Новое поколение биологических средств защиты растений на

защита растений
УДК 632.937
Новое поколение биологических средств
защиты растений на основе энтомофагов
Н.А. Белякова, кбн, ВИЗР РАСХН, Санкт-Петербург
Современные технологии растениеводства
значительно повысили требования к экологической
пластичности энтомофагов, в связи с этим ведется
поиск новых видов с заданными
экофизиологическими характеристиками.
В коллекции ВИЗР в настоящее время 39 видов
энтомофагов, на использовании которых
базируются системы контроля вредителей,
а также другие неприменяемые ранее в качестве
агентов биометода виды хищников и паразитов.
Необходимость в разработке
биологических средств защиты
растений нового поколения во
многом определяется теми кардинальными переменами, которые
произошли в тепличном растениеводстве за последнее десятилетие,
а это — появление новых вредителей, быстрая смена сортового
состава культур, переход на энергосберегающие и малообъемные
технологии, широкое применение
насекомых-опылителей. Как следствие, появляется необходимость
повышения эффективности известных агентов биометода, растет
потребность в новых биологических средствах защиты растений
(БСЗР) на основе энтомофагов,
действенных в специфических условиях.
В современных теплицах насекомые испытывают стресс из-за
обилия искусственных материалов, колебаний температуры и
влажности, а также других технологических особенностей малообъемного и энергосберегающего
способов выращивания овощных
культур. Вредители быстро адаптируются к новым условиям за
счет отбора и выживания наиболее приспособленных особей в
течение нескольких последовательных поколений, которые проходят развитие в теплице за веге-
18
Гавриш №6 2008
тационный сезон. Для энтомофагов путь освоения новой экологической ниши возможен только в
случае их долгосрочной сезонной
колонизации. Однако реализация
данного варианта биологической
защиты не всегда возможна в
теплицах, где используются
интенсивные технологии, которые
рассчитаны на быстрый защитный
эффект непосредственно от выпущенных энтомофагов или их прямых потомков F1 (в случае с наездниками или галлицей). Особенно
важен быстрый результат выпуска энтомофагов на культурах с
короткой ротацией, например,
зеленные, у которых цикл между
посевом и уборкой готовой продукции около месяца.
Есть еще одна причина, по
которой выпускаемые в теплицы
хищники и паразиты должны
обладать высокой устойчивостью к
стрессу. Ряд энтомофагов по своим
экофизиологическим особенностям плохо приспособлены к долгосрочной колонизации, например,
кокцинеллиды, которых применяют на стадии личинки. Воспроизводство кокцинеллид в теплице
маловероятно, поскольку пока не
удается подавить у имаго инстинкт
расселения. Это затрудняет адаптацию кокцинеллид к условиям
тепличного агроценоза путем отбо-
ра наиболее приспособленных особей в ряду поколений.
Помимо общего для всех агентов биометода требования — повышения экологической пластичности и устойчивости к стрессу —
следует отметить и некоторые другие ограничения, которые современные технологии растениеводства накладывают на применение
отдельных групп энтомофагов.
В частотности характерный для
теплиц с капельным поливом
дефицит влаги серьезно ограничивает применение гигрофильных
энтомофагов, например, амблисейуса. Кроме дефицита влаги
лимитировать применение энтомофагов может отсутствие почвы
как субстрата для окукления, а
также расположение растений на
столах или стеллажах, что затрудняет личинкам энтомофагов возвращение в очаг вредителя в случае падения с растения.
Таким образом, энтомофаги в
теплицах попадают в условия,
которым нет аналогов ни в естественной среде обитания, ни в агроценозах открытого грунта. Найти
у природных видов необходимое
нам сочетание признаков чрезвычайно сложно. Поэтому отличительной особенностью современных БСЗР является использование
в качестве исходного материала
для массового разведения маточных культур энтомофагов, отличающихся высокими адаптационными способностями. БСЗР нового
поколения формируют: 1) на основе смеси двух или нескольких
видов энтомофагов, 2) на селекционных линиях с заданными экофизиологическими характеристиками, 3) на гибридных культурах,
полученных путем межпопуляционных (или межлинейных) скрещиваний.
www.gavrish.ru
защита растений
а
б
в
Рис. 1. Кокцинеллиды-афидофаги: а – Cycloneda limbifer; б, в – Leis dimidiata
Для создания комплексных
БСЗР (на основе нескольких энтомофагов) используют виды,
которые близки по пищевой
специализации, но различаются
по требованиям к абиотическим
факторам среды и поэтому занимают разные экологические ниши.
