем прогона хряков-пробников между клетками, в которых находятся свиноматки. Если при движении хряка свиноматки проявляют к нему интерес, их выпускают в проходы, и хряк делает на них садку. Эти свиноматки считаются в охоте, их выделяют и перемещают в отдельный свинарник, в котором их осеменяют спермой, полученной от хряков-производителей не ниже 1 класса. Свежеполученную сперму хряков-производителей после получения оценивают под микроскопом. И если она отвечает необходимым требованиям, ее разбавляют 1:3 специальными средами. После разбавления проводится повторная оценка качества спермы и, если активность не ниже 7 баллов, ее используют для осеменения свиноматок. В хозяйствах принято осеменять свиноматок дважды в одну охоту разбавленной спермой двух хряков. В СПК колхозе «Терновский» первый раз осеменяют сразу после выявления охоты у свиноматки спермой одного хряка, а повторно через 12 часов спермой другого. В ЗАО ПЗ «Артезианское» выявленных рано утром свиноматок в охоте, переведенных в специальные загоны для осеменения, первый раз осеменяют вечером (через 8 часов после выборки) разбавленной спермой одного хряка, а повторно через 16 часов также разбавленной спермой другого хряка. В хозяйствах свиноматок осеменяют в дозе 1 мл на 1 кг массы тела с наличием в объ36 еме 4–5 млрд спермиев с поступательным движением. Специалисты считают, что осеменение свиноматок спермой двух хряков повышает оплодотворяемость и плодовитость животных. В ПЗ ЗАО «Артезианское» (по нашим рекомендациям) ремонтных свинок осеменяют трижды в одну охоту: первый раз – утром сразу после выявления половой охоты свежеполученной разбавленной спермой хряка-производителя, второй – вечером (через 8 часов), третий – утром (через 12 часов). Важными процессами при искусственном осеменении является контроль за осемененными животными и при наличии у них повторной стадии полового возбуждения через 20–21 день, их осеменяют, как и в первую половую охоту. Анализ искусственного осеменения свиней позволяет отметить, что в СПК колхозе «Терновский» оплодотворяемость в одну стадию полового возбуждения составляет в хозяйстве 70–75 %. В ПЗ ЗАО «Артезианское» – 80–85 %. В год на одну свиноматку в СПК колхозе «Терновский» приходится в среднем 1,4 опороса. Таким образом, от одной свиноматки в хозяйстве получают 10,7 поросенка в год. В ЗАО ПЗ «Артезианское» – 2,1 опоросов, от одной свиноматки – 19,2 поросенка в год. В исследуемых хозяйствах отъем поросят поводят в 28 дней, так как после 30 дней молоко матери не усваивается. За 28 дней масса поросят 7–10 кг, иногда достигает 15 кг. Рентабельность свиноводства находится в прямой зависимости от цены реализации свинопоголовья. Если в 2008 г. рентабельность в СПК колхозе Терновский составляла 56 %, то рентабельность свинины в ЗАО «Артезианское» – 87,2 %. Интересными материалами, с нашей точки зрения, являются процессы получения спермы в исследуемых хозяйствах. Хряков-производителей начинают приучать к этому с 6 месяцев. Животных, закупаемых в других хозяйствах Российской Федерации в возрасте 5 месяцев, обязательно ставят на карантин сроком на один месяц. Перед взятием спермы хряков обязательно подвергают купанию и чистке с массажем семенников. За день до использования животных хорошо моют с хозяйственным мылом и щеткой. В 4 часа утра еще раз обрабатывают теплой водой с щеткой, дела37 ют массаж семенников при помощи и только после этого отправляют в стерильный манеж для получения спермы. После получения спермопродукции манеж тщательно обрабатывают дезинфицирующими средствами, для того чтобы избежать попадания инородной патогенной микрофлоры и дальнейшего заражения хряков-производителей. Для СПК колхоза «Терновский», Труновского района, характерным является получение спермы от хряков на чучело или свиноматку в охоте с помощью искусственной вагины. При получении спермы на свиноматку в охоте объем выделяемой спермы несколько выше, чем при получении на чучело, хотя первый способ несколько трудоемок. От хряков сперму получают в манеже пункта искусственного осеменения. Искусственная вагина фиксируется в руке техника по искусственному осеменению. В момент садки техник направляет половой член хряка в искусственную вагину. После нескольких глубоких совокупительных движений животное успокаивается и начинает выделять сперму. Хвост у него в это время закручивается кверху, семенники подтягиваются ближе к анальному отверстию, мошонка становится слабо напряженной и несколько отвисшей. После окончания эякуляции хряка удаляют из манежа. Из искусственной вагины извлекают спермоприемник, который передают в лабораторию для тщательной оценки спермы на пригодность к осеменению. В ЗАО ПЗ «Артезианское» сперму получают мануально, совершая массажные движения головки полового члена, при этом используется так называемая этажерка или лавка. Сперму собирают в специальную термосную кружку с вложенным в нее одноразовым пакетом с фильтром, через который не проходит гелеобразный секрет луковичных желез, но проходит богатая на спермии жидкая фракция. Содержимое кружки также направляется в лабораторию, где оно исследуется и, если сперма отвечает всем показателям, ее разбавляют и фасуют в полиэтиленовые флаконы для осеменения. В исследуемых хозяйствах сперму от хряков получают строго 1 раз в 3 дня, чтобы не перегружать животных. При этом качество спермы не изменяется. 38 В фермерских хозяйствах экономически не выгодно из-за небольшого количества свиноматок содержать хряка-производителя, так как в год на содержание одного хряка фермеру требуется в среднем 70 тыс. рублей. Сперму выгоднее закупать на племпредприятиях Ставропольского (ЗАО ПЗ «Артезианское») или Краснодарского края (ПЗ «Курганенский»). Стоимость одной дозы спермы с инструментами для искусственного осеменения в Ставропольском крае составляет 300 рублей, в Краснодарском – от 155 рублей до 240–250 рублей. Свиноматку рекомендуется осеменять двукратно, таким образом, на одну голову расходы составляют 310–600 рублей, что значительно выгоднее, чем содержание хряка-производителя. В индивидуальных хозяйствах искусственное осеменение проводится стихийно по мере обнаружения у свиней признаков стадии полового возбуждения. Осеменяют самок спермой хряков с племпредприятий или свиноводческих хозяйств. Эту работу проводят владельцы свиноматок, которые закупают инструменты и сперму в специализированных хозяйствах, там же им оказывается и консультативная помощь по искусственному осеменению. Надо признать, что индивидуальный сектор содержит большее число свиней, чем общественный, но работа по искусственному осеменению проводится по упрощенной схеме. Главное, что не учитывается наличие половой охоты у свиней, и они осеменяются по обнаружению общей реакции организма и течки. Поэтому результаты ниже, чем в общественном секторе. 39 БИОЛОГИЧЕСКИ АКТИВНАЯ ДОБАВКА ДЛЯ ПОВЫШЕНИЯ РЕЗИСТЕНТНОСТИ И ВОСПРОИЗВОДИТЕЛЬНОЙ ФУНКЦИИ ЖИВОТНЫХ В настоящее время для стимуляции воспроизводительной функции самцов и самок как при естественном, так и при искусственном осеменении применяется множество кормовых добавок различного происхождения. Многие препараты, используемые в этих целях, имеют химическую природу, что неблагоприятно сказывается на весь организм животных в целом. Поэтому нами была поставлена задача по созданию безопасной экологически чистой лиофилизированной биологически активной добавки на основе веществ природного происхождения. В качестве основных компонентов для приготовления биологически активной добавки мы использовали личинки трутней и плоды тыквы. Личинки трутней – отходы пчеловодства, биологическая активность которых по некоторым показателям даже выше, чем у маточного молочка. В состав личинок входят водо- и жирорастворимые витамины: витамин А, ксантофилл, витамин В2, никотиновая кислота, холин, витамин Д; микро- и макроэлементы: кальций, магний, натрий, марганец, медь, цинк. Протеины представлены преимущественно свободными заменимыми и незаменимыми аминокислотами. Благодаря такому набору веществ трутневое молочко способствует ускоренному восстановлению биохимических характеристик крови, выступает стимулятором центральных механизмов регуляции обмена веществ (Немцев С. В., Зуева О. Ю., Хисматуллин Р. Г., Хисматуллин М. Р., Лариков В. В., Варламов В. П., 2001; Машенков О. Н., 2005). 40 Этот продукт может регулировать деятельность центральной нервной системы, стимулировать общее состояние организма, повышать аппетит. Трутневое молочко обладает мощным оздоровительным действием, состоит из большого количества различных функциональных групп ферментов, сульфгидрильных групп. Оно насыщено гормонами, водо- и жирорастворимыми витаминами, в том числе витамины групп В, Е, Д, А, а также β-каротин, и не является гормонозаменителем. Это натуральное природное вещество содержит естественные тестостероиды, прогестерон и экстрадиол. Белки (протеины) представлены преимущественно свободными аминокислотами и легкоусвояемыми транспортными олигопептидами. В его состав также входит набор из 9 минеральных компонентов и 14 микроэлементов (табл. 1). Состав личинок трутней Вещество % Таблица 1 В 100 г личинок содержится мкг Жир 22,2 Кобальт 2,5 Белок 60,0 Магний 14 Гликоген 24,5 Медь 1 Азот 6,2 Молибден 4 Никель 7 Бор 4 Все заменимые и незаменимые аминокислоты, наибольшая доля мг % Аспарагиновая кислота 48,4 Глицин 49,1 Тирозин 52,9 Аргинин 26,1 Лизин 23,6 Пролин 21,4 41 Личиночное молочко по своему применению имеет широкую направленность, но в этой области не имеет себе равных. Гормоны, входящие в состав этого продукта, не только сами воздействуют на органы эндокринной системы, но и помогают их восстанавливать. Гомогенат восстанавливает обмен веществ и питание тканей, оказывает регулирующее действие на тонус сосудистой системы и уровень кровообращения, снижает уровень холестерина в крови, способствует ускоренному восстановлению биохимических и массометрических характеристик семенников и предстательной железы, являясь стимулятором центральных механизмов регуляции образования андрогенов, способствует восстановлению нарушенной половой функции и повышению полового влечения. Эффективен в комплексной терапии сердечнососудистых заболеваний, природный иммуномодулятор. Показанием к применению являются заболевания эндокринной системы (гипотиреоз), нарушение половой функции, простатиты, аденома предстательной железы, бесплодие самцов и самок, нарушение обмена веществ. Тыква (Cucurbita) – родовое название однолетних и многолетних растений семейства тыквенных. Плоды тыквы – ценнейший пищевой продукт питания, источник богатого набора биологически активных веществ. Они содержат полезные организму, достаточно хорошо усвояемые белки, пектин, углеводы, крахмал, органические кислоты, жиры, витамины, минеральные соли и другие вещества. По содержанию целебных веществ тыква превосходит многие другие овощи. В тыкве имеются сахара, каротин, витамины С, В1, В2, В5, В6, Е, РР и очень редкий витамин Т, способствующий ускорению обменных процессов в организме, свертыванию крови и образованию тромбоцитов, витамин К, необходимый для свертывания крови, жиры, белки, углеводы, целлюлоза, пектиновые вещества, минералы, в том числе калий, кальций, железо. Витамины С и А улучшают обмен веществ. Каротина в тыкве в пять раз больше, чем в моркови, и в три раза больше, чем в говяжьей печени. По этой причине офталь42 мологи рекомендуют людям с нарушениями зрения употреблять тыкву и тыквенный сок. Пектиновые вещества, обнаруженные в тыкве в большом количестве, способствуют выведению из организма токсических веществ и холестерина. Тыква положительно влияет на все биохимические процессы в печени, очистительно действует на организм (удаляет из крови холестерин, паразитов и другие токсичные вещества), улучшает обмен веществ, улучшает функцию сердечно-сосудистой системы (табл. 2). Таблица 2 Содержание витаминов и химических элементов в тыкве Сухое вещество 11,9–13,2 % Общий сахар 7,7–8,1 % Соли тяжелых металлов Не обнаружено Макроэлементы мг Калий 170 Кальций 40 Магний 14 Натрий 14 Фосфор 25 Витамины Каротин мг Микроэлементы мкг 1,5–7,1 Железо 800 Витамин В1 0,05 Кобальт 1 Витамин В2 0,06 Марганец Витамин В5 0,4 Медь Витамин В6 0,13 Молибден 1 Витамин ВС 14,9 Фтор 18 Витамин С 8–15 Цинк 18 Витамин РР 0,5 Свинец 114 170–370 0,025 43 Эффективно применение тыквы для повышения воспроизводительной функции, улучшения пищеварения, улучшения состава крови при анемиях, малокровии, истощении, после тяжелых заболеваниях и хирургических операций. Нормализует работу эндокринных желез. Личинок трутней специально выращивали до 9–10-дневного возраста в период бурного развития пчелиных семей. Рамки с трутневым расплодом извлекали из семей. Ножом для распечатки сотов срезали выпуклые восковые крышечки и выбивали на противень. Затем полученный материал (личинки + трутневое молочко) собирали в стерильные пластмассовые или стеклянные емкости, укупоривали их и замораживали при –18 °С и хранили до использования 2–3 месяца. Перед использованием их размораживали до +17 °С в микроволновой печи в течение 9 минут и гомогенизировали в блендере 1 минуту при 3-х тыс. оборотов. Зрелую тыкву собирали, мыли, обдавали крутым водным кипятком, очищали от кожуры, резали на мелкие кусочки, замораживали при –20 °С в течение 24 часов, затем размораживали в микроволновой печи до +17 °С в течение 11 мин и гомогенизировали в блендере 1 минуту при 3-х тыс. оборотов до образования однородной массы (размер частиц 0,5–1,0 мм). Гомогенат личинок трутней, тыквы и дистиллированную воду соединяли в соотношении 1:4:5, разливали в 100 мл стерильные флаконы по 50 мл и подвергали лиофилизации. Общее время сушки составляло 94 часа. После окончания сушки флаконы с препаратом укупоривали пробками и обкатывали колпачками. Полученный препарат представляет собой рыхлую коричневого цвета массу, которая растворяется в воде. Он выдерживает установленный срок хранения – 2 года. При использовании дает высокий ожидаемый эффект повышения резистентности и воспроизводительной функции. 