СТЕПЕНЬ ЭНДОГЕННОЙ ИНТОКСИКАЦИИ ОРГАНИЗМА И ОСТРОТА ВОСПАЛЕНИЯ

СТЕПЕНЬ ЭНДОГЕННОЙ ИНТОКСИКАЦИИ ОРГАНИЗМА И ОСТРОТА
ВОСПАЛЕНИЯ ИНФЕЦИРОВАННЫХ КОЖНО-МЫШЕЧНЫХ РАН У ТЕЛЯТ
Ляшенко П.М., Навлютов Р.Н.
ФГБОУ ВПО «Ульяновская ГСХА им. П.А. Столыпина»
DEGREE OF ENDOGENOUS INTOXICATION AND SEVERITY OF INFECTED
INFLAMMATION EPITHELOMUSCULAR RAS CALVES
Lyashenko PM, R.N. Navlyutov
FGBOU VPO "Ulyanovsk State Agricultural Academy them. PA Stolypin "
Во многих случаях низкая эффективность применения традиционных лекарственных
средств
обусловлена
воспалительный
способностью
процесс,
микроорганизмов,
инактивировать
факторы
инициирующих
естественной
гнойно-
резистентности
макроорганизма, ростом доли антибиотико-резистентных и антибиотико-зависимых
штаммов микроорганизмов и образованием ими биопленок, частой сменой возбудителя в
процессе лечения [1, 3, 6].
Кроме того, на течение раневого процесса, безусловно, оказывают серьезное влияние
те целенаправленные воздействия, которые возникают при местном применении новых
средств[7, 8]. Вместе с тем, биологические законы заживления гнойной раны определяют
общность не только объективных критериев оценки течения раневого процесса, но и
принципиальных основ патогенетического лечения ран[2, 4].
Поэтому научная разработка новых средств лечения ран и раневой инфекции должна
основываться на учете патогенетических механизмов раневого процесса, включая
сведения
о
степени
эндогенной
интоксикации
организма
и
остроты
гнойно-
некротического воспаления. [5, 9]
Материалы и методы исследования. Исследование проводили на телятах чернопёстрой породы в возрасте 12 месяцев, весом 200-220 кг. Животные были разделены на
две группы по пять голов. Всем экспериментальным животным наносили кожномышечные раны с латеральной стороны бедра. Лечение ран совершали на вторые сутки
после инфицирования. У животных проводили туалет ран, затем смазывали раневую
поверхность соответствующей эксперименту мазью: в опытной группе – Гипофаевип, в
контрольной – Левомиколь. Кровь брали из ярёмной вены со средней трети шеи.
Количество лейкоцитов устанавливали методом подсчета в камере Горяева. Для
вычисления лейкограммы готовили мазки крови, окрашивали по Романовскому-Гимза
(Филиппсоном). Определяли лейкоцитарный индекс инфильтрации (ЛИИ) по формуле
Я.Я. Кальф-Калифа (цит. по Вернику С.С., 1972).
В нашем случае исходя из полученных данных гематологического исследования крови
животных с гнойными ранами количество лейкоцитов увеличилось, достигнув максимума
на первые сутки в обеих группах, что составило 12,19±1,982x109/л (p<0,05) (выше фона на
78,5%) и 17,33±1,906x109/л (p<0,05) (выше фона на 59,1%), соответственно группам,
вследствие острого воспалительного процесса в зоне патологического очага. В
дальнейшем уровень лейкоцитарных клеток постепенно снижался в опытной группе, к
концу лечения достигнув минимума 6,56±0,169x109/л, что было ниже фона на 4%.
В контрольной группе количество лейкоцитов снижалось до шестого дня лечения, затем
вновь повысилось с девятых суток (на 23,1%), увеличиваясь вплоть до 15-х суток (на
32,7%), далее прослеживалась тенденция к уменьшению количества лейкоцитов. На
момент выздоровления показатели стабилизировались и были ниже фоновых на 8,4%. Всё
вышеперечисленное свидетельствует о возникновении вторичного инфицирования в связи
с неэффективностью действующего вещества мази Левомиколь – левомицетина, из-за
развития резистентности выделенных штаммов из смывов с раневой поверхности и
экссудата в 65% случае.
Наглядным свидетельством течения раневого процесса служит изменение лейкограммы в
процессе заживления гнойной раны. Анализируя данные лейкограммы крови, полученные
в ходе опыта наблюдалось следующее.