В теплицы выпускают одновременно 2-4 вида энтомофагов.
Например, для защиты культур
перца и баклажана от трипсов
успешно апробирован комплекс
клопов рода Orius из коллекции
ВИЗР: O. majusculus, O. laeviqatus,
Orius sp. и O. strigicollis, из которых последние два принадлежат
восточноазиатской фауне и ранее
не использовались. По аналогичному пути идет фирма Biobest
(один из ведущих мировых производителей энтомофагов), которая
предлагает для борьбы с трипсами
препарат Orius-System на основе
O. insidiosus, O. laevigatus и O. majusculus.
Наездников-афидиид и наездников-афелинид против комплекса тлей на овощных культурах
используют в соотношении Aphidius colemani : A. ervi (1:1), а также
A. colemani : A. ervi : Aphelinus
abdominalis (2:1:1). Смесь формируют при производстве энтомофагов и поставляют потребителю в
готовом виде.
Создание комплексных средств
биозащиты на основе нескольких
близких видов — доступный и
высоко результативный прием,
повышающий суммарную эффективность энтомофагов, каждый из
которых контролирует вредителя в
пределах своей экологической
ниши. Однако разведение одновременно нескольких близких видов
энтомофагов требует строжайшего
и регулярного мониторинга за
www.gavrish.ru
(рис. 1б, в). В течение последних
пяти лет коллекцию пополнили
новые виды, которые в ближайшем будущем найдут применение
в защите растений, например,
клоп-слепняк Nesidiocoris tenuis
(рис. 2), апробированый в ряде
европейских стран как средство
защиты от тепличной и табачной
белокрылок [3]. Прожорливость
несидиокориса составляет 450-500
яиц белокрылки в сутки, что существенно выше, чем у слепняков,
которых используют в настоящее
время против алейроид.
Селекционные линии и типовые культуры энтомофагов, на
основе которых производят БСЗР
нового поколения, требуют особых условий формирования и поддержания в коллекции. На основе
общих принципов технической
энтомологии и популяционной
генетики, а также с учетом многолетнего опыта по разведению и
видовой чистотой живых культур.
Например, живой материал из коллекции афидиид проверяют на
наличие примеси других видов и
сверхпаразитов каждые 2 месяца.
Следует отметить, что полноценный контроль качества маточных
культур наездников и клопов
(включая видовую диагностику)
доступен, как правило, только
узкому кругу специалистов. В
условиях производственных биолабораторий можно осуществлять
поддержание и контроль качества
массовых культур, обновляя их
регулярно в организациях, которые поддерживают
коллекции типовых
а
б
культур энтомофагов.
Крупнейшим в
России собранием
живых культур энтомофагов
является
коллекция ВИЗР. В
нее входят 39 видов,
на
использовании Рис. 2. Клоп-слепняк Nesidiocoris tenuis:
а – имаго; б – нимфы
которых базируются
современные системы биологичеселекции насекомых, накопленского контроля вредителей.
ного в лаборатории биологическоНачало коллекции положено в
го метода ВИЗР, разработаны тре30-е годы прошлого века, когда в
бования к формированию и сохраВИЗР был привезен австралийнению типовых культур энтомоский вид Cryptolaemus montrouфагов. Требования предписывают
zieri, культура которого по сей
вести поддержание и контроль
день поддерживается круглогокачества энтомофагов на трех
дично и успешно применяется для
уровнях: индивидуальном, маточзащиты растений от мучнистых
ном и массовом. Требования опречервецов. Кроме криптолемуса в
деляют объемы и методы отбора
ВИЗРе содержатся такие раритетисходного биоматериала при ввеные культуры, как кокцинеллида
дении природных энтомофагов в
Cycloneda limbifer (рис. 1а) и клопкультуру. Если ареал вида охващитник Podisus maculiventris, затывает разные климатические
везенные в Россию более 30 лет
зоны, то сбор особей-основателей
назад из Центральной и Южной
ведут из разных зон в максимальАмерики. В коллекции хранятся
но удаленных точках. Предуникальные селекционные линии
почтителен сбор на границах ареагаллицы Aphidoletes aphidimyza,
ла из возможно большего числа
кокцинеллиды Leis dimidiata
биотопов, заселяемых видом.
