министерство науки и образования республики казахстан
advertisement
МИНИСТЕРСТВО НАУКИ И ОБРАЗОВАНИЯ РЕСПУБЛИКИ КАЗАХСТАН МУРЗАГУЛОВ К.К., В.В.МАЛАШКО МЕТОДЫ ДИАГНОСТИЧЕСКОЙ И ТЕРАПЕВТИЧЕСКОЙ ТЕХНИКИ В ВЕТЕРИНАРНОЙ ПРАКТИКЕ УЧЕБНОЕ ПОСОБИЕ АСТАНА 2013 УДК: 619 : 616.31 – 07 (075.8) ББК Авторы: доктор ветеринарных наук, профессор медицины Мурзагулов Кайрулла им.С. Сейфуллина кафедры ветеринарной Каирович, КазАТУ доктор ветеринарных наук, профессор Малашко Виктор Викторович, декан факультета ветеринарной медицины УО «Гродненский государственный аграрный университет» Рецензенты: доктор ветеринарных наук, профессор, заведующий кафедрой ветеринарной санитарии Абдрахманов С.К. кандидат ветеринарных наук, доцент, главный специалист ГУ«Национальный центр мониторинга, референции, лабораторной диагностики методологии в ветеринарии» МСХ РК Пашенцев В.А. ISBN 9965-799-77-6 МЕТОДЫ ДИАГНОСТИЧЕСКОЙ И ТЕРАПЕВТИЧЕСКОЙ ТЕХНИКИ В ВЕТЕРИНАРНОЙ ПРАКТИКЕ К.К. Мурзагулов, В.В.Малашко – КазАТУ им.С.Сейфуллина 2013 - с. 130 Рекомендовано научно-методическим советом КазАТУ им.С.Сейфуллина __________ 2013 г., протокол № ______ 2 СОДЕРЖАНИЕ стр. Введение…………………………………………………………………… 4 Личная гигиена и техника безопасности при работе с животными… 4 Фиксация животных………………………………………………….….. 5 Состав крови, стабилизаторы, общие условия отбора проб………… 10 Лекарственные вещества и их дозирование ………………………….. 34 Методы введения лекарственных веществ……………………………… 35 Энтеральные методы введения лекарственных веществ……………… 36 Введение лекарственных веществ через рот…………………………… 36 Введение лекарственных форм с помощью аппарата Малахова …….. 38 Введение жидких лекарственных веществ через зонд.......................... 39 Прокол рубца у коровы при простой тимпании...................................... 47 Пункция книжки у коровы....................................................................... 48 Введение лекарственных веществ через прямую кишку (клизма)..... 50 Парентеральные методы введения лекарственных веществ………… 55 Внутрикожные инъекции....................................................................... 57 Подкожные инъекции............................................................................. 59 Внутримышечные инъекции.................................................................. 60 Внутривенные инъекции........................................................................ 61 Внутрибрюшинные инъекции............................................................... 65 Внутрикостные инъекции...................................................................... 67 Внутритрахеальные инъекции.................................................................... 84 Ингаляция. Аэрозолетерапия................................................................ 86 Новокаиновые блокады……………………………………….. ……… 89 Светолечение (фототерапия)…………………………………. ………. 95 Электролечение………………………………………………………… 107 Терапия раздражающими и отвлекающими средствами…………… 120 Механотерапия…………………………………………………. …… . 122 Водолечебные процедуры……………………………………………. 123 Литература ..…………………………………………………………. 130 3 ВВЕДЕНИЕ Внутренние незаразные болезни составляют 80-90 % от общего числа заболеваний, регистрируемых у животных. Эти болезни наносят большой экономический ущерб животноводству вследствие падежа, вынужденного убоя, снижения продуктивности, а также отставания в росте и развитии молодняка. Создание крупных животноводческих хозяйств предусматривает широкое использование как старых, уже апробированных методов оказания лечебной помощи, так и новых, только внедряемых в лечебную работу. Владение методами терапевтической техники, выбор того или другого пути введения лекарственных препаратов в организм больного животного, использование комплекса терапевтических воздействий повышает экономическую эффективность терапевтических мероприятий при заболеваниях различной этиологии. При массовых заболеваниях животных применяют методы групповой терапии. В последние годы с этой целью широко внедряется аэрозольный метод введения лекарственных веществ. В предлагаемом пособии подробно описана методика проведения аэрозолетерапии, приведены формулы для определения дозировки лекарственных веществ при этом методе введения препаратов. В комплексе патогенетической терапии широко используются физиотерапевтические процедуры: ультрафиолетовое и инфракрасное облучение, электролечение, гидротерапия, новокаиновые блокады. Индивидуальная терапия и профилактика строятся с учётом нозологических принадлежностей возможных или возникших нарушений здоровья. Фундаментальными принципами при этом являются физиологичность, активность, комплексность, индивидуальность и профилактическая направленность ветеринарных мероприятий. В то же время неумелая манипуляция при неотработанной технике оказания лечебной помощи может привести к различным осложнениям, вплоть до летального исхода. Исходя из того, что в перспективе в области ветеринарии исключительное значение приобретает широкое использование совокупности научных знаний и практического опыта, их направленное углубление и расширение в области лечения и профилактики животных, авторы поставили перед собой задачу обобщения как традиционных, так и ряда сравнительно новых технических приёмов, средств и методов проведения этой работы на клиническом уровне. Личная гигиена и техника безопасности при работе с животными Успешное проведение клинического исследования больного животного с целью постановки диагноза во многом зависит от умелого и правильного обращения врача с пациентом. При этом необходимо строго соблюдать 4 правила техники безопасности, как самому специалисту, так и вспомогательному персоналу. Обращение с животным должно быть спокойным, ласковым, при необходимости - строгим. Особенное внимание следует уделять вопросам личной гигиены. Во время исследования животного необходимо быть в спецодежде (халат, комбинезон, головной убор), а при необходимости - в резиновых перчатках и обуви. Перед началом и по окончании работы следует обязательно вымыть руки и очистить инструмент. При подозрении на заразную болезнь необходимо провести дезинфекцию места исследования, спецодежды, использованных инструментов и приспособлений. Также необходимо знать и строго соблюдать правила обращения с различными видами животных и птицы, умело их фиксировать, а при необходимости и укрощать. Исследование больного животного проводят по определенному плану, тщательно и с соблюдением тишины, чтобы исключить пропуск каких-либо признаков патологического процесса и получить достоверный клинический результат. Систематичность и добросовестность исследования позволяют наиболее полно выявить и правильно оценить симптомы болезни, поставить точный диагноз и квалифицированно оказать животному лечебную помощь. При работе с животными необходимо знать их видовые и индивидуальные особенности и пользоваться ими в процессе исследования. Недопустимы грубые манипуляции, резкие движения и побои. В то же время это не исключает наказания строптивых и злонравных животных. Во время исследования крупных животных не следует приседать или становиться на колено, так как они могут внезапно упасть, например, лошадь при остром расширении желудка, метеоризме кишечника, корова при травматическом ретикулите, тимпании. Не следует неожиданно, грубо прикасаться к какому-либо участку тела, особенно в области половых органов и тазовых конечностей. Необходимо работать таким образом, чтобы пациент видел или постоянно чувствовал все манипуляции специалиста. Фиксация животных. При клиническом исследовании возбужденных, строптивых или злонравных животных следует прибегать к фиксации, выбирая способы и методы, которые обеспечивают безопасность и эффективность работы. При этом следует учитывать сложность, длительность и болезненность предстоящей процедуры. Крупный рогатый скот может нанести травму рогами, головой, тазовыми конечностями, которыми бьет вперед, вбок и на небольшое расстояние назад. Поэтому подходить к нему следует сбоку ближе к голове, лучше со стороны, на которой стоит помощник, удерживающий животное. Беспокойных животных следует погладить по шее, лопатке, почесать за ушами. Взрослых коров удерживают двумя руками, при этом левой обхватывают ближний рог, верх которого закрывают большим пальцем, а пальцами правой руки сжимают носовую перегородку. Последнюю также можно сдавливать посредством щипцов Гармса, Николаева, Кумсиева и др. 5 с целью причинить боль и укротить строптивых животных (рис.2). Движения животного ограничивают накладыванием веревочной петли на рога, на шею (узел должен быть неподвижным) или на рога, голову и второй петли вокруг носа. Тазовые конечности фиксируют петлей, которую накладывают выше скакательного сустава, закруткой на голень или посредством поднятия и удержания одной из конечностей (рис.1). При необходимости длительных или болезненных манипуляций используют фиксационные станки различной конструкции, осуществляют повал животного. а) б) Рис.1 - Фиксация тазовых конечностей коровы: а) закруткой на голень; б) веревочной петлей Рис.2 - Фиксация коровы: а) за рог и носовую перегородку; б) носовыми щипцами; в) при помощи зажима. Быков фиксируют с помощью ремня-ошейника, недоуздка и носового кольца с обязательным применением палки-водила длиной около 2 м, что предупреждает внезапное нападение животного на человека. Телят удерживают руками за голову, шею, уши или с помощью веревочной шейной петли с неподвижным узлом. Овец и коз фиксируют за рога, шею или в лежачем положении придерживая голову, туловище и конечности. Лошадь в процессе эксплуатации привыкает, что к ней подходят спереди с левой стороны. Перед тем как зайти в денник или стойло, 6 животное окликают, подходят осторожно и в то же время уверенно, берут левой рукой за уздечку или за гриву, а правой поглаживают и похлопывают по шее. Необходимо помнить, что лошадь может ударить головой, конечностями или укусить. Для фиксации используют несколько групп методов: смещение центра тяжести тела (приподнимание вверх головы, поднятие грудной или тазовой конечности с той стороны, с которой проводится исследование); ограничение движения (удержание за уздечку или на растяжках, в станке, наложение путового ремня на конечности, посредством случной шлеи, подведение под живот ремней); болевые (наложение закрутки или металлического зажима). Грудную конечность фиксируют, подняв за щетку или путовую часть и согнув в запястном суставе. При этом располагаются сбоку от животного спиной к его голове (рис. 3). Поднятую конечность удерживают двумя руками, а при длительной работе - с помощью веревки, перекинутой через спину. Не следует привязывать веревку к какому-либо предмету или обматывать вокруг туловища животного, поскольку при неожиданном падении лошадь не сможет быстро освободить конечность. Нельзя также класть поднятую конечность животного на свою ногу, так как у пациента появляется четвертая точка опоры, а это небезопасно для исследователя. Рис. 3 - Фиксация лошади поднятием грудной конечности Для наложения случной шлеи середину ремня или веревки располагают на холке, а свободные концы пропускают между передними конечностями и завязывают на задних выше скакательного сустава. При фиксировании тазовой конечности следует стать у крупа лошади лицом к хвосту, одной рукой опереться на маклок, а другой поднять ногу. Голова животного при этом должна быть поднята максимально высоко. Закрутку на верхнюю губу накладывают при укрощении строптивых, злонравных лошадей или при проведении болезненных манипуляций: взятия крови, хирургического вмешательства и др. Чтобы наложить закрутку, 7 кисть правой руки вводят в петлю и захватывают верхнюю губу, предварительно оттянув ее вперед. Левой рукой перемещают петлю на губу и закручивают (рис. 4). Закрутку можно также накладывать и на основание ушной раковины. Рис. 4 - Накладывание лошади закрутки на верхнюю губу Жеребят удерживают руками за голову, уши, шею или с помощью шейной веревочной петли. При фиксации в лежачем положении прижимают голову, а на конечности накладывают путовый ремень. Свиней фиксируют в стоячем положении посредством захвата верхней челюсти специальными щипцами различной конструкции, проволочным тросом или крепкой тесьмой с ручкодержателем (рис. 5). Однако при этом животные издают резкие крики и постоянно стремятся освободиться, что делает невозможным их исследование. Поэтому лучше свиньям предварительно дать корм, почесать за ушами, погладить живот и одновременно с этим проводить необходимые манипуляции. а) б) Рис. 5 - Фиксация свиней: а) щипцами; б) закруткой. 8 Собак следует исследовать только при наличии намордника или после накладывания на челюсти тесьмы, которая завязывается простым узлом под нижней челюстью и затем надежно закрепляется на затылке (рис. 6). Короткомордным собакам в ротовую полость вставляют и закрепляют тесьмой деревянную палку диаметром 2-3 см, длиной 20-30 см. Агрессивных, беспокойных животных Рис. 6 - Фиксация помещают в специальную клетку с челюстей собаки подвижной боковой стенкой. помощью тесьмы . Для фиксации в лежачем положении используют специальный операционный стол, при этом привязывают грудные и тазовые конечности. Нередко собакам применяют местноанестезирующие средства и миорелаксанты. Все процедуры и манипуляции необходимо проводить в присутствии и с помощью хозяина. Кошек при болезненных манипуляциях фиксируют в матерчатом рукаве или обертывают полотенцем, оставляя свободным исследуемый участок тела. Морду можно завязать так, как собаке, а лапы фиксировать руками обязательно в перчатках. Пушных зверей удерживают различными щипцами или руками в специальных перчатках. Зверей исследуют в лежачем положении, держа одной рукой за шею, а другой - за туловище. Можно использовать намордники, сетчатые ловушки, клетки с подвижными стенками. Иногда применяют миорелаксанты. Птицу фиксируют за конечности и крылья, при этом нельзя сдавливать грудную клетку, чтобы избежать удушья (рис. 7). Рис. 7 - Фиксация кур руками: а) за конечности и крылья; б) туловище 9 ОТБОР ПРОБ КРОВИ У РАЗЛИЧНЫХ ВИДОВ ЖИВОТНЫХ Лабораторный анализ периферической крови является одним из важнейших диагностических методов исследования. Особенно важное значение исследование крови имеет при раннем распознавании скрыто протекающих инфекций (лейкоз, бруцеллез, лептоспироз и др.), кровопаразитарных (бабезиоз, пироплазмоз, нутталиоз и др.) и незаразных (анемия, сахарный диабет, остеодистрофия и др.) болезней, при проведении диспансеризации продуктивных животных, для контроля состояния здоровья и полноценности кормления, при программировании продуктивности и т.д. Гематологические исследования позволяют уточнять диагноз заболевания, судить о тяжести течения болезни и об иммунном статусе животного, прогнозировать исход болезни и возникновение осложнений, корректировать лечебные мероприятия, проводить дифференциальную диагностику в комплексе с другими методами обследования, изучать интерьерные качества животных и т.д. Особую ценность приобретают гематологические исследования в динамике патологического процесса и в сочетании с данными других анализов. Кровь в организме выполняет многообразные функции: транспортную, дыхательную, защитную, терморегулирующую и др. Она отражает все процессы, происходящие в организме, изменяясь как количественно, так и качественно. Кровь вместе с лимфой и тканевой жидкостью обеспечивает постоянство внутренней среды организма гомеостаз. В этой связи исследование крови рекомендуют проводить у каждого заболевшего или подозрительного в заболевании животного. Как известно, первым и наиболее ответственным этапом исследования крови является ее получение у животных. Начинающие ветеринарные специалисты, студенты высших и учащиеся средних специальных учебных заведений в ряде случаев при этом испытывают определенные затруднения. Связаны они как с недостаточными знаниями по технике взятия крови, так и с соблюдением правил получения сыворотки или плазмы, их хранения, транспортировки проб и т.д. Это, а также отсутствие более-менее полного руководства по отбору проб крови у различных видов животных и послужило мотивом к разработке настоящего учебнометодического пособия. Оно написано в соответствии с учебными программами по клинической диагностике (для вузов по специальности «Ветеринарная медицина»). СОСТАВ КРОВИ, СТАБИЛИЗАТОРЫ, ОБЩИЕ УСЛОВИЯ ОТБОРА ПРОБ Кровь – жидкая ткань, составляющая вместе с лимфой и тканевой жидкостью внутреннюю среду организма. Кровь, а также костный мозг, селезенка, печень, отчасти лимфоидные образования составляют единую систему крови, деятельность которой регулируется нейрогуморальными механизмами. Поддерживая постоянство своего состава, кровь обеспечивает стабилизацию (гомеостаз) внутренней среды и, наряду с 10 нервной системой, функционально объединяет все части организма. Одновременно с этим кровь отражает происходящие в организме нарушения, что проявляется изменением ее морфологического состава и физико-химических свойств. Поэтому в клинической ветеринарной медицине широко используют гематологические анализы. Объем крови составляет в среднем 7-9% от массы тела животного. Состоит кровь из жидкой части – плазмы и взвешенных в ней форменных элементов – эритроцитов, лейкоцитов и кровяных пластинок (тромбоцитов). Клетки составляют около 40% объема крови, плазма – 60%. Метод взятия и получаемое количество крови зависят от того, с какой целью осуществляют ее отбор. Для общего клинического анализа (определение скорости оседания эритроцитов, концентрации гемоглобина, числа эритроцитов, лейкоцитов и тромбоцитов, расчет цветового показателя и среднего содержания гемоглобина в эритроците, выведение лейкограммы) или изготовления мазка при диагностике кровепаразитарных заболеваний требуется небольшое количество крови, от нескольких капель до 1 мл. Ее получают у сельскохозяйственных животных из кровеносных сосудов наружной и внутренней поверхности уха, у птиц – из гребешка или сережек (у гусей и уток – из мягкой ступни ног), а у пушных зверей – из мякиша пальца. При взятии крови следует соблюдать правила асептики и избегать попадания крови в окружающую среду (на руки, ограждающие конструкции, предметы обихода, других животных и т.д.). При необходимости шерсть на месте укола тщательно выстригают или выбривают. Кожу желательно протереть спирт-эфиром (смесь этанола и этилового эфира в соотношении 1:1) для вызывания местной гиперемии и предотвращения возможных искажений результатов выведения лейкограммы, связанных с некоторым застоем крови в мелких венах. Дезинфицировать место укола можно и 70%-ным этиловым спиртом. Для прокола кожи и сосуда используют иглы Франка, перо Дженнера, скарификатор и другие инструменты (рис.8). При их отсутствии можно воспользоваться острыми короткими инъекционными иглами, лезвиями для бритья, ножницами и т.п. Инструменты обязательно должны быть стерильными. Повторное их использование допускается только после дезинфекции. 1 2 3 4 Рис. 8 - Иглы для взятия небольших количеств крови: 1, 2 – иглы Франка; 3 – перо Дженнера; 4 – игла копьевидная 11 Большое количество крови у животных обычно берут при биохимическом исследовании. У лошадей, крупного рогатого скота, овец, коз при этом проводят пункцию яремной вены или наружной грудной вены. У свиней взятие крови осуществляют из сосудов хвоста, краниальной полой вены, венозного орбитального синуса. У плотоядных – из вен конечностей; у птиц – из подкрыльцовой вены; кроликов – из вен уха; у лабораторных животных – из ушных вен, 1 2 3 4 5 Рис. 9 - Иглы для взятия больших количеств крови: 1 – игла для венопункции; 2 – инъекционные иглы; 3 – игла Каспара; 4 – игла трубчатая ЦИЭМ; 5 – игла для кровопускания яремной вены, хвоста, сердца; у рыб – из сердца, подкожной или хвостовой артерий. Для получения крови в больших количествах используют стерильные кровопускательные иглы различных конструкций (рис. 9). Предложены также разные конструкции приборов – П-1 (рис. 10), ПКЗ-2 (рис. 11), ПКП (рис. 12) и др. Эти приспособления, надежно фиксируя пробирку и кровопускательную иглу, облегчают получение крови из крупных кровеносных сосудов. Однако, подобные приспособления не нашли широкого распространения и в последнее время используются редко. Рис. 10 - Прибор для взятия крови П-1 12 Рис. 11 - Прибор для взятия крови ПКЗ-2 (автор Т.Ф.Зеньков) Рис. 12 - Прибор для взятия крови ПКП (автор Л.И.Пилипенко) В последнее время всё большее распространение получают специальные вакуумные системы для взятия крови. Они просты и удобны в использовании, обеспечивают стерильность получаемой крови. В набор могут входить вакуумные пробирки, как для получения сыворотки, так и для получения стабилизированной крови, содержащие антикоагулянт. Перед использованием систему собирают: в держателе закрепляется игла и пробирка, но при этом обратный конец иглы не должен приближаться к защитной мембране пробирки. После введения иглы в вену и появления крови в игле пробирку вплотную продвигают вглубь держателя. При этом обратный конец иглы прокалывает мембрану пробирки и кровь под воздействием отрицательного давления внутри пробирки начинает заполнять её (рис. 13). а б 13 в Рис. 13 - Вакуумная система для взятия крови: а – в разобранном виде б – в собранном виде перед взятием крови в – при взятии крови В зависимости от предполагаемого исследования получают цельную или дефибринированную кровь, плазму, сыворотку. При взятии крови для получения стабилизированной крови можно использовать как пластиковые, так и стеклянные пробирки, а при получении сыворотки – стеклянные, так как от пластика сверток крови отделяется с большим трудом или вообще не отходит. Отделение свертка крови спицей или стеклянной палочкой от стенок пробирки в данном случае приводит к разрушению эритроцитов, и сыворотка становится гемолизированной, что недопустимо при определении многих биохимических показателей. Для общего клинического анализа пригодна несвернувшаяся или стабилизированная кровь. При исследовании свежеполученной крови предварительно готовят необходимые для анализа посуду и реактивы. Используют кровь через 5-6 минут после взятия. Для увеличения времени свертываемости крови ее иногда собирают в парафинированный сосуд. При этом внутреннюю поверхность посуды и игл смачивают 3%-ным раствором парафина в эфире. Последний быстро испаряется, парафин же тонким слоем покрывает стенки. Для предотвращения свертывания крови и получения плазмы к ней чаще добавляют стабилизаторы или антикоагулянты. С этой целью используют следующие вещества (на 10 мл крови): •50 ЕД гепарина медицинского в растворе (в 1 мл раствора 5000 ЕД); 1-2 капли гепарина отмеривают тонкой иглой для внутрикожной туберкулинизации. •3-4 капли 10%-ного раствора трилона-Б (двунатриевая соль ЭДТА – этилендиаминтетрауксусной кислоты). •30 мг натрия цитрата или 0,3 мл 10%-ного раствора. •15 мг натрия (калия) оксалата или 0,15 мл 10%-ного раствора. •0,3-0,5 мл 10%-ного раствора натрия фторида. При подсчете форменных элементов крови с использованием клеточных анализаторов (MEDONIC CA 620 и др.) могут получаться ложно завышенные количества лейкоцитов и заниженные количества тромбоцитов ввиду того, что скопления тромбоцитов по размеру, плотности схожи с ядрами лейкоцитов и учитываются аппаратом как 14 лейкоциты. Во избежание подобных нарушений рекомендуется использовать соотношение антикоагулянта (гепарин, 10% р-р трилона-Б) и крови 1:50 (например: 20 мкл антикоагулянта и 1000 мкл (1 мл) крови). Для одновременной стабилизации и консервации крови используют смесь, состоящую из 10 весовых частей натрия фторида, 1 части тимола и 3 частей калия оксалата. Смесь растирают в ступке: 50 мг этой смеси прибавляют на 15 мл крови. Чтобы кровь хорошо перемешивалась с антикоагулянтом в пробирке, ее закрывают пробкой и 10-15 раз легко переворачивают не взбалтывая. Стабилизированную кровь хранят в холодильнике при температуре +4оС. Для подсчета эритроцитов кровь пригодна в течение 72 часов, для приготовления мазков – не более 24 часов (при стабилизации гепарином). Желательно при подсчете числа лейкоцитов и выведении лейкограммы использовать кровь в течение первого часа после взятия ввиду того, что лейкоциты со временем прилипают к стенкам пробирки. Дефибринируют кровь посредством взбалтывания в сосуде со стеклянными или фарфоровыми бусами в течение 15 минут. Затем кровь фильтруют через двойной слой марли. Фильтрат после длительного отстаивания или центрифугирования расслаивается на сыворотку и осадок, состоящий из форменных элементов. Сыворотку крови осторожно сливают или отсасывают пипеткой, а осадок обычно используют для приготовления суспензии эритроцитов. Для получения сыворотки периферическую кровь берут в сухие, чистые пробирки и ставят в термостат при температуре 35-37оС для ускорения свертывания на 30-40 минут, после чего центрифугируют в течение 5-10 минут при 1,5-2 тыс. об./мин. Сыворотку сливают или отсасывают пипеткой. ВЗЯТИЕ КРОВИ У КРУПНОГО И МЕЛКОГО РОГАТОГО СКОТА Коров фиксируют в станке, с помощью веревки за рога, носовое кольцо (бык), привязывают животных к столбу, стеновым кольцам или фиксируют двумя руками за рога, рог и носовую перегородку, применяют носовые щипцы Гармса или Кумсиева. Небольшое количество крови берут из краевых сосудов уха. Техника взятия крови следующая. Основание уха перетягивают жгутом, в результате чего четко вырисовывается сосудистый рисунок ушной раковины. Если кровь из уха данного животного берут первый раз, то место укола выбирают ближе к периферическим окончаниям сосудов. Повторные взятия крови производят ближе к основанию уха. Место укола выстригают, кожу тщательно протирают спирт-эфиром. На палец, располагающийся под предполагаемым местом прокола, кладут ватный тампон. Укол проводят стерильной иглой, острием скальпеля или другим инструментом поперек сосуда. Место укола должно быть сухим, в противном случае капля крови 15 расплывается, не образуя сферической поверхности, что весьма нежелательно. Первую каплю, крови удаляют стерильным ватно-марлевым тампоном (при исследовании на кровепаразитарные болезни используют только первую каплю крови). Последующие капли используют для гематологических исследований. Это связано с тем, что в первой капле крови наблюдается завышенное содержание моноцитов, и в ней же обнаруживают наибольшее количество пораженных кровяными паразитами эритроцитов. Нельзя сжимать и массировать сосуды при недостаточном истечении крови, так как в нее примешивается лимфа, что искажает результаты исследования. В этом случае лучше выбрать новое место для получения крови. Гиперемию сосудов можно вызвать притиранием поверхности уха ватным тампоном, смоченным ксилолом. После взятия крови место укола обрабатывают 5%-ным спиртовым раствором йода и слегка сжимают стерильным ватно-марлевым тампоном для остановки кровотечения. Обычно для этого достаточно 2-3 минут. Взятие крови из яремной вены. Наружная яремная вена в области шеи располагается поверхностно под кожей, в яремном желобе, который образован плечеголовной и грудино-головной мышцами. Лучшим местом для пункции яремной вены является граница верхней и средней трети шеи. При смещении точки прокола к голове можно повредить сонную артерию, а в нижней части вены наиболее велика вероятность повреждения клапанов вены. Для уточнения места расположения яремной вены среднюю часть ее пережимают большим пальцем левой руки или накладывают на шею резиновый жгут. Врач располагается с левой стороны животного. Периферический отрезок вены, расположенный к голове, наполняется кровью и становится хорошо заметным. У быков и у других крупных животных с хорошей упитанностью даже хорошо наполненная вена бывает заметна плохо. В таких случаях, пережимая вену несколько раз и отпуская, удается проследить движение волны крови. Кроме того, приподняв голову животного и слегка изогнув его шею в противоположную сторону, создают такое положение шеи, при котором наполненная яремная вена проявляется лучше, особенно при хорошем освещении. В намеченном месте пункции яремной вены изогнутыми ножницами выстригают волосы, обрабатывают кожу антисептическим раствором. Яремную вену пережимают большим пальцем левой руки или резиновым жгутом. Пункционную иглу фиксируют между большим и указательным пальцами правой руки. Скос иглы обращают наружу. Прокол осуществляют сильным толчком под углом 40-45о к поверхности кожи по направлению к голове. При таком направлении иглы не всегда удается одним движением пройти кожу и попасть в полость вены. Если игла после прокола кожи в вену не попала, то, не извлекая ее конца из кожи, оттягивают назад и, направляя острие на стенку вены, снова делают прокол. Иногда игла 16 закупоривается кусочком кожи, при этом кровь из иглы или совсем не поступает, или вытекает по каплям. Противопоказано очищать иглу, находящуюся под кожей или в вене, мандреном, так как возможна эмболия в жизненно важные органы. При закупорке иглы ее немедленно извлекают и заменяют другой. Повторные пункции вены в одном и том же месте недопустимы из-за высокого риска образования гематомы, развития тромбофлебита. Наиболее благоприятным и менее болезненным для животного является одномоментный способ введения иглы. В этом случае стремятся одним ударом пробить иглой кожу и стенку вены. Большим пальцем правой руки иглу прижимают ко 2-ой и 3-й фалангам указательного пальца, при этом сама игла не должна выступать более чем на 3 см, в противном случае это может привести к проколу противоположной стенки вены. Если игла правильно попала в вену, то кровь тотчас же начинает вытекать ровной, плавной струей. Если же игла прошла через просвет вены, то она только наполнится кровью. В этом случае, быстро оттянув иглу несколько назад, получают нормальную струю крови. Если этого не произошло, то возможно, что в просвете иглы уже успел образоваться тромб. Поэтому ее извлекают и заменяют другой. Кровь, вытекающая из иглы, во избежание гемолиза и вспенивания, должна течь по стенке пробирки. Перед извлечением иглы отпускают жгут или палец руки, вену сдавливают большим пальцем выше места укола, чтобы избежать кровотечения и образования гематомы. После извлечения иглы место укола обрабатывают антисептиком и при необходимости заклеивают ватномарлевым тампоном, смоченным коллодием. Однако при подобном способе взятия крови часто некоторое её количество попадает на руки, одежду, других животных, кормушки, пол и т.д., что создает риск распространения инфекционных заболеваний. В связи с этим подобная техника взятия крови может использоваться только в отношении заведомо здоровых животных. В иных случаях используют технику, при которой в одной руке удерживается игла и пробирка (рис. 14). При этом канюля иглы погружается в пробирку и в таком положении игла с усилием вводится в вену, кровь попадает сразу в пробирку. Можно также кровь из вены набирать в шприц (рис. 15). При этом после введения иглы в просвет вены медленно оттягивают на себя поршень, избегая создания избыточного давления в полости шприца. При перемещении крови из шприца в пробирку предварительно отсоединяют иглу, после чего, нажимая на поршень, переливают кровь в пробирку. 