Динамика количества базофилов в мазках крови через час после нанесения ран в опытной
группе осталась на прежнем уровне. В контрольной группе количество базофилов
увеличилось на 50% по сравнению с фоновыми показателями. На первые сутки лечения
эти значения снизились до -100%. В опытной группе прослеживалась тенденция к
увеличению количества базофилов и колебаниям их уровня от 0 до 300%. На момент
выздоровления в этой группе превышение фоновых показателей уровня базофилов
составило 100%. В контрольной группе подъём количества базофилов до шестых суток на
100%, далее наблюдалось снижение по сравнению с фоном на 50%.
Уровень эозинофилов в мазках крови перед нанесением ран составил 3,20±0,583 в
опытной и 2,40±0,748 в контрольной группе. Через час после нанесения ран количество
эозинофилов увеличилось в обеих группах на 25% и 91,7% соответственно. На
протяжении всего лечения остался на высоком уровне по сравнению с фоновыми
показателям. Так на первые сутки повышение по сравнению с фоном составляло 131,3% в
опытной и 100% в контрольной группе. В дальнейшем, в ходе заживления,
прослеживалась тенденция к незначительным отклонениям то в сторону уменьшения, то
увеличения.
Фоновые показатели юных нейтрофилов равнялись 0,80±0,374 в опытной и 0,60±0,400 в
контрольной группе. Через час после нанесения ран их количество увеличилось на 175,0%
и 200% соответственно группам. На первые сутки отмечено существенное повышение
юных лимфоцитов на 1800% и 4833% в каждой соответствующей группе относительно
фоновых показателей. На третьи сутки зарегистрирован максимальный подъём юных
форм нейтрофилов, что составило 3125% и 5566,7%. С шестых суток наблюдалось
постепенное снижение уровня юных нейтрофилов – на 1725% в опытной и 3666,7% в
контрольной группе выше фона. На момент выздоровления эти показатели составили 50%
и 266,7% выше фоновых соответственно группам.
Перед нанесением ран уровень юных форм нейтрофилов в крови исследуемых животных
был практически одинаковым, затем произошло резкое их повышение с первых по третьи
сутки лечения. С шестых суток происходило стабильное постепенное понижение данных
нейтрофилов.
Количество палочкоядерных лимфоцитов в опытной и контрольной группах в среднем
составляло 3,70±0,509. через час после нанесения ран уровень их увеличился на 5,3% в
опытной и 5,6% в контрольной группе. В опытной группе с первых по девятые сутки
происходило
увеличение
палочкоядерных
нейтрофилов
(с
126,3%
по
247,4%
соответственно дням) по сравнению с фоновыми показателями. Далее в этой группе
данные нейтрофилы постепенно снижались и на момент выздоровления были выше она на
115,8%.
В контрольной группе с первых по шестые сутки отмечалось повышение палочкоядерных
форм нейтрофилов на 38,9% и 255,6% соответственно дням. На девятые сутки
наблюдалось спад их до 138,9% выше фоновых показателей. На 12-е и 15-е сутки
отмечалась тенденция к увеличению палочкоядерных лимфоцитов на 316,7% выше фона.
Далее происходило снижение уровня данных нейтрофилов. И на момент выздоровления
количество их составляло на 133,3% по сравнению с фоном.
Количество сегментоядерных нейтрофилов через час после нанесения ран и до третьих
суток снижалось с 38,2% до 97,1% по сравнению с фоновыми показателями. В
контрольной группе также наблюдалось снижение нейтрофилов с 38,7% до 98,1%
соответственно. С шестых суток прослеживалась тенденция к постепенному плавному
повышению количества сегментоядерных форм с 84,3% (ниже фона) в опытной и 94,3% в
контрольной группе. На момент выздоровления уровень сегментоядерных нейтрофилов
был выше фона на 25,5% и 1,9% в соответствующих группах.
Уровень лимфоцитов через час после нанесения ран повысился на 4,6% в опытной и 3,5%
в контрольной группе. Далее на протяжении всего периода лечения ран уровень
лимфоцитов был сниженным по сравнению с фоновыми показателями. С первых по
третьи сутки происходило снижение лимфоцитарных клеток в обеих группах. В опытной
группе в первый день на 11,4% и в третий день на 20,6%, в контрольной соответственно
на 19,1% и 34,1% ниже фона. Затем прослеживались колебания в сторону уменьшения или
увеличения. Эти показатели оставались ниже фоновых и на момент выздоровления, что
составило в опытной группе 22,7%, а в контрольной на 17,7% ниже фоновых значений.
Уровень моноцитов в мазках крови через час после нанесения ран снизился до -100% в
опытной и на 50% в контрольной группе. В опытной группе с первых суток оставался на
прежнем уровне. На шестые сутки количество моноцитов снизилось до -100%. На девятые
сутки произошло резкое увеличение уровня моноцитов в этой группе на 1300%, далее их
значение постепенно снижалось с 12-х (на 700% выше фоновых показателей) до кона
лечения (выше фона на 200%). В конце полного заживления раневого дефекта уровень
моноцитов приравнялся к фоновым значениям.