44 ОЦЕНКА ОБЩЕЙ ТОКСИЧНОСТИ И БЕЗВРЕДНОСТИ ЛИОФИЛИЗИРОВАННОЙ БАД Токсичность – один из важнейших факторов, определяющих качество препаратов, достаточно информационной, дающей существенное представление о степени опасности или безвредности препаратов при их использовании. Токсичность определяет круг нарушений жизненных проявлений, возникающих при действии различных веществ, которые присутствуют в препарате в концентрациях, превышающих критическое значение. Биологический критерий токсичности является основой методологии в токсикологии. К числу наиболее радикальных методов для оценки токсичности относится применение методов биотестирования с помощью чувствительных тест-организмов. Методика, применяемая нами, основана на определении острой токсичности нашей БАД по реакции инфузорий на внешнее воздействие с исследованием в качестве тест-объекта инфузорий Paramecium caudatum. Данный метод определения общей токсичности водных вытяжек и растворов основан на способности инфузорий реагировать на присутствие в водных вытяжках веществ, представляющих опасность для жизнедеятельности, и направлено перемещаться по градиенту концентраций их веществ (хемотоксическая реакция), избегая их вредного воздействия. Критерием токсического действия в данном случае является значимое различие в числе клеток инфузорий, наблюдаемых в верхней зоне кюветы в пробе, не содержащей токсических веществ (контроль), по сравнению с этим показателем, наблюдаемым в исследуемой пробе (опыт). Определение степени опасности биологически активной добавки осуществляли по следующей методике. Добавку перед исследо45 ванием разводили дистиллированной водой. Отбор проб проводили в соответствии с ГОСТ 17.4.3.01-83. Параметры проведенной реакции инфузорий определяли с помощью прибора «Биотестер». В кювету аппарата «Биотестер» вносили 2,0 см3 взвеси инфузорий в рабочей концентрации, к ней добавляли 0,35 см 3–5 % раствора ПВС, тщательно перемешивали, увлажняя стенки кюветы. Затем в кювету 1 наслаивали 1,6 см растворов БАД на дистиллированной воде (1:10), не допуская перемешивания с нижним слоем. В контрольную кювету вместо используемой жидкости вносили 1,6 см3 дистиллированной воды. Через 30 минут последовательно производили определение концентрации инфузорий в верхней зоне кюветы в контрольной и опытной пробе. Подготовленные кюветы последовательно помещали в кюветный модуль аппарата «Биотестер» и снимали показатели прибора. Оценку общей токсичности пробы лиофилизированной БАД проводили по относительной разнице количества клеток в верхних зонах кюветов в контрольной и анализируемой пробах. Индекс токсичности определяли по формуле: I ср. контроль – I ср. опыт Т = ––––––––––––––––––––––––– , I ср. контроль где Т – индекс токсичности; I ср. контроль и I ср. опыт – средние показания прибора для контрольных и анализируемых проб. Полученные результаты представлены в таблице 3. Таблица 3 Степень токсичности проб лиофилизированной БАД 46 № п/п Тип пробы Средние показатели Токсичность, Т 1 Контроль 89,42 Не токсична 2 Опыт 71,23 Допустимая Из данных таблицы следует, что пробы содержат безопасные, но привлекательные для инфузорий вещества. В то же время при формальном расчете получены отрицательные значения индекса токсичности Т, что свидетельствует об отсутствии токсичности пробы, а значения могут быть оценены как нулевые. Таким образом, опытная проба лиофилизированной БАД не токсична по отношению к инфузориям Paramecium caudatum при определении на приборе серии «Биотестер». Кроме этого, токсичность лиофилизированной БАД мы определяли на белых мышах. Для этого животным однократно вводили внутрь исследуемый образец в различных дозах: 50, 200, 1000 и 5000 мг/кг, а в качестве контроля использовали физиологический раствор в тех же дозах. В результате исследований случаев гибели животных не было установлено, значит, испытуемый препарат не токсичен. Безвредность препарата проверяли на лабораторных животных. Для этого белым лабораторным мышам подкожно вводили 0,5 мл взвеси биологически активной добавки и вели наблюдение за их общим состоянием в течение двух недель. У мышей, которым вводили исследуемый образец, видимых патологических отклонений не обнаружено. Исходя из этого образец можно считать безвредными. Анализируя результаты исследований, нами установлено, что испытуемый препарат не токсичен и безвреден. Полученная лиофилизированная биологически активная добавка – это рыхлая светло-коричневого цвета масса, легко растворяющаяся в воде, безвредная и не токсичная. 47 ХИМИЧЕСКИЙ СОСТАВ ЛИОФИЛИЗИРОВАННОЙ БАД Нами был проведен химический анализ готовой лиофилизированной биологически активной добавки для повышения резистентности и воспроизводительной функции животных. Полученные результаты приведены в таблице 4. Таблица 4 Основные показатели состава БАД Показатель Аминокислоты (общая сумма), г/кг в т. ч. незаменимые: аргинин фенилаланин лизин гистидин треонин лейцин изолейцин валин метионин Заменимые: глутаминовая тирозин серин аспаргиновая аланин глицин 48 Содержание 64,92 7,52 5,85 4,88 4,58 3,75 3,71 3,37 3,12 3,12 7,28 5,70 3,33 3,21 3,20 2,31 Продолжение Показатель Сахар, г Минеральные вещества, мг/кг: кальций селен медь марганец цинк Витамины, мг А Е В5 В12 Содержание 2,6 252,0 27,0 2,5 2,3 1,9 27,3 54,94 12,4 1,2 Важным в полученной нами биологически активной добавке, особенно для свиней, является то, что она содержит 9 из 10 незаменимых аминокислот: аргинин, фенилаланин, лизин, гистидин, треонин, лейцин, изолейцин, валин, метионин. Сумма этих аминокислот составляет 3,9 мг или 61,5 % от общего числа аминокислот, содержащихся в БАД. Как известно, в организме свиней не синтезируются вышеперечисленные аминокислоты, поэтому эти животные должны получать их с кормом. Аминокислота – незаменимая структурная единица белка всех органов и тканей живого организма. Без них невозможен рост и эффективное функционирование организма, так как все аминокислоты обладают специфическими функциями. Аминокислоты входят в состав выделений желез внешней и внутренней секреции (особенно гормонов), ферментов и других регуляторов обмена веществ; содействуют регуляции осмотического давления и реактивных особенностей клеток и тканей, регулированию водного баланса организма; являются средством для перемещения (функция переноса) многочисленных групп веществ: липидов, гормонов, минеральных веществ, витаминов, шлаков обмена веществ и т. д. (Crasemann Е., 1955). 49 Для питания растущих свиней существенно необходимы аминокислоты, лизин, триптофан, фенилаланин, лейцин, изолейцин, треонин, метионин и валин (Неринг К., 1961; Попов И. С., 1962, Градусов Ю. Н., 1968). Кроме того, такие аминокислоты, как аргинин и гистидин, хотя и могут синтезироваться в организме свиньи, тем не менее синтез их не покрывает потребностей организма, особенно при быстром росте животного. Потребность в аргинине, например, за счет собственного синтеза в организме свиньи покрывается только в размере 60 % (Наумов П. А., 1960). Аргинин стимулирует работу иммунной системы и соматотропного гормона (гормона роста), делает животных более активными и выносливыми, улучшает половую функцию (О. Н. Машенков, 2003), необходим для спермиогенеза (протамин спермиев на 80 % состоит из аргинина). Фенилаланин необходим для построения гормонов тироксина и адреналина, пигментообразования и кроветворения. Лизин оказывает противовирусное действие, поддерживает уровень энергии и сохраняет здоровым сердце, участвует в формировании коллагена, улучшает усвоение кальция из крови и транспорт его в костную ткань, участвует в производстве гормонов (Прохода И. А., 2006). Также лизин необходим для синтеза гемоглобина, повышения молочной продуктивности свиноматок, поддержания полового цикла, является составной частью белковых веществ в спермиях. Гистидин входит в состав множества ферментов. Она является одной из «существенных» аминокислот, способствует росту и восстановлению тканей. В большом количестве содержится в гемоглобине. Лейцин необходим для построения плазматических и тканевых белков. Изолейцин участвует в энергетическом обмене. Метионин способствует росту тела и волоса, препятствует сгоранию белковых веществ, участвует в образовании глобина, обладает липотропным действием (Гевлич О. А., 2009; Хохрин С. Н., 2004). Глутаминовая кислота способствует поддержанию кислотнощелочного баланса (Машенков О. Н., 2003). 50 Серин участвует в метаболизме жиров, выработке антител. Валин способствует нормализации функции нервной системы (А. П. Дмитроченко,1962). Качественная характеристика минерального состава кормовой добавки показала, что в ней содержатся: кальций, фосфор, натрий, калий, сера, селен, медь, марганец, цинк, железо. Существенная доля минерального состава приходится на кальций, селен, медь, марганец, цинк, содержание которых приведено в таблице 4. Минеральные соли присутствуют в составе тканей животного организма, крови, тканевых жидкостях, костной ткани, ферментах, гормонах. Они принимают участие в регенерации тканей кожного покрова, в регуляции мышечного тонуса (Н. З. Злыднев и др., 2003; Трухачев В. И., 2006). Важнейшей функцией кальция в организме является его связь с белком и участие в образовании костной ткани. Он участвует в регуляции проницаемости клеток и в свертывании крови. Ионы кальция регулируют мышечную и нервную деятельность, они оказывают активное действие на аденезинтрифосфатазу мышц. Кальций активно участвует в поддержании кислотно-щелочного равновесия в организме. Марганец в организме животных принимает активное участие в окислительно-восстановительных процессах, тканевом дыхании, костеобразовании, оказывает влияние на рост, размножение, кроветворение, функцию эндокринных органов и противодействует жировой дегенерации печени (Макарцев Н. Г., 2007). Цинк играет важную роль в реализации гормональных функций организма, обладает ранозаживляющим действием, снимает отечность, покраснение кожи (Прохода И. А., 2006). Селен обладает высокой биохимической активностью и по своему влиянию на организм близок к витамину Е. Селен воздействует на процессы тканевого дыхания, регулируя скорость течения окислительно-восстановительных реакций, повышает иммунобиологическую реактивность организма, регулирует усвоение и расход витаминов А, С, Е, К. Он также влияет на белковый обмен, в частности на обмен серосодержащих аминокислот. Медь участвует в гемопоэзе и способствует образованию гемоглобина в присутствии желе51 за. Она необходима для нормального развития скелета и повышения мясной продуктивности. Участвуя в ряде ферментативных процессов, медь значительно влияет на обмен в организме углеводов, липидов, белков и минеральных веществ. Медь оказывает влияние на активность половых гормонов, обмен витаминов и функциональное состояние эндокринной и нервной систем (Богданов Г. А., 2005). Витамины – группа специфических действующих высокоактивных органических веществ, преимущественно растительного происхождения, которые оказывают регулирующее влияние на процессы метаболизма и физиологические функции организма. Так, лиофилизированная биологически активная добавка содержит 54,94 мг/кг витамина Е (токоферола). Токоферол участвует в разнообразных биологических процессах. Он обладает анти окислительными свойствами, способствует усвоению и сохранению витамина А и каротина в организме животного. Защищает от окисления легкоокисляющиеся вещества в корме, пищеварительном тракте и участвует в процессах эндогенного обмена веществ, препятствуя образованию ядовитых продуктов пероксидации ненасыщенных жирных кислот. Необходим для функции размножения, способствует сохранению целостности мембран клеток, нормализует процессы клеточного дыхания. В состав БАД входят такие водорастворимые витамины, как В 5 и В12. Витамин В 5 (РР, никотиновая кислота) является частью комплексной ферментной системы, осуществляющей передачу водорода в живой клетке. Она регулирует окислительно-восстановительные процессы, обмен углеводов, жиров, контролирует нервную, сердечно-сосудистую и пищеварительную системы. Витамин B 12 (цианкобаламин) участвует в многообразных жизненных процессах – кроветворении, синтезе нуклеиновых кислот и аминокислот, в обмене жира и углеводов, образовании холина и стимулировании ресинтеза метионина в организме. Витамин B 12 является незаменимым фактором роста и репродукции животных (Макарцев Н. Г., 2007). Таким образом, лиофилизированная биологически активная добавка является ценной добавкой животных, так как содержит 52 незаменимые аминокислоты (фенилаланин, лизин, лейцин, аргинин, валин, изолейцин, треонин, гистидин, метионин) и заменимые аминокислоты (глутаминовая, аспаргиновая, аланин, тирозин, глицин, серин), макро- и микроэлементы (кальций, селен, медь, марганец, цинк) и витамины (Е, В 5, В12). ПРИМЕНЕНИЕ ЛИОФИЛИЗИРОВАННОЙ БИОЛОГИЧЕСКИ АКТИВНОЙ ДОБАВКИ ДЛЯ КРОЛИКОВ Прежде чем применять лиофилизированную БАД на продуктивных животных, необходимо было испытать ее на лабораторных, которые более чувствительны к различного рода отравлениям, инвазиям, инфекциям. Они также являются моделью для изучения гистологических, гематологических, иммунологических показателей при применении биологически активной добавки. В связи с этим данный раздел посвящен изучению действия БАД на организм лабораторных кроликов. Для опыта нами было отобрано 20 здоровых кроликов и сформировано 4 группы аналогов (Викторов П. И., 1991) (I и II группы – самцы, III и IV – самки). Животные II и IV контрольных групп получали зерносмесь, корнеклубнеплоды и бахчевые (морковь, свекла), сено. I и III подопытным группам лиофилизированную БАД добавляли в корм в жидком виде. Кровь является одним из основных интерьерных показателей организма животных, так как она отражает общее состояние организма, его физиологический статус, что связанно с регулированием жизненных функций и условиями существования между организмом и тканями (Тимофеев Л., Шкатова Н., 2002; Погодаев В. А., 2000; Петров В., Федяев, 2001 и др.). Она связующее звено процессов в период роста и развития, а также отражает уровень продуктивности и резистентности животных (Максимов Г. В., 1995, Гамко Л. Н., Подольников В. Е., Уфимцев Д. К., 2008). В этой связи для характеристики напряженности обмена веществ, анализа влияния биотехнологических стимуляций был изучен морфологический состав крови кроликов, которым скармливали БАД. 54 Результаты исследований морфологического состава крови кроликов приведены в таблице 5. Анализ таблицы позволяет отметить, что лиофилизированная биологически активная добавка вызывает у подопытных кроликов увеличение эритроцитов по сравнению с животными контрольных групп на 0,7±0,16 и 0,8±0,16 10¹²/л, или 1,28 и 1,45 %, гемоглобина – на 9,1±0,77 и 10,3±0,79 г/л, или 10,9 и 12,17 %. До начала скармливания препарата у кроликов контрольных и подопытных групп по содержанию в крови эритроцитов и гемоглобина существенных различий не наблюдалось, так как содержались животные в одинаковых условиях и в данный возрастной период не подвергались дополнительным воздействиям для стимуляции. Однако количество эритроцитов и гемоглобина у подопытных животных во все изучаемые периоды скармливания препарата находилось в пределах физиологической нормы и не претерпело значительных изменений. Повышение содержания форменных элементов крови у кроликов I и III групп по сравнению с животными контрольных групп свидетельствует о более интенсивном протекании окислительно-восстановительных процессов в их организме, связанных с дополнительной стимуляцией БАД. Применение биологически активной добавки не сказалось отрицательно на морфологические показатели крови кроликов. Напротив, удалось существенно превзойти показатели эритроцитов и гемоглобина у этих животных. Повышение содержания гемоглобина в крови кроликов, повидимому, связано с интенсивностью процессов метаболизма, происходящих в организме подопытных животных. Кроме того, как известно, увеличение в крови гемоглобина способствует поступлению к тканям кислорода и повышает процессы обновления отдельных структур и тканей организма (М. Хозиев А., 2004). Изучая влияние лиофилизированной БАД на белок и белковые фракции крови кроликов, получили следующие результаты (табл. 6). 55 56 Примечание: * р≤0,05. Эритроциты, 10¹²/л Гемоглобин, г/л Эритроциты, 10¹²/л Гемоглобин, г/л Эритроциты, 10¹²/л Гемоглобин, г/л Эритроциты, 10¹²/л Гемоглобин, г/л Показатель Через 3 недели Через 2 недели Через 1 неделю До опыта Взятие крови 5,4±0,21 * 83,3±1,01 * 5,0±0,12 * 82,6±1,01 * 4,8±0,09 75,0±1,1 4,6±0,13 73,9±1,03 I подопытная 4,7±0,11 74,2±0,54 4,5±0,09 74,0±1,12 4,6±0,13 74,2±0,95 4,5±0,11 74,0±1,13 II контрольная 5,5±0,21 * 84,6±0,55 * 5,2±0,11 * 83,3±1,1 * 5,0±0,11 75,6±1,03 4,6±0,15 73,3±0,93 III подопытная Группа Гематологические показатели крови кроликов при применении лиофилизированной БАД (n=5) 4,7±0,11 74,3±1,04 4,6±0,13 74,3±1,13 4,7±0,12 74,4±1,05 4,6±0,13 73,2±0,98 IV контрольная Таблица 5 57 20,23±0,11 * 6,42±0,33 Глобулины: α-глобулины γ-глобулины 30,72±0,26 Альбумины 6,13±0,23 65,35±1,27 Общий белок β-глобулины 18,62±0,10 γ-глобулины Через 1 неделю 5,42±0,23 β-глобулины 6,13±0,24 Глобулины: α-глобулины До опыта 29,41±0,26 Альбумины I подопытная 63,72±1,28 Взятие крови Общий белок Показатель, г/л 19,01±0,13 5,57±0,21 6,05±0,21 30,03±0,24 64,16±0,54 19,13±0,12 5,62±0,24 6,04±0,22 30,91±0,24 64,03±0,32 II контрольная 20,43±0,10 * 6,24±0,22 6,44±0,31 31,21±0,23 65,42±0,58 18,63±0,11 5,27±0,22 6,23±0,23 29,06±0,23 64,14±0,93 III подопытная Группа Таблица 6 19,200,12 6,01±0,21 6,23±0,22 29,61±0,19 63,64±1,03 20,21±0,10 6,06±0,24 6,23±0,23 29,55±0,19 63,53±1,11 IV контрольная Содержание белка и белковых фракций в сыворотке крови кроликов при применении лиофилизированной БАД (n=5) 58 Примечание: * р≤0,05. 25,43±0,11 * 9,35±0,33 * Глобулины: α-глобулины γ-глобулины 34,56±0,24 * Альбумины 6,63±0,24 * 69,45±1,22 * Общий белок β-глобулины 22,43±0,11 * γ-глобулины Через 3 недели 6,23±0,22 β-глобулины 8,32±0,34 Глобулины: α-глобулины Через 2 недели 32,56±0,24 Альбумины I подопытная 67,45±1,22 * Взятие крови Общий белок Показатель, г/л 17,02±0,12 5,34±0,21 6,12±0,31 29,56±0,27 64,26±0,54 19,02±0,12 5,32±0,22 6,03±0,31 30,04±0,22 64,26±0,55 II контрольная 24,43±0,10 * 6,75±0,24 * 9,82±0,32 * 34,61±0,21 * 69,42±0,55 * 22,43±0,10 * 6,74±0,22 9,42±0,32 * 33,11±0,20 * 64,42±0,55 III подопытная Группа 19,17±0,12 6,12±0,21 6,03±0,24 29,51±0,11 64,23±1,04 19,19±0,12 6,11±0,22 6,13±0,24 29,51±0,14 63,64±1,02 IV контрольная Продолжение Количество общего белка у животных в подопытных группах превышало количество общего белка у животных контрольной группы на 5,19 и 5,19 г/л, или на 7,5 и 7,4 % (p≤0,05), соответственно. Кроме того, включение в рацион животных лиофилизированной БАД оказало положительное влияние и на изменение белковых фракций в сыворотке крови. К концу опыта содержание альбуминов в сыворотке крови подопытных групп превышало содержание их у контрольных животных на 5,0 и 5,1 г/л, или 15,2 и 15,3 % (p≤0,05) соответственно, а увеличение глобулинов происходило за счет γ-глобулиновой фракции на 8,41 и 5,26 г/л, или на 33,1 и 21,5 % (p≤0,05). Увеличилось содержание α-глобулинов на 3,23 и 3,79 г/л, или 24,9 и 24,2 % (p≤0,05), соответственно, β-глобулинов на 1,29 (p≤0,05) и 0,63 г/л соответственно. Таким образом, при использовании лиофилизированной БАД в указанных дозах повышается неспецифическая резистентность организма кроликов. Показатели резистентности отражают физиологическое состояние организма животных на воздействие того или иного фактора. Полученные результаты показали, что животные I и III групп, по сравнению с аналогами контрольной группы имели более высокие показатели естественной резистентности, а следовательно, и более устойчивый иммунный статус. Включение БАД к корму кроликов способствовало повышению показателей естественной резистентности. Защитная реакция более интенсивной стала к концу опыта. Так, по сравнению с контролем кролики I и III групп имели большие показатели лизоцимной активности на 1,75 и 2,91 %; бактерицидной активности на 3,19 и 2,19 % (табл. 7). Следовательно, кролики, выращенные с применением БАД, более устойчивы к воздействию неблагоприятных факторов внешней среды, условиям промышленной технологии и способны в связи с этим к более эффективному использованию. В целях изучения влияния БАД на качество потомства в контрольной и опытной группах осеменили по 5 самок. От крольчих указанных групп было получено на 4,4 крольчонка больше, чем в контрольной группе (табл. 8). 59 60 Примечание: * р≤0,05. Лизоцимная активность Бактерицидная активность Лизоцимная активность Бактерицидная активность Лизоцимная активность Бактерицидная активность Лизоцимная активность Бактерицидная активность Показатель, % Через 3 недели Через 2 недели Через 1 неделю До опыта Взятие крови 39,56±0,44 * 59,45±0,32 * 38,56±0,49 * 58,45±0,22 * 37,72±0,67 57,35±0,72 37,41±0,66 56,72±0,38 I подопытная 37,56±0,27 56,26±0,54 38,04±0,42 56,26±0,55 38,03±0,44 56,16±0,54 37,91±0,24 56,03±0,44 II контрольная Таблица 7 40,61±0,81 * 58,42±0,55 39,11±1,20 * 57,42±0,55 38,21±0,53 56,42±0,58 38,06±0,23 55,14±0,43 36,51±0,11 56,23±1,04 36,51±0,14 56,54±1,02 37,61±0,49 56,64±0,30 37,55±0,59 56,53±0,31 III подопытная IV контрольная Группа Показатели неспецифической резистентности кроликов при применении лиофилизированной БАД (n=5) Оплодотворяемость и плодовитость крольчих при скармливании БАД Показатель Таблица 8 Группы I II Осеменено самок, гол. 5 5 Роды, гол. 5 5 Многоплодие, гол/самку 11,8 7,4 Получено крольчат, гол. 59 37 Количество крольчат в 1 мес 55 33 Таким образом, из данных таблицы видно, что, по-видимому, БАД влияет не только на качество крови, но и оказывает положительное влияние на воспроизводительные способности животных. 61 ГИСТОЛОГИЧЕСКИЕ ПОКАЗАТЕЛИ СЕМЕННИКА И ЕГО ПРИДАТКА КОНТРОЛЬНОЙ ГРУППЫ САМЦОВ КРОЛИКОВ Общий план микроскопического строения семенника и придатков семенника во всех наблюдениях единообразен и не противоречит имеющимся литературным данным. В семеннике извитые канальцы имеют в основном округлые формы, встречаются также овальные формы и формы различной геометрической формы, что подтверждает их извитой характер. На периферии среза семенника канальцы расположены более рыхло по отношению друг к другу. В области средостения семенника канальца очень плотно прилежат друг к другу, так что между ними не просматриваются просветы. Между канальцами проходят прослойки, состоящие из рыхлой соединительной ткани. Волокна короткие, малоизвитые. Клеточный состав ткани представлен в основном фиброцитами, но встречаются и фибробласты. В соединительной ткани просматривается большое количество кровеносных сосудов, как микроциркуляторного русла, так и более крупных вен и артерий, что говорит о высокой васкуляризации семенников. Стенка канальца представлена базальной мембраной, на которой располагается сперматогенный эпителий, состоящий из нескольких слоев формирующихся половых клеток, которые располагаются правильными концентрическими слоями, в соответствии с нормальным строением сперматогенного эпителия. Между формирующимися половыми клетками располагаются сустеноциты. В придатках семенника выносящие канальца, как и извитые канальца, имеют разнообразную форму от округлой до овальной. Между канальцами проходит большое количество рыхлой сое62 динительной ткани, что приводит к значительному отодвиганию выносящих канальцев относительно друг друга. Слизистая оболочка канальцев имеет небольшие складки, состоит из высокопризматических клеток двух видов – реснитчатых и безреснитчатых. Мышечная оболочка представлена 2–5 слоями гладкомышечных клеток. Проток придатка имеет равномерную толщину, состоит из призматических