160 с. 7. Сурай П.Ф. Повышенные ... 1990. – № 11. – С. 17-18. Носков С.Б., Дорожкин В.И.

160 с. 7. Сурай П.Ф. Повышенные дозы жирорастворимых витаминов для
бройлеров / П.Ф. Сурай, И.А. Ионов, Т.М. Панченко // Птицеводство. –
1990. – № 11. – С. 17-18.
ВЛИЯНИЕ КАРОТИНО-ХЛОРОФИЛЛОВЫХ КОМПЛЕКСОВ НА
ФИЗИОЛОГИЧЕСКОЕ СОСТОЯНИЕ И ПРОДУКТИВНОСТЬ ЦЫПЛЯТ
Носков С.Б., Дорожкин В.И.
Резюме
Предложен новый каротинсодержащий препарат для коррекции Авитаминного питания цыплят-бройлеров. Применение
ларикарвита
способствовало увеличение среднесуточных приростов,
повышению
витамина А и каротина в сыворотке крови и печени, улучшению качест
мяса.
INFLUENCE OF CAROTIN-CHLOROPHYL COMPLEXES ON PHYSIOLOGICAL
CONDITION AND EFFICIENCY OF CHICKENS
Noskov S.B., Dorozhkin V.I.
Summary
We offered new carotin-containing preparation for correction of an Avitamin feed of chickens-broilers. Application of larikarvit promoted increase of
daily average gain, increase of vitamin A and carotin in blood and liver whey
and improvement of meat quality.
УДК 619:576.809.33:576.851.23
ОЦЕНКА АНТИГЕННОЙ АКТИВНОСТИ ВАКЦИНЫ ПРОТИВ
ИНФЕКЦИОННОГО КЕРАТОКОНЪЮНКТИВИТА КРУПНОГО
РОГАТОГО СКОТА, ИЗГОТОВЛЕННОЙ С ИСПОЛЬЗОВАНИЕМ
РАЗЛИЧНЫХ ПИТАТЕЛЬНЫХ СРЕД
Нургалиева А.Р., Саттарова Н.В.
ФГУ «Федеральный центр токсикологической и радиационной
безопасности животных», г. Казань
Ключевые слова: питательная среда, ФГМПЭМ, антигенная
активность, ИФА, вакцина.
Key words: nutritional medium, FGUPEM, Moraxella bovis, ELISA,
vaccine.
165
Одной из сложных и актуальных проблем в современной
ветеринарной медицине является инфекционный кератоконъюнктивит
крупного рогатого скота, вызываемый бактериями Moraxella bovis.
Заболеваемость телят в летние месяцы в отдельных хозяйствах достигает
50-60 %, что ведет к значительному экономическому ущербу. Для
специфической профилактики заболевания в ФГУ "ФЦТРБ-ВНИВИ"
разработана и широко используется ассоциированная вакцина против
инфекционного кератоконъюнктивита крупного рогатого скота (ИКК КРС)
на основе антигенов бактерий Moraxella bovis и герпесвируса типа 1[1].
Для получения бакмассы бактерий Moraxella bovis применяют плотные
питательные среды. Однако использование таких сред трудоемко и не
является технологичным при серийном промышленном производстве
вакцины. Согласно данным зарубежных исследователей, образование
гемолизина бактериями Moraxella bovis способствует увеличению
антигенности биопрепарата. Выращенная на жидкой питательной среде
бакмасса содержит наибольшее количество гемолизина. Гемолизин
Moraxella bovis – это термолабильный белок, вырабатываемый бактериями
в течение логарифмической фазы роста. Он в основном связан с клеткой,
но при определенных условиях культивирования может высвобождаться в
среду как экзотоксин [3].
В связи с выше изложенным, целью наших исследований являлась
оценка антигенной активности вакцин, изготовленных на плотной и
жидкой питательных средах.
Материалы и метода. Работа проводилась в условиях лаборатории
ФГУ «ФЦТРБ-ВНИВИ» и в скотоводческом хозяйстве Республики МарийЭл.