Гавриш №6 2008
19
защита растений
Объем сборов из каждой географической точки составляет несколько сот особей. При меньших объемах сбора необходимо создать
особям-основателям условия для
максимальной реализации их
потенциальной плодовитости.
Потомство F1-F2 от природных
особей-основателей выкармливают в полном объеме с целью сохранения генетической гетерогенности материала. Основная задача
на этом этапе – не допустить преобладания в молодой культуре
потомства единичных особей, что
в будущем приведет к инбридингу
и возможной гибели. Даже если
культура преодолеет инбредную
депрессию, ее обедненный генофонд будет отражать лишь качества единичных особей-основателей, а не исходной популяции,
что не допустимо для типовой
культуры энтомофага.
Для сохранения свойственной
природному энтомофагу генотипической изменчивости при длительном разведении в лаборатории в
ряде случаев возможно использование фенотипических маркеров.
Например, кокцинеллида Harmonia axyridis отличается значительным фенотипическим полиморфизмом окраски надкрылий,
которую детерминирует 6 аллелей
одного гена (рис. 3). Есть данные,
что ген окраски сцеплен с комплексом наследственных факторов, определяющих гигротермические и пищевые предпочтения энтомофага [1, 2]. Выделение маркера
(окраска надкрылий) в гомозиготу
позволяет контролировать сцепленные с ним гены, определяющие экофизиологические особенности, свойственные данному
фенотипу хармонии. Поддержание
а
б
культуры H. axyridis в виде нескольких фенотипически маркированных линий препятствует расщеплению по наследственным
факторам, детерминирующим экофизиологические признаки, которые определяют эффективность
хищника в разных климатических
условиях и на разных жертвах.
Одно из важнейших требований к разведению типовых культур энтомофагов – поддержание
низкой плотности содержания
насекомых и предотвращение конкуренции за пространственный
ресурс (места для откладки яиц,
убежища и др.). Это необходимо
для ослабления неконтролируемого естественного отбора на выносливость в специфических лабораторных условиях.
Предельно допустимые нормы
загрузки садков при содержании
энтомофагов определяют по разным параметрам. Например, для
наездников афидиид критерием
плотности яйцекладущих самок
на садок является плодовитость.
Для личинок кокцинеллид приемлемую плотность можно определять по уровню каннибализма,
который не должен превышать
уровня, обусловленного стереотипом поведения, свойственным виду. Например, у хармонии даже
при избытке корма и жизненного
пространства личинки 1-го возраста до первой линьки поедают яйца
и личинки своего вида, зачастую
не менее 15% от общего числа
отложенных яиц. В оптимальных
условиях этот показатель стабилен и может служить ориентиром.
Принципиальным требованием к содержанию коллекции является соблюдение баланса возрастного состава типовых культур
в
г
(единовременно должны быть
представлены все стадии развития
в сопоставимых объемах). Для
необходимых расчетов служат
таблицы коэффициентов роста и
таблицы-схемы,
отражающие
динамику возрастного состава в
культурах при заданных температурах. Резерв культуры на стадии
оптимальной для хранения регулярно обновляется. Для диапаузирующих видов обновление — 2-3
раза в год, для недиапаузирующих — каждые 10-30 дней в зависимости от допустимых для вида
периодов краткосрочного хранения. Резерв предназначен для восстановления культуры в случае ее
полной или частичной потери по
причине заболевания энтомофагов, поломки оборудования, недостатка корма (сезонная депрессия
лабораторной жертвы/хозяина,
переход на новую партию семян
кормовых растений), человеческого фактора и др.
Методические приемы, изложенные выше, позволяют долго
сохранять в культурах энтомофагов ключевые качества природных
видов, защищают их от вырождения при длительном лабораторном
разведении. Таким образом, коллекция энтомофагов ВИЗР уникальна не только по видовому
составу, но и по методике формирования и поддержания культур.