клеток, лежащих в два ряда. В просвете протока просматриваются большие скопления сформированных спермиев. Также при микроскопическом исследовании контрольной группы семенников и придатков семенников были выявлены в большом количестве патологические изменения, проявляющиеся деструктивно-дегенеративными процессами, приводящие к некротическим изменениям в органе и служащие причиной бесплодия кроликов. Основной причиной развития патологических процессов является нарушение необходимых отношений герминативных и эндокринных структур. При микроскопическом исследовании отчетливо выявляются сосудистые расстройства, проявляющиеся как в мелких, так и в крупных кровеносных сосудах явлениями гиперемии и стазом крови. В некоторых крупных сосудах просматриваются явления сладжирования эритроцитов и образования пристеночных или обтурирующих тромбов. В области средостения семенника и по периферии встречаются сосуды с частичным некрозом стенки. Повсеместно при микроскопии наблюдаются явления диапедеза эритроцитов. В некоторых микроскопических препаратах в области средостения и на периферии семенника наблюдается картина тотального некроза извитых канальцев с явлениями частичной склеротизации канальцев за счет разрастания пучков соединительной ткани. Интерстициальная ткань в местах сохранившихся канальцев находится в состоянии серозного отека – волокна разволокнены, имеют вид тонких порванных, отодвинутых далеко относительно друг друга волокон. Между волокнами просматривается слабооксифильная полупрозрачная масса. Среди волокон просматриваются скопления интерстициальных эндокриноцитов. В некото63 рых клетках ядра гиперхромны, пикнотизировны и локализованы в клетках произвольным образом. Встречаются единичные бластные формы интерстициальных эндокриноцитов и соединительнотканных клеток. В центральных частях семенника извитые канальца просматриваются, в них также происходят явления деструктивнодегенеративных процессов. Встречаются канальца как целые, так и с гомогенезированной или разрушенной базальной мембраной. Стенки семенных канальцев несколько утолщены за счет развития коллагеновых волокон из-за явлений интратубулярного склероза. Имеются канальца полностью запустевшие или с атрофированной эпителиальной выстилкой до стадии сперматогоний, спавшейся оболочкой, за счет чего их диаметр заметно уменьшен. Кроме того, во многих канальцах имеются кистоподобные расширения, неправильной формы, заполненные прозрачной оксифильной массой. В местах, где канальцевая структура сохранилась, происходят изменения в сперматогенном эпителии. Наблюдаются картины десквамации сперматогенных элементов в просвет канальца и образования детрита, признаки дегенерации половых клеток (пикноз, лизис ядер, вакуолизация цитоплазмы). В просвете семенных канальцев отсутствуют сперматиды и спермии. При большом увеличении просматривается разрыхление сперматогенного эпителия и образования «белковых шаров» из плазмы эпителия. В результате дезинтеграции сперматогенных элементов происходит обнажение сустеноцитов (опустошение цитоплазматических ячеек боковых стенок вследствие чего их отростки располагаются свободно в просвете канальца), в которых происходят дистрофические процессы, проявляющиеся вакуолизацией цитоплазмы. В некоторых канальцах обнаруживаются эритроциты, полиморфоноклеточные лейкоциты (нейтрофилы, моноциты, лимфоциты). Особенностью при изучении микроскопического строения канальцев семенника стало наличие в канальцах до 50 % гигант64 ских клеток, причем их в канальцах от 1 до 3. Они шаровидной формы, имеют 3–6 ядер, оксифильную цитоплазму. В придатках семенников обнаруживаются также деструктивнодегенеративные процессы. Отчетливо выявляются сосудистые расстройства. Кровеносные сосуды гиперемированы. Микроциркуляторное русло в спазмированном состоянии, расширены и переполнены кровью с явлениями агрегации эритроцитов, стазом крови. Встречаются крупные сосуды с тотальным некрозом стенки. Интерстициальная ткань в состоянии отека, местами гомогенезирована. В протоке придатка наблюдается склеротизация интерстициальной ткани. В ней просматриваются форменные элементы крови. В выносящих канальцах придатков выявляются картины некроза и частичной десквамации эпителия в просвет канальца с образованием клеточного детрита, признаки дегенерации эпителия (вакуолизация цитоплазмы). Совместно с клеточным детритом выявляются «белковые шары» и скопления спермиев. Кроме перечисленных элементов в выносящих канальцах и протоке придатка семенника имеются эритроциты и полиморфно-клеточные лейкоциты (лимфоциты, моноциты), единичные плазматические клетки и, как и в извитых канальцах семенника, гигантские многоядерные клетки. В срезах протока придатка встречается гомогенная оксифильная непрозрачная масса, оттесняющая спермии к периферии. Также в эпителии протока придатка просматриваются кистообразные расширения, что указывает на дистрофические изменения. В протоке имеется незначительное содержание спермиев, при большом увеличении хорошо просматривается значительное количество патологических форм спермиев. Они имеют сплющенную головку, часто встречаются головки без хвостиков. Спермии лежат в виде небольших кучек совместно с клеточным детритом. Встречаются спермии на стадии карио- и циторексиса. Таким образом, комплекс процессов патоморфологических изменений, отмеченных в изучаемых органах, характерен при развитии воспалительной реакции. Обнаруженные изменения сосу65 дистых стенок, интенсивное кровенаполнение капиллярных сетей с нарушением реологических свойств крови проявилось в виде капилляростазов, на фоне внутрисосудистой агрегации эритроцитов. Сладжирование крови и образование тромбов приводит к формированию стойких препятствий для кровотока, нарушению транскапиллярного обмена, гипоксии тканей и повышению сосудистой проницаемости. Последний феномен подтверждался развитием отека, а также выходом форменных элементов крови в перивазальную ткань. Все это отрицательно сказывается на функционировании органов. Наиболее чувствительными оказываются сперматиды и сустеноциты семенников. Сперматогонии более устойчивы и погибают лишь при полной отслойке сперматогенного эпителия. Учитывая важную роль сустеноцитов в процессах сперматогенеза, можно полагать, что их поражение является одним их главных звеньев олиго- или даже аспермии. Однако все патоморфологические изменения в тканях семенников больше обусловлены разрушением структур гематотестикулярного барьера, идущих повсеместно. В связи с отеком, гипоксией тканей семенников страдают интерстициальные эндокриноциты. Это приводит к нарушениям гормонобразующей функции эндокриноцитов, а недостаток тестостерона сказывается на процессах спермиогенеза. Следовательно, происходит комплекс изменений не только отдельных клеток, но и всех тканей семенников и придатков, что приводит, в конечном итоге, к развитию бесплодия. В ходе эксперимента выявлялись многоядерные клетки. Как указывает Ю. В. Иванов, (1989), эти изменения возникают в результате нарушения клонально-синтициального принципа организации развивающихся половых клеток и являются одним из критериев гипоксического повреждения сперматогенного пласта. Полученные результаты патоморфологических изменений в репродуктивной системе самцов, в частности семенников и придатков семенников, позволяют сделать выводы, что изменения микроскопического строения органов характерны для альтеративного паренхиматозного орхита и эпидидимита с выраженными дегенеративно-некротическими процессами. 66 ГИСТОЛОГИЧЕСКИЕ ПОКАЗАТЕЛИ СЕМЕННИКА И ЕГО ПРИДАТКА ПОДОПЫТНОЙ ГРУППЫ САМЦОВ КРОЛИКОВ При микроскопическом исследовании семенника после применения лиофилизированной биологически активной добавки было отмечено положительное действие препарата на репродуктивную функцию (эндокринную и генеративную структуры) семенников кроликов. Крупные кровеносные сосуды умеренно полнокровны, стенки сосудов без видимых патологических изменений. В микроциркуляторном русле остаются признаки гиперемии и стаза крови, при этом выхода форменных элементов крови в окружающие ткани не отмечается. Интерстициальная ткань семенника состоит из тонких пучков соединительной ткани. Волокна соединительной ткани тонкие, нежные, длинные, плотно прилежат друг к другу. В соединительной ткани преобладают фибробласты, фиброциты, вокруг базальной мембраны канальцев просматриваются гладкомышечные клетки. На периферии семенника наблюдаются единичные серозные отеки интерстициальной ткани. При микроскопическом исследовании канальцевой системы семенника выявлено, что морфологические характеристики семенного эпителия приближаются к норме. Сперматогенная функция семенников повышается, о чем свидетельствует увеличение размеров семенных канальцев. Отмечается плотное прилегание канальцев друг к другу, истончение прослоек интерстициальной ткани в которых обнаруживаются скопления светлых, активных овальных клеток, прилегающих к стенкам кровеносных капилляров – интерстициальных эндокриноцитов. В просвете изви67 тых канальцев отмечается пролиферация сперматогенного эпителия от 1-й до 4-й стадии сперматогенеза, демонстрируя разные промежуточные формы – от сперматогоний до сформированных спермиев. Генерации клеток сперматогенного эпителия расположены ярусами в виде пирамидальных или столбчатых структур. Малодифференцированные клетки сперматогонии, расположенные у самого основания сустеноцитов, активно делятся митозом, переходят в фазу роста, увеличивая количество сперматоцитов I порядка, образуя 2–3 яруса. В сперматоцитах отчетливо просматривается спирализация хромосом. В фазе созревания сперматоциты 2 порядка образуют также 2–3 яруса клеток. Сперматиды расположены в центре семенника и тесно связаны со сформировавшимися спермиями. Значительно чаще обнаруживаются канальца с наличием сформированных спермиев (из 5 канальцев в 3 просматривается полный сперматогенез). В придатке семенника наблюдается картина микроструктуры, присущая органу половозрелого животного. Кровеносные сосуды в придатке, как и в семеннике, умеренно кровенаполнены. В единичных сосудах наблюдается гиперемия. Интерстициальная ткань придатка семенника без существенных патологических изменений, в ней наблюдаются единичные небольшие серозные отеки вокруг гиперемированных сосудов. Выносящие канальца округло-овальной фестончатой формы. Плотно прилежат друг к другу. В канальцах просматривается призматический эпителий, причем отчетливо просматриваются реснитчатые и железистые клетки, которые секретируют белковый секрет (имеет вид слабооксифильной гомогенной массы, расположенной между реснитчатыми клетками). Проток придатка на срезе имеет вид огромных овальных канальцев. Канальцы имеют хорошо просматриваемую мышечную оболочку, состоящую из гладкомышечных клеток. Большинство канальцев забито спермиями, при большом увеличении просматривается контакт спермиев со стереоцилиями эпителия протока придатка. 68 Спермии в протоке придатка хорошо просматриваются, имеют слабобазофильную крупную головку и длинный хвостик. Таким образом, при исследовании семенников и придатков семенников у кроликов, получавших лиофилизированную БАД, значительно улучшились морфологические показатели. Снижение гиперемии крупных кровеносных сосудов привело к частичному восстановлению и снижению проницаемости стенки сосудов, что сказывается на нормализации реологических свойств крови и васкуляризации органов. На фоне восстановления кровообращения происходит снижение отечности тканей репродуктивной системы и, как следствие, отсутствие гипоксии тканей. В семенниках происходит активная репаративная регенерация с восстановлением утраченных интерстициальных эндокриноцитов, что способствует восстановлению гематотестикулярного барьера, повышению гормонпродуцирующей функции, восстановлению процессов сперматогенеза и способности к оплодотворению. Повышается генеративная функция семенников, феномен которой проявляется в пролиферации сперматогенного эпителия. В придатках семенников на фоне препарата повышается секреция железистых клеток, что способствует оптимальному разбавлению спермиев, обеспечению их трофическими веществами и покрытию гликокаликсом для длительного нахождения спермиев в половых путях самки. Положительное действие препарата выражено в увеличении количества общей массы и нормальных форм спермиев, присущих здоровому животному. Полученные результаты в целом свидетельтвуют о целесообразности использования лиофилизированной БАД животным в качестве гонадопротектора. 