17 Рис. 14 - Фиксация в одной руке иглы и пробирки Рис. 15 - Взятие крови у коровы из яремной вены У коров также можно брать кровь из молочной вены (рис. 16). В последнее время проводится внедрение способа взятия крови из хвостовой вены (рис. 17). При этом жесткая фиксация животного, как правило, не требуется. Хвост животного медленно подымают вверх и удерживается в таком положении. Место взятия крови – вентральную поверхность хвоста в области 2-5 хвостовых позвонков – очищают и дезинфицируют спиртом или 5% раствором йода. Иглу вводят по сагиттальной линии перпендикулярно хвостовым позвонкам до упора на глубину 5-10 мм, после чего медленно оттягивают на себя поршень шприца, при необходимости иглу погружают глубже либо подводят ближе к коже. Взятие крови у овец и коз проводят как и у крупного рогатого скота. При наличии длинного шерстного покрова, его удаляют ножницами или раздвигают руками. Кровь у овец берут в присутствии других животных данного вида. 18 Рис. 16 - Взятие крови у коров из молочной вены Рис. 17 - Взятие крови у коровы из хвостовой вены ВЗЯТИЕ КРОВИ У ЛОШАДЕЙ При получении крови у лошадей особое внимание уделяют фиксации этих животных. Лошади при неумелом с ними обращении могут укусить, ударить головой или конечностями, прижать своим телом к неподвижному предмету, ограждающим конструкциям. Лучше всего фиксировать животное в специальных фиксационных станках. Если последние отсутствуют, то у лошади тщательно фиксируют конечности и голову. Для строптивых животных используют болевые способы фиксации (укрощение), такие как наложение закрутки на верхнюю губу или на основание уха. В небольших количествах кровь берут из краевых сосудов уха. Следует обратить внимание на то, что кровеносные сосуды у лошадей проходят по внутренней поверхности ушной раковины. Волосяной покров на месте укола выстригают или выбривают безопасной бритвой и обезжиривают спирт-эфиром. В дальнейшем техника взятия крови у 19 лошадей такая же, как у крупного рогатого скота. Большие количества крови у лошадей берут из яремной или наружной грудной вен (рис. 18). Рис. 18 - Крупные подкожные вены у лошади (указаны стрелками): 1 – яремная; 2 – наружная грудная При получении крови из яремной вены помощник фиксирует голову животного. Ветспециалист пережимает яремную вену в средней части шеи и приемами, описанными выше у крупного рогатого скота, берет кровь. У лошадей тяжеловозных пород даже хорошо наполненная вена заметна плохо. Для уточнения места расположения яремной вены ее несколько раз пережимают и отпускают, в этом случае удается проследить движение волны крови по яремной вене. Получение крови из наружной грудной (шпорной) вены. Наружная грудная вена располагается на вентральной поверхности грудной стенки, книзу от широчайшей мышцы спины и вдоль дорсального края глубокой грудной мышцы. У животных средней и низкой упитанности и имеющих короткий волосяной покров вена хорошо заметна. Вену сжимают пальцами непосредственно за плечевым суставом, а иглу вкалывают несколько ниже места прижатия. Прокол кожи делают под углом 40-50о, а вены – 30-35о. Иглу направляют каудально (против тока крови). После прокола кожи ее несколько прижимают позади точки укола и оттягивают каудально, что облегчает попадание иглы в вену. ВЗЯТИЕ КРОВИ У СВИНЕЙ Взятие крови из краевых вен уха. Поросят помещают в фиксационный станок, взрослых животных фиксируют петлей за верхнюю челюсть. Место пункции выбривают, обрабатывают антисептиком. Для усиления гиперемии ушную раковину протирают ватой, смоченной ксилолом. Разрез кожи ушной раковины проводят в поперечном направлении, для чего используют скальпель или скарификатор. На остроту инструмента обращают особое внимание, поскольку применение тупых колющережущих предметов травмирует ткани и сосуды, что приводит к быстрому образованию тромба. Ухо располагают таким образом, чтобы вытекающая кровь попадала в пробирку или другой сосуд прямо из места разреза или 20 проходила по поверхности уха наименьшее расстояние. Если наступит преждевременная закупорка сосуда, то место разреза слегка протирают комочком стерильной ваты. После взятия крови место разреза обрабатывают 5%-ным спиртовым раствором йода. Получение крови из кончика хвоста. На кончике хвоста (2-3 см) удаляют щетину, хвост подогревают теплой водой, высушивают полотенцем и протирают спирт-эфиром. Отступив от конца хвоста 1 см при первичном и 0,5 см при повторных взятиях крови, резким движением отсекают кончик хвоста. Для этого используют острые ножницы или специальные щипцы. После набора крови хвост обрабатывают 5%-ным спиртовым раствором йода или 5%-ным раствором калия перманганата. На кончик хвоста, отступив 0,3-0,5 см, накладывают лигатуру, которую снимают через 1,5-2 часа после окончательной остановки кровотечения. За группой животных, у которых производилось взятие крови из хвоста, устанавливают наблюдение, чтобы предотвратить обгрызание хвостов другими свиньями и тем самым предупредить обескровливание. Вместо лигатуры можно использовать резиновые кольца шириной 1,5-2 мм, нарезанные из тонких трубок. Некоторые специалисты рекомендуют прижигание кончика хвоста раскаленным металлическим предметом. Получение крови из вентральной хвостовой артерии. Она проходит сагиттально по вентральной поверхности хвостовых позвонков. Диаметр ее зависит от возраста животных: у 6-12-месячных подсвинков – 0,5-2 мм, у свиней старше года – 2,0-3,0 мм. На месте взятия крови удаляют щетину, обрабатывают место пункции спирт-эфиром, а хвост поворачивают так, чтобы вентральная его поверхность была обращена кверху. На границе средней и нижней трети хвоста остроконечным скальпелем или уголком лезвия делают прокол (разрез) всех мягких тканей до позвонка. При этом рассекают кожу, подкожную клетчатку, мышцы и вентральную артерию поперек. После прокола тканей придают хвосту естественное положение и приподнимают нижнюю его треть кверху для того, чтобы операционная рана зияла. Кровь выделяется равномерной струей. После взятия нужного количества крови место прокола смазывают 5%-ным спиртовым раствором йода и хвост отпускают. В результате сокращения мышц хвоста происходит закрытие просвета разреза, и кровотечение за 3-5 минут полностью прекращается. Дополнительных мер для остановки кровотечения не требуется. Получение крови из краниальной полой вены. Краниальная полая вена лежит между листками средостения, вентральное - от подключичных артерий. Она берет начало из общей яремной вены при входе в грудную полость. Краниальная полая вена впадает в правое предсердие. В зависимости от возраста свиней краниальная полая вена имеет длину от 1 до 8-10 см и расположена непосредственно под трахеей. Пункцию вены производят при фиксации животных в положении стоя или сидя с высоко поднятой головой. Поросят 2-4-месячного возраста фиксируют в спинном положении (рис. 19). Для взятия крови у взрослых 21 свиней необходимо иметь иглы диаметром 1,5-2,0 мм и длиной 8-10 см, у подсвинков – диаметром 1 мм и длиной 5-6 см. После фиксации животного прощупывают краниальный выступ рукоятки грудной кости, а у молодых свиней – первую пару ребер. Иглу вводят в область желоба, образовавшегося по сторонам рукоятки грудной кости, отступя на 0,5 см вправо или влево от сагиттальной линии и на 0,51,0 см вперед от краниального выступа грудной кости. Острие иглы направляют по мысленно проведенной линии от места укола до каудального края противоположной лопатки. При попадании в вену ощущается звук, напоминающий прокол тонкой пергаментной бумаги. Если используют длинные иглы и при недостаточно освоенной технике у поросят и молодых подсвинков иногда возникает шоковое состояние из-за попадания иглы в артерию, которое снимается без последующих осложнений введением кофеина. Рис. 19 - Взятие крови у поросенка из краниальной полой вены Получение крови из орбитального венозного синуса (рис. 20). Орбитальный венозный синус располагается в глубине периорбитального пространства, за глазным яблоком. Имеет расширение в вентральной части глазной орбиты ближе к внутреннему углу глаза. Новорожденных поросят фиксируют попарно за тазовые и грудные конечности головой вниз, поросят массой 10-15 кг можно фиксировать на кастрационном станке в спинном положении. Взрослых животных удерживают с помощью щипцов или петли, накладываемых на верхнюю челюсть. При этом важно, чтоб голова животного не была поднята вверх. Для крупных животных используют иглы диаметром 1,2-2,0 мм и длиной 5-7 см, для поросят-сосунов - диаметром 0,8-1,0 мм и длиной 3-4 см. Большим и указательным пальцами раздвигают верхние и нижние веки так, чтобы третье веко вышло из угла глазной орбиты и отделилось от глазного яблока. Иглу обращают скосом к глазному яблоку, вводят в медиальный угол глаза между третьим веком и глазным яблоком на 22 глубину 2-3 см. После этого иглу располагают перпендикулярно плоскости наружной поверхности глазного яблока, канюлю иглы приподнимают так, чтобы острие было обращено в вентральную часть медиального угла глаза, оттесняя глазное яблоко телом иглы, ее вводят дальше, пока игла не упрется в переднебоковую стенку костной орбиты. Если кровь не выделяется, иглу надо оттянуть немного назад, пока кровь не начнет вытекать в виде струи или по каплям. Рис. 20 - Взятие крови у свиньи из орбитального венозного синуса Если вместо крови появляется пенистая жидкость, то иглу слегка извлекают и проводят новый укол по направлению к носовой перегородке или, напротив, за глазное яблоко, так как у отдельных животных синус оказывается несколько смещенным вперед или назад. После окончания взятия крови и извлечения иглы кровотечения, как правило, не наблюдается. С целью предотвращения повреждения глазного яблока при введении иглы необходимо отодвигать его, но не концом иглы, а телом, т.е. самой иглой как бы скользить по поверхности глазного яблока. Получение крови из наружной яремной вены. Этот метод получения крови у свиней используется только в условиях эксперимента. Кровь можно брать в течение длительного промежутка времени, не вызывая у них стресса. Для этого применяют галатановый наркоз в полузамкнутой системе с использованием кислорода. Для его выполнения требуется специальное оборудование. Кровь берут асептический с правой стороны из наружной яремной вены с помощью канюли с наружным диаметром 3 мм, а внутренним – 2 мм. Канюлю перед использованием дезинфицируют абсолютным спиртом и несколько раз промывают стерильным 0,85%-ным раствором натрия хлорида. В каудальной области шеи оперативным путем отпрепаровывают вену. Краниально ее пережимают, тонкими ножницами делают надрез, вводят канюлю, полностью наполненную изотоническим раствором натрия хлорида. Надрез зашивают так, чтобы канюля плотно прилегала к стенке вены. Рану заполняют стерильным изотоническим раствором натрия хлорида с антибиотиками и закрывают ее мышцами и кожей, которые дополнительно обрабатывают сульфаниламидами. В наружный конец канюли вставляют пластиковый дренаж и канюлю заполняют 5%-ным раствором гепарина. Канюлю сверху закрывают и фиксируют. В последующие два дня животному вводят антибиотики, а ка23 нюлю периодически обрабатывают стерильным изотоническим раствором натрия хлорида и гепарином. ВЗЯТИЕ КРОВИ У СОБАК Перед взятием крови собак надежно фиксируют: надевают намордник или накладывают тесьму на челюсти. Все это должен делать владелец животного. Получение крови из ушных вен. С наружной стороны ушной раковины выстригают или выбривают волосяной покров в предполагаемом месте получения крови, кожу протирают спирт-эфиром. Кровеносный сосуд прокалывают поперек стерильными скальпелем, скарификатором или иглой. Первую каплю выступающей крови убирают тампоном, последующие порции крови собирают в капилляр или пробирку. При многократном получении крови из сосудов уха необходимо поочередно менять место укола. Сначала делают его с кончика уха, а последующие каждый раз ближе к основанию. Кровь из сосудов уха можно получить также путем надреза края уха ножницами. Техника получения крови из яремной вены такая же, как и у крупного рогатого скота, лошадей и других крупных животных. Однако у мелких и с короткой шеей собак пункция яремной вены затруднена. Рис. 21 - Подкожная вена предплечья у собаки (указана стрелкой) Рис. 22 - Каудальная большеберцовая вена у собаки (указана стрелкой) 24 При получении крови из подкожной вены предплечья (рис. 21) на грудной конечности и из каудальной большеберцовой вены (рис. 22) на тазовой конечности помощник руками фиксирует соответствующую конечность и пережимает венозный сосуд руками или резиновым жгутом выше места прокола. На месте пункции вены выстригают волосяной покров, обрабатывают поверхность кожи спирт-эфиром. В выступающую вену вводят иглу. Забор крови обычно производится в шприц. Можно собирать кровь из иглы в пробирку, но при этом следят, чтобы кровь стекала по стенке пробирки. У мелких собак можно осуществлять взятие крови из сердца. Животных при этом фиксируют в спинном положении. Удаляют шерсть, поле операции обрабатывают спирт-эфиром, грудную клетку прокалывают иглой длиной 6-7 см в третьем межреберье по левой или правой парастернальной линии в точке, где наиболее четко пальпируется сердечный толчок. Кровь из сердца набирают в шприц. ВЗЯТИЕ КРОВИ У ПУШНЫХ ЗВЕРЕЙ (норка, соболь, песец, лисица и др.) В малых количествах кровь берут из периферических сосудов уха. Животному фиксируют челюсти тесьмой, конечности связывают. В месте взятия крови выстригают волосы и обрабатывают кожу спирт-эфиром. Кровь из уха получают путем его надреза кончиками ножниц. Выступающую кровь собирают в меланжер, капилляр или пробирку. Большое количество крови у песца, лисицы, енотовидной собаки можно получить из яремной вены. Зверя фиксируют в положении на животе. Одной рукой голову поднимают максимально вверх, другой натягивают в направлении назад и в сторону резиновый жгут, наложенный на область шеи так, чтобы сжать вену. Пункцию производят иглой с достаточно большим просветом. Получение крови из кончика хвоста. На расстоянии 1 см от конца хвоста выстригают волосы, кожу протирают спирт-эфиром и отсекают ножницами около 3 мм хвоста. Первые 1-2 минуты в результате спазма кровеносных сосудов кровь может не выделяться. Затем на разрезе появляются капли крови, которые собирают в пробирки. Во избежание гемолиза следят за тем, чтобы кровь стекала по внутренней стенке сосуда и не соприкасалась с шерстью. Кровотечение останавливают путем наложения лигатуры, рану хвоста присыпают стрептоцидом. Получение крови из третьей плантарной пальцевой вены. Животных фиксируют в боковом положении на столе. На тазовую конечность выше тарсального сустава накладывают резиновый жгут (или помощник пережимает сосуд пальцем). На месте укола удаляют волос, кожу протирают спирт-эфиром, шерсть смачивают изотоническим раствором натрия хлорида. Прощупывают вену и производят ее пункцию. 25 Кровь собирают в пробирку или иную ёмкость. Взятие крови из пальца лапки. Животное фиксируют на столе, кожу обрабатывают спирт-эфиром и ножницами срезают ее на подушечке одного из пальцев тазовой конечности или отсекают коготок. Появившуюся кровь собирают в меланжер, стеклянный капилляр или пробирку. Взятие крови из сердца (у песцов). Брать кровь из сердца у песцов следует в период забоя или задолго до гона (племенные животные). Животное фиксируют в спинном положении, на челюсти накладывают тесьму, передние и задние конечности вытягивают. Голова животного должна находиться между передними конечностями. Левой рукой находят мечевидный отросток, справа от него образуется углубление (между мечевидным отростком и последним ребром). Место пункции выстригают, а кожу обрабатывают спирт-эфиром. Прокол делают в вершине выемки. Иглу длиной 6-7 см вводят под углом 45-50о к грудной кости, вперед и вниз параллельно сагиттальной плоскости. Кроме перечисленных выше способов кровь у пушных зверей можно получить и из бедренной артерии. Кровь у пушных зверей берут утром до кормления. У накормленных зверей кровь хилезная и для лабораторного исследования не пригодна. ВЗЯТИЕ КРОВИ У ПТИЦ Кровь у птиц берут из гребня, сережек, мякоти ступни, подкрыльцовой, внутренней или большой плюсневой вен, а также из сердца. Для фиксации птицы можно использовать переносный стол СРФ-1 (индейки, гуси) и устройство УФКУ-1 (куры, утки). Рис. 23 - Переносной стол для фиксации индеек и гусей СРФ-1 26 Рис. 24 - Устройство для фиксации кур и уток УФКУ-1 СРФ-1 состоит из корпуса, на бортах которого имеются пазы для фиксации ног, а на дне – пазы для фиксации крыльев. Планки и крючки подвижно закреплены на корпусе. Раздвижные опоры и упор позволяют фиксировать птицу и в полевых условиях. Стол СРФ-1 устанавливают в горизонтальном положении. Птицу фиксируют в положении на спине крючками с помощью пружины, а ноги заводят в пазы на корпусе и прижимают планками. Фиксация занимает не более 1 минуты. УФКУ-1 состоит из корпуса с пазами для закрепления ног и крыльев кур или уток, планок, крючков и упора для установки устройств на столе в наклонном положении. Птицу кладут на дно корпуса, крылья заводят в пазы на нижней части корпуса и фиксируют с помощью крючков и пружин. Ноги заводят в пазы (верхняя часть корпуса) и прижимают планками. Время на фиксацию требуется 30-40 секунд. Взятие крови из сережек, гребня, мякоти ступни. Сережки и гребни имеются у кур, индеек и цесарок. У гусей и уток их нет. Поэтому у них кровь берут из мякиша ступни. Намеченный участок для взятия крови очищают, протирают ватным тампоном со спирт-эфиром. Кожу прокалывают скарификатором или инъекционной иглой. Выступающую на поверхность кровь собирают в меланжеры или капилляры. После взятия крови место укола на гребне или сережках протирают спиртом, а если кровь бралась из мякоти ступни, то прижигают 5%-ным спиртовым раствором йода. Взятие крови из подкрыльцовой (подмышечной) вены. Птицу фиксируют в боковом или спинном положении, крыло расправляют внутренней поверхностью вверх. На медиальной поверхности локтевого сустава выщипывают перья, кожу протирают 96о спиртом, сдавливают крыло выше локтевого сустава. При этом подкрыльцовая вена ясно выступает на середине локтевого сустава (рис.25). 27 Рис. 25 - Взятие крови из подкрыльцовой вены у птицы Кровь берут в шприц через тонкую медицинскую иглу (диаметром 0,5 мм), производя внутривенную пункцию или рассекая лезвием бритвы кожу и стенку вены на длину 1,5-2,0 мм. Можно прокалывать поперек вену иглой. Кровотечение останавливают путем накладывания тампона с одновременным пережатием сосуда на месте прокола и заклеиванием коллодием. Кровь берут из левого или правого крыла. От одной птицы старше трехмесячного возраста можно таким способом получить 15-20 мл крови. Если после взятия крови поведение птицы будет неудовлетворительным, то ей вводят внутримышечно столько же стерильного 0,85%-го (изотонического) раствора натрия хлорида. Рис. 26 - Прибор для взятия крови у птиц КПШ-1 Для взятия крови из подкрыльцовой вены можно использовать кровобрательный прибор для птиц КПШ-1, который состоит из 20 кровопускательных перьев, вложенных в пенал, кровоостанавливающего зажима, ванночки для дезинфицирующего раствора и футляра для укладки 28 и стерилизации перьев и зажима. Перед применением прибор стерилизуют кипячением. Кровопускательным пером прокалывают подкрыльцовую вену, подставляют пробирку и набирают 6-7 мл крови. Место прокола кожи сдавливают зажимом и держат 2-3 минуты до полного прекращения выделения крови из вены. Затем снимают зажим и птицу пускают в стадо. Взятие крови из большой плюсневой вены. Большая плюсневая вена у птиц проходит по медиальной поверхности плюсны, ближе к плантарному краю, располагаясь непосредственно под кожей. Не доходя 1 см до метатарзального сустава, вена направляется косо вперед и вверх, переходя на переднюю поверхность сустава. На этом участке она ясно выступает под кожей в виде косого валика. С внутренней стороны плюсны любой из конечностей, приблизительно на 1 см ниже метатарзального сустава, после механической очистки и дезинфекции кожи, острием иглы прокалывают одновременно кожу и вену, при этом иглу погружают на глубину не более 1 мм. Вытекающую кровь собирают путем прикладывания пробирки к ранке кожи или собирают ее капилляром. После взятия крови место укола обрабатывают 5%-ным спиртовым раствором йода. Получение крови из сердца. При кардиопункции необходима тщательная фиксация. Помощник кладет птицу на стол спиной, правой рукой оттягивает и выравнивает ноги в суставах, пальцами левой руки сжимает крылья у их оснований и одновременно большим пальцем Легко придерживает область зоба. Для определения места пункции проводят линию, соединяющую рукоятку (киль) грудной кости с местом разветвления ключиц. Строго от середины этой линии проводят вниз перпендикуляр до линии, соединяющей плечевой сустав с верхушкой среднего отростка грудины. Точка, не доходящая на 1 см до их пересечения, и будет местом введения иглы. Перья выщипывают, кожу протирают спирт-эфиром. Берут иглу длиной 7-8 см, диаметром 1-1,5 мм и шприц на 5 см3. Иглой со шприцом делают укол перпендикулярно к поверхности тела на глубину 3,5-5,0 см (в зависимости от массы птицы). Попадание иглы в полость желудочка сердца определяют по ритмичному движению шприца. Для получения венозной крови пункцию проводят с правой стороны (правый желудочек), артериальной – с левой (левый желудочек). Пункцию сердца птицы переносят легко. Можно получить не менее 3 мл венозной или артериальной крови. При неудачном введении иглы в шприце появляется пенистая жидкость красного цвета, указывающая на попадание в легочную ткань. ВЗЯТИЕ КРОВИ У ЛАБОРАТОРНЫХ ЖИВОТНЫХ Кровь у кроликов берут в малых количествах из краевой ушной вены, а в больших количествах из центральных ушных вен (рис. 27) или из сердца. 29 Рис. 27 - Ушные вены у кролика Для получения крови из краевой ушной вены кролика фиксируют в естественном положении, используя для этого специальные ящики. Наиболее подходящим местом для прокола является латеральный край уха. Здесь вена прочно фиксирована к окружающим тканям. На месте прокола выстригают шерстный покров ножницами, кожу протирают спирт-эфиром. Непосредственно перед взятием крови вызывают дополнительную артериальную гиперемию уха, нагревая его электрической лампой или растирая ватным тампоном, смоченным ксилолом. Основание уха слегка пережимают. Краевую вену надрезают лезвием ближе к кончику уха или прокалывают иглой. Выступающую кровь собирают в подготовленные капилляры или пробирки. При невозможности взять кровь из краевой ушной вены производят внутривенную пункцию центральной ушной вены тонкими медицинскими иглами, диаметром не более 1 мм, набирая кровь в шприц. Подготовка поля операции такая же, как и при взятии крови из краевой ушной вены кролика. Получение крови из сердца. Кролика фиксируют в спинном положении. Место введения иглы находится в 3-ем межреберье на расстоянии 3-х мм от наружного края грудины (там, где наилучше прощупывается сердечный толчок). Удаляют шерстный покров, кожу протирают спирт-эфиром. Иглу вводят по направлению сверху вниз и спереди назад. Игла должна попасть в правый желудочек сердца. Острие иглы должно быть не очень скошенным и не сильно режущим, чтобы предотвратить излияние крови в перикард. Таким способом можно получить 10-15 мл крови. Для получения большего количества крови (6075 мл) кардиопункцию необходимо проводить под наркозом. Кролику надевают на лицевую часть головы воронкообразную маску с ватным тампоном, смоченным эфиром. После взятия крови, внутрибрюшинно вводят 30-40 мл стерильного, подогретого до 370С 0,85%-ного раствора натрия хлорида. Кровь у морских свинок берут из ушных вен, яремной вены, а также из сердца. Ушная вена расположена на дорсальной стороне уха. Для взятия 30 крови морскую свинку фиксируют так, чтобы оставалась свободной голова. Шерстный покров выстригают, кожу обрабатывают спирт-эфиром. Гиперемию сосудов уха вызывают нагреванием уха электрической лампой мощностью 100-150 Вт или растирают кожу ваткой, смоченной ксилолом. Вену прокалывают инъекционной иглой или надрезают лезвием бритвы поперек сосуда. Можно делать надрез кожи уха ножницами. Для того, чтобы получить необходимое количество крови, ухо после дезинфекции смазывают расплавленным парафином или вазелиновым маслом (тонким слоем). Перед взятием крови покрытие удаляют сухим ватным тампоном. Рекомендуют также отпрепарировать вену скальпелем. В этом случае кровь легко выделяется при проколе вены иглой. Для взятия крови из яремной вены животное фиксируют на операционном столе в спинном положении с вытянутой головой. Подготавливают по правилам хирургии операционное поле на месте разреза. Скальпелем разрезают кожу с прилегающим мышечным слоем, раздвигают пинцетом мышцы и обнажают яремную вену. На вену накладывают две лигатуры: первую – ближе к голове (стягивают), другую – ближе к грудной клетке (не стягивают). Вену вскрывают (ослабляют первую лигатуру) и подводят второй лигатурой к отверстию пробирки для набора крови. После получения необходимого количества крови лигатуры наглухо завязывают, рану зашивают. Животному под кожу спины вводят стерильный 0,85%-ный раствор натрия хлорида. Взятие крови из сердца. Морскую свинку фиксируют как и при получении крови из яремной вены. Острый конец иглы срезают полукругом и слегка затачивают (чтобы не повредить заднюю стенку сердца). Место пункции выстригают и обрабатывают спирт-эфиром. Укол производят в области угла, образуемого мечевидным хрящом и крайним левым ребром, в месте наилучшего прощупывания сердечного толчка. Укол делают по направлению вниз и вперед по длине оси тела на глубину 18 мм. Если игла попала в сердце, то она синхронно колеблется с сердечным толчком. При нахождении иглы в правом желудочке кровь в шприц набирается венозная, темно-красного цвета, в левом желудочке – артериальная, светло-красного цвета. При неудачной пункции в шприц начинает поступать пенистая красноватая жидкость. В этом случае иглу вынимают и животному дают отдых. Кровь у крыс обычно берут из сосудов кончика хвоста. Во время взятия крови крысу помещают в специальную металлическую клетку, а хвост оставляют снаружи. Предварительно вызывают гиперемию сосудов хвоста путем его растирания или нагревания (хвост держат несколько минут в нагретой до 40-50оС воде). Острыми стерильными ножницами отсекают кончик хвоста длиной 4-5 мм (при повторном взятии крови отсекают 2-3 мм). В первый момент вследствие возникающего спазма сосудов хвоста кровь не идет. Через 1-2 минуты спазм проходит и начинается обильное кровотечение. Выделение крови можно усилить, 31 массируя хвост. В ряде случаев, когда требуется взять кровь не более 1-1,5 мл, делают продольный разрез кончика хвоста лезвием. Получение крови из поверхностного верхнеколенного сосуда. Крысу фиксируют на операционном столе в спинном положении. Передние и задние конечности связывают суровой ниткой. Удаляют шерсть, кожу на месте сгиба задней конечности (в области колена) протирают спиртэфиром и делают разрез кожи, отпрепарировают сосуд (его диаметр 0,5 см), лежащий поверх мышц совместно с кожными нервами. Разрезают его, а кровь, вытекающую в кожный кармашек, отсасывают пастеровской пипеткой или шприцом. После взятия крови сосуд прижимают тампоном, накладывают на него лигатуру, а рану зашивают. У крыс можно также брать кровь из сосудов уха, путем его надреза или вырезания краешка в виде треугольника. Реже рекомендуют брать кровь из сердца и орбитального венозного синуса. Кровь у мышей берут из кровеносных сосудов хвоста, бедренной артерии, сосудов большого пальца задней конечности, орбитального венозного синуса, а также из сердца. Для взятия крови из кончика хвоста мышь заворачивают в полотенце, помещают в стеклянный сосуд (хвост снаружи) или привязывают к доске. Предварительно вызывают гиперемию путем массирования или нагревания хвоста. После обработки хвоста спирт-эфиром отсекают кусочек не более 0,5 см и получают необходимое количество крови. Взятие крови из бедренной артерии осуществляют следующим образом. Мышь подвергают эфирному наркозу. Разрезают кожу, мышцы и бедренную артерию на внутренней поверхности бедра. Кожу оттягивают пинцетами и образуется кожный карман, в который вытекает кровь из бедренной артерии. После взятия крови на артерию накладывают лигатуру, а кожную рану зашивают. Взятие крови из большого пальца. Животное фиксируют так, что оставляют левую заднюю конечность свободной. После обработки спирт-эфиром большой палец срезают и делают надрез тканей и расположенного в этом месте сосуда. Обычно начинается обильное кровотечение. В случае, если кровь из разреза не идет, что бывает часто у молодых мышей, производят массаж верхней части голени сверху вниз. После взятия крови рану зашивают. Получение крови из орбитального венозного синуса. Мышь фиксируют в левой руке, натягивают кожу на шее, чтобы лучше выделялись глаза. Пастеровской пипеткой делают прокол в медиальном углу глаза и осторожно погружают ее на глубину 1-2 мм, после чего кровь сама наполняет пипетку. Для получения крови применяют короткую (5-7 см) пастеровскую пипетку с капиллярной частью не более 1 мм в диаметре и резиновым наконечником для насасывания крови. От одной мыши из двух сплетений можно получить 0,6-0,8 мл крови. Для предупреждения инфицирования ран в глаз закапывают 3-4 капли раствора пенициллина (30 тыс. ЕД/мл). 