Использование для формирования массовых культур энтомофагов высококачественного маточного биоматериала (селекционных
линий и гибридных культур)
повышает затраты на их разведение. Поэтому обязательным качеством технологий производства
БСЗР нового поколения является
снижение себестоимости готового
д
Рис. 3. Феноформы кокцинеллиды Harmonia axyridis: а – aulica, б – intermedia, в – axyridis, г – conspiqua, д – spectabilis и succinea
20
Гавриш №6 2008
www.gavrish.ru
защита растений
а
б
в
Рис. 4. Разведение наездника Aphidius colemani на злаковой тле: а – мумии злаковой тли на пшенице; б – инкубация
тлей, зараженных наездником; в – мумификация тлей на газоне
а
б
в
Рис. 5. Разведение коккцинеллиды Harmonia axyridis на злаковой тле: а – спаривание жуков и откладка яиц;
б – срезка газонной травы с яйцами хармонии; в – выкармливание личинок
продукта путем повышения производительности, а также сопряжения технологических циклов
нескольких видов энтомофагов,
которых поддерживают на одном
виде корма. Например, комплекс
хищных и паразитических афидофагов (галлица афидимиза, кокцинеллиды, наездники-афидииды) разводят на злаковой тле, для
которой разработана газонная технология массовой наработки
(рис. 4, 5). Выигрыш от совмещения технологий основан на том,
что требования у паразитов и хищников к качеству газонного субстрата различны. Наездники чрезвычайно разборчивы. Если плотность колоний или возрастной
состав хозяина не оптимальны, то
продуктивность паразитов резко
сокращается. Приходится выбраковывать до 20-30% газона, получаемого по технологии разведения
злаковой тли. Оптимальным вариантом утилизации некондиционного газона является его использование для сбора яиц кокцинеллидафидофагов или выкармливания
их личинок (рис. 5).
Для сохранения в типовых
культурах ключевых качеств,
определяющих эффективность энwww.gavrish.ru
томофагов в теплицах, желательно
использовать природные корма
(т.е. фитофагов-вредителей). При
длительном разведении энтомофагов на заменителях природного
корма снижается их качество.
Типовые культуры энтомофагов
поддерживают на природном корме, чтобы максимально ослабить
неконтролируемый отбор к специфическим условиям содержания.
В случае с наездником A. colemani разведение на природном
а
сового разведения. Ключевым элементом технологии является
использование культуры персиковой тли, адаптированной к разведению на бобах (рис. 6). На данном
хозяине можно нарабатывать не
только наездника A. colemani, но и
другие виды, в частности A. gifuensis, который ценен устойчивостью
к повышенным температурам и
паразитированием не только на
персиковой, но и на картофельной
тле. В мировой практике против
б
Рис. 6. Разведение наездника Aphidius colemani на персиковой тле:
а – мумии персиковой тли на бобах; б – срезка листьев бобов с мумиями
хозяине (персиковой тле) не только
позволяет сохранять у энтомофага
поведенческие реакции и другие
экофизиологические характеристики, необходимые для эффективного подавления вредителя, но и
повысить производительность мас-
картофельной тли обычно используют A. ervi, которого разводят на
гороховой тле. Замена A. ervi на
A. gifuensis в составе комплексного
БСЗР позволяет вести массовое
разведение на одном хозяине и
отказаться от гороховой тли, котоГавриш №6 2008
21
защита растений
рой свойственен ярко выраженный
дропппинг-эффект (при манипуляциях тля падает с кормовых растений), что приводит к существенным потерям биоматериала.
При разведении наездников
на персиковой тле в биолаборато-
Библиографический список
1. Dobzhansky Th. 1951. Genetics and the
origin of species. 3rd Edition, New York:
Columbia, University Press. 446 p.
2. Soares A. O., Coderre D., Schander H. 2005.
Influence of prey quality on the fitness of
two phenotypes of Harmonia axyridis adults .
Entom. Exp. Appl. Vol. 114. N 3. P. 227-232.
3. Trottin-Caudal Y., Fournier C., Leyre J.M.
2005. Etudes experimentales sur la punaise
Nesidiocoris tenuis en culture de tomate
sous serre. Centre Technique Interprofessionnel des Fruits et Lеgumes, Paris (FRA),
INRA Avignon (FRA).
риях тепличных комбинатов есть
риск заселения производственных
площадей
вредителем.
Ис пользование природных хозяев
для массового разведения является одной из основных причин, по
которой технологии производства
БСЗР нового поколения реализуются в основном на базе биотехнологических производств, специализирующихся на производстве
средств защиты растений и не связанных с производством с.-х. про❒
дукции.
Next generation of the entomophages
for plant protection
N.A. Belyakova, All Russia Research Institute of Plant Protection (VIZR)
Summary
There is a collection of biological control agents in All-Russian Institute for
Plant Protection (VIZR). Type culture collection consists of 39 entomophages,
including the lab populations of coccinellides Leis dimidiata and Cycloneda
limbifer, mirid bugs Dicyphus errans, Nesidiocoris tenuis, hemerobiid
Micromus angulatus, pirate-bugs Orius majusculus, O. laeviqatus, O. strigicollis and aphid parasites Aphidius colemani, A. gifuensis.
