материалы Всерос. науч. конф. / Новосиб. гос. аграр. ун-т.

МИНИСТЕРСТВО СЕЛЬСКОГО ХОЗЯЙСТВА РФ ДЕПАРТАМЕНТ КАДРОВОЙ ПОЛИТИКИ И ОБРАЗОВАНИЯ МИНСЕЛЬХОЗА ФГОУ ВПО «НОВОСИБИРСКИЙ ГОСУДАРСТВЕННЫЙ АГРАРНЫЙ УНИВЕРСИТЕТ» ФГОУ ВПО «БУРЯТСКАЯ ГОСУДАРСТВЕННАЯ СЕЛЬСКОХОЗЯЙСТВЕННАЯ АКАДЕМИЯ ИМЕНИ В.Р. ФИЛИППОВА» ЭКОЛОГО-ГЕОГРАФИЧЕСКИЕ АСПЕКТЫ ИНФЕКТОЛОГИИ МАТЕРИАЛЫ ВСЕРОССИЙСКОЙ НАУЧНОЙ КОНФЕРЕНЦИИ Улан-Удэ, 28-30 июня 2011 г. НОВОСИБИРСК 2011 УДК 619:616.9:578.4:591.152 ББК 48.4.118 Э 40 Под общей редакцией профессора В.Н. Кисленко Эколого-геграфические аспекты инфектологии: материалы Всерос. науч. конф. / Новосиб. гос. аграр. ун-т.Новосибирск, 2011.- 265 с. В сборник включены научные работы по следующим направлениям: экология патогенных и условно-патогенных микроорганизмов, географические особенности инфекционных болезней, экологические проблемы ветеринарной и гуманитарной медицины, современная методология эколого-географической инфектологии. Конференция организована ФГОУ ВПО «Бурятская ГСХА им. В.Р.Филиппова» и ФГОУ ВПО «Новосибирский государственный аграрный университет» и посвящена 350-летию добровольного вхождения Бурятии в состав России, 70-летию Бурятской государственной сельскохозяйственной академии и 75-летию Новосибирского государственного аграрного университета. Авторы опубликованных статей несут ответственность за достоверность и точность приведенных научных фактов, а также за разглашение сведений, не подлежащих открытой публикации. Статьи приводятся в авторской редакции. ©Новосибирский государственный аграрный университет, 2011 УДК 579.8:615.28 С.М. Алексеева, В.Ц. Цыдыпов Иркутская ГСХА, Бурятская ГСХА им. В.Р.Филиппова ВЛИЯНИЕ РАЗЛИЧНЫХ ФАКТОРОВ НА ИЗМЕНЧИВОСТЬ МИКРООРГАНИЗМОВ Изучено действие разных экологических факторов на изменчивость биологических свойств у микробов. The effect of various environmental factors on the variability of the biological properties of the microbes was studied. Все расширяющиеся антропогенные влияния на природную среду обусловливают изменение среды существования и негативно отражаются на состоянии биоценозов живых существ, влияя на их биологию и в конечном счете на характер адаптивности к среде существования. Индикатором ее является изменчивость биологических характеристик, в частности, возбудителей инфекции, у которых наблюдается появление атипичных форм. Среди объектов внешней среды почва занимает особое место. Возбудители многих инфекций – сальмонеллез, кишечная палочка, микобактерии – регулярно выделяются из почвы, сохраняют жизнеспособность в широком диапазоне различных абиотических факторов среды [1]. Температура – один из важнейших факторов, воздействию которого подвергаются все абиотические и биотические объекты. При изучении возбудителя туберкулеза в почве было установлено, что низкая температура имеет относительно лимитирующее влияние за счет высокой адаптационной способности микроорганизмов к температурам ниже 370С. В лабораторных опытах по изучению выживаемости возбудителя тубер3 кулеза в почвах и почвенных вытяжках при температуре 20240С установлено, что в таких условиях наблюдается рост отдельных клеток микобактерий туберкулеза [2]. Любые объекты внешней среды резко отличны от организма по многим показателям, в том числе по гидротермическому режиму – одному из главных лимитирующих факторов для микроорганизмов. К тому же абиотические факторы внешней среды в отличие от организма испытывают сильные суточные, сезонные и непериодические колебания [3]. Таким образом, все живые организмы подвергаются воздействию самых разнообразных факторов. Поэтому было изучено влияние различных экологических факторов на микроорганизмы в их естественной среде обитания и изменчивость биологических свойств под влиянием антгельминтных и гормональных препаратов. Для изучения выживаемости микробных культур в лабораторных опытах использовали стерильную почву. Образцы почв заливали суспензией культур возбудителей в концентрации 2 млрд м. т. в 1 мл физиологического раствора так, чтобы над поверхностью полностью увлажненной почвы находилась суспензия высотой 2-3 см. По одной пробе каждого микроба в стерильных почвах помещали в термостат при 37-38ºС, другую часть оставляли при комнатной температуре. Во время опыта ежемесячно проводили отсев на питательные среды. Для изучения микроорганизмов во внешней среде производили обсеменение опытных участков. На 0,5 м2 объекта заливали по 500 мл МПБ с концентрацией 2 млрд м. т. на 1 мл физиологического раствора. Почву брали на глубине 0-2 см из 5 точек (4 — по углам участка, 1 — в центре). В последнее время все большую приоритетность приобретают ассоциированные инфекции. Большинство ас4 социированных инфекций имеют более тяжелое проявление по сравнению с моноинфекциями, составляющими ассоциат [4]. Поэтому при исследовании противопаразитарных препаратов на характер роста исследуемых культур применялись 1%-е растворы ивертина, беламизола и аверсекта-2, разведенные в МПБ. При изучении гормональных препаратов применяли методику, которая основывается на определении активности антибиотиков методом диффузии в агар. Контролем служили культуры микроорганизмов, не обработанные гормональными препаратами. В опытах использовали следующие микроорганизмы: сибиреязвенные вакцинные штаммы 55 и СТИ, Listeria monocytogenes, Bacillus megaterium, Salmonella typhimurium, Escherichia coli, Staphylococcus aureus. Изучение жизнеспособности микробных изолятов в нестерильных и стерильных условиях проводились в 3 вариантах — при комнатной температуре, в термостате и в полевых условиях, так как интенсивность обменных процессов и разнообразных биологических процессов находятся в тесной зависимости от температурных условий. Во время выращивания культур в стерильной почве варьировала количественная характеристика микробов на 1 г почвы. При 37ºС количество штаммов в суточной культуре было гораздо выше, чем при 20ºС. Число выделенных штаммов в полевых условиях зависело от природно-климатических условий. К весенне-летнему периоду численность микробных клеток в 1 г почвы опытного участка имела тенденцию к увеличению, связанную с повышением температуры. И в то же время наблюдалась противоположная тенденция к снижению численности и отсутствию роста в летний период. Наибольшей вариабельностью 5 биохимических свойств отличались микробы, длительно культивируемые в стерильной почве, по сравнению с нестерильной. Из этого следует, что исследуемые микробы в полевых участка находились в естественной природной среде (табл. 1). Таблица 1 Уровень показателей вариабельности биохимических свойств, % № п/п 1 2 3 4 5 6 Культуры St. aureus E. coli S. typhimurium B. megaterium L. monocytogenes Сибиреязв. вакц. шт. 55 20°С 50 60 50 40 60 50 37°С 50 70 20 50 20 60 Участок 20 30 30 40 30 40 Затем испытывали бактерицидное действие химических веществ на модельных участках. Использованные дезинфектанты оказались эффективными в санации от вышеуказанных патогенных микробов на модельных участках и могут быть рекомендованы в целях санации пастбищных участков. При изучении влияния антгельминтиков на биологические свойства микроорганизмов на твердой и жидкой питательной среде были получены результаты, позволяющие выявить различные степени изменчивости морфофункциональных, биохимических и биологических характеристик. Противопаразитарные препараты, широко используемые в практике противоинвазионных мероприятий, обладали способностью подавлять рост и размножение патогенных бактерий (беламизол — St. aureus, E. coli, ивертин – сибиреязвенный вакцинный штамм 55 и St. aureus), а с другой стороны – стимулировать рост и размножение (аверсект-2 — St. aureus, E. coli, ивертин – E. coli, S. typhimurium, L. monocytogenes). 6 При исследовании гормональных препаратов установили, что гормон дексаметазон подавлял рост золотистого стафилококка, а преднизолон его угнетал. Рост вакцинного сибиреязвенного штамма 55 подавлялся эстрофаном и преднизолоном. Использованные в опыте остальные гормоны не оказывали отрицательного влияния на рост кишечной палочки, S. typhimurium и сибиреязвенного вакцинного штамма СТИ (табл. 2). Таблица 2 Рост бактерий после обработки гормонами № п/п 1 2 3 4 5 6 Гормоны E. coli St. aureus Дексаметазон Гидрокортизон Адреналин Эстрофан Преднизолон Инт. + + + + + + + + + ++ Сибиреязв. вакц. шт. 55 + + + + Вакц. B. S. tymega- phimuri- шт. СТИ terium um + ++ + + + + + + + + + + + + + + + Примечание. «+» рост микробной культуры; «-» отсутствие роста; «±» слабый рост. Таким образом, при изучении изменчивости микробов в настоящее время ряд авторов не учитывают оценку биологических особенностей популяции клеток, входящих в состав штамма, которые колеблются в широких пределах, несмотря на то, что подавляющее большинство микробов стойко сохраняют свои видовые свойства. Библиографический список 1. Сомов Г.П. Сапрофитизм и паразитизм патогенных бактерий. Экологические аспекты/ Г.П. Сомов, В.Ю. Литвин. – Новосибирск: Наука. Сиб. отд-ние, 1988. –207 с. 7 2. Кисленко В.Н. Экологическая валентность патогенных микроорганизмов и ее эпизоотологическое значение: монография/ Новосиб. гос. аграр. ун-т. – Новосибирск, 2001.— 288 с. 3. Кисленко В.Н. Экология патогенных микроорганизмов: учеб. пособие/ Новосиб. гос. аграр. ун-т.— Новосибирск, 2000. – 228 с. 4. Апатенко В.М. Проблемы инфекционной патологии в условиях интенсивного животноводства// Вестн. с.-х. науки. – 1991. – № 3. – С.133-135. УДК 19:616.9(517.3) О.Б. Бадмаева, В.Ц. Цыдыпов Бурятская ГСХА им В.Р. Филиппова КОМПЛЕКСНЫЙ МОНИТОРИНГ ИНФЕКЦИОННОЙ ПАТОЛОГИИ ЖИВОТНЫХ В БАССЕЙНЕ РЕКИ СЕЛЕНГИ Приводятся результаты эпизоотологических, бактериологических и серологических мониторинговых исследований, выявления патогенных микроорганизмов в организме животных и объектах окружающей среды бассейна р. Селенги. The article presents the results of epizootic, bacteriological and serological monitoring researches to detecting pathogens in animals and natural objects of the Selenga River Basin. Бассейн р. Селенги представляет трансграничные территории России и Монголии, объединяя приграничные районы Республики Бурятии и северные аймаки Монголии и образуя единую эколого-географическую зону возникновения болезней сельскохозяйственных животных. Возникновению и расширению ареалов распространения болезней способствуют не только интенсивная миграция населения и тран8 зит грузопотока, но и факторы окружающей среды региона, благоприятные для резервации возбудителей в межэпизоотические периоды их существования. Разнообразие ландшафтных, климатических и хозяйственных условий, наличие большого числа переносчиков и богатая фауна бассейна обусловливают широкое распространение инфекционных болезней животных. Решение вопросов сохранения эпизоотологического благополучия в регионе требует более глубокого изучения распространения инфекций на трансграничных территориях и интеграции деятельности ученых, ветеринарных служб, разработки международных инновационных проектов по комплексным исследованиям в области ветеринарной медицины. Во время экспедиций в рамках международного проекта «Интеграция» был произведен отбор проб воды открытых водоемов, почв из мест водопоя и пастьбы животных, паренхиматозные органы синантропных птиц и рыб, пробы крови животных на сопредельных территориях Монголии и Бурятии. Изучение морфологических, культуральных, тинкториальных, биохимических, гемолитических и патогенных свойств выделенных микроорганизмов производили методами общей микробиологии [1-3]. В экспериментах использовали среды: МПА, МПБ, МППБ, МПЖ, глюкозо-сывороточный, глюкозо-глицериновый и кровяной МПА, среды Гисса, Эндо, Левина, Плоскирева, Клиглера, висмут-сульфит агар, молоко, картофельный агар. Для изучения экологической характеристики микроорганизмов использовали температурную вариабельность, различные концентрации соли и различные рН среды по отношению к динамике роста микроорганизмов. [4]. Дифференциацию культур микроорганизмов производили по Берджи [5]. 9 Из истории животноводства Монголии известно, что повальные заразные болезни скота были экономическим бичом с вытекающими последствиями для скотовода-арата. Поэтому монгол знал и знает цену возникновения инфекции и угрозу состоянию своего здоровья. Такие болезни, как чума крупного рогатого скота и бубонная у человека, сибирская язва, ящур и ряд других инфекционных болезней, наносили опустошительный ущерб животноводству и вызывали страдания людей в Монголии. По архивным материалам, в большинстве случаев в северных аймаках Монголии регистрировались в виде спорадических вспышек, иногда зпизоотий, такие бактериальные инфекции, как сибирская язва, бруцеллез, туберкулез, листериоз, эмфизематозный карбункул, пастереллез, мыт лошадей, энтеротоксемия овец и некробактериоз. Из вирусных заболеваний регистрировались инфекционная анемия и грипп лошадей. Не обходили стороной эти болезни и скот, и население приграничных районов России. Из архивных данных, в Забайкалье в 1899 г. в 218 пунктах отмечено заболевание 1737 лошадей сибирской язвой. В последующие годы количество неблагополучных пунктов колебалось от 7 до 90, а заболевших животных – от 53 до 759. Особенно большие эпизоотии сибирской язвы отмечались в 1911 г., когда в 131 пункте заболело 1654 и в 1912 г. – 2151 животное. На территории Забайкальской области в 1923 г. было зарегистрировано 44 пункта чумы и 45 пунктов перипневмонии крупного рогатого скота, в 78 пунктах отмечалась сибирская язва, в 77 – сап лошадей. Ящур зарегистрирован в 7 пунктах. Сибирская язва являлась стационарным заболеванием, эпизоотические вспышки не прекращались в течение многих лет. В 1924 г. сибиреязвенная эпизоотия отмечалась в 9 пунктах, в которых заболело 36 и пало 31 животное. С 1925 10 по 1928 г. неблагополучных аймаков числилось от 4 до 6 с количеством в них пунктов от 32 до 56, с охватом от 141 до 505 животных. Наибольший падеж скота от сибирской язвы зарегистрирован в 1926 г. – 435 животных. С 1934 по 1970 г. в приграничном с Монголией Кяхтинском районе Бурятии зарегистрированы 52 пункта сибирской язвы, в которых заболело 96 животных, 95 из них пало, в Селенгинском районе зарегистрировано 27 пунктов, заболело 249 животных, из которых 196 пало. Первая монголо-российская исследовательская экспедиция «Народы Центральной Азии на пороге Х1Х века» в рамках международного проекта «Интеграция», в которой участвовали сотрудники БГСХА, ВСГТУ, университетов Монголии, включала разные направления исследовательских работ и стала началом тесного сотрудничества Бурятской государственной сельскохозяйственной академии, Монгольского сельскохозяйственного университета, Института ветеринарной медицины Монголии. Работа в экспедиции позволила нам впервые в полевых условиях провести комплексный мониторинговый анализ эпизоотологической и эпидемиологической обстановки в регионе, изучить биологическую и экологическую характеристики патогенных микробов, выделенных из биопроб животных, птицы, из образцов почвы и воды, окружающей среды сопредельных территорий. Была освоена техника широкомасштабного эпизоотологического, бактериологического и серологического мониторингов в экспедиционных условиях и выявлены особенности экологии патогенных микробов в сапрофитической фазе их существования. Эпизоотологический мониторинговый анализ заболеваемости животных и распространенности инфекционных болезней среди животных в Селенгинском аймаке Монголии показал, что наибольшее распространение полу11 чили три особо опасные социально значимые инфекции: сап лошадей, бруцеллез, туберкулез. Также среди животных этого аймака распространены сальмонеллез, пастереллез, эмкар и ряд других инфекционных болезней. Бруцеллез в данном аймаке регистрировался ежегодно (по данным ветеринарной отчетности), начиная с 1976 г. и включая 1998 г. В 1976 г. бруцеллез регистрировался у 500 животных, в 1996 г. – у 430. При обследовании 1200 голов крупного и мелкого рогатого скота в первой половине 1998 г. выявлено 118 больных животных. При этом количество животных, исследованных на бруцеллез, сократилось в 4 раза (от 40 до 10 тыс.) и в 30 раз сократились диагностические мероприятия на туберкулез. В 1998 г. при обследовании 2700 животных выявлено 21 животное, больное туберкулезом. Сап в Селенгинском аймаке регистрируется ежегодно. Так, в 1996 г. выявлено 179 лошадей, больных сапом. В Хубсугульском аймаке ежегодно в 1992-1996 гг. регистрировались сибирская язва, пастереллез, эмкар среди 12 143 6 13 9 167 268 239 208 158 842 Всего 414 515 124 530 268 233 2407 53 136 468 186 195 26 37 153 3905 1059 1009 Эмкар 18 18 олени 71 16 74 389 229 779 овцы овцы 71 16 74 402 297 797 Пастереллез КРС КРС 1992 1993 1994 1195 1996 Итого Мыт Год всего Сибирская язва Энтеротоксемия Таблица 1 Показатели заболевания животных в Хубсугульском аймаке Монголии 29 26 13 6 14 88 1565 1318 2616 1483 622 7594 крупного рогатого скота, мыт, инфекционная анемия среди лошадей (табл. 1). За данный период в аймаке сибирской язвой заболело 797 и пало 360 животных, в том числе крупного рогатого скота 779 и 342, овец 18 и 18 соответственно. Мытом заболело 3905, пало 105; энтеротоксемией – 1059 и 221; пастереллезом – 1009 и 431; эмкаром – 88 и 63 соответственно. Всего в Хубсугульском аймаке инфекционная патология была обнаружена у 7594, пало 1530 животных. 4 132 282 236 75 73 498 1300 Всего Паратиф Энтеро токсемия 369 59 78 19 37 562 Эмкар овцы овцы - 4 4 - 32 396 - - 43 74 - - 14 116 - 1 19 - 8 123 60 - 7 77 4 15 294 665 КРС овцы КРС Мыт 5 44 - 60 1 - 25 - 20 5 5 154 1 Пастереллез КРС 1990 1991 1 1992 1 1993 1994 1995 1996 Итого 2 Бру- Листецеллез риоз Сап Сибирская язва Год Таблица 2 Показатели заболевания животных в Булаганском аймаке Монголии 14 20 91 441 - 1067 694 - 1119 - 386 102 - 202 25 - 289 18 - 600 1294 20 3754 В Булаганском аймаке спектр распространенности инфекционных болезней идентичен составу заболеваний Хубсугульского аймака (табл. 2). При этом в аймаке регистрируемость листериоза, бруцеллеза и особенно пастереллеза гораздо выше показателей других приграничных аймаков Монголии. Часто отмечается заболевание лошадей гриппом. Так, в 1998 г. заболело 1920 лошадей, из них пало 193. 13 Эпизоотическая обстановка в Бурятии в сравнительном аспекте менее напряженна, что обусловлено меньшим поголовьем, более полным охватом животных вакцинопрофилактикой и типом ведения животноводства, но тем не менее не исключается угроза вспышек инфекций. В сохранении благополучия эпизоотической ситуации на территории Бурятии немаловажное значение имеет решение проблемы «гастрольных» инфекций, предотвращение заноса возбудителей инфекционных болезней с продуктами питания и кормами для животных из стран ближнего и дальнего зарубежья. Подтверждением этому является возникновение в 1993-1994 гг. чумы свиней, возбудитель которой был занесен из Китая, катаральной лихорадки овец в учхозе «Байкал» в 1994 г., возбудитель циркулирует в регионе Юго-Восточной Азии. Не исключена возможность заноса на территорию республики возбудителя сапа. Это особо опасное заболевание в Монголии у местных лошадей протекает хронически или бессимптомно, не вызывая гибель животных. При малейшем снижении уровня мер профилактики возможны вспышки сибирской язвы. Так, в 1995 г. в Северобайкальском районе Бурятии зарегистрирована сибирская язва крупного рогатого скота, поголовье которого не было привито против этой болезни, в 1999 г. сибирская язва вспыхнула среди крупного рогатого скота в Кяхтинском районе. Спорадические случаи инфекционных болезней животных регистрировались в Кяхтинском и Селенгинском районах Бурятии. Так, в 1990 г. в Кяхтинском районе регистрировали рожу, лептоспироз и пастереллез свиней, в 1992 г. – паратиф. В 1995 г. в Селенгинском районе отмечалось заболевание крупного рогатого скота пастереллезом, овец – энтеротоксемией. 14 Сегодня в Бурятии сохраняется относительное благополучие по особо опасным инфекциям, проявляются спорадические случаи, вызывающие заболевание и гибель отдельных животных. Таким образом, эпизоотическая ситуация в пограничных аймаках Монголии характеризуется напряженностью и требует более глубокого анализа и проведения консолидированных мер ликвидации и профилактики инфекционных болезней животных. Вопросы проведения эпизоотологического мониторинга требуют более широкомасштабного решения. Таблица 3 Показатели лабораторных исследований в Хубсугульском аймаке Монголии Год 1994 1995 1996 Итого Всего проб 106 111 104 321 Бактериологические исследования Положительные результаты сили- па- пастебирсте- ра- релская риоз тиф лез язва 1 1 1 1 11 2 11 2 5 23 3 1 8 Серологические исследования Положительные результаты Всего бру- липроб парацел- стетиф лез риоз 1010 13214 11360 25574 18 66 159 243 2 2 4 2 7 9 При бактериологическом исследовании из 104 биопроб положительные результаты на сибирскую язву были получены в 11 случаях в 1996 г., на пастереллез – в 5 и в 2 случаях – на листериоз. В 1995 г. также в 11 случаях из 111 исследований были получены положительные результаты на сибирскую язву (табл. 3). При бактериологическом исследовании образцов по15 чвы пастбищ, воды различных открытых источников, проб фекалий животных, органов птиц и рыб нами были изолированы типичные культуры патогенных микроорганизмов со свойствами, характерными для классических вариантов, впоследствии идентифицированные как кишечная палочка, протей, золотистый стафилококк, возбудители листериоза, бруцеллеза, сальмонеллеза, сапа. Среди выделенных микробных изолятов были выявлены антибиотикорезистентные культуры, что свидетельствует о высоких адаптивных способностях патогенных микроорганизмов. Таким образом, бактериологический мониторинг позволил выявить циркуляцию и резервацию патогенных микробов в объектах окружающей среды и в организме животных в приграничных аймаках Монголии. Бактериологический мониторинг, проведенный нами на свинокомплексе Кяхтинского района Бурятии, показал, что из 10 обследованных супоросных свиноматок 7 – сальмонеллоносители и выявил высокий уровень циркуляции сальмонелл в организме поросят всех возрастных групп. При обледовании проб фекалий свиней были выделены патогенные стафилококки, пастереллы и клостридии. Также была выявлена высокая контаминированность сальмонеллами всех видов кормов для свиней. Серологический мониторинг является одним из видов анализов, проводимых в полевых условиях, позволяет выявить возбудителей ассоциативных инфекций, одновременно циркулирующих в организме животных. Серологические исследования крови животных в Монголии ежегодно выявляют положительно реагирующих на бруцеллез и листериоз животных. Так, в 1995 г. при исследовании 13214 проб крови животных было получено 66 положительных результатов на бруцеллез и 2 пробы поло16 жительно реагировали на листериоз. Из 11360 проб крови, исследованных в 1986 г., 159 дали положительную реакцию на бруцеллез, 2 – на листериоз и 7 – на паратиф. При обследовании сывороток крови крупного рогатого скота и коз в Монголии были получены положительные результаты на бруцеллез в Селенгинском аймаке, в Селенгинском, Булаганском, Хубсугульском аймаках – на листериоз и сальмонеллез, что свидетельствует о циркуляции в организме животных возбудителей социально значимых инфекционных болезней. Результаты проведенных нами опытов по определению экологической характеристики патогенных микроорганизмов показали способность энтеробактерий размножаться в широком диапазоне показателей рН среды, губительное действие смещения реакции среды на листерии, толерантность стафилококков к высокой концентрации поваренной соли в среде, что подтверждается данными литературы. Таким образом, комплексные мониторинговые анализы с применением бактериологических и серологических методов исследования позволяют выявить циркуляцию патогенных микробов в организме животных, их резервацию в объектах окружающей среды, прогнозировать вероятность возникновения инфекций. Проведение совместных экспедиционных исследований с изучением экологических характеристик патогенных микробов и сегодня остается одним из актуальных направлений в ликвидации и профилактике инфекционных заболеваний и имеет практическую значимость в оценке эпизоотической ситуации в регионе. Совместная деятельность ученых Бурятской сельскохозяйственной академии, Монгольского сельскохозяйственного университета, Института ветеринарной медицины, ветеринарных служб пограничных территорий в разработке международных проектов и организации совместных экс17 педиционных исследований может внести значительный практический вклад в освобождение территорий бассейна р. Селенги от инфекционной патологии животных и сохранение эпизоотического благополучия в регионе. Библиографический список 1. Биргер М.О. Справочник по микробиологическим и вирусологическим методам исследования.– М.: Медицина, 1983. – 445 с. 2. Герхард Ф. Методы микробиологических исследований.– М.: Мир, 1983. – 535 с. 3. Никитин В.М. Методы экспресс-индикации микробов: справочник.– Кишинев, 1986. 4. Гайдукова Н.Г. Лабораторный практикум по физико-химическим методам анализа.– Краснодар, 1993.– С. 60-65. 5. Определитель бактерий Берджи / под ред. Дж. Хоулта. - М.: Мир, 1997. УДК 619:598.2/.9:578 П.И. Барышников, А.Ю. Бондарев Алтайский ГАУ АССОЦИАТИВНОЕ БАКТЕРИОНОСИТЕЛЬСТВО У ДИКИХ ПТИЦ ЛЕСОСТЕПНОЙ ОБЛАСТИ АЛТАЙСКОГО КРАЯ Приведены результаты бактериологического исследования проб материала от диких птиц лесостепной области Алтайского края с описанием установленных ассоциаций микроорганизмов. The results of bacteriological research of tests of a material from wild birds of forest-steppe area of the Altay territory with the description of the established associations of microorganisms are presented in this article. 18 Природным резервуаром возбудителей многих инфекционных болезней, представляющих опасность для животных и человека, являются дикие птицы. Они могут быть инфицированы возбудителями орнитоза, туберкулёза, гриппа, болезни Ньюкасла, сальмонеллёза, пастереллёза и других болезней [1-5 и др.]. При этом наибольшее значение имеют представители перелетных видов, распространяющие инфекции за счет сезонных миграций [5 и др.]. Общепризнанно, что эколого-географические особенности территории являются важнейшим фактором в развитии эпизоотического процесса. В этом отношении юг Западной Сибири, Алтайский край является территорией, на которой в весенне-летний период сосредоточивается многомиллионное поголовье пернатых мигрантов из разных уголков мира. В связи с этим обследование диких птиц на возбудителей инфекционных болезней в местах обитания на территории лесостепной области Алтайского края весьма актуально в научном и практическом отношениях, как с эпизоотической, так и эпидемиологической точки зрения. Для бактериологического исследования использовано 455 проб от 65 птиц 7 видов (голубь сизый, воробей домовой, синица большая, снегирь, дятел, сорока, утка серая): на орнитоз – 35 проб (мазки-отпечатки конъюнктивы глаз и легких), туберкулез – 170 проб (печень, легкие), для выделения чистых культур микроорганизмов и грибов – 455 проб (кровь, легкие, печень, почки, селезенка, толстый и тонкий отделы кишечника). Изучение морфологических, культуральных, тинкториальных, биохимических и гемолитических свойств, чувствительности к антибиотикам и идентификацию выделенных микроорганизмов проводили методами общей микробиологии [6-9]. По способности к миграциям и перелётам диких птиц разделили на 3 группы: осёдлые, кочующие и перелётные [9]. 19 Из исследуемого материала выделено или обнаружено 160 культур микроорганизмов. В результате идентификации культур микроорганизмов их отнесли к 15 родам, а патогенные – только к 6: Escherichia – 11, Staphylococcus – 21, Salmonella – 4, Pasteurella – 3, Streptococcus – 1 и Chlamydia – 22 культуры. Ассоциативное бактерионосительство наиболее часто встречалось в патологическом материале от птиц в виде Staphylococcus + Chlamydia – 14 (21,5%), Salmonella + Chlamydia и Salmonella + Escherichia – по 12 (18,5%), Staphylococcus + Salmonella – 11 (16,9%) и Escherichia + Chlamydia – 10 (15,4%) проб. У 26 (40%) птиц установлены ассоциации, включающие по три представителя различных родов: Staphylococcus + Escherichia + Chlamydia – 8 (12,3%), Staphylococcus + Salmonella + Chlamydia –7 (10,8%), Escherichia + Salmonella + Chlamydia – 6 (9,2%) и Staphylococcus + Escherichia + Penicillum – 5 (7,7%). У 13 (20%) птиц установлены ассоциации, включающие 4 культуры различных родов: 4 (6,2%) – Staphylococcus + Escherichia + Chlamydia + Pasteurella, 3 (4,6%) – Staphylococcus + Escherichia + Chlamydia + Salmonella и по 1 (1,5%) – Staphylococcus + Morganella + Chlamydia + Salmonella, Staphylococcus + Mucor + Chlamydia + Salmonella, Staphylococcus + Aspergillus + Chlamydia + Salmonella, Staphylococcus + Mucor + Yersinia + Salmonella, Staphylococcus + Shigella + Chlamydia + Salmonella, Staphylococcus + Penicillum + Yersinia + Chlamydia и Salmonella + Clebsiella + Penicillum + Chlamydia. В единичных случаях наблюдались ассоциации с участием микроорганизмов 5 (Staphylococcus + Streptococcus + Escherichia + Chlamydia + Pasteurella – 1,5%) и 6 (Escherichia + Morganellа + Chlamydia + Salmonella + Clebsiella + Proteus, Staphylococcus + Salmonella + Escherichia + Chlamydia + 20 Penicillum + Edwardsiella – по 1,5%), а у голубя сизого и воробья домового – 7 (Staphylococcus + Salmonella + Escherichia + Chlamydia + Penicillum + Aspergillus + Pasteurella и Staphylococcus + Salmonella + Escherichia + Chlamydia + Penicillum + Clebsiella + Edwardsiella – по 1,5%) различных родов. В группе оседлых птиц у 25 (48,1%) особей отмечались ассоциации с участием микроорганизмов 2 и более родов. У 13 (40,6%) голубей установлены ассоциации в 7 (21,9%) случаях 3 родов, в 3 (9,4%) – 4 родов и в единичных случаях по 2, 6 и 7 разных родов. У 12 (60%) воробьев установлены ассоциации в 6 (30%) случаях 4 родов, в 3 (15%) – 3 рода и в единичных случаях микроорганизмов 2, 5 и 7 родов. В группе кочующих птиц у 6 (60%) особей обнаружены бактериальные ассоциации. У 3 (37,5%) синиц имелись представители 3, а у 1 (12,5%) – 4 различных родов микроорганизмов. У снегиря и дятла обнаружены ассоциации 4 и 6 различных родов соответственно. В группе перелетных птиц исследовали пробы патологического материала от одной утки серой. При этом обнаружены представители двух родов микроорганизмов Staphylococcus и Salmonella. Ассоциативное бактерионосительство с участием патогенных микроорганизмов отмечено в патологическом материале от 26 (40%) птиц. При этом у 10 (15,4%) птиц ассоциации представлены патогенными культурами 1 рода, по 2 и 3 рода у 7 (10,8%), а в 3 (4,6%) случаях встречались микроорганизмы 4 различных родов. Наиболее часто регистрировали одновременное сочетание патогенных культур в виде Staphylococcus + Chlamydia – 14 (21,5%), Escherichia + Chlamydia – 6 (9,2%) и Staphylococcus + Chlamydia + Escherichia – 3 (4,6%). По 2 (3,1%) раза встречались ассо21 циации патогенных представителей родов Salmonella + Chlamydia и Chlamydia + Pasteurella. У 8 (12,3%) птиц отмечены единичные случаи сочетания патогенных микроорганизмов родов Clebsiella + Morganella, Morganella + Escherichia + Chlamydia, Staphylococcus + Yersinia + Chlamydia, Staphylococcus + Streptococcus + Chlamydia, Staphylococcus + Chlamydia + Escherichia + Pasteurella, Staphylococcus + Chlamydia + Salmonella + Pasteurella, Staphylococcus + Chlamydia + Escherichia + Morganella, Staphylococcus + Chlamydia + Escherichia + Edwardsiella. Наиболее часто такие случаи были в группе оседлых птиц – 24 (45,3%). У 11 (55%) воробьев и 13 (40,6%) голубей обнаружены ассоциации с участием патогенных микроорганизмов. В группе кочующих видов птиц в 27% проб встречались ассоциации патогенных микроорганизмов, а в группе перелетных птиц в пробах от 1 утки серой таких случаев не обнаружено. Таким образом, у диких птиц установлено ассоциативное бактерионосительство с участием микроорганизмов, отнесенных к 7 родам. Наиболее часто регистрируются ассоциации, включающие представителей 2 и 3 родов. При этом такая форма инфекции наиболее выражена у оседлых видов птиц. Библиографический список 1. Агольцов В.А. Кандидоз, аспергиллез и мукороз животных (диагностика и меры борьбы): автореф. дис. … д-ра вет. наук.– Н. Новгород, 2006. - С. 12. 2. Багряцова А.Л. Микробиологический мониторинг синантропных птиц в г. Улан-Удэ и п. Майск Курумканского района Республики Бурятия: автореф. дис. … канд. вет. наук.– Барнаул, 2005. - 18 с. 3. Белоусова Р.В. Роль перелетных птиц в распространении вирусов в природе: лекция / Р.В. Белоусова, В.Н. Сюрин.– М., 1977. – 53 с. 4. Коровин Р.Н. Лабораторная диагностика болезней птиц: справочник / Р.Н. Коровин, В.П. Зеленский, Г.А. Грошева.– М.: Агропромиздат, 1989. – 256 с. 22 5. Львов Д.К. Миграции птиц и перенос возбудителей инфекций / Д.К. Львов, В.Д. Ильичев.– М.: Наука, 1979. – 271 с. 6. Биргер М.О. Справочник по микробиологическим и вирусологическим методам исследования.– М.: Медицина, 1983.– 445 с. 7. Герхард Ф. Методы микробиологических исследований.– М.: Мир, 1983. – 535 с. 8. Сидоров М.А. Определитель зоопатогенных микробов / М.А. Сидоров, Д.И. Скородумов, В.Б. Федотов.– М.: Колос, 1995. – 389 с. 9. Яхонтов А.А. Зоология для учителя. Хордовые / под ред. А.В. Михеева.– М.: Просвещение, 1985. – 256 с. УДК 636.32:619:616.33−008.3 Б.Б. Батуев, Р.З. Сиразиев ГНУ НИИВ Восточной Сибири Россельхозакадемии, КГУ «Могойтуйская станция по борьбе с болезнями животных» Забайкальского края КОРРЕКЦИЯ МИКРОФЛОРЫ КИШЕЧНИКА ПРИ ДИСПЕПСИИ ЯГНЯТ Показано, что препарат диарон при 1-2-кратном применении позволяет восстановить качественный и количественный состав микрофлоры, нормализовать функциональную деятельность кишечника у больных диспепсией новорожденных ягнят. The preparation of Diaron with 1-2 - multiple application makes it possible to restore the qualitative and quantitative composition of intestinal microflora, to normalize the functional activity of bowels in the sick with dyspepsia newly born lambs. Регулирующая роль кишечной микрофлоры выходит далеко за пределы желудочно-кишечного тракта. Ее участие в огромном спектре биохимических процессов объясняет широкий спектр клинических последствий кишечного дисбактериоза. 23 По мнению большинства ученых, желудочно-кишечные расстройства у молодняка развиваются при действии на их организм как стрессовых факторов (холод, сырость в помещениях, нарушение режима кормления и т.д.), так и возбудителей (микробы, вирусы, грибы и т.д.) инфекционных болезней [1-3]. Эти факторы могут действовать как по отдельности, так и в различных сочетаниях друг с другом. Развитию болезней в овцеводстве способствует недостаточное или неполноценное кормление суягных овцематок, в результате чего от них рождаются слабые ягнята, чувствительные к действию неблагоприятных факторов, особенно условно-патогенной микрофлоры. По локализации в кишечнике выделяют пристеночную и полостную микрофлору. В тонкой кишке численность пристеночной микрофлоры на 6 порядков превышает численность полостной, она тесно связана с кишечным эпителием и морфологически, и функционально. В толстой же кишке преобладает менее стабильная по составу полостная микрофлора, которая фиксируется на непереваренных пищевых волокнах. Микрофлора тонкой кишки относительно немногочисленна и представлена аэробной флорой: лактобактериями, стафилококками, стрептококками. Общая ее численность в тощей кишке составляет 103–105 клеток в 1 мл содержимого. По мере приближения к толстой кишке количество микроорганизмов возрастает и в подвздошной кишке достигает 105–108 в 1 мл. Два различающихся по составу и функциям биотопа: тонкая и толстая кишка – разделены эффективно функционирующим барьером – баугиниевой заслонкой. Толстая кишка отличается самой высокой плотностью микроорганизмов, которая составляет 109–1012 клеток в 1 мл. Здесь преобладают анаэробы: бифидобактерии 24 и бактероиды [4, 5]. При анализе количественного и качественного состава микрофлоры фекалий животных необходимо учитывать, что вся микрофлора желудочно-кишечного тракта условно подразделяется на нормальную (полезную), условно-патогенную и патогенную [1] (табл.1). Таблица 1 Нормальная микрофлора кишечника овец Микрофлора Нормальная микрофлора Условнопатогенная микрофлора Патогенная микрофлора Количество микробных клеток на 1г 106-107 E. coli 103-105 Споровые анаэробы 106-107 Lactobacillus 107-109 Bifidobacillus Стафилококки 103 Энтерококки 103 Стрептококки 103 С. albicans 103 Proteus mirabilis, P. vulgaris 0-102-103 M. morganii 102 E. coli со слабо выраженными ферментативными свойствами 103 K. pnevmoniae 103 P. rettgeri, P. alcalifaciens 103 C. freuindii, C. diversus 103 H. alvei 102 Erwinia 102 Shigella 102 Serratia 0 E. cloacae, E. aerogenes, E. agglomerans 0 0 Salmonellla 0 Yersinia 0 E. coli энтеропатогенная 0 Клостридии токсигенные Вид микроорганизма 25 При диспепсии – остром функциональном расстройстве пищеварения у молодняка животных происходит активизация условно-патогенной и токсигенной микрофлоры. Новорожденные животные особенно чувствительны к этим факторам, так как у них недостаточно развиты собственные защитные силы организма и не сформирована микроэкологическая система кишечника. С целью коррекции желудочно-кишечных заболеваний новорожденных ягнят и нормализации нарушенного пищеварения применяли препарат диарон, который является комплексным препаратом с антибактериальными, буферными, ионообменными и сорбционными свойствами. Препарат диарон запатентован, разработан в ГНУ НИИВ Восточной Сибири Россельхозакадемии. В условиях племенного хозяйства «Догой» Могойтуйского района Забайкальского края была сформирована экспериментальная группа новорожденных ягнят забайкальской тонкорунной породы с клиническими признаками диареи, угнетением и обезвоживанием организма (n=37). У больных животных до применения, через 24 и 48 ч после выпаивания препарата производили взятие фекалий для бактериологических и микробиологических исследований, руководствуясь методическими рекомендациями «Выделение и идентификация бактерий желудочно-кишечного тракта животных» (2004). Биометрический анализ числовых данных производили по Н.А. Плохинскому (1971) и компьютерным программам «Microsoft Excel». Посевы из внутренних паренхиматозных органов павших ягнят оставались стерильными, что позволяет рассматривать заболевание как диспепсию, а не инфекционную (колибактериоз, иерсиниоз, сальмонеллез и др.) болезнь [1, 3]. Анализ литературных данных и результатов многолетних собственных исследований показывает, что лечение 26 при диарее может быть эффективным, если оно проводится путем применения комплексных препаратов, обладающих способностью подавлять широкий спектр возбудителей желудочно-кишечных заболеваний, нормализующих нарушенное пищеварение, повышающих резистентность организма, обладающих антитоксическими свойствами [1, 2, 4-6]. У больных ягнят до применения препарата в кишечном микробиоценозе преобладали эшерихии, их выделяли в количестве 109 м.т. в 1 г, протеи (102 м. т. в 1 г), аэробные бациллы (105), стафилококки (104 ), бифидобактерии (106), лактобактерии (105 м.т. в 1 г). Состояние животных угнетенное, аппетит отсутствует, фекалии водянистые, желто-серого и серо-белого цвета. Температура тела в пределах нормы (39,0 – 40,5°С), реже ниже нормы (38,0°С). По литературным данным, кишечная микрофлора представляет собой важнейшую защитную систему организма. Ее суть заключается в предотвращении колонизации желудочно-кишечного тракта условно-патогенными и патогенными микроорганизмами. Микробный антагонизм многогранен и реализуется посредством следующих механизмов: 1. Конкуренция за питательные вещества (сапрофитная флора легче утилизирует питательные вещества и кислород). 2. Конкуренция за рецепторы адгезии (большее сродство к кишечным рецепторам). 3. Выработка органических кислот, перекиси водорода, антибиотикоподобных веществ – бактерицинов и других веществ, препятствующих росту патогенных микроорганизмов. Через 24 ч после применения диарона в содержимом кишечной трубки понизилось содержание эшерихий до 106 м.т. в 1 г, бактерии рода Proteus выделяли в количестве 10 м.т. в 1 г, аэробные бациллы − 104, стафилококки − 103. 27 Бифидобактерии и лактобактерии высевались в количестве 107 и 105 м. т. в 1 г соответственно (что объясняется подавлением условно-патогенной микрофлоры, снятием интоксикации). Клиническое состояние 80% ягнят удовлетворительное, появился аппетит с поступлением в организм молозива, фекальные массы кашицеобразной консистенции, светло-желтого цвета. Температура тела в пределах нормы (39 – 40,5°С). Продукты жизнедеятельности бифидобактерий и лактобактерий усиливают всасывание кальция, железа, витаминов D и С. Синтезируемый микрофлорой оксид азота регулирует моторную активность кишечника. Под влиянием ферментов нормальной микрофлоры в подвздошной кишке осуществляется деконъюгация желчных кислот, 80–95% из которых подвергаются обратному всасыванию и повторно участвуют в пищеварении (при синдроме избыточного бактериального роста деконъюгация происходит преждевременно и приводит к развитию секреторной диареи). Через 48 ч после применения препарата диарон доминирующей по численности группой бактерий в кишечном микробиоценозе являются бифидобактерии (108 м.т. в 1 г), вторыми по численности были лактобактерии (106). Протей не выделялся, аэробные бациллы высевались в количестве 102 м.т. в 1 г, стафилококки − 102 , эшерихии выделялись в количестве 104 м.т. в 1 г кишечного содержимого (табл. 2). Клиническое состояние 100% животных удовлетворительное, хороший аппетит, фекальные массы кашицеобразной консистенции, светло-желтого цвета. Температура тела в пределах нормы (39 – 40,5°С). Клиническое состояние 100% животных удовлетворительное, хороший аппетит, фекальные массы кашицеобразной консистенции, светло-желтого цвета. Температура тела в пределах нормы (39 – 40,5°С). 28 Таблица 2 Микрофлора фекалий здоровых и больных диспепсией ягнят, м.т. в 1 г Наименование микробов Эшерихии Протей Аэробные бациллы Стафилококки Бифидобактерии Лактобактерии Здоровые Больные 106-107 0-105 109 102 Через 24 ч после применения диарона 106 10 Через 48 ч после применения диарона 105 0 103-104 105 104 102 103-104 107-109 106-107 104 106 105 103 107 105 102 108 106 Важнейшая роль нормальной микрофлоры заключается в способности нейтрализовать многие токсические субстраты и метаболиты (нитраты, ксенобиотики, гистамин, мутагенные стероиды). Таким образом, она предохраняет не только клетки кишечника, но и отдаленные органы от воздействия повреждающих факторов. Кишечная микрофлора участвует в формировании и местного, и системного иммунитета. Само наличие микрофлоры оказывает постоянный антигенный тренирующий эффект. Таким образом, препарат диарон при 1-2−кратном применении позволяет восстановить качественный и количественный состав кишечной микрофлоры, нормализовать функциональную деятельность кишечника у больных диспепсией новорожденных ягнят. Библиографический список 1. Джупина С.И. Колибактериоз – инфекция факторная // Ветеринария Сибири.− 2001.− №5.− С.14-17. 2. Машеро В.А. Нормальная микрофлора животного организма и коррекция дисбактериозов препаратом «Диалак» // Ветеринарная практика.– 2004.– №1.– С. 28-36. 29 3. Колычев Н.М. Руководство по микробиологии и иммунологии.– Новосибирск: Арта, 2010. 4. Аликаев В.А. Острые желудочно-кишечные заболевания молодняка сельскохозяйственных животных // Профилактика и лечение заболеваний молодняка сельскохозяйственных животных.– М., 1964.- С.12-18. 5. Бондаренко В.М. Дисбиоз. Современные возможности профилактики и лечения /В.М. Бондаренко, В.Ф. Учайкин, А.О. Мурашова, Н.А. Абрамов.– М., 1995. 6. Иванов А.В. Применение цеолитов для профилактики расстройства пищеварения у новорожденных телят //Ветеринария.– 2000.– №4.– С. 45-46. 7. Топурия Г.М. Экология и воспроизводство животных / Г.М. Топурия, К.А. Инякина.– Оренбург: Изд. центр ОГАУ, 2009.– 97 с. УДК 619:616.98:579 П.К. Бойко, В.А. Бусол, Л.В. Коваленко, В.Н. Мазур Национальный университет биоресурсов и природопользования Украины ЭКОЛОГИЯ И ЭВОЛЮЦИЯ ВЫЖИВАНИЯ ВОЗБУДИТЕЛЯ ЭМФИЗЕМАТОЗНОГО КАРБУНКУЛА Обобщены результаты многолетних исследований экологии Cl. chauvoei, инфекционного и эпизоотического процессов эмфизематозного карбункула крупного рогатого скота. Установлено, что экологические особенности Cl. chauvoei обеспечивают в природе постоянство эпизоотического процесса эмкара и его саморегуляцию, активность которой обусловлена гетерогенностью и динамической изменчивостью составных паразитарной системы – Cl. chauvoei и восприимчивых животных. The results of many-years investigation of Clostridium chauvoei ecology and the infection and epizootic processes of blackquarter in cattle are showed in the article. It was founded that some ecological properties of 30 Cl. chauvoei provided the constancy and self-regularity of the blackquarter epizootic process. The self-regularity is caused by heterogeneity and dynamic diversity of the each part in parasitic system: Cl. Chauvoei – susceptible animal. Среди инфекций крупного рогатого скота значительную долю занимают болезни, возбудители которых являются анаэробными микроорганизмами. Среди последних особое место занимает эмфизематозный карбункул. Это обусловлено недостаточной изученностью экологии Cl. chauvoei, эпизоотологических особенностей, а также патогенеза инфекции [1-5]. На сегодня отсутствуют исчерпывающие ответы на особенности эпизоотического процесса и его саморегуляции [6-10]. Эти данные определили направление наших исследований. Целью работы было изучить особенности экологии Сl. chauvoei и саморегуляции эпизоотического процесса эмфизематозного карбункула крупного рогатого скота. В работе использованы данные ветеринарной статистики и собственных исследований закономерности развития эпизоотического процесса инфекции на территории Украины, а также экспериментов на крупном рогатом скоте, овцах и морских свинках. Для достижения поставленной цели применяли эпизоотологический, бактериологический, клинический и статистический методы исследований. При решении поставленных задач мы исходили из аксиомы, что экология возбудителей инфекций является отправной точкой познания эпизоотического процесса заразных болезней и понимания сущности сохранения и циркуляции патогенов в природе. Изучение особенностей эпизоотической ситуации по эмкару в разрезе континентов указывает на панзоотичность распространения инфекции. Мониторинговыми исследованиями в Украине 31 выявлена стационарность эмкара с 1891 г. (информационные источники за предыдущие годы не установлены). Особенностью эпизоотического процесса инфекции Cl. chauvoei является неравномерность его проявления во всех областях и в Автономной республике Крым. Эти данные указывают на существование факторов, которые поддерживают циркуляцию возбудителя эмфизематозного карбункула в разных природных регионах страны. По индексу эпизоотичности в течение последних 40 лет наиболее напряжённая эпизоотическая ситуация по эмфизематозному карбункулу имела место в Ровенской, Волынской, Донецкой, Львовской, Черниговской, Одесской и Тернопольской областях (таблица). Напряженность эпизоотической ситуации по эмфизематозному карбункулу в Волынской, Ровенской и Ивано-Франковской областях за период с 1945 по 2006 г. Показатель 1 Площадь,тыс. км2 Кол-во населенных пунктов Среднегодовое поголовье КРС, тыс. гол. Всего вспышек эмкара за весь период Отношение количества вспышек эмкара к площади (на 1 тыс. км2) к кол-ву населенных пунктов к среднегодовому поголовью (на 1 тыс. гол.) Область Волынская Ровенская 2 20,2 3 20,1 ИваноФранковская 4 13,9 1069 984 357 649 590 438 171 236 357 8,9 11,7 25,9 0,16 0,24 0,44 0,3 0,4 0,8 32 Данные исследований указывают на то, что эпизоотологическими особенностями эмкарной инфекции являются: неравномерность распространения инфекции в пространстве и времени; спорадичность клинического проявления патологического процесса; выраженная приуроченность активности эпизоотического процесса к определённым территориям, в частности, к природным луговым ландшафтам, расположенным в бассейнах разлива рек, или к территориям с поверхностным залеганием водоносных горизонтов; стационарность; проявление инфекции во все времена года, однако с наибольшей частотой в июне–октябре (69,8 %); проникновение болезнетворных клостридий в организм восприимчивых животных энтерально или парэнтерально через повреждённую кожу. Экспериментально и теоретически доказано, что Cl. chauvoei имеет факультативный тип паразитизма, что определяет его экологические особенности. Возбудитель инфекции способен сохраняться и при определённых условиях размножаться в почве, снижая при этом свою вирулентность до признаков авирулентности, а также восстанавливать их в процессе пассажирования через организм восприимчивых животных; при нахождении в останках павших животных (костях) длительно (до 17 лет – срок наблюдения) сохранять высокие вирулентные свойства, а также вызывать состояние иммунизирующей субинфекции у крупного рогатого скота. Экологические особенности существования возбудителя эмфизематозного карбункула в природе обусловливает эволюционно сформировавшаяся функциональная паразитарная система. В ней взаимодействуют три подсистемы. Первую подсистему формируют две взаимодействующие популяции Cl. chauvoei (вирулентные и авирулентные или слабовирулентные); вторую – гетерогенные по иммунному статусу популяции биологических хозяев (восприимчивые 33 животные и животные в состоянии иммунизирующей субинфекции); третью – механизмы передачи и неспецифические этиологические факторы, которые обеспечивают заражение восприимчивых животных и создание в тканях и органах последних условий для активного размножения возбудителя инфекции и повышения его вирулентных свойств. Вышеперечисленные экологические особенности Cl. chauvoei обеспечивают в природе постоянство эпизоотического процесса, формирование саморегуляции и активности последнего. Явление саморегуляции эпизоотического процесса инфекции Cl. chauvoei обусловлено: гетерогенностью и динамической изменчивостью составных паразитарной системы – Cl. chauvoei и восприимчивые животные; нахождением возбудителя инфекции в состоянии резервации в абиотической среде с долговременным сохранением вирулентности; постоянной циркуляцией возбудителя эмкара в цепи: абиотическая среда – организм восприимчивых животных (с проявлением и без проявления клинических признаков инфекции) – абиотическая среда – организм – абиотическая среда. На основании особенностей экологии возбудителя инфекции и закономерностей саморегуляции эпизоотического процесса сформирована стратегия управления им. Она направлена не на ликвидацию Cl. chauvoei, а на снижение вирулентной популяции возбудителя инфекции во внешней среде и уменьшение численности популяции восприимчивых животных путём использования эффективной специфической профилактики. На основании особенностей циркуляции Cl. chauvoei в абиотической и биотической среде, в том числе в стадах крупного рогатого скота и местах его обитания нами, сделаны следующие выводы. 