Для изучения антигенной активности изготовили согласно НТД,
утвержденной в установленном порядке по 3 серии «Ассоциированной
вакцины против инфекционного кератоконъюнктивита крупного рогатого
скота на основе антигенов и герпесвируса типа I», используя биомассу
бактерий, выращенных на твердой и жидкой питательных средах. Жидкую
питательную среду для культивирования бактерий Moraxella bovis
глубинно-суспензионным способом готовили согласно разработанной
рецептуре питательной среды с использованием в качестве основы
ферментативного гидролизата маточно-плацентарно-эмбриональной массы
коров (ФГМПЭМ) [2].
Антигенную
активность
изготовленных
вакцин
изучили
первоначально на 9 кроликах массой 2-2,5 кг, затем на естественно
восприимчивых животных – 15 телятах 4-месячного возраста. Антигенную
активность каждой серии вакцины оценивали по уровню образования
титров специфических антител в сыворотке крови иммунизированных
животных, используя ИФА.
166
В первом опыте были сформированы три группы по 3 кролика в
каждой, подобранных по принципу аналогов. Кроликов I группы
иммунизировали вакциной, изготовленной из биомассы бактерий,
полученной на твердой питательной среде, II группы – вакциной,
изготовленной из бакмассы, полученной в среде на основе ФГМПЭМ.
Третья группа животных служила контролем. Вакцину вводили подкожно,
двукратно с интервалом 14 дней, в область спины в дозе 2 см3. Перед
иммунизацией и через каждые 7 дней после вакцинации производили
забор крови животных и проводили исследования по определению
нарастания титров специфических антител.
Во втором опыте были сформированы три группы по 5 телят в
каждой. Телят I группы иммунизировали вакциной, изготовленной из
биомассы бактерий, полученной на твердой питательной среде, II группы –
вакциной, изготовленной из бакмассы, полученной в среде на основе
ФГМПЭМ. Третья группа животных служила контролем. Вакцину вводили
подкожно, двукратно с интервалом 14 дней, в область средней трети шеи в
дозе 5 см3. До иммунизации, через 7, 14, 21 и 28 суток после нее у
телят из яремной вены брали кровь для определения титров
специфических антител в сыворотке крови в ИФА.
Результаты
исследования.
Результаты
серологических
исследований сывороток крови кроликов (табл. 1) показали, что
наивысший уровень специфических антител к бактериям Moraxella bovis
как в первой, так и во второй группе животных, наблюдается на 14 день
после второй иммунизации. Титры антител в сыворотке крови кроликов
иммунизированных вакциной, изготовленной из биомассы, полученной на
жидкой питательной среде, уже на 7 сутки опыта были выше, чем у
животных иммунизированных вакциной, изготовленной из биомассы,
полученной на твердой питательной среде. В последующие сроки
тенденция сохранялась, и на 14 день после второй вакцинации титр
антител был выше, чем у животных I группы на 1,5 log2.
1. Уровень специфических антител в сыворотке крови вакцинированных
кроликов к антигенам бактерий Moraxella bovis
Сроки исследования
До вакцинации
Через 7 дней после
первой вакцинации
Через 14 дней после
первой вакцинации
Через 7 дней после
второй вакцинации
Через 14 дней после
второй вакцинации
I группа
животных
7,14±0,21
Титры антител в ИФА, log2
II группа
животных
8,65±0,50
III группа
животных
-
7,74±0,27
8,99±0,51
-
9,74±0,22
10,65±0,44
-
11,14±0,48
12,64±0,57
-
167
Данные представленные в таблице 2 показывают, что максимальный
уровень специфических антител в сыворотке крови телят в обеих группах
достигает на 7 день после второй вакцинации. При этом титр
специфических антител в сыворотке крови II группе животных был на 1,75
раза выше, чем в первой группе.