УДК 632.9 : 57. 05 : 635.63
Экогель: влияние на ростовые процессы
растений тепличного огурца и подавление
патогенных микроорганизмов
Н.И. Будынков, ксхн, внc ГНУ ВНИИ фитопатологии РАСХН
В.Н. Юваров, А.Ф. Горелов, служба защиты растений ЗАО «АФ «Белая Дача»
Изучено влияние хитозансодержащего препарата
экогель на ростовые процессы молодых растений
огурца, их иммунные свойства, а также влияние
экогеля и его баковых смесей с фунгицидами на
развитие возбудителя мучнистой росы огурца.
Отмечено усиление роста корневой системы
обработанных растений, уменьшение заселяемости
факультативными паразитами грибной
и бактериальной природы (Pseudomonas syringae,
Fusarium spp. и др.). При обработке 1%-ным рабочим
раствором препарата наблюдали активное
подавление мучнистой росы огурца: уменьшение
распространения болезни, усиление деструкции
инфекционных структур Erysiphe cichoracearum.
Полученные результаты позволяют
рекомендовать экогель для использования
в защищенном грунте в качестве биостимулятора,
а также как средство защиты от болезней.
22
Гавриш №6 2008
Препарат ЭКОГЕЛЬ рекоменован производителем для применения в качестве регулятора
роста, индуктора иммунитета растений, полифункционального
агроэкологического активатора
корнеобразования, роста, цветения, болезнеустойчивости и урожайности в растениеводстве.
Действующее вещество препарата — лактат хитозана в концентрации 30 г/л. Препаративная
форма — водный раствор. Изготовитель — ООО «Биохимические
технологии».
Авторы статьи проводили
комплексное изучение свойств
препарата на растениях тепличного огурца (гибрид F1 Кураж):
➢ Рассаду в фазе первого настоящего листа обрабатывали 1%-ным
www.gavrish.ru
раствором препарата, который
подливали под корень из расчета
50 мл на рассадный вазон. Через
неделю после обработки проводили морфометрические учеты и
определяли массу растений.
➢ В то же время другую часть рассады закладывали на питательную среду in vitro с целью выявления влияния экогеля на таксоно-
мический состав микробиоты,
колонизирующей и растения, и
субстрат.
➢ Проводили оценку влияния
экогеля и его смесей с фунгицидами топаз и квадрис на развитие
мучнистой росы, а также микроско пи ческие
инфекционные
структуры патогена (Erysiphe
cichoracearum).
Таблица 1. Влияние обработки экогелем на морфометрические показатели рассады тепличного
огурца (гибрид F1 Кураж), ЗАО «АФ «Белая Дача», июль 2008 г.
Вариант
Длина, см
Масса, г
корня
стебля
растения
корня
стебля
растения
Контроль
(без обработки)
16,5
4,4
20,9
0,26
1,60
1,8
Экогель, 1%
16,1
4,8
20,9
0,32
1,63
2,0
HCP05
4,0
1,6
3,9
0,01
0,29
0,3
Таблица 2. Влияние обработки экогелем на микробиоту рассады огурца.
ЗАО АФ «Белая Дача», июль 2008 г.
Встречаемость микроорганизмов в
корне
корневой шейке
субстрате, %
Контроль (без обработки)
Trichoderma viride*
Pseudomonas spp.
Agrobacterium radiobacter
Pseudomonas syringae
Trichoderma viride
Pseudomonas spp.
Agrobacterium radiobacter
Trichoderma viride
Fusarium oxysporum**
Pseudomonas spp.
Pseudomonas syringae
Agrobacterium radiobacter
Trichoderma viride
Pseudomonas spp.
Pseudomonas syringae
Agrobacterium radiobacter
Trichoderma viride
F. oxysporum
Penicillium spp.
Pseudomonas spp.
Agrobacterium radiobacter
Pseudomonas syringae
Trichoderma viride
Pseudomonas spp.
Agrobacterium radiobacter
Pseudomonas syringae
Trichoderma viride
Penicillium spp.
Alternaria alternata
Pseudomonas spp.
Agrobacterium radiobacter
Trichoderma viride
Pseudomonas spp.