69 ПРИМЕНЕНИЕ БАД В РАЗЛИЧНЫХ ХОЗЯЙСТВАХ СТАВРОПОЛЬСКОГО КРАЯ И ЕЕ ВЛИЯНИЕ НА ВОСПРОИЗВОДИТЕЛЬНЫЕ КАЧЕСТВА СВИНОПОГОЛОВЬЯ В свиноводстве репродуктивные особенности имеют важнейшее значение с точки зрения воспроизводства и являются определяющим фактором эффективности ведения отрасли. Именно поэтому необходимо особое внимание уделять полноценному рациону хряков-производителей, сбалансированному по всем показателям в разные физиологические периоды их жизни (Гамко Л. и др., 2008; Н. Максимюк, 2005). Объективным показателем полноценного кормления животных является высокое качество спермы хряков. Именно поэтому мы уделили особое внимание изучению влияния БАВ на качество спермы хряков-производителей с анализом оплодотворяющей способности и качества потомства. Согласно методике проведения эксперимента хряки получали полноценное кормление, а также биологически активную добавку. Для I подопытной группы хряков-производителей БАД включали в корм в жидком виде. Количество животных при постановке на опыт было одинаковым по 10 для каждой группы (n=10) (I – опытная, II – контрольная) в возрасте 16–18 месяцев. В задачу очередного этапа исследований входило изучение показателей спермы хряков в подопытной и контрольной группах. Нами были проанализированы данные воспроизводительных качеств хряков и установлено положительное влияние дополнительной стимуляции БАД. В процессе проведения опыта были установлены следующие результаты (табл. 9). 70 71 Примечание: * р≤0,05. Концентрация, млн/мл Активность, 234±2,22 * 6,68±0,16 * 276±2,13 * Объем, мл Через 42 дня 220±2,49 * 6,13±0,15 * Концентрация, млн/мл Через 28 дней 232±1,44 * Объем, мл Активность, 219±3,22 * 5,71±0,12 * Концентрация, млн/мл Активность, 219±1,37 * Через 14 дней Объем, мл 5,23±0,11 212±1,34 I подопытная 206±2,41 До опыта Взятие спермы Концентрация, млн/мл Активность, балл Объем, мл Показатель Группа Качественные и количественные показатели спермы хряков-производителей (n=10) 210±2,25 5,21±0,15 219±2,42 211±2,26 5,19±0,10 211±2,05 207±2,01 5,29±0,11 210±1,41 205±3,02 5,21±0,14 209±1,24 II контрольная Таблица 9 Анализ данных спермопродукции (объем эякулята, активность, густота) показал, что у хряков подопытной группы объем эякулята к концу опыта был больше на 57±1,34 мл (p≤0,05), или на 20,65 %, чем у животных контрольной группы, активность спермиев превышала по сравнению с контрольной группой на 1,47±1,15 баллов, концентрация спермиев в 1 мл – на 24 млн или 10,26 %. Таким образом, установлено позитивное влияние БАД на качественные и количественные характеристики спермопродукции. Применение указанной добавки дает основание предполагать о ее влиянии на интенсивный рост обмена веществ за счет дополнительно полученных витаминов, микроэлементов, аминокислот и др., что оказывает позитивное действие на сперматогенез и количество спермы. В СХПК «Россия», Новоалександровского района, Ставропольского края, мы проводили опыты по изучению влияния лиофилизированной биологически активной добавки на воспроизводительную функцию хряков-производителей и свиноматок. Для опыта нами было отобрано 40 голов свиней 18-месячного возраста и по принципу аналогов сформировано 4 группы животных. Хряки-производители и свиноматки контрольной группы получали полноценный рацион, сбалансированный по всем необходимым показателям. В рацион входили кормосмесь, корнеплоды, зеленая трава, молочная сыворотка. Свиньи подопытных групп дополнительно к основному рациону вместе с кормом получали лиофилизированную БАД. Все подопытные животные находились в одном корпусе, у одного оператора. В первый этап исследований в данном хозяйстве входило изучение показателей крови животных, потому что кровь – мощная система живого организма, при помощи которой происходит соединение химических процессов различных частей тела в единое целое. Кровь, как внутренняя среда, осуществляет связь всех органов и тканей, создавая необходимые условия их существования, выполняя в живом организме ряд функций: транспортную (транспорт кислорода к органам и тканям и углекислого газа к легким, подача питательных веществ к тканям и удаление конечных продуктов обмена), регуляторную (поддерживает постоянство рН и осматического давления, доставляет к тканям гормоны), защитную (предохраняет 72 организм от заболевания, блокируя и удаляя при помощи антител и лейкоцитов возбудителей болезни и продукты их жизнедеятельности). Способность крови свертываться предохраняет организм от кровопотерь при повреждении сосудов (Чечеткин А. В., 1982). Кровь у животных брали из краевой вены уха в стерильные пробирки до начала опыта и через 14, 28 и 42 дня скармливая лиофилизированной БАД. Результаты исследований гематологических показателей приведены в таблице 10. При анализе таблицы видно, что количество эритроцитов и гемоглобина у подопытных животных превышало контроль в течение всего опыта. Так, к концу опыта количество гемоглобина у животных I и II подопытных групп превышало его количество у контрольных свиней на 8,67 и 9,23×10¹²/л, или на 7,9 и 8,2 % (p≤0,05). Количество эритроцитов на 2,33 и 2,44 г/л, или на 23,1 и 23,5 % соответственно. Это указывает на улучшение газообмена, увеличение снабжения организма кислородом, на улучшение клеточной защиты организма и повышение его устойчивости к заболеваниям. Для того чтобы лучше проследить за превращением этих веществ в организме, при изучении обмена веществ отдельно рассматривают белковый, углеводный, жировой обмены, так как обменные процессы взаимосвязаны между собой (Дымко Е. Ф., 1986). Обмен белков является центральным звеном среди всех биохимических процессов, лежащих в основе жизни. Все другие виды обмена – углеводный, липидный, нуклеиновый и минеральный обеспечивают метаболизм белков, особенно биосинтез специфических белков (Чечеткин А. В., 1982). Белки крови выполняют различные функции: поддерживают постоянство онкотического давления, рН крови, уровень катионов крови, играют важную роль в образовании иммунитета, комплексов с углеводами, липидами, гормонами и др. веществами (Кондрахин И. П., 1985). Изучая влияние лиофилизированной БАД на белок и белковые фракции крови, получили следующие данные (табл. 11). Количество общего белка у животных в подопытных группах превышало количество общего белка у животных контрольной группы на 11,19 и 9,21 г/л, или на 15,4 и 11,9 % (p≤0,05) соответственно. 73 74 До опыта Взятие крови Через 42 дня Через 28 дней Через 14 дней Примечание: * р≤0,05. Эритроциты, 10¹²/л Гемоглобин, г/л Эритроциты, 10¹²/л Гемоглобин, г/л Эритроциты, 10¹²/л Гемоглобин, г/л Эритроциты, 10¹²/л Гемоглобин, г/л Показатель 8,4±0,31 * 102,87±1,01 * 7,11±0,12 * 97,61±1,11 * 6,25±0,13 * 89,22±1,91 5,76±0,12 87,82±1,19 I подопытная (самцы) 6,07±0,27 94,20±0,54 5,75±0,09 88,91±1,12 5,60±0,13 87,62±0,95 5,65±0,11 87,45±1,13 II контрольная (самцы) 8,5±0,61 * 103,46±0,85 * 6,92±0,11 * 95,43±1,01 * 6,12±0,11 91,61±1,03 5,67±0,15 87,34±0,93 III подопытная (самки) Группа Гематологические показатели крови свиней при применении лиофилизированной БАД (n=10) 6,06±0,11 92,23±1,04 5,86±0,13 88,53±1,13 5,79±0,12 88,40±1,05 5,71±0,13 87,29±0,98 IV контрольная (самки) Таблица 10 75 Через 14 дней 8,13±0,23 12,23±0,11 * β-глобулины γ-глобулины 8,42±0,33 24,72±0,26 * Альбумины Глобулины: α-глобулины 53,35±1,25 * 9,62±0,11 γ-глобулины Общий белок 8,02±0,23 8,13±0,26 Глобулины: α-глобулины β-глобулины 19,41±0,23 Альбумины До опыта 46,62±1,27 I подопытная Общий белок Показатель, г/л Взятие крови 9,01±0,13 8,05±0,21 8,15±0,21 21,03±0,24 47,16±0,54 9,13±0,12 7,92±0,24 8,04±0,22 20,01±0,24 46,53±0,32 II контрольная 11,43±0,10 * 8,24±0,22 8,44±0,31 24,21±0,23 * 54,42±0,58 * 9,43±0,11 7,67±0,22 8,23±0,23 19,06±0,23 46,14±0,93 III подопытная Группа Содержание белка и белковых фракций в сыворотке крови свиней при применении лиофилизированной БАД (n=10) 9,20±0,12 8,01±0,21 8,23±0,22 22,61±0,19 47,64±1,03 9,21±0,10 8,06±0,24 8,23±0,23 19,55±0,19 46,53±1,11 IV контрольная Таблица 11 76 20,43±0,11 * γ-глобулины Примечание: * р≤0,05. 9,13±0,24 β-глобулины 9,35±0,33 30,56±0,24 * Альбумины Через 42 дней 71,45±1,22 * Общий белок Глобулины: α-глобулины 16,43±0,11 * γ-глобулины 8,52±0,34 8,43±0,22 Через 28 дней β-глобулины Глобулины: α-глобулины 25,56±0,24 * Альбумины I подопытная 60,45±1,22 * Взятие крови Общий белок Показатель, г/л 11,42±0,12 10,34±0,21 11,12±0,31 26,56±0,27 60,26±0,54 11,02±0,12 9,02±0,22 9,13±0,31 22,04±0,22 49,26±0,55 II контрольная 20,43±0,10 * 9,05±0,24 9,32±0,32 29,61±0,21 * 69,42±0,55 * 14,43±0,11 * 8,24±0,22 8,42±0,32 23,71±0,20 * 56,42±0,55 * III подопытная Группа 11,17±0,12 10,12±0,21 10,53±0,24 25,51±0,11 60,23±1,04 11,19±0,12 9,01±0,22 9,13±0,24 22,51±0,14 49,64±1,02 IV контрольная Продолжение Кроме того, включение в рацион животных лиофилизированной БАД оказало положительное влияние и на изменение белковых фракций в сыворотке крови. К концу опыта содержание альбуминов в сыворотке крови подопытных групп превышало содержание их у контрольных животных на 4,0 и 4,1 г/л, или 15,2 и 15,3 % (p≤0,05) соответственно, а увеличение глобулинов происходило за счет γ-глобулиновой фракции на 9,1 и 9,26 г/л, или 44,3 и 44,5 % (p≤0,05) соответственно. Увеличилось содержание α-глобулинов на 1,77 и 1,21 г/л, или 24,9 и 24,2 % (p≤0,05) соответственно, β-глобулинов на 1,21 и 1,07 г/л (p≤0,05) соответственно. Таким образом, при даче лиофилизированной БАД в указанных дозах повышается неспецифическая резистентность организма животных (γ-глобулины – иммунные белки). Увеличился уровень гуморального иммунитета: так, уровень бактерицидной активности в подопытных группах превышал этот показатель в контрольной группе на 8,19 и 5,19 % (p≤0,05), а лизоцимной активности на 8,0 и 7,1 % (p≤0,05) соответственно (табл. 12). Анализируя полученные результаты, следует отметить, что при применении лиофилизированной биологически активной добавки из личинок трутней и тыквы в течение 42 дней повышают биохимические показатели опытных животных. Таким образом, следует отметить, что использование лиофилизированной БАД улучшает обменные процессы, клеточную защиту организма, гуморальный иммунитет, повышает неспецифическую резистентность. Нами были проанализированы данные воспроизводительных качеств хряков и установлено положительное влияние дополнительной стимуляции БАД. Результаты 42-дневного использования лиофилизированной БАД приведены в таблице 13. Сперма хряков контрольной и подопытной групп имела нормальный цвет, не содержала примесей гноя, крови и мочи. Анализ данных спермопродукции показал, что у контрольных хряков показатели были практически одинаковыми и находились в пределах нормы. У хряков подопытной группы объем эякулята к концу опыта был больше на 97±2,23 мл, или 29,75 % (p≤0,05). 77 78 Примечание: * р≤0,05. Лизоцимная активность Бактерицидная активность Лизоцимная активность Бактерицидная активность Лизоцимная активность Бактерицидная активность Лизоцимная активность Бактерицидная активность Показатель, % Через 42 дня Через 28 дней Через 14 дней До опыта Взятие крови 45,56±0,44 * 61,45±0,32 * 44,56±0,49 * 58,15±0,22 * 42,12±0,67 * 54,05±0,72 * 34,41±0,66 46,42±0,38 I подопытная 37,56±0,27 53,26±0,54 38,04±0,42 52,26±0,55 35,03±0,44 47,16±0,54 34,91±0,24 46,03±0,44 II контрольная 44,61±0,81 * 58,42±0,55 * 43,11±1,20 * 56,42±0,55 * 38,21±0,53 * 51,42±0,58 * 34,06±0,23 46,14±0,43 III подопытная Группа Показатели неспецифической резистентности свиней при применении лиофилизированной БАД (n=10) 37,51±0,11 53,23±1,04 37,51±0,14 51,54±1,02 35,61±0,49 46,64±0,30 34,55±0,59 46,53±0,31 IV контрольная Таблица 12 79 Примечание: * р≤0,05. Концентрация, млн/мл Активность, балл 239±2,21 * 7,59±0,16 * 326±2,03 * Объем, мл Через 42 дня 222±2,65 * 6,78±0,12 * Концентрация, млн/мл Через 28 дней 282±1,52 * Объем, мл Активность, балл 219±3,35 6,72±0,22 * Концентрация, млн/мл Активность, балл 231±1,41 * Через 14 дней Объем, мл 6,23±0,12 222±1,45 I подопытная 206±3,21 До опыта Взятие спермы Концентрация, млн/мл Активность, балл Объем, мл Показатель Группа 209±2,25 6,21±0,15 229±2,42 211±2,26 6,19±0,15 231±2,05 207±4,01 6,29±0,12 225±1,40 205±3,11 6,21±0,11 220±1,34 II контрольная Таблица 13 Качественные и количественные показатели спермы хряков-производителей (n=10) Большое значение при оценке качества спермы имеет такой показатель, как концентрация в ней спермиев. Результаты наших исследований показывают, что до применения БАД концентрация спермиев в эякуляте хряков контрольной и подопытной групп была примерно одинаковая и составляла 205–206 млн в 1 мл. Включение в рацион кормления хряков подопытной группы исследуемой добавки способствовало повышению концентрации спермиев в эякуляте на 30±2,23 млн в 1 мл, или на 12,5 %, по сравнению с животными контрольной группы. Активность спермиев хряков подопытной группы была выше контрольной группы на 1,38±0,53 балла. Таким образом, установлено положительное влияние лиофилизированной БАД на качественные и количественные характеристики спермопродукции. Применение указанной добавки дает основание предполагать об ее влиянии на интенсивный рост обмена веществ за счет дополнительно полученных витаминов, микроэлементов, аминокислот и др., что оказывает позитивное действие на сперматогенез и количество спермы. В целях изучения влияния БАД на качество потомства в контрольной и опытной группах осеменили по 10 свиноматок. От свиноматок подопытных групп было получено на 23 поросенка больше, чем в контрольной группе (табл. 14). Таблица 14 Оплодотворяемость и плодовитость свиноматок при скармливании БАД Группы Показатель I подопытная II контрольная Осеменено самок, гол. 10 10 Роды, гол. 10 10 Многоплодие, гол/самку 12,8 10,6 Получено поросят, гол. 128 106 Количество поросят в возр. 1 мес 128 105 80 Из материалов таблицы видно, что, вероятно, БАД положительно влияет на оплодотворяемость и плодовитость свиноматок. На основании проведенных исследований можно сделать вывод, что применение лиофилизированной БАД положительно влияет не только на показатели крови, а также на качество спермопродукции хряков-производителей, оплодотворяемости и плодовитости свиноматок. 