32 ВЗЯТИЕ КРОВИ У РЫБ Кровь у рыб берут из сердца, луковицы брюшной аорты, подкожной и хвостовой артерий, путем отсечения хвостового стебля. Инструменты для взятия крови предварительно обрабатывают растворами антикоагулянтов: натрия цитрата или оксалата из расчета 2 мг/мл или гепарина – 3 мг/мл (1000 Ед/мл). При любом способе взятия крови необходимо соблюдать определенные предосторожности: место пункции после снятия чешуи обрабатывают 70%-ным этиловым спиртом и высушивают ватным тампоном для удаления слизи, содержащей большое количество тромбокиназы. Место взятия крови нельзя сжимать во избежание пропадания тканевой жидкости, искажающей результаты. Повторно кровь брать из одного и того же места не рекомендуется. Во избежание разрушения эритроцитов (гемолиза) кровь выпускают в подготовленные пробирки или часовые стекла осторожно по стенке. Кровь из сердца берут при помощи пастеровской пипетки или инъекционной иглы и шприца. Рыбу фиксируют руками, используя салфетки, спиной вниз. Пастеровскую пипетку или иглу вводят с брюшной стороны (рис.28) по сагиттальной линии в точке между грудными плавниками. Направление иглы должно быть с небольшим наклоном (30о) в сторону головы. При удачном попадании кровь поступает в пипетку или шприц сразу же. Для взятия крови из подкожной артерии применяют пастеровские пипетки или инъекционные иглы. Рыбу фиксируют на боку. У сеголеток пункцию проводят в точке, образующейся при пересечении средней боковой линии и линии, идущей от заднего края спинного плавника перпендикулярно средней линии (рис.29). У рыб старших возрастов прокол делают в точке пересечения линии, идущей от задней границы анального плавника перпендикулярно боковой линии (лещ, вобла, густера и др.). Из хвостовой артерии (вены) кровь берут пастеровской пипеткой, которую вводят позади анального плавника по сагиттальной линии под углом 450 вперед до упора в позвоночник, где проходит ствол хвостовой артерии (ствол хвостовой артерии лежит на вентральной стороне позвонка между гемальными дужками). Легким вращательным движением пипетки артерия прорезается и в пипетку поступает кровь. Рис. 28 - Место взятия (1) Рис. 29 - Место взятия крови у крови у рыбы из сердца рыбы из подкожной артерии: 1 – у сеголеток; 2 – у взрослой рыбы 33 Получение крови путем отсечения хвостового стебля (каудоэктомия) является наиболее простым способом. Перед получением крови тщательно обрабатывают поверхность. Хвостовой стебель отрезают за анальным плавником острыми скальпелем, ножом или ножницами во избежание размозжения тканей. Кровь собирают, держа рыбу головой вверх. Данный способ не исключает попадания в кровь тканевой жидкости, вследствие чего результаты исследования могут оказаться недостоверными. Учитывая это, для исследования берут 2-3-ю капли крови. ЛЕКАРСТВЕННЫЕ ВЕЩЕСТВА И ИХ ДОЗИРОВАНИЕ Лекарственными веществами называют вещества животного, растительного, микробного, грибкового происхождения, а также синтетические предназначенные для лечения больных животных и профилактики болезней животных. Лекарствами или лекарственными препаратами называют специально приготовленные препараты, применяемые с лечебной целью. При оказании лечебной помощи и проведении профилактических мероприятий с применением лекарственных препаратов ветеринарный специалист должен точно знать их дозу, концентрацию по активно действующему веществу, совместимость различных лекарственных веществ, массу животного, его клиническое и физиологическое состояние, вид, пол и возраст. В зависимости от этого выбирают наиболее целесообразный метод введения лекарственного вещества и дозу. Дозой называется количество лекарственного вещества, назначенное животному. В зависимости от дозы лекарственное вещество влияет различно и вызывает в организме как благоприятные (лечебное или профилактическое действие), так и неблагоприятные (токсическое действие) изменения. Молодые животные и взрослые животные более чувствительны к токсическому действию лекарственных веществ, чем животные среднего возраста. Поэтому дозы лекарственных веществ им уменьшают. Для лошадей и крупного рогатого скота разного возраста дозы можно устанавливать примерно в соотношениях представленных в таблице №1. Быстрота, интенсивность и характер действия лекарственных веществ на организм во многом зависит от того, в какой лекарственной форме, в каком количестве, каким путем вводится и в каком виде идет его резорбция. Резорбция, или всасывание, лекарственных веществ есть процесс проникновения их через слои тканей в лимфу и кровь. Это обычный физиологический процесс, зависящий как от особенностей барьерных функций тканей, так и от физико-химических свойств, применяемого вещества. Всасывание многих лекарственных веществ у молодых животных происходит быстрее, чем у взрослых. Оно несколько усиливается при острых заболеваниях, протекающих с высокой температурой. 34 В зависимости от путей введения животному применяют различные дозы одного и того же лекарственного вещества (таблица №1). Таблица 1 - Зависимость лечебных доз от возраста животного Возраст Лошади Крупный рогатый скот Соотношение лечебных доз Возраст 3 - 12 лет 1 3 - 8 лет Соотношение лечебных доз 1 12- 20 лет 3/4 8 - 15 лет 3/4 20 - 25 лет 1/2 15 - 20 лет 1/2 2 года 1/2 2 года 1/2 1 год 1/12 1 год 1/4 1 - 6 мес 1/24 4 - 8 мес. 1/8 - - 1 - 4 мес. 1/16 Таблица 2 - Соотношение доз зависимости от способа введения Способ введения Внутрь Ректально Подкожно Внутримышечно Внутривенно лекарственных веществ в Соотношение 1 1,5 - 2 0,3 - 0,5 0,3 - 0,5 0,25 Методы введения лекарственных веществ животным подразделяют на добровольные и принудительные (насильственные), энтеральные и парентеральные. К добровольным методам введения лекарственных веществ относят дачу лекарственных веществ с кормом или водой. Насильственные методы предусматривают принудительное введение лекарственных веществ животным. Энтеральный метод применения лекарственных веществ это введение лекарственных веществ в желудочно-кишечный тракт. Парентеральный - применение лекарственных веществ, минуя желудочно-кишечный тракт. Добровольные методы введения лекарственных веществ выполнимы только при наличии аппетита, сохранении акта глотания и проходимости пищевода у животного. Добровольные методы предусматривают групповой и индивидуальный способы дачи лекарственных веществ, при этом лекарственные вещества задают с кормом или водой в виде 35 порошков, таблеток, капсул, растворов и других лекарственных форм. Для одних животных эти ненасильственные методы доступны и легко выполнимы, для других требуют определенных навыков. Например, дача лекарственных веществ новорожденным животным с молоком или молозивом выполнима только при искусственном вскармливании. Сравнительно просто задавать лекарственные вещества взрослым животным. Для этого необходимое количество лекарственного препарата смешивают с хорошо поедаемым кормом или питьевой водой и во время кормления дают животному. Для крупного и мелкого рогатого скота лекарственные вещества лучше смешивать с концентрированными кормами, для лошадей - с овсом, для свиней - с концентрированными кормами или болтушками, а плотоядным - с мясным фаршем, бульоном, колбасой, творогом или молоком. Собакам перед дачей фарша с лекарственным веществом необходимо дать небольшое количество фарша без препарата, а затем - фарш с лекарственным веществом. Групповой метод дачи лекарственных веществ используют при необходимости проведения обработок больших групп животных с использованием антимикробных препаратов, витаминов, микро- и макроэлементов, антгельминтиков и других веществ. Хорошие результаты получают от применения групповым способом таких лекарственных веществ, как - аммония сульфат, аммония фосфат, натрия сульфат, натрия гидрокарбонат, магния сульфат, рыбная, костная и мясокостная мука, кальцивит, рыбий жир, кальция глюконат, тривит, тетравит, витаминов: А, D3, С, микроэлементов (йода, железа, кобальта, цинка, меди), антгельминтиков и других. При отсутствии аппетита или в тех случаях, когда лекарственные вещества имеют неприятный запах или вкус, а также когда они обладают раздражающим действием на слизистые оболочки пробегают к использованию насильственных методов их введения. ЭНТЕРАЛЬНЫЕ МЕТОДЫ ВВЕДЕНИЯ ЛЕКАРСТВЕННЫХ ВЕЩЕСТВ Введение лекарственных веществ через рот (per os). Жидкие лекарственные вещества можно вводить через рот с помощью бутылки, ложки, шприца, воронки с резиновой трубкой и аппарата Малахова. Твердые, мягкие и порошкообразные лекарственные вещества можно задавать с помощью ложки, шпателя, пинцета, корнцанга, болюсодавателя, порошкодавателя и таблеткодавателя. Введение жидких лекарственных веществ с помощью бутылки Для введения внутрь растворов, эмульсий, настоев, отваров можно использовать различные бутылки: резиновые, пластмассовые или стеклянные толстостенные. Использование стеклянных бутылок является весьма неудобным и к этому прибегают в крайних случаях. Это связано с тем, что при попадании горлышка такой бутылки на коренные зубы животного, она может быть раздавлена. При этом, осколки стекла травмируют ротовую полость или животное может их проглотить, что 36 приводит к травмированию желудочно-кишечного тракта. При использовании бутылок их нужно держать одной рукой за донышко (рис.30). Перед введением животное фиксируют в стоячем положении и голову немного приподнимают. Затем открывают ротовую полость или оттягивают рукой щеку и вводят горлышко бутылки через беззубый край или в образовавшееся отверстие между зубной аркадой и щекой. Содержимое бутылки выливают в ротовую полость за 5 - 8 приемов. При появлении кашля или беспокойства у животного, введение нужно прекратить, извлечь бутылку и опустить животному голову. Мелким сельскохозяйственным животным и собакам жидкие лекарственные формы можно также задавать с помощью раствородавателя для собак РС1. С помощью этого приспособления жидкие лекарственные вещества можно вводить непосредственно в пищевод. Рис. 30 - Введение жидких лекарственных веществ с помощью бутылки Данный метод введения применяют преимущественно мелким животным: свиньям, собакам и кошкам. Животное фиксируют в стоячем положении с приподнятой головой. У собак и кошек шпателем оттягивают щеку в области угла рта и в образовавшийся карман вливают лекарство. При введении таким способом жидкостей свиньям необходимо помнить о том, что когда они визжат, жидкость может попасть в легкие и вызвать развитие аспирационной пневмонии. Введение жидких лекарственных форм из шприца, шприца - дозатора и спринцовки. Для этого наконечник шприца вставляют за щеку животному и нажимают на поршень. Для большего удобства на канюлю шприца лучше одеть небольшой отрезок резиновой трубки. Спринцовкой пользуются также как и шприцем с резиновой трубкой. Однако при введении лекарственных веществ из спринцовки есть затруднения в связи с тем, что часть раствора остается в спринцовке и ее тяжело обеззараживать. Вместо шприца с резиновой трубкой можно использовать воронку с резиновой трубкой, шприц-дозатор, спринцовку (рис. 31). 37 Рис. 31 - Введение лекарственных растворов внутрь с помощью шприца Введение жидких лекарственных форм с помощью аппарата Малахова При использовании аппарата Малахова (рис.32) нужно его фиксировать в углу рта. Для этого нажимают на короткие бранши, при этом раздвигаются длинные. В таком состоянии аппарат вводят в ротовую полость так, чтобы колено с отверстиями U-образной трубки находилось между коренными зубами и щекой, а изгиб трубки упирался в угол рта. Длинные бранши располагаются снаружи щеки и плотно фиксируют аппарат к ней. К длинному концу U-образной трубки прикреплена резиновая трубка с воронкой, в которую вливают жидкость. Поднимая воронку можно регулировать скорость введения жидкости. Вводя жидкость с использованием аппарата Малахова внутрь, нужно голову животного постоянно держать приподнятой. При опускании головы животного с помощью аппарата Малахова можно проводить орошение ротовой полости. Рис. 32 - Аппарат Малахова (а- короткие бранши; б - длинные бранши; в - дугообразния /U-образния трубка/; г - отверстия в коротком колене трубки; д - длинное колено трубки; е - резиновая трубка) 38 Рисунок 33 - Дача лекарственных растворов овце с помощью аппарата Малахова, собаке - с помощью шприца-дозатора Введение жидких лекарственных веществ через зонд Для введения животным жидких лекарственных веществ внутрь можно использовать различные носо-пищеводные и рото-желудочные зонды, а также медицинские желудочные зонды разной величины (рис. 6). Их подбирают в зависимости от величины животного, проверяют их целостность и проходимость, убирают шероховатости на поверхности и перед использованием обеззараживают антисептическими растворами или кипятят. Для лошадей используют носо-пищеводный зонд (рис. 34). Он представляет собой эластичную резиновую трубку длиной 160 - 225 см с наружным диаметром 1,8 см, а внутренним – 1,2 – 1,4 см. Перед постановкой зонда на нем делают две отметки: первая соответствует расстоянию от крыльев носа до глотки, а вторая - расстоянию от глотки до желудка (14-е - 16-е ребро слева). Расстояние от крыльев носа до желудка у мелких лошадей составляет в среднем около 155 - 164 см, у средних - 164 178 см, а у крупных - 178 - 190 см. Перед зондированием лошадей можно фиксировать в стоячем положении за уздечку, а строптивым накладывать закрутку на ухо или губу. При введении зонда удобнее стоять с правой стороны и несколько впереди животного, но не спереди. Введение зонда значительно облегчается при правильном положении головы животного по отношению к шее. Наилучшим считают такое положение, когда нижняя челюсть у животного максимально приближена к шее. При таком положении головы конец зонда при введении будет упираться в верхнюю стенку пищевода. Если же угол наклона головы будет тупым, то зонд будет попадать не в пищевод, а в трахею. Перед введением конец зонда смазывают вазелином и берут в правую руку, а 39 свободный конец зонда поддерживает помощник или врач набрасывает его на свою согнутую руку или на плечо. Врач левой рукой приподнимает крыло ноздри и вводит зонд в нижний носовой ход и плавно подводит к глотке. Если зонд пошел по среднему носовому ходу, то через 20 - 30 см обнаруживают, что встретилось препятствие и дальнейшее продвижение зонда невозможно. При прохождении зонда к глотке чувствуется сопротивление, а для дальнейшего проведения зонда необходимо использовать акт глотания, который появляется вскоре после соприкосновения зонда с глоткой. При отсутствии, акт глотания можно спровоцировать, проводя различные манипуляции (опускание головы, вытягивание или подергивание языка, раскрытие ротовой полости с помощью зевника и др.). После попадания зонда в пищевод ощущается незначительное сопротивление из-за сдавливания стенками пищевода, а при попадании в трахею -- сопротивления не ощущается. Находится зонд в пищеводе или трахее, определяют по следующим признакам: а) пальпируя область яремного желоба на уровне 4 - 5-го шейного позвонка с левой стороны трахеи, можно легко прощупать длинный, твердый и прилегающий к трахее предмет - это пищевод с введенным в него зондом; б) при правильном прохождении зонда в свободном конце его прослушиваются звуки, характерные для желудка, - урчание, бульканье, переливание; при попадании в трахею слышно движение мощной воздушной струи, совпадающей с фазой выдоха. Эти звуки усиливаются, если у животного закрыть свободную ноздрю; в) вставленная в зонд сжатая большая спринцовка не расправляется, а при нахождении зонда в трахее в момент выдоха быстро наполняется воздухом; следует иметь в виду, что это же наблюдается, если зонд уже попал в желудок, наполненный газами; г) при погружении свободного конца зонда в сосуд с водой, если зонд в трахее, то во время выдоха хорошо заметны пузырьки воздуха и это усиливается при закрытии животному свободной ноздри; д) зонд, при попадании в трахею, как правило вызывает кашель и беспокойство животного. Убедившись в том, что зонд находится не в трахеи, продвигают его в желудок, ориентируясь по метке. Иногда зонд встречает значительное сопротивление со стороны кардиального сфинктера. В таких случаях необходимо дождаться акта глотания и только тогда продвигать дальше. О том, что зонд находится в желудке можно судить по выходу из свободного конца зонда газов со специфическим кислым желудочным запахом, а так же по четко прослушивающимся характерным для желудка звукам, но надо учитывать что при погружении конца зонда в кормовые массы эти признаки могут отсутствовать. Перед введением лекарственных растворов через зонд необходимо к свободному его концу присоединить воронку и влить небольшое количество стерильного физиологического раствора. При нахождении зонда в респираторной системе у животного появится кашель. Только окончательно убедившись, что зонд находится в желудке можно приступать к введению лекарственных веществ. Иногда жидкость не 40 проходит по каналу зонда. Это бывает при погружении конца зонда в кормовые массы. В этом случае выливают жидкость из воронки и из зонда, наклоняя голову животного, и только после этого вытягивают зонд на 10 - 15 см. Еще раз убедившись, что зонд находится в желудке, можно вторично приступать к введению жидкости. Зонд в желудке можно оставлять на 1 - 2 часа. Рис. 34 - Зонды для животных (а – зонд В.А.Черкасова для крупного рогатого скота; б – носо-пищеводный зонд для лошадей; в – мягкие резиновые зонды для мелких животных, г – зонд желудочный для крупного рогатого скота типа Марека) 41 Рис. 35 - Введение носо-пищеводного зонда лошади. Введение носоглоточного зонда крупному и мелкому рогатому скоту проводится аналогично описанному выше. Голову у крупного рогатого скота несколько приподнимают и вытягивают вперед. Для крупного рогатого скота можно использовать носоглоточный зонд для лошадей, а для мелкого рогатого скота - желудочный медицинский. Для крупного рогатого скота используют рото-пищеводный зонд Марека. Он представляют собой резиновую трубку, куда для упругости вставляют металлический или пластмассовый стержень (рис.35). На рабочем конце зонда прикреплен металлический или пластмассовый наконечник с отверстиями. При постановке желудочного зонда у лошадей отмечается сильное беспокойство, поэтому чаще пользуются носопищеводным зондом. Введение носо-пищеводных зондов через рот проводят у крупного рогатого скота. Это связано с тем, что у этого вида животных мягкое небо короче, а пищевод значительно шире. При постановке желудочного зонда крупному рогатому скоту используют деревянный зевник (расширитель) с отверстием (рис. 36). Животное фиксируют в стоячем положении. Смазывают конец зонда вазелином и продвигают через отверстие зевника до глотки. Затем с глотательными движениями продвигают дальше до рубца. После этого извлекают внутренний стержень и присоединяют воронку или шприц Жане для введения жидких лекарственных веществ. С помощью этого зонда можно также проводить удаление газов при тимпании рубца. Для удаления газов необходимо, что бы передняя часть находилась на возвышенности. Если это условие не соблюдать, тогда конец зонда будет погружен в кормовые массы, что препятствует удалению газов. 42 Рис. 36 - Введение желудочного зонда крупному рогатому скоту с помощью деревянного зевника Рис 37 - Зонд пищеводный для крупного рогатого скота конструкции Хохлова А.Л. Крупному рогатому скоту для проталкивания инородных предметов в пищеводе, введения в рубец лекарственных веществ и удаления газов можно также использовать зонд Хохлова (рис. 37), или универсальный ротожелудочный зонд Коробова (УРЖЗ). Этот зонд состоит из полиэтиленовой трубки с отверстиями и металической головкой (оливой) на одном конце, трубчатого зевника, П-образной пластины с тесемками и специальным ручным насосом на другом. Для постановки УРЖЗ дополнительный зевник не требуется. Техника постановки ничем не отличается от постановки зонда Марека. Наличие металлической головки специальной формы исключают его попадание в дыхательные пути. Газы, скопившиеся в рубце, свободно выходят и удаляются через отверстия в верхней части полиэтиленовой трубки зонда. При помощи специального ручного насоса можно вводить лекарственные растворы в рубец. Для проведения гидротерапии преджелудков крупного рогатого скота и введения лекарственных веществ в рубец можно применять зонд Черкасова (рис. 38). Он состоит из прорезиненной полой трубки длиной 2 -- 2,5 м, диаметром 35 - 50 мм с гладкой поверхностью. На переднем 43 конце зонда имеется два отверстия, по одному с противоположных сторон отверстия расположены на расстоянии 10 - 15 см одно от другого. Края отверстий и конец зонда зашлифованы. Внутри зонда проходит капроновая нить, что дает возможность изменять положение зонда в рубце. На середине зонда имеется металлическая спираль, покрытая резиновой трубкой, которая выполняет роль зевника. К зонду прилагается резиновая трубка с эжекторным наконечником. Перед зондированием животное фиксируют в стоячем положении, голову животного фиксируют двумя веревками на растяжку в станке или удерживают два помощника. Врач левой рукой захватывают язык животного, а правой - вводит смазанные вазелином зонд в пищевод до уровня рубца. К свободному концу зонда присоединяют большую воронку и вливают 30 - 50 литров жидкости. При вливании жидкости воронку периодически поднимают и опускают. При промывании рубца необходимо иметь в виду, что в зонде нельзя прерывать столб жидкости. Для этого в воронке должна оставаться жидкость не менее трети ее емкости. Закончив вливание, рубец энергично массируют кулаком. После этого воронку опускают как можно ниже и выпускают из рубца по возможности больше жидкости. Рис. 38 - Промывание рубца у крупного рогатого скота с помощью зонда Черкасова Введение жидких лекарственных веществ и промывание рубца у мелкого рогатого скота проводят с помощью зондов малых размеров, а техника выполнения аналогична таковой у крупного рогатого скота. При применении резиновой трубки с эжекторным наконечником, необходимо предварительно ее подсоединить к водопроводной сети и определить количество воды, выходящее из нее за одну минуту, чтобы знать за какое время в рубец войдет нужное количество воды. Для зондирования сычуга у новорожденных телят применяют носо-сычужный зонд Доценко. Он состоит из тонкой эластичной трубки с прикрепленным на ее конце резиновым баллончиком. Трубку присоединяют к большому инъекционному шприцу и вставляют в 44 эластичный резиновый шланг так, чтобы часть баллончика выступала из шланга. Такое расположение трубки в шланге фиксируют зажимом. Перед использованием зонд дезинфицируют и смазывают стерильным вазелином. Предварительно определяют на какую длину необходимо вводить зонд. Для этого измеряют расстояние от ноздрей теленка до точки пересечения горизонтальной линии, проведенной от коленной чашки, с реберной дугой. Из шприца в баллончик нагнетают воздух так, чтобы баллончик был несколько шире резиновой трубки. Зонд вводят по нижнему носовому ходу и, дойдя до глотки, объем баллончика увеличивают до размера среднего пищевого кома, что вызывает у теленка глотательный рефлекс. После прохождения зонда в пищевод, теленку с помощью сосковой поилки выпаивают теплое молоко. Это вызывает смыкание пищеводного желоба, по которому продвигают зонд дальше до метки, отсоединяют шприц и извлекают внутреннюю трубку. Затем, подсоединив шприц или воронку к свободному концу зонда, можно вводить в сычуг жидкость или проводить промывание сычуга. Если использовать обычный зонд без резинового баллончика, тогда зонд будет попадать в рубец. Для введения жидких лекарственных веществ и промывания желудка крупным свиньям используют носожелудочный зонд для лошадей и деревянный зевник с отверстием, а для подсвинков и поросят медицинские желудочные зонды и металлический Х-образный зевник Шарабрина или деревянный зевник меньшего размера. Животных фиксируют в боковом положении. Вставленный в рот зевник фиксируют тесьмой за челюсти и завязывают в области затылка. Помощник фиксирует голову животного, а врач через отверстие зевника вводит стерильный и смазанный вазелином зонд в сторону глотки, прижимая к небу. Затем зонд проглатывается, после чего его продвигают в пищевод и желудок. Для введения жидких лекарственных веществ и промывания желудка собакам используют тонкие медицинские зонды или тонкую резиновую трубку в зависимости от породы и возраста животного, а также Х-образный зевник Шарабрина или отрезок твердой резиновой трубки и отверстиями для фиксации тесьмы. Животных фиксируют в лежачем боковом положении. Помощник фиксирует голову собаки так, чтобы голова и шея составляла прямую линию. Врач вводит стерильный и смазанный вазелином зонд, через отверстие зевника к глотке. После соприкосновения зонда с глоткой возникают глотательные движения, во время которых продвигают зонд в пищевод и дальше в желудок. Раздражение глотки у собак очень часто вызывает рвоту. В этом случае зондирование прекращают, голову животного опускают и шпателем удаляют из ротовой полости рвотные массы. Хороший эффект получают от применения противорвотных препаратов, за 15 - 20 минут перед зондированием. Для зондирования желудка у кошек используют тонкие резиновые трубки диаметром не более 5 - 7 мм. В качестве зевника используют 45 деревянный (или резиновый) зевник с отверстием. У кошек при соприкосновении зонда с глоткой почти всегда возникает рвота и аспирация рвотных масс, поэтому зевник не привязывают и перед зондированием применяют противорвотные препараты. Осложнения при введении зондов и способы их устранения При отеке глотки зонд вводить не рекомендуется. В этом случае рекомендуется применять препараты кальция. При спазме пищевода зонд можно вводить только в промежутках между спазмами. Для устранения спазмов в пищевод можно вводить теплый 0,25% раствор новокаина или подкожно применять атропина сульфат или но-шпу. Положительные результаты дает применение тепла на область яремного желоба. При параличе или парезе пищевода кормовые массы застревают в нем и мешают продвижению зонда. В таком случае задержавшиеся кормовые массы вымывают водой через зонд и одновременно массируют пищевод в направлении оливы. При эзофагите зондировать можно только в экстренных случаях, предварительно вводя в пищевод небольшое количество обволакивающих веществ или 0,25% раствора новокаина. При наличии дивертикула пищевода имеется опасность перфорировать стенку пищевода при зондировании. Если зонд в пищеводе встречает препятствие, а при пальпации пищевода инородных предметов не установлено, следует заподозрить наличие дивертикула. В этом случае зонд вводят осторожно, без больших усилий, двигая впередназад и поворачивая вокруг оси. При зондировании носо-пищеводным зондом, иногда возможно сильное носовое кровотечение. В таких случаях носовую полость орошают холодным 1% раствором танина. В более тяжелых случаях ее тампонируют с применением вяжущих средств или адреналина. Тампон извлекают из носовой полости не раньше чем через 24 часа. Наружно на область носа применяют холод. После остановки кровотечения зонд вводят через другую ноздрю. При двухсторонней непроходимости носовой полости зонд вводят через рот. Осложнения могут возникать при нарушении правил зондирования, при плохой фиксации животных, при неумелом и грубом зондировании, при недостаточной смазке зонда, при наличии на зонде неровностей, шероховатостей, трещин и при применении зондов, несоответствующих размерам животного. Аспирационная пневмония развивается при ошибочном введении зонда в трахею с последующим вливанием в ее лекарственных растворов. Трахеиты, бронхиты и пневмонии могут развиваться при введении в трахею необеззараженного зонда. Аналогичное может быть при введении даже обеззараженного носо-пищеводного зонда, но если его вводили через больную носовую полость, особенно при наличии гнойного ринита. 46 Травмирование слизистой оболочки глотки может быть в тех случаях, когда носоглоточный зонд изгибается в глотке и выходит через другой носовой ход или ротовую полость. У новорожденных телят развивается, румянит при недостаточной выпойке молока, при постановке зонда, когда лекарственное вещество попадает в нефункционирующий рубец. Прокол рубца у коровы при простой тимпании. Данная операция проводится как один из методов неотложной помощи при острой тимпании и для введения лекарственных веществ в рубец, когда другие методы невыполнимы. Своевременное выведение газов из рубца предотвращает угрозу смерти животного от асфиксии. Место прокола находится в области левой голодной ямки на средине линии, проведенной от маклока к средине последнего ребра. Для прокола рубца применяют троакары крупного размера, с острым конусовидным или трехгранным стилетом (рис.39). Конусовидное заострение стилета меньше травмирует ткани при проколе, чем трехгранное. Трехгранное острие не раздвигает, а прорезает ткани и таким образом создает условия для образования гематом, перитонитов и подкожных эмфизем. Троакар состоит из стилета, рукоятки, гильзы и колпачка. Рис.39 - Троакары для крупных и мелких животных Животное фиксируют в стоячем положении. Удобно фиксацию проводить в станке или привязывать к стенке (столбу). Желательно применять носовые щипцы и спутать тазовые конечности. Прокол производят стерильным инструментом с соблюдением всех правил асептики и антисептики. Кожу перед проколом несколько сдвигают в сторону, чтобы после извлечения троакара она закрыла канал прокола. Если кожа очень толстая, ее можно прорезать скальпелем. При проколе острие троакара направляют по направлению к правому локтю. Троакар вводят резким толчком. При этом первоначально приставляют острие троакара к месту прокола, а затем ударом руки вводят его, но всю длину. После этого вынимают стилет и медленно выпускают газы с перерывами. Быстрое выведение газов сопровождается перераспределением крови, что может вызвать анемию мозга и обморок. При закупорке гильзы 47 троакара кормовыми массами следует протолкнуть их стилетом. Гильзу троакара можно оставлять введенной в рубец до 3 - 5 часов, закрепив ее на брюшной стенке. Через гильзу можно вводить в рубец дезинфицирующие и противобродильные средства. После введения в рубец лекарственных веществ гильзу троакара промывают дезинфицирующим раствором, вставляют стилет и после этого извлекают троакар. Без стилета извлекать троакар нельзя, так как в брюшную полость могут попасть кормовые массы и вызвать развитие перитонита. В момент извлечения троакара кожу вокруг него прижимают рукой, чтобы предотвратить образование подкожных карманов. У овец техника прокола рубца та же, что и у крупного рогатого скота, только прокол делают длинной инъекционной иглой с хорошо подогнанным мандреном или тонким троакаром. Рис. 40 - Введение лекарственных веществ посредством пункций Пункция книжки у коровы Введение лекарственных веществ непосредственно в книжку проводят при засорении книжки и высыхании кормовых масс, когда другие методы лечения не дали положительного эффекта. Для прокола книжки используют тонкий троакар или длинную инъекционную иглу (рис. 41). Животное фиксируют в стоячем положении. Операцию проводит с соблюдением правил асептики и антисептики. Прокол делают между 9-м и 10-м ребром с правой стороны на уровне лопатко-плечевого сустава. От этой точки можно допустить отклонение до 2 см вверх или вниз. Для правильного прокола необходимо учитывать направление листков книжки - вправо, вперед и вверх. Направление введения иглы - перпендикулярно коже. Глубина прокола - 5-6 см. Правильность прокола проверяют введением 50 - 100 мл стерильного изотонического раствора натрия хлорида с последующим его 48 отсасыванием. Если в отсасываемой жидкости имеется примесь кормовых масс, это указывает на правильность введения и можно приступать к введению лекарственных веществ. При проведении прокола нормально функционирующей книжки игла совершает маятникообразные движения. Рис.41 - Введение жидкости в книжку Введение жидких лекарственных веществ в книжку в ряде случаев имеет существенное преимущество по сравнению с введением лекарств через рот или непосредственно в рубец. Во-первых, введенные жидкие лекарственные вещества непосредственно в книжку уже через 15 - 25 минут достигают двенадцатиперстной кишки. Во-вторых, доза лекарственного вещества при этом методе введения значительно уменьшается, а терапевтический эффект выражен лучше. Прокол слепой кишки у лошади. Прокол слепой кишки у лошадей проводят только в экстренных случаях, если другие методы лечения не дали положительного эффекта, при метеоризме кишечника. Операцию проводят с соблюдением всех правил асептики и антисептики. Прокол слепой кишки проводят в области правой голодной ямки. Рис. 42 - Прокол слепой кишки у лошади 49 Точкой укола является середина линии, соединяющей маклок со срединой последнего ребра. Прокол делают длинной иглой с мандреном или тонким троакаром. На месте прокола кожу сдвигают несколько в сторону затем приставляют иглу к коже и резким движением вводят иглу по направлению к мечевидному хрящу. Из иглы извлекают мандрен и выпускают газы. После выхода газов в слепую кишку можно вводить противомикробные, противобродильные или адсорбирующие вещества. Иглу необходимо извлекать не позднее чем через один час, во избежание некрозов. Введение лекарственных веществ через прямую кишку При помощи клизм толстый кишечник очищают от каловых масс, микроорганизмов и токсинов, вводят жидкие лекарственные вещества и питательные смеси. По объему вводимой жидкости клизмы делят на макроклизмы и микроклизмы. При макроклизмах в прямую кишку вводят за один прием лошадям - до 15л, крупному рогатому скоту до 20 л, овцам - до 3л, свиньям - до 2л, собакам - до 1л, кошкам - до 0,2л жидкости. К макроклизмам относят: а) очистительная, б) опорожнительная, в) промывательно-сифонная, г) послабляющая, д) питательная, е) глубокая, ж) субаквальная, з) терморегулирующая. При микроклизмах количество вводимой жидкости не превышает 50 мл. К микроклизмам относят: а) лекарственные, б) капельные и иногда - в) питательные. При выполнении макроклизм жидкость может пройти через весь толстый кишечник, у собак - даже и через весь тонкий кишечник, у свиней только через задний отдел толстого кишечника. У лошадей жидкость из толстого кишечника в тонкий поступает в незначительных количествах. При неглубоких клизмах жидкость всасывается в кровь из задних отделов толстого отдела кишечника, минуя печень и тот отдел кишечника, где происходит воздействие пищеварительных ферментов на лекарственное вещество, что позволяет уменьшить его дозу. Необходимо помнить о том, что лекарственные вещества полисахаридной, белковой и жировой структуры не всасываются через стенку кишечника без участия ферментов, поэтому их назначают ректально только для местного воздействия или в глубокой клизме. Глубокие клизмы воздействуют на весь толстый отдел кишечника, а иногда и на тонкий. Лекарственные вещества при этом подвергаются воздействию пищеварительных ферментов и после всасывания в кровь попадают в печень, где могут разрушаться. Жидкость в прямую кишку (ректально) можно вводить двумя способами - гидравлическим и нагнетательным. При гидравлическом введении жидкостей в прямую кишку она поступает из резервуара, расположенного выше тела животного, под воздействием силы тяжести. 