1. Существующие знания экологии Cl. chauvoei 34 и эпизоотологические особенности болезни, а также использование методов профилактики и оздоровления неблагополучных хозяйств не позволяют элиминировать возбудителя инфекции из природной среды. 2. Стратегия профилактики эмфизематозного карбункула на стационарно неблагополучных территориях должна быть направлена не на ликвидацию, а на снижение вирулентной популяции возбудителя во внешней среде и уменьшение численности популяции восприимчивых животных путём проведения вакцинопрофилактики. Библиографический список 1. Абдарахманов Т.Ж. Оценка поствакцинального иммунного состояния животных по показаниям серологических реакций при ассоциированной иммунизации против сибирской язвы и эмфизематозного карбункула: Автореф. дис. … канд. вет. наук.– Алма-Ата, 1985.– 23 с. 2. Архангельский И.И. Таблицы дифференциальной диагностики важнейших заразных заболеваний сельскохозяйственных животных /И.И. Архангельский, Н.В Баданин. – М.: Сельхозгиз, 1959. – 312 с. 3. Бакулов И.А. Эпизоотологическая ситуация в мире по особо опасным болезням животных к концу ХХ ст.: // Сб. ст. Междунар. науч.практ. конф. «Диагностика, профилактика и меры борьбы с особо опасными, экзотическими и зооантропонозными болезнями животных». – Покров, 2000. - С.11-17. 4. Каган Ф.И. Эмфизематозный карбункул // Инфекционные болезни крупного рогатого скота /под ред. Ф.М. Орлова.– М.: Колос, 1974.– С. 257-265. 5. Коваленко Я.Р. Сохранение и вегетативный рост С. chauvoei в почве // Тр. ВГНКИ.– 1956.– Т.6.– С. 197-200. 6. Есаяшвили Л.А. Опыт прогнозирования сибирской язвы и эмфизематозного карбункула с целью планирования профилактических мероприятий (на примере Восточной Грузии): автореф. дис. … канд. вет. наук.– Тбилиси, 1975. – 20 с. 7. Кириллов Л.В. Предупреждение инфекционных болезней анаэробной этиологии // Ветеринария. – 2001. – № 1. – С. 16–19. 8. Сомов Г.П. Ёще раз о сапронозах // Журнал микробиологии, эпидемиологии и иммунологии. – 1985.– №5. – С. 98-104. 35 9. Gorbach S.L. Anaerobic Infections: Old Myths and New Realities // J. Infect. Dis.– 1974. – Vol.130. – P. 307-309. 10. Moussa R.S. Antigenic Formulae for Clostridium septicum and Clostridium chauvoei // J. Path. Bact.– 1959.– Vol.77.– P. 341-350. УДК 639.3.09 Е. В. Галанина Сахалинский НИИ рыбного хозяйства и океанографии АЭРОМОНОЗ У ЛОСОСЕВЫХ РЫБ ЮЖНОЙ ЧАСТИ ОСТРОВА САХАЛИНА Проведены ихтиопатологические исследования производителей лососевых рыб юга о. Сахалина. Выявлены случаи заболеваний бактериальной геморрагической септицемией (аэромонозом). Описаны клинические и патолого-анатомические признаки заболевания. Выделены возбудители заболевания – бактерии рода Aeromonas. The ichthyopathological studies of salmon spawners from southern Sakhalin have been conducted. There are detected the cases of bacterial hemorrhagic septicemia (aeromonas disease). Clinical and pathologoanatomic signs of this disease are described. Bacteria from the genus Aeromonas are isolated as pathogens. Аэромоноз или бактериальная геморрагическая септицемия – инфекционная болезнь рыб, регистрируется повсеместно, чаще в теплых водах с высоким содержанием органических веществ, при различных стрессовых воздействиях и протекает остро, подостро и хронически [1, 2]. На Сахалине болезнь впервые зарегистрирована у производителей горбуши в 1990 г. [3], а позднее и у производителей кеты [4]. Целью данного исследования являлось описание особенностей аэромоноза у лососевых рыб (горбуша, кета) на юге о. Сахалина и выделение возбудителя заболевания. 36 Ихтиопатологические исследования проводились с 2004 по 2010 г., клинически осмотрено 9546 экз. горбуши и 2950 экз. кеты. Патолого-анатомическое вскрытие проведено у 130 экз. горбуши и 80 экз. кеты. На бактериологические анализы отобраны пробы внутренних органов (почка, печень), содержимое язв и фурункулов. От производителей горбуши – 275 проб, от производителей кеты – 180 проб. Бактериологические исследования проводили по общепринятым в ихтиопатологии методикам [5]. Первичные посевы материала от производителей проводили на рыбопептонный агар (РПА) и рыбопептонный бульон (РПБ). Культурально-биохимические параметры выделенных культур изучали с применением дифференциально-диагностических сред, систем индикаторных бумажных (СИБ) с набором из 16 основных тестов, произведенных ФГУП НПО «Микроген» (Москва), а также микротестсистем API 20E для идентификации энтеробактерий и API 20NE для идентификации грамнегативных палочек не энтеробактерий, произведенных во Франции фирмой bioMerieux. Видовую идентификацию бактерий проводили, используя «Определитель бактерий Берджи» [6]. На протяжении многих лет наиболее часто БГС (бактериальную геморрагическую септицемию) регистрируют у горбуши юго-восточного побережья о. Сахалина (р. Очепуха, Бахура, Фирсовка) и в зал. Анива (р. Таранай, Лютога), а у кеты – в зал. Терпения (р. Буюклинка). В возникновении и развитии заболевания важную роль играют абиотические и биотические факторы среды. Известно, что при заходе в пресную воду лососи перестают питаться. Поэтому к основным биотическим факторам, приводящим к возникновению и развитию заболевания, относится ослабление защитных функций организма рыб вследствие нерестовых миграций, к абиотическим – не37 благоприятные условия внешней среды (маловодье, высокая температура воды, низкое содержание кислорода). Проникновению возбудителя в организм рыб способствуют различные травмы от укусов морского зверя и крупных рыб, а также нарушение целостности кожных покровов от паразитирования ракообразных [3, 4, 7]. Клинические проявления БГС у разных видов рыб могут быть различными. Геморрагическая септицемия характеризуется развитием септического процесса, появлением возбудителя в большом количестве в крови и паренхиматозных органах. При этом отмечаются асцит, ерошение чешуи, пучеглазие, кровоизлияния на поверхности тела и плавниках [8, 9], эрозии, проникающий в мускулатуру некроз кожи [10], воспаление кишечника, кровоизлияния во внутренних органах [11], фибринозный перитонит, абсцессы, локальные некрозы с поражением паренхиматозных органов, сердца, кишечника [12]. По нашим данным, у горбуши и кеты Сахалина симптомы этого заболевания несколько отличаются от описанных выше. Так, за все годы наблюдений у больных рыб мы не отметили ерошения чешуи и пучеглазия. Но на теле, помимо геморрагического воспаления кожи, мы наблюдали язвы и опухоли от мелких диаметром около 0,5 см, до крупных – 7-9 см, заполненных в ряде случаев мутным экссудатом и с участками некротизированной ткани. При вскрытии мы не наблюдали абссцесов. Отмечали анемию внутренних органов, кровоизлияния в печени, ее увеличение или изменение цвета (мозаичный, глинистый, песочный, молочнобелый), скопление светло-розового экссудата в брюшной полости. У некоторых рыб наблюдалась припухлость почки, увеличение селезенки и кровянистые выделения из ануса. Описанная нами патология внутренних органов отмечалась только у рыб с ярко выраженными внешними признаками 38 поражения, что характерно для острого течения болезни. Встречались также особи, у которых внешние проявления болезни были выражены слабее (локальные точечные кровоизлияния на брюшке, незначительное покраснение челюстей, плавников). При вскрытии таких рыб наблюдали незначительные изменения со стороны внутренних органов (в основном изменение окраски печени до песочно-глинистого), что свидетельствовало о подостром течении болезни. Среди обследованных рыб были отмечены особи, у которых внешние признаки болезни полностью отсутствовали. При вскрытии таких рыб патологии внутренних органов не наблюдали либо отмечали анемичность печени. Но из паренхиматозных органов были выделены аэромонады. У лососевых рыб юга о. Сахалин возбудителем БГС чаще всего являются бактерии рода Aeromonas. Мы выделяли от рыб с клиническими признаками заболевания и без таковых 5 видов аэромонад: A. hydrophila, A. sobria, A. media, A. caviae, A. bestiarium. Бактерии выделялись как в монотак и в поликультуре. A. bestiarium была выделена в монокультуре от горбуши с клиническими признаками заболевания и по биохимическим признакам была определена как A. hydrophila, но проведенный молекулярно-генетический анализ по гену 16S рРНК показал, что выделенный штамм имел 100% сходства с A. bestiarium, выделенной от карпа. Таким образом, на о. Сахалине из года в год отмечаются случаи заболевания БГС лососевых рыб, идущих на нерест. Этиологическим агентом заболевания являются бактерии рода Aeromonas, которые выделяются как в моно-, так и в поликультуре от больной и от клинически здоровой рыбы. Библиографический список 1. Рудиков Н.И. Микрофлора и бактериальные болезни рыб / Н.И. Рудиков, Л.И. Грищенко // Итоги науки и техники: Ихтиология. – М.: ВИНИТИ, 1985.– Т. 1. – С. 113-116. 39 2. Справочник по болезням рыб / под ред. В. С. Осетрова.– 2-е изд., перераб. и доп.– М.: Агропромиздат, 1989. – 288 с. 3. Пученкова С.Г. Микрофлора производителей горбуши в период нереста на юге Сахалина / С.Г. Пученкова, З.К. Шкурина // Рыбное хозво. Сер. Аквакультура.- 1991.– Вып. 2. – С. 1-5. 4. Шкурина З.К. Аэромонозы лососевых рыб Сахалина // Патология и паразитология морских организмов: тез. докл. – Севастополь, 1992. – С. 53-54. 5. Лабораторный практикум по болезням рыб / под ред. В.А. Мусселиус. – М.: Легк. и пищ. пром-сть, 1983. – 296 с. 6. Определитель бактерий Берджи: в 2 т. / пер. с англ.; под ред. Дж. Хоулта и др. – М.: Мир, 1997.– Т. 1.– 432 с. 7. Стексова В. В. Эпизоотическое состояние тихоокеанских лососей из прибрежных районов юга Сахалина в 1994 году / В.В. Стексова, Г.П. Вялова, З.К. Шкурина, Т.М. Сергеенко // Сб. науч. тр. рыбохоз. исслед. в Сах.- Курил. р-не и сопред. акваториях. – Южно-Сахалинск: СахНИРО, 1996.– Т.1. – С. 98-103. 8. Просяная В. В. Бактериальная флора белого амура в условиях неудовлетворительного гидрохимического режима / В.В. Просяная, П.М. Хуторной // Сб. науч. тр.– М.: ВНИИПРХ, 1979. – Вып. 23. – С. 29-35. 9. Buza L. A Fertozo hasvizkor oktananak megelozesenek es gyogykeseltsenek tanulmanyozasa // Szarvas, Haltenyesztesi kutatointeset. – 1975. – P. 18-49. 10. Song Y. Aeromonas liguefaciens isolation from skin rot disease of Formosa snakehead, Ganna maculata (Locepede), in Taivan / Y. Song, H. Ghung, G. Kou // J. Fish Soc. Taivan. – 1973. – Vol. 2, №1. – P. 56-59. 11. Racicot J. Bloot and liver enzumes in rainbow trout (Salmo gairdneri Rich) with emphasis on their diagnostic use: Srudy of CCI, toxicity and a case of Aeromonas infection / J. Racicot, M. Gaudet, C. Lerau // J. Fish Biol. – 1975. – Vol. 7. – Р. 825-835. 12. Shannon B.T. Aeromonas septicemia mortality in brown trout corellated with bacterial concentration of the water / B.T. Shannon, C.C. Gustafson // Fish Health News. – 1977. – Vol. 6, № 1. – P. 13-15. 40 УДК 636.52/.58.087 Е.В. Григорьева Оренбургский ГАУ АНТАГОНИЗМ БАКТЕРИЙ РОДА BACILLUS, ВХОДЯЩИХ В СОСТАВ ПРОБИОТИКА, ПО ОТНОШЕНИЮ К УСЛОВНОПАТОГЕННЫМ БАКТЕРИЯМ КИШЕЧНИКА ЦЫПЛЯТ-БРОЙЛЕРОВ Изучено влияние пробиотика, содержащего в своем составе бактерии рода Bacillus, на условно-патогенную микрофлору кишечников цыплят-бройлеров. Выявлено антагонистическое действие B. subtilis и B. licheniformis в отношении условно-патогенных бактерий, населяющих кишечник цыплят. The effect of probiotic containing in its composition of bacteria of genus Bacillus, for opportunistic intestinal microflora of broiler chickens. Revealed antagonistic action B. subtilis and B. licheniformis against opportunistic bacteria that inhabit the intestines of chickens. Микроорганизмы рода Bacillus широко распространены в природе. Представители этого рода хорошо приспосабливаются к окружающей среде и обладают способностью образовывать эндоспоры. Кроме того, бациллы вырабатывают большое количество биологически активных веществ: антибиотиков, ферментов, аминокислот, белков, витаминов, нуклеотидов. Это позволяет им обладать антагонизмом к условно-патогенным и патогенным микроорганизмам [1, 2]. Как известно из литературных источников, основным биотопом условно-патогенных бактерий родов Escherichia, Proteus, Citrobacter, Klebsiella, Staphylococcus является кишечник теплокровных животных, который они колонизиру41 ют, что негативно сказывается на состоянии здоровья молодняка сельскохозяйственных животных [3]. Природные антагонистические свойства бацилл нашли применение в производстве пробиотических препаратов [4]. Нами было изучено влияние пробитика олин на основе штаммов Bacillus subtilis (DSM 21097) и Bacillus licheniformis (DSM 21098) на состав условно-патогенной кишечной микрофлоры цыплят-бройлеров. В условиях ЗАО Птицефабрика «Оренбургская» были сформированы три группы цыплят-бройлеров кросса Смена-7: две опытные и одна контрольная. Цыплятам 1-й опытной группы выпаивали исследуемый препарат по схеме с 1-х по 10-е и с 20-х по 30-е сутки жизни. Бройлерам 2-й опытной группы пробиотик давался с 1-го по 15-й день. Птица контрольной группы олин не получала. Препарат вводили с кормом путем орошения кормовой массы суспензией пробиотика в воде из расчета 0,01 мг на голову в сутки. Состав микрофлоры толстого кишечника определяли с использованием методических рекомендаций «Выделение и идентификация бактерий желудочно-кишечного тракта животных» (№13-5-02/1043). На основе данных исследований видно, что применение пробиотика, содержащего в своем составе бактерии рода Bacillus, влияло на состав условно-патогенной микрофлоры кишечника цыплят-бройлеров (таблица). Так, в 14-дневном возрасте количество бактерий вида Escherichia coli было меньше на 18,89% у цыплят 1-й опытной группы по отношению к контролю, в 21-дневном возрасте – на 3,20, в 28-дневном – на 28,04 и в 42-дневном – на 20,13%. У птицы 2-й опытной группы содержание E. coli в кишечнике было ниже, чем у цыплят-бройлеров контрольной группы, в 14 дней на 24,10%, в 21 день – на 6,90, в 28 дней – на 5,84, в 42 дня – на 19,63%. 42 Состав микроорганизмов кишечника бройлеров на фоне применения спорогенного пробиотика (lgКОЕ/г) Микроорганизм E. coli C. freundii K. pneumoniae P. vulgaris S. aureus E. avium E. coli C. freundii K. pneumoniae P. vulgaris S. aureus E. avium E. coli C. freundii K. pneumoniae P. vulgaris 1 S. aureus E. avium E. coli C. freundii K.pneumoniae P. vulgaris S. aureus E. avium Контрольная группа 1-я опытная группа 14 дней 3,0700±0,0551 2,4900±0,5481* 5,1100±0,0111 4,7300±0,7851* 1,3100±0,1913 1,2400±0,2124* 1,0300±0,2361 – 1,3300±0,1653 – 4,9300±0,4551 4,8100±0,2122* 21 день 4,0600±0,9836 3,9300±0,4064* 6,9300±0,5413 6,8100±0,8572* 1,4300±0,7029 1,3600±0,3040* 1,3300±1,0492 – 1,9700±0,2867 – 5,5000±0,6815 4,2000±0,7248* 28 дней 4,2800±0,9490 3,0800±0,1509* 6,8000±0,4665 6,2000±0,3185* 1,9600±0,1696 1,3300±0,0953* 1,7700±0,7465 – 2 3 2,5400±0,8035 – 5,7000±0,8655 5,0800±0,2133* 42 дня 6,0100±0,2668 4,8000±0,6608* 7,3000±1,5362 6,4600±0,4269* 1,2200±0,4753 1,2000±0,7997* 1,6000±0,9468 – 3,7200±0,9984 – 6,7500±0,1693 6,4100±0,0114** * P<0,05;** P<0,001. 43 2-я опытная группа 2,3300±0,1113* 4,4200±0,1005* 1,1500±0,0011** – – 4,7000±0,0015** 3,7800±0,4549* 6,5000±0,8902* 1,3700±0,6763* – – 4,3000±0,3218* 4,0300±0,1953* 6,5000±0,4984* 1,6700±0,0530* – 4 – 5,2300±0,3867* 4,8300±0,1919* 6,1100±0,9946* 1,1400±0,7377* – – 6,4200±1,8918* Содержание бактерий вида Citrobacter freundii у бройлеров контрольной группы превышало показатели 1-й опытной группы в возрасте 14 дней на 7,44%, в возрасте 21 дня – на 1,73, в возрасте 28 дней – на 8,82 и в возрасте 42 дней – на 11,51%. Количество цитробактерий в содержимом кишечника цыплят контрольной группы было больше, чем у бройлеров 2-й опытной группы, в 14 суток на 13,50%, в 21 сутки – на 6,40, в 28 суток – на 4,41 и в 42 дня – на 16,30%. Число Klebsiella pneumoniae в кишечнике бройлеров контрольной группы превосходило количество этих же бактерий у цыплят 1-й опытной группы в 14-дневном возрасте на 5,34%, в 21-дневном – на 4,90, в 28-дневном – на 32,14 и в 42-дневном – на 1,64%. У птицы 2-й опытной группы эта разница составила в 14 дней 12,21%, в 21 день – 4,20, в 28 дней – 14,80 и в 42 дня – 6,56%. Количество энтерококков у птицы 1-й опытной группы было меньше, чем у бройлеров контрольной группы, на 2,43% в 14-дневном, на 23,64 – в 21-дневном, на 10,88 – в 28-дневном возрасте и на 5,04% – в 42-дневном возрасте. Цыплята-бройлеры контрольной группы превосходили по этому же показателю птиц 2-й опытной группы в возрасте 14 суток на 4,67%, 21 суток – на 21,82, 28 суток – на 8,25 и в возрасте 42 суток – на 4,89%. Различия были достоверны при P<0,05-0,001. Бактерии видов Proteus vulgaris и Staphylococcus aureus не обнаруживались в содержимом кишечников цыплят опытных групп на протяжении всего времени наблюдения, но высевались из кишечников цыплят-бройлеров контрольной группы. Таким образом, опираясь на полученные данные, можно говорить о том, что бактерии видов B. subtilis и B. licheniformis, входящие в состав пробиотического препарата олин, обладают выраженным антагонизмом по отношению 44 к условно-патогенным бактериям видов E. сoli, С. freundii, K. pneumoniae, E. avium, населяющих кишечник цыплятбройлеров, и заметно снижают их количество в организме птицы. Кроме того, они предотвращают колонизацию кишечника цыплят бактериями видов P. vulgaris и S. аureus. Библиографический список 1. Бакулина Л. Ф. Пробиотики на основе спорообразующих микроорганизмов рода Bacillus и их использование в ветеринарии / Л. Ф. Бакулина, И.В. Тимофеев, Н.Г. Перминова, А.Ф. Полушкина, Н.И. Печеркина // Биотехнология.– 2001.– №2.– С. 48-56. 2. Похиленко В.Д. Пробиотики на основе спорообразующих бактерий и их безопасность/ В.Д. Похиленко, В.В. Перелыгин // Химическая и биологическая безопасность.– 2007.– №2.–3 (32–33). – С. 20-41. 3. Якубенко Е.В. Бацелл – средство повышения резистентности и продуктивности птицы / Е.В. Якубенко, А.Г. Кощаев, А.И. Петенко, Г.П. Гудзь // Ветеринария. – 2006. – №3 . – С.14-16. 4. Сорокулова И.Б. Перспективы применения бактерий рода Bacillus для конструирования новых биопрепаратов / И. Б. Сорокулова // Антибиотики и химиотерапия. – 1996. – №10 . – С 13-15. Т.Н. Грязнева, П.А. Игуменщев, М.С. Жирихина Московская государственная академия ветеринарной медицины и биотехнологии им. К.И. Скрябина ПРИМЕНЕНИЕ НАНОСТРУКТУРИРОВАННЫХ БИОЦИДОВ В ВЕТЕРИНАРИИ Развитие нанотехнологий дает возможность создавать новые высокоэффективные, дешевые и экологически чистые средства доставки различных веществ непосредственно в клетки определенных органов и тканей, а также в микроорганизмы. Использование наносистем в качестве переносчи45 ков, например, терапевтических средств, позволяет сделать доступными для лекарств те пространства, куда ранее они не могли проникнуть. Проанализировав большой объем информации о достижениях отечественной ветеринарии, мы выделили несколько перспективных направлений в разработке и применении наноструктурированных препаратов, благодаря которым можно не только улучшить ситуацию по инфекционным и паразитарным болезням животных, но и оказать влияние на социальный прогресс в целом. К таким направлениям можно отнести следующие: 1. Разработка антибактериальных препаратов на основе нанотехнологий для борьбы с инфекционными болезнями животных, широко распространенными на территории России и наносящими значительный экономический ущерб животноводству. 2. Разработка нано- и липосомальных антибактериальных препаратов, направленных на уничтожение in vivo и in vitro внутриклеточных микроорганизмов, в т.ч. вирусов, микоплазм, риккетсий, хламидий, а также L-форм бактерий. 3. Создание универсальных противогрибковых препаратов, обладающих высокой фунгицидной и бактерицидной активностью в отношении широкого спектра микроорганизмов, в т. ч. возбудителей дерматомикозов, микотоксикозов, а также плесневых грибов, портящих сельскохозяйственную продукцию. 4. Создание универсальных биоцидов, обладающих антимикробным и противопаразитарным действием, предназначенных для обеззараживания объектов окружающей среды. За последние годы заболеваемость крупного рогатого скота фузобактериозом вышла на одно из первых мест в структуре инфекционной патологии животных не только 46 у нас в стране, но и во многих странах мира. В хозяйствах, где отмечается длительный период неблагополучия по этой болезни, использование вакцин не всегда дает положительный результат. В этих случаях целесообразным является разработка антибактериальных препаратов для наружного применения на основе наносом, которые глубоко проникают в поврежденные фузобактериями ткани животных, оказывают терапевтический эффект и уничтожают возбудителя «изнутри». Учеными Российского НИИ биоцидов и нанобиотехнологий на основе отечественной запатентованной субстанции велтон создан наноструктурированный препарат фузобаквелт, обладающий высокой лечебно-профилактической эффективностью при некробактериозе и копытной гнили животных. При широких производственных испытаниях фузобаквелта нами было установлено, что при использовании 1 раз в день в течение 7-10 дней препарат обеззараживает гнойно-некротические раны у животных и способствует ускорению эпителизации тканей. Создание биоцидов, направленных на уничтожение внутриклеточных микроорганизмов и L-форм бактерий, также является одной из неотложных задач ветеринарии, поскольку в этой форме в организме животных и во внешней среде могут сохраняться многие виды патогенных бактерий (возбудители бруцеллеза, туберкулеза, стафилококкозов, стрептококкозов, клостридиозов и др.). При нерациональном использовании антибиотиков и других химиотерапевтических препаратов многие виды бактерий, превратившись в L-формы, способны длительное время персистировать в макроорганизме, вызывать хронически протекающие инфекции и рецидивы болезней, нанося существенный экономический ущерб животноводству. 47 Учитывая социальную значимость вышеперечисленных микроорганизмов, нельзя сбрасывать со счетов и медицинский аспект данной проблемы. Поэтому наносомальные антибактериальные препараты, обладающие уникальной способностью проникать через цитоплазматические мембраны лишенных клеточной стенки микроорганизмов, являются перспективными средствами, направленными на уничтожение L-форм микроорганизмов и микоплазм как in vivo, так и во внешней среде. Сотрудниками НПО «ВЕЛТ» разработан бесспир товой, наноструктурированный антисептик велтосфер, содержащий в качестве действующего вещества субстанцию велтон и комплекс гликосфинголипидов C/CS. Основой комплекса являются отрицательно заряженные цереброзиды, самообразующие в воде коллоидную систему в виде нанотрубок и наносом размером менее 100 нм. Препарат прошел широкие производственные испытания в ветеринарной практике и показал высокую эффективность при обработке инъекционного и операционного полей, слизистых оболочек и внутренних органов при полостных операциях разных видов животных, кастрации поросят, при лечении животных с инфицированными ранами и травматическими повреждениями суставов. Сельскохозяйственная наука должна уделять более пристальное внимание и таким «вездесущим» биологическим объектам, как микроскопические грибы, большинство из которых являются возбудителями инфекционных болезней, общих для человека и животных. Одна из серьезных медико-социальных проблем во многих странах мира – дерматомикозы. Специфическая профилактика трихофитии и микроспории позволила значи тельно снизить уровень заболеваемости сельскохозяйственных и мелких домашних животных грибковыми инфекция48 ми, однако нерациональное использование вакцинных препаратов и антибиотиков привело к усилению патогенных и вирулентных свойств дерматофитов и обострило проблему дерматомикозов, особенно в мегаполисах. Кроме того, наблюдающийся рост числа домашних животных у населения и наличие большого количества бездомных собак и кошек способствуют поддержанию неблагополучия по дерматомикозам животных в большинстве населенных пунктов РФ. Проблема грибковых инфекций усугубляется еще и тем, что микозы, как правило, осложняются вторичными бактериальными и вирусными инфекциями, на фоне которых развиваются стрепто- и стафилококкозы, демодекозы и др. Учитывая отмеченное, разработка противогрибковых препаратов, обладающих фунгицидной и бактерицидной активностью в отношении широкого спектра микроор ганизмов, является перспективным научным направлением в ветеринарии и растениеводстве. В содружестве с НИИ биоцидов и нанобиотехнологий и при поддержке Национального Союза «Медикобиологическая защита» нами создан биоцид миковелт, обла дающий антимикробной и противогрибковой активностью. Препарат показал 100%-ю эффективность при лечении мелких домашних и сельскохозяйственных животных, больных трихофитией, микроспорией, стафило- и стрептококкозами, при однократном наружном применении. Миковелт был также эффективен при обеззараживании различных поверхностей, пораженных плесневыми и дрожжеподобными грибами. На отечественном рынке медицинских и ветеринарных препаратов имеется большой ассортимент дезинфицирующих средств на основе различных биоцидных субстанций. Однако в практике борьбы и профилактики паразитар49 ных болезней человека и животных нет современных эффективных паразитоцидов, применяемых для обеззаражи вания окружающей среды. По статистическим данным, в России ежегодно паразитозами заражается около 20 млн человек, а среди разных видов животных зараженность различными паразитами составляет около 100 %. Высокий уровень заболеваемости населения и животных паразитозами способствует экстенсивному и интенсивному обсеменению возбудителями паразитарных болезней различных объектов окружающей среды. Трудность борьбы с паразитарными болезнями состоит в том, что их возбудители обладают чрезвычайно высокой плодовитостью и надежно защищены от неблагоприят ных факторов внешней среды полупроницаемой липоидной оболочкой. Только благодаря нанотехнологиям можно создать эффективный универсальный биоцид, обладающий антимикробным и противопаразитарным действием и предназначенный для обеззараживания объектов окружающей среды. Одним из подобных биоцидов является созданное нами наносредство паравелт, обладающее не только антибактериальной и противовирусной активностью, но и про тивопаразитарным действием в отношении яиц и личинок гельминтов, цист и ооцист патогенных простейших. При лабораторных испытаниях паравелта было установлено, что данное средство проникает через многослойную липоидную оболочку яиц гельминтов, вызывая их дегенеративные изменения, а также инактивируя и разрушая возбудителей гельминтозов на личиночной стадии развития. Гибель яиц и личинок была отмечена в первые 3 ч с начала постановки опыта. Высокая дезинфицирующая и паразитоцидная эффективность наносредства паравелт и безопасность его для 50 окружающей среды могут обеспечить его применение в эпизоотических очагах, а также в очагах паразитозов. Дезинвазию объектов окружающей среды с применением наноструктурированных дезинфектантов, по нашему мнению, следует включить в законодательные акты, опре деляющие реестр обязательных работ ветеринарной дезслужбы. Новые средства должны разрабатываться отечественными учеными и производиться на российских предприятиях, что сделает данную продукцию для экономики воспроизводимой, а для потребителя доступной. Исходя из собственного опыта работы на объектах ветнадзора, мы считаем, что все препараты для животноводства, разрабатываемые в рамках инновационных проектов, должны отвечать следующим критериям: - высокая эффективность (99,9%); - универсальность; - многофункциональность; - безвредность; - экологическая безопасность; - доступность. Необходимо признать, что сельское хозяйство все еще продолжает оставаться консервативной отраслью российской экономики, куда с трудом внедряются новые инно вационные разработки и продукты высоких технологий. Однако ветеринария – это один из наиболее высокотехнологичных секторов сельскохозяйственного производства, куда можно направлять ресурсы в рамках реализации национальных проектов развития АПК. 51 УДК 619: 615.14 И.И. Гуславский Алтайский ГАУ ЖЕСТКО ДЕТЕРМИНИРОВАННЫЕ И СТАТИСТИЧЕСКИЕ ЗАКОНОМЕРНОСТИ В ИНФЕКЦИОННОМ И ЭПИЗООТИЧЕСКОМ ПРОЦЕССАХ Основным методологическим приемом исследований в биологии является принцип системной организованности. Важнейшее свойство сложных биологических систем – иерархичность строения, последовательное включение систем более низкого уровня в системы более высокого уровня. В инфекционном и эпизоотическом процессах закономерности и причинная обусловленность жестко детерминированы. The basic methodological reception of researches in biology is the principle of system organization. The major property of complex biological systems - hierarchy of a structure, consecutive inclusion of systems of lower level in systems of higher level. In infectious and epizootical processes of law and causal conditionality are rigidly determined. В середине ХХ в. основным (фундаментальным) методологическим приемом исследований в биологии стал принцип системной организованности, по которому любой биологический объект представляет собой систему, способную к регулированию внутренних соотношений целостного объекта со средой. Главными функциями любой биологической системы являются самосохранение и воспроизводство. Важнейшее свойство сложных биологических систем – иерархичность строения, т.е. последовательное включение систем более низкого уровня в системы более высокого уровня. Другим методологическим приемом являются те52 ории управления и информации, широко используемые в биологии. Эти теории используются для раскрытия механизма поддержания целостности сложных биологических систем. На их основе построена всеобщность явления саморегуляции в органическом мире и продемонстрировано, что все регуляторные процессы в биологической системе осуществляются за счет сил, действующих внутри системы, и, следовательно, биологическая регуляция всегда есть саморегуляция. Применение названных фундаментальных методологических приемов в эпидемиологии и эпизоотологии открывает возможности для построения универсальной концепции эпидемического и эпизоотического процессов. У истоков эпидемиологических обобщений и эффективных разработок борьбы с инфекционными болезнями были выдающиеся отечественные ученые Д.К. Заболотный, Л.А. Тарасевич, Н.Ф. Гамалея, Е.И. Марциновский, Л.В. Громашевский и др. Основоположниками отечественной эпизоотологии следует по праву считать С.Н. Вышелесского, М.С. Ганнушкина и его ученика И.А. Бакулова, который сформировал законы и категории эпизоотологии. В эпидемиологии и эпизоотологии многое уже известно. Однако современные исследования в смежных науках могут синтетически на основе интегрирования использоваться в эпидемиологии и эпизоотологии, где еще немало дискуссионных вопросов. То, что раньше не подвергалось сомнению (массовая вакцинация, массовая антибиотикотерапия и др.), сейчас подвергается обоснованному сомнению и запрету. Каковы причины дискуссии в эпидемиологии и эпизоотологии? Вот основные из них: 1. Не совсем ясна ситуация с инфекционной патоло53 гией, ее структурой и удельным весом инфекций в общей патологии. 2. Еще недостаточно знаний о патогенном действии условно-патогенной и даже нормальной микрофлоры. Пока еще экспериментально не выяснена причина стимуляции патогенной активности нормальной микрофлоры в ассоциациях в местах обитания в макроорганизме. 3. Слабо изучены причины некоторых заболеваний (в виде вспышек неустановленной природы). 4. Еще не полностью раскрыты причины иммунологических процессов. 5. Пока не ясно эпидемическое и эпизоотическое значение установленного факта персистентности некоторых микроорганизмов. 6. Нуждаются в определении пути развития исследований по эпидемиологической и эпизоотологической экологии. 7. Не определен круг вопросов многофакторного анализа причин, которые могут влиять на эпизоотологию болезней в современных условиях в глобальном масштабе. Все эти вопросы имеют принципиальное значение не только для развития эпизоотологии как науки. Успешное их решение позволит более обоснованно определить дальнейшую стратегию и тактику в рациональной борьбе с инфекционными болезнями. Известно, что предметом эпизоотологии является эпизоотический процесс – сложный непрерывный процесс возникновения и распространения инфекционных болезней, в основе которого лежит биологический паразитизм. В эпизоотическом процессе по аналогии с эпидемическим следует выделить 7 иерархических уровней в соответствии со структурной организацией живой материи: субклеточный (молекулярный); клеточный; тканевой (органный); 54 организменный; биоценотический (межпопуляционный); социоэкосистемный локальный (биогеоценотический); социоэкосистемный глобальный (биосферный). Происходящие процессы на каждом уровне и между ними по восходящей взаимозависимы, их последовательное развитие ведет к усложнению явлений на каждом следующем уровне организации эпизоотического процесса. При этом собственно понятие эпизоотического процесса включает только высшие уровни системы начиная с биоценотического, а иерархические уровни от субклеточного по организменный составляют инфекционный процесс. Эти два важнейших явления в эпизоотологии и процессы, происходящие на каждом уровне, детерминированы, закономерны и в определенной степени саморегулирующиеся. Существует общая эпизоотологическая закономерность, заключающаяся в том, что для инфекционных болезней свойственен эпизоотический процесс. Эта общая закономерность объединяет ряд законов эпизоотологии. Законы, в свою очередь, выражаются через эпизоотологические категории. Академик И.А.Бакулов сформулировал 7 законов эпизоотологии [1]: - об источнике возбудителя инфекции; - о соответствии локализации возбудителя, путей его выделения и механизма передачи восприимчивым животным; - о непосредственно движущих силах эпизоотического процесса; - о вторичных, или посредственных, движущих силах эпизоотического процесса; - об изменениях эпизоотологических особенностей заразных болезней; 55 - о природной очаговости болезней, об условиях существования и активизации природного очага; - о принципах проведения противоэпизоотических мероприятий. Знание этих законов позволяет контролировать эпизоотический процесс. Этот контроль был бы достаточно эффективным, если бы мы могли управлять коллективным иммунитетом. Коллективный иммунитет к различным патогенным микроорганизмам – процесс чрезвычайно динамичный, который зависит от многих факторов: - особенностей кормления и условий содержания животных; - влияния внешних факторов и конкурентности различных видов микроорганизмов; - ландшафтно-географических особенностей; -сроков между прививками вакциной; - наличия массовых заболеваний (легочные, кишечные и др.) Эволюционно у животных сложилась достаточно сильная защита, представленная защитными барьерами (кожа, слюна, слезы и др.) и иммунной системой (клеточный, тканевый, гуморальный). Однако уровень устойчивости макроорганизма зависит от физиологического состояния, на которое влияют многообразные факторы природно-климатического, технологического, гигиенического, санитарного порядка, но главным образом – кормление. Таким образом, детерминированные процессы развития инфекционного и эпизоотического процесса на популяционном уровне чрезвычайно многообразны и требуют системного, научно обоснованного подхода к разработке мер профилактики и борьбы с учетом особенностей той или иной инфекционной болезни на конкретной территории. 56 Эпизоотологический мониторинг в Алтайском крае за последние 40 лет подтверждает действие законов эпизоотологии. Всего в крае учтено 48 инфекционных болезней, из них 27 бактериальной, 16 вирусной, 3 микоплазмозной и по одному заболеванию микозной и риккетсиозной этиологии. Для 32 болезней источником возбудителя могут быть только домашние животные, для 16 – домашние и дикие животные, для одной – внешняя среда. По механизму передачи возбудителя инфекции наиболее многочисленной оказалась группа болезней, для которых в основном характерен фекально-оральный, или алиментарный, способ передачи, таких болезней оказалось 27 (58,3%). К группе заболеваний с передачей возбудителя воздушно-капельным, или респираторным, способом отнесено 9 (18,8%) инфекционных болезней, 8 (16,6%) болезней передается контактным механизмом или через наружные покровы. С помощью переносчиков передаются 2 (4,2%) инфекционные болезни и 2 не систематизированы. Если учесть этиологический фактор, то вирозы в инфекционной патологии имеют меньшее эпизоотическое значение в сравнении с бактериозами. При распределении инфекционных болезней по источнику возбудителя установлено преимущество домашних и диких животных с тенденцией к снижению заболеваемости, тогда как в группе болезней, где источником возбудителя являются только домашние животные, такой тенденции нет. Известно, что для каждой инфекционной болезни характерен свой эволюционно сложившийся главный механизм передачи, при некоторых болезнях есть еще и вспомогательные. Установлена тенденция к снижению заболева57 ний, передающихся алиментарным способом, особенно среди крупного рогатого скота (с 1972 г.), чего нельзя сказать об овцах и свиньях. С 1972 г. наметилась тенденция к росту болезней, передающихся респираторным способом, особенно у свиней и крупного рогатого скота. В инфекционной патологии животных стали иметь наибольшее эпизоотическое значение болезни преимущественно бактериальной этиологии, передающиеся аэрогенным способом, источником возбудителя которых являются домашние животные. Такие изменения обусловлены влиянием новых технологических приемов и системы ведения промышленного животноводства. По некоторым инфекционным болезням установлена прямая корреляция между заболеваемостью и численностью поголовья животных, например при листериозе овец. В 1964 г. заболеваемость листериозом на 100000 поголовья овец составила 139,5 животных данного вида, спустя 30 лет она не привысила 4 животных, или снизилась в 34,8 раза. Поголовье овец за это время уменьшилось более чем в 10 раз, что обусловлено снижением возможности образования эпизоотической цепи и развития эпизоотического процесса. С 1994 г. эта болезнь у овец не регистрируется. Аналогичная обстановка с листериозом свиней. Но это не означает, что эпизоотическая ситуация будет благоприятной и в будущем, тем более что у крупного рогатого скота эта болезнь периодически появляется до настоящего времени. Кроме того, необходимо учитывать тот факт, что возбудитель листериоза поражает 125 видов домашних и диких животных, а также длительно сохраняется во внешней среде (почва, вода, силос и др.) в сапрофитической форме, не теряя патогенных свойств. Об эпизоотической опасности этой инфекционной болезни не следует 58 забывать, поскольку за последние 40 лет в Алтайском крае было зарегистрировано 599 неблагополучных пунктов, где заболело 51910 животных и пало 20004, в т.ч. на овец приходится соответственно 523, 41374, 17142. В заключение позволю себе сослаться на мнение известных эпидемиологов О.В. Барояна и Д.В. Портера [2], актуальность которого сохранилась и в наши дни. Авторы предлагают сконцентрировать внимание на следующих проблемах: -современные взгляды на патологию инфекций и роль инфекций в человеческой патологии, то же самое в патологии животных; -научно-теоретическое обоснование проблемы «ликвидации» инфекций; -разработка общей тактики и стратегии специфической профилактики, стандартизация и унификация различных биопрепаратов; -эпидемиология (эпизоотология) и профилактика смешанных инфекций и эпидемических (эпизоотических) вспышек с невыясненной этиологией; -эпидемиология (эпизоотология) хронических инфекций; -эпидемиология (эпизоотология) хронических дегенеративных заболеваний; -математическое моделирование и прогнозирование эпидемий (эпизоотий). В этих высказываниях просматриваются элементы системного подхода к эпидемическому (эпизоотическому) процессу и подходы к контролю этого процесса с учетом детерминизма в этом сложном биологическом явлении на всех уровнях от субклеточного до социоэкосистемного (биосферного). Поскольку система каждого предыдущего уровня 59 эпизоотического (эпидемического) процесса входит в состав последующего и является органической частью всех прочих вышестоящих уровней, то между всеми уровнями существует тесная связь, что определяет целостность эпизоотического (эпидемического) процесса. Библиографический список 1. Бакулов И.А. Законы и категории эпизоотологии// Вестн. рос. акад. с.-х. наук. – 1994. – №1. – С. 44-46. 2. Бароян О.В. Международные и национальные аспекты современной эпидемиологии и микробиологии /О.В. Бароян, Д.В. Портер. – М.: Медицина.– 1975. – 520 с. УДК 619:616.98 К.А. Густокашин Алтайский ГАУ ВЛИЯНИЕ БИОЛОГИЧЕСКОГО ФАКТОРА ЧИСЛЕННОСТИ ГРЫЗУНОВ НА ДИНАМИКУ ПОКАЗАТЕЛЕЙ ЭПИЗООТИЧЕСКОГО ПРОЦЕССА Крупнейшая видовая биомасса среди млекопитающих оказывает нагрузку на экосистемы. Динамика заболеваемости по отдельным нозологическим формам имеет прямую зависимость от численности грызунов. Сильная корреляция наблюдается при природно-очаговых болезнях, слабая – при вирусных и бактериальных болезнях с преимущественно воздушно-капельным механизмом передачи. The largest specific biomass among mammals renders loading on ecological systems. Dynamics of diseases on separate nozological forms has direct dependence on number of rodents. Strong correlation at natural center illnesses, weak - at virus and bacterial illnesses with mainly air-drop mechanism of transfer. 60 Выбор факторов, влияющих на динамику эпизоотического процесса в Алтайском крае, нами проводился в два этапа: логическое обоснование возможности влияния и математическое подтверждение выбранного направления исследований. Грызуны составляют самый многочисленный отряд млекопитающих. На земном шаре насчитывается более 2500 различных видов грызунов, объединенных в 30 семейств, а это половина всех видов наземных млекопитающих, соответственно самая крупная видовая биомасса, которая может оказывать нагрузку на экосистемы. Мышевидные грызуны – это один из основных резервуаров и источников возбудителей более 60 инфекционных болезней. В ходе интенсификации животноводства, с одной стороны, и ухудшения ветеринарно-санитарных требований в хозяйствах фермерского типа – с другой, происходит концентрация значительного поголовья сельскохозяйственных животных и увеличение запасов кормов на ограниченных площадях без должного ветеринарно-санитарного обеспечения. А это, в свою очередь, создает благоприятные условия для размножения крыс и мышей. В результате уменьшения численности восприимчивого поголовья и повышения эффективности лечебнопрофилактических и противоэпизоотических мероприятий ветеринарная служба добилась снижения заболеваемости и падежа животных от заразных болезней с 1999 г. Однако, как показывает практика, ветеринарно-санитарные мероприятия, в частности борьба с мышевидными грызунами, еще не всегда надежно обеспечивают эпизоотическое благополучие животноводческих хозяйств, т.е. вынужденные и плановые мероприятия по дератизации не контролируют годовую динамику численности грызунов. На территории нашей страны обитает 140 видов гры61 зунов, объединенных в 12 семейств. Они распространены в соответствии с особенностями ландшафтно-географических зон, причем в каждой зоне имеются свои представители. В Алтайском крае серая крыса вместе с серой полевкой и домовой мышью занимает первое место по численности. Они – источники и переносчики многих природно-очаговых болезней. Основные места обитания – жилые и хозяйственные постройки человека. Встречается повсеместно и в природных условиях. В отдельных антропогенных биогеоценозах прожорливость зверьков достигает 50 % от объема кормления содержащихся сельскохозяйственных животных. При благоприятных условиях грызуны размножаются весь год, обладают высокой способностью к расселению, легко приспосабливаются к новым местам обитания. Наблюдается сезонное весенне-осеннее мигрирование. Весной выселяются в поля, осенью возвращаются в постройки человека. По расчетам профессора Б. Гржимека [1], плотность популяции мышевидных грызунов повторяется с трехлетней периодичностью, при этом в один год развивается 3-4 поколения (рис. 1). При перечисленных условиях потенциальная биомасса популяции актуальных для эпизоотического процесса видов грызунов увеличивается за 3 поколения в тысячи раз. Используя методику определения численности серых крыс и мышей, разработанную профессором Ю.С. Равкиным [2], мы определили биоритмы развития мышевидных грызунов и их связь с динамикой заболеваемости сельскохозяйственных животных в районах Алтайского края за последние 10 лет. 62 Рис. 1. Изменение численности популяции мышевидных грызунов в ходе чередования поколений Рис. 2. Корреляция относительного прироста населения городов и динамики численности мышевидных грызунов Данные о численности крыс и мышей, полученные из санитарных предприятий, были сопоставлены с динамиками экономических и социальных показателей населения, но статистически значимыми оказались цифры по численности и относительной плотности населения, которые и использовались в дальнейших расчетах. Исследованиями установлено, что на территории Алтайского края количество крыс в населенных пунктах в 63 среднем соответствует численности людей, а мышей в 2-3 раз больше. Из рис. 2 видно, что определенно прослеживается прямая зависимость численности грызунов от численности населения. В условиях городов и крупных поселков края в моменты максимальных значений трехлетней периодичности поколений поголовье грызунов имело достоверную значимую прямую корреляцию с численностью населения, коэффициент составил 0,75. Для питания грызунов требуется корма 25-30 % от массы тела животных в сутки. На территории ферм Павловского и Первомайского районов мы расставляли прозрачные площадки с приманкой массой 50 г по одной на каждые 100 м2. Распространение грызунов в сельских районах определялось расчетом массы съеденной приманки, вида и средней массы мышевидного грызуна и соответственно расчетом количества грызунов на единицу площади. Оценка присутствия грызунов в свинарниках проводилась по изменению положения и количества гранул приманки на исследовательских площадках. На свинофермах с использованием частично деревянного настила пола было зарегистрировано в среднем 9-11 грызунов, а с бетонированным полом – только 2-4 крысы на 100 м2. Определив площадь исследуемых районов, численность животных и динамику численности населения, мы сопоставили вариационные ряды для определения приблизительной численности исследуемых грызунов. Установлено, что за исследуемый период динамика численности крыс, полевок и домовых мышей была в пределах 10000-18000 на 1 га площади исследуемой территории районов Алтайского края, включая городские популяции. После математической обработки информации о численности мышевидных грызунов и эпизоотологического мониторинга были определены коэффициенты корреляции между показателями динамики заболеваемости по эпизоотически значимым болезням и поголовьем грызунов (таблица). 64 Эпизоотически значимые нозологические формы и коэффициенты корреляции показателей заболеваемости и численности грызунов в районах с приоритетным развитием животноводства (по видам животных) Вид животных 1 Район 2 Павловский Крупный рогатый скот Первомайский Краснощековский Мамонтовский Свиньи Ребрихинский Тогульский Инфекционная болезнь 3 Колибактериоз Лейкоз Некробактериоз Сальмонеллез Пастереллез Туберкулез Колибактериоз Сальмонеллез Парагрипп-3 Пастереллез Туберкулез Бешенство Бруцеллез Лептоспироз Колибактериоз Сальмонеллез Пастереллез Дизентерия Колибактериоз Сальмонеллез Пастереллез Дизентерия Колибактериоз Сальмонеллез Пастереллез Дизентерия Чума Бруцеллез Листериоз 65 Коэффициент корреляции 4 0,50 0,30 0,25 0,70 0,61 0,32 0,45 0,40 0,23 0,50 0,21 0,59 0,41 0,68 0,30 0,60 0,51 0,25 0,30 0,54 0,62 0,31 0,4 0,65 0,49 0,4 0,11 0,28 0,6 1 Мелкий рогатый скот 2 Родинский Рубцовский Солонешенский Лошади Павловский Окончание табл. 3 4 Злокачественный отек 0,1 Брадзот 0,13 и энтеротоксемия Бруцеллез 0,4 Листериоз 0,92 Сальмонеллез 0,45 Бруцеллез 0,31 Сальмонеллез 0,7 Бруцеллез 0,53 Сальмонеллез 0,72 Бешенство 0,9 Бруцеллез 0,4 Сальмонеллез 0,69 Были определены районы с наибольшей напряженностью влияния биологического фактора численности грызунов на значимые нозологические формы. Значимыми и достоверными оказались коэффициенты по бактериальным болезням. Сильная прямая зависимость интенсивности эпизоотического процесса прослеживается при природно-очаговых болезнях – бешенстве, листериозе, сальмонеллезе, роже – 0,6-0,9. Средняя степень связи наблюдалась при болезнях молодняка и хронических инфекциях – колибактериозе, бруцеллезе и туберкулезе – 0,3-0,6. Слабая связь наблюдается при вирусных и бактериальных болезнях с преимущественно воздушно-капельным механизмом передачи и клостридиозах – парагриппе-3, брадзоте, инфекционном атрофическом рините. При корреляционном анализе выявленная связь оказалась прямой – при увеличении численности грызунов незамедлительно возрастает заболеваемость. С учетом примененной методики подсчета, интенсификация ведения 66 животноводства и, в частности, увеличение численности поголовья, как следствие, увеличивает численность мышей и крыс. В свою очередь, источники и переносчики многих болезней – грызуны – становятся причиной роста заболеваемости. Связь изучаемых факторов очевидна и должна использоваться при оценке эпизоотических рисков при создании и развитии животноводческих хозяйств. Библиографический список 1. Гржимек Б. Экологические очерки о природе и человеке. – М.: Прогресс, 1988. – 640 с. 2. Ливанов С.Г. Мониторинг разнообразия наземных позвоночных государственного биосферного заповедника «Катунский»/ С.Г. Ливанов, Ю.С. Равкин //Тр. гос. природ. биосфер. заповедника «Катунский». – Барнаул: Изд-во АГУ, 2001. – Вып.1. УДК 619:616.3:636.2.053 О.С. Дансарунова, Е.А. Дансарунов, Н.А. Цыремпилова Бурятская ГСХА им. В.Р.