81 Заключение Биологически активная добавка оказывает стимулирующее влияние на спермиогенез хряков-производителей при 42-дневной подкормке. БАД положительно влияет на гематологические и основные биохимические процессы свиноматок. У подопытных свиней уровень эритроцитов увеличился с 5,72±0,13 до 8,45±0,47, гемоглобина – с 87,58±1,06 до 103,17±0,93 г/л, уровень общего белка – с 46,38 до 70,44 г/л, альбуминов с 19,24±0,23 до 30,08±0,22 г/л, γ-глобулинов с 9,53±0,11 до 12,43±0,11 г/л соответственно. БАД положительно влияет на оплодотворяемость и качество потомства. От 10 свиноматок подопытной группы получено на каждую 12,8 поросенка и 128 всего, а от 10 контрольных –106, или на 18 % меньше, поросят. Для повышения оплодотворяемости, плодовитости и качества потомства включать БАД в корм в количестве 0,5 мг на 1 кг массы животного в течение 30–60 дней. 82 Библи ографически й список 1. Авдеенко, В. Оплодотворяемость свиноматок при искусственном осеменении спермой хряков, получавших в рационе ДАФС-25 / В. Авдеенко, М. Насибов // Свиноводство. – 2008. – № 4. – С. 23–24. 2. Аврутина, А. Я. Аминокислотное питание свиней и птицы / А. Я. Аврутина, А. П. Дмитроченко, А. В. Тоичкина и др. – Л. : Колос, 1966. – 112 с. 3. Айбазов, А.-М. М. Рекомендации по способу и приемам синхронизации половой охоты у овец и коз / А.-М. М. Айбазов, Л. С. Малахова, К. К. Ашурбеков и др. – Ставрополь, 2006. – 20 с. 4. Аль-Кейси, Т. Продолжительность супоросности влияет на экономику производства / Т. Аль-Кейси // Животноводство России. – 2008. – С. 27–28. 5. Антонов, Б. И. Лабораторные исследования в ветеринарии: биохимические и микологические : справочник / Б. И. Антонов, Т. Ф. Яковлева, В. И. Дерябина и др. ; под ред. Б. И. Антонова. – М. : Агропромиздат, 1991. – 287 с. 6. Багиров, В. А. Биотехнологические аспекты сохранения генетических ресурсов животных : автореф. дис. … д-ра биол. наук / Багиров В. А. – Дубровицы, 2005. – 42 с. 7. Бажов, Г. Биотехнологические приемы повышения продуктивности свиней / Г. Бажов, Л. Бахирева // Свиноводство. – 2004. – № 3. – С. 6–9. 8. Беляков, О. Качество спермы и оплодотворяемость свиноматок / О. Беляков, Г. Сердюк // Животноводство России. – 2008. – С. 29–30. 83 9. Бетляев, Ф. О. Интенсивность отбора хряков при промышленном скрещивании / Ф. О. Бетляев // Животноводство. – 1987. – № 1. – С. 30–31. 10. Богданов, Н. И. Хлорелла в кормлении свиней / Н. И. Богданов // Свиноферма. – 2005. – № 7 – С. 29– 30. 11. Василенко, В. Н. Информационные технологии в племенном свиноводстве / В. Н. Василенко, Н. В. Михайлов, А. А. Белик ; ДонГАУ. – пос. Персиановский, 2003. – 86 с. 12. Викторов, П. И. Методика и организация зоотехнических опытов / П. И. Викторов, В. К. Менькин. – М. : ВО «Агропромиздат», 1991. – 112 с. 13. Вишняков, М. Полножирная соя как источник белка и незаменимых жирных кислот в рационах хряковпроизводителей / М. Вишняков, И. Мошкутело, В. Епифанов // Свиноводство. – 2008. – № 1. – С. 13–14. 14. Володин, В. А. Влияние хрячков на развитие и плодовитость ремонтных свинок / В. А. Володин // Ветеринария. – 1992. – № 8. – С. 46–47. 15. Гайирбегов, Д. Влияние ферросила на обмен веществ и продуктивность ремонтных свинок / Д. Гайирбегов, Т. Кандрашкина // Свиноводство. – 2006. – № 5. – С. 13–15. 16. Гамко, Л. Переваримость и трансформация в продукцию питательных веществ корма при скармливании молодняку свиней микроводоросли / Л. Гамко, В. Подольников, Д. Уфимцев // Свиноводство. – 2008. – № 3. – С. 16–18. 17. Гамко, Л. Н. Основы научных исследований в животноводстве / Л. Н. Гамко, И. В. Малявко. – Брянск : Изд-во БГСХА, 1998. – 127 с. 18. Гевлич, О. А. Балантидиоз свиней (анализ эпизоотической ситуации, гематологические, иммунологические и биохимические исследования при профилактике) : автореф. дис. … канд. биол. наук / Гевлич О. А. – Ставрополь, 2009. – 23 с. 84 19. Гегамян, Н. Состояние свиноводства в мире, в том числе в России / Н. Гегамян, Г. Шичкин, В. Шарнин // Свиноводство. – 2003. – № 2. – С. 4–8. 20. Голубев, М. И. Взаимосвязь репродуктивных признаков в эмбриогенезе свиней / М. И. Голубев, Ю. Ф. Красавцев // Племенная работа в условиях промышленной технологии : сб. науч. тр. / Горьк. СХИ. – Горький, 1985. – С. 10–17. 21. Градусов, Ю. Н. Аминокислотное питание свиней / Ю. Н. Градусов. – М. : Колос, 1968. – 320 с. 22. Григорьев, В. Влияние сезонов года на физиологическое состояние и продуктивные качества чистопородных и помесных свиней / В. Григорьев, В. Сафронова // Свиноводство. – 2008. – № 2. – С. 29–31. 23. Джамалдинов, А. Приучение хрячков к садке на чучело с помощью феромонного препарата Пасо / А. Джамалдинов // Свиноводство. – 2006. – № 3. – С. 23–25. 24. Джунельбаев, Е. Влияние репродуктивного скрещивания на откормочные и мясные качества свиней / Е. Джунельбаев, В. Рясков // Свиноводство. – 2004. – № 4. – С. 9–10. 25. Дикусаров, В. Г. Влияние кормовой добавки «Бишас» на воспроизводительные качества свиней / В. Г. Дикусаров, Д. Н. Пилипенко, И. В. Водянников и др. // Свиноводство. – 2008. – № 3. – С. 22–24. 26. Дмитроченко, А. П. Потребность сельскохозяйственных животных в микроэлементах и ее определение / А. П. Дмитроченко. – М., 1962. – С. 118–121. 27. Дудка, Е. Наследуемость и корреляция воспроизводительных качеств свиней / Е. Дудка // Свиноводство. – 2002. – № 5. – С. 7. 28. Дымко, Е. Ф. Клиническая биохимия в ветеринарии : методическое пособие для студентов ветеринарных факультетов / Е. Ф. Дымко, З. К. Кожебеков. – АлмаАта, 1986. – 208 с. 29. Елисеева, Е. Здоровый молодняк – основа благополучия хозяйства / Е. Елисеева // Свиноводство. – 2008. – № 4. – 24 с. 85 30. Ескин, Г. В. Теория и практика искусственного осеменения свиней свежевзятой и замороженной спермой / Г. В. Ескин, А. Г. Нарижный, Г. С. Походня. – Белгород : Везелица, 2007. – 253 с. 31. Жебровский, Л. С. Селекционная работа в условиях интенсификации животноводства / Л. С. Жебровский. – Л. : Агропромиздат, 1987. – 246 с. 32. Засеев, Р. Эффективность различных адсорбентов при выращивании ремонтного молодняка свиней / Р. Засеев, В. Каиров, М. Кебеков // Свиноводство. – 2008. – № 2. – С. 16–19. 33. Захарова, Н. Информационное обеспечение племенной работы / Н. Захарова, В. Гарай // Свиноводство. – 1999. – № 2 – С. 15–16. 34. Захарова, Н. Состояние племенного свиноводства в России по результатам бонитировки за 1998 г. работы / Н. Захарова, В. Гарай // Свиноводство. – 2000. – № 1. – С. 2–6. 35. Злыднев, Н. З. Кормление сельскохозяйственных животных на Ставрополье : монография / Н. З. Злыднев, В. И. Трухачев, А. И. Подколзин. – Ставрополь : АГРУС, 2003. – 272 с. 36. Иванов, Ю. В. Многоядерные половые клетки в сперматогенезе крыс в норме и после воздействия ксенобиотиков / Ю. В. Иванов // Гигиена труда и профессиональные заболевания. – 1989. – № 3. – С. 54–55. 37. Кабанов, В. Генетические ресурсы свиноводства современной России / В. Кабанов // Свиноводство. – 2004. – № 6. – С. 2–5. 38. Кабанов, В. Д. Корреляция признаков и использование её в селекции свиней / В. Д. Кабанов // ВАСХНИЛ. – 1992. – № 6. – С. 31–35. 39. Кабанов, В. Д. Породы свиней / В. Д. Кабанов, А. С. Терентьева. – М. : Агромиздат, 1985. – 336 с. 40. Калашников, А. П. Нормы и рационы кормления сельскохозяйственных животных : справочное пособие / под ред. А. П. Калашникова, И. В. Фисинина, 86 41. 42. 43. 44. 45. 46. 47. 48. 49. В. В. Щеглова и др. – Изд. 3-е. – М. : Россельхозакадемия, 2003. – 359 с. Калпокас, В. К. Технология трансплантации эмбрионов / В. К. Калполакс, О. В. Столярова, П. Н. Легостаев // Овцеводство. – 1990. – № 1. – С. 20–21. Каратунов, Г. А. Оценка племенной ценности свиней по репродуктивным признакам / Г. А. Каратунов, И. В. Капелист // Вестник ветеринарии. – 2001. – № 4. – С. 56–65. Каратунов, Г. А. Селекционно-генетическая характеристика признаков отбора свиноматок / Г. А. Каратунов // Свиноводство. – 2001. – № 3. – С. 3–4. Каширский, А. И. Информационные технологии в управлении селекционно-племенной работой в свиноводстве / А. И. Каширский // Сибирские учёные – аграрно-промышленному комплексу : тез. докл. конференции учёных Сибирского региона, посвященной 30-летию Селекционного центра Сибирского НИИ сельского хозяйства. – Омск, 2000. – С. 115– 117. Квасницкий, А. В. Искусственное осеменение свиней / А. В. Квасницкий. – Киев : Урожай, 1983. – 188 с. Кертиева, Н. М. Зависимость репродуктивных качеств свиноматок от живой массы при рождении / Н. М. Кертиева // Зоотехния. – 1990. – № 5. – С. 73–75. Клемин, В. П. Повышение мясной продуктивности свиней на основе кроссбридинга : дис. … д-ра с.-х. наук / Клемин В. П. – Ленинград ; Пушкино, 1988. – 313 с. Клинский, Ю. Д. Повышение оплодотворяемости свиней в летний период / Ю. Д. Клинский, Г. Ф. Жирков, В. А. Григоренко // Зоотехния. – 1998. – № 12. – 22 с. Князев, С. П. Динамика и генетическая обусловленность трансформации аллогрупп системы альфамакроглобулинов в разных популяциях домашних свиней / С. П. Князев, В. И. Ермолаев, М. А. Савина и др. // Генетика. – 2000. – № 4. – С. 527–532. 87 50. Коваленко, В. А. Степной тип новой мясной породы: методы выведения, особенности генеалогической структуры и продуктивные качества / В. А. Коваленко, В. И. Степанов, Н. В. Михайлов // Вопросы интенсификации племенного свиноводства : сб. науч. тр. – М., 1989. – С. 26–37. 51. Ковров, А. В. Наследование и взаимосвязь показателей продуктивности хряков разных пород / А. В. Ковров // Наука нового века – знание молодых : тез. докладов научной конференции аспирантов и соискателей. – Киров, 2005. – С. 87–90. 52. Кондрахин, И. П. Клиническая лабораторная диагностика в ветеринарии : справочное пособие / И. П. Кондрахин, Н. В. Курилов, А. Г. Малахов. – М. : Агропромиздат, 1985. – 287 с. 53. Кононов, В. А. Состояние и перспективы развития свиноводства в XXI столетии / В. А. Кононов // Свиноводство. – 2000. – № 3 – С. 4–5. 54. Красавцев, Ю. Ф. Адаптивная норма в популяциях свиней / Ю. Ф. Красавцев // Актуальные вопросы генетики и селекции : сб. науч. ст. / Институт генетики АН Республики Молдова. – Кишинев, 1991. – С. 103– 109. 55. Крохина, В. А. Комбикорма, кормовые добавки и ЗЦМ для животных : справочник / В. А. Крохина, А. П. Калашников, В. И. Фисин и др. – М. : Агропромиздат. – 1990. – 101 с. 56. Кузнецова, Т. С. Роль инъекций пролонгированной формы селенопирана в становлении антирадикальноантиоксидантной системы защиты организма подсосных поросят / Т. С. Кузнецова, А. А. Галачкин, Е. М. Колесникова // Актуальные проблемы биологии в животноводстве : тез. докл. III Международной конференции ВНИИФБиП с.-х. животных. – Боровск, 2000. – С. 312–314. 57. Лабинов, В. В. Племенное животноводство и задачи государственной племенной службы России / 88 58. 59. 60. 61. 62. 63. 64. 65. 66. 67. 68. 