50 Для проведения клизм с гидравлической подачей жидкости можно использовать кружку Эсмарха (рис.43), клистирную кружку, металлический, стеклянный, пластмассовый резервуар или бак большой емкости с имеющейся выводной трубкой в нижней части, к которой подсоединяют длинную резиновую трубку. Чтобы до введения в прямую кишку жидкость удержать в резервуаре, на резиновую трубку накладывают металлический зажим. Рис.43 - Кружка Эсмарха При нагнетательном введении жидкости в прямую кишку используют приборы и приспособления, которые создают повышенное давление жидкости. Для нагнетательной клизмы воду в прямую кишку для крупных животных подают с помощью краскопульта или водопроводной сети. Для этого способа необходимо иметь смеситель для создания воды определенной температура, водомер, показывающий количество подаваемой воды. Если нет водомера, тогда предварительно измеряют за какое время вытекает необходимое количество воды. Нагнетательные клизмы проводят осторожно под небольшим напором воды. Рис. 44 - Гидравлический способ введения жидкости в прямую кишку 51 Для проведения глубоких клизм можно использовать дармтампонаторы, которые бывают резиновые (Меликсетяна), металлические (Майера) (рис. 45), и брезентовые (Целищева). Для проведения нагнетательных клизм мелким животным можно использовать спринцовки разного объема. Рис.45 - Дармтампонатор Майера (а - суженный конец корпуса; б - металлическая трубка; в - металлический держатель для рук; г - резиновая трубка от кружки Эсмарха) При проведении клизм животное фиксируют в стоячем положении, если это невозможно, тогда животное фиксируют в лежачем положении. Для клизм раствор готовят заранее. Перед выполнением клизм у крупных животных желательно прямую кишку очистить от каловых масс рукой. Резиновые трубки с наконечниками или дармтампонатором стерилизуют кипячением или протирают 700 этиловым спиртом. После этого наконечники резиновых трубок или дармтампонатор смазывают стерильным вазелином и осторожно вставляют в прямую кишку. Наконечник вводят в прямую кишку на глубину 20 - 30 см для крупных животных и на 3 - 5 см для мелких животных и только затем приступают к введению жидкости в прямую кишку. Если наконечник при введении в прямую кишку встречает препятствие (упирается в стенку прямой кишки) или наблюдается прекращение тока жидкости, тогда следует наконечник с резиновой трубкой несколько выдвинуть, а затем медленно продвинуть вперед. Во время введения необходимо следить за тем, чтобы жидкость поступала медленно. Если наблюдается усиленный позыв к акту дефекации, тогда скорость введения жидкости необходимо уменьшить или прекратить введение, одновременно прижимая корень хвоста к анальному отверстию. Опорожнительные клизмы проводят при запорах различного происхождения, при отравлениях, перед операциями, а также перед проведением лекарственных, капельных и питательных клизм. Опорожнительные клизмы опасны, а иногда и противопоказаны при 52 перитонитах, желудочных и кишечных кровотечениях и воспалительных процессах в области ануса. Введенная ректально лекарственная жидкость оказывает термическое, механическое и химическое воздействие на толстый отдел кишечника, при этом растягивает и раздражает кишечную стенку и разжижает каловые массы. Обычно используют воду с температурой тела животного. При запорах, связанных с вялой перистальтикой кишечника и метеоризме, вода должна быть в пределах 200 С. Это связано с тем, что холодная вода, введенная в кишечник, усиливает перистальтику, а введение очень холодной воды может вызвать спазм кишечника. При спазмах кишечника применяют воду с температурой около 400. Это связано с тем, что горячая вода замедляет перистальтику и хорошо отмывает слизь. Механическое воздействие связано с растяжением кишечника, что вызывает усиление перистальтики. При опорожнительных клизмах в прямую кишку вводят за один прием лошадям - до 15 л, крупному рогатому скоту до 20 л, овцам - до 3л, свиньям - до 2л, собакам - до 1л, кошкам - до 0,1 л жидкости. В этом случае жидкость лучше вводить гидродинамическим способом. Чем больше объем жидкости вводится ректально и чем быстрее она поступает в прямую кишку, тем большим раздражающим действием она обладает. Количество жидкости, которое животное может удерживать в кишечнике зависит от состояния кишечной стенки. При вялой перистальтике ректально можно ввести большое количество жидкости, а при воспалительных процессах в толстом кишечнике быстро наступает акт дефекации, что препятствует введению большого объема жидкости. Чем медленнее вводить жидкость, тем дольше она удерживается в кишечнике. Для усиления перистальтики кишечника и лучшего разжижения каловых масс можно в воду добавить мыло или глицерин. Очистительная клизма проводится перед всеми видами клизм для освобождения прямой кишки от каловых масс путем введения крупным животным 7 - 10 л, а для мелких - 0,5 - 1 л воды, подогретой до температуры тела. Промывательная сифонная клизма отличается от опорожнительной тем, что при них удаляется не только кал, но и при более длительном промывании удаляются со слизистой оболочки кишечника слизь, гной и токсические продукты. Эту неоднократную манипуляцию осуществляют теплой водой (около 400 С) и слабыми растворами натрия хлорида, калия перманганата, фурацилина и других лекарственных веществ. Количество вводимой жидкости увеличивают в 1,5 раза, по сравнению с опорожнительными клизмами. Теплую жидкость вводят ректально при помощи воронки с резиновым шлангом, который посредством стеклянной трубки соединяют с более короткой резиновой трубкой. Диаметр просвета трубки должен быть не менее 1,5 см. 53 Свободный конец резиновой трубки смазывают вазелином и вводят глубоко в анальное отверстие, а в воронку вливают жидкость. После этого, воронку опускают ниже , чтобы жидкость с примесью каловых масс выходила обратно. Содержимое воронки выливают и процесс повторяют до тех пор, пока не будет вытекать чистая вода. Послабляющие клизмы рассчитаны на слабительное действие, выражающееся усилением секреции или транссудации и на регуляцию перистальтики. С этой целью применяют растительные или минеральные масла, глицерин, 2 - 3% растворы средних солей. Масла перед введением в прямую кишку предварительно подогреваются до 30-500С и вводят крупным животным до 1,5 л, мелким - до 0,5 л. Для лучшего слабительного эффекта введенное масло задерживают в кишечнике на 15 - 20 минут. Для этого прижимают корень хвоста к анальному отверстию. При этом введенное в кишечник масло расщепляется с образованием жирных кислот действующих послабляющее. Однако, и в не расщепленном виде масло, смазывая кишечную стенку, способствует удалению каловых масс. Питательные клизмы проводят тогда, когда у животных длительное время отсутствовал аппетит и по разным причинам нельзя задать питательные вещества через зонд. Перед проведением питательной клизмы проводят освобождение прямой кишки с помощью очистительной клизмы. Затем через один час приступают к проведению питательной клизмы. Для этого используют - 10 - 20% раствор глюкозы, изотонический раствор натрия хлорида, рисовый, овсяный или пшеничный отвар, крахмальный клейстер и другие питательные смеси. Данные жидкости вводят в количестве 1 - 2 литра для крупных животных и 0,1 - 0,5 литра для мелких 2 - 3 раза в день. Длительное нахождение в прямой кишке питательных смесей может привести к интенсивному развитию там гнилостной и условно-патогенной микрофлоры, поэтому после питательных клизм рекомендуется через 0,5 1 час проводить очистительную клизму. Субаквальная клизма. Ее применяют для собак с целью сквозного промывания кишечника и желудка при гастроэнтеритах и острых отравлениях. Перед проведением субаквальной клизмы прямую кишку у собак освобождают с помощью очистительной клизмы. Животное фиксируют путем приподнимания задней части туловища. Затем в кружку Эсмарха наливают воду с температурой около 37-500С и вводят в прямую кишку. Чтобы вода не изливалась из прямой кишки на наконечник наматывают немного бинта или надевают резиновую трубку с таким расчетом, чтобы создать тампонаду кишечника. Кружку с водой поднимают на высоту 1,5 - 2 метра. Воду вводят до тех пор, пока не появится рвота, что указывает на поступление ее в желудок. В случае беспокойства животного введение жидкости прекращают, пока животное не успокоится. 54 Данную процедуру собаки переносят очень тяжело. В первые часы после проведения субаквальной клизмы животные отказываются от приема пиши, но затем аппетит восстанавливается и общее состояние улучшается. Противопоказаниями для проведения субаквальной клизмы являются болезни сердца, почек, печени, язвы желудка, нарушения проходимости кишечника. Терморегулирующие клизмы применяют при нарушении терморегуляции у животных. С этой целью при гипертермии применяют воду ниже 30-500, а при гипотермии - 37 - 400С. Лекарственные клизмы используют животным для местного и резорбтивного действия. Для воздействия на слизистую оболочку кишечника применяют растворы вяжущих, обволакивающих и других средств, для воздействия на микрофлору - антимикробные средства. Для резорбтивного действия иногда применяют успокаивающие, снотворные и другие вещества. Лекарственные вещества, обладающие раздражающими свойствами, вводят в прямую кишку вместе со слизистыми отварами. Объем лекарственных клизм крупным животным для местного действия - 2 - 5 литра, для резорбтивного - 0,5 литра. Вводить лекарственные вещества в прямую кишку нужно медленно с температурой раствора около 30 - 400С. Лекарственные растворы можно вводить в прямую кишку капельное со скоростью 40 - 60 капель в минуту. Такое введение имеет ряд преимуществ: лекарственные вещества лучше всасываются, не растягивают кишечник, не вызывают рефлекторного ускорения перистальтики. ПАРЕНТЕРАЛЬНЫЕ МЕТОДЫ ВВЕДЕНИЯ ЛЕКАРСТВЕННЫХ ВЕЩЕСТВ Инъекции Инъекции и вливания - введение в организм жидких лекарственных форм парентерально, то есть минуя желудочно-кишечный тракт. Они бывают: внутрикожные, подкожные, внутримышечные, внутривенные, внутриартериальные, внутрисердечные, внутрикостные, внутритрахеальные, внутрибрюшинные. Инструменты и приборы для инъекций Иглы инъекционные к Цельностеклянным шприцам типа «Луера» обозначают теми же номерами, но с добавлением справа буквы “С”, например 0813”С”. 55 Рис. 46 - Шприцы инъекционные (1 – шприц с бегунком (Провац-Рекорд); 2 – шприц “Рекорд”; 3 – цельностеклянный шприц “Луера”; 4 – комбинированный шприц) Иглы. Иглы инъекционные состоят из трубки и оливы(канюли), которые изготавливают из нержавеющих металлов. Одноразовые иглы изготавливают из металлической трубки и пластмассовой канюли. Иглы снабжены стержнями (мандренами). Существует общепризнанная маркировка игл или их нумерация. Первые две цифры номера указывают на диаметр трубки в десятых долях миллиметра, последующие две (иногда три) - на длину иглы в миллиметрах. Например – 1230, 1530, 0830, 10120 и т. д.. Шприцы. Системы шприцов разнообразны. В ветеринарной практике наиболее часто используются шприцы “Рекорд”. “ПровацРекорд”, “Луера”, Жане и другие (рис. 46; 47). Шприц “Рекорд” состоит из металлического поршня, стеклянного, с делениями, цилиндра в металлической оправе. Нижняя оправа имеет конус, который служит для насаживания иглы, а верхняя – шайбочку (крышку), которая препятствует выскальзыванию поршня из цилиндра. Металлический поршень имеет канавку для постановки уплотнительного металлического или силиконового кольца. Емкость шприцов типа “Рекорд” разная (1; 2; 5; 10 и 20 мл). Шприц “Луер” сделан весь из стекла. Стеклянный поршень хорошо пришлифован к цилиндру и не пропускает жидкость. Шприц легко поддается механической очистке и стерилизации. Существенным недостатком этого типа шприцов является их непрочность. Особенно быстро ломается стеклянная коническая насадка для игл. Емкость шприцов типа “Луер” разная (1; 2; 5; 10 и 20 мл). Шприц Провац- “Рекорд” отличается от шприцов типа “Рекорд” тем, что у него на стержне поршня имеются деления и подвижная шайбочка (бегунок), при помощи которой можно устанавливать (дозировать) объем жидкости, необходимый для одной инъекции. Емкость такого шприца может быть 1; 2; 5; 10 и 20 мл. Шприц Жане состоит из стеклянного градуированного цилиндра и металлического или резинового поршня. Емкость шприцов Жане бывает 100; 150; 200 и 500 мл. Рис.47 - Шприц Жане 56 Системы для переливания крови, инфузионных растворов и кровезаменителей одноразового применения. Они состоят из соединительных прозрачных трубок, капельно-фильтрующего устройства и игл для присоединения к емкости с раствором и к животном. Имеется зажим, позволяющий регулировать скорость введения жидкости. Рис.48 - Система для внутривенных вливаний Для инъекций используют только стерильные иглы и шприца. Перед введением необходимо проверить качество раствора и подогреть его до температуры 37 – 400С. Все парентеральное - вводимые лекарственные растворы должны быть стерильные. При введении растворов внимательно следят за реакцией животного, а при появлении беспокойства ведение прекращают. Перед выполнением инъекций моют и дезинфицируют руки. Шприц наполняют лекарственным раствором, поднимают его иглой вверх и небольшим продвижением поршня вытесняют из шприца и иглы воздух. Если пузырьки воздуха находятся на стенках цилиндра шприца, тогда необходимо легким встряхиванием их удаляют в верхнюю часть шприца. Перед введением шприц фиксируют в правой руке, при этом большим, средним и безымянным пальцем держат цилиндр шприца, мизинцем прижимают оливу иглы, а указательным – стержень поршня. Внутрикожные инъекции При внутрикожных инъекциях используют шприцы емкостью 1-2 мл и короткие тонкие инъекционные иглы или специальные иглы для внутрикожного введения. Внутрикожные инъекции применяют чаще всего при проведении аллергической диагностики. Крупным животным внутрикожные инъекции проводят в средней трети шеи, телятам - в области лопатки или в средней трети шеи, свиньям - на наружной поверхности уха, мелкому рогатому скоту - с складку с нижней стороны хвоста, курам - в бородку. Внутрикожным введением инъецируют небольшое количество жидкости (0,1 - 0,5 мл). Перед внутрикожными инъекциями место укола подготавливают. Пальцами левой руки собирают кожу в небольшую складку, в которую 57 делают укол почти параллельно поверхности кожи (рис. 21). Затем иглу постепенно продвигают дальше в толщу кожи тоже параллельно поверхности кожи. Закончив введение иглы в толщу кожи проводят инъекцию раствора, нажимая на толкатель поршня. После этого иглу извлекают. При правильно выполненной внутрикожной инъекции в коже образуется небольшое уплотнение с хорошо выраженными краями. При проникновении иглы, а следовательно и введении раствора в подкожную клетчатку этого не наблюдается. В этом случае иглу слегка извлекают и придают ей другое направление. Для выполнения внутрикожных инъекций используют шприцы с хорошо подогнанным поршнем, а иначе жидкость будет просачиваться между стенкой шприца и поршнем. Для подкожных инъекций можно использовать шприцы различной емкости, системы для переливания крови и инъекционные иглы. При проведении подкожных инъекций животное фиксируют в стоячем положении и инъецируют раствор в части тела, богатые подкожной клетчаткой и относительно бедные нервами и кровеносными сосудами. Подкожная клетчатка способствует быстрому рассасыванию лекарственного вещества, которое быстро попадает в большой круг кровообращения. Подкожные инъекции нельзя делать вблизи суставов, сухожильных влагалищ, хрящей и в местах прилегания сбруи у лошадей, или ошейника у собак. Подкожно можно вводить водные и масляные растворы лекарственных веществ, которые не обладают сильным раздражающим действием и не вызывают некроза тканей. Рис. 49 - Положение рук, шприца и иглы при введении лекарственных веществ (а - внутрикожно; б - подкожно; внутримышечно; г - при пункции яремной вены слева; д - при пункции яремной вены справа; е - при пункции яремной вены с помощью жгута) 58 Подкожные инъекции Лошадям и крупному рогатому скоту подкожные инъекции проводят в среднюю треть шеи, выше яремного желоба, за лопаткой и в области подгрудка; мелкому рогатому скоту - во внутреннюю поверхность бедра и в средней трети шеи; свиньям - в часть шеи, прилегающую к основанию уха, во внутреннюю поверхность бедра и в коленную складку; собакам и кошкам - во внутреннюю поверхность бедра, боковая поверхность грудной клетки. Рис. 50 - Введение лекарственных растворов подкожно При выполнении подкожных инъекций шприц фиксируют в правой руке, большим и средним пальцами левой руки на коже делают складку, а указательным в этой складке создают углубление. В образовавшееся углубление под углом 45-500 вводят иглу, при этом срез иглы направлен наружу. Иглу лучше вкалывать коротким резким движением на глубину не более 3\4 длины. Если иглу вкалывать на большую глубину, то при поломке ее обломавшаяся часть останется под кожей и извлечь ее можно только через разрез кожи. Если шприц нужно несколько раз наполнять лекарственным раствором, тогда иглу не извлекают из кожи, а отсоединяют от шприца. При извлечении иглы кожу вокруг нее прижимают двумя пальцами левой руки и извлекают. Место инъекции обрабатывают дезинфицирующим раствором и массажируют. Если необходимо подкожно ввести большое количество лекарственной жидкости, тогда ее вводят в несколько мест. В одно место подкожно можно вводить до 300 мл жидкости, в зависимости от вида животного. Иногда при подкожной инъекции масляных растворов образуются затвердения, тогда для их устранения необходимо согревать место 59 инъекции при помощи грелок, инфракрасных ламп или согревающих компрессов. Внутримышечные инъекции Для внутримышечных инъекций можно использовать шприцы емкостью от 1 до 200 мл и инъекционные иглы. При проведении внутри мышечных инъекций животное фиксируют в стоячем положении. Внутримышечно кроме медленно всасывающихся водных и масляных растворов можно вводить и взвеси лекарственных веществ, так как в мышцах много кровеносных сосудов, и сокращения мышц способствуют более быстрому рассасыванию инъецируемых жидкостей. Внутримышечно нельзя вводить резко гипотонические или гипертонические жидкости, так как это может вызвать некроз тканей. Для проведения таких инъекций выбирают крупные группы мышц, избегая места расположения крупных нервов, крупных кровеносных сосудом, сухожильных влагалищ, суставов и костей. Обычно местом инъекции является группа ягодичных мышц, плечевая часть грудной мышцы, трехглавая мышца плеча, внутренняя поверхность бедра и верхняя средняя часть шеи, а у свиней еще и область шеи у основания ушной раковины. Рис. 51 - Введение лекарственных растворов внутримышечно Укол иглы производят перпендикулярно поверхности кожи на глубину 2 - 3 см, но не более 3/4 длины иглы и, надавливая на поршень шприца, инъецируют жидкость. При выполнении этой процедуры возможно попадание острия иглы в кровеносный сосуд, что может привести к летальному исходу. Для проверки правильности внутримышечного введения нужно поршень шприца несколько извлечь. 60 Появление крови в шприце свидетельствует о нахождении иглы в кровеносном сосуде, что обязывает изменить направление иглы. При извлечении иглы, кожу вокруг нее прижимают двумя пальцами левой руки и затем извлекают. Рис. 52 - Введение растворов лекарственных смесей внутримышечно теленку Внутривенные инъекции Для внутривенных инъекций можно использовать шприцы емкостью от 1 до 200 мл, цилиндр от шприца Жане, аппарат Конькова, Боброва, системы для переливаний жидкостей и инъекционные иглы. Положительной стороной внутривенных введений является быстрое действие вводимых лекарственных веществ на организм, что позволяет применять данный способ введения в реанимационной и регидротационной терапии. Внутривенно можно вводить водные растворы, в т. ч. которые при внутримышечном и подкожном введении могут вызывать развитие некрозов тканей, отеков или абсцессов. Недостатком внутривенного введения лекарственных веществ является то, что оно трудно выполнимо у строптивых и мелких животных, а также при судорогах и при падении кровеносного давления. Для внутривенных введений можно использовать стерильные изотонические или гипертонические водные растворы. Гипотонические растворы при внутривенном введении вызывают гемолиз эритроцитов. При проведении внутривенных инъекций животное фиксируют в стоячем или в лежачем боковом положении. Внутривенные инъекции лошадям, крупному и мелкому рогатому скоту удобно проводить в яремную вену на границе средней и верхней трети шеи. При перемещении точки введения к голове возможно повреждение сонной артерии или введение растворов вместо яремной вены в сонную артерию. 61 Чтобы уточнить место расположения яремной вены, ее пережимают рукой или резиновым жгутом несколько ниже предполагаемого места прокола. Вена наполняется кровью и рельефно выступает, что облегчает введение. У хорошо упитанных животных даже хорошо наполненная кровью вена заметна плохо. В таких случаях, пережимая вену несколько раз, удается проследить движение кровяной волны. Кроме того, приподняв голову животного и слегка изогнув шею животного в противоположную сторону, создается такое положение, при котором яремная вена становится более заметной. Установив точную топографию яремной вены, иглу вкалывают через кожу в вену и направляют против тока крови. При проколе кожи иглу направляют под углом 40-450 С к ее поверхности, при этом скос иглы направлен наружу. Положение иглы перпендикулярное коже часто приводит к прокалыванию обоих стенок вены. Пункцию яремной вены можно проводить одномоментным и двухмоментным способом, При одномоментном способе иглу вводят толчком, стремясь проколоть и кожу и стенку вены. При двухмоментном способе первоначально прокалывают кожу, а затем прокалывают стенку вены. Если игла попадает в просвет вены, тогда из нее вытекает кровь ровной струей, соответствующей просвету иглы. Если игла перфорировали обе стенки вены, тогда она только наполняется кровью. В этом случае, быстро оттянув иглу несколько назад, получают нормальную струю крови. Если этого не произошла, то возможно, что в просвете иглы успел образоваться тромб или игла забита кусочком кожи. Поэтому ее извлекают и заменяют другой. Получив нормальную струю вытекающей крови, иглу насколько продвигают в просвет сосуда и фиксируют в таком положении рукой. Затем, при использовании приборов с прозрачными трубками, струей лекарственного раствора удаляют из трубок воздух и подсоединяют к игле. При использовании резиновых трубок, воздух из них удаляют струей крови. Для этого, подсоединяют прибор к игле и одновременно инфузионный прибор опускают ниже точки укола и ждут до тех пор, пока в него не начнет поступать кровь. Даже небольшое количество воздуха, попавшее в кровеносное русло, вызывает воздушную эмболию и может привести к летальному исходу. После удаления воздуха из инфузионной системы, ее поднимают выше точки укола и прекращают пережимать вену. Скорость введения можно регулировать путем поднимания или опускания сосуда с вводимой жидкостью, а также при помощи специальных зажимов. При внутривенном введении веществ, сильно раздражающих подкожную клетчатку, раствор набирают одной иглой, а пункцию вены делают другой. Во время введения в вену, игла может выскользнуть из вены и раствор попадает в подкожную клетчатку, образуя быстро увеличивающуюся припухлость. В таком случае, необходимо немедленно отсоединить инфузионный аппарат и через иглу ввести стерильный изотонический раствор натрия хлорида. 62 Рис.53 - Аппараты для внутривенных инъекций (а -- аппарат Конькова; б - упрощенная модель аппарата Конькова; в -- цилиндр от шприца Жане с резиновой трубкой и иглой) Рис.54 - Аппарат Боброва После окончания внутривенной инъекции иглу отделяют от инфузионной системы промывают током крови, чтобы предотвратить попадание раздражающих веществ под кожу. Для промывания иглы кровью вену пережимают вновь, как это делалось перед введением иглы. Чтобы предотвратить образование гематом, вену пережимают выше места укола, ближе к голове животного, кожу вокруг иглы прижимают пальцами и только после этого извлекают иглу. 63 При использовании для внутривенных инъекций шприцов малой емкости, иглу вкалывают в вену в соединенном со шприцом состоянии. Затем оттягивают поршень и в шприце, появляется кровь, что указывает на правильное местонахождение иглы и только после этого медленно производят инъекцию. У крупного рогатого скота внутривенные инъекции можно проводить также в молочную вену. У свиней внутривенные введения лекарственных растворов производят в большую ушную вену. Основание уха сдавливают резиновым жгутом или вену пережимают пальцем. Иглу направляют в сторону основания уха. У собак и кошек удобно внутривенные инъекции производить в вену Сафена и в подкожную вену предплечья. Для этого лучше использовать инъекционные шприцы или системы для переливания крови, что дает возможность проводить медленные внутривенные вливания. См. рисунки 55, 56, 57 и 58. Рис. 55 - Внутривенная инъекция лошади Рис. 56 - Внутривенная инъекция крупному рогатому скоту 64 Рис. 57 - Внутривенная инъекция свинье Рис. 58 - Внутривенная инъекция собаке Внутрибрюшинные инъекции Для внутрибрюшинных инъекций можно использовать шприцы емкостью от 1 до 200 мл, цилиндр от шприца Жане, системы для переливаний жидкостей и инъекционные иглы. Положительной стороной внутрибрюшинных введений является быстрое действие вводимых лекарственных веществ на организм, что позволяет применять данный способ введения в реанимационной и регидротационной терапии. Внутрибрюшинно можно вводить водные растворы: которые не обладают раздражающим действием. У крупного и мелкого рогатого скота внутрибрюшинные введения выполняют, фиксируя животных в стоячем положении. Инъекции проводят с правой стороны. У телят до 3 -- 5 дня жизни внутрибрюшинные инъекции можно проводить как с правой стороны, так и с левой стороны. Место укола иглы находится на середине линии, соединяющей латеральный бугор подвздошной кости с последним ребром, ниже поперечных отростков поясничных позвонков на 6 -- 8 см в зависимости от возраста животного. Место инъекции тщательно выстригают и обрабатывают 5% - ным спиртовым раствором йода. Кожу на этом месте 65 несколько смещают. Иглу с хорошо подогнанным мандреном вводят в толщу кожи, направляя ее сверху вниз, несколько вращая, спереди назад по направлению на колено задней противоположной конечности. При перфорации брюшины слышен специфический хруст, Затем иглу продвигают на 0,5 -- 1 см, вынимают мандрен, а иглу соединяют с инфузионным аппаратом, заполненным теплым раствором. При выполнении внутрибрюшинных инъекций поросятам, их фиксируют за тазовые конечности головой вниз. При таком положении кишечник несколько смещается краниально. Место укола иглы находится между последними парами сосков на расстоянии 1 -- 1,5 см от белой линии с левой или правой стороны. Иглу вкалывают под острым углом к телу животного (рис.59). Ягнятам внутрибрюшинное введение лекарственных растворов вводят фиксируя их в стоячем положении. Иглу вкалывают в середине правой голодной ямки, сверху вниз и спереди назад, в направлении голени противоположной конечности. Рис. 59 - Внутрибрюшинное введение лекарственных растворов Удобно выполнять внутрибрюшинные инъекции при фиксации ягнят за тазовые конечности и вкалывая иглу отступя 2 см от белой линии несколько ниже пахового кольца или перед первым соском. При выполнении внутрибрюшинных инъекций щенкам собак, пушных зверей и кошкам, их фиксируют несколько растянув туловище, держат головой вниз. Иглу вводят между пахом и белой линией несколько ниже первого соска. 66 . Рис. 60 - Внутрибрюшинная инъекция корове Рис. 61 - Внутрибрюшинная инъекция поросенку 2.7 ВНУТРИКОСТНОЕ ВВЕДЕНИЕ ЛЕКАРСТВЕННЫХ ВЕЩЕСТВ 1 Введение. Часто в условиях промышленной технологии встречаются заболевания, сопровождающиеся нарушением водного обмена, при котором наступает обезвоживание организма, приводящее к значительному увеличению вязкости крови и уменьшению поперечника кровеносных сосудов, особенно венозных сосудов. В таких случаях затрудняются внутривенные введения лекарственных веществ. Известно, что длительное всасывание лекарственных жидкостей при внутримышечном, подкожном или внутрибрюшинном введении не дает быстрого желаемого терапевтического эффекта. В связи с этим, в медицинской практике в последние годы внутривенные введения лекарственных веществ с большим успехом заменяются внутрикостными. Доказана быстрота попадания, введенных внутрикостных жидкостей в общие венозное русло организма, что дало возможность приравнивать внутрикостный метод к внутривенному введению лекарственных веществ. 67 Благодаря особой структуре венозного русла в костях вводимое внутрикостно лекарственное вещество быстро выводится из кости и попадает в общее сосудистое русло организма. Этот весьма важный феномен быстрого попадания лекарственного вещества в общее венозное русло при внутрикостном введении является необходимым условием возможности замены внутривенных инъекций внутрикостными введениями. Однако внутрикостные инъекции в лечебных или диагностических целях в ветеринарной практике применяются очень редко. Причиной этому, по-видимому, является отсутствие отработанной методики проведения внутрикостных инъекций и специальных игл для внутрикостного введения. Внутрикостные инъекции показаны при травмировании крупных вен, интоксикациях и при падении кровяного давления, когда нет возможности сделать внутривенную инъекцию. Красный костный мозг имеет богатую сеть капилляров венозной системы, поэтому введенные вещества быстро всасываются и попадают в кровеносное русло, что позволяет считать внутрикостные введения разновидностью внутривенных. Внутрикостно инъецируют те же растворы, что и внутривенно, за исключением сильно раздражающих. Для внутрикостных введений используют специальные иглы или инъекционные иглы с хорошо подогнанным мандреном. Рис. 62 - Внутрикостное введение лекарственных растворов теленку Внутрикостные инъекции наиболее удобно и безопасно проводить в маклок, но можно делать и в грудную кость. При ведении в маклок точкой укола является треугольный выступ маклока с пальцевидным вдавливанием в центре. Перед уколом иглы кожу на этом месте немного смещают в сторону. Иглу с мандреном вкалывают в центр пальцевидного 68 вдавливания треугольного выступа маклока в направлении назад, вниз и немного внутрь на глубину 1 - 1,5 см до ощущения хруста прокалываемых трабекул и так называемого “провала”. После введения иглы мандрен извлекают из иглы, присоединяют шприц, иглу оттягивают на 2 - 3 мм и вводят раствор с некоторым усилием. 