Филиппова ВЛИЯНИЕ ГЕМПРЕПАРАТА НА МИКРОБИОЦЕНОЗ КИШЕЧНИКА ТЕЛЯТ Под влиянием гемпрепарата на микробиоценоз кишечника телят наблюдается подавление численности условно-патогенной микрофлоры как потенциальных возбудителей сальмонеллеза, эшерихиоза, стафилококкового дисбактериоза. Sumpress of quantity the relative- pathological microflora as potential stimulus of salmonella, escherihia, and staphylococcus disbacterios is observed under gempreparat on calves the microbiocenos. 67 Проблема поиска новых биологически активных препаратов для профилактики и лечения желудочно-кишечных заболеваний молодняка сельскохозяйственных весьма актуальна [1]. Гемпрепарат разработан на кафедре биотехнологии Восточно-Сибирского государственного университета на основе методов биотехнологии. Исходным сырьем для получения гемпрепарата служила кровь крупного рогатого скота, обезжиренное молоко, культура молочно-кислых бактерий Lactobacillus acidophilus 20Т. Целью исследования было определение количественного и видового состава микроорганизмов в желудочно-кишечном тракте телят в условиях учхоза «Байкал» и изучение влияния гемпрепарата на микробиоценоз желудочно-кишечного тракта телят. На первом этапе исследования в учебном хозяйстве «Байкал» была сформирована опытная группа из 12 телят. Все телята были 3-4-месячного возраста с массой тела 120 кг. Рацион питания: сено, силос, вода, кормосмесь. Содержание стойлово-выгульное. На втором этапе исследования опытную группу телят утром в течение 10 дней поили гемпрепаратом из расчета 0,5 мл на 1 кг массы тела животного в количестве 50 мл из сосательной поилки. Материалом для исследования служила каловая масса опытных животных, взятая утром до кормления. По окончании опыта кал собирали в стерильные чашки Петри массой не менее 2 г и исследовали не позднее чем через 4 ч после взятия. Один грамм кала разводили в 9 мл стерильного физиологического раствора. Содержимое контейнера тщательно перемешивали стеклянной палочкой и оставляли при 68 комнатной температуре на 10-15 мин. Из исходного разведения делали высев на среды, обычно используемые для выделения патогенных энтеробактерий. Готовили 100-кратные разведения в физиологическом растворе: 10-3, 10-5, 10-6, 10-9. Дальнейшее исследование проводили по общепринятой в бактериологии методике [2]. Количество колоний каждого вида аэробных организмов на плотных питательных средах с учетом степени разведения кала и величины посевной дозы определяли по формуле M = N·10n+1, где M – число микробов в 1 г кала; N – число выросших на чашке колоний; n – степень разведения материала. Количество бифидобактерий, лактобактерий, стафилококков определяли по числу и характеру роста колоний на специальных агаровых средах, а также (особенно бифидобактерий и лактобактерий) по наличию характерных клеток в мазках, окрашенных по Граму. Проанализировав математические данные табл. 1, мы видим, что общее микробное число до выпаивание гемпрепарата составляет 1,22+0,125, в том числе полезной микрофлоры желудочно-кишечного тракта телят: лактобактерии – 0,510+0,102, бифидобактерии – 0,900+0,092. Условно-патогенная микрофлора состоит из сальмонелл – 0,340+0,131, стафилококков – 2,930+0,155, кишечной палочки – 1,350+0,255. 69 Таблица 1 Количественный и видовой состав микроорганизмов желудочно-кишечного тракта телят до поения гемпрепаратом, х106 Общее Бифидо КишечНомер микробЛакто Сальмо- Стафилобактеная теленка ное бактерии неллы кокки рии палочка число 1 3,9 0,1 2,6 2,1 0,000002 0,1 2 0,4 0,2 1,4 1,8 1,7 0,3 3 1,6 0,6 2,2 2,5 0,00001 3,8 4 1,0 0,002 0,3 3,6 0,01 0,4 5 0,1 0,3 0,3 1,3 1,4 0,4 6 0,6 1,3 1,5 25,0 0,1 0,1 7 2,7 1,2 2,1 0,8 0,01 1,7 8 1,8 0,5 1,3 1,7 0,02 0,2 9 0,8 0,001 0,8 2,4 1,0 0,2 10 0,6 0,5 1,4 1,7 0,8 0,1 11 0,4 0,6 1,2 0,5 0,8 0,2 12 0,3 гриб 0,6 1,6 0,00002 0,4 Среднее 1,220+ 0,510+ 0,900+ 0,340+ 2,930+ 1,350+ число 0,125 0,102 0,092 0,131 0,155 0,255 Td 0,275 0,620 2,646 5,011 3,721 0,794 0,001 – 0,000002 Lim 0,3 – 3,9 0,3 – 2,6 0,5 – 25,0 0 - 3,8 1,3 – 1,4 Как видно из табл. 2 общее микробное число после выпаивания гемпрепарата составляет 0,660+0,137, в том числе полезной микрофлоры желудочно-кишечного тракта: лактобактерии – 0,360+0,137, бифидобактерии – 0,340+0,136. Условно-патогенная микрофлора состоит из сальмонелл – 1,270+ 0,132, стафилококков – 0,720+ 0,126, кишечной палочки – 1,000+0,316. 70 Таблица 2 Количественный и видовой состав микроорганизмов желудочно-кишечного тракта телят после поения гемпрепаратом, х106 Номер теленка 1 2 3 4 5 6 7 8 9 10 11 12 Среднее число Td Lim Общее БифимикробЛакто дуом Сальмо- Стафило ное бактерии бактенеллы кокки число рии 0,3 0,1 0,002 1,0 0,1 0,7 0,1 0,000001 0,6 0,001 0,0000002 0,5 0,1 1,7 0,1 0,00001 0,2 1,8 1,0 2,5 0,4 2,2 0,9 29,7 0,2 1,2 0,2 0,001 3,5 0,5 0,07 0,2 0,1 0,04 0,6 1,2 0,0001 0,003 1,1 3,9 1,5 0,2 1,2 0,6 1,4 1,1 0,1 0,3 0,1 0,2 0 ,000001 1,1 0,000001 1,4 0,660+ 0,360+ 0,340+ 1,270+ 0,720+ 0,137 0,137 0,136 0,132 0,126 1,037 0,362 1,323 1,195 3,065 0,001 – 0,000001 0,0000002 0,000001 0,1 – 3,9 1,8 – 2,2 – 1,2 – 29,7 Кишечная палочка 0,3 0,2 0,02 2,0 0,2 0,3 0,2 0,3 0,0002 0,2 1,000+ 0,316 0,023 0,0002 – 2,0 Таким образом, соотношение нормальной микрофлоры к условно-патогенной до применения гемпрепарата составило 1: 2,1, после применения гемпрепарата – 1: 1,1, т.е. налицо уменьшение численности условно-патогенной микрофлоры. На фоне применения гемпрепарата наблюдаются положительные изменения микробиоценоза кишечника экспериментальных животных, а именно уменьшение количества условно-патогенных микроорганизмов (сальмонелла, кишечная палочка). 71 Таким образом, под влиянием гемпрепарата на микробиоценоз кишечника телят наблюдается подавление численности условно-патогенной микрофлоры как потенциальных возбудителей сальмонеллёза, эшерихиоза, стафилококкового дисбактериоза. Библиографический список 1. Ставцева Л.Я. Современные аспекты профилактики инфекционных болезней молодняка.– Кишинев, 1989. 2. Костенко Т.С. Практикум по ветеринарной микробиологии и вирусологии. – М.: Колос, 2001. УДК 619.579 Н.И. Дзюбин, Н.А. Цыремпилова, В.Ц. Цыдыпов Бурятская ГСХА им. В.Р. Филиппова ЭПИЗООТИЧЕСКАЯ ХАРАКТЕРИСТИКА ИНФЕКЦИОННЫХ БОЛЕЗНЕЙ ЖИВОТНЫХ В ИРКУТСКОЙ ОБЛАСТИ Изучена эпизоотология инфекционных болезней сельскохозяйственных животных в Иркутской области и проведен анализ данных заболеваний. Тhe аuthors is studied epizootolodgi injektious diseases agricultural bestial in Ircutsc area and conducted analysis given diseases. Инфекционные болезни представляли и будут представлять в обозримом будущем большую опасность для сельскохозяйственных животных. Поэтому ветеринарная наука и практика должны постоянно уделять этой проблеме повышенное внимание [1]. Добиться полной ликвидации отдельных инфек72 ционных болезней, особенно природно-очаговых, пока не представляется возможным. Тем не менее, контролировать и управлять развитием эпизоотического процесса, снижать его интенсивность, предупреждать потери от инфекционных болезней вполне возможно и должно, используя в этих целях закономерности развития эпизоотического процесса каждой болезни и групп заболеваний, близких по этиологической природе, источнику возбудителя болезни и механизму передачи [2]. Нами, с учетом классификации инфекционных болезней, предложенной И.Д. Бакуловым (1995), проведена систематизация регистрируемых нозоформ в Иркутской области. Всего учтены 32 нозологические формы инфекционных заболеваний (табл.1), из которых 16 (50 %) – бактериальной, 11 (34,4 %) – вирусной, 3 (9,4 %) – хламидиозной, лейкозной, случной и 2 (6,2 %) – грибковой этиологии. С учетом нозоединиц болезней, поражающих несколько видов животных в Иркутской области, зарегистрировано 54 инфекционных заболевания. По нозоформам это дизентерия, злокачественный отек, колибактериоз, лептоспироз, листериоз, некробактериоз, пастереллез, псевдомоноз, рожа, сальмонеллез, стафило-стрептококкоз, туберкулез, эмфизематозный карбункул, диплококкоз и бруцеллез – бактериальной этиологии. Из вирусных заболеваний – это вирусная диарея, ринотрахеит, коронавирусная, парвовирусная, ротавирусная инфекции. Грибковой этиологии – аспергиллез и трихофития. Другой этиологии – хламидийная инфекция и случная болезнь лошадей. Согласно классификации МЭБ, одна болезнь, чума, относится к списку А, 31 болезнь – к списку В. Среди крупного рогатого скота за анализируемый период выявлено 21 73 (37,5 %) инфекционное заболевание, у свиней – 15 (26,7 %), лошадей – 4 (7,1 %), мелкого рогатого скота – 1 (1,7 %), птицы – 4 (7,1 %), у прочих видов животных – 9 (16 %). В эпизоотический процесс по отдельным инфекционным заболеваниям были вовлечены несколько видов животных. Так, например, колибактериоз регистрировался среди крупного рогатого скота, свиней, птицы и прочих видов животных; лептоспироз – среди собак, крупного рогатого скота, свиней и прочих видов животных; пастереллез – среди крупного рогатого скота, свиней и прочих видов животных; псевдомоноз – среди крупного рогатого скота, свиней и прочих видов животных; сальмонеллез – среди крупного рогатого скота, свиней, птицы и прочих видов животных; стафилококкоз выявлен у свиней, крупного и мелкого рогатого скота, а также прочих видов животных; стрептококкоз был у крупного рогатого скота, свиней, птицы и прочих видов животных; злокачественный отек – у лошадей, крупного рогатого скота и свиней; бруцеллез – среди крупного и мелкого рогатого скота, лошадей; листериоз – среди крупного рогатого скота, свиней. По одному виду животных заболело туберкулезом, эмфизематозным карбункулом, дизентерией. аспергиллезом, трихофитией, лейкозом и другими инфекциями. По характеру клинической симптоматики инфекционные болезни животных в области имели в анализируемом периоде свои особенности. Так, например, у крупного рогатого скота особенности клинической симптоматики проявлялись следующим образом: острые инфекционные болезни, сопровождающиеся лихорадкой и появлением отечных опухолей, были представлены эмфизематозным карбункулом, злокачественным отеком, отечной формой пастереллеза; болезни септического характера, сопровождающиеся воспалением слизистой оболочки ротовой полости, – чумой и вирусной диареей; болезни, сопровожда74 Таблица 1 Нозоформы инфекционных болезней сельскохозяйственных животных, регистрируемых в Иркутской области Год № Болезнь Всего п/п 2000 2001 2002 2003 2004 1 2 3 4 5 6 7 8 1 Дизентерия свиней 11 3 5 1 20 отек 2 Злокачественный 1 1 лошадей Колибактериоз 3 крупного рогатого 110 38 29 44 52 273 скота 4 Колибактериоз свиней 23 5 14 5 6 53 5 Колибактериоз птиц 31 18 24 216 289 прочих 6 Колибактериоз 2 2 5 9 видов животных 7 Лептоспироз собак 1 3 4 Листериоз крупного 8 рогатого скота 10 1 1 1 13 9 Листериоз свиней 23 8 6 23 7 67 Некробактериоз круп10 ного рогатого скота 4 2 2 3 11 крупного 11 Пастереллез 32 7 8 8 2 57 рогатого скота 12 Пастереллез свиней 38 19 11 14 2 84 Пастереллез прочих 13 видов животных 2 1 1 3 5 12 крупного 14 Псевдомоноз 6 13 11 5 26 61 рогатого скота 15 Псевдомоноз свиней 5 10 3 18 прочих 16 Псевдомоноз 13 6 6 11 10 46 видов животных 17 Пуллороз птиц 3 22 14 11 3 53 18 Рожа свиней 36 15 8 9 4 72 крупного 111 19 Сальмонеллез 52 40 39 12 254 рогатого скота 20 Сальмонеллез свиней 51 21 36 21 20 149 75 Продолжение табл. 1 1 21 22 23 24 25 26 27 28 29 30 31 32 33 34 35 36 37 38 39 2 3 4 Сальмонеллез птиц 16 15 Стафилококкоз крупно- 97 31 го рогатого скота Стафилококкоз свиней 9 1 Стафилококкоз живот70 121 ных прочих видов Стрептококкоз крупно83 121 го рогатого скота Стрептококкоз свиней 11 10 Стрептококкоз птиц 2 59 Стрептококкоз живот15 9 ных прочих видов Туберкулез крупного рогатого скота Эмфизематозный кар9 бункул Прочие бактериальные заболевания крупного рогатого скота Аспергиллез свиней 1 Трихофития Злокачественный отек крупного 2 рогатого скота Вирусная диарея круп4 11 ного рогатого скота Инфекционный ринотрахеит крупного рога55 64 того скота Коронавирусная инфекция крупного рогатого 3 2 скота Лейкоз крупного рогатого скота, всего в т. ч. 18480 17843 по РИД 17230 17283 по гематологии 1223 538 по гистологии 27 22 Парвовирусная инфекция свиней 76 5 1 6 1 7 50 8 83 28 15 42 213 4 3 11 28 146 200 188 725 133 103 105 545 17 24 6 7 11 - 55 92 50 30 22 126 1 5 9 15 4 2 4 19 29 74 53 156 2 1 7 8 - 11 8 - - - 2 11 8 17 51 135 9 29 292 3 3 1 12 12451 11213 11798 71785 11973 10509 11274 68269 464 693 507 3425 14 11 17 91 1 - - 1 Окончание табл. 1 1 40 41 42 43 44 45 46 47 48 49 50 51 52 53 54 55 56 57 58 59 2 3 4 5 6 7 8 Ротавирусная инфекция крупного 8 18 25 15 34 100 рогатого скота Ротавирусная инфекция 2 49 51 свиней Чума плотоядных 2 3 2 1 8 (собаки) Злокачественный отек 2 2 свиней Бруцеллез крупного 55 9 6 4 5 79 рогатого скота Лептоспироз крупного 2694 3155 1879 2170 2270 12168 рогатого скота Лептоспироз свиней 677 828 519 528 815 3367 Лептоспироз животных 56 62 54 85 39 296 прочих видов Инфекционная анемия 3 2 4 10 19 Хламидийные 5 6 1 12 инфекции Случная болезнь 159 12 9 48 143 371 лошадей Бруцеллез мелкого 4 3 6 4 17 рогатого скота Пневмококкоз (диплококкоз) крупного 77 77 рогатого скота Пневмококкоз свиней 9 9 Стафилококкоз мелкого 2 2 рогатого скота Ринопневмония 2 2 лошадей Бруцеллез лошадей 4 4 Сальмонеллез живот4 4 ных прочих видов Геморрагическая 3 15 18 болезнь кроликов Вирусный трансмиссивный гастроэнтерит 4 8 12 свиней 77 ющиеся желтухой, гемоглобинурией, – лептоспирозом; болезни, вызывающие изменения в легких, – туберкулезом, пастереллезом, пневмококкозом; хронические болезни, протекающие с явлениями абортов, – бруцеллезом; болезни, характеризующиеся некротическими поражениями кожи и подлежащих тканей, – некробактериозом, а характеризующиеся нарушением нормального кроветворения – лейкозом; болезни, характеризующиеся поражением центральной нервной системы и септическими явлениями, – листериозом; инфекционные болезни телят с нарушением пищеварения и органов дыхания, – колибактериозом, сальмонеллезом, диплококковой инфекцией, вирусной диареей. У свиней особенность клинической симптоматики была следующей: болезни, характеризующиеся лихорадкой, сопровождающиеся расстройствами желудочно-кишечного тракта и появлением красных пятен на коже, представлены рожей, пастереллезом; болезни, характеризующиеся возбуждением нервной системы с последующими явлениями параличей, – листериозом; болезни, протекающие с явлениями абортов, – лептоспирозом. Основными инфекционными болезнями молодняка свиней были сальмонеллез, колибактериоз, стафилококкоз, стрептококкоз, дизентерия, пневмококкоз, псевдомоноз, вирусный гастроэнтерит, парвовирусная и ротавирусная инфекции. У лошадей, мелкого рогатого скота, птицы и кроликов регистрировались злокачественный отек, пуллороз, стрептококкоз, случная болезнь, бруцеллез, ринопневмония и геморрагическая болезнь. Согласно общепринятой классификации инфекционных болезней по механизму передачи, распределение по источнику возбудителя регистрируемых инфекций бактериальной, вирусной, грибковой и хламидийной этиологии в области выглядело следующим образом. По передаче через 78 пищеварительный тракт (алиментарно) регистрировались ктенонозы, из которых зоонозы из бактериозов представлены колибактериозами, диплококковой инфекцией, дизентерией свиней; зооантропонозы – бруцеллезом и сальмонеллезом. Из ктенотерионозов к зоонозам относится эмфизематозный карбункул, а к зооантропонозам – сибирская язва, лептоспироз, листериоз и рожа свиней. Из ктенонозов зоонозами являются такие вирозы, как вирусная диарея крупного рогатого скота, вирусный гастроэнтерит свиней. По передаче через дыхательные пути (респираторно) регистрировались по источнику возбудителя ктенонозы, из которых зоонозы были представлены бактериозом – псевдомонозом крупного рогатого скота и свиней, терионозы – туберкулезом, ктенотерионозы – пастереллезом крупного рогатого скота и свиней. К зоонозам из ктенотерионозов относится вироз – чума плотоядных. К ктенонозам – инфекционный ринотрахеит крупного рогатого скота. Из микозов – аспергиллез. Из болезней, передающихся переносчиками трансмиссивно, регистрировались по источнику возбудителя ктенонозы, из которых зоонозы были представлены вирозом – инфекционной анемией лошадей. К болезням, передающимся через наружные покровы, регистрировались по источнику возбудителя ктенотерионозы, из них бактериоз – некробактериоз. Из микозов ктенозы были представлены зооантропонозом – стригущим лишаем. По механизму передачи лейкоз крупного рогатого скота в естественных условиях имеет пренатальный и постнатальный способ, где источником являются больные животные, что, возможно, имеет место среди положительно реагирующего крупного рогатого скота в области. По видам скота основной удельный вес заболеваемости инфекционными заболеваниями приходится на крупный рогатый скот и свиней, так как производство сельскохозяйственной продукции в области в основном держится на скотоводстве и свиноводстве. 79 Из регистрируемых за анализируемый период в области инфекционных болезней к эпизоотически опасным можно отнести 5 из 21 у крупного рогатого скота: листериоз, туберкулез, бруцеллез, лептоспироз, лейкоз; у свиней – 4 из 15: листериоз, рожа, сальмонеллез, лептоспироз; у лошадей – 1 из 4: бруцеллез; у мелкого рогатого скота – 1: бруцеллез. Из вирозов, отмечавшихся в анализируемом периоде на территории области, наибольшее эпизоотологическое значение имели чума плотоядных, инфекционная анемия и случная болезнь лошадей, геморрагическая болезнь кроликов, а также хламидийные инфекции. В настоящее время в отдельных районах области имеет место ежегодное выявление животных, положительно реагирующих на бруцеллез по серологическим реакциям, без проявления клиники (аборта). Также имеют место случаи выявления положительных аллергических реакций на туберкулин у крупного рогатого скота, иногда с бактериологическим подтверждением на туберкулез. Лептоспироз имеет место на уровне широкой инфицированности. Также выявляются сальмонеллоносительство и листерионосительство, сезонное проявление пастереллеза. Плановые серологические исследования в отдельных хозяйствах выявляют инфекционную анемию и случную болезнь. Лейкоз у крупного рогатого скота в анализируемом периоде ежегодно регистрировался серологическими, гематологическими и гистологическими методами. Динамика количественного показателя падежа животных за 5 лет в области от инфекционных заболеваний бактериальной, вирусной и прочей этиологии выглядела следующим образом. За анализируемый период пало 4257 животных, при этом от болезней бактериальной этиологии – 2587 голов (60,7 %), вирусной – 521 (12,2 %) и прочей – 149 (26,9 %). Всего в области за 5 лет пало от факторных и 80 классических бактериальных инфекций крупного рогатого скота 1794 головы, свиней – 793, при этом серологической диагностикой на бруцеллез и лептоспироз выявлены соответственно 100 и 16338 больных у крупного рогатого скота, свиней и других видов животных. Основной удельный вес и общее число павших животных от инфекций у крупного рогатого скота за весь период анализа приходится на 5 нозоформ так называемых факторных инфекций: колибактериоза – 273 головы (15,9 %), сальмонеллеза – 254 (14,8%), стафилококкоза – 213 (12,4 %), стрептококкоза – 545 (31,7%) и прочих бактериальных болезней – 175 голов (10,2%). Наиболее неблагополучным по числу павших был 2000 г., когда потери составили 560 животных, в 2001 г. наблюдается двукратное уменьшение этих потерь, т.е. они составили 265 голов. Начиная с 2002 г. отмечается тенденция к росту падежа животных: в 2002 г. – 286 голов, в 2003 г. – 296 и в 2004 г. – 308 голов. В структуре заболеваемости по видам инфекций, характеризующихся нарушением работы органов пищеварения и органов дыхания у крупного рогатого скота (новорожденных и молодняка), наибольший удельный вес приходился на колибактериоз (110 - 19,6 %), сальмонеллез (111-19,8), стафилококкоз (97 – 17,3), стрептококкоз (83 – 14,8) и прочие бактериальные болезни (19 - 3,3 %). В 2001 г. из общего числа павших животных на стрептококкоз приходится 121 голова (45,6 %), на сальмонеллез – 52 (19,6%), на колибактериоз – 38 (14,3%) и на стафилококкоз – 31 голова (11,6%). В 2002 г. на стрептококкоз приходилось 133 головы (46,5%), на колибактериоз – 29 (10,1%), на сальмонеллез – 40 (13,9%), на стафилококкоз – 28 (9,7 %), на прочие бактериальные болезни – 29 голов (10,1%). В 2003 г. приходится на стрептококкоз 103 головы (34,7%), на колибактериоз – 44 (14,8%), на сальмонеллез – 39 (13,1%), на стафилококкоз – 15 (5%) 81 и на прочие бактериальные болезни – 74 головы (25%). В 2004 г. на стрептококкоз – 105 голов (34%), на колибактериоз – 52 (16,8%), на псевдомоноз – 26 (8,4%), на сальмонеллез – 12 (3,8%), на стафилококкоз – 42 (13,6%) и на прочие бактериальные болезни – 53 головы (17,2%). Также следует отметить, что и при серологической диагностике регистрировались положительные реакции на бруцеллез и лептоспироз. За 5 лет бруцеллез регистрировался в РИД в 79 случаях, из них в 2000 г. 55, в 2001 г. – 9, в 2002 г. – 6, в 2003 г. – 4 и в 2004 г. – 5. Лептоспироз регистрировался серологической реакцией РМА в 12675 случаях, из них в 2000 г. – 2694, в 2001 г. – 3155, в 2002 г. – 1879, в 2003 г. – 2177 и в 2004 г. – 2770. В 2004 г., после спада в 2002 и 2003 гг., наблюдается увеличение числа серопозитивных животных. Таким образом, из всех регистрируемых инфекционных заболеваний у крупного рогатого скота наибольший удельный вес имели 4 факторные инфекции (74,8%), которые нанесли за последние 5 лет скотоводству области ощутимый экономический ущерб. За анализируемый период не меньшую эпизоотическую значимость имели и вирусные инфекции, регистрируемые у крупного рогатого скота в области (табл. 2). Так, например, от них за 5 лет пало 455 животных, из которых по годам: в 2000 г. – 70 (15,3%), в 2001 г. – 95 (20,8%), в 2002 г. – 174 (38,2%), более благоприятным был 2003 г., когда пало всего 35 голов (7,6%) и 2004 г. (пало всего 8 голов – 17,8%). По видам вирусных инфекций наибольший удельный вес в проявлении имели инфекционный ринотрахеит – 292 головы (64,1%), затем ротавирусная инфекция – 100 (21,9%), вирусная диарея – 51 (11,2%) и коронавирусная инфекция – 12 голов (2,6%). 82 Таблица 2 Вирусные болезни крупного рогатого скота, регистрируемые в Иркутской области, гол./% № Болезнь п/п 1 Вирусная диарея крупного рогатого скота 2 Инфекционный ринотрахеит крупного рогатого скота 3 Коронавирусная инфекция 4 Лейкоз крупного рогатого скота в т.ч. по РИД по гематологии по гистологии 5 Ротавирусная инфекция крупного рогатого скота Всего 2000 2001 Год 2002 2003 4/5,7 11/11,5 11/6,3 8/22,8 17/20,9 51/11,2 55/78,5 64/67,3 135/77,5 9/25,7 29/35,8 292/64,1 13/4,2 2/2,1 3/1,7 3/8,5 18480 17230 1223 27 17843 17283 538 22 8/11,4 2004 Итого 1/1,2 12/2,6 12451 11973 464 14 11798 11274 507 17 71785 68269 3425 91 18/18,5 25/14,3 15/42,8 34/4,9 100/21,9 81/17,8 455 70/15,3 95/20,8 174/38,0 35/7,8 В свиноводстве области за 5 лет (табл. 3) от инфекционных заболеваний бактериальной этиологии пало 793 головы, в т. ч. в 2000 г. – 195 (24,6%), в 2001 г. – 108 (13,6%), в 2002 г. – 115 (14,5%), в 2003 г. – 101 (12,7%) и в 2004 г. – 274 головы (34,6 %). По видам инфекций за анализируемый период наибольший удельный вес имели 5 факторных инфекций: колибактериоз – 289 голов (36,4%), сальмонеллез – 149 (18,7%), пастереллез – 84 (10,5%), рожа – 72 (9,0%) и листериоз – 67 голов (8,4%). Не меньшее распространение имел лептоспироз свиней, регистрируемый в РМА. Так, напри83 мер, из 3367 инфицированных животных за 5 лет в 2000 г. выявлено 677 (19,8%), в 2001 г. – 828 (24,5%), в 2002 г. – 519 (15,4%), в 2003 г. – 528 (15,6%) и в 2004 г. – 815 (24,2%). Данные серологических исследований свидетельствуют о широкой инфицированности свиней лептоспирозом. Анализ по видам инфекций у свиней, в разрезе лет данного периода, показал следующее. В 2000 г. заметный удельный вес имели: листериоз – 23 головы (11,7%), пастереллез – 38 (19,4%), рожа – 36 (18,4%), сальмонеллез – 51 (26,1%); в 2001 г. колибактериоз – 31 голова (28,7%), пастереллез – 19 (17,5%), рожа – 15 (13,8%), сальмонеллез – 21 (19,4%), листериоз – 8 (7,4%) и стрептококкоз – 10 (9,2%); в 2002 г. наибольший удельный вес имели: колибактериоз – 18 голов (15,6 %), листериоз – 6 (5,2%), пастереллез – 11 (9,5%), псевдомоноз – 10 (8,6%), рожа – 8 (6,9%), сальмонеллез – 36 (31,3%), стрептококкоз – 17 (14,7%); в 2003 г.: колибактериоз – 24 (23,7%), листериоз – 23 (22,7%), пастереллез – 14 (13,8%), рожа – 9 (8,9%), сальмонеллез – 21 (20,7%) и в 2004 г. к таким болезням относились: колибактериоз – 216 (78,8%), листериоз – 7 (2,5%), рожа – 4 (1,4%), сальмонеллез – 20 (7,2%). Из вирусных инфекций за 5 лет у свиней наиболее ярко были выражены: ротавирусная инфекция – 51 голова (79,6%) и вирусный трансмиссивный гастроэнтерит – 12 голов (19,8%). Таким образом, при анализе эпизоотической ситуации в свиноводстве области за 5 лет выявляется доминирующая роль факторных инфекций: колибактериоза, сальмонеллеза, рожи, листериоза и пастереллеза, которые формируют и создают напряженную эпизоотическую обстановку с большими экономическими потерями. В скотоводстве помимо колибактериоза и сальмонеллеза серьезную эпизоотическую обстановку создавали стафило- и стрептокок84 Таблица 3 Инфекционные болезни свиней бактериальной этиологии за 5 лет, гол/% № п/п 1 2 3 4 5 6 7 8 9 10 11 Болезнь Дизентерия Колибактериоз Листериоз Пастереллез Псевдомоноз Рожа Сальмонеллез Стафилококкоз Стрептококкоз Лептоспироз Пневмококкоз Итого 2000 11/5,6 2001 3/2,7 Год 2002 5/4,3 - 31/28,7 18/15,6 2003 1/0,9 2004 - Итого 20/2,5 24/23,7 216/78,8 289/36,4 23/11,7 8/7,4 6/5,2 23/22,7 7/2,5 67/8,4 38/19,4 19/17,5 11/9,5 14/13,8 2/0,7 84/10,5 5/2,5 - 10/8,6 - 3/1,0 18/2,2 36/18,4 15/13,8 8/6,9 9/8,9 4/1,4 72/9,0 51/26,1 21/19,4 36/31,3 21/20,7 20/7,2 149/18,7 9/4,6 1/0,9 4/3,4 3/ 11/4,0 28/3,5 11/5,6 10/9,2 7/14,7 6/ 11/4,0 55/6,9 677/19,8 828/24,5 519/15,4 528/15,6 15/24,2 3367/ 9/4,6 - - - - 1952/24,5 108/13,6 115/14,5 101/12,7 274/34,5 9/1,1 793/ козы. Вышеописанные и проявляемые инфекции у животных в области относятся к так называемым управляемым инфекциям, которые при эффективном проведении плановых профилактических мероприятий позволяют контролировать и снижать их интенсивность, предупреждать экономические потери. Библиографический список 1. Джупина С. И. Методы эпизоотического исследования и теория эпизоотического процесса.– Новосибирск: Наука. Сиб. отдние, 1991. – 142 с. 2. Гуславский И.И. О динамике эпизоотического процесса / И.И. Гуславский, В.В. Фабер // Сб. науч. тр. СО ВАСХНИЛ. – Новосибирск, 1986. – С.22-34. 85 УДК 619:579:639.3(571.54) Е.Д. Дугаржапова, В.Ц. Цыдыпов, О.А. Зверева, М.-Ж.Ц. Цыбиков Бурятская ГСХА им. В.Р.Филиппова, РГУ В БРНПВЛ УРОВЕНЬ ЦИРКУЛЯЦИИ ПАТОГЕННЫХ И УСЛОВНО-ПАТОГЕННЫХ МИКРООРГАНИЗМОВ В ПРОМЫСЛОВОЙ РЫБЕ РЕСПУБЛИКИ БУРЯТИЯ Из различных органов промысловой рыбы выявлено бактерионосительство следующих видов патогенных и условно-патогенных микроорганизмов: Aeromonas hydrophila, Aeromonas, Ps. fluorescens, Acinetobacter, E. coli, Morganella morganii, St. aureus, B. mucoides, Serratia plymuthica, Alcaligenes, Kurthia, Micrococcus roseus agilis, Janthinobacterium lividum, Cardiobacterium, Flavobacterium. The following microbes are revealed from various organs of fish: Aeromonas hydrophila, Aeromonas, Ps. fluorescens, Acinetobacter, E.coli, Morganella morganii, St.aureus, B. mucoides, Serratia plymuthica, Alcaligenes, Kurthia, Micrococcus roseus agilis, Janthinobacterium lividum, Cardiobacterium, Flavobacterium. A large amount of microbes are isolated from the intestine-30 spesies of microbes, from liver-27, from heart-13, from spleen-14, from gall-bladder-1. Регион оз. Байкала длительное время оставался благополучным по инфекционным заболеваниям рыб. Изменчивость микроорганизмов, увеличение транспортных потоков, глобальное изменение климата и промысел рыбы сетеснастями, использовавшимися на других водоемах, привели к широкому распространению инфекционных заболеваний рыб в Республике Бурятия. Все это говорит об эволюции инфекционных болезней, связанной с изменениями экологических условий водной среды оз. Байкала. Все 86 вышесказанное требует систематического и постоянного проведения мониторинга водной среды и её обитателей [1]. Первые случаи болезни отмечены в 1992 г. в Чивыркуйском заливе, сопровождаемые гибелью окуней. Тогда был поставлен диагноз псевдомоноз. В 1994 г. в Братском водохранилище произошла крупная вспышка аэромоноза, приведшая к массовой гибели окуней. В дальнейшем аэромоноз регистрируется в 1996 г. в оз. Иркана Северобайкальского района Бурятии, в озерах Еравно-Харгинской системы: Большая Еравна и Сосновское в 2002-2004 гг. На оз. Котокельском Прибайкальского района в 2008 г. был первый случай регистрации гаффской болезни в Республике Бурятия. И вновь в Еравнинском районе с большой экономической потерей аэромоноз проявился в оз. Исинга в 2007 г. [2]. Поэтому возникает необходимость разработки рекомендаций по профилактике и диагностике заболеваний рыб через организацию проведения микробиологического мониторинга. Выявление уровня циркуляции патогенных, условнопатогенных микроорганизмов в форме бактерионосительства в межэпизоотические периоды имеет ценное диагностическое значение в прогнозировании и определении эпизоотической ситуации в Республике Бурятия. Материал для исследования взят в 2010 г. в Еравнинском (оз. Исинга), Прибайкальском (оз. Котокельское), Баргузинском (р. Баргузин), Кабанском (р. Селенга, Большая Речка) районах Республики Бурятия. Было отобрано 194 пробы материала (содержимое кишечника, печень, сердце, селезенка, желчный пузырь) от 46 рыб (сазан, карась, плотва, окунь, лещ). Изучение морфологических, культуральных, биохимических свойств выделенных микроорганизмов проводили методами общей микробиологии. 87 Идентификацию выделенных культур проводили по определителю бактерий Берджи (1997), по Cowan and Steel (1974), определителю нетривиальных патогенных грамотрицательных бактерий (1999). Выявленный уровень циркуляции патогенных и условно-патогенных микроорганизмов в организме промысловой рыбы показан в табл. 1. Таблица 1 Уровень циркуляции патогенных и условно-патогенных микроорганизмов у промысловой рыбы (2010 г.) Место промысла Озера Исинга Котокельское Реки Баргузин Большая Речка Селенга Итого Сезон Исследовано рыбы Выделено культур % Весна Весна 15 8 29 12 34 14 Лето Осень Осень 6 13 4 46 10 27 7 85 12 32 8 100 Из данных табл. 1 видно, что в 2010 г. в летний период из исследованных 15 рыб оз. Исинга Еравнинского района выделено из органов 29 микробных культур, что составило 34 %, в то же время за этот период из оз. Котокельского Прибайкальского района от 8 экземпляров рыб выделено 12 микробных культур, что составило 14 %. Также в летний период из р. Баргузин Баргузинского района из исследованных 6 рыб выделено из органов 10 микробных культур, что составило 12 %. За осенний период от 13 экземпляров рыб из Большой Речки Кабанского района выделено 27 микробных культур, что составило 32 %, из р. Селенги от 4 рыб соответственно 7 культур (8%). В результате проведения микробиологических посевов рыбы выделены 85 культур. Источники выделения по органам представлены в табл. 2. 88 Таблица 2 Выделение микробных культур из органов рыб Место Желчный Сердце Печень Селезенка Кишечник промысла пузырь Озера Исинга 7 8 5 9 Котокельское 1 4 2 4 1 Реки Баргузин 1 3 3 3 Селенга 1 2 2 2 Большая Речка 3 10 2 12 Итого 13 27 14 30 1 Таким образом, анализируя полученные результаты, можно сделать вывод, что большинство бактериальных культур изолированы из кишечника (30 культур, что составляет 35 % от всех выделенных микробов), из печени соответственно – 27 (32%), из сердца – 13 (15 %), из селезенки –14 (16%), из желчного пузыря – 1 (1%). Микроскопическими, культуральными, биохимическими исследованиями на сегодняшний день типированы 40 культур (табл. 3). Таблица 3 Виды микроорганизмов, выделенных из органов рыб Шифр культуры 1 1,24 2 3 4,20 5 6,14,15 7 Орган, Микроорганизм вид рыбы 2 3 Оз. Исинга Еравнинского района Сердце, плотва Aeromonas, Ps. fluorescens Cелезенка, сазан E. coli Кишечник, плотва Serratia plymuthica Печень, плотва St. aureus, Alcaligenes Селезенка, плотва Aeromonas Печень, окунь Aeromonas, St. aureus Селезенка, окунь Aeromonas 89 1 8 9,21 10,11,22 12 30,33 31 32 34 35,36,37 38,39 40 41 42 44,47,48 45,50 46 54 56 61 Окончание табл. 3 2 3 Печень, карась Alcaligenes Сердце, карась Alcaligenes, St. aureus Кишечник, карась Ps. fluorescens, Alcaligenes Селезенка, карась Aeromonas Оз. Котокельское Прибайкальского района Кишечник, лещ Pseudomonas fluorescens Сердце, лещ Klebsiella pneumoniae Селезенка, лещ Alcaligenes Желчный пузырь, лещ Pseudomonas fluorescens Печень, лещ B. mucoides, Kurthia, Acinetobacter Micrococcus roseus agilis, Кишечник, окунь Ps. fluorescens Печень, окунь Aeromonas hydrophila Селезенка, окунь Janthinobacterium lividum Река Баргузин Баргузинского района Селезенка, сазан Morganella morganii Aeromonas hydrophila, Печень, сазан Morg. morganii Aeromonas hydrophila, Кишечник, сазан Acinetobacter Сердце, сазан Morganella morganii Большая Речка Кабанского района Печень Staphylococcus aureus Сердце Cardiobacterium Селезенка Flavobacterium Из различных органов промысловой рыбы выявлено бактерионосительство следующих видов патогенных и условно-патогенных микроорганизмов: Aeromonas hydrophila, Aeromonas, Ps. fluorescens, Acinetobacter, E. coli, Morganella morganii, St. aureus, B. mucoides, Serratia plymuthica, Alcaligenes, Kurthia, Micrococcus roseus agilis, Janthinobacterium lividum, Cardiobacterium, Flavobacterium. Большинство бактериальных культур изолированы из кишечника – 30 культур, из печени – 27, из сердца – 13, из селезенки – 14, из желчного пузыря – 1. 90 Библиографический список 1. Зверева О.А. Основы микробиологического мониторинга байкальского омуля и его среды обитания: дис. … канд. вет. наук. – УланУдэ, 2002. – 177 с. 2. Цыбиков М-Ж.Ц. Эколого-эпизоотологический и микробиологический мониторинг водоемов и рыб Еравно-Харгинской системы Республики Бурятия: дис. … канд. вет. наук. – Улан-Удэ, 2009. – 144 с. УДК 619:615 Р.В. Желанкин Московская государственная академия ветеринарной медицины и биотехнологии им. К.И. Скрябина РЕПТИЛИИ КАК ИСТОЧНИК ВОЗБУДИТЕЛЕЙ ЗООАНТРОПОНОЗНЫХ БОЛЕЗНЕЙ Исследование болезней рептилий и их лечение приобретают всё более существенное значение для России, поскольку во многих городах нашей страны зоопарки расширяют видовое разнообразие содержащихся там пресмыкающихся и земноводных, а также создаются многочисленные частные террариумные коллекции [1]. По неофициальным данным [2-4], в Москве у частных владельцев содержится около 300 тыс. черепах. Кроме того, более 10 тыс. особей различных видов рептилий постоянно находятся в ассортименте зоомагазинов, а в зооторговые фирмы поступает ежемесячно более 100 тыс. рептилий. В зоомагазинах Москвы содержится более 50 видов рептилий, из которых около 11 видов черепах, 2 вида крокодилов, 20 – ящериц, 17 – змей. 91 В среднем одна торговая точка Москвы (зоомагазин) за год продает в частные руки 90 черепах, из которых 60 – красноухие черепахи (Trachemys scripta), 6 крокодилов, 480 ящериц, из которых 120 – зеленые игуаны (Iguana iguana), 300 змей, из которых 90 – маисовые полозы (Elaphe guttata). На Московском Птичьем рынке ежегодно продается до 5000 молодых крокодилов. К сожалению, привести точные данные о количестве ввозимых в нашу страну зеленых игуан не представляется возможным, но приблизительный анализ рынка рептилий позволяет предположить, что не менее 10-15 тыс. молодых игуан ежегодно попадает в руки отечественных любителей, минуя зоомагазины. Среди зооантропонозных болезней, переносчиками возбудителей которых являются рептилии, необходимо отметить сальмонеллез (12-85% зараженных домашних рептилий – носители), туберкулёз (0,1-0,5% случаев), хламидиоз (20% от всех инфекционно-больных рептилий), клещевой боррелиоз (в США 54% зараженных ящериц), лептоспироз, листериоз, пастереллез, стрептококкоз, дерматомикозы. У водных рептилий, наравне с сальмонеллоносительством, нередко наблюдается аэромоноз (6-8% случаев у черепах и 70% зараженных крокодилов). У сухопутных рептилий абсцессы часто бывают вызваны синегнойной палочкой и протеем (47% больных рептилий). Болезни бактериальной этиологии широко распространены у рептилий, содержащихся в зоопарках России, и составляют около 36% от всех болезней, вызвавших гибель животных. В изолятах от трупов рептилий наиболее часто выделяют Pseudomonas aeruginosa (в 47% изолятов в группе змеи/ящерицы), Pseudomonas fluorescens и Pseudomonas putida, Streptococcus maltophila, Citrobacter freundii, Escherichia coli, Proteus vulgaris. 92 По данным Д.Б. Васильева [5], на основании многолетних бактериологических исследований, проведённых на базе Московского зоопарка, в изолятах, взятых от ящериц, в 77,3% обнаруживались грамотрицательные микроорганизмы, в 20,8 – грамположительные, в 1,9% случаев изолировались грибы. Практически все выделенные от больных и павших рептилий микроорганизмы были чувствительны к энрофлоксацину, около 50% выделенных штаммов бактерий оказались чувствительны также к амикацину и имипенему. В России не менее 45% рептилий, содержащихся в неволе, не только являются сальмонеллоносителями, но и болеют сальмонеллезом [6]. Это связано с тем, что в условиях неволи происходит колонизация кожи и ротовой полости рептилий кишечной микрофлорой, а также смена состава доминирующих видов бактерий на резистентных к большему количеству антибиотиков. Основные сероварианты сальмонелл, выделяемые от рептилий и опасные для животных и человека, – Salmonella choleraesuis, S. enteritidis, S. arizonae. Выделяют и другие сероварианты сальмонелл [2]. Американскими учеными еще в 1968 г. был оценен риск заражения сальмонеллезом людей от содержащихся в доме черепах. Оказалось, что такой опасности подвергаются 2% взрослых и 6% детей. Но в реальности эта цифра может быть выше, особенно если речь идет о водных черепахах. У детей и иммунодепрессивных взрослых риск получения инфекции от рептилий увеличивается вдвое, к тому же возрастает вероятность тяжелых форм инфекции (менингитов, абсцессов мозга). При дальнейших исследованиях было установлено, что из 2 млн случаев сальмонеллёза у людей, ежегодно регистрируемых в США, около 300 тыс. были не93 посредственно связаны с содержанием черепах в доме [4]. Была доказана возможность циркуляции сальмонелл в природных популяциях рептилий и передача инфекции овцам фекально-оральным путем, через зеленые корма [5]. Следовательно, многие черепахи, поступающие на зооторговый рынок России (как отловленные в природе, так и разведённые на фермах), могут являться потенциальными носителями сальмонелл. На кафедре микробиологии ФГОУ ВПО МГАВМиБ создан террариум, где содержатся разные виды рептилий и проводится эпизоотологический мониторинг инфекционных болезней данной группы животных, изучается микрофлора их организма, определяется антибиотикочувствительность выделенных бактерий, разрабатываются эффективные методы лечения. В этой области многое предстоит сделать, так как, несмотря на то, что герпетология является перспективной областью ветеринарной науки, на сегодняшнем этапе состояние изученности болезней рептилий и амфибий переживает описательно-экспериментальный период, а противоэпизоотические мероприятия ветеринарной службы России по отношению к объектам герпетологии практически не разработаны. Бесспорно, рептилии могут являться потенциальным источником возбудителей опасных инфекционных болезней человека и животных, поэтому ветеринарным службам необходимо усиливать контроль ввоза из-за границы и продажи рептилий внутри страны. Библиографический список 1. Ярофке Д. Рептилии. Болезни и лечение/ Д. Ярофке, Ю. Ланде. – М.: Аквариум, – 2003. 235 с. 2. Васильев Д.Б. Проблемы эмпирической и специфической анти94 микробной терапии рептилий в коллекциях зоопарков / Д.Б. Васильев, В.И. Карабак, В.С. Швед // Научные исследования в зоологических парках. – 2006. – № 20. – С. 64-72. 3. Дягилец Е.Ю. Бактериальная флора и ее роль в патогенезе основных симптомокомплексов у рептилий в неволе / Е.Ю. Дягилец, В.И. Карабак, Д.Б. Васильев // Материалы IX Междунар. вет. конгр. – М.: Ассоциация практикующих вет. врачей, 2001. – С. 121-123. 4. Васильев Д.Б. Черепахи. Болезни и лечение. – М.: Аквариум ЛТД, 1999. – 424 с. 5. Васильев Д.Б. Ветеринарная герпетология: ящерицы. – М.: Проект-Ф, 2005. – 480 с. 6. Скороходов В.А. Особенности применения антимикробных препаратов для лечения рептилий / В.А. Скороходов, Е.Ю. Дягилец, Д.Б. Васильев // Материалы IX Междунар. вет. конгр. – М.: Ассоциация практикующих вет. врачей, 2001. – С. 97. УДК 579.61 Е.А. Зайцева, Г.П. Сомов НИИ эпидемиологии и микробиологии СО РАМН БИОЛОГИЧЕСКИЕ СВОЙСТВА ШТАММОВ LISTERIA MONOCYTOGENES, ВЫДЕЛЕННЫХ НА ДАЛЬНЕМ ВОСТОКЕ РОССИИ Изучены биологические свойства штаммов L. monocytogenes, выделенных на территории Дальнего Востока России из разнообразных объектов окружающей среды. Наличие отдельных штаммов, имеющих некоторые атипичные свойства (отсутствие способности проявлять В-гемолитическую, лецитиназную активности, ферментировать отдельные углеводы, наличие подвижности при температуре 370С и др.), не меняет общего представления о возбудителе и показывает фенотипическую неоднородность L. monocytogenes. Листериоз – тяжелое инфекционное заболевание человека, вызванное грамположительной бактерией L. 95 monocytogenes. Эти бактерии широко распространены в окружающей среде и способны в зависимости от среды обитания вести как сапрофитный, так и паразитический образ жизни. Известно, что существование возбудителя в определенных экологических условиях влияет на его биологические свойства, которые могут отражаться на морфологии колоний бактерий, особенностях их роста, активности ряда ферментов, антигенной структуре и вирулентности возбудителя [1-3]. Однако, несмотря на достигнутые за последние годы успехи в изучении биологии и экологии возбудителя листериоза, различных этапов патогенеза, факторов патогенности, многие их свойства остаются нераскрытыми. На момент наших исследований не было сведений о биологических особенностях бактерий вида L. monocytogenes, обитающих в разных экологических условиях Дальневосточного региона. Особый интерес представлял вопрос о патогенных свойствах и вирулентном потенциале штаммов листерий, выделяемых на Дальнем Востоке Российской Федерации. Все вышесказанное определило направление исследований, предпринятых в данной работе. Исследовано 124 штамма L. monocytogenes, выделенных из разнообразных источников в Дальневосточном регионе. Микробиологические исследования проводились на средах с использованием методов, рекомендованных ГОСТ Р 51921-2002 и МУК 4.2.1122-02 для выявления листерий [45]. Эксперименты проводили на неинбредных мышах массой 14-18 г, выполняя все правила, предусмотренные приказом Министерства здравоохранения № 755 от 12.08.1977. Для сравнительного анализа все культуры листерий разделили на две группы: 1) из биотических объектов (n=65), куда отнесли изоляты, полученные от людей (n=26), органов грызунов (n=19) и морских гидробионтов (n=20); 96 2) из абиотических объектов (n=59) – изоляты листерий из объектов окружающей среды (пищевых продуктов (n=49), воды (n=3), почвы (n=1), наземных и морских растений (n=4), смывов с производственного оборудования n=2)). По морфологии среди культур листерий встречались чаще короткие, беспорядочно расположенные палочки и кокковидные формы, реже овоидные бактерии, которые окрашивались по Граму положительно, показывали при косо-проходящем освещении голубое или голубовато-зеленое свечение. Все изоляты L. monocytogenes были каталазоположительными и оксидазоотрицательными. Причем каталазная активность листерий была постоянным признаком на плотных и жидких питательных средах, в молодых и старых культурах. Большинство изолированных культур L. monocytogenes из биотических и абиотических объектов при 20-220С обладали подвижностью, а 7,4% культур, изолированных из клинического материала и от гидробионтов, были неподвижны как при комнатной температуре, так и при 370С. При исследовании гемолитических свойств листерий на кровяном агаре у 94,3±2,1% L. monocytogenes (n=117) отмечалась слабая зона b-гемолиза, у трех культур (2,4±0,4%), изолированных из клинического материала и органов грызунов, гемолиз на кровяном агаре отсутствовал, а 4 культуры (3,2±1,6%), изолированные из пищевых продуктов, показали на кровяном агаре d-гемолиз. При изучении биохимических свойств 100% культур L. monocytogenes первой группы разлагали до кислоты без газа эскулин, глюкозу, фруктозу, рамнозу, маннозу, мальтозу, лактозу, салицин и не ферментировали ксилозу, маннит, мочевину, дульцит, адонит, раффинозу, мелибиозу. Все культуры второй группы независимо от их происхождения сбраживали в первые сутки роста с образовани97 ем кислоты глюкозу, рамнозу, эскулин, фруктозу и не ферментировали ксилозу, маннит, адонит, раффинозу, мочевину. В отношении сроков и интенсивности ферментации мальтозы, салицина между культурами листерий, выделенных из абиотических объектов, установлены индивидуальные различия. По отношению к другим углеводам (галактозе, сахарозе, мелецитозе, арабинозе и крахмалу) листерии из двух групп показали вариабельные результаты (таблица). Мелибиозу разлагали до кислоты без газа три культуры (5,8±3,3%), выделенные из мясных и рыбных продуктов, а дульцит – одна культура (1,9%) L. monocytogenes, изолированная из воды р. Кневичи. Отмечено, что у большинства изучаемых культур листерий, изолированных в Дальневосточном регионе из биотических и абиотических объектов (у 85,2±4,5 и 88,4±4,5% культур соответственно) наблюдалась отрицательная реакция с метиловым красным и отсутствие образования ацетоина в реакции Фогес-Проскауэра (у 70,5±5,8 и 86,1±4,8% культур соответственно) на полужидком агаре (0,3%). Липазная активность определялась у всех изучаемых культур L. monocytogenes независимо от источника выделения, но отношение к твинам у листерий, изолированных в разных источниках, было вариабельным (кроме твина 60). Лецитиназная активность выявлялась у 83,6% изученных культур L. monocytogenes, и это свойство коррелировало с источником выделения. Лецитиназная активность наблюдалась у 100% культур L. monocytogenes, изолированных из клинического материала (мертворожденных плодов), и не отмечалась у части культур, изолированных из пищевых продуктов, из органов грызунов и морских гидробионтов. 98 Вариабельность биохимических свойств культур L. monocytogenes, изолированных на территории Дальнего Востока Углевод Мелецитоза Галактоза Сахароза Манноза Арабиноза Крахмал Глюкоза в реакции с метиловым красным Глюкоза в реакции ФогесПроскауэра Ферментирование углевода в зависимости от объекта выделения L. monocytogenes (% культур, M ± m) биотические абиотические достоверность (n=61) (n=51) различий, Р 91,8 ± 3,5 74,4 ± 6,7 < 0,05 91,8 ± 3,5 96,1 ± 2,7 > 0,05 67,9 ± 6,0 58,1 ± 7,5 > 0,05 100,0 96,1 ± 2,7 > 0,05 13,1 ± 4,3 52,9 ± 6,9 < 0,01 4,9 ± 2,8 11,6 ± 4,9 > 0,05 14,75 ± 4,5 11,6 ± 4,9 > 0,05 29,5 ± 5,8 13,9 ±5,3 < 0,05 Гиалуронидазная активность отмечалась у большинства (90,3 ± 2,6%) изученных культур листерий. Все исследуемые культуры L. monocytogenes, изолированные из клинического материала и органов грызунов, обладали гиалуронидазной активностью. Культуры листерий, у которых данная активность не определялась, были обнаружены только среди изолятов, выделенных из продуктов питания (мясных, куриных, рыбных) и морских гидробионтов. Кроме ферментативных свойств, в экспериментах in vivo изучали вирулентность культур L. monocytogenes на неинбредных мышах с вычислением LD50 и постановкой кератоконъюнктивальной пробы на морских свинках. По степени вирулентности для белых мышей культуры L. monocytogenes чрезвычайно неоднородны (LD50 колебалась в пределах 102 – 108 микробных клеток). Встречались листе99 риозные культуры как вирулентные, так и слабовирулентные независимо от источника выделения. Кроме того, часть изолятов L. monocytogenes вызывала развитие парезов или параличей у белых мышей, а у морских свинок развивался конъюнктивит, кератоконъюнктивит или кератит через 24 – 48 ч после внутриглазного заражения, протекавший с различной длительностью и выраженностью процесса (от 6 до 30 суток). Таким образом, анализ биологических свойств L. monocytogenes, изолированных в Дальневосточном регионе России из различных источников, показал, что подавляющее большинство культур обладали однотипными свойствами. Отмеченная вариабельность подвижности, биохимической и ферментативной активности, факторов патогенности показала фенотипическую неоднородность L. monocytogenes. В то же время полученные результаты исследования факторов патогенности у L. monocytogenes показывают их определенную диагностическую значимость и позволяют охарактеризовать эпидемическую опасность обнаруженных штаммов. Библиографический список 1. Сомов Г.П. Адаптация патогенных бактерий к абиотическим факторам окружающей среды / Г.П. Сомов, Л.С. Бузолева. Владивосток: Примор. полиграфкомбинат, 2004. – 168 с. 2. Сомов Г.П. Влияние низкой температуры на вирулентность некоторых патогенных бактерий / Г.П. Сомов, Т.Н. Варвашевич // Журн. микробиологии. – 1992. – № 4. – С. 62-66. 3. Сомов Г.П. Псевдотуберкулез / Г.П. Сомов, В.И. Покровский, Н.Н. Беседнова. – М.: Медицина, 1990. – 184 с. 4. ГОСТ Р 51921-2002. Продукты пищевые. Методы выделения и определения бактерий Listeria monocytogenes / Госстандарт России. – М., 2002. – 17 с. 5. Методические указания МУК 4.2.1122-02 «Организация контроля и методы выявления бактерий Listeria monocytogenes в пищевых продуктах» / Минздрав России. – М., 2002. – 31 с. 100 УДК 576.809.51 В.Н. Кисленко Новосибирский ГАУ ЭКОЛОГИЯ ПАТОГЕННЫХ МИКРООРГАНИЗМОВ Кратко изложены результаты изучения экологической валентности микобактерий туберкулеза и теоретическая интерпретация полученных результатов. The ecological valency of tuberculosis mycobacteria is studied. The nesults of the study are theoretically analised. Успех борьбы с заразными болезнями животных зависит от степени изученности закономерностей проявления эпизоотического процесса в конкретных социальных и природных условиях. Мозаичность и неоднородность природных условий, в которых протекает эпизоотический процесс, накладывает отпечаток на его проявление. Поэтому интенсивность проявления эпизоотии на конкретных территориях и в определенный отрезок времени чаще всего бывает неодинаковой. И это разнообразие временных и пространственно-географических показателей обусловлено комплексом экологических факторов, оказывающих влияние как на резистентность макроорганизма, так и на условия сохранения внеорганизменной части популяции возбудителя [1-5]. Углубление знаний в области законов эпизоотологии, касающихся механизмов передачи возбудителя, вторичных движущих сил эпизоотического процесса [6], позволит усовершенствовать практические меры борьбы с заразными болезнями. 