В контрольной группе уровень моноцитов достигнул максимума по сравнению с фоном на
19-е сутки лечения, и составило 450%. На момент выздоровления эти значения были выше
фоновых на 50%.
В опытных группах фоновые значения лейкоцитарного индекса инфильтрации тканей
(ЛИИ) составили 0,12±0,012. Через час после нанесения ран произошло снижение уровня
ЛИИ на 33,3% и 41,7% в группе Гипофаевип и Левомиколь соответственно. С первых
суток наблюдалось увеличение ЛИИ на 8,3% в группе Гипофаевип и на 441,7% в группе
Левомиколь. На третьи сутки в обеих группах отмечено увеличение лейкоцитарного
индекса инфильтрации на 233,3% и на 716,7% в каждой соответственной группе. Далее в
группе Гипофаевип происходило плавное уменьшение уровня ЛИИ, а в группе
Левомиколь уровень ЛИИ был значительно выше. На 23-е сутки лечения гнойных ран
ЛИИ в группе Гипофаевип был выше фоновых показателей на 66,7%, а в группе
Левомиколь на 133,3%. На момент заживления дефекта ЛИИ выровнялся в обеих группах
и составил увеличение по сравнению с фоном на 8,3%.
Список использованной литературы
1.
Ермолаев, В.А. Затраты времени на лечение хирургической патологии в области
пальцев крупного рогатого скота / В.А. Ермолаев, О.А. Липатова, Е.М. Марьин
//Материалы Международной научно- практической конференции, посвящённой 65-летия
Ульяновской ГСХА «Актуальные вопросы наука и образования». – Ульяновск: УГСХА,
2008. - С. 42-45.
2.
Ермолаев, В.А. Динамика морфологических показателей крови бычков с гнойными
ранами/ В.А. Ермолаев, Е.Н. Никулина //Учёные записки Казанской государственной
академии ветеринарной медицины им Н.Э. Баумана. - 2010. - Том 203. - С. 109-114.
3.
Ляшенко, Павел Михайлович. Лечение гнойно-некротических поражений пальцев у
коров препаратом «гипофаевип» и корректорами системы гемостаза: дис. … кандидата
ветеринарных наук : 16.00.05 / П.М. Ляшенко. -Оренбург, 2006. - 197 с.
4.
Ляшенко, П.М. Коррекция системы гемостаза при болезнях пальцев у крупного
рогатого скота / П.М. Ляшенко, В.А. Ермолаев, Е.М. Марьин // Известия Оренбургского
государственного аграрного университета. - 2013. - № 6 (44).- С. 80-81.
5.
Марьин, Е.М. Природные сорбенты в лечении гнойных ран у животных:
монография/ Е. М. Марьин, В. А. Ермолаев, О. Н. Марьина. - Ульяновск: УГСХА, 2010. –
141 с.
6.
Общая хирургия животных. Учебник для вузов/ С.В. Тимофеев, Ю.И.Филиппов,
С.Ю.Концевая, С.В. Позябин, П.А.Солдатов, С.М. Панинский, Д.А. Дервишов,
Н.П.Лысенко, В.А. Ермолаев, М.Ш.Шакуров, В.А. Черванёв, Л.Д.Трояновская, А.А.
Стекольников, Б.С.Семёнов. – М.: ООО «Зоомедлид», 2007. - 670 с.
7.
Сапожников, А.В. Клинико-морфологические показатели крови при лечении ран
светодиодным излучением красного диапазона/А.В. Сапожников, И.С. Сухина, В.А.
Ермолаев// Материалы II Открытой Всероссийской научно-практической конференции
молодых учёных «Молодёжь и наука XXI века». -Ульяновск: УГСХА, 2007. -Часть 1. С.148-151.
8.
Симонова, В.Н. Влияние линимента «Гипофаевип» на экспериментальные
инфицированные раны лабораторных мышей / В.Н. Симонова, П.М. Ляшенко, В.А.
Ермолаев // Материалы II Открытой Всероссийской научно-практической конференции
молодых ученых «Молодежь и наука XXI века». - Ульяновск: УГСХА, 2007. - С. 153-155.
9.
Симонова, В.Н. Методические рекомендации по изготовлению и преминению
гидрофильной мази «Гипофаевип» /В.Н. Симонова, П.М. Ляшенко, В.А. Ермолаев. Ульяновск: УГСХА, 2007. – 22 с.