2 Краткая характеристика костного мозга. В эмбриогенезе костный мозг выполняет остеогенную (костеобразовательную) функцию. У новорожденных телят все кости содержат исключительно красный костный мозг, который развивается одновременно с возрастающими потребностями организма в кислороде. С возрастом животного красный костный мозг переходит в свою последнюю стадию – стадию желтого костного мозга, который выполняет в основном наряду с костной тканью функцию опоры [И.В.Хрусталева и др., 1979]. 3 Методика внутрикостных введений лекарственных веществ Впервые в 1929 году М.С.Лисицин осуществил метод внутрикостных инъекций и дал теоретическое обоснование данному методу. Метод внутрикостного введения препаратов в губчатую ткань кости применяется для введения больших объемов жидкостей и кровезаменителей, для внутрикостной анестезии, для рентгенологических методов исследования. На заметку Терапевтическое действие внутрикостного введения препаратов объясняется несколькими факторами: 1 Введение иглы в кость является, по существу, декомпрессивной трепанацией кортикального слоя, что приводит к снижению внутрикостного давления, а значит, и к уменьшению перераздражения внутрикостных рецепторов. 2 В течение 3-6 недель после введения иглы идет восстановление разрушенных костных балок, что стимулирует репаративную регенерацию и улучшает локальную микроциркуляцию. 3 Введение иглы в кость оказывает мощное рефлекторное, положительное воздействие на патогенетические механизмы остеохондроза. 4 Введение препаратов непосредственно в губчатую ткань кости позволяет достичь их высокой концентрации в кости и максимального воздействия на остеорецепторы. 5 Благодаря особенностям оттока крови от кости, вводимые препараты воздействуют на все окружающие ткани. 6 Введение жидкости в губчатую кость под давлением дренирует и открывает запустевающие резервные костные сосуды, тем самым, создавая условия для нормализации внутрикостного кровотока. Осложнения от проведения внутрикостных введений, по данным литературы, встречаются достаточно редко, менее 0,5%. В основном, возникают гематомы (подкожные, надкостные и поднадкостничные), когда игла вводится в кость неплотно. 69 Участок кости, выбираемый для внутрикостных инъекций, должен отвечать следующим требованиям: 1 Кортикальный слой в точке введения иглы должен быть тонким, легко прокалываемым иглой. 2 Избранное место должно располагаться на поверхности и легко отыскиваться. 3 Во избежание повреждения сосудов и нервов точки для внутрикостных инъекций должны быть вдали от мест прохождения последних. Пункцию губчатой кости, обычно производят внутрикостными иглами. Существует несколько модификаций игл: игла Кассирского, игла Цито, игла для биопсии костного мозга, иногда используют иглы для спинномозговых пункций, укороченная игла для спинномозговых пункций (игла Вира) длиной 3-4 см обязательно с мандреном. Поверхностно расположенные костные выступы можно пропунктировать и обычной одноразовой иглой. Однако этот способ требует большого навыка, т. к. игла часто тромбируется костной тканью, а кончик иглы загибается. Игла должна находиться в кости плотно. При неплотном нахождении иглы в кости вводить жидкость или вновь пунктировать соседний участок этой же кости нежелательно из-за опасности образования гематомы в окружающих мягких тканях. В этом случае внутрикостное введение лучше провести на следующий день. Признаками правильного введения иглы, как указывает И.А.Крупко [1969], следует считать ощущение провала иглы, прочную фиксацию ее, выделение при отсасывании поршнем шприца капли крови или капли жира. 3.1 Анатома - топографическая область и техника внутрикостных инъекций у телят. Анатомо-топографической областью для внутрикостных инъекций у телят является латеральный бугор подвздошный кости – маклок. В это время теленок может фиксироваться в стоячем или лежачем положении. Ветеринарный врач, производящий манипуляцию подходит к животному с противоположной стороны, поворачиваясь спиной к голове теленка. В это же время прощупывается треугольный выступ маклока подвздошной кости с пальцевидным вдавлением в центре (рис.36). В этом участке удаляют волосяной покров и кожу обрабатывают настойкой йода. Укороченная игла для спинномозговых пункций (игла Вира) длиной 3-4 см обязательно с мандреном прижимается к 1 фаланге указательного пальца (с целью наиболее прочной фиксации мандрена в игле) и вводится винтообразными движениями в центр пальцевидного вдавления треугольного выступа маклока в направлении назад, вниз и немного внутрь на глубину 1,0-1,5 см до ощущения хруста прокалываемых трабекул и, так называемого «провала». После введения иглы вынимают мандрен, присоединяют шприц, наполненный лекарственным веществом, игла на 2-3 мм оттягивается назад, и раствор вводит,0ся с применением некоторого усилия. 70 Рис. 63 - Внутрикостное введение лекарственных веществ теленку. Фото. Оригинал. [ В.В.Малашко, 2011] 71 Рис. 64 - Пальцевидное вдавление в центре маклока (указано стрелкой). Фото. Оригинал. [В.В.Малашко, 2011] Рис. 65 - Распил маклока подвздошной кости и методика внутрикостного введения лекарственных веществ. Фото. Оригинал ( В.В.Малашко, 2011) 72 Рис. 66 - Распил маклока подвздошной кости и методика внутрикостного введения лекарственных веществ Фото. Оригинал. (В.В.Малашко, 2011) Рис.67 - Фиксация иглы при правильном внутрикостном введении лекарственных веществ (распил маклока подвздошной кости). Фото. Оригинал. ( В.В.Малашко,2011) Если при введении раствора потребуется большее усилие, то это указывает на то, что игла находится вблизи компактного слоя кости, и это мешает проведению инъекции. В таком случае необходимо вновь отсоединить шприц, вставить в иглу мандрен и несколько изменить 73 направление иглы, стараясь ей дать направление вдоль расположения столбиковой части подвздошной кости. После этого надо снова вынуть мандрен, присоединить шприц и вводить раствор. Для контроля правильности внутрикостной инъекции можно произвести аспирацию содержимого кости. Индикатором правильности введения служит появление красноватого цвета жидкости в шприце. После введения соответствующего количества лекарственной жидкости шприц отсоединяют, извлекают иглу. Внутрикостные инъекции можно производить с таким же успехом и при лежачем положении теленка. При этом введение проводится в маклок, который находится с наружной стороны, где наблюдается меньшее натяжение кожи, и ниже, расположенных тканей. Для большего удобства и экономии времени при введении большого количества лекарственной жидкости (например, глюкозы) можно применить аппарат Шилова. При этом вначале необходимо убедиться в свободном поступлении жидкости через кость, а затем присоединить шприц к аппарату Шилова и как обычно вводить необходимое количество лекарственного вещества. При внутрикостных инъекциях телятам через маклок, вводимые вещества поступают в интравенозную систему костного мозга губчатого вещества маклока подвздошной кости, оттуда они сразу же выходят в экстроорганные вены подвздошной кости, следуя в глубокую окружную подвздошную, наружную подвздошную, каудальную полую вену, и разносятся по всему организму. Внутрикостные введения лекарственных веществ можно применять при диспепсии, бронхопневмонии, энтероколитах и других заболеваниях телят. Можно применять модернизированные иглы. С этой целью на тонком наждаке делают в игле 1-2 боковых отверстия на расстоянии 0,6-0,8 см от конца иглы. Иглу вводят без мандрена по общепринятой методике (см. выше) и назад не оттягивают. Основное центральное отверстие забивается хрящом, а раствор вытекает в боковые отверстия. Кроме того, к такой игле легко можно подсоединить любой шприц или резиновую трубку без переходной канюли. На заметку Скорость введения лекарственных средств через кость не должна превышать 5 мл/сек. Для внутрикостных инъекций большим телятам используют те же лекарственные жидкости, что и внутривенно, за исключением хлористого кальция, при введении которого возникает некроз костномозговой ткани. Количество вводимой жидкости при введении через кость больше на 20-25%, чем при внутривенном введении. Одновременно теленку можно ввести до 400-500 мл глюкозы и более. Необходимо помнить, что при неудачном проколе иглой кости вводимая жидкость может изливаться через проделанное отверстие кости, не попадая в венозную сеть. 74 Поэтому повторный прокол обычно проводят после полного тромбирования первого прокола или на противоположной стороне и в ту же кость. Если имеется необходимость многократного внутрикостного введения лекарственного вещества, то практически проводится поочередно на симметричной точке введения. Для устранения некоторой болезненности, которая наблюдается во время введения внутрикостного раствора, можно вначале ввести медленно в кость 5,0-10,0 мл 0,5-2%-го раствора новокаина. Осложнения: жировая эмболия при слишком быстром введении большого количества жидкости, болезненность при очень близком расположении иглы к кортикальному слою кости. Гипертонические растворы вводить в кость не рекомендуется. Рис. 68 - Модернизированные иглы с двумя боковыми отверстиями (верхняя игла И-52) для внутрикостного введения лекарственных веществ. Фото. Оригинал. (по: В.В.Малашко, 2011) Рис.69 - Модернизированные иглы с одним боковым отверстием. Фото. Оригинал. (по: В.В.Малашко, 2011) 75 Рис.70 - Модернизированные концы игл с одним и двумя боковыми отверстиями. Фото. Оригинал. (по: В.В.Малашко, 2011) 4 Гидратационная терапия. Терапия, направленная на увеличение содержания жидкости в организме путем её введения извне, например, при обезвоживании (дегидратация, син.: эксикоз) Совершенно очевидно, что при остром воспалении кишечника, осложненном постоянным водянистым поносом, всасывание воды и абсорбция электролитов через стенку кишечника ухудшена. Также в этих состояниях жидкость быстро выводится усиленной перистальтикой или с рвотой. Эти симптомы нуждаются в специфическом лечении путем применения средств, тормозящих перистальтику, например промазина в количестве 2–3 мг/кг массы тела, внутримышечно, имодиум (Loperamide hydrochloride) 1–4 мг малым животным, 4–6 мг средним и 10–20 мг крупным животным 3 раза в сутки с гидратирующей жидкостью. Вместе с гидратирующими жидкостями назначают средства, зачищающие слизистую кишечника, например картофельную муку, ультравенол, танин. При отсутствии аппетита асе эти жидкости следует вводить через катетер в желудок. Животных можно также гидратировать путем вливаний в прямую кишку. Гипогидратация средней и тяжелой степени нуждается в одновременном с пероральным введением диетических жидкостей, в лечении подкожными, интраперитонеальными и внутривенными инъекциями. С.А.Гартман и др. [1991], провели сравнительную оценку трех путей парентерального введения гидратирующих жидкостей у телят. Согласно этим исследованиям, жидкость, введенная подкожно, медленнее всего проникала в водные пространства организма. На основании исследований с молекулами воды, меченными радиоактивно, было установлено, что перемещение жидкости, введенной субкутанно, было на 50% медленнее по сравнению с жидкостями, введенными внутривенно или интраперитонеально. Было также обнаружено, 76 что изотоническая жидкость, введенная подкожно, примерно, в 50% резорбируется в течение 1 часа. Ch. Rudolph et al. [1991] показали, что добавление в 1 л гидратирующей жидкости 300 ед. гиалуронидазы вызывает сильное ускорение резорбции. При таком методе разделение гидратирующей жидкости, введенной подкожно, такое же, как при интраперитонеальном или внутривенном введении. Гиалуронидаза – это энзим, деполимеризующий гиалуроновую кислоту, который, соединяясь с белком, образует коллоидный гель, склеивающий клетки тканей. Этот способ особенно пригоден для гидратации телят, у которых в больших телятниках внутривенные и интраперитонеальные инъекции представляют техническую проблему. Однако нужно всегда помнить, что гидратация подкожным путем не дает соответствующего эффекта при состоянии развитого гиповолемического шока, особенно в фазе его компенсации. В таком состоянии, вследствие нарушенной микроциркуляции жидкость не резорбируется из подкожной ткани. После инъекций долго сохраняются локальные отеки. Эффективная гидратация подкожным путем имеет место тогда, когда жидкость с места инъекции через 30 минут резорбируется в 40– 60%, вследствие чего наступает сильное уменьшение отека. В некоторых случаях при подкожном введении больших количеств жидкостей необходимо добавить в них 0,5–1 г/мл ампициллина или стрептомицина. При интраперитонеальном введении гидратирующей жидкости у телят лучший эффект, чем при подкожном введении. Наступает более быстрое проникновение воды и электролитов во внеклеточные пространства и процентный рост общей воды в организме. Наиболее эффективным путем гидратации является внутривенная инфузия растворов. В состояниях, когда гематокрит превышает 50% в развитом гиповолемическом шоке, при неукрощенных симптомах заболевания, являющегося причиной этих нарушений, гидратирующие жидкости, введенные подкожно или интраперитонеально, не дают соответствующего лечебного эффекта. Для того чтобы предотвратить дальнейшее углубление шока, необратимое повреждение внутренних органов вследствие нарушений микроциркуляции, гипоксии и ацидоза, необходимо проведение интенсивного гидратирующего лечения. И тут на передний план выходят следующие вопросы: 1) какое количество раствора следует ввести внутривенно? 2) какой должен быть состав гидратирующей жидкости? 3) с какой скоростью следует проводить внутривенное вливание – быстро, т.е. ударным методом, или медленно, т.е. капельным путем? В ходе гиповолемического шока, особенно в первой его фазе, дело доходит до изотонической гипогидратации и через некоторое время наступает потеря натрия из плазмы крови. При некоторых состояниях продолжительной гиповолемии появляется гипокалиемия. Изотоническими жидкостями являются препараты сольфин и электроли- товет, выпускаемые для лечения животных, 5,4%-ые растворы моносахаридов. Моносахариды такой концентрации, введенные 77 парентерально, подвергаются быстрому внутриклеточному метаболизму, а оставшаяся свободная вода быстро проникает в водные пространства организма. Ввиду того, что изотонические полиэлектролитные растворы и раствор 0,9% NаС1 сравнительно коротко поддерживают объем циркулирующей крови на определенном уровне, внутривенные инфузии следует проводить повторно каждые 4-6 часов. Результат лечения следует контролировать рекомендуемым выше клиническим обследованием. Значение гематокрита следует удерживать ниже 45%, а уровень общего белка ниже 75 г/л. Ввиду отсутствия других жидкостей внутривенное введение животным в состоянии гиповолемии физиологического раствора 0,9% NaCl при соблюдении правил внутривенного вливания, не угрожает осложнениями. Весьма благоприятные результаты лечения гиповолемического шока были получены при применении раствора Рингера следующего содержания: Natr. Сhlorat – 8,6; Kal. Сhlorat – 0,3; Calc. Chlorat ∙ 2H 2O – 0,33; Aquae pro inject. Аd – 1000,0. Он отличается от раствора, выпускаемого, например, в Польше, где Calc. Chloratа содержится 0,48 г. Это гипотоническая жидкость, пригодная для лечения изоосмотической и гипоосмотической гипогидратации. Особенно хорошие результаты были получены при заболеваниях, осложненных рвотой. Можно вводить одновременно жидкость Рингера и 5,4%-ые раствор глюкозы в пропорции 3:1 или 2:1. Рис. 71 - Распределение инфузионных жидкостей, введенных подкожно или интраперитонеально во внеклеточных (ВК) и внутриклеточных (ВК) пространствах [по: H.Hartman, 1991] 78 Рис. 72 - Распределение введенных внутривенно инфузионных жидкостей во внутрисосудистом (ВН) и внесосудистом (ПН) пространстве (по: H. Hartmann, 1991) Более продолжительный внутрисосудистый эффект может быть достигнут при введении растворов декстранов – 70 или – 40 в количестве 1020 мл/кг живой массы. При лечении комбинированном с полиэлектролитными растворами, половину дозы инфузионных жидкостей может составлять раствор декстрана. Раствор декстрана 40 рекомендуется при нарушениях микроциркуляции. Определенное удобство представляет собой новая форма декстрана — порошок, из которого можно непосредственно перед введением (extemporo) приготовить раствор для внутривенного вливания. Состав готовых парентеральных растворов декстранов – 40 и – 60 следующий: Natr. Chlorat – 6,26; Calc. Сhlorat – 0,438; Kal. Сhlorat – 0,448; Natr. Аcetat – 4,488; Dextran- 40 – 100,0 или Dextran -60 – 60,0; Aquae pro inject. Ad 1000,0 выпускается в Германии для ветеринарной практики в пластмассовых емкостях по 5 л и 10 л с пластмассовым набором, с ручкой, трубкой и иглой, приспособленные для капельного вливания. Скорость внутривенного вливания зависит в первую очередь от степени интенсивности симптомов шока и от технических возможностей. При развитом шоке у коровы необходимо внутривенное вливание в течение одного часа 6-10 л жидкости, у телят – 300-1000 мл. В этих случаях время инфузии можно сократить вдвое, одновременно проводя вливание в обе яремные вены, надвыменные вены. Это обеспечивает лучшее распределение жидкостей в сосудистой системе и меньшую нагрузку на желудочки сердца. 79 Если с первой порцией инфузионной жидкости были введены быстродействующие сердечные гликозиды, например строфантин или десланозид, то рекомендуемые выше количества жидкостей можно ввести внутривенно в течение 20-30 мин., не опасаясь вызвать осложнения такие, как например, отек легких. Внутривенные вливания при гиповолемии животных можно использовать ударный метод. Разовая доза жидкости для малых животных составляет 15-30 мл/ кг живой массы, для средних животных – 12-25 мл/кг живой массы, а для крупных животных – 10-20 мл/кг живой массы. В зависимости от клинической необходимости проводить эти вливания каждые 4-6 часов. При внутривенной инъекции или при вливании любого рода жидкостей, особенно гипертонических растворов, содержащих Nа, К, Са, декстран и другие соединения, обязателен принцип наблюдения животного. Внимание обращают на поведение, дыхание, сердечную деятельность. Появление беспокойства, судорог или даже фибриллярной дрожи мышц, учащения дыхания и сердечной деятельности, свидетельствует о слишком быстром проведении инфузии, высокой концентрации Nа, К или Са, о возможной сенсибилизации к декстрану. В такой ситуации вливание следует прекратить. Его можно продолжать спустя 20—30 мин. с меньшей скоростью, но если снова появятся подобные симптомы, необходимо отказаться от введения данной жидкости. Дальнейшую гидратацию в таких случаях следует проводить, применяя 0,9%-ый раствор NaCl или 5%-ый глюкозы. Осмотическое давление жидкостей организма является фактором, который решающим образом влияет на размещение жидкостей в отдельных пространствах организма, а его мерилом является молярность или осмолярность. Осмолярность зависит от количества осмотически активных молекул (молей), содержащихся в 1 л раствора (Осм/л). Иначе говоря, это осмотическое давление, которое проявляет 1 мМ вещества в растворе, если он не диссоциируется на ионы, так как глюкоза. Если же он диссоциируется как NаС1 на ионы Nа+ и С1¯, то тогда 1 мМ NаС1 проявляет давление 2 мОсм/л. Раствор изотоничен, когда его осмотическое давление при парентеральном введении равно осмотическому давлению плазмы, составляющему 270-300 мОсм/л. В таблице 5 представлены концентрации органических и неорганических элементов в жидкостях организма. 80 Таблица 3 - Концентрация неорганических элементов и белка в плазме крови, во внеклеточной внесосудистой и внутриклеточной жидкостях Внеклеточная внесосудистая жидкость Плазма Элементы мЭкв/л ммоль/л мЭкв/л ммоль/л Натрий Калий Кальций Магний Хлор Гидрокарбонаты Сульфаты Фосфаты Органические кислоты Белки Сумма катионов Сумма анионов 142 4 5 2 101 27 1 2 142 4 2,5 1,0 101 27 0,5 1,1 146,5 4 2,5 2,0 113 31 1 2 6 7 70 16 мЭкв/л 1,5 – 3,0 1 мЭкв/л 153 153 155 155 146,5 4 1,25 1,0 113 31 0,5 1,1 Внутриклеточная жидкость мЭкв/л Н2О 10 160 2 26 3 10 20 100 ? ммоль/л Н2О 10 160 1,0 13 3 10 10 55,7 ? 200 – 300 65 мЭкв/л 198 198 Принципиальное значение для поддержания правильной осмолярности внеклеточной жидкости имеет NaCl, поэтому осмотическое давление этой жидкости определяется концентрацией натрия в плазме, выраженное как мЭкв/л или со стороны анионов суммой концентрации иона хлора и бикарбонатного иона. Осмотическое давление натрия составляет здесь 142 мЭкв/л или 103 мЭкв/л С1¯ + 27 мЭкв/л НСО3 = 130. Таким образом, зная сумму концентраций С1¯ + НСО3¯ можно, добавив 12, определить концентрацию натрия. Ввиду того, что при потере натрия мы одновременно знаем, выведено ли было из организма больше иона С1¯ или иона НСО 3¯, можно определить, приведет ли гипогидратация к ацидозу или к алкалозу. Потеря сильно щелочного катиона и аниона слабой кислотной мощности приводит к сильной кислотной нагрузке независимо от других факторов и к нарушениям кислотно-щелочного баланса. Метаболический ацидоз, появляющийся вследствие гипогидратации, развивается не только вследствие потери бикарбонатов с калом, но и в результате их истощения для нейтрализации избытка ионов водорода, освобождаемых в ходе катаболизма или анаэробного гликолиза. При заболеваниях, осложненных рвотой, при непроходимости участков кишечника вблизи желудка, осложненных вторичным расширением желудка, может появиться гипохлоремический метаболический алкалоз. 81 Метаболический алкалоз может также появиться при паралитической непроходимости кишечника, удерживающейся продолжительное время. Он появляется в результате ухудшенной абсорбции иона С1¯ в кишечнике, т.к. при таких состояниях прекращен обмен ионов между кишечником и кровью. Отсутствующий ион С1¯ замещается в этой ситуации ионом НС О3¯. Однако чаще всего при поносах, воспалительных заболеваниях пищеварительного тракта, кишечной непроходимости в ходе гиповолемического шока, возникает метаболический ацидоз. Клинический диагноз метаболического ацидоза основан на наличии дыхания Куссмауля, определяемого как «большое дыхание» (углубление и учащение дыханий), появлении, так называемого, щечного дыхания и тяжелых нарушений в сердечной деятельности и в циркуляции. Определение рН крови или концентрации бикарбонатов в плазме дает возможность точно определить степень подкисления организма. Метаболический ацидоз лечат внутривенным вливанием 8,4%-го раствора NаНСО3 в количестве 1 ммоль/кг массы тела. Для точного вычисления, сколько нужно ввести раствора NаНСО3, можно пользоваться следующей формулой: масса тела в кг х ВЕ ммоль/л = количество NаНСО3 в ммоль/ л для дополнения. ВЕ – это лабораторно установленный дефицит щелочей. Практика показала, что в состояниях, ацидоза, в зависимости от степени нарушений в циркуляции, интенсивности симптомов шока, внутривенное вливание 300-500 мл 8,4%-ый раствора NаНСО3 для крупных животных и 30-50-100 мл для малых и средних животных, давало удовлетворительные эффекты (1-1,5 мл/кг массы тела для крупных и 1,5-2,5 мл/кг массы тела для животных с малой живой массой). При необходимости, если нарушения циркуляции и симптомы ацидоза сохраняются, спустя 4-6 часов следует повторно ввести то же количество NаНСО3. Можно рекомендовать применение при ацидозе кокарбоксилазы. Кокарбоксилаза играет важную роль в декарбоксилации пировиноградной кислоты, расщепляя ее до уксусного альдегида и углекислоты. При ацидозе наблюдается дефицит этого энзима. Кокарбоксилазу вводят внутривенно вместе с гидратирующими жидкостями, в дозах для крупных животных 500-1000 мг, для малых и средних животных – 50-200 мг, два раза каждые 10-12 часов. Применение для лечения ацидоза буферных растворов, NаНСО3 или с содержанием ацетата натрия, можно осуществлять только тогда, когда мы уверены, что имеем дело с ацидозом. Если мы не уверены, то в условиях практики на местах лучше отказаться от применения буферных соединений. Введение при метаболическом алкалозе раствора гидрокарбоната может быть очень опасно. Симптомы метаболического алкалоза не очень характерны, иногда появляется тетания, аритмия как следствие одновременной гипокалемии. Наблюдается высокой степени учащение сердечной деятельности. Большую роль в возникновении и сохранении алкалоза играет дефицит калия. Калий – это в основном внутриклеточный 82 ион. Наступает утечка 3 ионов калия, а на их место в клетку проникают 2 иона натрия и 1 ион водорода, исчезновение которого из внеклеточной жидкости приводит к алкалозу. В связи с вышесказанным, наиболее простым способом лечения алкалоза является восполнение дефицита калия. Для этого внутривенно вводят жидкость Рингера с добавкой 0,5–1% хлористого аммония в дозах 20–30 мл/кг массы тела. Тем же путем можно ввести жидкость Элькинтона №2 при гипокалиемии значительной степени. Одну ампулу раствора №1 или раствора №2 растворяют в 500 мл воды для инъекции или в 5%-ом растворе глюкозы. Приготовленный раствор вводят внутривенно со скоростью 1 мл/кг массы тела в течение 1 мин. Наиболее безопасным путем восполнения калия является путь через желудок. Средним и малым животным дают 1-2 раза в сутки 0,5-1 г хлората калия. Обычно не появляется необходимость давать подкисляющие препараты. В большинстве случаев алкалоз удается сбалансировать, восполняя дефицит хлоридов и калия. Дефицит хлоридов можно вычислить по формуле: (102 – Cl¯акт.) х 0,2 х массы тела = дефицит Cl в ммоль. Только при тяжелых формах алкалоза, например, у коров при отравлении мочевиной, следует ввести внутривенно 5%-ый раствор хлористоводородного аргинина (500-1000 мл) или 0,05-0,1-0,2 моль раствора соляной кислоты, приготовленной на 5%-ом растворе глюкозы в количестве не более 1/3-1/2 вычисленного избытка щелочей 800-1000 мл на 1 корову. Назначение сердечных гликозидов при лечении сердечной недостаточности и недостаточности кровообращения при гиповолемическом шоке является необходимым элементом комплексного лечения. Вместе с гидратирующими жидкостями, лучше всего сразу вначале внутривенной инфузии, дать строфантин в дозе 0,005-0,008 мг/кг массы тела или десланозид Польфа в дозе 0,008-0,02 мг/кг массы тела. Сердечные гликозиды, кроме благоприятного действия на миокард и на сосудистую систему, предотвращают появление отека легких при однократном, и сравнительно быстром вливании соответствующих количеств гидратирующей жидкости. Другие сердечно – сосудистые препараты, например, так называемые, адренергетики, кардиамин, кофеин и др., противопоказаны в связи с нарушениями в микроциркуляции. При комплексном лечении шока, осложненного аутоинтоксикацией, следует ввести внутривенно сравнительно высокие дозы кортикостероидов, например, для крупных животных ремисукцинат гидрокортизона 5-10 г, преднизолон – 2,0 г или дексаметазон – 250 мг, несколько раз каждые 6-8 часов. В связи с противошоковым действием, тормозящим выведение воды и натрия, снижением биосинтеза гистамина, применение этих препаратов полностью обосновано. В последнее время были выпущены стабильные взвеси хлопчатникового или соевого масла, пригодные для парентерального питания. Показаниями к парентеральному питанию являются состояния 83 общей слабости организма вследствие истощающего поноса и рвоты, непереносимости пищи, боязнь пищи, неправильная абсорбция пищи. Парентеральное питание должно быть полноценным. Оно должно содержать углеводы 2-4 г/кг массы тела, белок 1 г/кг массы тела, жиры 1-2 г/кг массы тела, воду 20-40 мл/кг массы тела в сутки и электролиты. Применяются следующие углеводы: глюкоза, фруктоза, сорбитол. Доступны препараты, содержащие белковые гидролизаты: например, казеин, фибрин из мышечных белков, выпускаемых для людей. У животных можно применять препараты, содержащие растворы экзогенных аминокислот, таких как лейцин, изолейцин, лизин, валин, метионин, фенилаланин, треонин, триптофан и небольшие количества эндогенных аминокислот, преимущественно глицин и гистидин. Эти растворы вводят внутривенно 3-4 мл/кг массы тела. При заболеваниях, осложненных гипогидратацией и гиповолемическим шоком, проведение рационального гидратирующего лечения является важным фактором, содействующим достижению более высокого количества излечений. На заметку При заболевании теленка диареей можно использовать электролит Feedtech, который имеет следующий состав: ►натрий и калий – для эффективной замены потерянных электролитов; ►глюкозу – для обеспечения потребностей теленка в энергии; ►полисахарид – загуститель, останавливающий диарею в течение 24 часов и поглощающий болезнетворные бактерии в кишечнике; ►витамины группы B – телята не могут синтезировать витамины группы В до тех пор, пока они не превратятся в жвачных животных. До этого времени телята получают витамины группы B с молоком матери. Во время диареи они не могут получать витамины; ►цитрат натрия, который устраняет ацидоз и корректирует изменение кислотно – щелочного баланса, вызванное потерей бикарбонатов. 2.8 Внутритрахеальные инъекции Рис 73 -. Шприц для внутригортанных вливаний. 84 Рис. 74 - Внутритрахеальное введение лошади Для внутритрахеальных инъекций можно использовать обычные инъекционные иглы или специальные иглы для внутритрахеальных инъекций, имеющие боковое отверстие. Место укола это средняя часть шеи или область трахеи ближе к грудной полости. При этом сдвигается кожа в сторону на предполагаемом месте укола и вводится стерильная игла между колец трахеи, при этом ощущается специфический хруст. Затем присоединяют шприц и вводят небольшое количество стерильного 0,5%-го раствора новокаина, что способствует ослаблению кашлевого рефлекса. Затем только приступают к введению нужного лекарственного вещества. При фиксации животного в лежачем положении жидкость можно вводить в левое или правое легкое. При проведении внутритрахеальных инъекций необходимо учитывать то, что лекарственный раствор стекает из слизистой оболочки трахеи в глубь лежащие отделы респираторного аппарата. При трахеитах, трахеобронхитах он может смывать экссудат и заносить его в легкие, что будет способствовать распространению патологического процесса. При внутритрахеальном введении больших количеств жидкостей может развиться аспирационная пневмония. Рис. 75 - Внутритрахеальное введение лекарственных растворов 85 Внутритрахеально растворы лекарственных веществ можно вводить с помощью зондов или иглы. Крупных животных при внутритрахеальном введении фиксируют в стоячем положении, а мелких в лежачем боковом положении. При этом голова и шея животного должна находиться выше туловища. В зависимости от величины животного подбирают зонд соответствующего размера или шприц для внутригортанных инъекций. Можно использовать зонды малого диаметра. Перед введением зонд дезинфицируют и смазывают стерильным вазелином. Крупным животным зонд вводят через носовую, а мелким через ротовую полость до глотки и в промежутках между глотательными движениями продвигают его дальше. При правильном введении зонда в трахею у животного появляется кашель, который вскоре прекращается. Чтобы убедиться, что зонд находится в трахее, левой рукой обхватывают начальную часть трахеи и производят отрывистые движения влево и вправо, при этом ясно слышны Рис.76 - Иглы для удары зонда о стенки трахеи. Кроме того, при интратрахеальных правильном введении зонда в трахею из зонда инъекций синхронно акту выдоха, выходит струя воздуха. Затем к свободному концу зонда присоединяют воронку или шприц Жане и вводят лекарственное вещество. При попадании первых порций вводимой жидкости в бронхи, может отмечаться сильный кашель. В таком случае введение прекращают и голову животного опускают вниз. 2.9 Ингаляция. Аэрозолетерапия Ингаляция - это способ введения в организм лекарственных веществ в газообразном, парообразном состоянии или в форме дыма. Вещества, введенные таким образом, оказывают местное, рефлекторное и резорбтивное действие. Резорбтивное действие наступает быстро благодаря интенсивному всасыванию лекарственных веществ в кровь с обширной поверхности легких. Для ингаляции можно одно или несколько животных поместить в камеру, содержащую газообразное, парообразное или дымовое вещество в нужной концентрации. Можно также использовать специальные маски или приборы, создающие необходимое соотношение лекарственного вещества и воздуха. 