2. Уровень специфических антител в сыворотке крови вакцинированных
телят к антигенам бактерий Moraxella bovis
Сроки исследования
До вакцинации
Через 7 дней после
первой вакцинации
Через 14 дней после
первой вакцинации
Через 7 дней после
второй вакцинации
Через 14 дней после
второй вакцинации
I группа
животных
7,55±0,41
Титры антител в ИФА, log2
II группа животных
8,64±0,57
III группа
животных
-
10,68±0,27
12,04±0,35
-
11,79±0,35
13,44±0,27
-
10,61±0,44
13,24±0,27
-
Заключение. Вакцина, изготовленная на основе бакмассы,
полученной на жидкой питательной среде (ФГМПЭМ), по антигенной
активности незначительно превосходит вакцину, изготовленную из
бакмассы, полученной на твердой питательной среде.
ЛИТЕРАТУРА: 1. Гаффаров Х.З., Спиридонов Г.Н., Дуплева Л.Ш.
Патент РФ на изобретение «Ассоциированная вакцина для специфической
профилактики инфекционного кератоконъюнктивита крупного рогатого
скота на основе антигенов бактерий Moraxella bovis и герпесвируса типа 1»
№ 2264227 (приоритет изобретения от 24.02. 2004), ВНИВИ, г. Казань.
2. Нургалиева А.Р. Получение биомассы бактерий Moraxella bovis в
жидкой питательной среде // Ветеринария и кормление. – Владимир.2010.- № 6 – С. 54. 3. Gray J., et al., Partial Characterization of a Moraxella
bovis Cytolysin, Veterinary Microbiology, 43:183-196, (1995). … Lett., 124:6974.
ОЦЕНКА АНТИГЕННОЙ АКТИВНОСТИ ВАКЦИНЫ ПРОТИВ ИНФЕКЦИОННОГО
КЕРАТОКОНЪЮНКТИВИТА КРУПНОГО РОГАТОГО СКОТА, ИЗГОТОВЛЕННОЙ
С ИСПОЛЬЗОВАНИЕМ РАЗЛИЧНЫХ ПИТАТЕЛЬНЫХ СРЕД
Нургалиева А.Р., Сатарова Н.В.
Резюме
Проведено изучение антигенной активности вакцины против
инфекционного кератоконъюнктивита крупного рогатого скота,
168
изготовленной различными способами. Результаты проведенных
исследований показывают, что вакцина, изготовленная на основе
бакмассы, полученной на жидкой питательной среде (ФГМПЭМ), по
антигенной
активности
незначительно
превосходит
вакцину,
изготовленную из бакмассы, полученной на твердой питательной среде.
EVALUATION OF ANTIGENIC ACTIVITY VACCINE AGAINST INFECTIOUS
BOVINE KERATOCONJUNCTIVITIS MANUFACTURED USING VARIOUS
NUTRIENT MEDIA
Nurgalieva A.R., Sattarova N.V.
Summary
The study of the antigenic activity of vaccine against infectious bovine
keratoconjunctivitis, made in various ways. The results of these studies indicate
that the vaccine is made on the basis of biomass obtained on liquid medium
(FGUPEM) on the antigenic activity slightly superior to the vaccine, made from
biomass obtained on solid medium.
УДК619:616-071+636.4:612.014.45
ВЛИЯНИЕ ЦИФРОВОГО ЗВУКОВОГО ВОЗДЕЙСТВИЯ НА
МОРФО-БИОХИМИЧЕСКИЙ СОСТАВ КРОВИ СВИНОМАТОК
Овсянников А.П., Сунагатуллин Ф.А., Гарипов Т.В.
ФГОУ ВПО «Казанская государственная академия ветеринарной
медицины имени Н.Э. Баумана»
Ключевые слова: свиноматка, дозированное частотно-резонансное
звуковое воздействие, орган, клинические признаки.
Кеу words: a sow, dose measured out frequency-resonant sonic
influence, organ, clinical signs.
Еще Гиппократ указывал на то, что слово оказывает лечебное
воздействие на человеческий организм. Утверждение древнего врача имеет
под собой вполне научную основу. Способность звуков исцелять была
подмечена ещё древними врачевателями. Надо заметить, что первую
лечебную книгу музыкальных рецептов составил Пифагор.
Хорошо известно, что каждый орган и система функционируют в
норме тоже на определенной частоте или в определенном диапазоне
частот. При различном заболевании эти характеристики меняются. При
произнесении необходимых звуков произошедший сбой устраняется,
169