101 Эпизоотология как наука характеризуется комплексным подходом в изучении явлений и интегрирует знания в том числе таких наук, как микробиология и экология. Многие проблемы эпизоотологии могут быть объективно оценены с использованием экологического подхода. По мнению ведущих ученых, природа и движущие силы эпизоотического процесса характеризуются экологией возбудителя болезни в организме хозяина и в объектах внешней среды [5, 7-9]. Экологический подход дает возможность учесть особенности путей передачи возбудителя, условия его сохранения и элиминации возбудителя в объектах внешней среды, что позволяет спланировать и эффективно проводить противоэпизоотические мероприятия. Изучение экологии патогенных микроорганизмов связано с привлечением категорий, методов и знаний из таких научных дисциплин, как эпизоотология, микробиология и паразитология. Из паразитологии требуется дать пояснения к основным понятиям: паразитизм, патогенность, условнопатогенные микроорганизмы, а также раскрыть структуру, функциональную организацию и механизмы устойчивости паразитарных систем. С микробиологией связаны вопросы изменчивости, популяционной гетерогенности, структуры и химического состава возбудителя. Эпизоотология необходима в плане анализа процессов циркуляции и сохранения возбудителей инфекционных заболеваний. Знания об экологии патогенных микроорганизмов накапливаются значительно медленней, чем по экологии животных или растений. Связано это с методическими затруднениями, с которыми сталкиваются микробиологи, изучающие экологию микроорганизмов (регистрация, количественный учет, популяционный анализ микроорганизмов). Высокая численность популяций, политипичность видов, экологическая пластичность, многообразие форм генети102 ческого обмена, высокая популяционная гетерогенность и изменчивость вызывают дополнительные трудности у ис следователей, изучающих экологию патогенных микроорганизмов. В задачу наших исследований входило изучение экологической валентности внеорганизменной (резервантной) части популяции возбудителя туберкулеза крупного рогатого скота в естественных условиях. При исследовании объектов окружающей среды, обсемененных патогенными микобактериями туберкулеза, нередко обнаруживались культуры микобактерий со сниженной вирулентностью и авирулентные. В связи с этим считаем уместным сослаться на мнение ряда известных ученых о том, что патогенность не является исключительным свойством определенного микроорганизма [10-13], а выражает и функцию макроорганизма, определяющую тот или иной патогенез инфекции. Факторами патогенности принято считать адгезию, ферменты, в том числе инвазивности, поверхностные структуры (капсулы), токсины. Адгезия широко проявляется патогенными микроорганизмами в объектах внешней среды [14,15]. Адгезивная активность некоторых бактерий и грибов может быть максимальной при низких температурах [16-18]. Ферменты инвазивности (гиалуронидаза, нейраминидаза, протеиназы) описаны у истинных сапрофитов, которые используют их для деполимеризации структур отмерших тканей в почве или воде [19, 20]. У почвенных бацилл сапрофитной группы mesentericus-subtilis выявлены ферменты гиалуронидаза, коагулаза, фибринолизин, считающиеся факторами патогенности [5]. На основании многочисленных фактов сделано заключение, что некоторые сапрофитные бактерии почвы могут при известных условиях паразитировать на растениях [21, 22]. 103 В природных средах токсины патогенных микроорганизмов могут выполнять функции антагонизма, сходные бактериоцинам. Показано, что энтеротоксин холерного вибриона оказывает ингибирующее действие на ряд бактерий [23]. Действие токсинов вне организма хозяина некоторые авторы связывают с ауторегуляторными процессами в популяции патогенных микроорганизмов и метаболистическими функциями [24-27]. Условно-патогенные микроорганизмы, которые признаны среди многих групп микробов, при не всегда известных условиях могут переходить к паразитическому существованию, становясь патогенными [28]. «Нет резкой границы между свободным и паразитическим образом жизни,... между патогенными и непатогенными паразитами», – так определил свой взгляд на характер взаимодействия между микроорганизмами и организмом хозяина Е.Н. Павловский [29]. Крупнейшие отечественные ученые [10, 30], высказавшие мнение об относительности паразитизма, об отсутствии резких границ между сапрофитизмом и паразитизмом, допускали наличие переходных форм между ними. Эти взгляды отвечают философскому представлению об условности и подвижности всех границ в природе, которые отражают только приблизительность наших умозрительных представлений о реальной действительности. С утверждением экологического подхода в паразитологии [29, 31-34] стало общепринятым положение, что критерием паразитизма того или иного вида должна служить среда его обитания. Однако вопрос о средах обитания паразитов остается до сих пор дискуссионным. О разных типах паразитизма и о том, что организм хозяина является лишь частью среды обитания для паразитов, писал В.Н. Беклемишев [34]. И.В. Давыдовский [10] при104 знавал в паразитизме и сапрофитизме лишь условные, а не видовые понятия, т.е. состояния, переходящие одно в другое в определенных условиях среды. Возможность обитания некоторых патогенных микроорганизмов во внешней среде признали многие отечественные эпизоотологи [35, 36] и ряд ученых из других областей науки [1, 9, 37]. С выделением особой группы патогенных микроорганизмов-сапронозов на основании известных в то время фактов по экологии ряда бактерий и грибов было признано, что внешняя среда может служить полноправной средой обитания ряда патогенных микроорганизмов [38]. Можно разделить точку зрения Ю. Одума [39], утверждающего, что новые концепции, принципы и подходы экологии сохраняют силу и по отношению к микроорганизмам. Поэтому узловые вопросы – динамика численности, структура и механизмы устойчивости популяции – должны занять соответствующее место и в популяционной экологии патогенных микроорганизмов. Принципиальное значение имеет также изучение механизмов адаптивной изменчивости возбудителей. На наш взгляд, заслуживают внимания результаты исследования некоторых ученых, свидетельствующие о том, что длительное и многократное пассирование патогенных и атипичных бактерий на животных и птице вследствие селекции или мутации ведет к изменению культуральноморфологических, тинкториальных, биохимических, антигенных, биологических и других свойств [28, 40, 41]. Проведенные нами исследования по выживаемости микобактерий туберкулеза птичьего вида в глубокой несменяемой подстилке показали, что этот возбудитель при определенных условиях сохраняет жизнеспособность до 10 лет. Условия исключали воздействие прямых солнечных лучей, 105 крайних значений рН, влияние высоких температур, антагонистическое воздействие широкого спектра микробных видов, значительное наличие влаги. Выделяясь с фекалиями больных туберкулезом уток, внеорганизменная часть микобактерий была представлена, видимо, не только высоковирулентными культурами, которые с годами медленно утрачивали вирулентность. Как показывают накопленные научные факты, во внешнюю среду попадают патогенные микроорганизмы резервантной группы с различным генотипом. В связи с этим возникает вопрос о механизме структурно-функциональных преобразований гостальной части популяции в резервантную при смене возбудителем среды обитания. В основе этого механизма лежит исходная гетерогенность каждой части возбудителя (генотипическая и фенотипическая разнокачественность особей). В новой среде обитания в такой гетерогенной популяции происходит, вероятно, селекция определенных клонов, наиболее адекватных данным условиям. Исходная гетерогенность популяции возбудителя – одно из необходимых и важнейших условий саморегуляции эпизоотического процесса [8]. Пространственная структура внеорганизменной части популяции возбудителя первично определяется теми же чертами экологии хозяина, определяющими места выделения возбудителя во внешнюю среду. Факторы этой среды элиминируют одни клоны и стимулируют сохранение (накопление) возбудителя в других экосистемах. Очевидно, под постоянным селективным действием условий среды происходит вторичная перестройка структуры внеорганизменной части популяции возбудителя. В исследованиях по изоляции микобактерий туберкулеза из глубокой несменяемой подстилки птиц, хранившейся 10 лет, было обнаружено изменение качественного соста106 ва внеорганизменной части популяции. С течением времени изолируемые культуры отличались пониженной вирулентностью, гетероморфизмом и диссоциацией. Факт многолетнего сохранения жизнеспособности микобактериями туберкулеза во внеорганизменной фазе позволяет по-новому оценивать роль объектов внешней среды, обсемененных микобактериями, и причины длительного неблагополучия по туберкулезу отдельных территорий. Накопление научных фактов о существовании и жизнедеятельности патогенных микроорганизмов во внешней среде привело к открытию сапронозов [38]. В понимании автора это такие инфекционные болезни, возбудители которых способны обитать в окружающей среде. Они, как считал автор, естественные и постоянные обитатели окружающей среды, т.е. свободноживущие виды. Об этом свидетельствуют работы многих ученых по конкретным видам патогенных и условно-патогенных бактерий, а также обзоры, посвященные видовому разнообразию этих микробов в открытых водоемах, грунтовых водах и в почве [42-45]. К ним относятся: листерии, сальмонеллы, шигеллы, кишечная палочка, клебсиеллы, микобактерии, йерсинии, легионеллы и возбудители ряда микозов. Список возбудителей этой группы пополняется новыми видами. Позднее сапронозы были названы случайными паразитами [46] и сапрозоонозами [47, 48]. Теория психрофильности патогенных бактерий позволила подвести материальную базу под решение проблемы размножения патогенных бактерий в окружающей среде [4, 5]. Сущность этой теории заключается в том, что патогенные бактерии, относящиеся к факультативным паразитам, способны размножаться в абиотических объектах окружающей среды при биологически низкой температуре (4-12°С) и сохранять при этом свою вирулентность, а при благоприятных условиях и повышать ее. 107 Невольно возникает мысль о параллели между теорией психрофильности патогенных бактерий Г.П. Сомова и научными воззрениями М. Петтенкофера. Последние работы в этом направлении, на наш взгляд, служат подтверждением «локалистической» теории [48-50]. Деятельность большинства ферментов, направляющих биохимические реакции обмена в период активной жизнедеятельности, возможна лишь в сравнительно узких температурных пределах, обычно от 0° до 50-60°С. Температурные пределы биологической активности микроорганизмов лимитированы структурой и свойствами белковых молекул и коэффициентом химических реакций, связанным с изменением физиологических механизмов в ответ на отклонения температуры [51-53]. При выведении из теплокровного организма, в котором температура поддерживается в пределах 37-39°С, бактерии попадают в окружающую среду (почву, водоемы), где температура значительно ниже и перепад ее может составлять до 30-35°С. Следовательно, ферменты, представленные только одной формой, не смогли бы осуществить катализ при таких изменениях диапазона температуры, и жизнь бактерий не могла бы продолжаться. У эктотермных организмов, куда относятся микроорганизмы, имеется не сколько форм ферментов, сходных по функции, но отличающихся молекулярной массой и приспособленностью к различным температурам. Синтез этих форм может кодироваться разными генными локусами, и тогда они называются изоферментами. Изоферменты, которые способны работать при различных температурах сред обитания, назвали «холодовыми» и «тепловыми» вариантами [54]. В другом случае один фермент в результате конформационных изменений может переходить из одной формы, приспособленной для работы в тепловых условиях, в другую, адаптированную 108 для работы в холодных условиях. Такие ферменты называют эвритермальными вариантами [54]. Компенсация температурных влияний может осуществляться за счет изменения концентрации фермента [55-58]. Рост микроорганизмов при той или иной температуре в значительной степени зависит от физико-химических условий среды, в которой они развиваются. Обнаружение патогенных бактерий (стафилококков, клостридий, возбудителя эризепилоида, сальмонелл, клебсиелл, шигелл, бацилл, микобактерий и др.) в почве, воде, иле, животных и растительных остатках позволяет проследить определенную закономерность: при понижении температуры ниже 20°С и при наличии достаточной влажности жизнеспособность перечисленных бактерий увеличивается многократно. По мнению ведущих ученых [5] вегетативные клетки, неспособные образовывать споры, цисты, бактероиды, не могут длительно (месяцами или даже годами) сохраняться при низкой температуре в окружающей среде без активного роста. Исследования роста патогенных бактерий при низких температурах были, чаще всего, проведены на лабораторных штаммах и в богатых питательными веществами средах, что не отражало условий пребывания бактерий в окружающей среде. Исследованиями кинетики роста ряда патогенных микроорганизмов установлено, что при низких (оптимальных) температурах в минимальных средах стационарная фаза роста длительная, и конечная концентрация микроорганизмов выше, чем при высокой (37°С) температуре [4, 59, 60]. За счет чего может происходить длительный рост бактерий при низкой температуре? Этому может служить изменение популяционного состава видов и их физиологи109 ческого состояния, снижение питательных потребностей бактерий и расширение круга потребляемых субстратов. Недостаток тепловой энергии, необходимой для конструктивного обмена, клетки способны компенсировать в опре деленных пределах температур за счет усиленного синтеза ферментов в системах, вырабатывающих энергию [52]. Библиографический список 1. Беляков В.Д. Эпидемический процесс (теория и метод изу чения). – Л., 1964.– 244 с. 2. Жизнь микробов в экстремальных условиях /пер. с англ.–М., 1981.– 520 с. 3. Литвин В.Ю. Факторы патогенности бактерий: функции в окружающей среде / В.Ю. Литвин, В.И. Пушкарева // ЖМЭИ. – 1994. – Прил. (авг.-сент.). – С. 83-87. 4. Сомов Г.П. Психрофильность патогенных бактерий / Г.П. Со мов, Т.Н. Варвашевич, Н.Ф. Тимченко. - Новосибирск, 1991. – 204 с. 5. Сомов Г.П. Сапрофитизм и паразитизм патогенных бактерий: экологические аспекты / Г.П. Сомов, В.Ю. Литвин; АН СССР, Сиб.отдние. – Новосибирск, 1988.-207 с. 6. Бакулов И.А. Законы и категории эпизоотологии // Вестн. Рос. акад. с.-х. наук.– 1994.– № 1.– С. 44-46. 7. Беляков В.Д. Патогенные бактерии, общие для человека и растений / В.Д. Беляков, В.Ю. Литвин, Е.Н. Емельяненко, В.И. Пушкарева // Патогенные бактерии в сообществах: сб. научн. тр. НИИЭМ им. Н.Ф. Гамалея.– М., 1994.– С. 11-23. 8. Беляков В.Д. Саморегуляция паразитарных систем: (молекулярно-генетические механизмы) / В.Д. Беляков и др. – Л., 1987. – 240 с. 9. Литвин В.Ю. Возбудители зоонозов и среды обитания. Экологические аспекты паразитизма // Научн. докл. высш. шк. Биол. науки.– 1976. – № 11. - С. 42-48. 10.Давыдовский И.В. Учение об инфекции (биологический аспект проблемы). – М., 1956. – 107 с. 11. Isenberg H.D. What is a pathogen? // Adv. Pathd. Anal and Clin. Proc. 11 th. Trienn. Worde congr.wordl Assoc. Soc. Pathol. – Ierusalem, 1981; Oxford, 1982. – Vol. 1. – P. 35-37. 12. Lewin RA. Symbiosis and parasitism: definitions and evaluations // Biol. Sci. – 1982. – Vol. 32. – № 4. – P. 254-260. 13. Wauters G. Aspects bacteriologiques nouveaux en pathologic 110 infectiuse / Wauters G. // Amr. biol. clin. – 1983. – Vol. 41, № 6. – P. 393-395. 14. Рубан Е.Л. Физиология и биохимия представителей рода Pseudomonas. – М., 1986. – 199 с. 15. Ganthier Y. Ladhesion des bacteries sur les surfaces / Y. Ganthier, P. Isoard // Ind. Alim. et Agr. – 1989. – Vol. 106, № 1-2. – P. 31-33. 16. Тимченко Н.Ф. Моделирование инициации псевдотубер кулезной инфекции / Н.Ф. Тимченко, B.C. Венедиктов, Т.Н. Павлова// Журн. микробиол. – 1988. – № 7. – С. 16-20. 17. Cornells G. Yersinia enterocolitica a primary model for bacterial invasiveness / G. Cornells, G. B. Laroche, G. Balligand, M.P. Sory // Rev. Infect. Diseases. – 1987. – Vol. 9, № 1. – P. 64-87. 18. Isberg R.R. Analysis of expression and thermoregulation of the Yersinia pseudotuberculosis in gene with hybrid proteins / R.R. Isberg, A. Swain, S. Falkow // Infect. and Immune.– 1989. – Vol. 59, № 8. – P. 2133-2138. 19. Езепчук Ю.B. Биомолекулярные основы патогенности бактерий. – М., 1977. – 215 с. 20. Езепчук Ю.В. Патогенность как функция биомолекул/ АМН СССР. – М., 1985. – 240 с. 21. Воронкевич К.В. Выживаемость фотопатогенных бактерий в природе. – М., 1974. – 270 с. 22. Dowson L. Plant diseases due to bacteria // Cambridge Univer. Press. – 1957. – P. 64. 23. Андрусенко И.Т. Действие энтеротоксина холерного внбриона на микроорганизмы /И.Т. Андрусенко, Н.А. Пастернак, Е.А. Ведьмина и др.// Журн. микробиол. – 1984. – № 10. – С. 52-55. 24. Михновская Н.Д. К вопросу о неспецифической токсичности некоторых представителей рода Pseudomonas / Н.Д. Михновская, И.И. Шевцова, Е.М. Рубан и др. // Микробиол. журн. – 1988. – Т. 50, №2. – С. 42-51. 25. Монастырская И.З. Возможная биологическая функция холерного и некоторых других бактериальных токсинов// Микробиол. журн. – 1988. – Т. 50, №5. – С. 83-86. 26. Jakubczak, I. Andziak et al. // Med. dosw. i microbiol. – 1988. – Vol. 40. – P. 124-129. 27. Dillon M.E. Stimulation of gronth and sporulation of Clostrid ium perfringens by its homologous enterotoxin / M.E. Dillon, R.G. Labbe // FEMS Miciobior. Lett. – 1989. – Vol. 59, № l, 2. – P. 221-224. 28. Кедровский В.И. Изменчивость микробов кислотоупорной группы / // Tp. Всемир. микробиол. съезда, 25-29 мая 1928 г. – Л., 1929. – С. 96-106. 29. Павловский Е.Н. Курс паразитологии человека. – М.: Л., 1934. – 592 с. 111 371 с. 30. Башенин В.А. Курс общей эпидемиологии. – М.: Л., 1936. – 419 с. 31. Догель А.Л. Курс общей паразитологии. – 2-е изд. – Л., 1947. – 32. Жданов В.М. Эволюция заразных болезней человека. – М.: 1964. – 375 с. 33. Филипченко А.А. Экологическая концепция паразитизма и самостоятельность паразитологии как научной дисциплины //Уч. зап. МГУ. – 1937. – Вып. 13(4). – С. 4-14. 34. Беклемишев В.Н. Биоценологическиё основы сравнительной паразитологии. – М., 1972. – 499 с. 35. Бакулов И.А. Развитие учения об эпизоотическом процессе в свете современных эпидемиологических воззрений / И.А. Бакулов, В.В. Макаров//Ветеринария. – 1986. – № 11, – С. 32-35. 36. Ганнушкин М.С. Курс эпизоотологии. – М., 1952.– 423 с. 37. Литвин В.Ю. Возбудители зоонозов и среды обитания. Роль разных сред обитания и статус в экосистеме // Биол. науки: научн. докл. высш. шк. – 1977. – № 2. – С. 50-59. 38. Терских В.И. Сапронозы // Журн. микробиологии, эпидемиологии и иммунологии. – 1958. – № 8. — С. 118-122. 39 .Одум Ю.С. Основы экологии: пер. с англ. – М., 1975. – 740 с. 40. Петровская B.Р. Проблема вирулентности бактерий. – Л., 1967. – 264 с. 41. Савченко П.Е. Миграция и изменчивость туберкулезных атипичных и непатогенных кислотоустойчивых микобактерий: автореф. дис. ... д-ра вет. наук.– Киев, 1974. – 52 с. 42. Александров Н.А. Роль проточных водоемов в заражении крупного рогатого скота туберкулезом в условиях Саратовской области // Ветеринария. – 1980. – №3. – С. 45-49. 43.Савченко П.Е. О распространении и размножении мико бактерий в воде / П.Е. Савченко, Г.А. Соколова // Проблемы туберкулеза. – 1979. – № 7. – С. 63-65. 44. Сухотина В.П. Бактериальная обсмененность почв полей орошения / В.П. Сухотина, Н.Г. Камаева, О.Л. Калиновская // Бактериальные, вирусные и паразитарные заболевания сельскохозяйственных животных и птиц Сибири и Дальнего Востока: сб. научн. тр. ОмСХИ. – Омск, 1992. – С. 32-34. 45. Репdeger А. Pathogenie bacteria and viruses in the unsanturated zone // Pollut. porous media.–Berlin, 1984. – Р. 195-210. 46. Литвин В.Ю. Эколого-эпидемиологические аспекты слу чайного паразитизма некоторых патогенных бактерий. – 1986. –№ 1. – С. 85-91. 112 47. Литвин В.Ю. Общие закономерности и механизмы су ществования патогенных микроорганизмов в почвенных и водных экосистемах // Экология возбудителей сапронозов: сб. научн. тр. НИИЭМ им. Н.Ф. Гамалея АМН СССР. – М., 1988. – С. 20-34. 48. Чернуха ЮГ. Предисловие // Экология возбудителей сапронозов: сб. научн. тр. – М., 1988. – С. 3-5. 49. Пушкарева В.И. Спонтанная зараженость некоторых гидробионтов потенциально-патогнными бактериями / В.И. Пушкарева, В.В. Троицкая // Патогенные бактерии в сообществах. сб. научн. тр. НИИЭМ им. Н.Ф. Гамалея. – М., 1994. – С. 70-74. 50. Пушкарева В.И. Численность и изменчивость листерий в сообществе с инфузориями / В.И. Пушкарева и др. // Патогенные бактерии в сообществах: сб. научн. тр. НИИЭМ им. Н.Ф. Гамалея. – М., 1994. – С. 48-55. 51. Александров В.Я. Клетки, макромолекулы и температура. – Л., 1975. – 329 с. 52. Александров В.Я. Молекулярные аспекты генетического приспособления организмов к температуре среды // Успехи соврем. биологии. – 1969. – Т. 69, № 3. – С. 383-389. 53. Александров В.Я. Реактивность клеток и белки. – Л., 1985. – 318 с. 54. Хочячка П. Биохимическая адаптация / П. Хочячка, Дж. Сомеро: пер. с англ. - М., 1988. - 568 с. 55. Хочячка П. Стратегия биохимической адаптации / П. Хочячка, Дж. Сомеро; пер. с англ. – М., 1977. – 348 с. 56. Bjorkmanп О.The response of Photosynt hesisto temperature // Plant and their.-Edinburg Brit.Есо1оg. Sос., 1979. – Р. 273-301. 57. Sidell B.D. Timecourse of thermal acclimacion in gold fish //J. Comp. Phisiol . – 1973. – Vol. 84. – Р. 119-127. 58. Wilson D.Temperature-metabolism relacions of two species of Sebastes from different thermalerviroments // Comp. Biochem. Phisiol. – 1974. – Vol. 47. – Р. 485-491. 59. Варвашевич Т.Н. Механизмы низкотемпературной регу ляции метаболизма у бактерий / Т.Н. Варвашевич, Л.С. Никифорова, А.Ф. Траценко, Т.Н. Богомазова // Психрофильность патогенных микроорганизмов. – Новосибирск, 1986. – С. 7-14. 60. Касьяненко А.И. Экология Salmonella enteritidis во внешней среде: автореферат дис. ... канд. вет. наук. – М., 1992. – 20 с. 113 УДК 619:616 – 002.5.- 071 В.Н. Кисленко, С.А. Королев Новосибирский ГАУ ПРОЯВЛЕНИЯ НЕСПЕЦИФИЧЕСКИХ РЕАКЦИЙ НА ТУБЕРКУЛИН У КРУПНОГО РОГАТОГО СКОТА В ЗАВИСИМОСТИ ОТ ГЕОГРАФИЧЕСКИХ ФАКТОРОВ Дан анализ зависимости проявления сенсибилизации крупного рогатого скота к туберкулину от физических свойств местности. Cattle sensibility to the Tuberkulin preparatlon was shown to depend on local physical cjnditions. На сегодняшний день туберкулёз крупного рогатого скота ликвидирован во многих сельскохозяйственных предприятиях региона Сибири. Однако на фоне снижения заболеваемости животных туберкулёзом в отдельных благополучных по этому заболеванию стадах актуальность приобретает проблема неспецифической реактивности крупного рогатого скота к туберкулину. Видовое разнообразие микобактерий, их способность мигрировать среди множества видов животных и птиц, высокая устойчивость к факторам защиты организма и воздействию неблагоприятных условий внешней среды создают трудности в дифференциальной диагностике специфических и неспецифических реакций. Неопределённость в этом вопросе наносит значительный экономический ущерб, так как приводит к необоснованному убою положительно реагирующих на туберкулин животных. Интенсивность проявления эпизоотического процесса туберкулёза крупного рогатого скота зависит от биологических, природно-климатических и хозяйственно-экономических факторов [1– 3]. 114 К важным природным факторам, действующим непосредственно и опосредованно на эпизоотический процесс туберкулёза крупного рогатого скота, авторы относят и почву [4, 5]. Рядом исследователей почва признана самостоятельным и, возможно, центральным звеном, обусловливающим приуроченность и высокую напряжённость эпизоотического процесса туберкулёза крупного рогатого скота [6]. Некоторые авторы причину приуроченности туберкулеза крупного рогатого скота объясняют ландшафтными, почвенными и метеорологическими условиями местности [4, 7– 9]. Поэтому изучение причин зональности, приуроченности и стационарности туберкулеза крупного рогатого скота необходимо проводить, используя экологический подход с учетом факторов среды, влияющих как на устойчивость животных к возбудителю туберкулеза, так и на механизм передачи возбудителя, его выживаемость в различных объектах внешней среды. При этом экологическая валентность микобактерий туберкулеза, выражающаяся в способности к миграции между различными видами млекопитающих, птиц, хладнокровных и человеком, в способности длительно сохранять жизнеспособность в экстремальных условиях окружающей среды, обеспечивает высокую степень активности механизмов передачи и является фактором, способствующим действию третьего закона эпизоотологии [10]. Цель исследования – установить зависимость проявления неспецифических реакций на туберкулин от географических свойств местности. Задача исследования – изучить зональные и географические особенности проявления неспецифических туберкулиновых реакций у крупного рогатого скота в Новосибирской области и, в частности, Ордынском районе. 115 Предметом изучения этиологии неспецифических реакций крупного рогатого скота на туберкулин были географические и экологические факторы, влияющие на проявление неспецифических реакций на туберкулин у крупного рогатого скота. Территориальная неравномерность уровня неспецифической реакции на туберкулин поддается объяснению с позиций биогеохимической зависимости резистентности животных к возбудителю и эдафической зависимости сохранения микобактерий в почве, что положено в основу четвертого закона эпизоотологии [10]. Неспецифическую реактивность на туберкулин у крупного рогатого скота изучали путем анализа статистических материалов, данных журналов для записи эпизоотического состояния районов, отчетных данных районных станций по борьбе с болезнями животных, областного управления ветеринарии и собственными исследованиями. Полученные данные систематизировали и подвергали эпизоотологическому анализу в сравнительно-историческом и сравнительно-географическом аспектах, используя описательный и картографический методы. Изучение влияния экологических факторов на проявление неспецифической реактивности крупного рогатого скота на туберкулин провели сопоставлением таких географических свойств местности, как глубина расчленения рельефа, годовой сток и густота речной сети, с распространенностью проявления неспецифической реактивности. Установлено,что неспецифические реакции на туберкулин у крупного рогатого скота в Новосибирской области распространены не повсеместно, а имеют зональные особенности (рис. 1). 116 Рис. 1. Неспецифические реакции на туберкулин в Новосибирской области Как видно из данных рис. 1, в Татарском, Чулымском, Доволенском, Каргатском, Здвинском, Карасукском, Ордынском и Искитимском районах неспецифические реакции отмечаются более чем у 0,51% животных. В Чановском, Краснозёрском, Куйбышевском, Новосибирском и Маслянинском районах регистрируются от 0,31 до 0,5% реагирующих на туберкулин животных. В Усть-Тарском, Венгеровском, Купинском, Убинском, Чистоозерном, Колыванском, Баганском, Коченёвском, Черепановском и Маслянинском районах количестве неспецифически реагирующего крупного рогатого скота колеблется от 0,11 до 0,3%. В Барабинском, Сузунском, Северном, Кыштовском, Тогучинском и Болотнинском районах неспецифически реа117 гировало на туберкулин до 0,1% исследованных животных. Территория Новосибирской области условно поделена нами на 4 зоны: Западная Бараба, Восточная Бараба, Приобское плато и Восточная зона. Как видно из табл. 1, в Западной Барабе глубина расчленения рельефа колеблется от 5 до 20 м, годовой сток – от 23 до 48 мм, густота речной сети составляет 0,1 км/км2, в этой зоне регистрируется 0,52% неспецифически реагирующего на туберкулин крупного рогатого скота. В Восточной Барабе глубина расчленения рельефа 5 – 105 м, годовой сток 41 – 92 мм, густота речной сети 0,17 км/км2, в этой зоне регистрируется 0,46% реагирующих животных. В Приобском плато количество реагирующих животных составляет 0,39%, годовой сток на территории этой зоны колеблется от 5 до 200 м, густота речной сети – от 0,3 до 0,4 км/км2 и годовой сток – от 56 до 166 мм. И в Восточной зоне неспецифические реакции на туберкулин регистрируют у 0,19% исследованного крупного рогатого скота, глубина расчленения составляет от 32 до 230 м, густота речной сети – 0,3 – 0,4 км/ км2 и годовой сток – от 70 до 210 мм. Таблица 1 Проявление неспецифических реакций на туберкулин у крупного рогатого скота в Новосибирской области (2004– 2009 гг.) Зона, административный район Реагировало на туберкулин,% 1 2 Усть-Таркский Венгеровский Чановский Татарский Глубина расчленения, м 3 Западная Бараба 0,18 5-20 0,28 5-20 0,5 5-20 1,06 5-20 118 Густота речной сети км/ км2 4 0,1 0,1 0,1 0,1 Годовой сток, мм 5 15-45 15-45 25-60 25-60 Продолжение табл. 1 1 Карасукский Краснозёрский Чулымский Доволенский Барабинский Купинский Кыштовский Кочковский Куйбышевский В среднем по зоне Убинский Чистоозёрный Колыванский Баганский Искитимский Каргатский Здвинский Северный В среднем по зоне Ордынский Коченёвский Черепановский Сузунский В среднем по зоне Новосибирский Маслянинский 2 1,2 0,48 0,97 0,84 0,06 0,21 0,06 0,51 0,35 3 5-20 5-20 5-20 5-20 5-20 5-20 5-50 5-20 5-20 4 0,1 0,1 0,1 0,1 0,1 0,1 0,1 0,1 0,1 5 5-15 30-40 40-50 40-50 20-55 20-30 30-60 20-60 20-55 0,52 5-22 0,1 23-48 0,1 0,1 0,3-0,4 0,1 0,3-0,4 0,1 0,1 0,1 40-75 30-55 50-120 40-80 40-160 35-110 40-90 15-40 0,17 41-92 Приобское плато 1,11 5-200 0,28 5-200 0,14 5-200 0,04 5-200 0,3-0,4 0,3-0,4 0,3-0,4 0,3-0,4 80-250 50-100 40-150 80-110 0,39 0,3-0,4 56-166 0,3-0,4 0,3-0,4 75-160 80-250 Восточная Бараба 0,2 5-20 0,21 5-20 0,24 5-200 0,24 5-20 0,81 5-200 0,76 5-20 1,19 5-20 0,09 5-50 0,46 5-105 5-200 Восточная зона 0,43 5-200 0,17 100-300 119 Окончание табл. 1 1 Тогучинский Болотнинский Мошковский В среднем по зоне 2 0,01 0,0 0,34 3 50-250 5-200 5-200 4 0,3-0,4 0,3-0,4 0,3-0,4 5 80-250 60-180 60-210 0,19 32-230 0,3-0,4 70-210 На территории Западной и Восточной Барабы преобладают следующие типы почв: серые лесные, луговочернозёмные, солонцы и солончаки. В Приобском плато наиболее распространены чернозёмы оподзоленные, чернозёмы выщелоченные и дерново-подзолистые типы почв. В Восточной зоне почвы представлены горными серыми лесными, черноземами выщелоченными и горными дерновоподзолистыми типами. В Ордынском районе в соответствии с планом ветеринарно-санитарных мероприятий по профилактике туберкулеза ежегодно проводят туберкулинизацию всего маточного поголовья скота с учетом частного сектора два раза в год: весной и осенью (табл. 2). Таблица 2 Динамика реагирующих на туберкулин животных в Ордынском районе в 2005-2009 гг. Год 2005 2006 2007 2008 2009 Итого Среднее Коровы общественные Иссл. Реагир. положит. гол. гол. % 24312 315 1,3 23831 402 1,7 21633 332 1,54 20401 274 1,34 21568 379 1,8 111745 1702 1,5 22349 340,4 1,536 120 Частный сектор Иссл. Реагир. положит. гол. гол. % 9970 17 0,17 9487 14 0,15 9892 9 0,09 9107 3 0,03 10053 10 0,1 48509 53 0.11 9702 10,6 0.108 Из числа положительно реагирующих на туберкулин животных проводят контрольные диагностические забои с последующим лабораторным исследованием. Из приведенных данных видно, что из числа общественного скота в среднем лишь 1,5% животных положительно реагирует на туберкулин. Почти все реакции оказываются неспецифическими, и случаев туберкулеза, подтвержденных лабораторными исследованиями, в Ордынском районе фактически не регистрируется. Следует отметить, что среди частного скота отмечается значительно меньше положительно реагирующих на туберкулин, чем среди общественных животных. Такое различие в реактивности общественного и частного скота, видимо, можно объяснить тем, что общественное поголовье в течение жизни подвергается большому числу ветеринарно-санитарных обработок (вакцинации, дегельминтизации, аллергические пробы, химиотерапия и т.п.), а все данные препараты являются своего рода иммунодепрессантами. Для выявления сезонности реагирования животных на туберкулин были проанализированы данные по весенней и осенней туберкулинизации скота за последние 5 лет. В результате было выявлено, что больше всего скота положительно реагировало на туберкулин при проведении осенней туберкулинизации – в среднем за 5 лет 1,77% от числа исследованных. Весной же реагировало в среднем 1,28% скота, что в 1,4 раза меньше, чем в осенний период. Полученные результаты согласуются с литературными данными и связаны со снижением реактивности после зимнестойлового периода. Географические особенности проявления неспецифических туберкулиновых реакций были также изучены в благополучном в течение последних 15 лет Ордынском районе. 121 Как свидетельствуют данные рис. 2, неспецифические реакции на туберкулин у крупного рогатого скота на территории Ордынского района распространены неравномерно. Рис. 2. Зависимость проявления неспецифических реакций на туберкулин у крупного рогатого скота от географических факторов в Ордынском районе Как видно из данных рис. 2, Ордынский район расположен вдоль левого и правого берегов р. Оби. Прилегающие к реке местности находятся на высоте от 20 до 50 м над уровнем моря. Территория правого берега и западная часть левого расположены на возвышениях от 120 до 350 м. Проявление неспецифических реакций на туберкулин у крупного рогатого скота в Ордынском районе наблюдается не на всей территории (табл. 3). 122 Таблица 3 Зависимость проявления неспецифических реакций на туберкулин у крупного рогатого скота в Ордынском районе от географических факторов Номер зоны 1 2 3 4 Населенный пункт Рогали, Кирза, Черемшанка, Пичугово, Красный Яр, Устюжанино Верх-Алеус, Кузьминка, Луковка, Сушиха, Борисовка, Филиппово, Козиха Петровское, Пролетарское, Средний Алеус, Пушкарёво Чингисы, Верх-Чик, Степное, Вагайцево, Нижнекаменка Высота над уровнем моря, м Реагирующих,% 20-120 1,7-3,85 20-120 0,55-1,6 120-200 0,01-0,54 Более 200 0 Как видно из данных табл. 3, в хозяйствах, расположенных над уровнем моря на высоте от 20 до 120 м, реагируют от 0,55 до 3,85% исследованных животных. В населённых пунктах Петровское, Пролетарское, Средний Алеус регистрируются от 0,01 до 0,54% реагирующих на туберкулин животных. Эти сёла расположены в основном на высоте от 120 до 200 м. Не регистрируются реакции в населённых пунктах, которые лежат над уровнем моря выше 200 м. Следовательно, можно сделать вывод о том, что неспецифические реакции на туберкулин у крупного рогатого скота в Ордынском районе приурочены к территориям с незначительными высотами над уровнем моря. Таким образом, одной из причин недостаточной эффективности диагностических мероприятий в зонах широ123 кого распространения неспецифических реакций на туберкулин является недостаточная изученность влияния природных условий на экологию микобактерий. Изучением связи ареалов распространения неспецифических реакций на туберкулин с некоторыми природными особенностями территорий (высота над уровнем моря, степень расчлененности рельефа, годовой сток осадков и талых вод и тип почвы) установлено, что неспецифические реакции на туберкулин приурочены к территориям с малой оводнённостью проточными водоёмами, с низким расположением местности над уровнем моря и незначительной расчленённостью рельефа. В физико-географических областях и зонах с высокими показателями неспецифической реактивности преобладают солонцовые и солончаковые типы почв. Библиографический список 1. Александров Н.А. Эпизоотология туберкулеза крупного рогатого скота и организационные формы его искоренения в длительно неблагополучных хозяйствах Северной зоны Нижнего Поволжья: автореф. дис. ... д-ра вет. наук. – Саратов, 1973. – 37 с. 2. Бокун А.О. Особенности и основные причины неблагополучия по туберкулезу животных в зоне Ставропольского края //Основные проблемы ветеринарии Северного Кавказа. – Махачкала, 1976. – С. 31 -32. 3. Джупина С.И. Экология как теоретическая основа учения об эпизоотическом процессе // Эпизоотология, профилактика и меры борьбы с инфекционными болезнями животных: сб. научн. тр. / РАСХН. Сиб. отд-ние. ИЭВСиДВ. – Новосибирск, 1993. – С. 13. 4. Хайкин Б.Я. Зональные особенности эпизоотологического процесса туберкулеза крупного рогатого скота в отдельных областях Урала и Западной Сибири / Б.Я. Хайкин, В.А. Зубакин // Актуальные вопросы эпизоотологии и меры борьбы с туберкулезом животных. – Казань, 1989. – С. 19-24. 5. Шкиль Н.А. Эпизоотический процесс туберкулеза крупного рогатого скота и оптимизация системы его контроля: дис. ... д-ра вет. наук. – Новосибирск, 1995. – 359 с. 6. Донченко А.С. Обусловленность возникновения и напряженно124 сти зон приуроченности туберкулёза крупного рогатого скота в Западной Сибири / А.С. Донченко, П.А. Удальцов // Вестн. РАСХН. – 2000. – № 4. – С. 75 - 77. 7. Мотаев Б.Г. Материалы по туберкулезу крупного рогатого скота в Таджикской ССР // Диагностика, лечение и профилактика болезней сельскохозяйственных животных. – Душанбе, 1979. – С. 3 -10. 8. Ярбаев Н. Эпизоотологическое районирование территории Таджикистана по туберкулезу крупного рогатого скота // Вопросы диагностики и профилактики заболеваний сельскохозяйственных животных в Таджикистане: сб. научн. тр. Тадж. НИВИ. – Душанбе, 1991. – С. 4 - 14. 9. Найдансурэн Ц. Эпизоотия туберкулеза крупного рогатого скота и меры борьбы с ним в МНР: автореф. дис. ... канд. вет. наук. – Л., 1972. – 25 с. 10. Бакулов И.А. Законы и категории эпизоотологии // Вестн. РАСХН. – 1994. – №1. – С. 44 - 46. УДК 619:614.3:579.62 А.Н. Колотило Институт ветеринарной медицины Омского ГАУ ФИЗИКО-ХИМИЧЕСКИЕ ПОКАЗАТЕЛИ ВОДЫ, ИСПОЛЬЗУЕМОЙ ДЛЯ ПОЕНИЯ СЕЛЬСКОХОЗЯЙСТВЕННЫХ ЖИВОТНЫХ Высокое качество воды имеет первостепенное значение для здоровья и продуктивности животных. Статья посвящена анализу физико-химических свойств воды, используемой для поения сельскохозяйственных животных. Автор приводит данные о качественных и количественных характеристиках воды по физико-химическим показателям. Water quality is of paramount importance to the health and productivity of animals. This article analyzes the physical and chemical properties of water used for watering livestock. The author presents data on the qualitative and quantitative characteristics of water physicochemical parameters. 125 В организме животных вода выступает в роли транспортной системы и растворителя. С ее помощью осуществляются физико-химические реакции, связанные с обменом веществ, выводятся вредные вещества. Испаряясь с поверхности кожи, вода участвует в терморегуляции. Трудно переоценить влияние воды на все процессы жизнедеятельности организма животных, здоровье которых во многом определяется уровнем гигиены водоснабжения. Вода на сельскохозяйственные предприятия зачастую поступает из русла протекающей реки, не подвергаясь контролю, и нередко контаминирована условно-патогенной и патогенной микрофлорой [1-3]. Для препятствия развитию посторонней микрофлоры воду, используемую для поения сельскохозяйственных животных, подвергают обеззараживанию, в том числе и хлорсодержащими препаратами, при этом нередко с нарушением нормативных показателей. Высокое содержание в воде хлора и его соединений способствует развитию заболеваний органов дыхания и желудочно-кишечного тракта животных. Несмотря на это, хлор продолжают активно применять для обеззараживания воды. По данным ряда авторов, повышение допустимых значений нитратов в воде сопровождается восстановлением их до нитритов, которые вступают во взаимодействие с гемоглобином крови с образованием метгемоглобина, в результате чего нарушается питание тканей организма [1, 2] . Немаловажное значение в оценке качества воды имеют тяжелые металлы, при накапливании которых в организме снижается проникновение в клетки различных ионов, инактивируются энзимы, в частности цитохромоксидаза, принимающая участие в клеточном дыхании. Кроме того, тяжелые металлы могут соединяться с сульфгидрильными и фосфатными группами и таким образом повреждать клеточ126 ные мембраны. Основными мишенями при воздействии тяжелых металлов являются кроветворная, нервная, пищеварительная системы и почки. Отмечено также отрицательное влияние на репродуктивную функцию организма животных [4]. Учитывая вышеизложенное, целью исследования являлось изучение физико-химических свойств воды, используемой для поения сельскохозяйственных животных в хозяйствах Омской области. Исследования проводили на базе областной ветеринарной лаборатории, хозяйств Омской области и кафедры ветеринарной микробиологии, вирусологии и иммунологии ИВМ ОмГАУ. Для проведения анализа в весенне-летний период были отобраны пробы воды (n=10) из хозяйств различных районов с учетом требований нормативного документа, регламентирующего объем исследований и их оценку (СанПин 2.1.4.1074-01). В результате проведенных исследований установлено, что 8 из 10 проб воды по физическим показателям (запах, мутность, цветность) соответствовали санитарно-гигиеническим требованиям (СанПин 2.1.4.1074-01). Исключение составили две пробы, показатель мутности одной превышал допустимый уровень в 2 раза и составил 3,0 мг/дм3, у второй показатель цветности составил 40 град. при норме не более 20 град. При анализе химических показателей было установлено, что значение общей жесткости воды соответствует допустимому (7-10 мг-экв./л) только у 7 проб, в 3 он превышал норму в 1,5 – 2 раза и находился в пределах 15,7 - 20,5 мгэкв./л. В 5 пробах воды, взятых со свинокомплексов, где применяются хлорсодержащие препараты, была выявлена высокая концентрация хлоридов, которая варьировала в пределах 530 - 2750 мг/дм3, что превышало допустимое значение 127 в 1,5 - 7 раз. В 5 пробах воды концентрация хлоридов не превышала норму и находилась в пределах 58 - 290 мг/дм3. Содержание нитратов и нитритов во всех пробах соответствовало санитарно-гигиеническим требованиям, предъявляемым к качеству воды, их уровень находился в пределах 0,06 – 6,0 и 0,02 - 0,06 мг/дм3 соответственно. Водородный показатель в исследуемых пробах воды не превышал допустимых значений и варьировал в пределах 6,5 – 8,0 ед. Наряду с другими показателями была определена концентрация свинца, кадмия и цинка. Установлено, что содержание данных тяжелых металлов в воде соответствовало нормативным показателям (цинка не более 1,0; кадмия не более 0,005; свинца не более 0,03 мг/дм3) во всех пробах. Таким образом, результате проведенных исследований установлено, что в семи хозяйствах вода, используемая для поения животных, не соответствует санитарно-гигиеническим нормам, так как в пробах установлено превышение допустимых значений по общей жесткости в 1,5 – 2 раза, мутности и цветности в 2 раза. Особое значение имеет превышение в 1,5 - 7 раз показателей по содержанию хлоридов в питьевой воде, что свидетельствует об ее отрицательном воздействии на организм животных и их естественную резистентность. Библиографический список 1. Мещерякова Г.В. Оценка качества и безопасности питьевой воды поселка Заречье Варненского района Челябинской области/ Г.В. Мещерякова, А. Кунжанова // Материалы XII Междунар. науч.практ. конф. молодых учёных и специалистов «Вклад молодых учёных в реализацию приоритетного национального проекта «Развитие агропромышленного комплекса». – Троицк, 2008. – С. 217 -219. 2. Сас Т. Вода — важнейшее питательное вещество// Животноводство России. – 2007. – №6. – С. 28-29. 3. Хотько Н.И. Водный фактор в передаче инфекции / Н.И. Хотько, А.П. Дмитриев. – Пенза: ПГУ, 2002. – 232 с. 4. Ягодин Б. А. // Тяжелые металлы в системе почва – растение// Химия в сел. хоз-ве. –1996. – №5. 128 УДК 619:614.94+502:7:636.4 Н.М. Колычев, М.П. Погребняк, С.Я. Бутаков, С.Н. Касьян Омский ГАУ ВЕТЕРИНАРНО-САНИТАРНОЕ И ЭКОЛОГО-ГИГИЕНИЧЕСКОЕ СОСТОЯНИЕ СОВРЕМЕННЫХ ЖИВОТНОВОДЧЕСКИХ ОБЪКТОВ И ПУТИ ЕГО УЛУЧШЕНИЯ Проанализированы основные причины неудовлетворительного санитарно-гигиенического и экологического состояния животноводческих объектов, даны предложения по его улучшению. The causes of insufficient sanitary-hygienic and ecological condition of livestock breeding farms are analysed; methods of condition,s improvement are suggested. Key words: livestock breeding farms, sanitary-hygienic and ecological condition, technological solution, decontamination of biological waste products, standards, projecting, testing areas, animal burial grounds, veterinary – sanitary utilization works. Ветеринарно-гигиенические и санитарно-экологические мероприятия играют важную роль в профилактике, возникновении и распространении инфекционных, пара зитарных и особенно незаразных болезней сельскохозяйственных животных, получении высококачественной животноводческой продукции, а также охране окружающей среды. Однако, к сожалению, данные наших экспериментальных исследований, экспедиционных обследований в климатической зоне Сибири по зоогигиеническому, санитарному, экологическому и эпизоотологическому состоя129 нию ферм и животноводческих комплексов свидетельствуют об ослаблении внимания к этой жизнеобеспечивающей проблеме [1–5]. Почти во всех категориях хозяйств региона нарушаются экологические требования, санитарные нормативы, что сдерживает дальнейшее развитие животноводства [6–8]. На наш взгляд, главные причины этого: − недостаточная обеспеченность типовыми ветеринарно-санитарными профильными объектами; − большинство из них не отвечает требованиям по технологическим характеристикам строительных конструкций, что приводит, как правило, к неудовлетворительному микроклимату; − нечетко отработанная система механизации производственных процессов, плохая эксплуатация механизмов; − не полностью проведенная специализация ферм; − некомпактное расположение животноводческих помещений; − неприспособленность значительного числа помещений для внедрения механизации производственных процессов; − неблагоустроенность территории ферм (заболоченность, отсутствие твердых подъездных путей и др.): ложе для отдыха (пол) не удовлетворяет физиологическим потребностям животных: несоответствие размеров, отсутствие подстилки, некачественные решетчатые полы приводят к заболеваниям конечностей, вымени и половых органов; − слабая разработка и внедрение технологической схемы «все свободно – все занято»; − отсутствие прогулок животных в зимний период, беспастбищное и безвыгульное содержание скота – в летний; 130 − устройство выгульно-кормовых площадок без механизации навозоудаления, переработки и транспортировки навоза, удаления сточных и ливневых вод, ограждений и навесов; − недостаточное и неполноценное кормление скота. Подобные недостатки существуют и в хозяйствах Омской области, в чем мы убедились, проанализировав состояние более 3 тыс. телятников в 29 районах [7]. Из 1023 телятников 682 (66,6%) построены из железобетонных и керамзитобетонных конструкций, они в первую очередь требуют в зимний период обогрева; 187 помещений (18,3%) сделаны из кирпича и 155 (16,12%) из дерева. Стоит отметить, что функционирует немало комплексов: родильные отделения на 100 и более коров составляют 27,2%, профилактории на 60 и более телят – 31,7, телятники на 200 и более голов –79,4%. В 212 профилакториях (26,5%) новорожденные телята содержатся в групповых клетках. Однако уборка навоза в родильных отделениях в 45% случаев осуществляется самосплавом, а в 232 профилакториях (34,7%) каловые массы убираются нежелательным в санитарном отношении методом для данной возрастной группы телят – скребковыми транспортерами. Как мы убедились, самосплавная система навозоудаления в профилакториях и наборных телятниках ведет к большому газообразованию, особенно аммиака, накоплению микробов, нередки случаи сквозняков и проникновения холодного воздуха в каналы. И до сих пор этот метод используют почти в половине имеющихся телятников. Отмечено, что зимой не обогреваются 49,8% родильных отделений, 29,8% профилакториев, 24,0% телятников. Лишь 34,3% профилакториев оборудованы электрокалориферами, примерно столько же телятников, остальные – теплогенераторами, работа и эксплуатация которых затрудни131 тельна и трудоемка. И при этом воздуховодов нет в 71,1% родильных отделений, в 65,9% профилакториев, в половине телятников. Без вытяжной вентиляции функционируют 287 родильных отделений (29%), в 70% случаев имеющиеся здесь вытяжные вентиляционные устройства выбрасывают воздух из верхней зоны. Мы же убедились в высокой эффективности выброса загрязненного воздуха из нижней зоны. Вышеотмеченные недостатки отрицательно влияют на продуктивность и резистентность скота, а также на эпизоотическую ситуацию, эффективность противоэпизоотических мероприятий. Все это побуждает вести поиск высокоэффективных энергосберегающих технологий производства животноводческой продукции, улучшения экологической безопасности ферм [9]. Нами установлена прямая зависимость эпизоотической ситуации по туберкулезу от санитарно-гигиенического состояния животноводческих ферм и помещений [10]. В связи с этим крайне необходимо провести паспортизацию ферм и помещений по вопросам технологического устройства и решений, оценку гигиенического и санитарного их состояния, что явилось бы большим стимулом для улучшения экологического благополучия [11, 12]. Не лучшим образом обстоит дело в крестьянских (фермерских) и подсобных хозяйствах граждан, где скот чаще всего содержат в приспособленных помещениях и сооружениях без соблюдения основных ветеринарно-гигиенических и санитарно-экологических норм. Технология получения животноводческой продукции примитивная. Как правило, в них преобладает ручной труд и обычно в одном и том же помещении без соответствующей изоляции размещаются различные виды животных и птиц, что приводит к их перекрестному заражению. В таких «фермах» отсутствует вентиляция, а навоз и навозную жижу вывозят 132 на прифермские участки без какой-либо санитарной подготовки. Понятно, что такие фермы являются источником загрязнения окружающей среды, распространения неприятных запахов и фактором возникновения инфекционных болезней [13]. Наметившаяся тенденция к возрождению животноводства путем строительства крупных единичных ферм и комплексов, например, в ЗАО «Знамя» и «Иртышское» Омской области, по нашему мнению, не решает экологические, а тем более социальные проблемы сельского населения. К тому же взяты на вооружение зарубежные проекты для иных климатических зон, что может не оправдать надежду на их высокую эпизоотическую благонадежность и экономическую эффективность. Серьезную озабоченность вызывает современная система природоохранных, противоэпизоотических и противоэпидемиологических мероприятий, важнейшим звеном которых является сбор и утилизация биологических отходов (трупы животных, боенские конфискаты и др.). На сегодняшний день в процессе производственной деятельности хозяйствующих субъектов на территории Омской области среднегодовой объем образования биоотходов составляет около 21 тыс. т, из которых: – 6,5 тыс. т перерабатывается на ГП «Ветсанутильзавод ''Кормиловский''». В результате проведенного техперевооружения и установки дополнительного оборудования завод значительно увеличил объемы сбора и переработки биоотходов. Ежемесячно в нашем регионе перерабатывается на мясокостную муку 560–620 т (в 2007 г. 340–380 т) биологических отходов. Технические возможности завода позволяют перерабатывать до 800 т отходов; – 9,5 тыс. т перерабатывается в цехах технических фабрикатов на птицеводческих предприятиях: ЗАО 133 «Птицефабрика ''Сибирская''», ЗАО «Иртышское», ЗАО ПК «Оша», ЗАО «Птицефабрика ''Любинская''» и на мясокомбинатах: ОАО «Омский бекон», «Исилькульский» и «Называевский», где работают собственные цеха по сбору и переработке биологических отходов, образующихся в процессе производственной деятельности вышеуказанных предприятий; – 5,0 тыс. т биоотходов утилизируется в имеющихся скотомогильниках. Основными нарушениями, выявляемыми при санитарных проверках, являются: отсутствие правоустанавливающих документов на земельные участки, занимаемые скотомогильниками, отсутствие регистрации их в реестре муниципальной собственности районов и собственников объектов, несоответствие требованиям действующих правил, в первую очередь, по параметрам глубины ямы (норматив не менее 10 м), облицовыванию стен ямы водонепроницаемым материалом, огораживанию 2-метровым глухим забором. По состоянию на 1 октября 2010 г. на территории Омской области зарегистрировано 477 скотомогильников. Из них имеется скотомогильников закрытого типа – 400 (бетонированные ямы с перекрытиями, люками и крышками – 74, металлические емкости – 180, ямы с перекрытиями – 146); огороженных – 242; оканавленных – 375; открытых земляных ям – 77, (в 2007 г. их было 282, в 2008 г. – 151). Одной из проблем является то, что большинству скотомогильников несколько десятков лет. Выбор и отвод земельного участка, как правило, не оформлялся, данные объекты обустраивались хозяйственным способом, и комиссионного приема их в эксплуатацию не было. Не учитывался при их строительстве и уровень залегания грунтовых вод. В результате реорганизации ряда сельхозпредприятий, сокращения 134 поголовья общественного животноводства часть скотомогильников стали бесхозными. В 2008–2009 гг. собственниками объектов проведены мероприятия по постановке земельных участков, занимаемых скотомогильниками, на кадастровый учет и оформлению права собственности в Управлении федеральной регистрационной службы по Омской области: – Шербакульский район – оформлены права собственности по 13 земельным участкам, занимаемым скотомогильниками; – Любинский – 5 (Южно-Любинское с/п, Новокиевское с/п, Боголюбовское с/п, Центрально-Любинское с/п, Большаковское с/п); – Саргатский – 4 (Новотроицкое с/п, Хохловское с/п, Баженовское с/п, Нижнеиртышское с/п); – Полтавский – 6 (Воронцовское с/п – 2, Соловьевское с/п – 2, Вольновское с/п, Красногорское с/п) и 3 скотомогильника поставлены на учет как безхозяйное имущество; – Черлакский – 1 (СПК «Татарское»); – Омский – 1 (Пушкинское с/п); – Тюкалинский – 1 (Октябрьское с/п); –Русско-Полянский – по 10 земельным участкам, занимаемым скотомогильниками, оформлены кадастровые паспорта; – Одесский – по 13 земельным участкам, занимаемым скотомогильниками; – Усть-Ишимский – по 2 земельным участкам, занимаемым скотомогильниками. Кроме того, главами муниципальных образований изданы постановления о выделении земельных участков для размещения скотомогильников (Азовский – 7, Большеуковский –3, Горьковский – 2, Исилькульский – 18, Колосовский – 20, Нижнеомский – 1, Одесский – 17, Павлоградский – 25, Таврический – 2). 