86 Рис. 77 – Ингаляция Аппараты для введения аэрозолей лекарственных веществ через дыхательные пути называются аэрозольными ингаляторами. Их разделяют на ингаляторы закрытого типа (индивидуальные) и отрытого (камерные) типа. При использовании индивидуальных ингаляторов аэрозоль подается непосредственно из аппарата в дыхательные пути. Камерные ингаляторы создают аэрозольное облако и животные, находящиеся в камерах, вдыхают аэрозоль лекарственных веществ. В камерных ингаляторах используют пневматические, ультразвуковые и дисковые генераторы аэрозолей. Наибольшее распространение находят аэрозольные ингаляторы с пневматическими генераторами аэрозоля. В качестве распыляющего газа обычно используют воздух, подаваемый от компрессора или кислород из баллона. В ветеринарной практике в настоящее время эксплуатируются такие генераторы камерного типа, как ТАН, САГ-1, САГ-2, ВАУ-1, ДАГ-1, ДАГ-2, ДАГ-10. В условиях хозяйств РБ наибольшее распространение получили САГ (струйные аэрозольные генераторы). Непосредственно в камере подвешиваются САГи на высоту 1- 1,5 м. Камеру объемом до 50 м3 обеспечивает один САГ-1. Рис.78 - Струйный аэрозольный генератор (САГ – 1). 87 При использовании пневматических генераторов аэрозолей необходимы компрессоры, создающие давление воздуха в 3-4 атмосферы и расход воздуха до 100 л/мин., а также шланг высокого давления. Иногда, при отсутствии аппаратов для получения аэрозолей, используют безаппаратные способы получения аэрозолей йодистого алюминия, хлор-скипидара и однохлористого йода. Техника проведения аэрозольных обработок. Аэрозольный генератор заполняют раствором препарата, подвешивают в камере на высоте 1 - 1,5 м от пола, САГи по центру камеры, а форсунки от ВАУ-1 в отверстие стенки камеры. Шлангом высокого давления соединяют генератор с компрессором, после этого в камеру помещают животных. После включения компрессора и достижения указанного давления открывают кран, подающий сжатый воздух к аэрозольному генератору. Через несколько минут камера заполняется туманом аэрозоля, после чего компрессор отключают. Когда туман начинает редеть, снова на несколько минут включают компрессор. В зависимости от времени распыления аэрозолей длительность сеанса аэрозолетерапии продолжается от 30 до 90 минут. 2.10 Инстиляция Инстиляция - это капельное введение лекарственных веществ. Чаще всего инстиляцию проводят на конъюнктиву для местного действия. Но следует помнить о хорошей всасывающей способности слизистой оболочки глаза и о возможности вызвать выраженное резорбтивное действие, которое в некоторых случаях может быть нежелательным. При некоторых болезнях, наоборот, инстилируют лекарственное вещество на конъюнктиву в высоких концентрациях, для достижения резорбтивного действия. Инстиляцию лекарственных веществ проводят с помощью глазной пипетки или шприца с резиновой трубкой. 2.11 Ирригация (орошение) Ирригацию, как один от приемов лечения, чаще используют при заболеваниях, связанных с поражением слизистой оболочки ротовой полости. Для орошения лучше использовать такие растворы лекарственных веществ, которые попав в желудок, не вызывают осложнений. Крупных животных удерживают на коротком поводке или за рога. Беспокойных животных заводят в станок, а мелких ставят на возвышенное место и фиксируют руками. Процедуру можно проводить с применением зевников и без них. Ирригацию удобно проводить из резиновой спринцовки с удлиненным твердым наконечником или из обычной спринцовки, удлиненной резиновой трубкой. Можно также использовать кружку Эсмарха или аппарат Малахова. Наконечник спринцовки вводят в ротовую полость через беззубый край и направляют струю жидкости в сторону противоположной щеки. 88 Под влиянием струи жидкости у животного появляются жевательные движения, что способствует распределению лекарственного раствора по всей ротовой полости. Направление струи жидкости можно изменить в любую сторону, но нельзя направлять в сторону гортани. Во время проведения ирригации ротовой полости голову животного наклоняют вниз, что в значительной степени препятствует затеканию жидкости в дыхательную систему. НОВОКАИНОВАЯ БЛОКАДА ЗВЕЗДЧАТОГО СИМПАТИЧЕСКОГО ГАНГЛИЯ Показания. Воспалительные процессы в области шеи, грудной конечности, экссудативные бронхиты, отек легких, пневмонии, плевриты, болезни сердца и шейной части пищевода. У крупного рогатого скота, овец и собак звездчатый симпатический ганглий расположен на уровне проксимальной четверти 1-го межреберья (Рис. 43), на 2-3 см ниже головки первого ребра, у лошадей справа ганглий занимает такое же положение, а слева почти полностью прикрыт 2-ым ребром или находится на уровне 2-го межреберья. У всех животных он лежит на латеральной поверхности длинного шейного мускула, окружен рыхлой клетчаткой и прикрыт со стороны грудной полости плеврой. Техника блокады (по М.Ш.Шакалову), Крупных животных фиксируют в стоячем положении (в станке), максимально отводят назад соответствующую грудную конечность, а шею поворачивают в противоположную сторону. Мелких животных фиксируют в стоячем или лежачем положении (лежа на боку). Иглу вкалывают позади бугорка первого ребра на 2-3 см (у крупных животных) или на 1 см (у мелких животных) ниже его головки. При введении иглы необходимо постоянно инъецировать теплый 0,5% раствор новокаина. Иглу вводят под небольшим углом спереди назад и внутрь до упора в задний край первого ребра. Затем, сместив конец иглы с упомянутого края ребра, прокалывают межреберные мышцы и продвигают иглу до упора в тело позвонка. Как только игла коснулась тела позвонка, вновь инъецируют раствор новокаина, ощущая при этом сопротивление. Продолжая вводить новокаин, постепенно извлекают иглу, и, как только ее конец окажется на поверхности длинного шейного мускула, в надплевральном соединительнотканном пространстве сопротивление на поршень значительно снизится, но все же будет ощущаться. Это указывает на правильное положение иглы. Не смещая иглу, постепенно инъецируют весь взятый раствор новокаина. Свободное, без сопротивления, вхождение раствора свидетельствует о попадании его в плевральную полость. 89 Рис.79- Место инъекции при выполнении блокады звездчатого узла у лошади (а), коровы (6) и свиньи (в) При проведении данной блокады необходимо помнить что у лошадей между бугорками 1-го и 2-го ребра из грудной полости выходит поперечная шейная артерия и входит одноименная вена. Крупным животным вводят 2030 мл, мелким - 5-10 мл 0,5 %-го раствора новокаина. По мнению К.И.Шакалова, смещение иглы после упора в тело позвонка и продвижение ее параллельно телу последнего нежелательно, так как раствор распространяется между телом позвонка и длинным шейным мускулом, а ганглий лежит на наружной поверхности этого мускула, и блокада ганглий не наступает. Техника блокады по Н.А. Уразаеву. Животное фиксируют в стоячем положении. Иглу вкалывают, отступив 1-1,5 см каудальнее поперечного отростка 6го шейного позвонка. Иглу продвигают назад, вверх и в середину на расстояние 5-8 см до упора конца иглы в тело первого или второго грудного позвонка. Затем иглу смещают параллельно и оттягивают на 1-3 см из длинной мышцы спины. Для блокады применяют 0,25-0,5% раствор новокаина в тех же дозах. Блокаду звездчатого узла проводят с правой или левой стороны поочередно с интервалом в одни сутки. Блокада внутренносных нервов и пограничных симпатических стволов по М.Ш. Шакурову. Показания - заболевания органов грудной полости. Техника блокады. Выполняют как в лежачем, так и в стоячем положении. При выполнении в лежачем положении (на боку) грудную конечность (верхнюю) отводят вперед, разгибая при этом локтевой сустав. Точку введения иглы определяют в месте пересечения каудо-вентрального края лопатки с передним краем 5-го ребра (Рис. 52). Используют иглу длиной 8-12 см. Ее вводят отдельно от шприца перпендикулярно коже в вышеуказанной точке при несколько смещенной вниз длинной головке 3-главого мускула плеча. Ее продвигают до упора в тело позвонка, стараясь вводить как можно ближе к указанному краю лопатки и переднему краю 5-го ребра. Критериями правильности введения иглы является: упор иглы в тело позвонка, отсутствие в просвете канюли иглы крови и отсутствие признаков вхождения воздуха в плевральную полость. В зависимости от размеров теленка глубина введения иглы колеблется от 5 до 8 см. Правильность введения иглы контролируют путем отсоединения шприца после инъекции 2 мл раствора. Применяют 0,5% раствор новокаина в дозе 0,5 мл на 1 кг массы. При выполнении блокады в стоячем положении одну из передних конечностей животного поднимают и выводят максимально вперед, и закидывают на шею, фиксируя заднюю часть туловища в углу станка и прижимая к стенке. Затем прижимают теленка в области плеча, не давая сползать поднятой конечности. В дальнейшем блокаду выполняют по описанной выше методике. Блокаду внутренностных нервов и пограничных симпатических стволов по М.Ш. Шакурову можно повторять через каждые 3 дня до 3-4 раз. Рис. 80 - Место инъекции при выполнении блокады внутренносных нервов и пограничных симпатических стволов по М.Ш. Шакурову Надплевральная новокаиновая блокада по В.В.Мосину. Показания болезни легких, сердечно-сосудистой системы, острые и хронические атонии преджелудков, острая тимпания, гепатиты, энтериты, болезни печени, селезенки, почек и надпочечников, диспепсия телят и поросят, акушерско-гинекологические заболевания, послекастрационные осложнения, воспалительные процессы на половом члене, мошонке, дерматиты, отеки, трофические язвы, длительно не заживающие раны, особенно в области грудной и брюшной стенок, спины, крупа и тазовых конечностей. Сущность данной блокады сводится к введению впереди ножек диафрагмы 0,25% - 0,5%-ного раствора новокаина в надплевральную 91 клетчатку, окружающую пограничный симпатический ствол и чревные нервы. Техника выполнения блокады у всех животных в принципе одинакова. Техника блокады. Лошадей и крупный рогатый скот фиксируют в станке. Для определения точки инъекции указательным пальцем правой руки находят передний край последнего ребра и продвигают палец в сторону позвоночника до межмускульного желоба, находящегося между подвздошнореберным мускулом и длиннейшей мышцей спины, что и является местом укола иглы. В точку укола вводят тонкую иглу и инъецируют внутрикожно, подкожно и внутримышечно 2-3 мл 0,5%-го раствора новокаина. Затем берут иглу длинной 12 см, направляют ее под углом 30-35° к горизонтальной плоскости и коротким, но резким толчком прокалывают кожу и продвигают иглу параллельно краю последнего ребра до упора в тело предпоследнего грудного позвонка. Достоверностью правильности введения иглы будет то, что из иглы не вытекает кровь, а в плевральную полость не всасывается воздух. Иглу фиксируют левой рукой, присоединяют к ней шприц с теплым 0,25-0,5% раствором новокаина. Надавливая пальцем правой руки на поршень шприца, левой рукой отклоняют иглу вместе со шприцем на 5-10° вверх. Иглу продвигают вперед, равномерно надавливая на поршень шприца до момента снижения сопротивления на поршень и свободного вхождения раствора в надплевральную клетчатку (рис. 42, 43). Критерий правильности: если отсоединить шприц, то из иглы выходит капля раствора и ее пульсация будет синхронна дыхательным движениям. Используют 0,5% раствор новокаина, который вводят из расчета 0,5 мл на 1 кг массы. Общую дозу делят пополам и инъецируют поровну с правой и левой стороны. Мелким животным данную блокаду проводят в боковом положении. Телятам иглу вводят по переднему краю последнего ребра и направляют иглу к телу позвонка под углом 20-300. С каждой стороны инъецируют 10-15 мл 0,5% раствора новокаина. Свиньям, собакам, овцам и козам вводят по 15-30 мл, а кошкам по 3-5 мл с каждой стороны. 92 Рис .81 - Схема выполнения надплевральной новокаиновой блокады: а) - сегментальный разрез: 1 — положение иглы в момент упора в тело позвонка: 2 — смещение иглы в момент инъецирования раствора; 3 — дорсальная группа мышц спины; 4 — подвздошно-реберный мускул; 5 — тело позвонка; 6 —чревный нерв и симпатический узел пограничного ствола; 7 — вена; 8 — аорта;б) вид сбоку: 1 - аорта; 2 — пограничный симпатический ствол; 3 -позвоночник; За — большой и малый внутренностные нервы: 4 — полулунный узел солнечного сплетения; 5 — тринадцатое ребро; 6 — двенадцатое ребро Рис. 82 - Место инъекции при выполнении надплевральной новокаиновой блокады у лошади (А) и коровы (Б) При остром течении патологического процесса данную блокаду выполняют однократно, а при подостром и хроническом - повторяют через 5-7дней. Поясничная блокада у лошадей по И.Я. Тихонину. Показания - при гастритах, энтеритах, гепатитах, воспалении и недостаточности надпочечников, атониях преджелудков, асептических коликах, динамических илеусах, акушерско-гинекологических заболеваниях, при длительно не заживающих ранах, трофических и других язвах в области туловища и тазовых конечностей. При этом методе лечения раствор новокаина вводят в пределы фасциального чехла почки, где он проникает в околопочечную клетчатку и воздействует на почечное нервное сплетение. Используют 0,25% раствор новокаина на 0,45% растворе натрия хлорида в дозе по 1 мл/кг. При наличии показаний блокаду повторяют через 6-7 суток. Техника блокады. Животное фиксируют в стоячем положении в станке. Инъекцию можно проводить как с правой, так и с левой стороны. При правосторонней блокаде иглу вкалывают между последним ребром и поперечным отростком первого поясничного позвонка или между 17-18 ребрами на расстоянии 8-10 см от средней линии спины. Глубина укола иглы 8-9 см, направление - вертикальное (Рис. 44). При левосторонней блокаде иглу вводят в промежутке между последним ребром и передним краем поперечного отростка 1-го поясничного позвонка на расстоянии 5-6 93 см от свободного конца отростка по направлению к срединной линии туловища и на глубину 5-6 см. Совершенно свободное вхождении раствора указывает на то, что инъекция проводится в брюшную полость, т.е. неправильно. А Б Рис.83 - Место инъекции при выполнении поясничной блокады лошади справа (А) и слева (Б. Поясничная блокада у крупного рогатого скота по Сенькину Данную блокаду у крупного рогатого скота с правой стороны, где почка чаще располагается в зоне поперечнореберных отростков первых, двух поясничных позвонков. Краниальная граница почки чаще находится впереди последнего ребра, каудальная — достигает уровня поперечнореберного отростка 3-го поясничного позвонка, а латеральная проходит примерно на 2—3 см латеральное от концов поперечнореберных отростков первых двух поясничных позвонков. Левая почка имеет длинную брыжейку и занимает различное положение в зависимости от степени наполнения рубца (рис. 83). Рис 84 - Схема расположения почек у крупного рогатого скота. 1- правая почка, 2 - левая почка. Блокаду производят с правой стороны. Иглу вкалывают в промежутке между последним ребром и поперечным отростком первого и второго поясничного 94 позвонка или между поперечными отростками 1 и 2-го поясничных позвонков, отступив на 1,5-2 см от концов отростков к срединной линии. Иглу вводят вниз и слегка внутрь на глубину 8-11 см в зависимости от возраста, упитанности и пола. После прокола кожи игла сравнительно легко продвигается до начального сухожилия правой ножки диафрагмы и наружной капсулы почки. В момент прокола сухожильной ножки диафрагмы и наружной капсулы почки ощущается легкий хруст, и далее игла вновь легко продвигается на 1,5-2 см. Раствор через иглу должен идти легко, но несвободно вытекать. Поясничная блокада у собак Техника блокады. Для проведения данной блокады с правой стороны иглу вкалывают на уровне конца поперечного отростка 1-го поясничного позвонка, а с левой - на уровне поперечного отростка 2го поясничного позвонка. Иглу вводят вертикально до поперечного отростка поясничного позвонка, а затем смещают с поперечного отростка и продвигают на глубину 0,5-1 см. Для блокады применяют 0,25% раствор новокаина в дозе 1 мл/кг и проводят 2-3 раза с интервалом 1 -2 суток. Новокаиновая блокада висцеральных рецепторов по Герову (внутрибрюшинное введение новокаина) Показания - при перитоните, гастроэнтерите, гастрите, энтерите и диспепсии. При этом методе вводят в брюшную полость 0,25% раствор новокаина в дозе 1 мл для крупных животных и 0,5 мл/кг для мелких. Во из перитонита к раствору новокаина добавляют антибиотики широкого спектра действия. Техника выполнения блокады. Перед введением раствора животных фиксируют в стоячем положении. Затем делают перпендикулярный прокол брюшной стенки у телят и взрослого крупного рогатого скота в области правой, а у лошадей в области левой голодной ямки, на середине расстояния между последним ребром и маклоком, глубина введения у телят 1-2 см, у крупных животных 3-4 см. Поросят и плотоядных животных фиксируют за тазовые конечности вниз головой и прокалывают брюшную стенку, отступив от белой линии на 1.5-2 см между последней парой сосков на глубину 1-1,5 см. При введении игла проходит кожу, подкожную клетчатку, косые и прямые мышцы живота и брюшину с характерным звуком. Светолечение (фототерапия) Для лечения и профилактики болезней используют видимые, ультрафиолетовые и инфракрасные лучи, естественный источник которых - энергия солнца, а искусственный специальные лампы и аппараты. По квантовой теории энергия испускается и поглощается в виде отдельных порций, которые называются квантами. Чем короче длина волны, тем сильнее ее квантовая энергия. Ультрафиолетовое излучение (длина волны от 400 нм до 2 нм) Одним из методов, позволяющих предотвращать ряд внутренних (незаразных) заболеваний молодняка животных и птицы и получать дополнительную продукцию, является ультрафиолетовое (УФ) облучение. 95 Нарушение обмена веществ и функций важнейших физиологических систем проявляется в виде разнообразных осложнений, угнетающих развитие молодняка и снижающих продуктивность взрослых животных, что в ряде случаев влечет за собой преждевременную выбраковку животных. Показательно влияние УФ - облучения на содержание в организме витамина Д, который играет большую роль в регуляции обмена веществ. Известно, что в основных компонентах зимнего рациона: сене, силосе и сенаже - витамин Д практически отсутствует. Его дефицит в организме вызывает у молодняка рахит, а у взрослых животных остеомаляцию (размягчение костей). Применение УФ - облучения решает проблему обеспечения животных данным витамином. Благодаря облучению в коже происходит превращение провитамина 7-дегидрохолестерина в витамин ДЗ. За пастбищный период животные получают 78-85% годового природного УФ - облучения, тогда как за весь стойловый период лишь 15-22%. С 15 октября по 15 марта количество ультрафиолетового излучения составляет 1213%, а в декабре-январе - всего лишь 1,2-2,4% годовой величины. Установлено, что четырехкилометровые ежедневные прогулки лакирующих коров в стойловый период удовлетворяют потребность в ультрафиолетовых лучах за счет естественной радиации не более чем на 10-12%. При отсутствии искусственного облучения снижается иммунобиологическая устойчивость организма, нарушаются его обменные процесса. Ультрафиолетовые лучи по своей природе являются электромагнитными колебаниями и обладают всеми характерными для них свойствами. УФ-лучи неоднородны по своему составу и оказывают различное биологическое действие. Различают три области ультрафиолетовых лучей: 1. Длинноволновая область А содержит ультрафиолетовые лучи с длиной волны от 320 до 400 нм. 2. Средневолновая область В - лучи с длиной волны от 280 до 320 нм. 3. Коротковолновая область С - лучи с длиной волны от 180 до 280 нм. Длинноволновая область оказывает слабое биологическое действие, область В - выраженное биологическое действие, под ее влиянием синтезируется витамин Д и по ней дозируют ультрафиолетовое облучение животных; область С вредна для живого организма, ее лучи используются только для обеззараживания окружающей среды от микробов. Кожа с ее местным покровом является первой тканью организма, где проявляется действие света. Экспериментально доказано, что УФ-лучи, не вызывая тепловых ощущений, проникают через шерстный покров животных и оказывают биологическое действие на организм в зависимости от масти, густоты шерстных волокон, их загрязненности. В организм животных темной масти проникает до 20%, а со светлой шерстью - до 10% ультрафиолетовой энергии. Установлено, что кроме воздействия УФ-лучей непосредственно на кожу в процессе их генерации образуется значительное количество отрицательных 96 аэроионов, которые оказывают влияние на организм в основном респираторным путем. Биологические реакции, возникающие в организме под влиянием УФизлучения, складываются из биофизических, гуморальных и нервнорефлекторных явлений. Среди биофизических изменений ведущее место принадлежит фотоэлектрическому эффекту, результатом которого является изменение электрических свойств клетки и агрегатного состояния биоколлоидов. Под влиянием УФ-лучей атомы и молекулы тканей теряют электроны, которые уходят в окружающее пространство или задерживаются глубже лежащими тканями, переходящими при этом в так называемое возбужденное состояние, характеризующееся увеличением запасов энергии. Это приводит к повышению проницаемости клеточных мембран, в результате чего функции обмена веществ между клеткой и окружающей средой изменяются. Под влиянием поглощенной энергии ультрафиолетовых лучей происходит денатурация белка с последующей его коагуляцией, что сопровождается образованием веществ, обладающих высокой биологической активностью (гистамин, ацетилхолин и др.), которые, попадая в кровяное русло, разносятся по организму, оказывая влияние на все его системы. Нервно-рефлекторные реакции, происходящие под влиянием УФ облучения, возникают как результат раздражения последним мощного рецепторного поля кожи, а также появлением в крови биологически активных веществ, что обусловливает сложную цепь рефлекторных, в том числе эндокринных, обменных, нервных реакций. Механизм бактерицидного действия ультрафиолетовых лучей объясняется их влиянием на ядерную субстанцию микробной клетки. В результате этого нарушается обмен нуклеиновых кислот, что ведет к гибели клетки. УФ-лучи активизируют белковый обмен и защитные функции организма у животных, подвергшихся УФ-облучению, возрастает количество общего белка, амино- и полипептидного азота. Изменения в соотношении белковых фракций характеризуются увеличением гамма - глобулинов. Под их влиянием происходит повышение фагоцитарной активности лейкоцитов, увеличение бактерицидной, лизоцимной и агглютинирующей активности сыворотки крови и улучшение ее морфологического состава. Все это, в конечном счете приводит к укреплению здоровья животных и повышению их продуктивности по сравнению с животными, которые в осенне-зимний период не получают УФ-лучей. Искусственные источники ультрафиолетового облучения. Промышленность выпускает УФ-лампы с различными спектрами ультрафиолетового излучения, имеющие разные соотношения УФ областей А, В и С. Основный источником искусственного ультрафиолетового излучения является электрический разряд в парах ртути. В животноводстве используются четыре типа ламп: 97 1 Дуговые ртутно-трубчатые лампы высокого давления типа ДРТ изготавливаются из кварцевого стекла, имеют форму цилиндрической трубки, в оба конца которой введены металлические электроды. Внутри трубки находятся пары ртути и аргон. Лампы ДРТ горят в любом положений. Рис. 85 - Установка облучающая ртутнокварцевая передвижная ОРКШ Рис. 86 -Облучатель ртутно- кварцевый на штативе ОРК 21 Максимум излучения достигается спустя 7-10 мин после их включения в сеть. Если лампа не зажигается, ее следует выключить и снова включить; иногда это приходится делать несколько раз подряд. Для облегчения зажигания применяется специальный конденсатор емкостью 2-3 мкФ (на рабочее напряжение 400-600 В). После выключения раскаленной лампы вторичное зажигание ее возможно лишь после того, как она полностью остыла. Рис.87 -Облучатель ртутно-кварцевый ОРК2 98 В животноводстве используются дуговые ртутно-трубчатые лампы: ДРТ -400 и ДРТ - 1000. Срок службы ламп типа ДРТ составляет 800-1000 ч. Ультрафиолетовое облучение лампы при ее "старении" снижается: за 100 ч горения -на 10-12%, за 200 - на 17-20, за 300 - на 25-30, за 500 - на 35-40, за 800 ч - на 60% и более от исходной величины. Лампы ДРТ излучают все три области ультрафиолетового спектра и поэтому к их дозировке необходимо подходить очень строго, так как незначительная передозировка отрицательно влияет на организм животного. У этого типа ламп имеется около 15% коротковолновых УФ-лучей области С, которые оказывают неблагоприятное воздействие на слизистые оболочки глаз человека - вызывают воспаление слизистых оболочек (конъюнктивит). В связи с этим при эксплуатации ламп необходимы определенные меры предосторожности у обслуживающего персонала, в частности применение защитных очков. 2 Эритемные люминесцентные лампы рассчитаны на длительное действие и почти не содержат вредной для организма области С. Лампы этого типа представляют собой трубку из увиолевого стекла, заполненную парами ртути и аргоном, в концах ее помещены вольфрамовые спирали - электроды. Внутренняя поверхность трубки покрыта тонким слоем порошка светящегося состава - люминофора. Наиболее употребимые лампы этого типа - ЭУВ-15, ЭУВ-30, ЛЭ-15, ЛЭР-40 и др. В них ультрафиолетовая часть спектра колеблется в пределах 285-380 нм, максимум излучений лежит в области 310-320 нм. Основные светотехнические характеристики для эритемных ламп показаны в таблице 1. Срок службы люминесцентных эритемных ламп составляет в среднем 1500 ч. Таблица 4 - Основные характеристики люминесцентных эритемных ламп Характеристика ЭУВ- 15 Мощность лампы без приборов включения, Вт 15 Напряжение питающей сети, В 127 Поток ультрафиолетового излучения, мВт: в ЭУВ-30 30 220 135 области А (320-380 нм) в области В (280-320 61 118 262 нм)поток, мэр Эритемный Эритемная облученность на расстоянии 1 м от 190 530 20 58 лампы, мэр/м2 3 Ртутно-вольфрамовые эритемные лампы представляют собой сочетание лампы типа ДРТ и лампы накаливания с вольфрамовой нитью. Они генерируют лучи длинноволновой части спектра. Внутренняя сторона колбы из увиолевого стекла покрыта в верхней части отражающим слоем алюминия, что исключает необходимость применения спе99 циального рефлектора. К этому типу ламп относятся горелки РВЭ-350 и ДРВЭД-220 -160 (дуговая ртутно-вольфрамовая эритемная диффузная). Срок эксплуатации первой 300-500 ч, второй - до 1500 ч. Наиболее приемлема для использования в животноводстве лампа типа ДРВЭД-220 -160.Она состоит из увиолевой колбы, в которой смонтирована кварцевая горелка и вольфрамовая нить. Лампа ввертывается в обыкновенный бытовой электропатрон с напряжением 220 В, специальных приспособлений для ее включения не требуется. Наличие ультрафиолетового спектра А и В и отсутствие ультрафиолетовой области С позволяют применять эту лампу для облучения молодняка всех видов сельскохозяйственных животных. 4 Бактерицидные облучатели представляют собой ртутную лампу низкого давления, излучающую в основном коротковолновую часть ультрафиолетового спектра. Она выполнена в виде трубки из увиолевого стекла, которая помещена в специальный корпус. На коротковолновую часть УФ-спектра с длиной волны 254 нм приходится 80% излучения Таблица 5 - Характеристика бактерицидных ламп Характеристика БУВ-15 БУВ-30 БУВ-ЗОП Мощность лампы, Вт 15,0 30,0 30,0 Напряжение питающей сети, В 127 220 127 Напряжение на лампе, В 57 110 46 Ток лампы, А 0,3 0,32 0,65 Бактерицидный поток 1,5 3,2 2,8 Световой поток, блм номинальный, 60 130 100 БУВ-бОП 60,0 220 88 0,65 6 215 Наиболее распространенными генераторами этой группы являются лампы БУВ-15, БУВ-30, БУВ-ЗОП, БУВ-60П. Срок службы около 1500 ч. Кроме бактерицидных увиолевых ламп (БУВ) с целью обеззараживания объекта можно использовать - лампы типа ДРТ, в спектре которых содержится около 15% коротковолновых ультрафиолетовых лучей. В производстве часто используется установка ИКУФ-1, предназначенная для местного обогрева и УФ-облучения молодняка сельскохозяйственных животных. Установка состоит из блока программного управления, силового щита и 40 облучателей, включающих 80 инфракрасных ламп ИКЗК - 220 - 250 и 40 ультрафиолетовых ламп ЛЭ-15, смонтированных в общую арматуру, в которой имеется пусковая аппаратура для ультрафиолетовой лампы. Блок управления и силовой щит содержат пускозащитную аппаратуру, реле времени и элементы управления. Инфракрасная зеркальная лампа с окрашенной красной колбой (ИКЗК - 220 г 250) подключается в сеть напряжением 220 В, общая мощность ее 250 Вт, срок службы составляет 5000 ч. Эритемная 100 люминесцентная лампа ЛЭ-15 низкого давления подключается в сеть 127 В, имеет мощность 15 Вт и срок службы 1500ч. По желанию установку ИКУФ-1 комплектуют уфиметром УФЛ-71, обеспечивающим контроль эксплуатации ультрафиолетовых источников обладателей. При работе с источниками ультрафиолетового изучения необходимо соблюдать меры предосторожности от ожога. Во избежание воспаления слизистой или роговой оболочки глаз при работе с УФлампами, спектр излучения которых лежит в коротковолновом диапазоне, необходимо пользоваться защитными очками. Персонал, обслуживающий ультрафиолетовые установки, должен быть ознакомлен с инструкцией по работе с ними. Чистка ламп, а также отражающих поверхностей (светильников), арматур должна проводиться не реже одного -двух раз в месяц, при этом необходимо полностью отключать их от сети. Животноводческие помещения, в которых работают облучательные установки, относятся помещениям с повышенной опасностью поражения электрическим током. Для питания таких установок в помещениях этих категорий не допускается напряжение, превышающее 250 В по отношению к земле. Длительное использование источников УФ-лучей типа ДРТ приводит к повышению концентрации озона и окислов азота, поэтому после сеансов облучения помещение следует проветривать. Дозировка ультрафиолетового облучения животных Ультрафиолетовые лучи оказывают мощное действие на животный организм, поэтому правильная дозировка их имеет первостепенное значение. Существует прямая зависимость между дозой и лечебнопрофилактическим эффектом: недостаточные дозы не вызывают желаемых сдвигов в организме, а избыточное облучение может привести к отрицательным результатам (ожоги, потери зрения, обострение болезненного процесса и т.