69. В. В. Лабинов, Т. М. Крикун // Зоотехния. – 2000. – № 1. – С. 2–12. Лебедев, В. И. Заготовка личинок трутней / В. И. Лебедев, М. А. Логович // Пчеловодство. – 2003. – № 3. – С. 52–54. Левин, К. Л. Физиология и патология воспроизводства свиней / К. Л. Левин. – М. : Росагропромиздат, 1990. – 255 с. Левин, К. Л. Искусственное осеменение свиней / К. Л. Левин. – М. : Россельхозиздат, 1986. – 192 с. Левонтин, Д. Развитие свиноводства в странах мира / Д. Левонтин // Свиноводство. – 2000. – № 2. – С. 26–28. Либизов, М. П. Теория и опыт селекционногенетической дифференциации породы свиней в целях использования гетерозиса / М. П. Либизов // Выведение высокопродуктивных линий и гибридов свиней. – М. : Колос, 1973. – 130–145. Лилли, Р. Патогистологическая техника и практическая гистохимия / Р. Лилли. – М. : Мир, 1969. – 645 с. Лучко, С. Влияние генетических признаков на экономические показатели в свиноводстве / С. Лучко // Животновод. – 2000. – № 2–3. – С. 15. Лымарь, П. И. Влияние способов содержания на продуктивность свиноматок / П. И. Лымарь, Г. С. Походня // Животноводство. – 1980. – № 4. – С. 58–59. Мадисон, В. Селекция и трансплантация / В. Мадисон // Животноводство России. – 2007. – № 2 – С. 6–8. Макарцев, Н. Г. Кормление сельскохозяйственных животных / Н. Г. Макарцев. – Калуга : изд-во науч. лит. Н. Ф. Бочкаревой, 2007. – 608 с. Максимов, Г. В. Биологические аспекты продуктивности свиней интенсивных пород и типов : автореф. дис. … д-ра с.-х. наук / Максимов Г. В. – пос. Персиановский, 1995. – 50 с. Максимюк, Н. Влияние белковых гидролизатов на обмен веществ и продуктивность свиноматок / Н. Максимюк // Свиноводство. – 2005. – № 6 – С. 15–17. 89 70. Малышев, В. Воспроизводительные качества и типы поведения / В. Малышев // Свиноводство. – 1989. – № 3. – С. 35–36. 71. Мамонтов, Н. Т. Практические советы по содержанию хряков-производителей / Н. Т. Мамонтов, Н. В. Михайлов, В. Н. Шарнин // Свиноводство. – 2009. – № 7. – С. 28–30. 72. Машенков, О. Н. Живительная сила «пчелиного хлеба» / О. Н. Машенков // Пчеловодство. – 2003. – № 1. – С. 55–56. 73. Машенков, О. Н. Трутневый расплод – лечебное средство / О. Н. Машенков // Пчеловодство. – М., 2005. – № 8. – С. 60–61. 74. Медведев, В. А. Оценка хряков по воспроизводительной способности / В. А. Медведев, Р. А. Файзуллин // Степные просторы. – 1989. – № 9. – С. 27. 75. Меркулов, Г. А. Курс патологогистологической техники / Г. А. Меркулов. – М. : Медицина, 1969. – 422 с. 76. Миколайчик, И. Микронизированное зерно для свиней / И. Миколайчик // Животноводство России. – 2004. – № 6. – С. 40–41. 77. Милованов, В. К. Биология воспроизведения и искусственное осеменение животных : монография / В. К. Милованов. – М. : Изд-во сельскохозяйственной литературы, журналов и плакатов, 1962. – 670 с. 78. Милованов, В. К. Современное состояние и перспективы искусственного осеменения сельскохозяйственных животных / В. К. Милованов, И. И. Соколовская // Международный сельскохозяйственный журнал. – 1959. – № 9. 79. Мильчевская, Р. И. Оценка хряков по воспроизводительным качествам в условиях промышленного комплекса / Р. И. Мильчевская, З. С. Красикова // Труды ВИЖа. – 1995. – Вып. 57. – Ч. 1. – С. 134–141. 80. Мирошников, В. Система, разведения свиней на Кубани / В. Мирошников // Животноводство России. – 2001. – № 3. – С. 28–30. 90 81. Михайлов, Н. В. Оптимизация комплексной оценки свиней (программа ОПКОС) / Н. В. Михайлов, Н. И. Казакова, Э. В. Костылев и др. // Актуальные проблемы производства свинины : материалы седьмого заседания межвузовского координационного совета «Свинина» и республиканской научнопроизводственной конференции. – пос. Персиановский, 1997. – С. 20–21. 82. Михайлов, Н. В. Породы и породообразовательный процесс в свиноводстве : учеб. пособие для вузов / Н. В. Михайлов, А. И. Баранников ; ДонГАУ. – пос. Персиановский, 2007. – 100 с. 83. Михайлов, Н. В. Интенсификация племенного отбора в свиноводстве / Н. В. Михайлов, Г. А. Каратунов, О. Л. Третьякова и др. – пос. Персиановский, 1999. – 100 с. 84. Михайлов, Н. В. Система оптимизации оценки племенной ценности сельскохозяйственных животных : методические рекомендации / Н. В. Михайлов, Ю. А. Колосов, Г. А. Каратунов и др. – пос. Персиановский, 1999. – 30 с. 85. Михайлов, Н. В. К вопросу об оценке генотипа свиней при бонитировке / Н. В Михайлов, В. И. Степанов, А. И. Баранников // Сб. науч. тр. по матер. I Междунар. науч.-практ. конф. (Уфа, 17–18 октября 2000 г.). – Уфа, 2000. – С. 189–193. 86. Мухамедшина, А. Современные технологии искусственного осеменения свиней / А. Мухамедшина // Свиноводство. – 2006. – № 1. – С. 26–27. 87. Мысик, А. Состояние и перспективы развития свиноводства в России / А. Мысик // Свиноводство. – 2001. – № 1. – С. 2–3. 88. Мысик, А. Т. Развитие отрасли свиноводства в странах мира / А. Т. Мысик // Свиноферма. – 2006. – № 5. – С. 34–35. 89. Мытарев, Н. Качество спермопродукции хряков в зависимости от стресс-реакции их организма / Н. Мы91 90. 91. 92. 93. 94. 95. 96. 97. 98. 99. 92 тарев, К. Юрченко, И. Рачков и др. // Свиноводство. – 2007. – № 4. – С. 25–26. Мытарев, Н. И. Сравнительная характеристика методов стимуляции половой функции / Н. И. Мытарев // Свиноводство. – 2004. – № 2. – С. 17–18. Мэйнард, Смит Дж. Эволюция полового размножения / Смит Дж. Мэйнард. – М. : Мир, 1981. – 248 с. Нарижный, А. Г. Повышение продуктивности хряков / А. Г. Нарижный, В. И. Водянников, Е. Г. Поморова и др. – Белгород, 2001. – 208 с. Нарижный, А. Изменение качественных показателей спермопродукции хряков под влиянием Апилактона / А. Нарижный, Н. Гнеушева // Свиноводство. – 2008. – № 3. – С. 20–22. Нарижный, А. Г. Показатели воспроизводства свиноматок при применении препарата Селемаг / А. Г. Нарижный, Н. И. Крейдлина, А. Ч. Джамалдинов и др. // Актуальные проблемы производства свинины в Российской Федерации : сб. науч. тр. – пос. Персиановский, 2006. – С. 95–97. Немцев, С. В. Новые источники биологически активных веществ в продуктах пчеловодства / С. В. Немцев, О. Ю. Зуева, Р. Г. Хисматуллин и др. // Пчеловодство. – 2001. – № 5. – С. 50–51. Нормы и рационы кормления сельскохозяйственных животных : справочное пособие / А. П. Калашников, В. И. Фисинин, В. В. Щеглов и др. – Изд. 3-е перераб. и доп. – М., 2003. – 455 с. Овсянников, А. И. Основы опытного дела в животноводстве / А. И. Овсянников. – М. : Колос, 1976. – 303 с. Ойвин, И. А. Статистическая обработка результатов экспериментальных исследований / И. А. Ойвин // Патологическая физиология и экспериментальная терапия. – М., 1960. – № 4. – С. 76–85. Острикова, Э. Е. Влияние тканевых стимуляторов на воспроизводительные качества свиноматок / Э. Е. Острикова // Итоги научно-исследовательской 100. 101. 102. 103. 104. 105. 106. 107. 108. работы ДонГАУ за 1996–2000 гг. : материалы науч.практич. конф. – пос. Персиановский, 2001. – С. 107. Петров, С. В. Физиологический статус морфологического и биохимического состава крови чистопородного, помесного и гибридного молодняка свиней / С. В. Петров, В. А. Федяев // Вестн. Полтавского СГИ. – 2001. – № 2, 3. – С. 52–53, 154, 160. Питушкин, А. И. Основы размножения и искусственного осеменения с.-х. животных : бюлл. / А. И. Питушкин. – Пушкин, 1970. – С. 3, 13. Погодаев, В. А. Технология воспроизводства и система разведения свиней / В. А. Погодаев, В. А. Кухарев, А. Н. Шевченко и др. – Ставрополь, 2000. – 96 с. Погодаев, В. А. Воспроизводительные качества свиноматок и стресс-реакция поросят при гомогенном подборе родителей с различной стресс-восприимчивостью / В. А. Погодаев, В. А. Кукарев // Вестник ветеринарии. – 2000. – № 17. – С. 33–36. Поморова, Е. Г. Зависимость оплодотворяемости, многоплодия и крупноплодности свиноматок от доз свежевзятой и криоконсервированной спермы и кратности осеменения : автореф. дис. … канд. биол. наук / Поморова Е. Г. – пос. Майский : Белгор. ГСХА, 2003. – 22 с. Попов, И. С. Аминокислотный состав кормов / И. С. Попов. – Изд. 2-е, перераб. и доп. В. Н. Бакановым. – М. : Россельхозиздат, 1965. – 47 с. Походня, Г. С. Повышение продуктивности свиней / Г. С. Походня, Г. В. Ескин, А. Г. Нарижный и др. – Белгород, 2004. – 517 с. Походня, Г. Лучшие показатели воспроизводства – зимой / Г. Походня, Е. Федорчук, О. Попова // Животноводство России. – 2008. – С. 41–42. Прохода, И. А. Трутневые личинки – ценный белковый продукт / И. А. Прохода // Пчеловодство. – 2006. – № 10. – С. 50–51. 93 109. Прохода, И. А. Трутневые личинки в косметической промышленности / И. А. Прохода // Пчеловодство. – 2006. – № 1. – С. 56–57. 110. Рачков, И. Г. Развитие репродуктивных органов ремонтных свинок при различных технологиях выращивания / И. Г. Рачков, В. А. Корнилов // Современные достижения биотехнологии воспроизводства – основа повышения продуктивности сельскохозяйственных животных : материалы международной науч.-практич. конференции. – Ставрополь, 2009. – Т. 1. – С. 44–47. 111. Рудь, А. И. Селекционные и технологические методы интенсификации животноводства : автореф. дис. … д-ра с.-х. наук / Рудь А. И. – пос. Персиановский, 2006. – 46 с. 112. Самойлов, B. C. Интенсификация племенного отбора свиней по репродуктивным, откормочным и мясным качествам : автореф. дис. … канд. с.-х. наук / Самойлов В. С. – пос. Персиановский, 2002. – 24 с. 113. Самсонов, Д. В. Анализ качества оплодотворяющей способности хряков-производителей / Д. В. Самсонов, О. Л. Третьякова // Актуальные проблемы производства свинины в РФ (ДонГАУ, 2006 г.) : материалы XV заседания межвузов. корд. совета по свиноводству и международ. науч.-производ. конф. – пос. Персиановский, 2006. – С. 51–55. 114. Самсонов, Д. В. Электронная база данных свиней ЗАО «Батайское» / Д. В. Самсонов, А. Л. Резников // Актуальные проблемы производства свинины в РФ (ДонГАУ, 2006 г.) : материалы XV заседания межвузов. корд. совета по свиноводству и международ. науч.-производ. конф. – пос. Персиановский, 2006. – С. 55–58. 115. Сафоновская, Е. В. Разработка и фармакотоксикологическая оценка препарата ЮТ : автореф. … канд. биол. наук / Сафоновская Е. В. – Ставрополь, 2009. – 22 с. 116. Свинарёв, И. Ю. Селекционно-генетические параметры популяции свиней Северного Кавказа и их использование в практике племенного отбора : автореф. 94 117. 118. 119. 120. 121. 122. 123. 124. 125. дис. … канд. с.-х. наук / Свинарёв И. Ю. – пос. Персиановский, 2005. – 22 с. Семенов, В. В. Методические рекомендации по выведению нового заводского воспроизводительного типа свиней крупной белой породы / В. В. Семенов, Г. Е. Казачок, Н. И. Марченко и др. – Ставрополь : ГНУ СНИИЖК, 2002. – 40 с. Сивожелезова, Н. Влияние скармливания зерносенажа на воспроизводительные качества свиноматок / Н. Сивожелезова, Т. Стручкова // Свиноводство. – 2007. – № 3. – С. 23–24. Сидорова, В. Реализация генетического потенциала: новый метод оценки / В. Сидорова // Животноводство России. – 2006. – С. 45. Сипко, И. И. Исследование крови мериносовых овец фотоэлектрическим эритрогемометром МРТУ-421443-61 / И. И. Сипко, К. Д. Сазаруков, Х. Х. Шаманов и др. / Труды СХИ. – Ставрополь, 1968. – Вып. 29. – С. 358–364. Смирнов, Д. Зачем нужны племенные книги / Д. Смирнов // Животноводство России. – 2007. – С. 39–40. Соколовская, И. И. Техника искусственного осеменения и биология воспроизводства сельскохозяйственных животных : труды ВИЖ / И. И. Соколовская, Н. М. Решетникова, Л. Я. Бабичева. – М., 1972. – С. 239–253. Справочник по искусственному осеменению сельскохозяйственных животных : справочное издание / Ф. В. Ожин, Г. В. Паршутин, И. И. Родин и др. ; cост. Ф. В. Ожин. – 3-е издание, перераб. и доп. – М. : Россельхозиздат, 1983. – 272 с. Тимофеев, Л. В. Разведение свиней крупной белой породы по линиям / Свиноводство. – 1984. – № 2. – С. 14–15. Тимофеев, Л. Качество спермопродукции в зависимости от сезона года / Л. Тимофеев, Н. Шкатова // Свиноводство. – 2002. – № 5. – С. 26–27. 95 126. Тимофеев, Л. Качество спермопродукции хряков мясных пород и линии Pic-37 в зависимости от сезона года / Л. Тимофеев, М. Шкатов, Н. Шкатова // Свиноводство. – 2004. – № 5. – С. 26–27. 127. Третьякова, О. Л. Влияние признаков воспроизводительного фитнеса на товарную массу гнезда : сб. науч. тр. / О. Л. Третьякова / Дон ГАУ. – пос. Персиановский, 1998. – С. 114–117. 128. Третьякова, О. Л. Индексная оценка продолжительности племенного использования свиней / О. Л. Третьякова // Материалы 8-го заседания межвузовского координационного совета «Свинина» и респ. конф. – пос. Персиановский, 1999. – С. 30–31. 129. Третьякова, О. Л. Прикладные компьютерные программы в селекционном процессе / О. Л. Третьякова // Новые информационные технологии в решении проблем производства : cб. материалов симпозиума. – Пенза : ПДЗ, 2001. – С. 197. 130. Третьякова, О. Л. Селекционно-генетические параметры воспроизводительного фитнеса крупной белой породы свиней и их использование в системах племенного отбора : автореф. дис. … канд. с.-х. наук / Третьякова О. Л. – пос. Персиановский, 1992. – 24 с. 131. Третьякова, О. Л. Теоретические основы и практика оценки воспроизводительного фитнеса свиней : автореф. дис. … д-ра с.