135 Для утилизации биологических отходов, образующихся на территории города Омска, в декабре 2007 г. введен в эксплуатацию биотермический утилизатор на полигоне твердых бытовых отходов Ленинского АО. При осуществлении надзорных мероприятий по контролю за ветеринарно-санитарным состоянием мест утилизации биоотходов имеется ряд проблем правового характера. Так, согласно Федеральному закону «Об общих принципах организации местного самоуправления в РФ» от 06.10.2003 г. №131-Ф3, Федеральному закону «Об отходах производства и потребления» от 24.06.1998 г. №89ФЗ к вопросам местного городского и сельского поселения относится организация сбора и вывоза бытовых отходов и мусора, к вопросам городского округа – организация сбора, вывоза, утилизации и переработки бытовых и промышленных отходов. Из них также следует, что скотомогильники и биотермические ямы в собственности органов местного самоуправления находиться не могут. Кроме того, в уставах муниципальных районов, городских и сельских поселений полномочий по строительству и содержанию мест утилизации биологических отходов (скотомогильников) нет. И как следствие, в бюджетах всех уровней местного самоуправления не предусматривается финансирование строительства и содержания скотомогильников. В соответствии со ст. 225 Гражданского кодекса РФ закон не предусматривает передачу бесхозных скотомогильников в муниципальную собственность помимо воли муниципальных образований. Учитывая сложившуюся ситуацию в целом на территории РФ, определением Верховного суда РФ от 13.06.2006 г. № КАС06-193, приказом МСХ РФ от 16.08.2007 г. № 400 признано недействующим положение, ранее содержавшееся в п.6.1. Ветеринарно-санитарных правил по сбору, ути лизации и уничтожению биологических отходов, в соответ136 ствии с которым скотомогильники и биотермические ямы, не принадлежащие организациям, являются объектами муниципальной собственности. Необходимо отметить, что согласно определению судебной коллегии по гражданским делам Верховного суда РФ от 10 февраля 2010 г. № 32-В09-19, «действующее законодательство не предусматривает обращения в муниципальную собственность имеющихся на территории муниципального района мест захоронения биологических отходов, которые остались от бывшего производства, вследствие чего отсутствуют основания для возложения на администрацию муниципального района обязанности оборудовать скотомогильники (биотермические ямы) без передачи необходимых полномочий и денежных средств». Постановлением правительства Омской области от 14.09. 2009 г. №167-п утверждена долгосрочная целевая программа Омской области «Об охране окружающей среды в Омской области» на 2010–2015 гг., одним из разделов которой предусматривается строительство объектов размещения отходов, в т. ч. биологических. Предусмотрено финансирование программы из областного бюджета – 50 млн руб. и софинансирование мероприятий из бюджетов муниципальных образований. Было бы разумным решение реконструировать и ввести в эксплуатацию ранее закрытые ветеринарно-санитарные утильзаводы в северной и восточной зонах Омской области (Большеречье и Называевск) и построить новый в южной зоне (Русская Поляна). Серьезную экологическую проблему и обоснованное беспокойство вызывает представляет поступление в oкpужaющyю среду так называемых стойких органических соединений (COC) [14]. Эта проблема касается всех отраслей промышленности, сельского хозяйства, и в частности животноводства, из137 за недостаточно обоснованного, часто технологически неправильного применения пестицидов. В своей структуре они содержат атомы хлора и характеризуются выраженной токсичностью, большой устойчивостью, биоаккумуляцией, трансграничным переносом и способностью причинять значительный вред как окружающей среде, так и здоровью человека и животных. Большинство препаратов из группы СОС запрещены, в том числе ДДТ и гексахлоран, которые использовались до 1980 г. для химической защиты растений, леса, для борьбы с природно-очаговыми инфекциями, чесоткой овец. Вредное влияние ДДТ и гексахлорана проявлялось повышением частоты злокачественных новообразований, нарушением функций репродуктивной и эндокринной систем. Применение этих пестицидов привело к значительному загрязнению объектов окружающей среды, включая почву, водоемы, продукты питания и корма для животных. По рекомендациям ВОЗ, допустимая доза ДДТ для человека составляет в жире молока 0,02 мг/кг, в жире мяса – 5 мг/кг, в воде водоемов – 0,1 мг/л, в мясе – 0,1 мг/кг, в молоке – 0,01 мг/л, в зерне – 0,02 мг/кг, овощах – 0,1 мг/кг. Присутствие его в кормах для лактирующих животных не допускается, в концентрированных, грубых, сочных кормах для откармливаемых животных допустимое количество составляет 0,5 мг/кг. В последние годы отмечено значительное снижение остаточного количества препарата в почве, кормах и продуктах животноводства. Однако утверждать об исчезновении ДДТ из окружающей среды на территории РФ преждевременно. Есть исследования и доказательства о завозе его из стран Африки, использующих ДДТ для ликвидации малярии, или из Украины при распашке старых садов. Долгое время ученые не могли объяснить присутствие 138 ДДТ в снегах Антарктиды. Лишь недавно выявили наличие так называемого «планетарного насоса», благодаря которому пары пестицида, попадая в холодную зону, подвергаются конденсации с образованием мелких капель и оседают на поверхности земли. В подтверждение этого явления Р. Псеннер (2000) обнаружил, что альпийские озера загрязнены ДДТ в 1000 раз больше, чем нижерасположенные водоемы вне зоны ледников [15]. Нельзя не затронуть проблему массового применения в строительстве искусственных материалов, покрытий, пленок, клеев, пластификаторов. Идет их санитарная экспертиза, разрабатываются саннормативы для жилых помещений. Заманчиво применение искусственных материалов и в оборудовании животноводческих помещений, скотоубойных и мясоперерабатывающих предприятий (эмульбитовые покрытия полов, трубы для молоко- и водопроводов, пластмассовые кормушки, поилки и проч.). Исследований по ветеринарно-гигиенической и санитарно-экологической экспертизе новых искусственных материалов, «поведению» их в агрессивной среде животноводческих помещений почти не проводится. Нет саннормативов их применения в технологии животноводства. Считаем, что актуальность таких исследований очевидна. Таким образом, на основании литературных данных можно сделать выводы, что: 1) экологическое состояние на животноводческих комплексах и птицефабриках Сибири, в зависимости от сроков эксплуатации, ухудшается и нередко становится заметным тормозом в их работе; 2) усложняется решение вопросов комплектования крупных комплексов поголовьем животных, ухудшается эпизоотологическая ситуация, т. е. возрастает роль аэрогенного пути распространения возбудителей инфекций, 139 учащаются массовые заболевания сельскохозяйственных животных. Наконец, в зоне, прилегающей к крупным комплексам, происходит загрязнение почвы, грунтовых вод, кормов. Все это можно считать логическим итогом крайне слабой разработки и соблюдения природоохранных мер в технологии работы действующих ферм и комплексов; 3) проектирование, строительство и эксплуатация животноводческих ферм и комплексов должны осуществляться с учетом действующих агротехнических, мелиоративных, санитарно-гигиенических и ветеринарных норм. В первую очередь, это обеспечение безопасности навоза в эпидемиологическом и эпизоотологическом отношении, уменьшение возможности загрязнения воздуха и распространения инфекций аэрогенным путем. Соблюдение санитарно-защитных зон, наличие защитных лесных полос, своевременная запашка навоза при его внесении мобильным транспортом, разработка и внедрение дождевальных машин с насадками и агрегатами для близкопочвенного дождевания – все это может значительно снизить интенсивность загрязнения атмосферного воздуха, распространения неприятных запахов и вредных микроорганизмов; 4) важно, чтобы комплекс природоохранных мер способствовал естественному биологическому круговороту веществ в природе, процессам их естественного обеззараживания, разложения и превращения в составную часть почвы. Природоохранные меры должны быть не только в проектах ферм и комплексов, но и полностью воплощаться при строительстве, строго соблюдаться в процессе эксплуатации; 5) в связи с исключительной актуальностью проблемы охраны окружающей среды ветеринарно-гигиенические и санитарно-экологические требования к разработчикам проектов и к специалистам, ответственным за производство 140 растениеводческой и животноводческой продукции, должны быть значительно повышены. Ветеринарным работникам необходимо не только выполнять свою важнейшую задачу по охране здоровья людей от заболеваний, передающихся от животных к человеку, но и активно участвовать в разработке и контроле такой технологии содержания животных, которая обеспечивала бы охрану окружающей природной среды от загрязнения; 6) навести порядок в четком определении организа ций, служб и лиц, ответственных за соблюдение ветеринарно-санитарных, природоохранных мер и правил в вопросах утилизации, обезвреживания и уничтожения биологических отходов; 7) провести паспортизацию животноводческих объектов и на этой основе определить в них уровень зооветеринарных и гигиенических параметров; 8) с переводом сельскохозяйственного производства на интенсивные методы ведения возникла и обостряется проблема экологической культуры человека, понимания им последствий недостаточно продуманной деятельности не только для окружающей среды, но и для него самого. Поэтому важно прививать экологическое сознание всем работникам ферм, повышать уровень их санитарно-экологической нравственности и ответственности. Библиографический список 1. Бутаков С.Я. Влияние загрязнений, выбрасываемых вытяж ной вентиляцией, на санитарное состояние воздушного бассейна свиноводческих комплексов / С.Я. Бутаков, А.М. Шадрин // Науч.-техн. бюл. ВАСХНИЛ. Сиб.отд-ние. ИЭВСиДВ.– Новосибирск, 1979. – С. 25–30. 2. Бутаков С.Я. Шумовая характеристика микроклимата молочного комплекса на 1200 коров // Молочное и мясное скотоводство. – 1983. – № 2.– С. 13–14. 3. Погребняк М.П. Проблемы микроклимата в промышленном животноводстве Сибири // Опыт использования зоогигиенических 141 приемов в промышленном животноводстве: тез. докл. Всесоюз. науч.техн. семинара. – М., 1982. – С. 5. 4. Погребняк М.П. Пути улучшения экологической ситуации в птичниках и воздушном бассейне на птицефабриках/ М.П. Погребняк, В.А Долганов// Роль России в развитии экологии на пороге 21 века: материалы Междунар. конф. по экологии. – Омск, 1997.– С. 187–188. 5. Погребняк М.П. Пути улучшения микроклимата в птичниках/ М.П. Погребняк, Н.А Савкин, Н.Г. Лаврик // Птицеводство. – 1985. – №1. – С. 30–34. 6. Погребняк М.П. Технология и гигиена // Земля сиб., дальневост. – 1988. – № 1. – С. 6. 7. Погребняк М.П. Совершенствование системы содержания молочного скота в Западной Сибири: автореф. дис. ... д с.-х. наук. – Новосибирск, 1998. –39 с. 8. Бутаков С.Я. Ветеринарно-санитарное состояние воздушного бассейна территории, прилегающей к молочному комплексу на 1200 коров // Проблемы экологии в ветеринарной медицине: тез. докл. Всесоюз науч. конф Воронеж, 25–27 окт. 1989 г. – М., 1989. – С. 134–136. 9. Колычев Н.М. Экологическое состояние животноводческих комплексов и пути его улучшения/ Н.М. Колычев, С.Я. Бутаков // Сиб. вестн. с.-х. науки. – 1991. – № 4. – С. 97–101. 10. Погребняк М.П. Роль зоогигиенических условий в профилактике туберкулеза крупного рогатого скота/ М.П. Погребняк, В.А. Серикова, С.Я. Бутаков // Вестн. ОмГАУ. – 1997. – № 4. – С. 64. 11. Погребняк М.П. Реконструкция животноводческих помещений – реальная необходимость // Научные и практические проблемы ветеринарной медицины, животноводства и перспективы их решения: сб. науч. тр. ИВМ ОмГАУ. – Омск, 2006. – С. 320–324. 12. Домашним животным – оптимальные условия. // Актуальные проблемы инфекционных и незаразных патологий животных: материалы Междунар. науч.-практ. конф., посвящ. памяти выдающегося организатора сиб. вет. науки А.В. Копырина. – Омск, 2010. – С. 294–298. 13. Колычев Н.М. Многофакторность причин и путей решения сложного экологического состояния крупных животноводческих ферм и комплексов в зоне Сибири/ Н.М. Колычев, С.Я. Бутаков // Диагностика и профилактика незаразных и инфекционных болезней сельскохозяйственных животных Западной Сибири: сб. науч. тр. – Омск, 1994. – С. 4–10. 14. Бутаков С.Я. Экологические последствия нерационального применения пестицидов// Актуальные вопросы животноводства 142 Западной Сибири: сб. науч. конф. ППС ИВМ ОмГАУ. – Омск, 2002. – С. 85–88. 15. Желтов В.А. Стойкие органические загрязнители окружающей среды// Ветеринария с.-х. животных. –2006. –№ 1. – С. 83–87. УДК 619:616.981 Н.А. Кудачева, Н.М. Шарымова Самарская ГСХА ПРОЯВЛЕНИЕ САЛЬМОНЕЛЛЕЗА В ВИДЕ ЭНЗООТИЧЕСКИХ ВСПЫШЕК СРЕДИ СИНАНТРОПНЫХ ПТИЦ Проанализирована ситуация, связанная с массовой гибелью синантропных птиц. Представлены результаты исследований по выяснению причин спонтанной гибели голубей, доказана этиологическая роль возбудителя сальмонеллеза в развитии эпизоотии. The article analyzed the situation related to the massive loss of synanthropic birds. The results of studies to identify the causes of spontaneous death of the pigeons, we have proved the etiological role of Salmonellosis in the development of epizootics. Массовая гибель синантропных птиц, в частности диких голубей, отмечена во многих населенных пунктах, что подробно освещается чаще в средствах массовой информации, чем в сборниках научных трудов. Подобная ситуация характерна как для крупных городов, так и для сельской местности, где голуби являются практически постоянными обитателями животноводческих помещений. Мнения о причинах массовой гибели птицы разноречивы и указываются различные этиологические факторы: - наличие техногенных (антропогенных) факторов, вы143 зывающих изменения в среде обитания и провоцирующих гибель голубей; - естественный отход вследствие эволюционно сложившихся особенностей физиологии синантропных птиц для естественного контроля их численности; - эпизоотии, провоцируемые двумя вышеуказанными факторами, чаще возбудителями инфекций, циркулирующими внутри популяции голубей, без их заноса извне. По данным литературы, дикие сизые голуби в естественных условиях являются резервуаром различных инфекционных болезней, возбудители которых периодически вызывают среди птицы эпизоотии и массовую гибель [1-3]. Несмотря на это, в современных условиях выявить наличие возбудителей инфекционных заболеваний среди популяции проблематично, и перспективным в этом направлении является только мониторинг по высококонтагиозным инфекциям, опасным для человека. Подобная гибель отмечается регулярно в течение последних лет, но исследования, позволяющие изучить причины и предрасполагающие факторы, не проводятся, поэтому целью настоящей научно-исследовательской работы явилось изучение причин спонтанной массовой гибели голубей на территории вивария Самарской государственной сельскохозяйственной академии. Осенью 2010 г. при очередном массовом падеже голубей изучались эпизоотологические и клинические особенности заболевания с последующими лабораторными исследованиями полученного материала. Исследования проводились на базе ГУСО «Самарская областная ветеринарная лаборатория». В качестве материала использовались трупы павших птиц, а также голуби с клинической картиной заболевания. Для постановки заключительного диагноза использовались методы лабораторной диагностики, являющиеся общепринятыми в отношении каждого возбудителя для его выделения и доказательства этиологической роли. 144 На территории вивария, принадлежащего факультету биотехнологии и ветеринарной медицины ФГОУ ВПО «Самарская государственная сельскохозяйственная академия», отмечается ежегодная сезонная (в осенний и весенний периоды) массовая гибель голубей. Контроль за численностью этих птиц не проводится, что способствует постепенному увеличению количества голубей, использующих для своего размножения доступные зоны животноводческих помещений (крыша, чердак), а также корма. Первые проявления заболевания были отмечены в середине сентября 2010 г. В течение суток на небольшой территории вивария обнаруживали от 10 до 16 трупов павших голубей. Гибель наступала внезапно; птица, не имея какихлибо клинических признаков, во время полета падала на землю, где в течение нескольких минут погибала. По мере развития эпизоотии, этиологический фактор которой еще не был установлен, в помещениях вивария стали наблюдать больных голубей со следующими клиническими признаками: апатичность, отсутствие реакции на человека, нахохленность, засиживание в темных углах, испражнения слизисто-водянистые, неприятного запаха. У некоторых птиц отсутствовала способность к полету и движению, отмечалась хромота из-за воспаления одного или нескольких суставов. Гибель птицы наступала в течение 2-3 суток, если они не становились жертвами собак и кошек вивария. В конце октября – начале ноября массовая гибель прекратилась. Для выяснения причин в ГУСО «Самарская областная ветеринарная лаборатория» отправлен материал для исключения или подтверждения массового отравления, а также инфекций различной этиологии. Учитывая сходство клинического проявления многих инфекционных болезней голубей, а также вероятность носительства вследствие постоянной циркуляции различных возбудителей инфекционных заболеваний, которые могли бы, не являясь этиологическим 145 фактором гибели, несколько искажать полученные данные, материал отправлялся для вирусологического, бактериологического и химико-токсикологического исследований. Для исключения отравления птиц препаратами, используемыми для дератизации, что имело место в эти месяцы в виварии, трупы павших птиц исследованы химическим методом. Согласно полученным результатам, в доставленном материале отравляющие вещества, такие как фтор, мышьяк, фосфид цинка, зоокумарин, крысид, не обнаружены, что дало нам возможность исключить причину массового отравления сизых голубей. Для исключения вирусных заболеваний от птиц с клиническими признаками заболевания отобраны пробы крови с последующим исследованием на грипп птиц. В качестве методов лабораторной диагностики использовались РТГА (реакция торможения гемагглютинации) и ПЦР (полимеразная цепная реакция). Результаты исследований отрицательные. Последующие бактериологические лабораторные методы позволили исключить пастереллез и поставить окончательный диагноз на сальмонеллез. Из патологического материала выделен возбудитель – Salmonella typhimurium. Культура возбудителя выделена из крови, сердца, печени, селезенки и костного мозга птиц. Таким образом, причиной сезонной массовой гибели сизых голубей является инфекция, спровоцированная Salmonella typhimurium, что в принципе и объясняет периодичность эпизоотии вследствие постоянной циркуляции данного возбудителя в популяции синантропных птиц. Конечно, нельзя категорично утверждать, что все подобные случаи являются следствием только сальмонеллезной инфекции, каждый конкретный случай подлежит индивидуальному исследованию с последующим анализом после лабораторного подтверждения или исключения тех или иных заболеваний как инфекционного, так и неинфекционного характера. 146 Учитывая мнение многих авторов, следует отметить, что сальмонеллез голубей занимает одно из ведущих мест, и птицы являются резервуаром инфекции, представляя потенциальную угрозу возникновения у молодняка птиц инфекций в том случае, если для этого имеются соответствующие условия, что и объясняет сезонность возникновения данной инфекции среди молодых голубей [2, 4, 5]. На основании проведенных исследований можно сделать следующий вывод: причиной массовой гибели диких сизых голубей на территории вивария Самарской государственной сельскохозяйственной академии стала эпизоотия сальмонеллеза, вспышки имеют сезонный характер (весна, осень) и обладают четкой периодичностью. Библиографический список 1. Жеглов В.В. Случаи псевдотуберкулеза у голубей // Актуальные проблемы ветеринарной медицины: материалы междунар. науч.-практ. конф. – Ульяновск, 2003. – С. 110-111. 2. Рахманов А.И. Голуби и профилактика их заболеваний /А.И. Рахманов, Б.Ф. Бессарабов. – М.: Россельхозиздат, 1987. – 271 с. 3. Харитонов М.В. Эпизоотологическая роль синантропных птиц в поддержании эпизоотического процесса в стационарно неблагополучных по пастереллезу хозяйствах // Вет. консультант. – 2008. – №3.– С. 4-5. 4. Демкин Г.П. Диагностика и профилактика сальмонеллеза птиц / Г.П. Демкин, В.В. Салаутин // Тез. докл. Междунар. науч. практ. конф. «Актуальные проблемы ветеринарно-санитарного контроля сельскохозяйственной продукции». – Саратов, 1995. – С. 143-145. 5. Лимаренко А.А. Болезни сельскохозяйственных птиц: справочник / А.А. Лимаренко, И.С. Дубров, А.А. Таймасуков, С.Н. Забашта. – СПб.: Лань, 2005. – 448 с. 147 УДК 616.981.49+576.89+575.857+636.5/6 Н.А. Кузнецова, Н.А. Шубин, А.В. Раков, Т.В. Катарская, Е.Г. Гранина НИИ эпидемиологии и микробиологии СО РАМН, Владивосток, ООО «Уссурийская птицефабрика» МИГРАЦИИ САЛЬМОНЕЛЛ С ПЛЕМЕННЫМ МАТЕРИАЛОМ И ИХ ЗНАЧЕНИЕ В ФОРМИРОВАНИИ ПОПУЛЯЦИИ SALMONELLA ENTERITIDIS НА ПТИЦЕФАБРИКЕ Изучена смена популяции Salmonella enterica serotype enteritidis (S. enteritidis) на предприятии промышленного птицеводства в Приморском крае. Показано, что племенной материал может быть высокоинфицированным определенными плазмидными типами S. enteritidis. Микроб передается по цепочке: яйцо — цыпленок – курица – яйцо, сохраняя плазмидную характеристику и высокую инфицированность на отдельных этапах передачи. Миграции сальмонелл с племенным материалом являются важным фактором распространения сальмонеллеза на промышленных птицефабриках. Change of Salmonella enterica serotype Enteritidis population (S. Enteritidis) at the industrial poultry farms in Primorye Territory is studied. It is shown that the breeding material can be highly infected by defined plasmid types of S. enteritidis. The microbe is transferred on a chain: egg - a chicken - a hen - egg, keeping the plasmid characteristic and high infection at separate stages of transfer. Migrations of Salmonella with a breeding material are the important factor of salmonellosis distribution on industrial poultry farms. Рост заболеваемости населения сальмонеллезом, вызванным S. enteritidis, связывается с реализацией населению контаминированной сальмонеллами продукции предприятий птицеводства. Установлено, что инфицирование кур S. 148 enteritidis не сопровождается развитием клинически выраженной сальмонеллезной инфекции, а присутствие сальмонелл в яйце не нарушает развитие эмбриона и цыпленка [1]. В обоих случаях у птиц формируется бессимптомное носительство S. enteritidis, и животные становятся постоянным источником загрязнения внешней среды, инфицирования здоровых животных и контаминации пищевых продуктов животного происхождения [2]. Все это создает условия для распространения инфекции среди населения. Целью исследования являлось изучение возможности завоза возбудителя сальмонеллеза на птицефабрику Приморского края с инфицированным сальмонеллами племенным материалом. Исходя из поставленных задач изучена партия яиц, полученных 6.09.2006 г. птицефабрикой Приморского края от племенного предприятия Северо-Западного региона России. Бактериологически исследованы 750 оплодотворенных яиц, отобранных методом случайной выборки после инкубации, и 201 цыпленок, выращенный из этой же партии яиц. Кроме того, исследовано 1002 оплодотворенных яица, полученных от кур родительского стада. Исследуемый материал (содержимое яйца, печень цыплят) высевали на плотную дифференциальную среду и дополнительно на среду накопления (селенитовый бульон) с последующим высевом на плотные дифференциальные среды. Кроме того, в работе изучены 34 штамма S. enteritidis, выделенные из проб продукции птицефабрики в 1996-2002 г. и проанализирована заболеваемость населения Приморского края в период с 1995 по 2006 г., обусловленная различными плазмидными типами микроба. Идентификацию и серотипирование штаммов сальмонелл проводили общепринятыми методами, а для генотипирования микроба использовали плазмидный анализ [3]. В течение 13 лет наблюдения за популяцией сальмонелл выявлен эпизод смены популяции S. enteritidis на пред149 приятии промышленного птицеводства в Приморском крае. Установлено, что появлению на птицефабрике в 2003 г. нового плазмидного типа микроба предшествовала смена поголовья птицы. Генотипирование штаммов S. enteritidis, выделенных из продукции птицефабрики, в период 1995-2002 гг., выполненное на основе плазмидного анализа, показало, что выделенные штаммы относились к трем различным генотипам микроба (38 Mda, 38:1,4 Mda, 38:2,6 Mda), среди которых преобладали штаммы S. enteritidis, маркированные плазмидами 38:1,4 Mda (23 из 34 проб). Данный плазмидный тип S. enteritidis играл ведущую роль в заболеваемости населения края сальмонеллезом в 1995-2002 гг., и его этиологическая значимость составляла от 35,0 до 57,8% в разные годы наблюдения. Можно утверждать, что причина семилетнего доминирования плазмидного типа микроба 38:1,4 Mda в заболеваемости населения края состояла именно в циркуляции данного плазмидного типа микроба на птицефабрике [2]. В 2003 г. в заболеваемости населения края произошли существенные изменения. При этом, начиная с 2003 г., значительную роль в заболеваемости населения стал играть новый плазмидный тип S. enteritidis 38:4,2 Mda. Штаммы данного плазмидного типа выявлены в 2003 г. у 127 больных (23,5% от всей заболеваемости), а в 2004, 2005 и 2006 гг. соответственно у 131 (30,5%), 114 (19,9%) и у 267 (32,7%) заболевших [4]. Связь заболеваемости населения, вызванной S. enteritidis плазмидного типа 38:4,2 Mda, с продукцией птицефабрики была подтверждена выделением в 2006 г. этого микроба из двух проб продукции птицефабрики. Представленные результаты явились основанием для проведения комплексных исследований по изучению механизмов формирования возбудителя на птицефабрике. С этой целью был изучен племенной материал (яйца), доставлен150 ный в 2006 г. с одного из племзаводов Северо-Западного района России, являющегося постоянным поставщиком с 2003 г. Результаты исследования материала представлены в таблице. В соответствии с приведенными данными, при исследовании 750 яиц изолировано 7 штаммов S. enteritidis, а в целом инфицированность яиц составила 0,93%. Динамика инфицированности племенного материала Наименование материала Эмбрионы 4- и 8-дневные Эмбрионы 18-дневные Всего яиц Цыплята трехдневные Яйца оплодотворенные от кур родительского стада КолиВыделено Серовар и Степень инчество, штаммов плазмидный фицированношт. сальмонелл тип (в Mda) сти (%,М±m) 1-й этап S. enteritidis 510 5 0,98±0,43 38 : 4,2 S. enteritidis 240 2 0,83±0,58 38 : 4,2 S. enteritidis 750 7 0,93±0,35 38 : 4,2 2-й этап S. enteritidis 201 14 7,00±1,80 38 : 4,2 3-й этап 1002 7 S. enteritidis 38 : 4,2 0,70±0,26 Второй этап исследований показал, что инфицированность трехдневных цыплят была достоверно выше (t=3,5; Р<0,01) по сравнению с эмбрионами (в 7,5 раза). Можно полагать, что достоверно более высокая частота выделения штаммов S. enteritidis обусловлена их инфицированием от цыплят-бактериовыделителей через меконий и фекалии в первые дни жизни после выхода из яиц. На третьем этапе выполнено исследование 1002 яиц, полученных от кур, выращенных из цыплят этого же пле151 менного материала. Проведенные исследования выявили инфицированность 0,70±0,26% яиц. Все штаммы относились к плазмидному типу 38:4,2 Mda. Таким образом, племенной материал, поступающий на производственные птицефабрики, может быть высокоинфицированным определенными плазмидными типами S. enteritidis. Возбудитель сальмонеллеза передается по цепочке: яйцо – цыпленок – курица – яйцо, сохраняя высокую инфицированность на отдельных звеньях передачи. Выход цыплят из яиц приводит к достоверно значимому повышению их инфицированности. Следовательно, можно утверждать, что смены возбудителя на производственных птицефабриках связаны с завозом зараженного сальмонеллами племенного материала. Библиографический список 1. О роли однодневных цыплят в передаче Salmonella enteritidis / Г.П. Облапенко, А.М. Владимирова, В.С. Деревянский и др. // Журн. микробиологии. – 1991. – №6. – С. 43-45. 2. Monitoring and prevention of micro-organisms associated with contamination of poultry meat, eggs and egg products: 11th Nation. Congr. of Food Microbiol / M.C. Mendoza, B. Guerra, E. Landeras et al. // The Pablic Health Institute of Navarra and the University of Navarre. – 1999. – P.45-53. 3. Kado C.I., Rapid procedure for detection and isolation of large and small plasmid/ C.I. Kado, S.T. Liu // J. Bacteriol. – 1981. – Vol. 145. – P. 1365-1373. 4. Структура популяции Salmonella enteritidis в Приморском крае по данным плазмидного анализа/Ф.Н. Шубин, А.В. Раков, Н.А. Кузнецова и др. // Журн. микробиологии.-2006. – №3, прил. – С. 28-32. 152 УДК 619.613.155: 579:636.52 М.Д. Кучерук Национальный университет биоресурсов и природопользования Украины МИКРОБНОЕ ЗАГРЯЗНЕНИЕ ВОЗДУШНОЙ СРЕДЫ ПТИЧНИКОВ Чрезмерное микробное давление в птичниках ухудшает состояние здоровья птиц и ведёт к снижению их продуктивности. Исследовали накопление микроорганизмов в воздухе птичников. Excessive microbial pressure originates conditions for poultry health worsening and its production decreasing. Investigated the accumulation of microorganisms in the air of poultry houses. Значительного внимания заслуживает вопрос бактериального загрязнения животноводческих помещений и критического повышения концентрации бактерий в птичнике за счет содержания большого количества птицы на ограниченной территории. В результате этого в помещениях может циркулировать много условно-патогенных и патогенных микроорганизмов [1]. Поэтому сейчас микробиологическим показателям чистоты воздуха стали уделять особое внимание, ведь исследованиями многих ученых установлено, что самым мощным фактором, который негативно влияет на экологию птицы в промышленных условиях, является чрезмерное скопление микрофлоры в воздухе и на поверхности оборудования птичников, инкубаториев, кормоцехов и других птицеводческих помещений [2] . На птицеводческих объектах количество микроорганизмов и их состав таков, что между ними в большинстве 153 случаев устанавливается состояние равновесия. Это состояние динамично изменяется, но не всегда влияет на здоровье птиц. Однако микробные ассоциации, которые накапливаются в относительно замкнутой среде птичников, создают угрозу здоровью птицы и ее продуктивности [3, 4]. Таким образом, пороговая концентрация микроорганизмов – критерий оценки степени эпизоотического риска. Размеры контаминации воздуха и поверхностей в местах содержания птицы пропорциональны. Микробы постоянно мигрируют из поверхностей в воздушную среду и наоборот. Известно, например, что кишечную палочку можно найти даже в смывах с потолка [5]. Цель наших исследований – установить видовой и количественный состав патогенной и условно-патогенной микрофлоры в воздухе птичников. Цыплята-бройлеры кросса Кобб-500 содержались в стандартных птичниках по 27000 цыплят в каждом. Цыплята содержалась на полу при неизменной подстилке. Цикл выращивания – 42 суток. В птичниках пробы воздуха исследовали методом седиментации на МПА (для определения общего бактериального обсеменения) и среде Эндо (для санитарно-показательной микрофлоры). Контроль за накоплением микрофлоры проводили на 7-й, 21-й, 36-й день выращивания цыплят по общепринятым методикам [5]. Согласно «Ветеринарно-санитарным правилам для птицеводческих предприятий и требованиям к их проектированию», предельно допустимые концентрации микроорганизмов в 1 м3 воздуха помещений для выращивания молодняка птицы на полу 200 тыс. м. т., для содержания взрослой птицы на полу 500 тыс. м. т. в 1 м3. Однако в реальных условиях, на птицефабрике, общее микробное число воздуха птицеводческого помещения не соответствует 154 санитарно-гигиеническим нормам, о чем свидетельствуют проведенные нами исследования (таблица). Общее микробное число воздуха птичников, КУО/м3, М ± m Период выращивания, сут 1 10 20 30 40 Общее микробное число 140,00±16,40 900,00±75,00 2880,00±215,10 6309,60±321,80 10283,60±976,00 Значительно увеличивалось в зависимости от периода выращивания и количество бактерий группы кишечной палочки (рисунок). тыс/м3 Количество бактерий группы кишечной палочки Общее микробное число воздуха уже на 7-е сутки выращивания птицы в птичниках превышало норму, приведенную в ветеринарно-санитарных правилах, в 23 и 20 раз 155 соответственно, а на конец периода выращивания почти в 60 раз. Из воздуха птичников, где содержались цыплята, выделено также значительное количество плесневой микрофлоры. При таких условиях содержания у птиц снижается состояние неспецифических защитных сил организма, возникают инфекционные заболевания, расстройства пищеварения и дисбактериоз, снижается интенсивность их роста и развития. Следовательно, бактериальная загрязненность воздуха и предельно допустимая концентрация микроорганизмов являются одним из основных санитарных критериев оценки состояния эпизоотического риска в птицеводстве. В производственных условиях практически невозможно полностью избавиться от аэрогенной микрофлоры, однако контролировать и поддерживать ее на допустимом уровне совершенно необходимо. Для этого используют различные антибактериальные средства. Нужно, чтобы они были разрешены для санации воздуха в присутствии птиц. Используют также препараты, нормализующие видовой и количественный состав микробиоты птиц, например, растворы наночастиц серебра или растворы пробиотиков. Для прогрессивного экологически и биологически безопасного производства продукции животноводства необходимо учитывать все возможные риски и пытаться предотвращать поступление в организм животных вредных веществ. Залог здоровья животных – это надлежащие условия содержания. Библиографический список 1. Стець В. Епізоотологічний моніторинг. Мікробіологічний моніторинг сальмонельозів птиці // Ветеринарна медицина України. – Київ, 2004. – №5. – C. 10-11. 156 2. Зон Г.А. Патогенность микрофлоры птичников и технология содержания цыплят // Тез. докл. НО СССР ВНАП. – 1990. – С .162-163. 3. Ничик С. А. Вплив мікробізму пташника на стан організму курчат та епізоотичну ситуацію птахогосподарства: автореф. дис. ... канд. вет. наук.– Суми, 1999. – 141 с. 4. Сегал И. Надежная профилактика бактериальных заболеваний бройлеров // Птицеводство. – 2006.– №9. – С. 29-30. 5. Кожемяка Н. Профилактика болезней кур // Птицеводство. – 2002. – № 5. – С. 30-32. УДК 619:579.842.17 Т.В. Мазур, Н.Г. Сорокина, Е.К. Гальчинская Национальный университет биоресурсов и природопользования Украины РАЗРАБОТКА И ПРИМЕНЕНИЕ НОВОГО ПРОБИОТИКА ДЛЯ ПРОФИЛАКТИКИ ЖЕЛУДОЧНО-КИШЕЧНЫХ БОЛЕЗНЕЙ НОВОРОЖДЕННЫХ ТЕЛЯТ С целью профилактики и лечения желудочно-кишечных заболеваний новорожденных телят разработан и предложен пробиотик нового поколения бактонорм, который продемонстрировал высокий экономический эффект в условиях производства. In arder to prevent and treat the gastrointestinal diseases of newborn calves the probiotic of new generation Bactonorm which showed high economical effect in farm conditions was invented. Среди заболеваний, распространенных в животноводческих хозяйствах Украины, одно из первых мест занимают болезни желудочно-кишечного тракта новорожденных телят. Причины возникновения массовых желудочно-кишеч157 ных заболеваний разнообразные, но все они сопровождаются изменениями количественного и качественного состава микрофлоры кишечника, уменьшением численности облигатных ее видов и размножением на этом фоне представителей условно-патогенных микроорганизмов. Изменения такого рода приводят к развитию в кишечнике микробного дисбаланса. Еще в начале двадцатого столетия выдающийся русский ученый И.И. Мечников выдвинул теорию о замене вредной микрофлоры кишечника полезной, что влияет на продление жизни. Его идеи получили отображение при создании ряда бактерийных препаратов, которые применялись для коррекции и нормализации микрофлоры кишечника. Большинство таких препаратов получили название эубиотики или пробиотики [1]. Для получения пробиотиков используют молочно-пропионовокислые, ацидофильные бактерии, бифидобактерии, фекальный стрептококк, кишечную палочку, целлюлозолитические, каротинсинтезирующие бактерии и др. [2 - 6]. Нормализация микрофлоры желудочно-кишечного канала у молодых животных в настоящее время сводится к применению пробиотиков, основу которых составляют микробы-антагонисты, способные вытеснять продуктами своего метаболизма другие виды бактерий, которые заселяют кишечник. Однако сначала ниши желудочно-кишечного тракта занимают вредные микроорганизмы, среди которых доминируют представители гнилостной микрофлоры и условно-патогенные виды, что приводит к дисбактериозам и значительным нарушениям функции кишечника. В этом случае применение пробиотиков не всегда дает положительный эффект, животные отстают в росте и развитии, часто у них возникают рецидивы болезни [7]. Сотрудниками кафедры микробиологии и вирусологии 158 НУБиП Украины при нашем участии разработан новый пробиотик бактонорм. Цель изобретения – своевременное, в первые часы после рождения, заселение желудочно-кишечного канала телят представителями нормальной микрофлоры для предупреждения развития дисбактериозов, которые, как правило, обусловливают развитие гастроэнтероколитов с осложненными последствиями. В состав препарата входят Enterobacter cloacаe (штамм 30/3) и Escherіchіa colі (штамм 12/1), которые высевали в чашки Петри с мясопептонным агаром (МПА). Streptococсus cremorіs (штамм 9/1) высевали на МПА с добавлением 1% глюкозы и 3% кровяной сыворотки. Культивировали посевы в термостате при температуре 37°С в течение 48 ч. Каждую в отдельности полученную бактериальную массу смывали стерильным физиологическим раствором, доводили концентрацию до 2 млрд микробных клеток в 1 мл. Смешивали бактериальную массу культур Enterobacter cloacаe, Escherіchіa colі, Streptococсus cremorіs в соотношении 3:3:4. Полученную смесь разливали в стерильные флаконы по 10 мл и герметически закрывали. По внешнему виду препарат бактонорм – однородная суспензия средней плотности серовато-белого цвета без посторонних примесей. Контроль определения контаминации препарата посторонней микрофлорой осуществляли путем посева на среду Сабуро, МПБ, МПА, Эндо, предварительно проверив на стерильность. Во всех питательных средах не должно быть роста посторонней, нехарактерной для препарата бактериальной и грибковой флоры. В пробирках с МПБ препарат образовывал незначительное равномерное помутнение, в мазках выявляли короткие грамотрицательные неспорообразующие палочки, характерные для энтеробактерий. На глюкозо-сывороточном МПА выявляли колонии двух типов: средней величины S-варианта, характерные для 159 E. colі, и мелкие, характерные для стрептококков. На среде Эндо – рост, типичный для эшерихий. Определение безвредности препарата бактонорм проводили путем постановки биопробы на белых мышах. Препарат бактонорм не должен вызвать заболевание и гибель мышей в течение 5 суток наблюдения. Препарат выпаивали телятам с охлажденной кипяченой водой в объеме 20 мл дважды: первый раз до выпойки молозива не позднее 2-4 ч после рождения в дозе 10 мл и второй раз через 24 ч в той же дозе. В состав предложенного препарата бактонорм входят представители нормальной облигатной (постоянной) микрофлоры кишечного тракта телят, преимущественно из семейства Enterobacterіaceae, у которых не выявлено таких болезнетворных факторов, как гемолитическая, лецитиназная, ДНК-азная активность и патогенность для лабораторных животных. Эти представители выделены из содержимого кишечника здоровых телят, и при введении новорожденным телятам через рот способны довольно легко адаптироваться и интенсивно размножаться в желудочно-кишечном тракте, колонизируя его соответствующие ниши и не оставляя возможностей для поселения в кишечнике нехарактерной для него микрофлоры, в особенности условно-патогенной. У обработанных препаратом телят в первые часы жизни нормализируется состав микрофлоры кишечника, не развивается дисбактериоз. Молочно-кислые бактерии синергично сосуществуют с типичными представителями энтеробактерий за счет поселения в разных отделах желудочно-кишечного тракта. Сопоставленный анализ с прототипами приводит к выводу, что препарат бактонорм отличается от известных пробиотиков тем, что механизм его действия базируется не на антагонизме, присущем прототипам, а на синерги160 ческом взаимодействии видов бактерий, которые входят в его состав и способны заселять соответствующие отделы желудочно-кишечного канала, создавая условия для нормализации микрофлоры на всем его протяжении. Препарат рассчитан на профилактику дисбактериоза, в то время как известные прототипы преимущественно применяются уже на фоне дисбактериоза с целью его коррекции. Пробиотик нового поколения бактонорм показал высокую лечебно-профилактическую эффективность при его производственных испытаниях в ряде хозяйств. Из 100 новорожденных телят, которым после рождения давали пробиотик бактонорм, только у 2-5% имели место нарушения пищеварения в легкой форме, и животные быстро выздоравливали. Экономический эффект от применения пробиотика составил 3,70 грн. на 1 грн. затрат. На препарат утверждена соответствующая техническая документация на его производство и применение ТУУ 46.15.438.-99, инструкция, получен патент Украины. Библиографический список 1. Venteri A. Impact on the composition of the faecal flora by a new probiotic preparation: preliminary data on maintenace treatment of patients with ulcerative // Aliment Pharmacol Ther. – 1999. – P. 1103-1108 2. Антипов В.А. Использование пробиотиков в животноводстве // Ветеринария. – 1991. – №1. – С.55-58. 3. Петровская В.Г. Микрофлора человека в норме и патологии / В.Г. Петровская, О.П. Марко. – М.: Медицина, 1978. – С. 80-85. 4. Пинегин Б.В. Дисбактериозы кишечника/ Б.В. Пинегин, В.М. Коршунов, В.Н. Мальцев.– М. – 1984.-С.28-32. 5. Современные представления о механизмах лечебно-профилактического действия пробиотиков из бактерий рода Bacillus / В.В. Смирнов, С.В. Резник, В.А. Вьюницкая и др.// Микробиол. журн. – 1993. – №4. – С. 92-112. 6. Bengmark S. Ecological Control of the Gastrointestinal Tract. The Role of Probiotic Flora // Gastrenterol. – 1988. – Vol.42. – P.2-7 7. Ибатуллина Ф.Ж. Изучение влияния препаратов «Бактонорм» 161 и «Комбиферон» на иммунную систему новорожденных телят / Ф.Ж. Ибатуллина, О.Т. Марчук, А.Л. Кравченко// Науч. вестн. Национал. аграр. ун - та. – Киев, 2005. – Вып 89. – С.34-37. УДК 619:616.981.42:636.4 Ю.А. Момот Приморская ГСХА БИОЛОГИЧЕСКИЕ ОСОБЕННОСТИ ВОЗБУДИТЕЛЕЙ ИЕРСИНИОЗА С помощью микроскопического, бактериологического и биологического методов исследований изучались биологические и физиологические данные возбудителей кишечного иерсиниоза и псевдотуберкулеза у свиней. Приводятся биохимические признаки данных возбудителей у животных, что можно использовать при их дифференциальной оценке. Using microscopic, bacteriological and biological research methods were studied biological and physiological data of intestinal yersiniosis and pseudotuberculosis in pigs. Provides biochemical features of these agents in animals that can be used for their differential evaluation. В инфекционной патологии животных на Дальнем Востоке имеет большое значение группа заболеваний, которые обьединены общим названием «иерсиниозы». К иерсиниозам, как известно, относят три инфекционные болезни – чуму, псевдотуберкулез и иерсиниоз. Так как чума является карантинной инфекцией, то она обычно рассматриваются отдельно. По этой причине в группе «иерсиниозов» чаще всего рассматривается псевдотуберкулез и иерсиниоз, которые широко распространены в мире. Дальний Восток является эндемической зоной по распространению иерсиний. Многообразие клинических проявлений, а также незначи162 тельный процент регистрации этих инфекций представляют значительную трудность при распознавании этих болезней [1, 2]. В настоящее время считается доказанной роль иерсиний в формировании острых и хронических заболеваний желудочно-кишечного тракта. Полиморфизм клиники этих инфекций хорошо исследован у человека [3], однако у животных этот вопрос изучен недостаточно [4]. С помощью микроскопического, бактериологического и биологического методов исследований изучались биологические и физиологические данные возбудителей кишечного иерсиниоза и псевдотуберкулеза у свиней. Yersinia enterocolitica представляет собой грамотрицательную палочку с закругленными концами длиной 0,8-1,2 мкм при ширине 0,5-0,8 мкм. Возбудитель обладает активной подвижностью при температуре 18-20°С. При температуре 28-37°С подвижность прекращается. Спор не образует. Бактерия является факультативным анаэробом. Растет на средах с обедненным составом, однако выделение ее в чистой культуре из биологического материала больных сопряжено с определенными трудностями, обусловленными зависимостью вирулентных штаммов иерсиний от наличия в среде ионов кальция. При выращивании возбудителя кишечного иерсиниоза на среде Эндо на вторые сутки колонии имеют розовый оттенок, что может являться отличительным признаком от колонии псевдотуберкулеза. При культивировании на слабощелочном агаре колонии иерсиний мягкой консистенции, обнаруживают признаки сливного роста. При 37°С колонии иерсиний непрозрачны, выпуклы. Бактерия псевдотуберкулеза (Yersinia pseudotuberculosis) представляет собой палочку с закругленными концами, достигающую в длину 0,8-2 мкм при ширине 0,4-0,8 мкм. Возбудитель является факультативным анаэробом, хорошо растет на жидких питательных средах. 