д.). Наиболее приемлемым методом дозирования является учет количества энергии ультрафиолетовых лучей, падающих на тело животного, а дозой облучения является произведение облученности на длительность облучения. Для животных наиболее благоприятны лучи с длиной волны 297 нм. Они обладают наибольшим антирахитным действием и наилучшей способностью вызывать покраснение кожи, так называемую эритему (асептическое воспаление). Доза УФО для животных выражается в мВт*ч/м2 УФ излучения с длиной волны 297 нмэр. При УФ облучении нужно знать плотность эритемного потока, падающего на животное, на расстоянии 1 м от излучателя, т. е. эритемная облученность, которая характеризуются отношением падающего эритемного потока к площади облучаемой поверхности. Однако действие УФ излучения зависит не только от уровней эритемного потока и эритемной облученности, но и от продолжительности облучения. Поэтому общая доза УФЛ измеряется в 101 мВт*ч/м2. Так, например, если эритемная облученность равна 30 мВт*ч/ м2, а продолжительность облучения 6 часов, то животное получает дозу 30 мВт*ч/ м2 * 6 ч = 180 мВт*ч/ м2. При проведении профилактических облучений рекомендуется пользоваться дозами облучения, приведенными в таблице. Таблица 6 - Рекомендуемые дозы сельскохозяйственных животных и птиц Животные и птицы Коровы и быки-производители Молодняк старше шести месяцев Телята до шести месяцев Ягнята Поросята - сосуны Поросята - отъемыши Свиноматки супоросные Куры ультрафиолетового облучения Доза 2 мВт*ч/м 250-270 140-160 120-140 120-140 20-25 60-80 70-90 40-50 Эритемную облученность источников ультрафиолетового излучения и суточные дозы облучения более точно можно определить с помощью ультрафиолетометров (УФМ-65), уфидозиметров (УВД-4), переносного полупроводникового уфиметра (УФИ-4) и других специальных приборов, а также расчетным путем. Стимулирующее влияние УФ-излучения на продуктивность, рост и развитие молодняка животных наиболее отчетливо выражено в осеннезимнем периоде, когда организм лишен необходимого количества естественного ультрафиолетового облучения. В условиях Казахстана УФ-облучение молодняка целесообразно применять со второй половины октября по апрель, при неблагоприятных погодных условиях и в апреле. При безвыгульном содержании молодняка сельскохозяйственных животных УФ-облучение необходимо проводить непрерывно в течение года. Видимый свет (длина волны от 760 нм до 400 нм) В зависимости от длины волны и частоты колебаний подразделяется на красные, оранжевые, желтые, зеленые, голубые, синие и фиолетовые лучи. Лампы накаливания дают непрерывный спектр излучения, более богатый желтыми и красными лучами по сравнению со спектром естественного дневного света. В последние годы для освещения животноводческих помещений и птичников применяют газоразрядные люминесцентные лампы. При люминесценции различные виды энергии (электрическая, химическая и т. д.) превращаются непосредственно в световое излучение, минуя стадию теплового излучения. Люминесцентные лампы различной длины и диаметра - стеклянные трубки, внутри которых имеются пары ртути. По концам трубки впаяны вольфрамовые электроды. При прохождении электрического тока пары ртути вызывают невидимое 102 ультрафиолетовое излучение, которое преобразуется люминофором в видимое свечение. Преимущество люминесцентных ламп по сравнению с лампами накаливания в более высокой световой отдаче, значительно меньшей яркости и большом сроке службы. Биологическое действие света сложно и многообразно. В основе его действия - рефлекторное влияние на многочисленные рецепторы сетчатки глаза, кожи. Через орган зрения свет действует на вегетативные центры гипоталамуса и гипофиза. Под влиянием поглощения кожей световой энергии раздражения в виде соответствующих импульсов передаются в центральную нервную систему. Одновременно происходящие морфологические изменения в коже вследствие образования биологически активных веществ, продуктов расщепления белка влияют на нормализацию в организме обменных процессов, способствуют усилению физико-биохимических процессов и стимулированию функции эндокринной системы. Биологическое действие лучистой энергии может вызывать изменения при поглощении телом этой энергии и переходе ее в тепловую. Это сопровождается изменением в данной среде в виде ускорения химических и биологических процессов, повышения тканевого обмена и других химических превращений. Недостаток света приводит к различным расстройствам в организме: понижению продуктивности, восприимчивости к инфекционным болезням. Эти изменения часто нельзя восполнить хорошим кормлением и содержанием. В ветеринарной практике для лечения и профилактики различных болезней животных наряду с естественными применяют различные искусственные источники лучистой энергии, видимого света, УФЛ и инфракрасных лучей. Инфракрасное излучение (длина волны от 760 нм до 400 мкм) Инфракрасные лучи образуются при нагревании металлического предмета до 100°С. При повышении температуры до 500°С появляются видимые красные лучи. Для облучения патологического участка тела обычно создают температуру 50 -60°С. Тепловой эффект этих лучей используют при различных болезнях. При облучении искусственными источниками инфракрасных лучей через 2-3 минуты на облученном участке появляется гиперемия. При этом на данном участке в 10-15 раз усиливаются кровоток, тканевый обмен, фагоцитоз, окислительные процессы, интенсивно увеличивается теплоотдача, уменьшается содержание воды в тканях. После облучения гиперемия обычно исчезает в течение 30 минут. Длинноволновые ИК-лучи поглощаются поверхностными слоями кожи. Поэтому, чтобы воздействие ИК-лучей было более глубоким, нужны источники излучения с более высокой температурой. При значительном перегревании происходит усиленная отдача тканями тепла в окружающую среду, и в дальнейшем могут наступить необратимые изменения в глубоких слоях эпидермиса. 103 Рис.88 – Лампа «Сол- Рис.89 - Лампа «Соллюкс»настольная люкс»стационарная Рис. 90 - Лампа Минина К искусственным источникам с лампами накаливания относятся светотепловые облучатели — лампы «Соллюкс» (стационарные, портативные, настольные), лампа Минина, лампа инфракрасных лучей (инфраруж — стационарная и настольная) и др. В стационарных лампах «Соллюкс» используют лампы накаливания мощностью 500-1000 Вт. Рефлектор имеет съемный параболический тубус, который позволяет облучать ограниченный участок тела. Световой спектр лампы соллюкс содержит до 12% лучей видимого света и до 90% инфракрасных лучей. Облучают животных на расстоянии 100-120 см в течение 15-30 минут в зависимости от теплового воздействия. На курс лечения назначают 20-25 процедур. Большую лампу «Соллюкс» и ИКЗК - 250 целесообразно использовать для прогревания глубоколежащих тканей. Интенсивность теплового излучения на теле животного ощущают с помощью тыльной стороны ладони. Для избегания резких колебаний температуры рекомендуется перед прогреванием включить лампу на 5-10 минут. Портативная лампа «Соллюкс» монтируется в чемодане с использованием лампы накаливания на 200-300 Вт. Процедуры проводят ежедневно на расстоянии от тела 40-80 см, продолжительностью до 30 минут. Настольную лампу используют так же, как портативную. У лампы Минина параболический рефлектор крепится на деревянной ручке с патроном. В ней используются лампы накаливания мощностью 50-100 Вт. Процедуру проводят 15-20 минут на расстоянии 5-10 см. Облучать можно 2-3 раза в день. Лампа инфракрасных лучей (инфраруж) по устройству напоминает лампу «Соллюкс», только вместо лампы накаливания на керамическом 104 конусообразном основании вставлена электрическая спираль мощностью 300-500 Вт, рассчитанная на напряжение 127 или 220 В. Температура нити накаливания достигает свыше 500°С. Облучают на расстоянии 40-80 см ежедневно, в течение 15-30 минут. Курс лечения 20-25 процедур. Реже в ветеринарной практике применяют световые «ванны» с рефлекторами в виде двух полусфер, на внутренней поверхности которых находятся до 8-12 ламп накаливания мощностью 40-75 Вт. Такую световую ванну назначают в течение 20-30 минут 1 раз в день или через день. Показания. Применяют при хронических процессах: гайморитах, фронтитах, пневмонии, плевритах; гипотонии и атонии преджелудков, катаральном гастроэнтерите, спастических коликах, болезнях мочевыделительной системы, ревматических и травматических миозитах и других болезнях. Сочетание светового и теплового действия на организм животных вызывает учащение дыхания, которое быстро приходит в норму после окончания облучения. Рис.91 - Облучатель ветеринарный Рис.92 - Облучатель инфракрасный инфракрасный ОРИ рефлекторный Рис.93 - Лампа инфракрасных лучей 105 ОБИ Противопоказания. Инфракрасные лучи не применяют в острой стадии воспалительного процесса при наличии большого кровенаполнения, при пороках сердца в стадии декомпенсации, злокачественных опухолях, геморрагических диатезах, тепловом и солнечном ударах, при септикопиемических процессах. Осторожно следует проводить тепловые процедуры короткошерстным собакам и кошкам, чтобы избежать перегревания организма, которое сопровождается учащением дыхания и сердечной деятельности, а в дальнейшем депрессивным состоянием. С профилактической целью в условиях животноводческих ферм и комплексов применяют различные искусственные источники инфракрасных лучей коротковолнового (проникают в ткани на глубину до 8 см) и длинноволнового диапазонов (вызывают гиперемию поверхностных слоев кожи). Более эффективное и быстрое действие инфракрасных лучей достигается лампами с нитью накаливания (светлые источники). Чаще применяют галогеновые лампы накаливания для инфракрасного излучения с повышенной световой отдачей мощностью от 400 до 1000 Вт. Широкое распространение получили источники ИК-лучей длинноволнового диапазона (темные источники). К ним относится облучатель ОКБ-137 6А (ТЭН), в котором нагревающийся элемент заключен в металлическую трубку. Подобные облучатели могут иметь разную модификацию, например, облучатели: ССПО-250, ОВИ-1, типа ОРИ, «Латвико» и т. д. В первые часы жизни телят рекомендуют-облучать лампами ИКЗМ-220-250, которые крепятся к клеткам и, создавая хороший тепловой режим, оказывают подсушивающее действие. Новорожденных поросят облучают в деревянных корытах, ящиках размером 1 х 1,2 м с температурой теплового потока 30°С, поросятсосунов до месячного возраста - 23-24°С непосредственно в станке, или делают небольшие деревянные домики, на внутренней стороне крыши которых устанавливают несколько ламп накаливания. Высота расположения ИК-источников зависит от температуры окружающего воздуха и дозы излучения. Облучают в течение 1 ч с отключением источника на 15 минут. Если температура окружающего воздуха низкая, то облучение проводят более продолжительное время. Ягнят в первые 3-4 дня облучают в течение 20 ч, через каждые 3 ч. С увеличением возраста экспозицию облучения уменьшают. При выращивании молодняка на животноводческих комплексах применяют автоматизированные установки ИКУФ и «Луч». Каждый облучатель имеет две лампы ИК-лучей и один источник (типа эритемного) ультрафиолетовых лучей. При заданном режиме автоматически происходит включение и выключение источников облучения. Для облучения ИК-лучами молодняка птицы в возрасте до 1 месяца применяют лампы с окрашенными колбами мощностью 250 Вт. Такого источника достаточно для 100-120 цыплят или 60-80 индюшат, гусят, 106 утят. Облучение проводят непрерывно напольно или в клетках, устанавливая облучатели. Солнечная радиация. Благотворное влияние на животных солнечных лучей в умеренных дозах известно с древних времен. Сила воздействия солнечной радиации зависит от многих факторов: времени года, угла падения лучей на земную поверхность, состояния атмосферы, вида, возраста, пола животного и т.д. Атмосфера, пыль, газы частично поглощают УФ-лучи, поэтому до поверхности земли доходит только 70% энергии солнечного света, которая оказывает на организм более благотворное влияние, чем искусственные источники света. В солнечный спектр входят и длинноволновые инфракрасные, и короткие УФ-лучи. При действии солнечных лучей в коже образуются биологически активные вещества, которые гуморальным и нервно-рефлекторным путями оказывают благотворное влияние на организм. Солнечные лучи положительно влияют на увеличение живой массы, отложение фосфорнокальциевых солей в костях (становятся более крепкими), повышение сопротивляемости организма животного к различным болезням. Под влиянием солнечных лучей стимулируются рост волос, функция сальных и потовых желез, улучшается качественный состав крови, усиливаются гемопоэз, газообмен, гликогенообразование, выделение из организма недоокисленных продуктов. Стимулируется рост, повышается резервная щелочность крови, нормализуется половая цикличность. Бактерицидное действие солнечной радиации оказывает благоприятное действие на скорость заживления ран. Лечебное и профилактическое облучение солнечными лучами лучше проводить в безветренном месте - в выгульных двориках, летних лагерях - в утренние часы (до 11 ч) и вечером с 17 до 19 ч. Продолжительность облучения до 5 ч, так как утром преобладает действие УФ-лучей, а днем видимых и инфракрасных. Показано облучение при рахите, алиментарных анемиях, фурункулезе, экземах и общей гипотрофии. При продолжительном действии солнечного света, особенно в безветренную влажную погоду, может отмечаться перегревание организма, что приводит к тепловому и солнечному удару. Перегревание усиливается при физической работе, ожирении. Может также наблюдаться фотодинамическое воспаление кожи на непигментированных участках губ, головы, конечностях у лошадей; на вымени, промежности у крупного рогатого скота. Противопоказания к облучению солнечными лучами такие же, как и при облучении искусственными источниками инфракрасных и УФ-лучей. Электролечение Гальванизация Под гальванизацией понимают лечение постоянным током, т. е. током, идущим все время в одном направлении. Для гальванизации применяют аппараты АГН-1, АГН-2 и АГП-33. В основе физиологического действия гальванического тока лежат: электрические 107 раздражения рецепторов кожи или слизистых оболочек, электролиз, электрофорез, катафорез, анафорез, тепловой эффект. Под влиянием постоянного тока повышается жизнедеятельность клеток и тканей (энергичнее протекает обмен веществ), расширяются сосуды, появляется гиперемия, которая держится несколько часов после процедуры. От усиленного местного крове- и лимфообращении изменяется общее кровообращение, что ведет к улучшению питания всех тканей организма. Увеличивается проницаемость стенок капилляров, что способствует более энергичному рассасыванию продуктов воспаления, инфильтратов и рубцов. Усиливается функция желез внутренней секреции. При непосредственном и рефлекторном воздействии постоянным током на головной мозг можно усилить процессы торможения в нем (электросон). Рис.94 - Аппарат для гальванизации портативный АГП 33 Подготовка кожи животного. Участок кожи, где накладывают электроды, обмывают теплой водой с мылом. При наличии царапин, ссадин, небольших ран и язв их покрывают слоем коллодия или ацетонового раствора кинопленки. Чтобы уменьшить сопротивление, места наложения электродов увлажняют теплой водой или физиологическим раствором. Укрепление электродов. Электроды помещают во влажные фланелевые мешочки или оборачивают 3-4 раза марлей, смоченной в воде, и накладывают на кожу животного. Накладывать электроды можно поперечно-прямо - друг против друга, диагонально-поперечно - сдвинуты в вертикальном направлении и продольно - раскладывают в одной плоскости тела. Если равную электродвижущую силу приложить к двум электродным пластинкам неодинаковых размеров, то плотность электрического тока, а следовательно, и физиологическое его действие, будет больше на меньшей пластинке. Такой электрод принято называть активным, а другой (большего размера) - индифферентным. Полярность активного электрода выбирают в зависимости от намеченных целей 108 лечения. Например, аноду свойственно успокаивающее (болеутоляющее) действие, а катоду - раздражающее и рассасывающее. Своей поверхностью электроды должны равномерно прилегать к коже. Если это невозможно по анатомическим условиям, то имеющиеся впадины заполняют увлажненной ватой. Электроды укрепляют резиновыми бинтами и подсоединяют их к гальваническому аппарату. Дозировка. Высшая допустимая терапевтическая плотность гальванического тока на 1 см2 электризуемой площади - 0,5 млА. Обычно пользуются плотностью тока в пределах 0,2-0,3 млА в течение 20-30 мин. Площадь обрабатываемого участка определяют не по поверхности свинцовых пластинок, а с учетом площади гидрофильной прокладки. Лечение проводят ежедневно или через день. Количество процедур устанавливают с учетом получаемого результата: в среднем 10-15, при хронических процессах - 20-30. Показания: ревматические и травматические воспаления суставов, мышц, сухожилий, щитовидной железы, придаточных полостей головы, асептические формы маститов, невралгии, невриты. Противопоказания: повышенная чувствительность к гальваническому току, геморрагические диатезы, злокачественные новообразования, необратимые дегенеративные процессы, эпилепсия. Ионогальванизация (электрофорез, ионотерапия) Ионогальванизация используется для введения в организм ионов лекарственного вещества с помощью постоянного тока через неповрежденную кожу, слизистую оболочку или раневую поверхность. При этом методе сочетается действие вводимых лекарственных веществ с действием постоянного тока. Если гидрофильную прокладку смочить раствором лекарственного вещества, наложить на кожу и подвести ток постоянного напряжения, то положительные ионы будут двигаться в сторону катода, а отрицательные - анода. Чтобы решить, с какого полюса вводить ионы данного лекарственного вещества, можно рекомендовать следующее простое правило: ион вводят со своего знака, т. е. положительный - с плюса, а отрицательный - с минуса. С анода вводят также водородные ионы, ионы металлов, органические катионы, с катода - гидроксилкислотные радикалы, органические анионы, т. е. катион вводят с анода, а анион - с катода. В электролечебном кабинете необходимо иметь таблицу часто используемых в практике лекарственных растворов с указанием полярности электрода и концентрации применяемых растворов. Сильнодействующие препараты или вещества, способные сами по себе вызывать раздражение кожи, назначают в слабых концентрациях от нескольких сантиграммов до нескольких дециграммов на 100 мл воды. Ионогальванизация по сравнению с другими методами введения лекарственных веществ имеет ряд преимуществ: можно оказывать местное действие при условии поверхностного расположения 109 патологического очага, вводить лишь необходимые ионы (при соблюдении определенных условий), комбинировать действие лекарственных ионов и постоянного тока, выделение ионов из организма происходит медленно. Таблица 7 - Некоторые лекарственные вещества, используемые при ионотерапии Полярность Применяемое или Концентрация Растворитель вещество заряженность раствора частицы Адреналина гидрохлорид Хлортетрациклин а гидрохлорид Калия йодид Прокаина гидрохлорид Натрия салицилат Натрия хлорид + Дистиллированная вода 0,1 + То же 12000 ЕД/мл - То же 3-5 + То же 3-5 - То же То же 3-5 3-5 Окситетрациклин а гидрохлорид + 0.01 Н раствор соляной кислоты Этазол + Слабый раствор соляной кислоты • 3000 ЕД/мл 3-5 1 Недостаток этого метода - невозможно точно учесть количество введенного вещества. Техника ионогальванизации Необходимо помнить, что наряду с желательными лекарственными ионами в организм могут быть введены и посторонние, так называемые паразитарные ионы. Поэтому следует соблюдать следующие правила: 1) готовить лекарственные растворы только на специальных для них растворителях и сохранять их в химически чистой, хорошо закупоренной стеклянной посуде; 2) иметь набор гидрофильных прокладок с вышитыми цветной ниткой соответствующими обозначениями; 3) хорошо промывать после лечебной процедуры прокладку в горячей проточной воде, а затем кипятить в дистиллированной. При ионогальванизации поверхность матерчатой прокладки одного из электродов смачивают тем лекарственным раствором, ионы которого хотят ввести в организм. Можно пользоваться фильтровальной бумагой, пропитанной лекарственным раствором, поверх нее накладывают обычную влажную прокладку со свинцовой пластинкой; 110 использованную бумагу выбрасывают. Вместо фильтровальной бумаги можно применять марлевые салфетки, сложенные вдвое. При введении антибиотиков используют четырехслойную прокладку: первый слой (нижний) - 1-2 листка фильтровальной бумаги, пропитанной раствором антибиотика, второй - толстая влажная матерчатая прокладка; третий -фильтровальная бумага, смоченная 5%-ным раствором глюкозы; четвертый слой - влажная толстая матерчатая прокладка и поверх нее свинцовая пластинка - электрод. Второй и четвертый слой увлажняют, лучше физиологическим раствором или водопроводной водой. Дозировка. Длительность процедуры 30-60 мин. Сила тока 0,2-0,5 млА на 1 см площади электрода, из которого вводится лекарственное вещество. Показания: подострые и хронические воспалительные процессы (травматические миозиты, травмы периферических нервов, воспаления придаточных пазух). Противопоказания: такие же, как и при гальванизации. Электротерапия импульсным переменным током высокой частоты и напряжения Дарсонвализация лечение импульсным переменным синусоидальным током высокой частоты (110 кГц), высокого напряжения (до 20 кВ) и малой силы (0,02 мА). Для местной дарсонвализации служит переносной аппарат «Искра-1», АТНЧ-22-11, «Ультратон», для общей клетка-соленоид. Рис. 95 - Аппарат для местной дарсонвализации «Искра-1» В основе физиологического действия тока при дарсонвализации лежат главным образом рефлекторные явления. Эти токи после кратковременного сужения вызывают расширение сосудов, понижают чувствительность нервных окончаний, чем оказывают болеутоляющее действие. Им также присуще проти-воспастическое действие, в результате чего прекращаются спазмы сосудов, сфинктеров, уменьшаются боли, вызванные спазмами. Под влиянием местного 111 применения тока ускоряется созревание грануляционной ткани: при общей дарсонвализации усиливается обмен, отмечают успокаивающее действие на нервную систему. Рис. 96 - Набор вакуумных электродов дарсонвализации с ручкой-резонатором для Существует три способа местной дарсонвализации: 1) контактный - когда электрод касается поверхности тела, при процедуре его держат на одном месте или, не отрывая, водят им по определенному участку поверхности кожи - создается болеутоляющий и тепловой эффект; 2) с близкого расстояния - когда электродом водят над больным участком на расстоянии 2-3 мм от поверхности тела; между электродом и кожей возникает множество искр, оказывающих нежное раздражающее действие и вызывающих гиперемию; 3) точечный - когда заостренный электрод устанавливают на расстоянии 0,5-1 см от поверхности тела и между кожей и электродом возникает узкий пучок искр, прижигающих поверхностно лежащие ткани. Методика применения местной дарсонвализации. Перед процедурой участок тела животного тщательно очищают. В каждом отдельном случае, в зависимости от патологического процесса, используют короткую, умеренную или длинную искру, длину которой определяют визуально. На поверхности участка тела площадью 400-600 см2 длительность процедуры составляет 3-5 минут, а общее время - 5-15 минут ежедневно или через день. Курс лечения обычно составляет 10-20 процедур. Для общей дарсонвализации используют клетку-соленоид. Животное в ней размещают в центре, что способствует равномерному действию 112 электромагнитного поля соленоида. Продолжительность сеанса 20-30 мин. Показания: долго не заживающие раны, язвы, экземы, фурункулез, заболевания периферических нервных стволов, нарушения обмена веществ, спазматические колики, энтералгия, осложнения после чумы плотоядных. Противопоказания: новообразования с наклонностью к кровотечениям, недостаточность сердечно-сосудистой системы. Индуктотермия (коротковолновая диатермия) Воздействие с лечебной целью высокочастотным переменным магнитным полем, которое, проникая в глубину тканей, преобразуется в тепло, называется индуктотермией (тдшЛо - наведение, Йгегте -тепло). Применяют для прогревания тканей. Количество образовавшегося тепла в тканях зависит от их электропроводности. Хорошей электропроводностью обладают кровь, лимфа, печень, желчь и т. д. С увеличением расстояния между электродом и поверхностью тела количество тепла в глубоких слоях ткани уменьшается. Для индуктотермии применяют стационарные аппараты ДКВ-1, ДКВ2 и ИКВ-4, которые генерируют частоты колебаний поля 13,56 млн Гц с длиной волны 22,13 м. В комплекте с аппаратом поступают индукторыдиски диаметром 20 или 30 см и индуктор-кабель длиной 3,5 м, который фиксируется с помощью пластмассовой гребенки. Индукторы-диски представляют собой круглую пластмассовую коробку с жестко закрепленной плоской спиралью из металлической трубки. Электроды закреплены на аппарате при помощи шарнирного держателя, а два гибких провода включают в выходные гнезда аппарата. Индуктор-кабель - гибкий многожильный проводник, покрытый резиновой изоляцией и имеющий на обоих концах металлические наконечники. Рис.97 - Аппарат для индуктотермии ИКВ-4 113 Методика процедуры. Крупных животных помещают в деревянный станок с хорошей изолирующей прокладкой на полу. Мелким животным процедуру проводят на деревянном столе. В зависимости от локализации воздействия допускается использовать разные электроды. Для воздействия на плоскую поверхность применяют дискообразные электроды. Для конечностей рекомендуется электрод в виде спирали. Можно применять его и для плоской поверхности, свернув витками в виде круга. Такой электрод фиксируют на теле животного гребенками с таким расчетом, чтобы расстояние между ним и телом животного составляло 1 см. Это создает равномерный нагрев тканей организма. Между электродом и телом животного кладут полотенце. Индуктотермию дозируют в миллиамперах, указывающих силу анодного тока. Слабые тепловые дозы для аппарата ДКВ-1: показание миллиамперметра 150-200 мА, средняя величина 220-280 мА (на аппарате ИКВ-4 - 4-6 делений), большая - 300 мА и выше. Продолжительность процедуры зависит от характера и стадийности заболевания, мощности воздействия и составляет в среднем 20-40 минут, ежедневно или через день, 10-15 сеансов на курс. Показания: подострые и хронические болезни мочевыделительной системы, функциональные расстройства желудочно-кишечного тракта, спастические колики, энтералгия, болезни органов дыхания. Противопоказания: новообразования, острые гнойные процессы и самопроизвольное кровотечение. Диатермия - применение для лечебных целей переменного тока высокой частоты (0,5-2 млн периодов), относительно небольшого напряжения (100 В) и большой силы (до нескольких ампер). Аппараты для диатермии: стационарный УДЛ-350, УДЛ-350М, переносной УДЛ-200. В основе физиологического действия диатермии лежат тепловые свойства токов высокой частоты. Тепло это эндогенного (внутреннего) происхождения; оно возникает внутри ткани при колебательных движениях ионов и других заряженных частиц под влиянием поля высокой частоты. Температура ткани в области, подвергаемой воздействию диатермии, повышается на 2-3°С, а общая температура тела - очень незначительно. Местное повышение температуры держится несколько часов. Под влиянием тепла рефлекторно расширяются кровеносные сосуды, усиливается ток крови, лимфы, а это способствует улучшению питания, повышению жизнедеятельности, активности процессов обмена. Кроме чисто теплового эффекта, при диатермии сказывается действие самого электрического поля. В результате всех этих влияний проявляется рассасывающее, антисептическое и болеутоляющее действие. Методика применения. На кожу больного, предварительно подготовленную так же, как и при гальванизации, накладывают свинцовые пластинчатые электроды без влажных прокладок, поскольку ток высокой частоты не вызывает электролиза. Электроды располагают поперечно, 114 продольно, поперечно-прямо и поперечно-косо. Укрепляют электроды эластичными резиновыми бинтами. Во время процедуры необходимо за пациентом вести наблюдение. При малейшем его беспокойстве аппарат выключают и проверяют правильность наложения и фиксации электродов. Дозу устанавливают по плотности диатермического тока, которую обычно определяют на площади активного электрода, о силе его судят по показаниям амперметра. Средняя плотность для хирургической диатермии до 10 млА на 1 м2, для терапевтической - 0,01А на 1 см2. Продолжительность сеанса 20-30 мин. Курс лечения от 12 до 15 сеансов. Показания: артриты, поли- и периартриты, миозиты, тендовагиниты, бурситы, периоститы, ушибы, растяжения мышц, сухожилий и суставных сумок, внутримышечные и подкожные кровоизлияния, разнообразные асептические воспалительные процессы в подкожной клетчатке и мышцах, невритах, а также используется для диагностики травматического ретикулита по методике Клейнбока-Либрейха. Противопоказания: острые кровотечения и предрасположенность к ним. Микроволновая терапия - это применение с лечебной целью сверхвысокочастотных электромагнитных колебаний (СВЧ) от 300 до 30000 МГц, длиной волны 12,6 см (сантиметровые волны- СМВ) и 100-10 см (дециметровые волны - ДМВ). При помощи специального генератора создается ДМВ, сверхчастотное электромагнитное поле, которое при помощи излучателя направляют на участок тела больного животного. ДМВ-излучение при меньшем нагреве поверхности тела более глубоко проникает в ткани, чем МВ. Мало поглощаются кожей и подкожной клетчаткой СВЧ. Более интенсивно идет поглощение в тканях, богатых водой, поэтому они сильнее нагреваются. Для СМВ используют аппараты «Луч-58» и «Луч-2». К ним прилагаются сменные волноводы-излучатели разного диаметра. Подробное описание панели управления, порядок включения и выключения и техника проведения процедур изложены в инструкции к аппаратам. С лечебной целью применяют сантиметровые волны длиной 12,6 см и частотой 2,375 МГц, проникающие в ткани на глубину 5-6 см. Для местных процедур ДМВ-терапии применяют аппарат «Волна-2» (стационарный) и портативный аппарат «Ромашка», которые генерируют волны длиной 65 см и частотой 460 МГц. К аппарату «Волна-2» прилагаются продолговатый и цилиндрический излучатели, к аппарату «Ромашка» - четыре излучателя. Энергия ДМВ проникает в ткани до 10 см. Физиологическое действие СВЧ- и ДМВ-излучения заключается в том, что при поглощении энергии в тканях возникает тепло, а в зависимости от частоты колебаний проявляется нетепловое (осцилляторное) действие. В участке тела, подвергнутого СВЧ-излучению, повышается обмен веществ, усиливается деятельность ретикулоэн-дотелиальной системы, лимфо- и кровотока, стимулируются нервно-рефлекторные функции 115 организма, за счет снижения чувствительности нервных окончаний наблюдается болеутоляющее действие. СВЧ-излучение оказывает бактериостатическое и противовоспалительное действие. Микроволны дециметрового диапазона оказывают большее десенсибилизирующее действие. Лечение ими эффективнее индуктотермии, КВЧ-терапии и СМВ-воздействия. Методика проведения процедур. Перед СМВ-терапией с животного снимают все металлические предметы, чтобы не было ожогов. Процедуру СМВ и ДМВ можно проводить двумя методами: дистанционным и контактным. При первом методе излучатели от аппарата «Луч-58», «Волна-2», «Ромашка» располагаются на расстоянии 5 см от поверхности кожи. При втором - излучатели аппарата «Луч-2», «Ромашка» слегка прижимают к поверхности тела. Длительность процедуры 30 минут. Назначают ежедневно или через день. Курс лечения от 5 до 15 процедур. Дозировка зависит от интенсивности и времени процедуры и регулируется ручками на панели управления аппарата. По интенсивности, которая зависит от мощности и диаметра облучателя, различают: слабое (до 40 Вт), среднее (до 60 Вт) и сильнотепловое (до 100 Вт) воздействия. Слаботепловой эффект от аппарата «Луч-2» достигается при мощности 2-4 Вт, тепловой - 5-7 Вт, сильнотепловой - 13-20 Вт. При смене животных облучатели дезинфицируют. Показания: подостро и хронически протекающие гаймориты, фронтиты, фурункулез, поражения опорно-двигательного "Аппарата, заболевания периферических нервов (невралгии, невриты), а также используется для диагностики, травматического ретикулита по методике Н.