-х. наук / Третьякова О. Л. – пос. Персиановский, 2001. – 49 с. 132. Третьякова, О. Л. Информационные технологии в управлении селекционным процессом / О. Л. Третьякова, Н. В. Михайлов // Актуальные проблемы и перспективы развития АПК : материалы международ. науч.-практич. конф. / ДонГАУ. – пос. Персиановский, 2005. – Т. 1. – С. 85–88. 133. Трухачев, В. И. Корма и кормление сельскохозяйственных животных / В. И. Трухачев, Н. З. Злыднев, А. И. Подколзин. – Ставрополь, 2006. – 295 с. 96 134. Ухтверов, А. Развитие репродуктивных и других внутренних органов у недоразвитых ремонтных свинок / А. Ухтверов, М. Ухтверов, Е. Мордвинова // Свиноводство. – 2008. – № 1. – С. 29–30. 135. Фалконер, Д. С. Введение в генетику количественных признаков / Д. С. Фалконер. – М. : Агропромиздат, 1985. – 305 с. 136. Филатов, А. Современные проблемы племенного свиноводства в России / А. Филатов // Свиноводство. – 1999. – № 5. – С. 2–5. 137. Филатов, А. И. Новый заводской тип свиней крупной белой породы с высокими воспроизводительными качествами / А. И. Филатов, Л. П. Смолкин // Бюл. науч. работ / ВИЖ. – 1990. – Вып. 99. – С. 3–5. 138. Хозиев, А. М. Эффективность использования ассоциаций местных и музейных лактобактерий при выращивании ремонтных свинок : автореф. дис. … канд. с.-х. наук / Хозиев А. М. – Владикавказ, 2004. – 22 с. 139. Хохлов, А. Влияние биологических и технологических факторов на интенсивность использования свиноматок / А. Хохлов // Свиноводство. – 2006. – № 1. – С. 25–26. 140. Хачапуридзе, Э. Режим использования хряков-производителей / Э. Хачапуридзе // Зоотехния. – 2002. – № 4. – С. 29–30. 141. Хохрин, С. Н. Кормление сельскохозяйственных животных / С. Н. Хохрин. – М. : КолосС, 2004. – 692 с. 142. Чечеткин, А. В. Биохимия животных / А. В. Чечеткин, И. Д. Головацкий, П. А. Калимов и др. – М. : Высшая школа, 1982. – 551 с. 143. Чинаров, Ю. Метод племенной оценки свиней на основе BLUP / Ю. Чинаров, Н. Зиновьева, Л. Эрнст // Животноводство России. – 2007. – С. 45–46. 144. Чохатариди, Г. Н. Эффективность использования хряков северокавказской породы / Г. Н. Чохатариди // Актуальные вопросы зоотехнической науки и практики, 97 145. 146. 147. 148. 149. 150. 151. 152. 98 как основа улучшения продуктивных качеств и здоровья сельскохозяйственных животных (Ставрополь, октябрь 2001 г.). : сб науч. тр. – Ставрополь, 2001. – С. 230–231. Чиков, А. Е. Повышение полноценности кормовых рационов за счет использования нетрадиционных кормов / А. Е. Чиков // Актуальные проблемы производства и переработки продуктов животноводства и птицеводства. – Уфа, 2000. – С. 314–316. Шевченко, А. Действие биологических стимуляторов на спермопродукцию и резистентность хряков / А. Шевченко, В. Погодаев, А. Погодаев // Свиноводство. – 2005. – № 3. – С. 22–25. Штапельберг, Э. Р. Простой способ определения генотипов свиней по репродуктивным качествам / Э. Р. Штапельберг // Зоотехния. – 2001. – № 8. – С. 6–11. Шейко, И. П. Эффективность длительной селекции в замкнутой цепи при совершенствовании ведущих признаков продуктивности свиней / И. П. Шейко, Н. М. Шабунин и др. // Интенсификация производства свинины : межвузовский сб. науч. тр. – Харьков, 1989. – С. 113–118. Шейко, И. П. Свиноводство / И. П. Шейко, В. С. Смиронов. – Минск : Новое знание, 2005. – 384 с. Шостак, A. M. Породные различия молодняка свиней по качеству спермопродукции / A. M. Шостак. – М., 2004. – № 4. – С. 63–68. Юдина, О. П. Комплексная оценка генетического статуса и продуктивные качества свиней на индивидуальном и популяционном уровнях : автореф. дис. … канд. биол. наук / Юдина О. П. ; ВНИИ плем. дела. – Лесные Поляны (Моск. обл.), 2002. – 21 с. Anderson, G. B. Enduced trainning in feet heifers by embryo transfer / G. B Anderson, J. M. Baldwin, P. T. Cupps, M. Drost // J. Anim. Sci. – 1979. – V. 49. № 4 – P. 1037–1042. 153. Armstrong, D. T. Factors influencing success of embryo transfer in sheep and goats / D. T. Armstrong, G. Evans // Teriogenology. – 1983. – № 19. – P. 31–42. 154. Assessment of sperm gnality / M. Magistrini, M. Vidament, C. Labbe, A. Gennevieve, G. Stradaioli // 3 international Symposium on stallion Peproduction, Fort Collins. (Colo, Jan. 10–12, 2001) // Anim. Reprod. Sci. – 2001. – № 3–4. – Р. 364–365. 155. Boar contaet does not induce oxytocin release during the period of embryo migration in sows / P. Langendijk, P. Schams, N. Soede, В. Kemp // Reprod. Domest. Anim. – 2006. – № 3. – P. 238–240. 156. Booth, W. D. Plasma oestrogen and progesterone in relation to super ovulation and egg recovery in the sheep / W. D. Booth, R. Newcomb, H. Strange, L. E. A. Rowson, H. B. Sacher // Vet. Rec. – 1975. – V. 97. – № 19. – P. 366– 369. 157. Beeham, D. Embrio transferin farm animals: monograph / D. Beeham, J. M. Sreenar, Ed. K. J. Betteridge // Canada, Department of agricul. – 1977. – 16 p. 158. Bacze, J. Untersuchungen zur Verbesserung des superovulationser folges bei Kiin / J. Bacze, J. Meszaros, J. Perjes // Zuchthygiene. – 1979. – V. 14. – № 61. – P. 26–30. 159. Betteridge, K. J. Embryo transfer in farm animals. A review of techniques and Applications / K. J. Betteridge // Agriculture Canada Monograph. – 1977. – № 16. – P. 34– 41. 160. Calow, P. Resource utilization and reproduction / C. R. Townsend and P. Calow eds. // In: Physiological Ecology: An Evolutionary Approach to Resource Use, 1981. – P. 245–270. 161. Cerovsky, Josef. Metod. Zemed. Praxi / Jan Hajek, Frantisek Kratky. – 1998. – № 12. – P. 1–34. 162. Charakterystyka Zmlan budowy morfologiornej plemnikow knurow uzytkowanychw inseminacji / Udala Jan, Gaczazewicz Pariusz, Lasota Bogdan, Basrczyk Barbara, Seremak Beata, Stankinkiewicz Tomasz // Folia 99 163. 164. 165. 166. 167. 168. 169. 170. 100 univ. agr. Stetin. Zootechn. – 2005. – № 47. – 161– 172 p. Development of a protocol for multiple staining with fluorochromes to assess the funetional status of boar spermatozoa / Bussallen. Eva., Pinart Elisabet, YesteMare., Briz Mailo., Sanccho Silvia., Gareia-lil Nuria., Badia Elena., Bassols Judit. Pruneda fhna., Casas Isabel, Microsc. Res. Ahd teehn. – 2005. – № 5. – 277– 283 p. Donald, H. P. Birth weights of reciprocally cross bred calves / H. P. Donald, W. S. Russel, St. C. S. Taylor // J. Agr. Science, 1962. – P. 405–412. Effectifs et performances de reproduction des 5 races locales porcines francaises / Lenoir Herveline, Luguet Michel, Mercat Marie-Jose // Techni-porc. – 2002. – № 5. – P. 25–30. Expression of oestrogen receptors a and J3 of aromatase in the testis of immature and mature boars / H. M. Mutembei, S. Pesch, G. Schuler, B. Haffmann // Reprod. Domest. Fnim. – 2005. – № 3. – P. 228–236. Elsden, R. D. Superovulating cows with follicule. Stimulating hormone and pregnant mare’s serum gonadotrophin / R. D. Elsden, L. D. Nelson, G. E Seidel // Theriogenology. – 1978. – V. 9. – № 1. – P. 17–26. Eraluation of the hypothetic suitability of using ocstnogens and oxytocin as asemen additive to reduce the time reguired for the completion of pig artificial insemination / J. Pelaez, J. A. Riol, В. Alegre, F J. Репа, J. C. Pominguez // Rev. med. Vet. (France). – 2006. – P. 20–24. Farm animal genomics and informatics: An update / Fadiel Ahmed., Anidi Ifeanyi., Eichenbaum Kenneth P. // Wuel. Acids Res. – 2005. – № 19. – P. 6308–6318. Gadgil, P. M. The concept of r and К selection / P. M. Gadgil, O. T. Solbrig // Evidence from some wild flowers and theoretical considerations, American naturalist, 106. – 1972. – P. 14–31. 171. Greve, Т., Lehn-Jensen, H., Rasbech, N. O. Morphological evolution of bovine embryos recovered non-surgically from superovulated dairy cows on days 6,5 to 7,5. A field study // Ann. Biol. Anim. Biochim. Biophys. – 1979. – V. 19. – № 5. – P. 1599–1611. 172. Harper, M. E. K. Some aspects of the biology of mammalian eggs and spermatozoa / M. E. K. Harper, M. C. Chang // Ln. Advances in reproductive Physiology edit. Bishop M. N. H. – 1975. – V. 5. – P. 167–174. 173. Hahn, J. Effect ofthe donor egg quality and transfer results / J. Hahn, С. Schneider // Am. Biol. Anim. Biochim. Biophys. – 1979. – № 5. – P. 1613–1617. 174. Irvin, К. Tree effective ways to improv reproductive perfomance in swine / К. Irvin // Animal Sc. Series. – 1982. – № 1. – P. 26–29. 175. Kopecny, M. Polymorphism in the porcine NGFB gene detected By DGGE and its linkage mapping / M. Kopecny, A. Stratil, S. Cepica, G. Moser // Czech J. Anim. Sci. – 2000. – № 4. – P. 189–192. 176. Lewis, J. R. The Ecology of Rocky Shores, Hodder and Stoughton / J. R. Lewis. – London, 1976. 177. Low dose insemination in the sow – a review / P. Ratk // Reprod. Domest. Anim. – 2002. – № 37. – P. 201–205. 178. Litter characteristics of gilts artificially inseminated with transforming growth factor-P / Rhodes Michelle, Brendemuhl Joel H., Hansen Peter J. // AJRI: Amer. J. Reprod. Immunol. – 2006. – № 3. – P. 153–156. 179. Myers, J. M. Genetic behavioural and reproductive attributes of dispersing field voles / J. M. Myers, C. J. Krebs // Microtus pennsylvanicus and Microtus ochrogaster, Ecological Monographs. – 1971. – P. 53–78. 180. Peterson, G. Realized heritability, response and correlaed response due toselection for sow productivity index in Landras swine / G. Peterson, K Irvin // Anim. Sc. Dep. Ser. – 89-1. – 1989. – P. 1–2. 181. Pianka, E. R. On r-fnd K-selection, American Naturalist / E. R. Pianka. – 1970. – P. 592–597. 101 182. Peters, R. H. The Ecological Implucations of Body Size / R. H. Peters. – Cambridge : Cambridg University Press, 1983. 183. Rosenfeld, M. G. Possible role of specihe fluid peptilase in implantation in the rat / M. G. Rosenfeld, M. S. Joshi // J. Rtprod. Fert. – 1977. – № 51. – P. 137–139. 184. Sperm morphology and fertility: Докл. [3 international Symposium on stallion Peproduction, Fort Collins, Colo, Jan. 10–12, 2001] / F. Clement, Y. Ladonnet, M. Magistrini // Anim. Reprod. Sci. – 2001. – № 3–4. – Р. 362–363. 185. Stamm, G. W. Artificial breeding and livestock improvement / G. W. Stamm // Windsor press Chicago – New York. – 1954. 186. Thomson, G. The effect of a selected locus on linked neurral loci / G. Thomson // Genetics, 85. – 1977. – Р. 753–788. 187. The influence of sperm concentration on swine in vitro fertilization / M. Zahan, V. Micleg, C. Man, I. Miclea., I. Roman. Bui. Univ. Sti agr. Si mr Vet., Cluj-Napoca. Ser. Zootehn. Si biotehnol. – 2006. – Р. 319. 188. The influence of pre-and post-ovulatory insemination and early pregnaney on the infiltration by cells of the immune sustem in the sow oviduct / J. Jiwakanon, E. Persson, A.-M. Palin // Reprod. Domest. Anim. – 2006. – № 5. – Р. 455–466. 189. Tang, Guoliang. Zhongguo nondye daxue kuelao / Tang, Guoliang, Shi Wenging, Hou Yunpeng, Lu Yonggiang, Liu Qingyu, Zhu Shien // J. China Agr. Univ. – 2006. – № 4. – Р. 33–36. 190. The role of ocstradiol in the oterine peristalsis in the perfused swine uterus / Т. Maltaris, R. Dittrich, W. Widjaja, C, Sindhuwinata, I. Haffmann, M. W. Beckmann, A. Mueller // Reprod. Domest. Anim. – 2006. – № 6. – Р. 522–526. 191. Vital aspests of fallopian tube physiology in pigs / Hunter R.H.F. // Reprod. Domest. Anim. – 2002. – № 4. – Р. 186– 190. 102 192. Welfate index and reproductive performance in the sow / C. Munsterhjelm, A. Valros, M. Heinonen, O. Halli, O. A. T. Peltoniemi // Reprod. Domest. Anim. – 2006. – № 6. – Р. 494–500. 193. Warian activity and oestrous sigus among group-housed, lactating sows: Iufluence of behaviour, environment and production / F. Hulten, A. Wallenbeek, L. Rydhmer // Reprod. Domest. Fnim. – 2006. – № 5. – Р. 448–454. Научное издание Меликова Юлия Николаевна, Писаренко Наталья Александровна, Скрипкин Валентин Сергеевич ПОВЫШЕНИЕ ВОСПРОИЗВОДИТЕЛЬНОЙ ФУНКЦИИ СВИНЕЙ Монография Главный редактор И. А. Погорелова Заведующий издательским отделом А. В. Андреев Редактор А. Г. Сонникова Техническое редактирование и компьютерная верстка Н. И. Чигиной Подписано в печать 07.09.2011. Формат 60х84 1/16. Бумага офсетная. Гарнитура «Тimes». Печать офсетная. Усл. печ. л. 6,1. Тираж 500 экз. Заказ № 191. Налоговая льгота – Общероссийский классификатор продукции ОК 005-93-953000 Издательство Ставропольского государственного аграрного университета «АГРУС», 355017, г. Ставрополь, пер. Зоотехнический, 12. Тел/факс: (8652) 35-06-94. Е-mail: agrus2007@mail.ru; httр://agrus.stgau.ru. Отпечатано в типографии издательско-полиграфического комплекса СтГАУ «АГРУС», г. Ставрополь, ул. Мира, 302.