163 Микроорганизмы растут при температурах от 4 до 40°С. Наиболее благоприятной является 20-28°С. Биохимическим методом исследования выяснилось, что возбудители обладают разными биохимическими признаками, что необходимо учитывать при дифференциальной диагностике. Y. enterocolitica, в отличие от Y. pseudotuberculosis, положительно реагирует с амигдалином, сахарозой, сорбитом, сорбозой, целлобиозой, тетратионатредуктазой и дает положительную пробу ФогесПроскауэра. Y. pseudotuberculosis дает положительную реакцию с мелибиозой, В-ксилозидазой, дезоксирибонуклеазой, в то время как Y. enterocolitica имеет отрицательные показатели при проведении этих реакций. Таким образом, приведенные биологические характеристики возбудителей болезней, входящих в группу иерсиниозов, сходны по своей морфологическим и физиологическим показателям, что затрудняет проведение дифференциации между возбудителями. Используя биохимические признаки возбудителей кишечного иерсиниоза и псевдотуберкулеза, можно дифференцировать один возбудитель от другого. Библиографический список 1. Шестакова И.В. Иерсиниоз/ И.В. Шестакова, Н.Д Ющук // Инфекционные болезни.— 2006. – Т. 4, №3. – С. 78-86. 2. Попова О.В. Изменения иммунного статуса при различных формах иерсиниоза /О.В. Попова, И.В. Шестакова, М.М. Гультяев, Н.А. Цветкова, Т.И. Попова, Г.К. Шепелева //Сб. науч. тр. ИКБ№2. – М., 2007. – С.151-155. 3. Васякина Л.И. Клинические формы иерсиниозной инфекции и механизмы иммунной защиты у детей: автореф. дис. …канд. мед. наук. – СПб., 2002. – 24 с. 4. Налепова М.Ю. Кишечный иерсиниоз свиней/ М.Ю. Налепова, В.И. Плешакова// Сиб. вестн. с.- х. науки. – 2005. – №2. – С.49-51. 164 УДК 619:616.98:579.852.1(571.54) Г.Б. Муруева Бурятская ГСХА им. В.Р.Филиппова ГЕОГРАФИЧЕСКИЕ ОСОБЕННОСТИ СИБИРСКОЙ ЯЗВЫ В РЕСПУБЛИКЕ БУРЯТИЯ Сибирская язва как особо опасная болезнь не потеряла своей актуальности в Республике Бурятия и в настоящее время. Очаги болезни разнообразны по географическому расположению, экологической характеристике и потенциальной опасности. Особенно опасны очаги инфекции, расположенные в поймах притоков р. Селенги. Учтенные и неучтенные стационарные очаги, несомненно, представляют потенциальную угрозу животноводству республики, имеют эпидемиологическое значение. Anthrax is actual disease of animal in Buryat republic. One of the diseases is Anthrax that is found in number of settlements along the basin of the Selenga river in particular. The Anthrax focus is diverse by ecological character and potentially hazardous. The most hazardous are those infections, which could be found near the tributary of the Selenga and other rivers. The affected and unaffected areas of infection are life threatening to agricultural livestock in the region and have epidemiological significance. Сибирская язва, по-бурятски Боомо, была известна на территории нынешней Республики Бурятия примерно с конца XVII в. Тогда эпизоотии этой болезни наносили значительный ущерб населению вследствие массовой заболеваемости и падежа животных. В периоды эпизоотий также отмечались высокая заболеваемость и смертность людей. И.Л. Наймановым [1] в документах Государственного архива республики обнаружены данные о сибирской язве 1808 г., о вспышке антракса в 1815 г. среди лошадей ямщиков на отрезке дороги Верхнеудинск – Чита Московского 165 тракта. Распространению антракса в досоветский период способствовала оживленная торговля скотом с Монголией и Китаем. Сибирская язва как особо опасная болезнь не потеряла своей актуальности в Республике Бурятия и в настоящее время. За последние 20 лет болезнь неоднократно регистрировалась в различных районах, находящихся в разных природно-географических и климатических условиях. Материалом для наших исследований служили данные ветеринарной отчетности за 20 лет, кадастр неблагополучных пунктов по опасным зооантропонозам, документы Государственного архива Республики Бурятии. В работе использован эпизоотологический метод исследования (сравнительно-исторический, сравнительно-географический способы, эпизоотологическое обследование). Стационарные очаги сибирской язвы имеются в различных населенных пунктах, расположенных в бассейне оз. Байкала, а также вне его. В настоящее время она утратила эпизоотичность, но несмотря на широкий охват специфической профилактикой, продолжает регистрироваться в виде спорадических случаев. Случаи болезни регистрируются в основном у животных частного сектора, не подвергавшихся вакцинации, причем не только на вновь осваиваемых местностях, но и в обжитых районах, на территории которых сохранились стационарные сибиреязвенные очаги. Так, например, известно, что стационарный сибиреязвенный очаг в местности Иркана Северобайкальского района сформировался еще в 1906 г., активизировался в 1907 г. и в последний раз в 1995 г., через 88 лет. Вскрытие сибиреязвенного очага в селе Баянгол Баргузинского района в XX столетии происходило неоднократно (1935, 1937, 1940-1942, 1958 гг.), а также имело место в 2008 г. Географическое распространение таких очагов характерно для большинства админи166 стративно-хозяйственных территорий республики. Поэтому Республика Бурятия относится к стационарно неблагополучным регионам страны по сибирской язве как чрезвычайно неблагополучный регион по данному заболеванию в довакцинальный период [2] По данным кадастра неблагополучных пунктов по опасным зооантропонозам в Республике Бурятия [3], на территории республики зарегистрированы 218 неблагополучных пунктов, точное местонахождение большинства из которых не установлено ввиду изменения административных названий, объединения и укрупнения населенных пунктов и других причин. В разных природно-географических зонах республики существуют старые сибиреязвенные захоронения, примерное число которых более 300, но из них установлены и паспортизированы около двух десятков. Несомненно, такие места представляют огромную опасность для современного животноводства и эпидемиологическую опасность для людей. Особенно опасны очаги инфекции, расположенные в поймах притоков р. Селенги, так как выносу спор возбудителя сибирской язвы из глубины почвы и заражению верхних слоёв могут способствовать разливы рек, ливневые дожди, сели и работы, связанные с перемещением грунта. Республика Бурятия занимает особое геополитическое пространство в Центральной Азии, является местом активных миграций и перемещений населения, грузов, так как по ее территории проходит государственная граница РФ. Она имеет общую государственную границу пятью районами с Монголией, по ее территории протекает крупная водная артерия р. Селенга, берущая начало в Прихубсугулье. Сибирская язва представляет угрозу и для животноводства северной зоны Монголии, где в долине р. Селенги сохранились резервуары и источники инфекции. Спорадические случаи болезни здесь отмечались неоднократно. 167 При изучении ландшафтно-географической приуроченности сибирской язвы в условиях Республики Бурятия в XX столетии установлено, что наибольшее количество вспышек болезни было зарегистрировано в долинных ландшафтах, расположенных вдоль крупных рек республики, таких как Селенга, Чикой, Хилок, Уда, Джида, Иркут, протекающих по территории следующих районов: Селенгинский, Бичурский, Кяхтинский, Заиграевский, Мухоршибирский, Тункинский, – а также в районах, находящихся в бассейне оз. Байкала, — Кабанский, Северобайкальский, Тункинский, Баргузинский. Антракс в Бурятии регистрируется в основном в летний период года [4], но были случаи вспышек и зимой, как, например, в местности Иркана Северобайкальского района в 1995 г. при скармливании крупному рогатому скоту термически не обработанного картофеля, выращенного на инфицированной почве. Летняя активизация эпизоотического процесса сибирской язвы регистрируется в июле, когда температура окружающей среды достигает своего максимума и равняется 21,5°С, температура почвы поднимается до 17°С и выпадает максимальное количество осадков – 23,6 мм [4]. Заболеваемость людей сибирской язвой почти всегда регистрировалась в местах вспышек болезни среди животных (Кяхтинский, Тункинский, Баргузинский районы). По данным А.В. Родзиковского и др. [5], в период с 1894 по 1912 г. показатель заболеваемости составлял 0,7-2,29 на 100 тыс. населения; в период с 1943 по 1970 г. в республике заболело сибирской язвой 39 человек. Заболеваемость людей регистрировалась в разных районах республики и носила в основном спорадический характер. Последний случай сибирской язвы у людей отмечался в 2008 г. в Баргузинском районе, прилегающем к оз. Байкалу. Болезнь возникла в местности, стационарно неблагополучной по антраксу, где 168 она регистрировалась неоднократно в ранний советский период. К спорадическим вспышкам сибиреязвенной инфекции в республике приводят недостаточный учет восприимчивых животных на неблагополучных сибиреязвенных территориях, отсутствие паспортизации мест старых захоронений, массовых скотомогильников, использование таких территорий для выпаса скота, отсутствие должного эпизоотологического и эпидемиологического надзора и контроля. Библиографический список 1. Найманов И.Л. Эпизоотология сибирской язвы, бруцеллеза и некоторых других инфекционных болезней в Бурятской АССР. Совершенствование противоэпизоотических мероприятий. – Омск, 1973. – 47 с. 2. Основы географической эпизоотологии: учеб. пособие / В.Н. Кисленко, Н.А. Шкиль, С.К. Димов, А.А. Колосов, С.А. Юрик; под ред. А.С. Донченко / МСХиП. РАСХН. Сиб. отд-ние. ИЭВСиДВ. НГАУ. – Новосибирск, 1997. – 84 с. 3. Муруева Г.Б., Кадастр неблагополучных пунктов по опасным зооантропонозам в Республике Бурятия/ Г.Б. Муруева, В.В Смолин, Улан-Удэ: Изд-во БГСХА, 2000. – 47 с. 4. Цыдыпов В.Ц., Эпизоотологический мониторинг сибирской язвы в регионе Центральной Азии/ В.Ц. Цыдыпов, Г. Д. Галсанова, Ю. Ж. Будаев, М.Ц. Гармаев. — Улан-Удэ, 2000. – 134 с. 5. Родзиковский А.В. Сибирская язва в Забайкалье / А.В. Родзиковский, М.А. Ян, Л.Н. Юзвик, Р.С. Шобоева // Материалы Междунар. науч.-практ. конф. «Актуальные проблемы обеспечения здоровья международных путешественников. – Улан-Удэ, 2001. – С.122124. 169 УДК 619:636.4-084 Л.Б. Нехуров, М.Ц. Гармаев, Б.В. Зориктуев Бурятская ГСХА им. В.Р.Филиппова ТЕХНОЛОГИЧЕСКИЕ ПРИНЦИПЫ ПРОФИЛАКТИКИ БОЛЕЗНЕЙ СВИНЕЙ Разработана оптимальная схема профилактических обработок свиней в хозяйстве промышленного типа с учетом эпизоотической ситуации и технологических циклов производства. Применение ее позволило снизить экономический ущерб на 23 %. The effective scheme of vaccinations and treatments of pigs in large swine-breeding farm with regarding for the epizootic situation and technological cycles was worked out. The using of scheme were allowed to reduce the loss of animals by 23 per cent. Практически во всех свинокомплексах падеж, особенно молодняка, достигает значительных размеров и входит в планируемые издержки производства. Применяемые схемы профилактики имеют недостаток, заключающийся в том, что иммунизация молодняка часто не укладывается в технологический цикл и противоречит наставлениям по применению вакцин [1]. Планы ветеринарных мероприятий в крупных хозяйствах зависят от технологии производства и требуют их проведения в сжатые сроки. При этом сложная этиологическая структура болезней свиней, включающая бактериальные и вирусные болезни, иммунодефициты, авитаминозы, микрои макроэлементозы и др., является актуальной проблемой ветеринарных специалистов и требует строгого подхода к разработке схемы профилактики. Низкий уровень иммунологической реактивности организма свиней заставляет использовать иммуностимулято170 ры. При иммунизации молодняка следует учитывать колостральный иммунитет, продолжительность которого колеблется в широких пределах и зависит от индивидуальных особенностей организма молодняка [2]. При длительном применении антибактериальных препаратов в стаде отмечается снижение их активности в результате возникновения устойчивых к ним штаммов микроорганизмов [3]. Целью нашей работы является разработка оптимальной схемы мероприятий в свинокомплексе с учетом эпизоотической ситуации, уточнение важных аспектов противоэпизоотической работы. Исследования проводили в свиноводческом предприятии на 12 тыс. голов. Диагностику вирусных болезней осуществляли с помощью полимеразно-цепной реакции (ПЦР) и иммуноферментного анализа (ИФА). Наличие антител к парвовирусам в сыворотке крови свиней определяли с помощью реакции торможения гемагглютинации (РТГА). В работе применяли вакцину «КС» против классической чумы свиней (КЧС); эмульгированную вакцину против рожи и болезни Ауески; ассоциированную вакцину против анаэробной энтеротоксемии и колибактериоза; инактивированную вакцину ПЛАР против парвовирусной инфекции, лептоспироза, болезни Ауески и респираторно-репродуктивного синдрома свиней (РРСС) производства НПО «Нарвак». Использовали вакцину против сальмонеллеза, пастереллеза и стрептококкоза Армавирской биофабрики. В качестве иммуностимуляторов применяли вестин в дозе 0,3 мг/кг живой массы и миксоферон согласно наставлению. Химиопрофилактику бактериальных инфекций проводили с помощью антибиотиков широкого спектра действия, например, тилозина тартрата, который давали из расчета 100 г на 1 т корма в течение 10 дней. 171 Из патматериала методом ПЦР были выделены европейский генотип вируса РРСС, цирковирус-2, Mycoplazma hyorhinis, Haemophilus parasuis, Clostridium perfringens тип C. В табл. 1 представлены результаты вирусологического и бактериологического исследований свиней разных возрастных групп. Таблица 1 Результаты исследования свиней с помощью ПЦР № п/п 1 2 3 4 5 6 7 Патматериал от групп маток ремонта доращисосунов откорма вания + + Парвовирус н/и н/и н/и + РРСС н/и + Ротавирус н/и н/и н/и н/и + + + Цирковирус н/и + Клостридиум н/и н/и н/и + Гемофилюс н/и н/и + Микоплазмы Возбудитель Примечание. «+» – положительный резльтат, «-» – отрицательный; н/и – не исследованы Результаты исследования сывороток крови свиней представлены в табл. 2. Таблица 2 Результаты исследования сывороток крови свиней с помощью ИФА и РТГА, % Группа матки ремонт доращивание сосуны КЧС 110,3±17,5 81,3±18,9 67,3±7,3 91,9±34,7 РРСС 121,0±29,0 78,6±13,0 28,8±9,6 94,0±14,9 ЦВC 9,34±2,7 46,5±15,6 3,0±1,1 2,6±0,6 МПС 11,6±3,0 4,42±1,5 0 8,7±3,2 АБС 159,3±17,1 58,3±19,0 25,6±3,5 129,8±20,1 ТГС 0 0 0 0 ПВС, log 9,9±2,4 10,0±3,2 7,8±1,4 8,4±1,9 Примечание: ЦВС – цирковироз; МПС – микоплазмоз; АБС – актинобациллез; ТГС – трансмиссивный гастроэнтерит; ПВС – парвовироз. Заболевание 172 Во всех группах тест на наличие антител к вирусу трансмиссивного гастроэнтерита свиней (ТГС) был отрицательным. Исследование сывороток крови на парвовирусную инфекцию свиней (ПВС) в РТГА было положительным во всех случаях со средним геометрическим титром 9,02 log. Антитела к микоплазмам отсутствовали в группе доращивания, однако возбудитель был выделен из патматериала. Высокие титры антител против вируса КЧС у свиней имели поствакцинальное происхождение. Результаты тестирования ремонтных свинок на цирковирусную инфекцию и актинобациллез, группы доращивания на РРСС и поросятсосунов на КЧС обладали низкой статистической достоверностью. С учетом полученных данных были внесены изменения в план профилактической обработки свиней. Разработанные оптимальные сроки введения вакцин выглядят следующим образом: - против классической чумы свиней – дважды в 45- и 85-дневном возрасте; - против рожи свиней и болезни Ауески – в 100-дневном возрасте; - ПЛАР – свиноматкам в день отъема поросят; - против сальмонеллеза, пастереллеза и стрептококкоза – супоросным свиноматкам 3-кратно за 35 – 40, 25 – 30 и 15 – 20 дней до опороса в дозе 2 – 2 – 4 мл соответственно; - против колибактериоза и клостридиоза – свиноматкам за 30 и 18 дней до опороса. Дегельминтизацию, витаминизацию, обработку против токсической дистрофии печени, анемии и йодной недостаточности, иммуностимуляцию проводили в соответствии с технологической схемой ветеринарных мероприятий. Химиопрофилактику бактериальных инфекций с помощью тилозина тартрата проводили в течение 10 дней. 173 При этом отмечали, что привыкание микрофлоры, выделенной из внутренних органов животных, к антибиотику наступает через 5 – 6 месяцев его использования. Разработанная схема мероприятий позволила снизить экономический ущерб на 23% (табл. 3). Таблица 3 Экономическая эффективность схемы, руб. Вид ущерба Падеж Снижение продуктивности Недополучение приплода Потери молодняка Всего 2009 г. 2010 г. 15122,1 11742,6 Снижение ущерба, % 22,3 17907,7 13722,7 23,3 20616,0 16646,0 19,2 12968,3 66614,1 9430,0 51541,3 27,3 Среднее 23,0 Таким образом, эффективность ветеринарных мероприятий в промышленном свиноводстве зависит от множества факторов. Разработанная схема не может быть признана универсальной, т.к. в каждом отдельном предприятии складывается особенная этиологическая структура, присущая только этой популяции животных. Для создания эффективной схемы мероприятий необходимо тщательное изучение эпизоотической ситуации, этиологических факторов, сезонности заболеваний с учетом технологических циклов производства и др. Библиографический список. 1. Шевцов А.А. Схема вакцинаций в свиноводстве // Промышленное и племенное свиноводство. – 2006. – №4. – С. 51 – 53. 2. Нехуров Л.Б. Особенности иммунологической реактивности свиней при парвовирусной инфекции / Л.Б. Нехуров, М.Ц. Гармаев // Свиноводство. – 2011. – №2. – С. 60 – 61. 3. Гусев В.В. Мониторинг возбудителей бактериальных инфек174 ций в промышленном свиноводстве / В.В. Гусев, С.М. Приходько, С.И. Павлов и др. // Вет. консультант. – 2003. – №20 (68). – С. 17 – 18. УДК 619:616.594.171.2+639.3:611.73 Н.А. Ожередова Ставропольский ГАУ ВЛИЯНИЕ ПАТОГЕННЫХ ВИДОВ КАНДИД НА ХИМИЧЕСКИЙ СОСТАВ МЫШЕЧНОЙ ТКАНИ РЫБ При заболевании рыб кандидамикозом снижается количество жира, белка, золы и нарастает содержание влаги в мышечной ткани рыб, она становится менее калорийной, что указывает на ухудшение пищевой ценности рыбных продуктов. Is case fish candidiasis the amount of fat, protein and ashes in muscles tissue is reduced, the amount of moisture increases, , it becomes not so rich in calories, what leads to the reduction of fish nutritious value. Обеспечение населения всеми необходимыми продуктами питания, в том числе и рыбной продукцией, является одной из важнейших задач агропромышленного сектора экономики на современном этапе. В решении этой задачи важную роль играет рыбоводство, являющееся одной из наиболее выгодных в экономическом отношении отраслей сельского хозяйства. При заболевании рыб кандидамикозом снижается количество жира, белка, золы и нарастает содержание влаги в мышечной ткани рыб, она становится менее калорийной, что указывает на ухудшение пищевой ценности рыбных продуктов. В мышечной ткани промысловых рыб содержится до 20% белков и 18% жира, а также большое количество 175 макроэлементов, микроэлементов и отдельных витаминов. Известно, что по пищевым и вкусовым качествам рыба не уступает мясу теплокровных животных, а по отдельным показателям, таким как степень усвояемости белков, содержание ненасыщенных жирных кислот (линолевой и других), ряда витаминов (D), а также отдельных макро- и микроэлементов (йода), значительно превосходит его. Специалисты ВОЗ обратили внимание на высокое содержание в мясе рыб незаменимых жирных кислот, препятствующих преждевременному развитию атеросклероза у людей. В последнее время вопросам рыбной отрасли в России уделяется повышенное внимание. О проблемах рыбного хозяйства неоднократно высказывался Президент Российской Федерации. По его поручению Правительство работает над рядом постановлений, призванных создать благоприятные условия для ускоренного развития отрасли, от которой во многом зависит продовольственная безопасность страны [1]. Главным же итогом всего намеченного должно стать увеличение потребления рыбопродуктов до 15,5 кг на душу населения при улучшении качества отечественной продукции и большей ее доступности для широких слоев населения. Основными задачами ветслужбы являются охрана гидробионтов от заноса инфекций, контроль за состоянием выращиваемых объектов аквакультуры, своевременное проведение лечебных и профилактических обработок, обеспечение населения безопасными и качественными в пищевом отношении рыбопродуктами [2]. В рыбохозяйственных водоемах северокавказского и других регионов почти ежегодно регистрируются вспышки краснухоподобных (жаберных) заболеваний карповых и других видов рыб, нередко сопровождающиеся их гибелью и снижением рыбопродуктивности. Одной из причин возникновения вспышек указанных болезней являлся кандидамикоз. 176 Дрожжеподобные грибы рода Candida распространены повсеместно. Обнаруживаются они часто в различных объектах внешней среды, в том числе в воде, почве, в организме животных и человека. Однако основная масса грибов кандида, выделяемых от животных и людей, относится к сапрофитам, патогенные формы встречаются в гораздо меньшем количестве. При неблагоприятных условиях существования, некачественном кормлении, неправильной антибиотикотерапии создаются предпосылки для развития кандидамикоза. В связи с нарастанием количества дрожжеподобных грибов, играющих значительную роль в патологии животных, а также человека, на III Международном конгрессе микробиологов они были объединены в один род Candida. В 1952 г. по предложению ряда ученых была принята единая международная классификация, в соответствии с которой грибы рода Candida были отнесены к семейству Criptococcaсeae, классу несовершенных грибов Fungi imperfecti. В настоящее время род дрожжеподобных грибов Candida насчитывает более 80 видов. Однако не более 6 видов имеют существенное значение для ветеринарной микологии. Кроме С. albicans к ним относятся C. guilliermondii, C. tropicalis, C. pseudotropicalis, C. krusei, C. parakrusei. В рыбохозяйственных водоемах, и в частности, в прудовых хозяйствах, отмечается заболевание рыб кандидамикозом [3]. К сожалению, изучению влияния различных заболеваний рыб на качество рыбных продуктов до настоящего времени не уделялось должного внимания. В связи с этим нами была проведена научная работа по исследованию восстановления данного пробела, в том числе и по выяснению влияния кандидамикоза на их пищевую ценность мышечной ткани рыб. Для проведения исследований химических показате177 лей мышечной ткани рыб были взяты карпы и пестрые толстолобики из прудового хозяйства Новомарьевское (СХП «Волна»). Отбирали по 4 экземпляра карпов и пестрых толстолобиков в три группы. К числу рыб с доброкачественной формой относили тушки при наличии на поверхности тела единичных кровоизлияний или язв. К рыбам со злокачественной формой относили экземпляры при наличии у них брюшной водянки, множественных кровоизлияний или язв, дряблости мышечной ткани с одновременным наличием некротического поражения в области глаз рыб. К здоровым рыбам относили экземпляры без видимых изменений. В процессе изучения химического состава мяса пораженных карпов и пестрых толстолобиков его отделяли от костей, превращали в фарш и в тот же день навеску высушивали в сушильном шкафу при заданной температуре. После высушивания во взятых пробах мышечной ткани рыб определяли содержание воды, белка, жира и золы. Результаты экспериментальных исследований обрабатывали с применением двустороннего критерия Стьюдента в программе Primer of Biostatics 4.03 для Windows-95 на IBM-совместимом компьютере. Достоверным считали различия по критерию Стьюдента при P<0,05. Результаты исследований, полученные при изучении химического состава мышечной ткани пораженных рыб, позволили установить наличие существенных различий в содержании основных компонентов в зависимости от степени тяжести заболевания (таблица). Анализ приведенных данных показывает, что изменения в составе мяса были менее значительными при доброкачественной форме. В мясе карпов при данной форме поражения количество белка снижалось на 15,5%, жира – на 15,7, золы – на 25,0, а содержание влаги увеличивалось на 5,71%; в мышечной ткани пестрых толстолобиков содержа178 Химический состав мышечной ткани рыб при кандидамикозе, % Вид рыбы Влага Белок Жир Зола Доброкачественная форма Карп 77,44+0,06 14,26+0,04 7,32+0,06 0,90+0,06 Толстолобик пестрый 78,74+0,06 16,44+0,06 3,81+0,06 0,90+0,06 Злокачественная форма Карп 80,00+0,06 12,43+0,06 6,41+0,06 0,80+0,06 Толстолобик пестрый 80,82+0,06 15,23+0,18 2,84+0,06 1,00+0,06 Здоровые Карп 73,02+0,06 16,88+0,06 8,68+0,03 1,20+0,04 Толстолобик пестрый 76,87+ 0,03 17,34+0,06 4,65+0,50 1,10+0,06 * Р<0,001. Калорийность, кДж 529,6+1,27* 430,9+0,33* 463,4+1,20* 372,1+2,82* 628,0+0,90* 478,9+2,33* ние тех же веществ соответственно уменьшалось – на 5,19; 18,1; 18,2%, а влаги – нарастало на 2,4%. При злокачественной форме изменения в химическом составе мяса пораженных рыб были представлены более значительно, но они также были гораздо ниже, чем в мясе здоровых рыб. У карпов содержание белка снижалось на 26,4%, жира – на 26,2, золы – на 33,3%, а количество влаги увеличивалось на 8,73%; у пестрого толстолобика аналогичные показатели соответственно снижались на 12,2; 38,9; 9,1%, а количество влаги возрастало на 4,9%. Калорийность мышечной ткани карпов при злокачественной форме составляла 463,4+1,20 кДж (Р<0,001), пестрого толстолобика – 372,1+2,82 кДж (Р<0,001), а при доброкачественной форме поражения у тех же видов рыб она соответственно равнялась 529,6+1,27 кДж (Р<0,001) и 430,9+0,33 кДж (Р<0,001), т.е. была ниже, нежели у здоровых рыб, на 26,2; 22,3; 15,7; 10,0%. 179 Эти данные свидетельствуют о том, что в связи со снижением количества жира, белка, золы и нарастанием содержания влаги мясо рыб, пораженных кандидамикозом, становилось менее калорийным. Библиографический список 1. Богерук А.К. Аквакультура России: история и современность // Рыбн. хоз-во. – 2009. – № 2. – С. 41-42. 2. Гордеев А.В. Состояние и перспективы развития рыбного хозяйства России // Рыбн. хоз-во. – 2005. – №4. – С. 3-5. 3. Ларцева Л.В. Санитарно-микробиологическая оценка рыб Волго-Каспийского региона // Гигиена и санитария. – 1998. – № 6. – С. – 23-30. УДК 911.3:579:637:633/.635(571.54) Л.А. Очирова, А.Б. Будаева Иркутская ГСХА ГЕОГРАФИЯ ПОСТУПЛЕНИЯ И МИКРОБИОЛОГИЧЕСКИЙ МОНИТОРИНГ ПИЩЕВЫХ ПРОДУКТОВ ЖИВОТНОГО И РАСТИТЕЛЬНОГО ПРОИСХОЖДЕНИЯ Реализуемые пищевые продукты обсеменены патогенными микроорганизмами и представляют опасность для здоровья покупателей как источники распространения инфекции. Поэтому очень важен постоянный микробиологический контроль с использованием современных микробиологических критериев безопасности пищевых продуктов, которые могут служить источниками различных инфекций. Thus, realized food contaminated with pathogenic microorganisms and represent a danger to the health of consumers as sources of infection is therefore very important on going microbiological monitoring using modern microbiological criteria for food safety that can serve as sources of various infections. 180 На сегодня большую актуальность приобретает изучение географии поступления и проведение микробиологического мониторинга пищевых продуктов животного и растительного происхождения, реализуемых на территории Республики Бурятия. При мониторинге установлены основные поставщики фруктов: Аргентина, Новая Зеландия, Польша, Франция, КНР, Италия, Голландия, США, Молдова, Узбекистан, Египет, Греция, Марокко, Испания, ЮАР, Чили, Эквадор, Турция и т.д. Поставки мяса животных и птиц осуществляются из Алтайского и Красноярского края, Новосибирской, Томской и Омской областей, а также из 14 зарубежных стран (Аргентины, Австралии, Бразилии, Бельгии, Дании, Германии, Испании, Канады, Новой Зеландии, США, Парагвая, Уругвая, Финляндии и Чили). Основными поставщиками рыбной продукции являются 5 субъектов РФ: Архангельская и Сахалинская области, Камчатский, Приморский и Хабаровский край, а также зарубежные страны, в основном Китай и Норвегия. Материалом для исследований служили пищевые продукты животного и растительного происхождения в количестве 1180 проб. Исследования проводили в 2005-2010 гг. на кафедре микробиологии, вирусологии и ветсанэкспертизы БГСХА и в бактериологическом отделе РГУ ветеринарии БурРНПВЛ. Посевы проб на питательные среды делали после разведения гомогената 1:1 000 000. Культуральные, морфологические, тинкториальные, биохимические и патогенные свойства выделенных микроорганизмов изучали общепринятыми методами [1, 2] и в соответствии с ГОСТ 10444.8-88, Р 500474-93, 10444.2-94 и 7702.205-93. Была определена динамика количества мезофильноаэробных и факультативно-анаэробных микробов в пищевых продуктах по сезонам года. При сравнительном анализе 181 с нормативно-допустимым содержанием были выявлены значительные колебания с превышением в весенне-летний и осенний периоды. Согласно СанПиН 2.3.2.1078-01 «Гигиенические требования безопасности и пищевой ценности пищевых продуктов», при повышенном содержании КМАФАнМ нами было проведено дальнейшее изучение полученных микроорганизмов. При этом были выделены и идентифицированы 222 чистые культуры, такие как Enterobacter aerogenes в мясе и мясопродуктах, что составило 2,8%; птице и птицепродуктах – 12,5, фруктах – 11,9%; представитель облигатной микрофлоры желудочно-кишечного тракта, относящийся к условно-патогенным микроорганизмам, подобный тип микроорганизма Enterobacter gergovie выделен в мясе и мясопродуктах, что составляет 1,4%, в рыбе и рыбопродуктах – 1,8 и во фруктах – 2,9%. Enterobacter clocae зарегистрировали в птице и птицепродуктах – 6,3%, рыбе и рыбопродуктах – 1,8, во фруктах – 2,9%. Enterobacter aglomerans выделен в рыбе и рыбопродуктах – 5,4%. Также идентифицированы энтеропатогенные штаммы Echerichia coli в мясе и мясопродуктах – 43,1%, в молоке – 25, в птице и птицепродуктах – 25, в рыбе и рыбопродуктах – 16, во фруктах – 26,5%. Идентифицированы Klebsiella planticola в мясе и мясопродуктах – 2,8%, и в рыбе и рыбопродуктах – 3,6%; Klebsiella oxytoca в птице и птицепродуктах – 4,2; Klebsiella pntumoniae subspozaenae в рыбе – 12,4%. Нередко выявлялась Salmonella enteritidis в мясе и мясопродуктах – 1,4%, в птице и птицепродуктах – 4,2, в рыбе и рыбопродуктах – 1,8 и во фруктах – 2,9%. Salmonella edinburg обнаружена в мясе и мясопродуктах – 1,4%, в птице и птицепродуктах – 4,2%. Salmonella аrizona идентифицирована в рыбе и рыбопродуктах – 1,8%. Salmonella paratyphy A выделена из рыбы – 1,8%. Все они являются возбудителями гнойно-воспалительной инфекции. 182 Один из возбудителей кишечных токсикоинфекций в медицинской и ветеринарной практике Proteus vulgaris идентифицирован в мясе и мясопродуктах – 4,2%, в птице и птицепродуктах – 6,3, в рыбе и рыбопродуктах – 3,6%. Proteus mirabilis выделен в мясе птицы и птицепродуктах – 14,5%, в рыбе и рыбопродуктах – 1,8 и во фруктах – 2,9%. Возбудитель дизентерии Shigella sonnei (2,9%) выделен в партии яблок сорта Розовый Фуши, поступившей из КНР, а также Shigella flexneri 2а (2,9%) – из партии яблок сорта Медовые. Shigella boydi выделена из окуня, щуки, леща – 10,6%. Обильная обсемененность патогенными грибами и спорами (32,4%) выявлена в партиях яблок из Франции, Италии, США, КНР (сортов Гогуан и Грушовка). Listeria monocytegenes идентифицирована из мяса и мясопродуктов – 6,9%, Pseudomonas aeruginosa – из мяса и мясопродуктов (4%), из птицы и птицепродуктов (4,2%); Epysipelothix rhusiopathiae – из мяса свинины (5,6%), Aeromonas punctata – из окуня и сороги свежемороженых (3,6%), Corynebacterium acnes – из молока (8,3%), Citrobacter diversus – из птицы и птицепродуктов (8,3%), Citrobacter freundii – из рыбы и рыбопродуктов (8,9%). Citrobacter anolonaticus – из окуня и щуки (5,4%). Из спорообразующих семейства Bacillaceae идентифицированы в мясе такие, как Bacillus subtillis (2,8%), Bacillus cereus (2,8%), Bacillus mesentericus (1,4%). Имело место выявление патогенных штаммов шаровидной формы бактерий, таких как Staphylococcus epidermidis, в мясе и мясопродуктах – 6,9%, во фруктах – 8,9% и Staphylococcus aureus в мясе и мясопродуктах – 12,5%, в молоке – 16,7, в птице и птицепродуктах – 10,3, в рыбе и рыбопродуктах – 8,9%. Enterococcus faecalis был идентифицирован из мяса и мясопродуктов – 1,4%, из мо183 лока – 16,7, из рыбы и рыбопродуктов – 1,8%. Aerococcus или Streptococcus viridans (зеленящий) выделен из партии груши сорта Дюшес, поступивший из КНР, – 2,9%. Streptococcus agalactiae высеян из молока – 8,3%, Sarcina – 16,7%. Micrococcus luteus обнаружен в мясе и мясопродуктах – 1,4%, в молоке – 8,3%. Serratia rubidaca выделен из рыбы – 3,6%, Serratia oborifera – из крови плотвы (1,8%). Таким образом, реализуемые пищевые продукты обсеменены патогенными микроорганизмами и представляют опасность для здоровья покупателей, как источники распространения инфекции. Поэтому очень важен постоянный микробиологический контроль с использованием современных микробиологических критериев безопасности пищевых продуктов, которые могут служить источниками различных инфекций. Библиографический список 1. Биргер М.О. Справочник по микробиологическим и вирусологическим методам исследования. – М.: Медицина, 1983. 2. Герхард Т.Ф. Методы микробиологических исследований – М.: Мир, 1983-535 с. 184 УДК 619:579:639.5 Л.А. Очирова, А.Б. Будаева Иркутская ГСХА МИКРОБИОЛОГИЧЕСКИЙ КОНТРОЛЬ МЯСА ПТИЦЫ И ПТИЦЕПРОДУКТОВ, РЕАЛИЗУЕМЫХ В ТОРГОВОЙ СЕТИ Реализуемые на рынке мясо птицы и птицепродукты обсеменены патогенными микроорганизмами и представляют опасность для здоровья покупателей как источники распространения инфекции. Поэтому очень важен постоянный микробиологический контроль с использованием современных микробиологических критериев безопасности пищевых продуктов, которые могут служить источниками различных инфекций. Sold fowl and infected by pathogenic microorganisms and represent health hazard of buyers, as sources of distribution of infections. Therefore it is necessary to spend the constant microbiological control with using of modern the express-methods. Мясо птицы отличается высокой питательной ценностью, отличными диетическими и вкусовыми качествами. Мясо птицы и продукты из него не обладают высокой стойкостью при хранении, так как имеют высокую микробную обсемененность, особенно преобладают психротрофные бактерии родов Pseudomonas и Acinetobacter, обнаруживают и патогенные бактерии рода Salmonella, обсеменение которыми происходит главным образом при потрошении тушек [1]. Поэтому небезынтересным являлось изучение микробной обсемененности мяса птицы и птицепродуктов на предмет выявления патогенных бактерий перед непосредственной реализацией. Материалом для исследований служили мясо птицы и 185 и птицепродукты в количестве 80 проб. Исследования проводили в 2005–2008 гг. на кафедре микробиологии, вирусологии и ветсанэкспертизы БГСХА и в бактериологическом отделе РГУ ветеринарии БурРНПВЛ. Посевы проб на питательные среды делали после разведения гомогената 1:1 000 000. Культуральные, морфологические, тинкториальные, биохимические и патогенные свойства выделенных микроорганизмов изучали общепринятыми методами [2, 3] и в соответствии с ГОСТ Р 10444.8-88, 500474-93, 10444.2-94 и 7702.205-93. Из 48 культур, выделенных из мяса птицы и птицепродуктов, 43 (89,6%) изолята были грамотрицательными и 5 (10,4%) – грамположительными кокками. Подвижностью обладал 41 (85,4%) изолят. На МПА 44 (91,7%) изолята формировали колонии с ровными краями (S-формы), а 4 (8,3%) – с шероховатыми краями (R-формы). Выделенные культуры проявляли высокий уровень сахаролитической активности, особенно в отношении глюкозы – 100% (48), малоната натрия – 91,7% (44), сахарозы – 89,6% (43), маннита – 72,9% (35), лактозы – 70,9% (34), сорбита – 66,7% (32), цитрата натрия – 58,3% (28). Уреазной активностью обладали 37,5% выделенных культур (таблица). Основные биохимические свойства изолятов Количество изолятов шт. % 2 3 Биохимические признаки 1 Положительные тесты Фогес-Проскауэра свертывания молока разжижения желатина Наличие уреазы 186 18 26 19 37,5 54,2 39,6 18 37,5 1 2 21 лизина Утилизация глюкозы малоната натрия сахарозы маннита лактозы сорбита цитрата натрия фенилаланина дульцита инозита Образование индола сероводорода Окончание табл. 3 43,8 48 44 43 35 34 32 28 20 18 6 100 91,7 89,6 72,9 70,9 66,7 58,3 41,7 37,5 12,5 23 21 47,9 43,8 На основании культуральных и биохимических свойств выделенные изолята идентифицировали как Proteus mirabilis, Proteus vulgaris, Citrobacter diversus, Enterobacter aerogenes, Enterobacter, Staphylococcus aureus, Salmonella edinburg, Salmonella enteritidis, Klebsiella oxytoca, Pseudomonas aeruginosa, Echerichia coli. Таким образом, реализуемые на рынке мясо птицы и птицепродукты обсеменены патогенными микроорганизмами и представляют опасность для здоровья покупателей как источники распространения инфекции. Поэтому очень важен постоянный микробиологический контроль с использованием современных микробиологических критериев безопасности пищевых продуктов, которые могут служить источниками различных инфекций. Библиографический список 1. Митасева Л.Ф. Микробиологическая безопасность продуктов из мяса птицы / Н.В. Нефедова, Г.Г. Чернова, Е.В. Медкова// Мясн. пром-сть. – 1995. – № 5. – С.14-15. 187 2. Биргер М.О. Справочник по микробиологическим и вирусологическим методам исследования. – М.: Медицина, 1983. 3. Герхард Т.Ф. Методы микробиологических исследований. – М.: Мир, 1983. – 535 с. УДК 619:579.26:636,5(571,54) Д.Н. Петруев, М.Г. Штыбова, Н.В. Бахлина Бурятская республиканская научно-производственная ветеринарная лаборатория ЭПИЗООТИЧЕСКИЙ МОНИТОРИНГ ВИРУСА ГРИППА ТИПА А СРЕДИ ВОДОПЛАВАЮЩИХ ПТИЦ НА ТЕРРИТОРИИ РЕСПУБЛИКИ БУРЯТИЯ Результаты серологических исследований сывороток крови, отобранных от мигрирующих водоплавающих птиц и птиц околоводного комплекса бассейна оз. Байкала в 2006-2010 гг., показали, что антигемагглютинирующие антитела к вирусу гриппа А присутствуют. Results the researches of wheys of blood collected from the migrating waterfowl and birds about a water complex of pool of lake Baikal in 20062010, have shown, that antibodies to a virus of a flu A are present. Изучение родословных вирусов гриппа у различных видов птиц показало, что вирусы гриппа птиц в Евразии и Америке эволюционировали независимо. Таким образом, миграция между этими двумя континентами (широтная миграция) практически не играет роли в распространении вируса гриппа, в то время как птицы, мигрирующие по долготе, по-видимому, вносят решающий вклад в продолжаю188 щийся процесс эволюции вируса гриппа. Наибольшее значение для России имеют Центральноазиатский-Индийский и Восточноазиатский-Австралийский пути миграции птиц, поскольку они включают перелеты из Сибири через Киргизию в Малайзию через Гонконг и в Китай через Западную Сибирь. Менее значимы ВосточноафриканскийЕвразийский и Западнотихоокеанский пути миграции. На территории России выделяются 6 территориальных группировок, или географических популяций, которым свойственны общность районов гнездования, пролета и зимовок, а также четко выраженные пролетные пути [1]. На территории Бурятии обитает восточно-сибирская территориальная группировка диких птиц, граница ареала гнездования данной группировки птиц приблизительно охватывает всю Восточную Сибирь, таежную зону Средней Сибири, Якутию. Зимовки расположены в пространстве от Северо-Восточной Индии до стран Юго-Восточной Азии [2]. В настоящей статье представлены результаты систематических пятилетних наблюдений за циркуляцией вируса гриппа среди водоплавающих птиц и птиц околоводного комплекса в гнездовый и осенний периоды на территории Бурятии. В период весеннего и осеннего перелета дикой водоплавающей птицы за 5 лет (2006-2010 гг.) проводили сбор материала (сыворотка крови). Затем для выявления циркуляции антител к вирусу гриппа птиц материал исследовали в реакции торможения гемагглютинации (РТГА). Было обследовано в весенний и осенний периоды с 2006 по 2010 г. 2612 проб сыворотки крови от дикой водоплавающей птицы (таблица) в РТГА с антигенами Н5N3 и H7N7. В 102 случаях обнаружены антитела к вирусу гриппа птиц с гемагглютинином Н5N3, из них в 25 пробах, поступивших 189 из Северо-Байкальского района (м. Уиро), 20 – Кабанского (дельта р. Селенги), 10 – Тункинского, 12 – Еравненского (оз. Малая Еравна, Еравнинско-Хоргинская система озер), 2 – Прибайкальского, 10 – Кижингинского (Ивановское, Моловское и Песчаное озера), 3 – Мухоршибирского, 10 – Селенгинского, 3 – Баунтовского (оз. Самбули, Берепол, Тором) и 7 – Баргузинского (м. В. Бор, м. р. Баргузин) районов. А в 2 случаях в 2006 г. (в Джидинском и Кабанском районах) выявлены антитела к вирусу гриппа птиц с гемагглютинином Н7N7. По результатам проведенных исследований установлено, что в 2007 г. наибольшее число проб сыворотки крови птиц с положительным результатом отобрано из Тункинского (27,6%) и Северобайкальского (19,2%) районов, в 2008 г. – из Мухоршибирского (20%), Кижингинского (11,7%) и Баргузинского (11,4%) районов. В пробах сыворотки крови, взятых от пернатых, обитающих в водоемах Северобайкальского района, средний показатель реагирования за пять лет исследований составил 7,7 % от 325 обследованных проб. Затем по частоте серопозитивных проб следуют Тункинский (5,4%), Кабанский (5,3), Баунтовский (4,5), Кижингинский (4,4), Селенгинский (4,2), Еравнинский (3,6), Мухоршибирский (3,4), Баргузинский (2,9), Прибайкальский (1,1) и Джидинский (0,4%) районы. Проведение вирусологического мониторинга среди водоплавающих птиц и птиц околоводного комплекса в Республике Бурятия позволило оценить эпизоотическую ситуацию, которая сегодня находится в состоянии определенного благополучия. Из 2612 исследованных проб сыворотки крови от дикой птицы в 102 пробах обнаружены антитела к вирусу гриппа птиц с гемагглютинином Н5N3 и в 2 пробах – антитела к вирусу гриппа птиц с гемагглютинином Н7N7. Результаты серологических исследований сывороток 190 191 Серопозитивных 0 1 0 4 3 0 0 4 0 0 0 0 Всего проб 68 36 115 140 43 2 25 41 22 42 0 0 545 12 Баргузинский Джидинский Еравнинский Кабанский Кижингинский Мухоршибирский Прибайкальский Северобайкальский Селенгинский Тункинский Закаменский Баунтовский Итого Район % 0 30 29 0 26 21 5 0 25 22 30 Серопозитивных 0 0 8 0 5 0 0 0 0 1 0 0 % 33 15 60 83 73 65 35 0 0 27,6 0 0 0 61 45 19,2 127 0 0 0 0 4,6 0 0 Всего проб 2,2 286 14 4,90 597 9,8 6,9 2,9 2,8 Всего проб 9 40 0 0 2 0 9 2 3 7 7 6 0 4 Серопозитивных % 36 30 52 101 70 48 45 58 73 50 85 61 Всего проб 6,70 950 0 0 3,3 0 7,1 6,0 20,0 11,7 8,4 8,2 0 11,4 2009 26 3 0 0 6 3 0 0 0 6 5 0 3 Серопозитивных 2008 % 30 0 0 72 61 54 22 68 76 77 50 65 Всего проб 2,74 575 8,3 0 0 5,9 4,3 0 0 0 8,2 10,0 0 4,9 2010 12 0 0 0 4 4 0 0 0 4 0 0 0 Серопозитивных 2007 % 337 266 238 181 89 229 66 60 184 3 0 10 10 25 2 3 10 21 12 1 7 4,5 0 5,4 4,2 7,7 1,1 3,4 4,4 5,3 3,6 0,4 2,9 2,1 2612 104 3,98 0 0 0 5,6 240 6,6 325 0 0 0 5,3 397 0 0 0 Всего Серопозитивных 2006 Всего проб Динамика мониторинговых исследований по районам республики Бурятия с 2006 г. по 2010 г. % крови, отобранных от мигрирующих водоплавающих птиц и птиц околоводного комплекса бассейна оз. Байкал в 20062010 гг., показали, что антигемагглютинирующие антитела к вирусу гриппа А присутствуют. Обнаружение вируса гриппа птиц у водоплавающих диких птиц требует ежегодного проведения мониторинга не только у водоплавающих, но и у оседлых синантропных пернатых в целях контроля за эпизоотической ситуацией, которая может измениться в зависимости от уровня циркуляции вирусов гриппа в гнездовом ареале. А проведение лабораторного мониторинга по выявлению циркуляции антител к вирусу гриппа птиц должно являться необходимым плановым мероприятием для лабораторно-диагностических учреждений, имеющих разрешение на данный вид исследований, не только у диких птиц, но и у синантропных. Библиографический список 1. Кузнецов Е.А. Оценка ситуации с эпизоотией птичьего гриппа в 2005 г. и прогноз на весну 2006 г. – 2006. 2. Петруев Д.Н. Биологическая и экологическая характеристика микроорганизмов, выделенных у диких птиц: дис. … канд. вет. наук. – Улан-Удэ, 2000. –157 с. 192 УДК 636.32/38.084 О.В. Поспелова, Б.Б. Банзаракцаева ГНУ НИИВ Восточной Сибири Россельхозакадемии ВЛИЯНИЕ ПРЕПАРАТА «БАЙКАЛ ЭМ-1» ПРИ НАГУЛЕ МОЛОДНЯКА ОВЕЦ ЗАБАЙКАЛЬСКОЙ ПОРОДЫ Приведены результаты научно-хозяйственного опыта с использованием препарата «Байкал ЭМ-1», повышающего эффективность выращивания молодняка овец забайкальской породы при нагуле. Добавление препарата в корм животным обеспечивает повышение интенсивности роста, развития и мясной продуктивности молодняка. Results of scientifically-economic experience with the use of preparation «Baikal ЭМ-1», raising the efficiency of sheep younger animals of transbaikalian breed rearing during fattening have been adduced. Preparation addition in animals forage secures increase growth intensity, development and meat productivity of younger animals. Стабильное развитие овцеводства в условиях рыночной экономики возможно лишь при высокой рентабельности отрасли, основанной на современных ресурсосберегающих приемах селекции, технологиях кормления и содержания, обеспечивающих реализацию потенциальных возможностей животных. В комплексе мероприятий, направленных на высокую самоокупаемость продукции овцеводства, производимой в хозяйствах Забайкальского края, особую актуальность и практическую значимость имеет изыскание способов снижения затрат на кормление животных путем повышения биологической полноценности кормов. В настоящее время в нашей стране и за рубежом разработаны разные виды биологических добавок, стимулирующих обмен веществ. Среди средств, заметно повышающих 193 усвояемость потребленных кормов и оказывающих положительное влияние на качество продукции, особый интерес представляет препарат «Байкал ЭМ-1» (ЭМ – эффективные микроорганизмы), состоящий из штаммов фотосинтезирующих, молочно-кислых, азотфиксирующих бактерий, дрожжей, актиномицет, ферментирующих грибов и других микроорганизмов. Препарат «Байкал ЭМ-1» в последние годы прошел многочисленные опытные и промышленные испытания во многих российских регионах и странах СНГ, проведен целый ряд фундаментальных научных исследований по его применению [1-4]. Эффективность использования препарата «Байкал ЭМ-1» в животноводстве изучена несколько меньше, чем в растениеводстве. Вместе с тем исследованиями в молочном животноводстве выявлено, что увеличение надоев оправдывает затраты на ЭМ-препарат в 5-6 раз, а прирост массы тела бычков окупает затраты в 10 раз [1]. Наиболее высокую эффективность препарат «Байкал ЭМ-1» проявляет в свиноводстве и птицеводстве, где затраты по его применению окупаются в 15-20 раз [2]. Цель нашей работы – изучить возможность использования препарата «Байкал ЭМ-1» как средства, повышающего эффективность выращивания молодняка овец забайкальской породы при нагуле, способствующего самоокупаемости производимой продукции. Использование препарата в животноводстве основано на его положительном влиянии на микрофлору кишечника животных, способности путем образования новых штаммов более полно расщеплять органические и минеральные вещества корма, существенно повышая их усвояемость. Кроме того, молочно-кислые бактерии, дрожжи и актиномицеты подавляют развитие патогенной микрофлоры в кишечнике, 194 повышая иммунитет животных к различным заболеваниям. Улучшение здоровья животных и обмена веществ в их организме позволяет повысить качество мяса, молока, яиц, увеличить продуктивность, плодовитость и жизнестойкость. В условиях Забайкалья из-за дефицита протеина, фосфора и ряда микроэлементов в кормах, как в пастбищных, так и в заготовленных, хозяйства несут дополнительные затраты на корма для овец. Это в лучшем случае, а в основном же генетически заложенный потенциал продуктивности животных остается нереализованным, обусловливая снижение уровня рентабельности. Экспериментальная работа проводилась на овцах забайкальской тонкорунной породы в госплемзаводе «Ононское» Шилкинского района Забайкальского края. Методом случайной выборки с соблюдением условий аналогичности по живой массе и упитанности были сформированы 3 подопытные группы по 40 баранчиков в каждой в возрасте 4,5-5,0 месяцев. Нагул подопытных баранчиков, содержащихся в одной отаре, проходил в течение 60 дней в одинаковых условиях выпаса на естественных пастбищах и пожнивных остатках злаковых культур. Скармливание препарата «Байкал ЭМ-1», выдаваемого дополнительно к пастбищным кормам, проводилось путем увлажнения дробленого овса после утренней пастьбы животных на естественных выпасах, продолжительность кормления составила 58 дней. При постановке на опыт живая масса баранчиков в подопытных группах составляла в среднем 31,16–31,42 кг. Влияние препарата «Байкал ЭМ-1» при нагуле животных стало проявляться уже в первой половине опыта (рисунок). К середине опыта баранчики 1-й и 2-й опытных групп, потреблявшие дополнительно к подкормке из овса препарат «Байкал ЭМ-1», превосходили контрольную группу на 195 Динамика живой массы подопытных баранчиков 0,32–0,36 кг, или на 0,93–1,05%. При этом различия в дозах выдаваемого животным препарата на приросте живой массы не сказываются. Во второй половине опыта влияние препарата на интенсивность нагула стало проявляться более заметно. Так, к концу эксперимента превосходство живой массы баранчиков 1-й группы над контрольной составило 0,75 кг, или 1,92%, а 2-й соответственно 1,55 кг, или 3,97 %. Баранчики 2-й группы, получавшие повышенную дозу препарата, имели живую массу на 0,80 кг, или 2,01 %, больше, чем животные 1-й группы. Высокая скорость роста животных опытных групп во второй период опыта оказала значительное влияние на результаты эксперимента за весь его период. Абсолютный прирост живой массы за весь период эксперимента составил по 1-й опытной группе 8,59 кг, по 2-й – 9,13 кг, что боль196 ше, чем в контрольной, соответственно на 0,78 кг, или 9,99 % (Р<0,05), и 1,32 кг, или 16,90 % (Р<0,01). Увеличение дозы препарата оказало позитивное влияние на величину широтных промеров. Различия между сравниваемыми группами по остальным промерам незначительны и не оказали существенного влияния на индексы телосложения. Некоторое превосходство животных 1-й и 2-й опытных групп над контрольными сказалось лишь на увеличении индекса сбитости на 1,27 и 2,48 абс. %. По окончании опыта для изучения мясной продуктивности и особенностей развития внутренних органов у подопытных животных проводился контрольный убой. Для убоя было отобрано по три баранчика с характерной живой массой для каждой исследуемой группы. Таблица 1 Индексы телосложения Показатель Растянутости Тазогрудной Грудной Сбитости Перерослости Длинноногости контрольная 119,44 106,24 57,47 103,62 102,17 58,64 Группа 1-я опытная 120,43 108,22 58,09 104,89 101,86 57,89 2-я опытная 120,86 107,29 58,69 106,10 101,23 57,67 После убоя все тушки по интенсивности жирового полива в области спины и крестца, независимо от группы, были отнесены к первой категории. При этом наиболее интенсивный жировой полив наблюдался на тушках животных 1-й и 2-й групп. Наиболее тяжелые тушки получены от убоя животных 1-й и 2-й опытных групп (табл. 2). Так, масса тушек после охлаждения от животных 1-й группы была больше, чем от контрольных, на 0,63 кг, или 4,67 % (Р>0,05), а от животных 2-й группы – на 1,01 кг, или 7,48 % (Р<0,05). 