В. Кубасова. Противопоказания: злокачественные новообразования, травматический ретикулоперикардит, глубокая стельность, предрасположенность к кровотечениям, декомпенсированные пороки сердца, повышение кровяного давления. Ультравысокочастотная терапия (УВЧ-терапия) Лечебный метод, при котором на ткани животного воздействуют переменным электромагнитным полем ультравысокой частоты, называется УВЧтерапией. Токи ультравысокой частоты оказывают тепловое избирательное (селективное) действие на ткани. Умеренное воздействие ими замедляет ритм сердечных сокращений, а длительное - учащает. Более чувствительна к току УВЧ сосудистая система. Уже небольшие дозы вызывают двухфазное действие, проявляющееся кратковременным сужением сосудистого ложа, а затем расширением капилляров. При умеренных дозировках расширение кровеносных сосудов держится 2-3 дня, а при больших - две недели и больше. Высокочастотное поле влияет и на морфологический состав крови - увеличивается количество лейкоцитов (в основном нейтрофилов). Значительно повышается свертываемость крови. В небольших дозах УВЧ повышает концентрацию сахара в крови, усиливает белковый распад, повышает окислительные процессы, увеличивает дыхательный коэффициент. Большие дозы 116 приводят к гипогликемии. От сильного воздействия токов УВЧ погибают микробы, паразиты, грибки. При небольшой интенсивности поля УВЧ возрастает возбудимость и проводимость нервной ткани. В больших дозах УВЧ оказывает обратное действие. Характерно, что в период повышенной возбудимости высокочастотное поле приводит к выраженному торможению, и, наоборот, в период тормозного состояния отмечается повышение возбудимости. Следовательно, в основе терапии УВЧ лежит способность изменять функции секреторных органов, вегетативной нервной системы, а также физиологической системы соединительной ткани. Под влиянием УВЧ повышается выработка антител, снижается токсичность продуктов жизнедеятельности патогенных микробов, отмечается дегенерация воспаленной ткани, усиливается резорбция из пораженного очага продуктов воспаления. Для УВЧ-терапии используют стационарные аппараты: УВЧ-300, «Экран-1», «Экран-2» и портативные: УВЧ-30, УВЧ-66, УВЧ-62, а также аппарат для импульсной УВЧ-терапии «Импульс-2». Рис. 98 - Аппарат для УВЧ-терапии переносной «УВЧ-30» Методика применения В зависимости от того, на какую часть органа или туловища желательно воздействовать УВЧ-полем, расположение пластин может быть биполярное и монополярное. Животных фиксируют в станке, изолированном от пола деревянным настилом с резиновой прокладкой, мелких животных укрепляют на деревянных столах (при несоблюдении этого правила происходит утечка электроэнергии в землю). Необходимо помнить, что чем меньше зазор между кожей и пластинкой, тем поверхностнее воздействие УВЧ, и чем больше зазор, тем действие будет более глубокое. Воздушный зазор должен быть от 1 до 5 см. Экспозиция местного воздействия 10-15 мин. Число сеансов обусловливается характером и течением патологического процесса. 117 Процедуры назначают ежедневно или через день до получения ожидаемого лечебного эффекта. Показания: острые воспалительные процессы кожи и подкожной клетчатки, суставов, невралгии, флегмоны, тромбофлебиты, плевриты, паралитическая миоглобинурия лошадей, гаймориты, фронтиты, бронхопневмония. Противопоказания: злокачественные новообразования, геморрагический диатез, отек легких, головного мозга, травматический ретикулоперикардит, гипертония. Ультразвукотерапия Ультразвук - механические волновые колебания свыше 20 тыс Гц. Для лечения используются аппараты стационарные: УТС-1, УТС-1М, УТС-3 и портативные: УТП-1, УТП-ЗМ, УЗТ-5, УЗТ-104. Под влиянием ультразвука в малых дозах проявляется болеутоляющее, сосудорасширяющее, противовоспалительное, спазмолитическое, рассасывающее, десенсибилизирующее действие. Активизируется крово- и лимфообращение, особенно в зоне воздействия, повышается фагоцитоз, уменьшаются в размерах, а нередко рассасываются рубцы и спайки. Ускоряются процессы регенерации и репарации (нервы, печень, хрящевая ткань, эпителий и др.). Нервная система весьма чувствительна к ультразвуку. О высокой чувствительности нервных окончаний свидетельствует возникновение боли в области озвучивания при незначительном превышении дозы. Боль возникает гораздо раньше до того момента, когда можно обнаружить гистоморфологические изменения. Это служит предостерегающим сигналом при ультразвуковой лечебной процедуре. Методика процедур. На месте приложения ультразвуковой головки волосы выстригают и моют участок кожи теплой водой. Ультразвуковую терапию можно проводить непосредственно, прикладывая вибратор к очагу поражения, или действовать на какой-либо орган через нервные узлы, сплетения. При непосредственном контакте вибратора с кожей ее смазывают растительным маслом или глицерином, чтобы не было воздушной прослойки. Вибратор фиксируют непосредственно или медленно передвигают по выбранному участку. Продолжительность процедуру колеблется от 5 до 10 минут. При острых процессах назначают 6-10 процедур, при хронических - до 12, ежедневно или через день. Мощность на 1 см2 от 0,2-0,4 до 1-1,2 Вт. Показания: хронические воспалительные болезни суставов, сухожильно-связочного аппарата (бурситы, тендовагиниты), болезни глаз (кератиты, кера-токонъюнктивиты), маститы, ожоги, язвы, раны, ушибы и т.д. Противопоказания: злокачественные опухоли, глубокая стельность, сердечная недостаточность, кахексия, туберкулез. Не рекомендуется облучать ультразвуком головной и спинной мозг. 118 Защитные мероприятия при электротерапии Современные успехи в биологии, биохимии, физиологии открыли большие перспективы в применении для лечения и профилактики ряда болезней животных физиотерапевтических процедур. Однако использование искусственных источников в физиотерапевтической практике связано с применением электрического тока, который в зависимости от напряжения, силы, частоты, вида, при нарушении техники безопасности является опасным как для жизни обслуживающего персонала, так и для животных. Наибольшую опасность представляет низкочастотный ток большого напряжения. Поражение током может быть в виде электрической травмы (ожог) или электрического удара. Ожоги могут быть вследствие теплового воздействия электрической дуги при замыканиях. Электрический удар обычно сопровождается судорожным сокращением мышц и часто поражением внутренних органов, шоком, расстройством дыхания. В тяжелых случаях может наступить смерть. Часто поражение электрическим током происходит при контакте с металлическими частями аппаратов, плохо изолированными проводами, находящимися под напряжением. Деревянные, асфальтовые полы имеют большое сопротивление, однако не защищают полностью от действия тока. Основное требование при защитных мероприятиях - исключить возможность прикосновения животных и человека к металлическим частям, находящимся под напряжением. Все физиотерапевтические аппараты в металлических корпусах и на металлических штативах должны быть заземлены. Рубильники защищены приспособлениями, изолированными от полюсов тока. Штепсельные розетки, выключатели должны быть снабжены крышками. При нарушении изоляции подводящих ток проводов оголенные участки изолируют резиной или изоляционной лентой. Запрещается для заземления аппаратуры использовать сети центрального отопления и канализации. При проведении электротерапевтической процедуры животное ставят на сухой резиновый коврик или деревянный настил. Мелким животным процедуру лучше проводить на деревянном столе. Электротерапевтическую аппаратуру эксплуатируют в соответствии с правилами, указанными в инструкции. Следует иметь в виду, что при длительной работе с физиотерапевтическими аппаратами (микроволновая СМВ и ДМВ, УВЧ) создаваемые ими отраженные электромагнитные поля в окружающем пространстве могут неблагоприятно влиять на самочувствие обслуживающего персонала. Поэтому для защиты от излучения может быть применена ширма, обтянутая экраном, или металлическая сетка Чтобы уменьшить излучение в окружающую среду, высокое напряжение от генератора следует подавать после установки излучателя, а перед прекращением процедуры выключать высокое напряжение. Все указанные средства защиты обязательны для стационарных аппаратов, 119 имеющих большую мощность по сравнению с портативными. Лицам без специальной подготовки любой ремонт внутри аппарата при включенном токе категорически запрещается. При использовании УФ-облучателей глаза обслуживающего персонала должны быть защищены очками с темными стеклами. Следует избегать попадания прямых УФ-лучей на глаза животных. В перерывах между облучениями УФ-лампу закрывают шторками. Во избежание взрыва электрических ламп, ожогов от нагревательных спиралей все источники ИК-лучей должны быть защищены сетками или располагаться в безопасном месте. Терапия раздражающими и отвлекающими средствами Раздражающие средства, наносимые на кожу, издавна применяются для лечения при различных заболеваниях. Благоприятные результаты, получаемые от раздражающих средств, совершенно очевидны и служат основанием для их терапевтического применения. Быстрота появления признаков улучшения в состоянии больных при назначении средств, раздражающих кожу, свидетельствует о нервнорефлекторном механизме их лечебного действия. В ветеринарной практике вместо горчичников применяют жидкое горчичное тесто, горчичный спирт, летучий линимент, камфарный спирт, скипидар в смеси с водой или маслом. Использованию горчичников медицинского типа для сельскохозяйственных животных препятствует густой шерстный покров, удаление которого связано с техническими трудностями, а в холодное время года, кроме того, увеличивает опасность простуды. Горчичники В семенах горчицы содержатся эфирное масло, глюкозид -синиргин, и фермент - мирозин. Последний при температуре 35-45°С и в присутствии достаточного количества влаги расщепляет синиргин с образованием горчичного эфирного масла, которое обладает раздражающими свойствами. Тесто из горчичного порошка, нанесенное на кожу, вызывает раздражение нервных окончаний, вследствие чего развивается гиперемия и отек тканей, которые удерживаются 2-3 дня. Одновременно с гиперемией кожи происходит улучшение кровоснабжения и нервной трофики органов и тканей, рефлекторно связанных через пограничный симпатический ствол и спинной мозг с раздражаемыми участками кожи. Вместе с тем образующиеся в коже при ее раздражении продукты некробиоза и денатурации белка при всасывании оказывают действие, подобное средствам неспецифической стимулирующей терапии. Методика наложения горчичников Для крупных животных берут 300-400 г свежего горчичного порошка и тщательно перемешивают его с водой до слив-кообразной консистенции. Затем на предварительно очищенную и хорошо увлажненную кожу животного наносят горчичную массу и втирают ее. После этого сверху накладывают мокрую материю и накрывают попоной. Такой горчичник можно держать 15-20-30 минут. 120 Сразу после снятия горчичника необходимо кожу обмыть теплой водой, протереть и тепло укутать. Внимание! Не удаленная с кожи горчичная масса может вызвать некроз кожи. Показания: острые бронхиты, ограниченные (сухие) плевриты, пневмонии, заболевания желудочно-кишечного тракта с явлениями колик, невралгии, парезы и параличи. Противопоказания: кожные заболевания (экземы, дерматиты), заболевания почек, истощение, септические процессы, тяжелые интоксикации. Банки Механизм лечебного действия банок в основных чертах сводится к следующему: а) отвлечение из кровеносного русла некоторого количества циркулирующей крови облегчает работу сердца; б) кровь, отсосанная банками, за время процедуры частично денатурируется, и продукты распада белка плазмы и форменных элементов крови при рассасывании оказывают стимулирующее действие по принципу неспецифической протеинотерапии — аутогемотерапии; в) механическое и биохимическое раздражение нервных рецепторов кожи и подкожной клетчатки оказывает регулирующее влияние на кровоснабжение и нервную трофику в области воспаления, так же как при назначении раздражающих средств. Для крупных животных имеются стандартные металлические банки, выпускаемые по образцу, предложенному Н. Т. Васильевым. Рис. 99 - Наложение банок Для мелких животных и молодняка можно пользоваться обычными медицинскими банками. Применение банок у некоторых видов животных, например у овец, затрудняет густой шерстный покров. Показания: острые и подострые бронхиты, плевриты, пневмонии. Противопоказания: нарушение кровообращения, выраженная слабость больного, септические процессы, болезни кожи. 121 Механотерапия Массаж - комплекс специальных механических воздействий на кожу и органы с лечебной и профилактической целями, направленный на нормализацию физиологических процессов в организме. Под действием массажа за счет открытия кожных пор и протоков кожных желез улучшается кожное дыхание, в организме усиливаются распад белка и выделение с мочой мочевины, в коже появляются гистаминоподобные вещества, которые, всасываясь в кровь, повышают реактивность организма, стимулируется лимфо- и кровообращение, усиливаются окислительные процессы, питание мышц и тканевый обмен, массаж благотворно влияет на эластичность и подвижность связочного аппарата. За счет быстрого освобождения от молочной, угольной кислот и других вредных продуктов восстанавливается работоспособность утомленных мышц. При массаже уменьшаются застойные явления, ускоряется рассасывание инфильтратов. Механическое действие массажа на поверхностные, глубокие и двигательные нервы рефлекторно передается в центральную нервную систему, что способствует нормализации физиологических процессов в организме, повышению секреции желудочно-кишечного тракта и газообмена в легких, реактивности и защитных свойств организма. Основу функциональной терапии составляет активный (проводка животного, рабочая нагрузка) и пассивный массаж (руками, вибраторами и специальными приспособлениями). Активный массаж способствует закаливанию организма животным ежедневно организуют прогулки, особенно в осенне-зимний период. Время прогулок или работы с нагрузкой постепенно увеличивают. Пассивный массаж в зависимости от вида животного, толщины его кожи и других факторов проводят концами пальцев или кулаком по ходу лимфатических сосудов от периферии к центру. Различают следующие приемы массажа: - поглаживание - проводят ладонью или специальными валиками сначала легким, а затем усиливающим давлением до 10-12 движений в минуту; - растирание — выполняется согнутыми пальцами или двумя руками (при образовавшейся складке кожи движения проводят продольно, поперечно или кругообразно); - разминание - проводят сдвигание, захватывание, приподнимание, прижимание и выжимание мышечной ткани (осуществляется пальцами и ладонями обеих рук); - поколачивание - периодические отрывистые удары пальцами, ладонью, кулаком в виде рубления, похлопывания, постукивания, удара кулаком. Вибрация - периодически повторяющиеся колебательные движения пальцами руки или электровибратора. Назначают массаж в зависимости 122 от патологического процесса через 3-12 дней. Проводят 1-2 раза в сутки по 10-15 минут. Показания. Парезы, параличи, невриты, атрофии мышц, мочевого пузыря, маститы неинфекционного происхождения, заболевание суставов и сухожильно-связочного аппарата, хроническая тимпания, переполнение желудочно-кишечного тракта и другие болезни. Противопоказания. Повышенная температура тела, новообразования, воспалительные септические и гнойные процессы, свежие кровоизлияния, гематомы, перитониты, инвагинации кишечника, повреждения кожи (ожоги, дерматиты и т. д.). Водолечебные процедуры Купания - тонизирующая и закаливающая организм процедура, способствующая механической очистке кожи и теплоотдачи с кожного покрова. Под влиянием холодной воды, при купании и особенно в сочетании с плаванием, тонус организма повышается, вследствие сужения периферических кровеносных сосудов происходит перераспределение крови во внутренние органы, тренируются дыхательная и сердечно-сосудистая системы, повышается аппетит и окислительно-восстановительные процессы. Хорошо реагируют на купания лошади, крупный рогатый скот, свиньи. Проводят купания в реках с небольшим течением и неилистым твердым дном. После купания рекомендуют для согревания животным делать прогонку. С лечебной целью купают овец. В основном это делают летом в теплую, безветренную погоду, так как длинная шерсть увеличивает время высыхания с одновременной потерей организмом большого количества тепла. Купают 1 -2 раза в день, лучше при температуре воды 18-20°С до 10-15 минут. Показаны купания для укрепления сухожильно-связочного аппарата, тонизирования сфинктеров, сосков вымени, при миозитах, гипотонии и атонии. Противопоказаны купания разгоряченных животных и сразу после кормления. Не рекомендуется купать при сильном и холодном ветре. Обмывания — применение теплой воды с мыльной пеной с гигиенической целью. Рекомендуется начинать обмывания крупных животных сверху вниз с шеи и хвоста, а затем обмыть спину и боковые участки тела. После орошения теплой водой животное намыливают и через 2-3 минуты мыло смывают. При необходимости процедуру повторяют. Затем животное необходимо протереть сухой тканью и покрыть попоной. Чтобы избежать простудных заболеваний, животное следует выводить на холодный воздух только после полного обсыхания. Обливания вызывают местную кожную реакцию и очищают кожу от пота, пыли, грязи. Обливания могут быть теплые (температура воды 4050°С) и холодные (10-25°С). Обливания можно проводить из ведра, резинового шланга с расстояния 15-20 см от тела животного, теплой 123 водой до 15 минут, холодной 5-10 минут. После холодного обливания показано растирание кожи. Местные обливания проводят в области затылка, спины, живота, конечностей. Обливания холодной водой рекомендуют при солнечном и тепловом ударах, носовом кровотечении, ревматическом воспалении копыт, ушибах, атонии рубца и кишечника. Душ - сильнодействующая процедура, в основе которой — действие струи воды различной формы, температуры, давления на тело животного. Душ можно проводить с применением баков или с подключением к водопроводной сети с обязательной возможностью изменения формы, температуры и давления струи. Существуют различные разновидности душа. Циркулярный душ - вода попадает на тело животного через душевые сетки со всех сторон, с температурой от 35 до 23°С. Продолжительность процедуры 5-10 минут. Дождевой душ — вода через душевые сетки, укрепленные подвижно на станке или на резиновом шланге на расстоянии 2—2,5 м от пола, попадает на тело животного в виде дождя. Продолжительность 5-6 минут. Назначается в качестве гигиенической и лечебной процедуры. Душ игольчатый — многоструйный душ, при котором вода подается под большим давлением. Вызывает сильное механическое действие. Продолжительность процедуры 5-6 минут. Душ струевой (душ Шарко). Водная струя под давлением 4 атм подается на поверхность тела зафиксированного животного. Сначала животное быстро обливают, а затем струей воды на расстоянии 2-3 м от тела проводят вдоль позвоночника, по боковым поверхностям грудной и брюшной стенок, конечностям. Продолжительность процедуры 4-5 минут при температуре воды около 20°С. Душ шотландский (веерный) — используется вода переменной температуры от 20 до 50°С. Такие изменения температуры проводят в течение 1-2 минут, сочетая с энергичным растиранием кожи. Продолжительность процедуры 10-20 минут. Восходящий душ — душевая сетка подводится и укрепляется внизу станка, чтобы вертикальная струя воды, под давлением 1,5-2 атм, попадала на нижнюю часть живота, мошонку, вымя. Продолжительность процедуры 5-6 минут. Души, у которых струя воды поступает под большим давлением, противопоказаны при сердечно-сосудистой недостаточности, кахексии, второй половине стельности, молодняку. Ванны по назначению могут быть: очистительными (для очистки кожи) и лечебными, которые в зависимости от температуры воды могут быть холодными (ниже 20°С), прохладными (21-33°С), индифферентными (34-36°С), теплыми (37-38°С) и горячими (39°С и выше). Лекарственным ваннам соответствует название лекарственного средства. Ваннами можно оказывать воздействие на весь организм 124 (общие) и на какой-то участок тела (местные). Крупным животным назначают в основном местные ванны, мелким - общие и местные. Холодные ванны тонизируют, теплые обладают успокаивающим действием. В ветеринарной практике ванны чаще назначают для очистки кожи, используя теплую воду, мыло или мыльный порошок (100 г на ведро). В зависимости от температуры воды продолжительность ванн разная. Если температура воды выше температуры тела животного на 34°С, то продолжительность ванны составляет 30-40 минут, при 20°С - 2025 минут. При добавлении в воду лекарственного вещества (углекислой соды, креолина, лизола, формалина и т. д.) ванны будут лекарственными. Их применяют чаще при заболеваниях конечностей, паразитарных болезнях кожи. После ванн животное обтирают сухой тканью и покрывают попоной. 125 СПИСОК ИСПОЛЬЗОВАННОЙ ЛИТЕРАТУРЫ 1. Афанасьев, И. Взятие крови у свиней для лабораторных исследований/ И. Афанасьев, Г. Прейберг // Сб. научн. тр. ЛСХА.- Л., 1977. – Вып. 114. – С. 29-31. 2. Байлов, В.В. Внутрикостная инъекция антибиотиков при болезнях копытец у телят /В.В.Байлов //Ветеринария. -1989. -№3. –С. 53-54. 3. Беляев И.М., Шайхаманов М.Х., Обухов Л.М., Коробов А.В. Элементы терапевтической техники в ветеринарии. - М.: МВА, 1972. 77с. 4. Беляков, И.М. Пропедевтика внутренних незаразных болезней животных /И.М.Беляков. – М.: Колос, 1984. -336 с. 5. Бирих, В.К. Возрастная морфология крупного рогатого скота /В.К.Бирих, Г.М.Удовин. –Пермь, 1972. -249 с. 6.Васильев М.Ф., Воронин Г.С., Дупин Г.Л. и др. «Практикум по клинической диагностике болезней животных» - М.: Колос, 2004-269с. 7 Васильев М.Ф., Воронин Е.С., Дугин Г.Л., Ковалев С.П.,Сноз Г.В., Черкасова В.И., Шабанов А.М., Щукин М.В. «Практикум по клинической диагностике болезней животных.» - М:2004. 8. Внутренние незаразные болезни сельскохозяйственных животных. Под редакцией Б.М. Данилевского.- М., В.О. Агропромиздат.-1991. 9. Воронин А.В. Практикум по клинической диагностике болезней животных. - М.: Колос С, 2004. – 269 с. 10. Диагностическая и терапевтическая техника в ветеринарии: Справочное издание/ Под общей редакцией П.С.Ионова. – М.: Колос, 1979. – 223 с. 11. Ермоленко, О.П. Оригинальный метод получения крови у лисиц /О.П. Ермоленко // Кролиководство и звероводство. – 1971.- № 3. – С. 40. 12. Инструкция по физиолого-биохимическим анализам рыбы.- М., 1984.59с. 13. Кизаев А.М. Терапевтическая техника в ветеринарии. – Оренбург, 1998. 14. Коваленко Л.И. Методы терапевтической помощи животным. Киев, Урожай – 1991. 15. Ковтунович, Л.Г. Получение крови от белых мышей из ретроорбитального венозного сплетения / Л.Г. Ковтунович, Е.И. Лискевич // Лабораторное дело. – 1981. – № 8. – С. 50-57. 16.Кондрахин И.П., Архипов А.Р., Левченко В.И.и др. «Методы ветеринарной клинической лабораторной диагностики.» - М.:Колос,2004520с. 17.Коробов А.В., Краснов И.П. Клиническая диагностика и терапия внутренних незаразных болезней животных: Диафильм.ч. 1,2,3,. - М.: МГАВМиБ им. К.И. Скрябина, 1995. 18. Коробов А.В., Щербаков Г.Г. «Практикум по внутренним незаразным болезнях животных.»СПб.: Хань,2004-544с. 19. Кузнецов А.К. Новокаиновая терапия заболевания животных. – М., Россельхозиздат,1970. 126 20.Кулакова Л.С. «Электрокардиографическая диагностика заболеваний сердца у домашних животных.» - Костанай,2008-69с. 21. Краснов, И.П. Практикум по внутренним незаразным болезням сельскохозяйственных животных /И.П.Краснов, В.В.Митюшин. – М.: Агропромиздат, 1988. -208 с. 22.Криштофорова, Б.В. Морфофункциональные особенности новорожденных телят /Б.В.Криштофорова, И.В.Хрусталева, – М.: МВА, 1990. -87 с. 23. Методические указания по взятию крови у животных / П.Я. Конопелько, К.П. Клименков, Ю.Н. Шляпин. – Витебск: ВВИ, 1989.– 36 с. 24. Медведев И.Д..Физические методы лечения животных – М., Колос,1964. 25. Метелев, В.В. Методы взятия крови у рыб / В.В. Метелев, В.Н. Козлов // Ветеринария. – 1965.– № 8. – С. 80-81. 26.Мишанин Ю.Ф., Мишанин М.Ю. Практическая ветеринария. – Ростов на Дону: Март, 2002. – 384 с. 27. Муха, С.М. Исследование крови у животных:– М.: МВА, 1984. – 40 с. 28.Новиков, Е.А. Закономерности развития сельскохозяйственных животных /Е.А.Новиков. – М.: Колос, 1971. -224 с. 29. Окунцов, Л.П. Пункция сердца для получения крови у кур / Л.П. Окунцов // Лабораторное дело. – 1961. – № 1. – С. 53-56. 30. Пилипенко, М.Е. К вопросу взятия крови у гусей, уток и кур / М.Е. Пилипенко,Т.Г.Цымбал, П.Р. Щербина // Птицеводство.–1960 –№ 2.–С. 36. 31. Попеско, П. Атлас топографической анатомии сельскохозяйственных животных: В 3-х томах. Т.1: Голова и шея. – Братислава, 1961. Т.2: Туловище. – Братислава, 1978. Т.3: Таз и конечности. – Братислава, 1968. 32. Практикум по внутренним незаразным болезням животных. Под редакцией В.М. Данилевского и И.П. Кондрахина. – М., Колос,1992. 33. Рой, Дж.Х.Б. Выращивание телят /Дж.Х.Б.Рой. –М.: Колос, 1982.469 с. 34. Рыбакова, Г.А. Техника взятия крови у птиц / Г.А. Рыбакова // Птицеводство. – 1960. – № 8. – С. 42-43. 35. Сидоров, М.А. Получение крови от свиней из краниальной полой вены / М.А. Сидоров// Ветеринария. – 1967. – № 2. – С. 79-81. 36. Справочник по аппаратуре, приборам, инструментам и лабораторному оборудованию ветеринарного назначения. -- К.: Урожай. 1987. -- 252 с. 37. Суродейкина, Л.Н. Получение крови и негемолизированной сыворотки у мелких лабораторных животных / Л.Н. Суродейкина // Лабораторное дело. – 1964. – № 3. – С. 183-185. 38.Уша Б.В.,Беляков И.М., Пушкарев Р.П. «Клиническая диагностика внутренних незаразных болезней животных» - М.: 2004-487с. 39. Шажко, Ж. Взятие крови из глазничного венозного сплетения / Ж. Шажко, В. Мищенко, Н. Яременко// Свиноводство. – 1981. – № 4. – С. 29. 40. Элементы терапевтической техники в ветеринарии: Методич. пособие для ст-тов очного и заочного ветеринарных факультетов. /Под ред. И.Г.Шарабрина. – М.: МВА, 1972. – 80 с. 127 41. Шарабрин И.Г., Аликаев В.Л., Замарин Л.Г. и другие Внутренние незаразные болезни сельскохозяйственных животных – М.: Агропромиздат.,1986. 42.Щербаков Г.Г., Коробов А.В. «Внутренние незаразные болезни животных». СП.б.: Лань, 2004-544с. 43. Фриц, Е. Практические принципы гидратирующего лечения у животных //Новости ветеринарной фармации и медицины. -1992. –Т.8, №1. –С. 19-29. 44. Хрусталева, И.В.и др. Методика внутрикостных введений лекарственных веществ молодняку сельскохозяйственных – М.: МВА, 1979. -19 с. 45. Хрусталева, И.В. Строение и функции скелета в зависимости от двигательной активности животных /И.В.Хрусталева, Б.В.Криштофорова. – М.: МВА, 1982. -22 с. 46..Яковлев Я.И. Техника введения лекарственных форм животным.М.:Колос, 1974. 191с. 47. Coles, T. Veterinary clinical pathology – London, 1986. – Р. 37. 48.Praper H.H., Sgvires E.J., Agarwal S., Hadley M. A comparative evaluation of thiobarbituric acid methods for determination of malondialdehyde in biological materials // Free. Radix. Biol. Med. – 1993. - №4. – P. 353-363. 49.Ramachandran M., Jeer G.Y. N. Erythrocyte membrane lipid peroxidation in iron deficiency anemia //Txperientia.-1984.-Vol.40,№2.-P.173-174. 50.Rodvien R., Tavassoli V., Grosby W. H. The structure of spleen in experimentally induced deficiency anemia // Amer. J. Pathol.-1974.Vol.75.№2.-P.243-249. 51.Schlegel R., Mac Gregor J.T. A rapid screen for cumulative chromosomal damage in mice//Ibid.-1983.-N6.-P.481-487. 52.Schlegel R., Mac Gregor J.T. The persistence of micronuclei in peripheral blood erythrocytes: detection of chronic chromosome breakage in mico//Mutat.Res.-1982.-Vol.104.-N6.-P.367-371. 53.Shaw M.W., Lodge K., John P. Metabolism of fructose the plants – Helianthus in human’s GIT.// Jibed.- 1988.- P.297-308. 54.Selenium and the actively of glutathione peroxidase in bevies erythrocytes /W.M. Allen, W.H. Parr, P.H. Anderson et al. //Vitamin Res.-1975.Vol.96,№19.-P.360-361. 55.Stadman E.R. // Free Radicals Biology and Medicine.-1990.-V.9.-P.-315325. 56.Studies on radiation induced micronuclei and chromosome aberrations //Radiate And Environ. Biophys.-1981.-19.-№4.-Р.295-298. 57.Strakova I., Gevcikova E., Hera A. Predklinicke a klinike overovani priprauku pherridextran 10%-uy Biol. a chem. vyroby – Vet.-1979.-15.-N5.P.459-468. 58.Takoo Y.,Yoshinori F.,Sumioltal K. A study on the reaction of human erythrocytes with hydrogen peroxide //Y. Biochem.-1983.-Vol.94,№2.-P.379386. 128 59.The immuneresponse in iron – deficient children impaired cellular defense mechanisms with altered humoral components./ L.G.Macdougall, R. Anderson, G.M. Monab et al. Pediatr.-1975.-Vol.86.-P.833-843. 60.Tokahara S., Ogato V. Metabolism in Japanese acatalasemie with special reference to superoxide dismutase and glutathione peroxides //Biochem. and Med. Aspects of Active Oxygen.- Baltimore, London, Tokyo,1977.-P,275-292. 61.Trotta R.J., Sullivan S.G., Stern A. Lipid peroxidation and hemoglobin degradation in red blood cells exposed to t-butylhydroperoxyde. The relative roles of hem – and glutathione-depend decomposition of t-butylhydroperoxyde and membrane lipid hydroperoxides in lipid peroxidation and haemolysis //Biochem. J.-1983.-Vol.212,№3.-P.759-772. 62.Webster David M., Rees Anthony R. Antibody-antigen interactions // Cur. Opinion struck. Biol.-1994.-N1.-P.123-129. 129 Казахский агротехнический университет им.С. Сейфуллина К.К. Мурзагулов, В.В.Малашко МЕТОДЫ ДИАГНОСТИЧЕСКОЙ ТЕРАПЕВТИЧЕСКОЙ ТЕХНИКИ В ВЕТЕРИНАРНОЙ ПРАКТИКЕ И (для студентов, магистрантов, докторантов специальностей Ветеринарная медицина и Ветеринарная санитария ) – КазАТУ им.С.Сейфуллина 2013. - с. 130 УЧЕБНО-МЕТОДИЧЕСКОЕ ПОСОБИЕ Сдано в набор 2013 Формат 60 Х 84 1/16 Печат.лист 8,12 Подписано к печати Заказ № 9607 Тираж 100 экз. Издательство КазАТУ им.С.Сейфуллина,.г.Астана , Жеңіс данғылы 62 а Индекс 010011, тел. 39-39-17 130 2013