197 Таблица 2 Основные показатели мясной продуктивности Показатель Живая масса, кг при отборе предубойная Масса тушки (парной), кг Масса внутреннего жира, кг Убойная масса, кг Убойный выход, % Группа контрольная 1-я опытная 2-я опытная 39,00±0,29 35,50±0,42 14,71±0,32 0,13 14,80±0,31 41,77 39,70±0,41 36,10±0,43 15,23±0,30 0,27 15,40±0,28 42,85 40,40±0,38 36,80±0,40 15,52±0,28 0,27 15,79±0,30 42,85 Следует отметить, что использование препарата «Байкал ЭМ-1» при нагуле баранчиков наряду с увеличением массы тушек позволяет на 1,08 абс. % увеличить убойный выход мяса. Улучшается сортовой и морфологический состав тушек (табл. 3). Таблица 3 Морфологический и сортовой состав тушек Показатель Масса тушки (охлажденной) Выход отрубов, % I сорта II сорта Выход, % мякоти костей Коэффициент мясности Площадь мышечного глазка, дм2 контрольная Группа 1-я опытная 2-я опытная 13,50±0,28 14,13±0,30 14,51 93,41 6,59 93,68 6,32 94,00 6,00 74,21 25,79 2,88 75,91 24,09 3,15 75,97 24,03 3,16 11,84±0,43 13,82±1,25 14,92±1,35 Более высокие показатели убойного выхода, отрубов I сорта, коэффициента мясности, а также площади мышечного глазка, подтверждающие более высокую мясность тушек 198 1-й и 2-й опытных групп, указывают на более высокий уровень использования ими пастбищного корма, нежели контрольными. Изучение внутренних органов при убое закономерных различий между сравниваемыми группами не выявило, какой-либо патологии в состоянии внутренних органов не обнаружено, их величина и конституция соответствовали нормам здорового организма. Исследования химического состава мяса по образцам, отобранным от сравниваемых групп тушек, показали, что у животных, потреблявших препарат «Байкал ЭМ-1» , мясо содержит меньше влаги, больше жира и золы, в итоге более питательно по энергетической ценности, чем мясо контрольных животных. Калорийность мяса от тушек 1-й опытной группы была выше, чем у контрольных, на 147,66 ккал, или 11,05%, а превосходство мяса 2-й группы над контрольными составило 305,83 ккал, или 22,89%. Состояние здоровья подопытных животных в период проведения эксперимента было удовлетворительное. Случаи заболеваний и падежа среди них не зафиксированы. Клиническое состояние животных в сравниваемых группах как в начале, так и по окончании эксперимента заметно не различалось. Дополнительная прибыль, полученная от нагула и последующего убоя животных 1-й группы, составила в среднем на 1 голову 18,50, а от 2-й группы – 31,10%. На основании проведенных исследований можно рекомендовать использование препарата «Байкал ЭМ-1» в овцеводстве. Библиографический список 1. Муруев А.В. Опыт применения ЭМ-технологии в животноводстве /А.В. Муруев, Т.О. Амагарова и др. //ЭМ-технология – реальность и перспективы (материалы испытаний). – Улан-Удэ, 2002. – С. 43-46. 199 2. Сиразиев Р.З. Влияние эффективных микроорганизмов на жизнеспособность приплода и интенсивность роста свиней крупной белой породы //ЭМ-технологии – реальность и перспективы (материалы испытаний). – Улан-Удэ, 2002. – С. 51-58. 3. Халтурин Е.В. Чудо-технология //Теория и практика применения препарата Байкал ЭМ-1. – Улан-Удэ, 2004. – 51 с. 4. Шамбаева С.Д. Эффективность применения препарата Байкал ЭМ-1 в рационах ремонтного молодняка кросса «Хайсекс белый» /С.Д. Шамбаева, М.Ц. Шамбаева //Проблемы образования, науки и воспитания студентов в аграрных учебных заведениях: материалы междунар. конф., 24-25 нояб. 2004 г. – Чита, 2004. – Т.II. – С. 138-140. УДК 619:616.983 Р.З. Сиразиев ГНУ НИИВ Восточной Сибири Россельхозакадемии В.А. Монсонов Государственная ветеринарная служба Забайкальского края ЭПИЗООТИЧЕСКАЯ СИТУАЦИЯ ПО ХЛАМИДИОЗУ ОВЕЦ В АГИНСКОМ БУРЯТСКОМ ОКРУГЕ ЗАБАЙКАЛЬЯ В Агинском Бурятском округе Забайкалья наблюдается стационарное проявление хламидиоза овец. Эпизоотическое благополучие обеспечивается проведением комплекса ветеринарно-санитарных мероприятий, в том числе использованием инактивированной культуральной эмульсин-вакцины (ВИЭВ). The stationary manifestation of chlamydial infection of the sheep has been observed in the Aginskiy Buryat district of Transbaykalia. Epizootic prosperity is ensured by conducting the complex of veterinary-sanitary measures, including by the use of the inactivated cultural emulsin−vaccine. 200 Хламидиоз имеет широкое распространение, однако является недостаточно изученной инфекционной болезнью. Методам диагностики, профилактики и борьбы с этой болезнью уделяется недостаточно внимания. Хламидиоз − болезнь, характеризующаяся целым рядом гинекологических заболеваний: абортами, эндометритами, вагинитами, рождением мертвых и нежизнеспособных телят, маститами, орхитами, уретритами, баланопоститами. Кроме того, хламидиоз проявляется в виде энцефаломиелитов, полиартритов, конъюнктивитов, пневмоний, энтеритов. Течение болезни носит латентный характер. Болезнь не имеет видовой специфики и может протекать как с разнообразными клиническими проявлениями у одного вида животного, так и с одинаковыми клиническими признаками у разных видов животных. Для хламидиоза характерно широкое распространение на всех континентах, природная очаговость, а также потенциальная опасность для человека − это типичный зооантропоноз. Возбудитель Chlamydophila psittaci входит в список возбудителей заболеваний человека, животных и растений, которые могут быть применены при создании биологического и токсинного оружия, экспорт которых контролируется и осуществляется по лицензиям. Работа с животными, зараженными или подозреваемыми в заражении хламидиозом, относится к работам с особо вредными условиями труда. Возбудитель представляет собой ретикулярные и элементарные тельца, имеющие округлую или овальную форму диаметром от 200-400 до 800-1200 нм. Снаружи тельца ограничены 3-слойной плазматической мембраной. В центре элементарных телец находится плотный непрозрачный нуклеотид (представлен ДНК) и менее плотная структура по периферии. Есть РНК, рибосомы, клеточная стенка. Одним из биологических свойств хламидий является их 201 токсичность. Токсическое вещество термостабильно, при хранении при плюсовой температуре постепенно теряет активность, при минусовой температуре активность токсина сохраняется. Хламидии относятся к стойким микроорганизмам. В животноводческом помещении возбудитель сохраняется до 5 недель. На пастбище хламидии живут несколько недель, в холодной воде и снегу − 17−18 дней, в молоке − 23 дня. Возбудитель очень чувствителен к нагреванию. Температура 60°С убивает возбудителя за 30 мин, кипячение − за 1 мин, спирт этиловый − за 10 мин; 5%-й раствор лизола, 0,5%-е растворы фенола и метафора, 0,1%-й раствор формальдегида, 0,2%-й раствор перманганата калия, 2%-е растворы хлорамина и перекиси водорода убивают его в течение 2 ч. Низкие температуры консервируют возбудителя. К заболеванию восприимчивы многие виды животных, в том числе крупный и мелкий рогатый скот, свиньи, лошади, кошки, собаки, мыши, крысы, голуби, воробьи, а также человек. Хламидии обнаружены и в растениях. Носительство отмечено до 3 лет. Инкубационный период длится до 1 года. Передача возбудителя осуществляется через плаценту, алиментарным, аэрогенным, конъюнктивальным, генитальным, трансмиссивным, контактным путями. Среди типичных природно-очаговых зооантропонозных инфекций, представляющих постоянную угрозу для человека и животных вследствие полифагизма и пластицизма возбудителя [1-4], в овцеводстве Агинского Бурятского автономного округа (АБАО) более 50 лет острой проблемой является стационарное неблагополучие по хламидиозу (табл.1). Анализ лабораторных данных последних 10 лет (1996-2006 гг.) свидетельствует о ежегодной регистрации хламидиоза овец. Так, в 1996 г. было исследовано 49693 овец, из них 773 проявили положительную реакцию (1,7%). 202 Таблица 1 Динамика диагностических исследований и заболеваемости хламидиозом овец по АБАО с 1997 по 2007 г. № п/п Год Исследовано, гол. 2 3 4 5 6 7 8 9 10 11 12 1997 1998 1999 2000 2001 2002 2003 2004 2005 2006 2007 48094 61873 60374 85511 85044 79196 86921 82194 78255 77233 73286 Положительно реагировало гол. % 355 0,7 631 1,0 308 0,5 222 0,3 1596 1,9 406 0,5 260 0,3 447 0,5 328 0,4 161 0,2 177 0,2 В последующие годы наблюдается устойчивая динамика снижения численности положительно реагирующих животных с некоторыми тенденциями к улучшению и ухудшению эпизоотической ситуации. С 1996 по 2000 г. выявлено постепенное уменьшение количества больных овец, а в 2001 г. наблюдается резкое нарастание их числа (1596 овец − 1,9%). В дальнейшем установлено скачкообразное неравномерное снижение эпизоотической напряженности. Хороший эффект получен в Могойтуйском и Агинском районах при использовании инактивированной культуральной эмульсин-вакцины, разработанной в ВИЭВ (Ю.Д. Караваев, И.А. Калугина и др.). Структура положительно реагирующих животных за 12 месяцев 2007 г. распределена следующим образом: большую часть занимает лептоспироз крупного рогатого скота – 3,5 %, инфекционный эпидидимит – 0,22, хламидиоз мелкого рогатого скота – 0,24 и листериоз – 0,03 % от общего 203 количества исследованных животных. При анализе данных диагностических исследований на хламидиоз выявлено, что за последние 10 лет пик заболеваемости хламидиозом был отмечен в 2001 г. – 1,9 %, на мясокомбинат было сдано 1596 овец. Затем наблюдается стойкое снижение динамики, и в 2007 г. всего было зарегистрировано положительно реагирующих животных 0,24% от количества исследованных животных, на мясокомбинат сдано 177 овец. Это показатель целенаправленной работы всех специалистов ветеринарной службы округа по профилактике хламидиоза овец. Во всех ветеринарных участках налажена работа по регистрации всех случаев абортов, рождения нежизнеспособного потомства. В серологический отдел лаборатории за последние 5 лет доставлено 511 проб крови от абортировавших овцематок и параллельно в бактериологический отдел − абортированные от них плоды. Результаты исследований на хламидиоз отрицательные. Поэтому нужно отметить, что клинических проявлений болезни на территории округа не выявлено. Наблюдения и специальные исследования показывают, что метод выявления специфических антител в реакции связывания комплемента в большинстве случаев даёт возможность правильно оценить обстановку в стаде, поставить правильный диагноз, но не обеспечивает при одном−двух исследованиях 100 %-ю возможность выявления всех заражённых животных. Это связано, с одной стороны, с длительным инкубационным периодом хламидиоза и медленным накоплением в крови специфических антител (1-2 месяца и более), а с другой – с нестабильностью сохранения диагностического титра антител, временным или постоянным их исчезновением в крови. Поэтому мы ежегодно проводим поголовное исследование на хламидиоз ярок, переярок, а маток − до трёх суягностей. 204 Во всех ветеринарных участках налажена работа по недопущению случаев передержки положительно реагирующих животных в общем стаде; все вновь поступившие животные в хозяйства в период нахождения в карантине обязательно серологически исследуются на хламидиоз, проводятся ветеринарно-санитарные мероприятия, направленные на санацию от хламидий территорий животноводческих помещений, ведется просветительская работа среди животноводов. Наряду с проведением общепрофилактических ветеринарно-санитарных мероприятий, решением коллегии департамента ветеринарии администрации Агинского Бурятского автономного округа с осени 2003 г. впервые была применена вакцина против хламидиоза. В 2004 г. вакцинировано по Могойтуйскому району 37451 овец; в 2005г. – 10624; в 2006 г. – 20640. В результате исследований вакцинированных животных в 2006 г. положительно реагирующих было 4 овцы. Исходя из этого нужно отметить, что вакцинация овец дает хороший положительный результат (табл. 2). Таблица 2 Данные серологических исследований овец, вакцинированных против хламидиоза 2004 82570 447 0,54 45119 Исследовано вакцинированных, гол. 300 0,66 37451 2005 78255 328 0,42 76416 328 0,43 1842 - 2006 77233 161 0,20 72672 157 0,21 4877 4 2007 73286 170 0,23 60826 170 0,28 10335 - Год Исследовано, гол. Положит. реагировало гол. % Положит. Исслереагиродовано вало невакцинированных, гол. % гол. 205 Положит. реагировало гол. % 147 0,40 0,08 В 2004 г. в ряде хозяйств округа проводили лечение больных хламидиозом животных антибиотиками и трихополом, выздоровление достигало свыше 50%. При анализе эффективности признано экономически нецелесообразным проведение лечебных мероприятий больных животных. Таким образом, проводимые в округе мероприятия – своевременная вакцинация, регулярная с полным охватом поголовья лабораторная диагностика позволяет ветеринарной службе округа удерживать стойкое эпизоотическое благополучие. Они обеспечивают снижение потерь молодняка от абортов, падежа животных, вынужденного убоя, сохранение продуктивности животных и оздоровление поголовья от хламидиозной инфекции. Библиографический список 1. Бутин В.С. Оздоровление хозяйств неблагополучных по хламидиозному аборту овец //Эпизоотология и меры борьбы с инфекционными болезнями животных: сб. науч. тр.− Новосибирск: СО ВАСХНИЛ, 1984.− С. 118-120. 2. Караваев Ю.Д. Хламидиозы животных //Ветеринарная жизнь.− 2009.− №3.− С. 3. 3. Митрофанов П.М. Хламидиозы овец и меры борьбы с ними: метод. рекомендации / П.М. Митрофанов, Н.Г. Казанков, В.С. Бутин, И.А. Штофина. − Новосибирск: СО ВАСХНИЛ, 1984.− 40 с. 4. Хламидиозы сельскохозяйственных животных / Н.З.Хазипов, Х.З. Гаффаров, Р.А. Шафикова и др.; под ред. Н.З. Хазипова, А.З. Равилова. − М.: Колос,1984.−223 с. 206 УДК 579.62 С.М. Стародумова, Е.А. Зайцева НИИ эпидемиологии и микробиологии СО РАМН, г. Владивосток ВСТРЕЧАЕМОСТЬ LISTERIA MONOCYTOGENES У ДИКИХ МЫШЕВИДНЫХ ГРЫЗУНОВ В ПРИМОРСКОМ КРАЕ Проведено исследование сывороток крови диких мышевидных грызунов, отловленных в различных районах Приморского края, на наличие антител к Listeria monocytogenes. Антитела к L. monocytogenes обнаружены у всех исследованных видов грызунов вне зависимости от района отлова. Наибольший процент встречаемости антител к L. monocytogenes выявлен у грызунов, отловленных в окрестностях населенных пунктов и в местах массового отдыха людей. Blood serum samples from wild murine rodents trapped in different areas of Primorsky Region were tested for the presence of antibodies to Listeria monocytogenes. Antibodies to L. monocytogenes were found in all examined species of rodents irrespectively of trapping area. Highest percentage of antibodies occurrence was found in rodents, which were trapped in the neighborhoods of human settlements and places of public entertainment. Грамположительная бактерия Listeria monocytogenes, возбудитель листериоза, широко распространена в объектах окружающей среды как антропогенного, так и неантропогенного характера и выделена более чем у ста видов различных животных. Ученые постоянно проводят исследования на зараженность листериями диких животных, особенно мышевидных грызунов, которым отводится важная роль в инфицировании окружающей среды и сохранении популя207 ции возбудителя в природе [1-3]. В литературе встречаются единичные сообщения о выделении L. monocytogenes от грызунов на территории Дальнего Востока [3, 4]. Однако данных о распространении L. monocytogenes среди диких мышевидных грызунов в Приморском крае до сих пор недостаточно, что послужило основанием для проведения данного исследования. При помощи реакции непрямой гемагглютинации (РНГА) исследованы сыворотки крови 442 диких мышевидных грызунов: полевой мыши (n=220), восточно-азиатской мыши (n=111), красно-серой полёвки (n=72), дальневосточной полевки (n=24), серой крысы (n=10) и землеройки (n=5), которые были отловлены в Красноармейском, Спасском, Ханкайском районах Приморского края, а также в Артемовском (пос. Кневичи) и Владивостокском (бухта Шамора, остров Русский) городских округах в период с апреля по ноябрь 2010 г. Для постановки РНГА использовали эритроцитарный листериозный диагностикум (НПФ «Диагност-Бест», г. Омск) согласно рекомендациям фирмыпроизводителя. При исследовании сывороток крови положительный результат установлен в 9,7±1,4% случаев (n=43, из них в разведении 1:50 – 13 сывороток, 1:100 – 6, 1:200 – 7, 1:400 – 3, 1:800 – 2, 1:1600 – 9, 1:3200 – 3) (табл. 1) Наиболее часто антитела к L. monocytogenes обнаруживались в сыворотках крови грызунов, отловленных в пригороде г. Владивостока – бухте Шамора (31,3±5,1%), и в окрестностях населенных пунктов Ханкайского (16,0±5,2%) и Спасского (9,7±3,5%) районов. Невысокий показатель выявления антител к листериям у грызунов был отмечен в Красноармейском районе и пос. Кневичи (Артемовский городской округ) (2,8 и 2,5% соответственно). Из шести обследованных районов антите208 Таблица 1 Частота обнаружения антител к L. monocуtogenes у диких мышевидных грызунов, отловленных в Приморском крае в 2010 г. Обследованные районы Красноармейский Спасский Ханкайский Владивостокский городской округ б. Шамора о. Русский Артемовский городской округ (пос. Кневичи) Всего Число исследованных проб 36 72 50 Частота обнаружения антител в РНГА абс. M±m, % 1 2,8±2,7 7 9,7±3,5 8 16±5,2 83 161 26 0 31,3±5,1 0 40 1 2,5±2,4 442 43 9,7±1,4 ла к L. monocytogenes не обнаружены лишь в сыворотках крови грызунов, отловленных на о. Русском (Владивостокский городской округ). Нами было отмечено, что антитела к листериям чаще выявлялись у грызунов, отловленных в летние месяцы (июнь – июль) – у 24,5±3,6%, и значительно реже у отловленных осенью (сентябрь – ноябрь) и весной (апрель – май) (2,8±1,0 и 1,96±1,4% грызунов соответственно). Несмотря на то, что среди отловленных грызунов по числу особей доминировала полевая мышь (n=220), встречаемость антител к L. monocytogenes у зверьков этого вида оказалась ниже (5,4±1,5%), чем у восточно-азиатской мыши (12,6±3,1%) и красно-серой полевки (18,05±4,5) (табл. 2). Большинство особей восточно-азиатской мыши и красно-серой полевки, у которых были обнаружены антитела к L. monocytogenes, было отловлено в пригороде г. Владивостока в районе бухты Шамора, которая является местом массового отдыха людей. 209 Таблица 2 Встречаемость антител к L. monocytogenes у отдельных видов грызунов, отловленных в Приморском крае в 2010 г. Название вида Восточноазиатская мышь Красно-серая полевка Полевая мышь Дальневосточная полевка Серая крыса Землеройка Район* 4 5 Частота Общее число обнаружения отловленных антител в РНГА 6 грызунов абс. M±m, % 1 2 3 6 5 5 27 68 - 111 14 12,6±3,1 4 1 - 56 11 - 72 13 18±4,5 9 62 39 - 70 40 220 12 5,4±1,5 14 4 0 - 6 - 24 1 4,2 - - 6 - 4 - 10 2 20 3 - - - 2 - 5 1 20 * Район: 1 – Красноармейский, 2 – Спасский, 3 – Ханкайский, 4 – б. Шамора; 5 – о. Русский; 6 – пос. Кневичи. Таким образом, результаты проведенных исследований показали, что антитела к L. monocytogenes встречались у всех исследованных видов диких мышевидных грызунов вне зависимости от района, где они были пойманы. Наибольший показатель встречаемости антител к L. monocytogenes выявлен у грызунов, отловленных в окрестностях населенных пунктов и местах массового отдыха людей. Полученные результаты диктуют необходимость дальнейшего мониторинга за возбудителем листериоза в Приморском крае с целью разработки комплекса профилактических мероприятий для предотвращения распростране210 ния этой инфекции среди городского и сельского населения края. Библиографический список 1. Гершун В.И. Экология листерий и пути их циркуляции в природном очаге // Экология возбудителей сапронозов. – М., 1988. – С. 80-85. 2. Джупина С.И. Листериоз – инфекция классическая // Листериоз на рубеже тысячелетий: материалы междунар. симпозиума. – Покров, 1999. – С. 131-134. 3. Тимофеева Л.А. Биологические свойства Listeria monocytogenes, выделенных из грызунов / Л.А. Тимофеева, В.Я. Головачева // Изв. Иркут. гос. н.-и. противочум. ин-та Сибири и Дал. Востока. – Иркутск, 1959. – Т. 20. – С. 307-315. 4. Зайцева Е.А. Распространение Listeria monocytogenes среди мышевидных грызунов на территории Приморского края / Е.А. Зайцева, С.А. Ермолаева, Г.П. Сомов // Тихоокеан. мед. журн. – 2008. – №2. – С. 65-69. УДК 619:616.98:579 А.М. Третьяков Бурятская ГСХА им. В.Р. Филиппова А.Ж. Норбоев РГУ ветеринарии, Бурятская РСББЖ СЕЗОННОСТЬ ПРОЯВЛЕНИЯ ИНФЕКЦИОННЫХ БОЛЕЗНЕЙ СЕЛЬСКОХОЗЯЙСТВЕННЫХ ЖИВОТНЫХ БАКТЕРИАЛЬНОЙ ПРИРОДЫ В РЕСПУБЛИКЕ БУРЯТИЯ В разработке технологической карты профилактических мероприятий против инфекционных заболеваний важное значение имеет знание сезонности проявления опреде211 ленных инфекционных болезней на отдельных территориях. Эпизоотические особенности болезней изучали, руководствуясь методическими указаниями по эпизоотологическому исследованию [1-2]. Статистическим анализом и личными наблюдениями изучена сезонность особо опасных инфекционных болезней бактериальной этиологии на территории Республики Бурятия, срок наблюдения 25 лет. Проявление сезонности инфекции в целом по неблагополучным пунктам выглядело следующим образом. Как показано в таблице, из 399 зарегистрированных за данный период неблагополучных пунктов на весенне-летний период приходится 248 (62,1%), а на осенне-зимний – 151 (37,9%), что позволяет сделать выводы о выраженной сезонности (весенне-летней) инфекционных болезней в республике (рис. 1). 61 68 всего весна 399 157 лето осень зима 113 Рис. 1. Динамика выявляемости неблагополучных пунктов по бактериальным инфекциям сельскохозяйственных животных в зависимости от сезона года По крупному рогатому скоту за анализируемый период было зарегистрировано 202 неблагополучных пункта, из которых 141 (69,8%) приходился на весенне-летний период (см. таблицу, рис. 2). По видам инфекции выраженную сезонность по регистрируемым неблагополучным пунктам 212 отмечали по лептоспирозу (30 неблагополучных пунктов) в весенне-летний период, аналогичные данные были получены по туберкулезу и пастереллезу. По сибирской язве сезонность летняя. По эмкару и бруцеллезу выраженной сезонности в республике не установлено. В овцеводстве за анализируемый период было выявлено 126 неблагополучных пунктов (см. таблицу, рис. 3). Однако выраженной сезонности по регистрации неблагополучных пунктов у овец по инфекциям бактериальной природы не выявили, за исключением инфекционного эпидидимита баранов – летне-осенняя сезонность (46 неблагополучных пунктов) и листериоза – весенняя (12 неблагополучных пунктов). Динамика выявления неблагополучных пунктов по бактериальным инфекциям сельскохозяйственных животных в РБ в зависимости от сезона года Наименование болезни 1 Эмкар Бруцеллез Лептоспироз Туберкулез Пастереллез Сибирская язва Листериоз Итого Инфекционный эпидидимит Энтеротоксемия Листериоз Бруцеллез Всего В том числе пунктов весной летом осенью 2 3 4 5 Крупный рогатый скот 47 11 16 11 34 10 14 7 33 2 28 1 22 17 3 1 55 10 24 14 4 0 3 0 7 2 1 3 202 52 89 37 Овцы зимой 6 9 3 2 1 7 1 1 24 63 12 29 17 5 27 28 8 7 12 5 6 3 3 7 2 0 7 11 0 213 Итого 2 126 1 Лептоспироз Пастереллез Рожа Листериоз Итого Всего 21 19 28 3 71 399 3 36 Свиньи 9 4 9 3 25 113 4 41 3 7 17 0 27 157 Окончание табл. 5 6 26 23 1 4 0 0 5 68 8 4 2 0 14 61 По болезням свиней было зарегистрирован 71 неблагополучный пункт. С выраженной сезонностью у свиней проявлялись рожа – в летнее время года (17 неблагополучных пунктов) и лептоспироз – в весеннее время (9 неблагополучных пунктов) (см. таблицу, рис. 4). По другим видам инфекций свиней на территории Бурятии выраженной сезонности не выявили. зима; 24 осень; 37 всего; 202 лето; 89 весна; 52 Рис. 2. Сезонная динамика регистрации неблагополучных пунктов по бактериальным инфекциям крупного рогатого скота 214 зима; 23 осень; 26 всего; 126 лето; 41 весна; 36 Рис. 3. Сезонная динамика регистрации неблагополучных пунктов по инфекционным болезням овец зима; 14 осень; 5 лето; 27 всего; 71 весна; 25 Рис. 4. Сезонная динамика регистрации неблагополучных пунктов по инфекционным болезням свиней Таким образом, выраженная сезонность выявления новых неблагополучных пунктов по бактериальным болезням характерна для отдельных инфекций, и чаще всего она про215 является у скота, находящегося в условиях высокой концентрации на ограниченной территории, что необходимо учитывать при планировании профилактических мероприятий. Библиографический список 1. Бакулов И.А. Рекомендации по методике эпизоотологического исследования / под ред. И. А. Бакулова. – Покров, 1975. – 75 с. 2. Система эпизоотологического мониторинга особо опасных, экзотических, малоизученных в том числе зооантропонозных болезней животных / И.А. Бакулов и др. – Покров: Изд-во ВНИИВВиМ, 2001. – 72 с. УДК 619:616.98:579 А.М. Третьяков, П.И. Евдокимов Бурятская ГСХА им. В.Р. Филиппова ЭПИЗООТИЧЕСКАЯ ХАРАКТЕРИСТИКА ИНФЕКЦИОННОЙ АНАЭРОБНОЙ ЭНТЕРОТОКСЕМИИ ОВЕЦ В РЕСПУБЛИКЕ БУРЯТИЯ Проведен анализ эпизоотической ситуации по инфекционной анаэробной энтеротоксемии овец в Республике Бурятия в 1921 – 2006 гг. Сформулированы основные причины возникновения болезни в современных условиях и пути их устранения. The analysis of epizootic on infectious anaerobic enterotocsemia sheeps in the Republic Buryatiya, in 1921 - 2006 s. Worded main reasons of origin diseases in modern conditions and ways of their removal. Инфекционная патология является одной из наиболее важных и не решенных до настоящего времени проблем современной ветеринарии, наносящей огромный экономический и социальный ущерб. 216 Вместе с тем изучение краевой эпизоотологии, проведение бактериологического мониторинга позволяет повысить эффективность противоэпизоотических мероприятий, направленных на профилактику и ликвидацию заразных болезней животных [1-3] . Инфекционная энтеротоксемия впервые была описана в 1910 г. Джилрутом на острове Тасмания, подобное заболевание у овец в Новой Зеландии наблюдал Джил в 1927 г., и в связи с характерной патолого-анатомической картиной изменения почек назвал ее «болезнь мягкой почки» [4]. За 2009 г. инфекционная анаэробная энтеротоксемия на территории России у овец регистрировалась в 131 пункте, у крупного рогатого скота в 75 пунктах, что указывает на напряженность эпизоотической ситуации в стране по данной болезни [5]. Таким образом, проблема инфекционной анаэробной энтеротоксемии до настоящего времени остается весьма актуальной как в целом для Российской Федерации, так и для Сибири, и в частности для Республики Бурятия. Исследования проводились в течение 2002-2010 гг. в условиях кафедры паразитологии, эпизоотологии и ОВД ФГОУ ВПО Бурятская ГСХА. С целью выяснения эпизоотической обстановки по инфекционной анаэробной энтеротоксемии в Республике Бурятия были проанализированы ветеринарные статистические отчеты хозяйств, районных ветеринарных станций, районных ветеринарных лабораторий за период с 1982 по 2006 г. Эпизоотологические особенности болезни в Республике Бурятия изучали, руководствуясь методическими указаниями по эпизоотологическому исследованию [6, 7]. Статистическим анализом и личными наблюдениями изучены заболеваемость, летальность животных, причины появления и распространения инфекционных болезней. 217 Данная инфекционная болезнь характеризуется септическим проявлением, молниеносным или сверхострым течением. Гибели животных предшествовали поражения органов пищеварения, отеки соединительной ткани и аборты суягных овцематок. В первое десятилетие данная инфекция регистрировалась: 1981 г. – 1 неблагополучный пункт (10 заболело/10 пало), 1982 г. – 7 (136/109), 1983 г. – 5 (158/89), 1984 г. – 1 (154/154), 1985 г. –1 (10/10), 1987 г. – 1 (26/26), 1988 г. – 3 (69/55) (таблица). Динамика показателей развития эпизоотического процесса инфекционной анаэробной энтеротоксемии овец Показатель 1 Количество неблагополучных пунктов Заболело животных Пало животных Летальность, % Заболеваемость на 10 тыс. гол. Смертность на 10 тыс. гол. Коэффициент очаговости Уровень охвата вакцинацией, % Год 1982 1983 1984 1985 1986 1987 1988 1989 1990 1991 2 3 4 5 6 7 8 9 10 11 7 5 1 1 0 1 3 0 0 0 136 158 154 10 0 26 69 0 0 0 109 89 80,1 56,3 154 100 10 100 0 0 26 100 55 79,7 0 0 0 0 0 0 0,77 0,89 0,87 0,05 0 0,17 0,43 0 0 0 0,62 0,87 0,05 0 0,17 0,34 0 0 0 19,4 31,6 154 10 0 0 0 0 6,2 6,8 6,3 9,4 0,5 5,8 218 26 23 10,9 15,3 12,0 13,1 11,3 Продолжение табл. Показатель Год 1992 1993 1994 1995 1996 1997 1998 1999 2000 2001 12 13 14 15 16 17 18 19 20 21 1 Количество не0 благополучных пунктов Заболело жи0 вотных Пало животных 0 Летальность, % 0 Заболеваемость 0 на 10 тыс. гол. Смертность на 0 10 тыс. гол. Коэффициент 0 очаговости Уровень охвата 10,1 вакцинацией, % 0 2 1 1 1 3 0 1 0 0 278 19 24 8 56 0 6 0 0 0 229 7 15 82,3 36,8 62,5 8 100 56 100 0 0 6 100 0 0 0 3,4 0,3 0,5 0,22 1,9 0 0,26 0 0 2,8 0,11 0,3 0,22 1,9 0 0,26 0 0 139 19 24 8 18,6 0 6 0 8,0 4,5 5,8 6,0 3,2 0 2,6 1,3 2,4 Окончание табл. Показатель 1 Количество неблагополучных пунктов Заболело животных Пало животных Летальность, % Заболеваемость на 10 тыс. гол. Смертность на 10 тыс. гол. Коэффициент очаговости Уровень охвата вакцинацией, % Год 22 23 24 25 26 Средний показатель за 25 лет 27 0 0 0 0 0 1,08 0 0 0 0 0 37,5 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 30,3 80,8 0 0 0 0 0 0,38 0 0 0 0 0 0,32 0 0 0 0 0 18,9 2,3 1,7 2,5 3,4 3,8 6,1 2002 2003 2004 2005 219 2006 За второе десятилетие данное заболевание регистри ровалось ежегодно с 1994 по 1998 г.: 1994 г. – 2 неблагополучных пункта (278 заболело/229 пало), 1995 г. – 1 (19/7), 1996 г. –1(24/15), 1997 г. – 1 (8/8), 1998 г. – 3(21/21), 2000 г. – 1(6/6). Возникновение болезни регистрировали в 8 районах республики. Всего за анализируемый период было зарегистрировано 27 неблагополучных по данной инфекции пунктов. Инфекционной энтеротоксемией чаще всего заболевали наиболее упитанные овцы разных возрастов (от 3 месяцев до 3 лет). Болезнь в большинстве случаев сопровождалась высокой летальностью, в среднем до 80,8% от числа заболевших. Имеющиеся материалы показали, что инфекционная энтеротоксемия овец в Бурятии характеризуется стационарностью, встречается ежегодно (за редким исключением) на определенных пастбищах. Индекс эпизоотичности за исследуемый период находился на уровне 0,48. Это объясняется длительным сохранением (в течение нескольких лет) возбудителя в почве, вследствие чего отдельные хозяйства на протяжении длительного времени остаются стационарно неблагополучными. Коэффициент очаговости инфекционной энтеротоксемии овец в республике за анализируемый период варьировал от 8 до 154, что указывает на неравномерность проявления эпизоотического процесса, т.е. от спорадических случаев до небольших вспышек и эпизоотий. Болезнь чаще всего регистрировали весной (рисунок), реже осенью и зимой. Зимой, как правило, заболевали овцы, в рационе которых преобладали концентрированные корма и зерно. 220 Количество больных, гол XII 250 I II 200 150 XI III 100 50 0 X IV IX V VIII VI VII Сезонность инфекционной энтеротоксемии овец за 1982-2006 гг. Основными причинами возникновения болезни являлись неполный охват вакцинацией восприимчивого поголовья животных (в среднем 6,1% от всего поголовья), выпас животных на неокультуренных пастбищах, ранний неоправданный выгон животных на пастбища, погрешности в кормлении в период стойлового содержания (кормление мерзлой зеленкой, заплесневелыми кормами), отсутствие дегельминтизаций животных перед зимовкой (против кишечных стронгилят, мониезий и других гельминтозов). Библиографический список 1. Краевая эпизоотология Нечерноземной зоны РСФСР: монография / Л.А. Балова и др.; под ред. В.П.Урбана, М.Г.Таршиса. – М.: Колос, 1980. – 208 с. 2. Таршис М.Г. Болезни животных, опасные для человека: монография / М.Г. Таршис, Б.Л. Черкасский. – М.: Колос, 1997. – 206 с. 3. Гуславский И.И. Обеспечение эпизоотической безопасности в животноводстве Алтайского края / И.И. Гуславский, В.А. Апалькин, К.А. Густокашин, А.И. Саенко // Региональные аспекты обеспечения социальной безопасности населения Юго-Западной Сибири: материалы науч.-практ. конф. – Барнаул, 2004. – С. 196-198. 4. Ургуев К.Р. Клостридиозы овец: монография. – М.: Россельхозиздат, 1977. – 70 с. 5. Эпизоотическая ситуация в РФ (предварительные данные) 221 [Электрон. ресурс] / состав.: С.А. Дудников и др. – Электронная презентация (7,37 Мб). – Владимир.: ФГУ ВНИИЗЖ, ИАЦ Россельхознадзора. 6. Бакулов И.А. Рекомендации по методике эпизоотологического исследования / под ред. И. А. Бакулова. – Покров, 1975. – 75 с. 7. Система эпизоотологического мониторинга особо опасных, экзотических, малоизученных, в том числе зооантропонозных болезней животных / И.А. Бакулов и др. – Покров: Изд-во ВНИИВВиМ, 2001. – 72 с. УДК 619:616.981.55 Л.Г. Улько, Т.И. Фотина, А.В. Березовский, А.А. Фотина Сумский национальный аграрный университет, Украина ЭПИЗООТОЛОГИЧЕСКИЙ КОНТРОЛЬ АССОЦИАТИВНЫХ БАКТЕРИОЗОВ КОНЕЧНОСТЕЙ КРУПНОГО РОГАТОГО СКОТА Применение в системе противоэпизоотических мероприятий при гнойно-некротических поражениях конечностей крупного рогатого скота комплексного антибактериального препарата тимтил и дезинфектанта бровадез плюс позволит снизить показатели заболеваемости коров болезнями дистального отдела конечностей. Application in the anti-epizootic measures in the necrotic lesions of the extremities of cattle complex antibiotic and disinfectant TimTil and Brovadez Plus will reduce the incidence of cattle diseases of the distal extremities. Гнойно-некротические поражения конечностей у высокопродуктивных животных в последнее десятилетие получили значительное распространение и наносят огромный экономический ущерб, состоящий из потери продуктивности, преждевременной выбраковки животных и затрат на лечение [1- 4]. В современном животноводстве с целью профилактики 222 и терапии заболеваний конечностей широко используются различные группы лекарственных препаратов, длительное использование которых приводит к появлению резистентности у патогенных микроорганизмов, накопление которых в экосистеме ведет к дискредитации химиопрепаратов, появлению атипичных форм течения болезней и накоплению препаратов в продуктах животноводства. Бактериологические исследования, направленные на выявление видового состава микрофлоры, участвующей в развитии гнойно-некротических поражений конечностей, показали, что заболевание обусловлено ассоциацией целого ряда микроорганизмов. Наряду с фузобактериями изолируются бактероиды, клостридии, стрептококки, стафилококки, энтерококки, энтеробактерии, неферментирующие грамотрицательные бактерии [1-3], что объясняет низкую эффективность большинства химиотерапевтических средств при заболеваниях дистального отдела конечностей у коров в хозяйствах. Целью нашей работы было определение антибиотикорезистентности микроорганизмов, изолированных из очагов гнойно-некротического воспаления конечностей у коров. Чувствительность изолированных микроорганизмов к химиотерапевтическим средствам определяли методом разведений в жидкой питательной среде. Исследованию на чувствительность к антибиотикам подлежали чистые культуры микроорганизмов. Материал для посева брали непосредственно из глубоких слоев очага гнойно-некротического воспаления на грани здоровой и пораженной ткани. Материал засевали на соответствующий набор питательных сред, необходимых для выделения чистых культур различных видов микроорганизмов и определяли минимальную подавляющую рост микроорганизма концентрацию антибиотика. Для определения величины МПК заданные концентрации антибиотика вносили в питательную среду, кото223 рую затем засевали культурой микроорганизма. После инкубации оценивали наличие или отсутствие видимого роста. При изучении антибиотикорезистентности изолированных из гнойно-некротических очагов конечностей культур установлено, что большинство из них устойчивы к ампициллину, оксациллину, цефазолину, неомицину, стрептомицину, эритромицину. В большинстве культуры чувствительны к сульфаниламидам, тетрациклинам, нитрофуранам, левомицетину, цефатоксину, тиамулину и тилозину. Staphylococcus aureus был умеренно резистентен к большинству исследуемых антибиотиков, за исключением ампициллина и линкомицина, к которым он оказался стойким. К оксациллину были устойчивы все изолированные микроорганизмы кроме Staphylococcus aureus. Почти половина изолированных штаммов проявляла среднюю чувствительность к цефтриаксону, тилозину, метронидазолу, тетрациклину, левомицетину и энрофлоксацину. Препарата, к которому были бы чувствительны все изолированные культуры, не было определено. Культуры Fusоbacterium necrophorum были резистентны к ампициллину, оксациллину, цефазолину, неомицину, стрептомицину, гентамицину, линкомицину и энрофлоксацину и проявляли среднюю чувствительность к цефтриаксону, тилозину, тетрациклину, метронидазолу и левомицетину. Таким образом, для эффективного лечения заболеваний конечностей бактериальной этиологии необходимо комбинировать несколько химиотерапевтических средств или конструировать новые комплексные препараты, которые имеют разновекторное действие и в равной степени оказывают губительное действие на микроорганизмы, которые принимают непосредственное участие в развитии патологического процесса. В этой связи мы считаем, что для конструирования новых препаратов необходимо использовать только те химио224 терапевтические средства, к которым 90% изолированных культур имеют чувствительность. При использовании препаратов надо учитывать их побочное действие на организм животных – токсический эффект, аллергическую реакцию, развитие дисбактериозов, возникновение суперинфекции или реакции обострения инфекции. Мы провели исследования по установлению минимальных бактериостатических и максимальных бактерицидных концентраций препаратов в отношении микрофлоры, изолированной из гнойно-некротических очагов, с использованием метода серийных разведений. С этой целью мы взяли препараты, к которым изоляты были чувствительны при использовании определения чувствительности методом диффузии в агар, а именно окситетрациклин, тилозин, тиамулин, цефтриаксон, левомицетин и метронидазол. При этом к метронидазолу культуры были резистентны, и минимальная концентрация, задерживающая рост микроорганизмов, составляла от 9,3 до 59 мкг/мл, к тилозину, тиамулину и тетрациклину были чувствительны практически все культуры. Это позволило нам сконструировать новый комплексный антибактериальный препарат тимтил. Комбинация из двух взаимно усиливающих антибактериальных компонентов подобрана в соотношении, обеспечивающем универсально широкий и надежный спектр действия в отношении возбудителей ключевых хозяйственно-значимых бактериозов. В производственных условиях терапевтическую эффективность препарата тимтил определяли на коровах в возрасте 3-5 лет с гнойно-некротическими поражениями дистального отдела конечностей. Терапевтическая эффективность применения препарата тимтил при гнойно-некро225 тических болезнях конечностей у коров составила 90%. При исследовании различных объектов в хозяйствах, неблагополучных по заболеваниям конечностей, установлено, что они в большинстве случаев контаминированы Fusobacterium necrophorum, Clostridium perfringens, oedematiens, septicum, Proteus vulgaris, Pseudomonas aeruginosa, Klebsiella spp., Streptococcus pyogenes, Escherichia coli, Staphylococcus aureus и другими микроорганизмами. Выделенная микрофлора играет важную роль в развитии патологического процесса в области конечностей, а также в возникновении маститов и эндометритов. В связи с этим проведение дезинфекции животноводческих объектов является залогом эффективности лечебно-профилактических мероприятий в хозяйствах, неблагополучных по заболеваниям конечностей, а поиск экологически безопасных и эффективных средств уничтожения вышеперечисленных микроорганизмов остается актуальной проблемой. Поэтому параллельно с изучением антибиотикорезистентности изолированных культур мы определяли бактерицидные свойства к этим культурам дезинфектанта бровадез плюс. Установлено, что полный дезинфицирующий эффект против Fusоbacterium necrophorum, Dihelobacter nodosus, Clostridium perfringens, Clostridium oedematiens, septicum, Esсhericchia coli, Proteus vulgaris, стрептококков и стафилококков достигается применением 0,5-1%-го раствора препарата бровадез плюс. При этом дезинфекция может проводиться в присутствии животных. Таким образом, применение комплекса противоэпизоотических мероприятий при патологии конечностей у животных с использованием комбинированных химиотерапевтических средств и дезинфектантов, в частности препаратов тимтил и бровадез плюс, позволит контролировать заболевания конечностей у крупного рогатого скота в хозяйствах. 226 Библиографический список 1. Молоканов В.А. Прогнозирование и профилатика болезней копытец у коров / В.А. Молоканов, В.М. Щеглов, М.Т. Байкенов // Ветеринария. – 2001. - № 7. – С. 38-40. 2. Панько И.С. Болезни конечностей у крупного рогатого скота (спецхозов и промышленных комплексов). – К.: Вища школа, 1982. – 128 с. 3. Попов Ю.Г. Значение условно-патогенной микрофлоры при массовых болезнях крупного рогатого скота // Актуальные вопросы микробиологии и инфекционной патологи животных: материалы междунар. науч.-произв. конф. – СПб., 2004. – С. 103-104. 4. Miskimins D. Predominant causes of lameness in feedlot and stac ker cattle // Proc. of the 12 Intern. Symp. on Lamen. in Rumin., 9—12 Ja nuary, 2002. – Orlando, FL, USA. – P. 147-151. УДК 638.12:591 В.Г. Фомин , Р.З. Сиразиев ГНУ НИИВ Восточной Сибири Россельхозакадемии ВЛИЯНИЕ РАСТИТЕЛЬНЫХ И МИНЕРАЛЬНЫХ ПОДКОРМОК НА ЗАБОЛЕВАЕМОСТЬ ПЧЁЛ АСКОФЕРОЗОМ Препараты, изготовленные из растительного и минерального сырья, обладают лечебными свойствами при аскоферозе пчёл. Настои донника и тысячелистника менее эффективны, чем полевого хвоща и морской капусты. The preparations, prepared from the plant and mineral raw material possess therapeutic properties with askoferozis of bees. The infusion of sweet clover and milfoil are less effective, than field horsetail and sea kale. Аскосфероз (известковый расплод) – инфекционная болезнь пчелиных семей, вызывающая гибель взрослых 227 трутней и пчелиных личинок, их высыхание в белые, как мел, комочки. Возбудитель известкового расплода – гриб Аscosphera apis откосится к голосумчатым грибам, на что указывают многоклеточные мицелии с ветвистыми гифами и прорастание зиготы в зародышевый спорангий без периода покоя. Споровые капсулы обладают высокой устойчивостью к воздействию физических и химических факторов внешней среды. До сих пор нет единого мнения относительно путей заражения семей – происходит ли это при попадании спор с пыльцой внутрь личинки или на поверхность тела. Некоторые авторы считают, что споры Аscosphera apis долгое время выживают в почве, попадают с пищей в организм пчел и затем передаются с кормом личинкам. Гриб выделяли из пыльцы, кишечника личинок и взрослых пчел, но не обнаружили его в зрелом меде, нектаре, маточном молочке, кишечнике здоровых куколок. Обнаружены споры Аscosphera apis в содержимом медового зобика взрослых пчел, т. е. они передаются от одной пчелы к другой при пищевом контакте. При наступлении благоприятных условий для гриба (похолодание, повышение влажности) споры прорастают в организме личинки, богатом незаменимыми аминокислотами, белками, жирами, поражая расплод. Мицелий начинает размножаться в эпителии средней кишки, затем пронизывает все ткани личинки и выходит наружу. Пчелы, очищая в течение первых трех-четырех дней рамки от погибших личинок, непосредственно контактируют с инфицированными личинками и при этом обсеменяются конидиями гриба. Ульевые пчелы могут совмещать в своем развитии обязанности чистильщицы и кормилицы. Таким образом, в неблагополучных семьях происходит активное инфицирование расплода спорами и мицелием гриба. Наиболее восприимчива к аскосферозу личинка 3-4–дневного возраста. Возбудитель 228 болезни попадает в кишечник личинки с медом, пергой и начинает прорастать. Микозные болезни личинок пчел остаются одними из наиболее распространенных заболеваний, приводящих к значительному экономическому ущербу. За последние годы в стране разработан ряд эффективных химиотерапевтических препаратов для профилактики и лечения этого заболевания: асканазол, аскоцин, аскостатин, дикобин, аскооль, унисан, аскосан, ларвасан, микосан и др. Несмотря на высокую эффективность применяемых средств, вылечить заболевшие семьи очень трудно, что объясняется невыполнением пчеловодами всего необходимого комплекса зоотехнических и санитарных мероприятий при микозах пчел и появлением устойчивых к применяемым препаратам штаммов грибов. Поэтому необходимо чередовать лекарства и разрабатывать новые эффективные препараты. Актуальность выбранного нами направления работы объясняется необходимостью изыскания перспективных препаратов растительного происхождения, изготовленных из доступного дешевого сырья, для разработки доступной пчеловодам методики профилактики и лечения грибковых заболеваний. Целью нашего исследования является попытка подобрать препараты растительного и минерального происхождения, которые бы эффективно воздействовали на гриб Аscosphera apis. Наше внимание привлекли полевой хвощ, морская капуста (ламинария), тысячелистник, донник лекарственный. Экспериментальные исследования проводились на пасеке КФХ «Пчелка» Нерчинского района Забайкальского края. Весной после клинического анализа состояния пасеки, состоящей из 41 пчелиной семьи, было подобрано пять 229 групп аналогичных по силе, количеству печатного расплода, кормовым запасам и с близкой степенью поражения аскосферозом. Хвощ полевой – самое распространенное растение. Содержание кремния в нем – от 49 до 76%. Кроме того, он содержит кальций, калий, алкалоид палюстрин, много марганца, азотистого натрия и других компонентов. Кремний очень важен для растений и животных, он повышает солеустойчивость, улучшает усвоение железа, стимулирует иммунитет и устойчивость к поражению грибковыми заболеваниями. Морская капуста (ламинария), являясь натуральным источником йода, восполняет его дефицит в организме естественным путем, препятствует развитию йоддефицитных заболеваний. Это готовый натуральный, созданный самой природой, идеально сбалансированный комплекс, содержащий около 40 микро- и макроэлементов, находящихся в соединении с органическими веществами: йод (до 3%), бром, марганец, кобальт, цинк, магний, железо, калий, натрий, сера, фосфор, азот и др., витамины: А, В1, В2, В12, С, D, Е, пантотеновую и фолиевую кислоты. Йод является биостимулятором и иммуностимулятором. Особенность йода – окислительно-восстановительное действие. Это – губительно влияет на грибковые и микробные возбудители. Недостаточность йода в кормах чаще всего связана с низким содержанием его в почве, воде и местных пищевых продуктах в определенных районах, так называемых эндемических (биогеохимических) провинциях или зонах. В траве донника лекарственного обнаружены кумарин, кумариновая кислота, мелилотовая кислота. Из свежей травы донника выделен гликозид кумариген, из которого при сушке образуются кумарин и производные пурина, белок, 230 тироподобные вещества, эфирные масла и флавоноиды. Клиническими исследованиями установлено, что экстракт донника благодаря содержанию кумарина угнетает центральную нервную систему и обладает противосудорожным свойством. Препараты травы донника назначают при гипертонической и ишемической болезни, атеросклерозе, тромбофлебите, повышенной свертываемости крови, как антикоагулянт прямого действия, а также в качестве отхаркивающего и противовоспалительного средства при бронхитах. Тысячелистник обыкновенный в листьях содержит алкалоид ахиллеин, в цветках (соцветиях) – до 0,8% эфирного масла, камфору, витамины К и С, фитонциды. Настой тысячелистника применяются для лечения язвенной болезни и гастритов, а также при других желудочных заболеваниях и заболеваниях кишечника, при носовых, раневых, кишечных, геморроидальных кровотечениях, как горечь для возбуждения аппетита. Обладает бактерицидным действием. В связи с вышеизложенным был поставлен опыт по испытанию настоев хвоща полевого, тысячелистника, донника лекарственного и золы морской капусты (ламинарии). Пчелиные семьи контрольной группы получали в качестве подкормки чистый 50%-й сахарный сироп. Пчёлам опытных групп также скармливали 50%-й сахарный сироп, но с добавлением в определенных концентрациях и дозах лечебно-стимулирующих подкормок: 1-й группе – хвоща полевого, 2-й – тысячелистника, 3-й – донника белого и 4-й – золы морской капусты (ламинария). Сироп наливали в кормушки и по мере поедания его пчелами постоянно подливали в течение 5 дней. Насекомые получали 100 – 150 мл сиропа из расчета на одну улочку трехкратно. Критериями оценки пригодности любого препарата являются не только полезные свойства, но и безвредность для пчел. Нами последовательно определена токсичность 231 всех видов экстрактов для этих насекомых с целью установления переносимой дозы при подкормке семей. Все четыре препарата испытывали в 5-6 концентрациях, в трехкратной повторности и устанавливали их влияние на продолжительность жизни пчел. При скармливании корма с настоями полевого хвоща, тысячелистника, донника, золы морской капусты погибших насекомых на дне ульев не отмечали, выброса расплода не было, матки продолжали работать, поведение пчел в подопытных семьях не отличалось от контрольных. Эксперименты с экстрактами продолжалась в плане изучения влияния на состояние и развитие семей с учетом пораженности их аскосферозом. Подкормка экстрактом хвоща благотворно влияла на работу маток и выращивание расплода. Это отчетливо прослеживалось при скармливании корма с экстрактами хвоща и тысячелистника. При скармливании одних доз в этих группах отмечено увеличение количества расплода на 24,4% по сравнению с контролем. В другой дозе в среднем по обеим группам количество расплода увеличилось на 4,3%. В группах, где пчелы получали экстракт хвоща, тысячелистника и донника, расплода было выращено больше на 112%. Результаты лечения оценивали по количеству выздоровевших пчелиных семей и по продолжительности их лечения. В группах, где применяли настои золы морской капусты и полевого хвоща, по клиническим наблюдениям, отмечалось более быстрое выздоровление пчелиных семей по сравнению с контрольной группой. Самая высокая лечебная эффективность (100%) отмечалась при применении настоя золы морской капусты в необходимой концентрации и объёме препарата с сахарным сиропом (1:1). 232 УДК 619:616.98:579.852.13Б А.А. Хангажинов, М.Ц. Цыбиков Бурятская ГСХА им. В.Р. Филиппова РАЗВИТИЕ ЭПИЗООТИЧЕСКОГО ПРОЦЕССА БОТУЛИЗМА В РЕСПУБЛИКЕ БУРЯТИЯ В ПЕРИОД 1999-2009 гг. Приводится статистические данные развития эпизоотического процесса ботулизма на территории Республики Бурятия. In the article statistical data of epizootic process development of botulism on the territory of republic Buryatia are given. Ботулизм – тяжелое пищевое заболевание, протекающее остро у людей в виде пищевой, а у животных – кормовой интоксикации. Название отравления – ботулизм, так же как и название его возбудителя – Cl. botulinum, связано с тем, что последний был впервые выделен Ван-Эрменгемом из колбасных изделий (botulus – колбаса). У домашних животных и птиц заболевание протекает в острой форме и характеризуется поражением центральной нервной системы, параличами глотки, языка и нижней челюсти [1-5]. Ботулизм вызывается анаэробным спорообразующим микробом Cl. botulinum. Микроб широко распространен в природе. Он встречается в почве, сене, кишечнике животных, человека, рыб и др. Таким образом, все продукты, загрязненные почвой или фекалиями животных, могут быть обсеменены возбудителем ботулизма. Cl. botulinum представляет собой слабоподвижную палочку длиной 4-8 и шириной 0,6-0,8 мкм, по Граму окрашивается положительно. Спора обычно располагается на конце палочки. 233 Вегетативные формы Cl. botulinum инактивируются при 80˚С в течение 30 мин, а споры не погибают при кипячении даже в течение 4-6 ч. Cl. botulinum относят к группе сапрофитных почвенных микробов [2]. Материалом для статистического анализа послужили годовые отчеты районных ветеринарных лабораторий, а также журналы бактериологического отдела РГУ РНПВЛ. Ботулизм людей в Бурятии передается алиментарно, при употреблении в пищу омуля, пораженного ботулизмом. Основная реализация омуля неучтенного лова осуществляется в г. Улан-Удэ, поэтому эпидемиологическая ситуация по ботулизму в городе является сложной. При анализе динамики заболеваемости ботулизмом населения Республики Бурятия установлено: в 1999 г. зарегистрировано 137 случаев со 189 пострадавшими, из них летальных исходов – 20. В 2000 г. зарегистрировано 52 случая, 70 пострадавших, летальных исходов не было. В 2001 г. – 107 случаев, 158 пострадавших, летальных исходов – 13. В 2002 г. – 69 случаев, 79 пострадавших, летальных исходов – 8; в 2003 г. зарегистрировано 68 случаев, 82 пострадавших, летальных исходов – 4, заболеваемость на 100000 населения – 8,1; в 2004 г. – 34 случая, пострадавших – 35, летальных исходов – 2, заболеваемость – 3,35; в 2005 – 19 случаев, летальных исходов не было, показатель заболеваемости – 1,9; в 2006 г. – 7 случаев, 8 пострадавших, летальный исход – 1, заболеваемость – 0,82; в 2007 г. – 15 случаев, 15 пострадавших, летальных исходов – нет, заболеваемость – 1,5; 2008 г. – 5 случаев, 5 пострадавших, летальных исходов – нет, заболеваемость – 0,52. Характерной особенностью проявления ботулизма у людей является отсутствие сезонности. Так, например, за 8 месяцев 2003 г. болезнь регистрировалась каждый месяц, начиная с января. Высший пик случаев заболеваемости приходился на июль и август (10 и 11). Наблюдаются высокие по234 казатели заболеваемости и летальности людей по ботулизму. Причиной заболеваемости ботулизмом, как было установлено, являлся омуль соленый и копченый. По данным 2002 г., 46,8% пострадавших употребляли омуля, приобретенного у частных лиц в неустановленных местах торговли в г. Улан-Удэ; 12,2% пострадавших употребляли омуля собственного посола; 17,7% место приобретения не указали; 12,6% употребляли омуля, привезенного из районов республики, а 2,5% пострадавших – омуля, приобретенного в торговой сети г. Улан-Удэ. Исходя из вышеизложенного, основным источником токсической болезни ботулизма у людей является рыба омуль (носитель возбудителя) неучтенного улова, который водится в районе Селенгинского мелководья, отличающегося своеобразием природных и ландшафтных характеристик, экологических и социальных условий, благоприятствующих размножению возбудителя этой инфекции. Определяющую роль в заболеваемости ботулизмом играют возрастающие объемы добычи, реализации и потребления потенциально опасной рыбы омуля нелегального происхождения. При существующих социальных тенденциях и экономических условиях жизни населения, неэффективности мер по пресечению незаконного лова и торговли рыбопродукцией прогноз в отношении дальнейшего улучшения ситуации в заболеваемости ботулизмом невозможен. Библиографический список 1. Ургуев К.Р. Клостридиозы животных. – М., 1987. – С. 74-76. 2. Львов В.М. Анаэробные инфекции и борьба с ними. –М., 1971. – С. 30-45. 3. Коваленко Я.Р. Анаэробные инфекции сельскохозяйственных животных. –М., 1954. – С. 288-298. 4. Каган Ф.И. Специфическая профилактика клостридиозов животных / Ф.И. Каган, Л.В. Кириллов. – М., 1976. – С. 7 – 28. 5. Мишустин Е.Н. Микробиологическое и биохимическое исследование почв / Е.Н. Мишустин, И.С. Востров. – М., 1971. – С. 13 – 20. 235 УДК 619:616.33/34:615.916:614.94 В.А. Чхенкели1,2, Н.А. Горяева2, А.Ю. Мартынова1, Л.Г. Чхенкели3, М.И. Алексеев4, Н.В. Шевченко5 1 Иркутский филиал ИЭВСиДВ 2 Иркутская ГСХА 3 Иркутский государственный медицинский университет 4 ОПХ «Байкало-Сибирское» СО Россельхозакадемии 5 Иркутская межобластная ветеринарная лаборатория ИСПОЛЬЗОВАНИЕ ПРЕПАРАТА НА ОСНОВЕ ГРИБОВ-КСИЛОТРОФОВ РОДА TRAMETES ПРИ ЛЕЧЕНИИ КОЛИБАКТЕРИОЗА ТЕЛЯТ И СНИЖЕНИЕ НЕГАТИВНОГО ВОЗДЕЙСТВИЯ ЭКОТОКСИКАНТОВ НА ОРГАНИЗМ Исследованы кормовые рационы телят на содержание токсичных элементов на молочно-товарной ферме ГУП ОПХ «Байкало-Сибирское» СО Россельхозакадемии. Установлен дефицит нормируемых микроэлементов – цинка и меди, избыток токсичных элементов – свинца, мышьяка, ртути и кадмия. Показано, что применение препарата леван -2 на основе базидиального гриба Trametes pubescences (Schumach.) Pilat., применяемого для лечения колибактериоза телят, позволит как снизить поступление токсикантов в организм телят, так и уменьшить их негативное влияние. Feed rations for carves were researched by us on the toxic ingredient content at the commercial dairy experimental farm «Baikalo-Sibirskoye» of the Siberian Department of the Russian Agricultural Academy. The deficiency of rated microelements, such as zinc and copper, was determined as well as excess of toxic elements like lead, arsenic, mercury and cadmium. It was shown that application of the preparation Levan-2, obtained on the basis of the basidiomycete Trametes pubescences (Schumach.) Pilat., for colibacteriosis treatment will allow both to decrease toxic substance income to the carves’ bodies and lessen its negative effect. 236 В биосфере циркулирует огромное количество ксенобиотиков техногенного происхождения, многие из которых имеют исключительно высокую токсичность – суперэкотоксиканты, в том числе и тяжёлые металлы. В этом случае к желудочно-кишечным и респираторным болезням молодняка, как наиболее распространенным, присоединяются токсические воздействия кадмия, свинца и других элементов, которые, как правило, вызывают в организме свободно-радикальное окисление липидов и снижают антиоксидантную защиту и резистентность организма [1, 2]. Установлено, что тяжелые металлы могут мигрировать по трофической цепи: окружающая среда – растения (корма) – животное – продукция животноводства – человек, создавая угрозу здоровью животных и в конечном счете человека [3]. Скармливание сельскохозяйственным животным кормов, содержащих тяжёлые металлы, способно вызывать серьёзные нарушения в обменных процессах, что сопровождается снижением резистентности, и, как следствие, возникновением заболеваний различной этиологии [3, 4]. Причинами их загрязнения токсичными элементами могут быть распространение отходов промышленных предприятий, выбросы транспорта, неконтролируемое применение химических удобрений, разработка полезных ископаемых. В этой связи на сегодняшний день немаловажное значение имеет определение содержания токсичных элементов в воде, молоке, кормах, которые входят в кормовой рацион молодняка. Поступление избытка токсичных веществ в организм животных заставляет искать и способы эффективной защиты организма. В последние годы ведущим звеном в эпизоотологии колибактериоза на фермах признаётся нарушение экологической системы объектов животноводства и агробиоценоза в регионе в целом. Это, прежде всего, си237 стематические антропогенные воздействия малой интенсивности по биологической системе «мать – плод – приплод» в различных сочетаниях [5]. Цель данной работы заключалась в определения возможности снижения негативного воздействия токсичных элементов, содержащихся в кормах, при использовании препарата леван-2 для лечения и профилактики колибактериоза телят. Экспериментальные исследования выполнялись в ИФ ГНУ ИЭВСиДВ, на базе МТФ ГУП ОПХ «БайкалоСибирское» СО Россельхозакадемии по согласованию с Государственной службой ветеринарии Иркутской области, ФГУ «Иркутская межобластная ветеринарная лаборатория». В работе использовали препарат леван-2, получаемый на основе гриба-ксилотрофа Trametes pubescences (Schumach.) Pilat. штамма 0663 и обладающий антимикробным и иммуномодулирующим действием [6, 7]. Анализ кормов, молока и воды, которые используются в хозяйстве для кормления телят, на содержание токсичных элементов проводили атомно-абсорбционным методом с использованием атомно-абсорбционных анализаторов «Юлия-2» (Россия) и «Variant» (Австралия) [8]. Статистическую обработку результатов экспериментов и оценку достоверности проводили по критерию Стьюдента для уровня вероятности не менее 95%. Данные по содержанию токсичных элементов в пробах воды, молока и кормов, входящих в рацион кормления телят в ГУП ОПХ «Байкало-Сибирское», представлены в табл. 1, данные по cуточному поступлению токсичных элементов в организм телят – в табл. 2. 238 Таблица 1 Содержание токсичных элементов в воде, молоке, кормах, входящих в кормовой рацион телят НормаОбъект тивные иссле- Элемент показатели, дования мг /кг Медь 30,0 Цинк 50,0 Свинец 5,0 Сено Кадмий 0,3 Ртуть 0,05 Мышьяк 0,5 Медь 30,0-80,0 Цинк 50,0 -100,0 Фуражная Свинец 5,0 мука Кадмий 0,3 Ртуть 0,1 Мышьяк 0,5 Медь 1,0 Цинк 5,0 Свинец 0,1 Молоко Кадмий 0,03 Ртуть 0,005 Мышьяк 0,005 Вода Медь Цинк Свинец Кадмий Ртуть Мышьяк 1,0 5,0 0,1 0,001 0,05 Фактическое значение, мг / кг 0,620±0,002 2,960±0,060 0,250±0,001 0,020±0,001 0,0176±0,0022 Не обнаружен 0,840±0,030 4,940±0,001 0,090±0,001 0,020±0,001 0,0112±0,0021 Не обнаружен 0,190±0,020 3,310±0,050 0,025±0,0001 Не обнаружен 0,001±0,0001 Не обнаружен Не обнаружена 1,046±0,003 0,024±0,001 Не обнаружена Не обнаружена Не обнаружена НТД на методы исследования ГОСТ 30692 -2000 ГОСТ 30692 -2000 ГОСТ 30692 -2000 ГОСТ 30692 -2000 МУ № 5178 -90 ГОСТ 26930 – 86 ГОСТ 30692 -2000 ГОСТ 30692 -2000 ГОСТ 30692 -2000 ГОСТ 30692 -2000 МУ № 5178 -90 ГОСТ 26930 – 86 ГОСТ 30178 -96 ГОСТ 30178 -96 ГОСТ 30178 -96 ГОСТ 30178 -96 МУ № 5178 -90 ГОСТ 26930 – 86 ГОСТ 30178 -96 ГОСТ 30178 -96 ГОСТ 30178 -96 ГОСТ 30178 -96 МУ № 5178 -90 ГОСТ–ИСО 8288. Качество воды. При анализе содержания токсичных элементов в кормовых рационах молодняка молочного периода отмечали дефицит нормируемых элементов – цинка и меди и избыток свинца, ртути и кадмия. 239 Таблица 2 Суточное поступление токсичных элементов в организм телят, мг Показатель Медь Цинк Свинец Кадмий Ртуть Мышьяк Молоко 1,14 19,9 0,150 0,0060 Сено 0,62 2,96 0,250 0,020 0,0176 Фуражная мука 0,50 2,96 0,054 0,012 0,0487 Фактическое содержание в суточ- 2,26 25,82 0,454 0,032 0,0723 ном рационе, мг Нормальное содержание в суточ- 60,0 200,0 ном рационе, мг Избыточное содержание токсичных веществ в организме животных заставляет искать способы эффективной защиты их организма. С этой целью применяются энтеросорбенты – препараты, которые осуществляют связывание экзо- и эндогенных веществ в желудочно-кишечном тракте путем адсорбции. К таким препаратам относятся препараты природного происхождения: цеолиты, кремнеземы, клиноптилолиты, вермикулиты, хитозан, хитин и фитопрепараты [1, 2, 6]. К таким препаратам относится и препарат леван-2 , получаемый на основе дереворазрушающего гриба Trametes pubescences (Schumach.) Pilat. штамма 0663. Показано, что применение препарата леван-2 при профилактике и лечении колибактериоза позволяет также снизить поступление токсичных элементов и их негативное влияние на метаболические процессы в организме телят. Библиографический список 1. Уваров С.А. Особенности содержания тяжёлых металлов в продуктах убоя крупного рогатого скота в зависимости от породы и биогеохимических условий Приамурья: автореф. дис. … канд. с.-х. наук. – Великий Новгород, 2006. – 17 с. 240 2. Хвостова А.В. Влияние органо-минеральной композиции на метаболизм тяжёлых металлов в организме телят при их выращивании: автореф. дис. … канд. биол. наук. – Дубровицы, 2009. – 18 с. 3. Лабораторный контроль безопасности продуктов животного происхождения и кормов в Российской Федерации / М.В.Калмыков, В.И. Белоусов, Г.В.Иванова и др.// Ветеринария. – 2010. – №3. – С. 3 – 6. 4. Гаврилов Ю.А. Воздействие средств химизации на организм крупного рогатого скота и фармакологическая коррекция возникающих изменений / Ю.А. Гаврилов, Н.Ю. Диких // Материалы науч.произв. конф., посвящ. 100-летию со дня рожд. проф. А.А. Авророва «Актуальные проблемы ветеринарной патологии и морфологии животных». – Воронеж, 2006. – С. 579 – 684. 5. Колибактериоз телят в современных экологических условиях Сибири (Особенности эпизоотологии, клинического проявления, патогенез, диагностика, меры профилактики и борьбы): метод. рекомендации /А.С. Кашин, М.И. Заздравных, Н.А. Шкиль и др. – Барнаул: АзБука, 2003. – 79 с. 6. Чхенкели В.А. Биоэкологические аспекты изучения и использования биологически активных веществ дереворазрушающего гриба Coriolus pubescens (Shum.:Fr.) Quel.: дис. ... д-ра биол. наук. – Иркутск, 2006. – 584 с. 7. Chkhenkeli V.A. Some aspects of study and use of biologically active substances of wood – rotting mushroom Trametes pubescens (Shumach.)Pilat. // Mat. оf XV Congress of Europen Mycologists. – St. Petersburg, 2007. – Р. 185 – 186. 8. Ермаченко Л.А. Атомно-абсорбционный анализ в санитарногигиенических исследованиях: метод. пособие. – М., 1997. - 207 с. 241 УДК 619:616.98:579.852.1(571.54) О.П. Шахаева, В.Ц. Цыдыпов, С.А Алексеева Управление ветеринарии Республики Бурятия, Бурятская ГСХА Иркутская ГСХА ЭПИЗООТОЛОГИЧЕСКИЕ И ЭПИДЕМИОЛОГИЧЕСКИЕ ПРОБЛЕМЫ СИБИРСКОЙ ЯЗВЫ В БУРЯТИИ (Баргузинский район) Дается описание возбудителя сибирской язвы Baccillus anthracis, полученного при исследовании проб мяса, патматериала в очаге сибирской язвы – с. Баянгол Баргузинского района Республики Бурятия. The paper focuses on the description of stimulant of Baccillus anthracis which was got from death animal’s meat from the center of anthrax in Buryat republic Barguzin district Bayangol village. Сибирская язва все еще представляет значительную угрозу животноводству, а также опасность для здоровья людей. В настоящее время она встречается на всех материках и практически во всех странах мира, как среди животных, так и среди людей, несмотря на проводимые профилактические мероприятия. Известная со времен глубокой древности, она была исключительной по размерам и числу жертв эпизоотий и эпидемий. Распространение болезни имеет повсеместный характер. Одной из характерных особенностей эпизоотии сибирской язвы в бывшем Советском Союзе является отчетливо выраженная неравномерность территориального распре242 деления. Сибирская язва животных на территории России регистрируется и в настоящее время в виде спорадических случаев [1, 2]. Вспышки болезни регистрировались в основном в теплое время года, в период с апреля по сентябрь включительно. Передача возбудителя сибирской язвы животным и людям происходит через мясо и животное сырье, полученное от больных животных. Кроме этого, больные животные обсеменяют различные объекты окружающей среды. Насекомые в эпизоотологии этой инфекции играют двойную роль: с одной стороны, они вызывают множественные травмы кожных покровов; с другой – являются непосредственными передатчиками возбудителя от больных к здоровым животным, а также к людям. Основным мероприятием против сибирской язвы является создание иммунного поголовья имеющимися противосибиреязвенными вакцинами, что проводится, и небезуспешно. В последнее время Бурятия характеризируется возникновением вспышек сибирской язвы среди сельскохозяйственных животных, принадлежащих частному сектору, пример тому – вспышки сибирской язвы крупного рогатого скота в Кяхтинском районе в 1999 г. с заболеванием людей и смертельным исходом. Памятно возникновение сибиреязвенной инфекции у телки частного владения, сопровождавшееся заболеванием людей в 2007 г. в Тункинском районе. Особенно характерной была связанная с явлениями природно-климатического катаклизма (землетрясение и подъем грунтовых вод) крупная вспышка сибирской язвы в с. Баянгол Баргузинского района летом 2008 г., где одновременно заболело 11 человек карбункулезной формой сибирской язвы и с особой тяжестью протекала кишечная форма у одного человека. Следует отметить, что при данной вспыш243 ке заболевания было отмечено проявление болезни одновременно у трех видов животных (крупный рогатый скот, лошади и овцы). Биоматериал, изъятый 30 июня 2008 г. на стоянке «Асули» Б.Б. Бурхинова Баянгольского поселения от вынужденно убитого бычка; 4 пробы мяса, изъятые у жителей пос. Усть-Баргузин; 2 пробы, изъятые у ИП Бжевской, поступили в РГУ ветеринарии Бурятскую республиканскую научно-производственную ветеринарную лабораторию. При проведении исследований поступившего биоматериала получены следующие результаты: в мазках, окрашенных по Граму и Романовскому-Гимза, обнаружены грамположительные палочки, находящиеся в коротких цепочках; выявлено наличие капсулы и типичный рост в виде колонии R-формы (львиная грива) на твердой питательной среде (МПА); типичный рост на жидкой питательной среде (прозрачный бульон, плотный осадок); отсутствие гемолиза; положительные биопробы сибиреязвенным фагом (гибель белых мышей на 2-е сутки после заражения); положительный тест на жемчужное ожерелье; характерная люминесценция на 3 креста с флуоресцирующей сибиреязвенной сывороткой серии №185 контроль № 1121; отсутствие фосфатазной активности; положительная реакция преципитации с сибиреязвенной сывороткой серии № 76 контроль №76 , серии № 79 контроль №79, антиген сибиреязвенный бактериальный стандартный серии № 37 контроль № 37. На основании вышеприведенных исследований выделена культура и идентифицирована как Bacillus anthracis, лабораторный контроль возбудителя сибирской язвы (экспертиза № 16144). На основании полученных результатов лабораторных исследований трех проб мяса, изъятых у граждан, проживающих в пос. Усть-Баргузин, получена культура и иден244 тифицирована как возбудитель сибирской язвы, лабораторный диагноз – сибирская язва. В дальнейшем, 07.07.08 г. в 0-30, в лабораторию поступил материал – ухо от телки в возрасте 1 год 4 месяца, красно-пестрой масти, принадлежащей гражданину К.М. Молчанову, проживающему в пос. Баргузин, ул. Красноармейская, 6; ухо от овцы, принадлежащей А.Б. Гармаеву, местность «Жаргалма» Баянгольского поселения, которая пала 06.07.08 г.; 07.07. 08 г. в 12-10 поступило ухо от лошади в возрасте 24 года, принадлежащей А.Б. Гармаеву из местности «Жаргалма» Баянгольского поселения, которая пала 06.07. 08 г.; ухо от телочки в возрасте 6 месяцев красно-пестрой масти, принадлежащей гражданке А.А. Тогмидон, проживающей в с. Баянгол, ул. Арбижил, телочка пала 06.07.08 г. На основании лабораторных исследований выявлены микробные культуры, идентифицированные как Bacillus anthracis, лабораторный диагноз – сибирская язва. Таким образом, в данном хозяйстве зарегистрирована вспышка сибирской язвы у крупного рогатого скота, лошади и овец. Причина возникновения болезни, предположительно, связана с природно-климатическими катаклизмами, создавшими условия для контакта животных с сибиреязвенными спорами, находящимися в почве. В этот период произошло землетрясение, которое вызвало смещение земного пласта и подъем грунтовых вод, вымывших из почвы сибиреязвенные споры. Данная вспышка не обошла и эпидемиологические проблемы сибирской язвы в Баргузинском районе. На 04.07.08 г. госпитализировано 11 человек, из них у 7 больных установлен лабораторный диагноз – сибирская язва, у одного больного было подозрение на сибирскую язву, трое больных находились под наблюдением и получали профилактическое лечение антибиотиками. Все заболевшие участвовали в забое, разделке и погрузке туши, 245 употребляли мясо и субпродукты. С заимки Асули 5 заболевших человек одновременно обратились в Баянгольскую участковую больницу, в которой на основании клинических и эпидемиологических данных был выставлен диагноз – подозрение на сибирскую язву, все заболевшие были госпитализированы в инфекционное отделение МУЗ «Баргузинская ЦРБ». Заболевшие 24.06.08 г. участвовали в вынужденном забое одной головы крупного рогатого скота в личном подсобном хозяйстве. По оперативным данным, контактных лиц, использовавших мясо заболевшего животного, было 280 человек. За ними было организовано медицинское наблюдение, экстренная профилактика антибиотиками. Продолжалось установление мест реализации мяса и субпродуктов. В то же время на заимке «Асули» была проведена экстренная вакцинация против сибирской язвы 157 голов крупного рогатого скота, овец, лошадей, свиней и собак. Данные по выделению возбудителя сибирской язвы в динамике исследований представлены в таблице. № п/п 1 1 2 Выявление возбудителей сибирской язвы районе в 2008 г.Результат Номерв Баргузинском Что Откуда экспертизы 2 доставлено 3 доставлено 4 с. Баянгол 16144 Мясо говядина Баргузинского 01.07.08 1 проба района, владелец Бурхинов Б.Б. с. Усть-Баргузин 16146-16147 Мясо говядина Баргузинского района, владелец 01.07.08 1 проба Бжевская А.К. 246 5 Положительно 03.07.08 Отрицательно 12.07.081 Продолжение табл. 1 2 3 4 с. Усть-Баргузин Баргузинского района, 16148-16150 Мясо говядина владельцы: 01.07.08 3 пробы Харинский Г.И., Елшина В.Д., 3 Востоков И.А. с. Усть-Баргузин Фарш 16151 Баргузинского говядина 1 01.07.08 района, владелец проба Хранко И.В. с. Баргузин 16195 Ухо телки 1 Баргузинского 4 06.07.08 проба района, владелец Молчанов К.М. с. Баянгол, 16196 Ухо овцы 1 5 владелец 06.07.08 проба Гармаев А.В. с. Баянгол, 16197 Ухо телки 1 6 владелец 07.07.08 проба Тогмидон А.А. с. Баянгол, 16198 Ухо лошади 1 7 владелец 07.07.08 проба Гармаев А.В. с. Баянгол, Ухо лошади 1 владелец – 8 16300 проба неустановленное лицо с. Баянгол, 16301 Ухо лошади 1 9 владелец 10.07.08 проба Будожапов Ф Местность заимки «Асули», 16302-16316 10 Почва 15 проб Бурхинов Б.Б., 11.07.08 место забоя быка 247 5 Положительно 08.07.08 Отрицательно 12.07.08 Отрицательно 17.07.08 Положительно 12.07.08 Положительно 12.07.08 Положительно 09.07.08 Положительно 16.07.08 Положительно 16.07.08 Качество дезинфекции неудовлетворительное 21.07.08 Продолжение табл. 1 11 2 16317-16322 11.07.08 12 16323-16331 11.07.08 13 16336 13.07.08 16342-16346 16.07.08 16347-16361 15 16.07.08 16362-16366 16 16.07.08 16367-16376 17 16.07.08 14 18 3 4 Местность «Токсохо», летняя заимка Почва 6 проб Гармаева А.В., место падежа лошади Местность «Токсохо», заимка (летник) Почва 9 проб отара Гармаева А.В., несанкционированное захоронение овец СП «Курумканское» Курумканского Ухо 1 проба района, заимка «Ворошилова», владелец Кукузиев М.Т. «Соел», Почва 5 проб с. Баянгол «Тасархан», Почва 12 проб с. Баянгол «Зориг», Почва 5 проб с. Баянгол «Асули», Почва 10 проб с. Баянгол 16378-16388 «Токсохо», Почва 11 проб 16.07.08 с. Баянгол 16393 19 17.07.08 Ухо 1 проба с. Карасун Баянгольского с/п, владелец Ринчинов С.К. 248 5 Качество дезинфекции неудовлетворительное 21.07.08 Качество дезинфекции неудовлетворительное 21.07.08 Отрицательно 24.07.08 Отрицательно 26.07.08 Отрицательно 26.07.08 Отрицательно 26.07.08 Отрицательно 26.07.08 Качество дезинфекции удовлетворительное 26.07.08 Отрицательно 26.07.08 1 2 3 4 ИН Ананин, местность 16394 Мясо конина 1 20 «Арбижил» 17.07.08 проба Заиграевского района СПК «Баян-Гол» 16475 Ухо овцы 1 Хоринского 21. 22.07.08 проба района, владелец Цыбиков Ж.Б. Патматериал с. В. Иволга, 16750-16751 от крупного «Дружба», 22. 25.07.08 рогатого скота владелец 2 пробы Раднаев А.Б. Окончание табл. 5 Отрицательно 28.07.08 Исследования продолжаются Исследования продолжаются Исходя из вышеизложенного, заражение людей сибирской язвой может произойти при разделке и убое туш больного животного, употреблении продуктов убоя, не прошедших ветеринарно-санитарную экспертизу или неизвестного происхождения, а также при несоблюдении личной гигиены при забое животных. При анализе восприимчивости людей было установлено, что в основном заражение происходит в сельской местности при уходе за больными животными, их забое и захоронении трупов. Чаще заболевают мужчины, среди детей случаев заболевания не отмечалось. Люди чаще всего болели кожной или кожно-септической формой. Сибирская язва в основном регистрируется в Бурятии в летнее время (июль, август), наблюдается сезонный характер болезни. Таким образом, отсутствие учета поголовья скота, неполный охват вакцинацией восприимчивых животных послужили причиной крупной вспышки сибирской язвы в Баргузинском районе, с. Баянгол летом 2008 г., где одновременно заболело 11 человек. При данной вспышке было 249 отмечено проявление сибирской язвы одновременно у трех видов животных (крупный рогатый скот, лошади, овцы). Библиографический список 1. Цыдыпов В.Ц. Краевая эпизоотология и микробиология Восточной Сибири и Монголии/ В.Ц. Цыдыпов, А.М. Третьяков, О.Б. Бадмаева. – Улан-Удэ, 2008. 2. Цыдыпов В.Ц. Эпизоотологический мониторинг сибирской язвы в регионе Центральной Азии. – Улан-Удэ, 2005. УДК 616.981.49+636.52/58+616-022+(571.1/5):(571.6) Ф.Н. Шубин, А.В. Раков, Н.А. Кузнецова, Т.В. Катарская, Е.Г. Гранина НИИ эпидемиологии и микробиологии СО РАМН, г. Владивосток, ООО «Уссурийская птицефабрика» САЛЬМОНЕЛЛЕЗ НА ПРЕДПРИЯТИЯХ ПТИЦЕВОДСТВА В СИБИРИ И НА ДАЛЬНЕМ ВОСТОКЕ. МОЛЕКУЛЯРНЫЕ И ЭПИЗООТОЛОГИЧЕСКИЕ АСПЕКТЫ Изучена плазмидная характеристика 278 штаммов Salmonella enterica серовар enteritidis (S. enteritidis), изолированных из продуктов на 8 административных территориях Сибири и Дальнего Востока. Популяция микроба гетерогенна и представлена 9 плазмидными типами микроба. Гетерогенность микроба на различных территориях и птицекомплексах варьирует. В настоящее время 77,4% штаммов высокорезистентны к хинолонам и имеют сниженную чувствительность к ципрофлоксацину. The plasmid characteristics of 278 S. enteritidis strains isolated from food in 8 administrative territories of Siberia and Far East were studied. 250 Population of pathogen was heterogeneous and represented 9 plasmid types. Pathogen heterogeneity in different territories and poultry complexes are vary. Currently, 77.4% of pathogen strains are highly resistant to quinolones and have decreased sensitivity to fluoruquinolones. В настоящее время S. enteritidis занимает ведущее значение в этиологии сальмонеллеза в России и во многих странах мира. Значительный прогресс в исследовании болезни связан с изучением молекулярной эпидемиологии инфекции. Нашими исследованиями создана система мониторинга за сальмонеллами, основанная на данных плазмидного анализа микроба, что позволило выявить гетерогенность популяции сальмонелл, выяснить эпизоотическую и эпидемическую значимость различных генотипов микроба [1]. Вместе с тем появились сообщения о формировании штаммов сальмонелл, резистентных к хинолонам и имеющих сниженную чувствительность к фторхинолонам. Целью исследования являлось изучение плазмидной характеристики популяций сальмонелл на птицекомплексах Сибири и Дальнего Востока и оценка чувствительности их к налидиксовой кислоте и ципрофлоксацину. Изучена плазмидная характеристика штаммов S. enteritidis, изолированных в 2004-2010 гг. из 166 проб пищевых продуктов 25 птицекомплексов из 8 территорий Сибири и Дальнего Востока. Кроме того, изучены штаммы S. enteritidis, выделенные в этих же регионах из 112 проб полуфабрикатов, приготовленных на пищевых предприятиях. Определение спектра плазмид проводили у свежевыделенных штаммов микроба, как описано нами ранее [1]. Чувствительность к налидиксовой кислоте и ципрофлоксацину изучена у 224 штаммов S. enteritidis, выделенных в 1995-2008 гг. в Сибири и на Дальнем Востоке. Чувствительность к антибиотикам определяли методом серийных разведений в среде Мюллера-Хинтона [2]. 251 Проведенные исследования показали, что по спектру плазмид популяции S. enteritidis у кур на изученных птицефабриках Сибири и Дальнего Востока высокогетерогенны. Из таблицы видно, что в целом гетерогенность микроба ограничена 9 плазмидными типами. При этом степень гетерогенности S. enteritidis на птицефабриках административных территорий, определяемая количеством выявленных плазмидных типов микроба, варьирует в значительных пределах. В Новосибирской, Иркутской областях и Хабаровском крае выявлено по 5 плазмидных типов микроба. Кроме того, на отдельных птицефабриках этих регионов выявлено также по 2 и более типов S. enteritidis (в таблице не показано), что подчеркивает гетерогенность микроба. Анализ распределения плазмидных типов микроба по территории показал, что среди них есть типы S. enteritidis, которые выявлены на всей территории Сибири и Дальнего Востока (38 Mda и 38:1,4 Mda). Вторая группа плазмидных типов S. enteritidis имеет региональное распространение. Так, плазмидный тип 38:2,6:1,4 Mda чаще обнаруживается на птицефабриках Сибири, тогда как на Дальнем Востоке он выявлен только в Приморском крае, а штаммы плазмидного типа 38:2,3 Mda и 38:30:2,3 Mda более характерны для Дальнего Востока. Третья группа плазмидных типов S. enteritidis приурочена к определенным административным территориям. В Приморском крае им является тип микроба 38:4,2 Mda, в Новосибирской области – 38:3,0:1,4 Mda, в Хабаровском крае – 38:3,3 Mda, а в Иркутской области – 38:26:1,4 Mda. Близкие результаты получены при изучении плазмидной характеристики штаммов S. enteritidis, изолированных из 112 проб пищевых полуфабрикатов. Оказалось, что плазмидные типы микроба, выявленные в продукции местных птицекомплексов, составили 82,1% штаммов микроба. По 252 Плазмидная характеристика штаммов S. enteritidis, изолированных в 2004-2010 гг. из пищевых продуктов птицекомплексов Сибири и Дальнего Востока Новосиб. обл. (8) Красн. край (1) Иркут. обл. (5) Респ. Якутия (2) Респ. Бурятия (1) Хабар. край (5) Камч. обл. (1) Прим. край (2) НаимеНаименование административных территорий нование (количество птицефабрик) количесВсего твенных объектов данных и и штамплазмидные мов типы микроба микроба (в Mda) Плазмидные типы штаммов S. enteritidis, изолированных из продукции птицефабрик 38 8 1 1 6 9 25 Mda 38 : 1,4 10 2 17 6 1 5 35 76 Mda 38 : 2,6 : 1,4 7 1 4 11 23 Mda 38 : 4,2 2 9 11 Mda 38 : 3,0 : 1,4 1 1 Mda 38 : 2,3 2 14 7 23 Mda 38 : 30 : 2,3 2 1 3 Mda 38 : 3,3 2 2 Mda 38 : 26 : 1,4 2 2 Mda Количество проб продукции, 28 3 26 7 1 29 8 64 166 содержащих сальмонеллы 253 отдельным административным территориям имеются различия. Так, в Новосибирской и Иркутской областях все культуры, изолированные из полуфабрикатов, относились к местным типам. В Хабаровском и Приморском краях местными являлись лишь 75% культур. Объяснение этих результатов связано с формой обеспечения населения птицеводческой продукцией. Население Новосибирской и Иркутской областей обеспечивается в основном местной продукцией, тогда как в Приморском и Хабаровском краях велика доля завозной продукции. Таким образом, имеются основания полагать, что в части субъектов федерации Сибири популяция S. enteritidis, выявляемая в продуктах питания, является местной по происхождению, тогда как на других территориях она состоит из двух частей – местной и завозной, что определяется формой обеспечения населения продуктами птицеводства. В настоящее время птицекомплексы для профилактики сальмонеллеза широко применяют фторхинолоны. Изучение чувствительности к хинолонам 89 штаммов S. enteritidis, выделенных из продуктов в Сибири и на Дальнем Востоке в 1995-2008 гг., показало, что 69,7% культур оказались высокорезистентными к налидиксовой кислоте и имели сниженную в 8-32 раза чувствительность к ципрофлоксацину. При этом все штаммы S. enteritidis, выделенные в 1995-2003 гг., оказались высокочувствительными к обоим препаратам. Напротив, среди штаммов, изолированных в большинстве регионов в 2006-2008 гг., 77,4% культур оказались высокорезистентными к налидиксовой кислоте и имели сниженную в 8-32 раза чувствительность к ципрофлоксацину, а в Новосибирской области и в Приморском крае такие характеристики имели все 135 штаммов микроба, выделенные от кур. Таким образом, гетерогенность популяции S. enteritidis, 254 выявляемой на продуктах в Сибирско-Дальневосточном регионе, определяется степенью гетерогенности микроба в различных административных территориях и на отдельных птицекомплексах. Вопрос о месте формирования резистентности сальмонелл к хинолонам требует дальнейшего изучения. Весьма вероятно, что такими местами могут быть племенные предприятия и непосредственно птицекомплексы, применяющие данные препараты. Библиографический список 1. Микробиологический мониторинг за Salmonella enteritidis в Приморском крае. Фенотипическая и плазмидная характеристика возбудителя / Ф.Н. Шубин, Н.И. Ковальчук, Н.А. Кузнецова и др.// Эпидемиология и инфекцион. болезни. – 2002. – № 1. – С. 36-40. 2. Определение чувствительности микроорганизмов к антибактериальным препаратам / Н.А. Семина, С.В. Сидоренко, С.П. Резван и др. // Клин. микробиол. и антимикроб. химиотер. – 2004. – № 4. – С. 306359. УДК 616.981.136+614.4 (с-182) Л.Я. Юшкова, И.И. Гуславский, И.А. Бакулов, А.В. Юдаков Институт экспериментальной ветеринарии Сибири и Дальнего Востока ГЕОГРАФИЧЕСКИЕ ОСОБЕННОСТИ ПРИ ИЗУЧЕНИИ ЛИСТЕРИОЗА При выполнении эпизоотологических исследований использовали следующие приёмы: сравнительно-историческое и сравнительно-географическое описание. Изучению подвергнуты районы, расположенные во всех природно-географичеких зонах края – степной, лесостепной, предгорной и горной. Обьектом изучения с учётом распространения 255 листериоза были 55 районов Алтайского края и 5 районов Республики Алтай. At performance epizootologichesky researches used following receptions: the comparative-historical and rather-geographical description. Areas located in all prirodno - geography zones of edge - steppe, foreststeppe, natural and mountain are subjected studying. Object of studying with the distribution account listerioza, were 55 areas of Altay territory and 5 areas mountain-Altay an area bus. Ветеринарная география исследует влияние географической среды на здоровье и продуктивность животных (главным образом домашних) и распространение болезней животных, изучает природно-территориальные комплексы, обусловливающие предпосылки, характер распространения и особенности течения болезней на конкретных территориях. Основные методы ветеринарной географии – экспедиционные исследования, обобщение статистических данных, описательный метод. Она опирается на науки ветеринарных и географических циклов, тесно связана с географией медицинской, использует методы и достижения математики, зоологии, ботаники и других естественных наук. Возникновение ветеринарной географии было вызвано необходимостью самой широкой профилактики болезней животных, осуществление которой невозможно без знания предпосылок, характера распространения и особенностей течения болезней на конкретных территориях. Некоторые особенности распространения болезней животных (частота, приуроченность к отдельным местностям) были изучены ещё в древности. В 1846 г. русский учёный В.И. Всеволодов впервые указал на необходимость всестороннего изучения конкретных географических условий для предупреждения болезней животных. Впоследствии усилиями многих учёных и практиков [1-3] было установлено, что возникновение и географиче256 ское распространение болезней животных тесно связано с территориальными комплексами. Изучением ареалов отдельных инфекционных болезней, истории их становления и современного состояния занимается также географическая эпизоотология, а комплексы инфекционных и инвазионных болезней, свойственные определённым географическим районам, изучаются краевой эпизоотологией. Для выявления закономерностей, изучаемых ветеринарной географии, важное значение имеет составление ветеринарно-географических карт. Исследования по ветеринарной географии осуществляются в научно-исследовательских институтах ветеринарного профиля и учебных институтах. При выполнении эпизоотологических исследований мы использовали следующие приёмы: сравнительно-историческое и сравнительно-географическое описание. Объектом изучения с учётом распространения листериоза были 55 районов Алтайского края и 5 районов Республики Алтай. Таким образом, изучению подвергнуты районы, расположенные во всех природно-географических зонах края – степной, лесостепной, предгорной и горной. При изучении листериоза в Алтайском крае проведено сравнительно-географическое описание путём составления карт по изучаемой болезни, в качестве картографической основы была использована карта-схема административного деления территории Алтайского края. С этой карты были скопированы границы районов. В результате картографического анализа ареалов болезни с учётом их почвенной, геоботанической, климатической характеристики и уровня заболеваемости проводилось эпизоотологическое районирование Алтайского края по схеме И.И. Гуславского [3] с нашей модификацией. При районировании территории Алтайского края ис257 пользовали метод сопряжённого картографического анализа. Районы с одинаковым характером заболеваемости на карте обозначали сходной штриховкой. В зависимости от уровня заболеваемости выделены районы со следующим характером заболеваемости: благополучные, с низким, со средним и высоким уровнем заболеваемости. Для выяснения роли метеорологических факторов были изучены данные метеорологической службы Алтайского края (среднемесячные, среднегодовые, максимальные и минимальные температура воздуха, почвы, количество осадков, влажность воздуха и др.). Картосхемы почвенно-климатических и природно-хозяйственных зон выполнены по Н.А. Розанову и использованы для картографического анализа распространения болезни [4]. Территории характеризовали по ареалам резервуаров и переносчиков возбудителя. Составляли эпизоотологические карты, на которых сопоставляли направление движения эпизоотий с путями и интенсивностью перемещения животных, а также перевозок продуктов животноводства. На карту наносили границы климатических и природных зон, данные о рельефе местности, об особенностях фауны (по видам), о температуре воздуха, об атмосферных осадках, влажности, величине солнечной радиации. В дальнейшем определяли связь факторов с распространением листериоза. При наличии достоверности связи соответствующие факторы относили к причинам распространения листериоза. Анализ сезонности проводили по показателям заболеваемости животных в различное время года. Для выявления природных очагов листериоза пользовались предложенным Е.Н. Павловским [5] методом комплексного зоолого-паразитологического исследования с учётом экологических условий. Этот метод позволил выя258 вить биоценотические связи диких и сельскохозяйственных животных. Пробы почв брали из различных мест стоянки животных на различной глубине (до 20 см) и исследовали с помощью РНТФ [6]. Пробы воды брали по 2-3 л в стерильную посуду с притёртой или резиновой пробкой из открытых водоёмов с поверхности, на глубине 10-15 и 50-100 см. В стоячих водоёмах производили забор воды со дна с илом. Исследовали воду путём прямого посева на МПА и МПБ с 1% глюкозы и 2% глицерина. Насекомых исследовали по методике, описанной В.И. Полтевым и др. [7]. Коэффициент множественной корреляции позволял установить взаимосвязь трёх и более показателей. Этот метод применяли для выяснения влияния метеорологических факторов на заболеваемость животных. В результате изучения природно-географических и хозяйственных факторов и их влияния на возникновение и распространение листериоза сельскохозяйственных животных в Алтайском крае установлена его сезонность, которую необходимо учитывать при планировании и проведении противоэпизоотических мероприятий, прогнозировании эпизоотической ситуации в различных природно-климатических зонах края у разных видов животных. Установлено также влияние метеорологических факторов на заболеваемость овец листериозом в Алтайском крае. Анализ влияния метеорологических факторов в Родинском районе (степная зона) показывает, что наибольшее влияние на заболеваемость овец оказывает влажность; осадки и понижение температуры приводят к повышению заболеваемости животных что необходимо учитывать при проведении противолистериозных мероприятий. 259 Климатические условия марта и апреля (осадки, повышенная влажность, неустойчивая температура воздуха) также могут способствовать возникновению листериоза. Таким образом, в районах Западной Сибири, характеризующихся зимне-весенней сезонностью проявления листериоза, вакцинацию необходимо проводить в ноябре, к тому же двукратная прививка овец и коз против листериоза обеспечивает более высокий уровень антител к 30-му дню после вакцинации и менее интенсивное его снижение в течение 6 месяцев [8]. Библиографический список 1. Ганнушкин М.С. Геграфия ветеринарная / М.С. Ганнушкин, Я.В. Нуйкин // Ветеринарная энциклопедия. – М., 1969. – Т. 2. 2. Таршис М.Г. Нозогеография важнейших болезней животных зарубежных стран / М.Г. Таршис, И.А. Бакулов // Ветеринария. – 1968. – №8. 3. Гуславский И.И. Эпизоотологические особенности листериоза и усовершенствование мер борьбы с ним в Каз. ССР: автореф. дис. …дра вет. наук. – Витебск,1980. – 30 с. 4. Розанов Н.А. Ветеринарная география / Н.А. Розанов, Я.В. Нуйкин. – М.: Изд-во МВА, 1970. – 23 с. 5. Павловский Е.Н. О природной очаговости инфекционных и паразитарных болезней // Вестн. АН. СССР. – 1939. – №10. – С. 98-108. 6. Бакулов И.А. Временное наставление по применению непрямого метода флуоресцирующих антител для диагностики листериоза и серологической типизации листериоза / И.А. Бакулов, В.М. Котляров. — Покров, 1971. – 2 с. 7. Полтев В.И. Материалы и методы исследований // Микрофлора насекомых. – Новосибирск,1969. – С.11-15. 8. Юшкова Л.Я. Эпизоотологическое районирование и оптимизация мер борьбы с листериозом в Западной Сибири (на примере Алтайского края): автореф. дис. … канд. вет. наук. – Новосибирск,1986. – 20 с. 260 Содержание Алексеева С.М., Цыдыпов В.Ц. Влияние различных факторов на изменчивость микроорганизмов...................... 3 Бадмаева О.Б., Цыдыпов В.Ц. Комплексный мониторинг инфекционной патологии животных в бассейне реки Селенги ................................................................................... 8 Барышников П.И., Бондарев А.Ю. Ассоциативное бактерионосительство у диких птиц лесостепной области Алтайского края...................................................... 18 Батуев Б.Б., Сиразиев Р.З. Коррекция микрофлоры кишечника при диспепсии ягнят......................................... 23 Бойко П.К., Бусол В.А., Коваленко Л.В., Мазур В.Н. Экология и эволюция выживания возбудителя эмфизематозного карбункула .............................................. 30 Галанина Е. В. Аэромоноз у лососевых рыб южной части острова Сахалина ...................................................... 36 Григорьева Е.В. Антагонизм бактерий рода Bacillus, входящих в состав пробиотика, по отношению к условно-патогенным бактериям кишечника цыплят-бройлеров................................................................. 41 Грязнева Т.Н., Игуменщев П.А., Жирихина М.С. Применение наноструктурированных биоцидов в ветеринарии ....................................................................... 45 Гуславский И.И. Жестко детерминированные и статистические закономерности в инфекционном и эпизоотическом процессах .............................................. 52 Густокашин К.А. Влияние биологического фактора численности грызунов на динамику показателей эпизоотического процесса . ................................................. 60 Дансарунова О.С., Дансарунов Е.А., Цыремпилова Н.А. Влияние гемпрепарата на микробиоценоз кишечника телят ...................................................................................... 67 Дзюбин Н.И., Цыремпилова Н.А., Цыдыпов В.Ц. 261 Эпизоотическая характеристика инфекционных болезней животных в Иркутской области ......................... 72 Дугаржапова Е.Д., Цыдыпов В.Ц., Зверева О.А., Цыбиков М.-Ж.Ц. Уровень циркуляции патогенных и условно-патогенных микроорганизмов в промысловой рыбе Республики Бурятия ........................................ 86 Желанкин Р.В. Рептилии как источник возбудителей зооантропонозных болезней ............................................... 91 Зайцева Е.А., Сомов Г.П. Биологические свойства штаммов Listeria monocytogenes, выделенных на Дальнем Востоке России . .............................................. 95 Кисленко В.Н. Экология патогенных микроорганизмов ............................................................... 101 Кисленко В.Н., Королев С.А. Проявления неспецифических реакций на туберкулин у крупного рогатого скота в зависимости от географических факторов . ............................................................................ 114 Колотило А.Н. Физико-химические показатели воды, используемой для поения сельскохозяйственных животных ............................................................................ 125 Колычев Н.М., Погребняк М.П., Бутаков С.Я., Касьян С.Н. Ветеринарно-санитарное и экологогигиеническое состояние современных животноводческих объктов и пути его улучшения ........ 129 Кудачева Н.А., Шарымова Н.М. Проявление сальмонеллеза в виде энзоотических вспышек среди синантропных птиц ........................................................... 143 Кузнецова Н.А., Шубин Н.А., Раков А.В., Катарская Т.В., Гранина Е.Г. Миграции сальмонелл с племенным материалом и их значение в формировании популяции Salmonella enteritidis на птицефабрике . 148 Кучерук М.Д. Микробное загрязнение воздушной среды птичников ................................................................ 153 262 Мазур Т.В., Сорокина Н.Г., Гальчинская Е.К. Разработка и применение нового пробиотика для профилактики желудочно-кишечных болезней новорожденных телят .................................................................................... 157 Момот Ю.А. Биологические особенности возбудителей иерсиниоза ................................................................... 162 Муруева Г.Б. Географические особенности сибирской язвы в Республике Бурятия ............................................... 165 Нехуров Л.Б., Гармаев М.Ц., Зориктуев Б.В. Технологические принципы профилактики болезней свиней . ... 170 Ожередова Н.А. Влияние патогенных видов кандид на химический состав мышечной ткани рыб .................. 175 Очирова Л.А., Будаева А.Б. География поступления и микробиологический мониторинг пищевых продуктов животного и растительного происхождения ................... 180 Очирова Л.А., Будаева А.Б. Микробиологический контроль мяса птицы и птицепродуктов, реализуемых в торговой сети . ................................................................. 185 Петруев Д.Н., Штыбова М.Г., Бахлина Н.В. Эпизоотический мониторинг вируса гриппа типа А среди водоплавающих птиц на территории Республики Бурятия . .............................................................................. 188 Поспелова О.В., Банзаракцаева Б.Б. Влияние препарата «Байкал ЭМ-1» при нагуле молодняка овец забайкальской породы ....................................................... 193 Сиразиев Р.З., Монсонов В.А. Эпизоотическая ситуация по хламидиозу овец в Агинском Бурятском округе Забайкалья .......................................................................... 200 Стародумова С.М., Зайцева Е.А. Встречаемость Listeria monocytogenes у диких мышевидных грызунов в Приморском крае................................................................ 207 Третьяков А.М., Норбоев А.Ж. Сезонность проявления инфекционных болезней сельскохозяйственных живот263 ных бактериальной природы в Республике Бурятия ...... 211 Третьяков А.М., Евдокимов П.И. Эпизоотическая характеристика инфекционной анаэробной энтеротоксемии овец в Республике Бурятия ................... 216 Улько Л.Г., Фотина Т.И., Березовский А.В., Фотина А.А. Эпизоотологический контроль ассоциативных бактериозов конечностей крупного рогатого скота ..................................................................... 222 Фомин В.Г., Сиразиев Р.З. Влияние растительных и минеральных подкормок на заболеваемость пчёл аскоферозом . ...................................................................... 227 Хангажинов А.А., Цыбиков М.Ц. Развитие эпизоотического процесса ботулизма в Республике Бурятия в период 1999-2009 гг. ....................................................... 233 Чхенкели В.А., Горяева Н.А., Мартынова А.Ю., Чхенкели Л.Г., Алексеев М.И., Шевченко Н.В. Использование препарата на основе грибовксилотрофов рода Trametes при лечении колибактериоза телят и снижение негативного воздействия экотоксикантов на организм ............................................. 236 Шахаева О.П., Цыдыпов В.Ц., Алексеева С.А Эпизоотологические и эпидемиологические проблемы сибирской язвы в Бурятии (Баргузинский район) .... 242 Шубин Ф.Н., Раков А.В., Кузнецова Н.А., Катарская Т.В., Гранина Е.Г. Сальмонеллез на предприятиях птицеводства в Сибири и на Дальнем Востоке. Молекулярные и эпизоотологические аспекты . ............. 250 Юшкова Л.Я., Гуславский И.И., Бакулов И.А., Юдаков А.В. Географические особенности при изучении листериоза . ........................................................ 255 264 ЭКОЛОГО-ГЕОГРАФИЧЕСКИЕ АСПЕКТЫ ИНФЕКТОЛОГИИ МАТЕРИАЛЫ ВСЕРОССИЙСКОЙ НАУЧНОЙ КОНФЕРЕНЦИИ Улан-Удэ, 28-30 июня 2011 г. Редактор Т.К. Коробкова Компьютерная вёрстка Т.А. Измайлова Подписано в печать 25 мая 2011 г. Формат 60х84 1/16 11,5 уч.-изд. л. 14,1 усл.- печ. л. Тираж 100 экз. Изд. № 81. Заказ № 274 _____________________________________________________________ Отпечатано в издательстве НГАУ «Золотой колос» 630039, РФ, г. Новосибирск, ул. Добролюбова, 160, офис 106. Тел. факс (383) 267-09-10. E-mail: 2134539@mail.ru

материалы Всерос. науч. конф. / Новосиб. гос. аграр. ун-т.

Products

Support

материалы Всерос. науч. конф. / Новосиб. гос. аграр. ун-т.

Add this document to collection(s)

Add this document to saved

Suggest us how to improve StudyLib