Agrobacterium radiobacter
Trichoderma viride
Pseudomonas spp.
Agrobacterium radiobacter
Trichoderma viride
Pseudomonas spp.
Trichoderma viride
Fusarium oxysporum
НСГ
Pseudomonas spp.
Agrobacterium radiobacter
Pseudomonas syringae
Trichoderma viride
Pseudomonas spp.
Agrobacterium radiobacter
Pseudomonas syringae
Trichoderma viride...........
Penicillium spp…………....
Fusarium oxysporum...…....
Pseudomonas spp…..……..
Pantoea agglomerans...……
Pseudomonas syringae .......
60***
10
20
30
30
20
Экогель, 1%
Trichoderma viride……..….
Penicillium spp……….……
НСГ.………………..………
Pseudomonas spp….....…..
* чем чаще встречается микроорганизм, тем более высокую строчку в колонке он занимает.
** названия опасных микроорганизмов выделены курсивом.
*** доля нанесений на питательную среду, в которых встречается данный микроорганизм.
Нередко из одного нанесения вырастает несколько различных видов микроорганизмов,
поэтому их суммарная встречаемость в вариантах опыта нередко превышает 100%.
80
60
40
20
защита растений
24
Гавриш №6 2008
опыт 31.07
40
контроль 31.07
опыт 4.08
контроль 4.08
35
развитие болезни, %
При оценке параметров сеянцев в процессе роста рассады
тепличного огурца после обработки экогелем установлено, что
длина корня оставалась близкой к
таковой в контроле; длина стебля
несколько увеличилась, оставаясь
также в пределах ошибки опыта;
высота растения и в контроле, и в
вариантах опыта не различались.
Таким образом, влияние препарата на линейные характеристики
растений огурца на ранних этапах
развития растений не выявлено.
В то же время наблюдали положительное воздействие экогеля на
массу растений: так, масса корня
обработанных растений была значимо выше, чем контрольных. Это
можно считать весьма позитивным эффектом, так как развитие
корня — один из важнейших показателей состояния растений, который напрямую связан с их продуктивностью. После обработки
растений отмечали также тенденцию к увеличению массы стебля.
В целом стимуляция прироста
массы растения оказалась статистически значимой. Полученные
данные свидетельствуют о положительном влиянии экогеля на
30
25
20
15
10
5
0
1
экогель +
топаз
2
экогель +
сильвет
3
экогель +
квадрис
4
квадрис
5
топаз
6
экогель 0,5%
7
экогель 1%
Рис. 1. Влияние обработки экогелем и его смесями с фунгицидами на
развитие мучнистой росы огурца, ЗАО АФ «Белая Дача», июль-август 2008 г.
развитие молодых растений огурца (табл. 1).
Микробиологический анализ
растений и субстратов также продемонстрировал положительное
влияние препарата (см. табл. 2).
Так, во всех вариантах опыта
«без обработки» растения были
колонизированы патогенными
бактериями Pseudomonas syringae, вызывающими закупорку
сосудов, гнили плодов и корней, в
целом депрессию растений.
Опасные бактерии колонизировали как корневую систему, так и надземную
часть растений.
В двух из трех вариантов опыта происходила колонизация корневой системы растений
патогенными грибами
из рода Fusarium sp.
Перечисленные
патогенные микроорганизмы, а также слабопатогенная бактерия
Pantoea agglomerans
были выделены из субстрата в контрольном
варианте.
На обработанных
экогелем растениях
патогены встречались
единично, а в субстрате
опытного варианта не
были выделены вообще. Полученные данные свидетельствуют
об иммуномодулирующем влиянии экогеля на растения огурца,
которое препятствует их колонизации патогенными микроорганизмами грибной и бактериальной
природы, а также раннему отмиранию корней, приводящему к
накоплению патогенов в субстрате, созданию в нем источника
инфекции, способного активизироваться при воздействии на растения какого-либо стрессового
фактора.
Для изучения влияния экогеля и его смесей с фунгицидами на
мучнистую росу 28 июля 2008 г.
была проведена обработка тепличного огурца экогелем в различных
концентрациях и его смесями с
квадрисом и топазом (рис. 1).
При первом учете визуальная
разница между вариантами опыта
была незначительной. Однако в
процессе обработки экспериментальных данных выяснилось, что
минимальное проявление болезни
отмечено в варианте с топазом.
В то же время различия между
опытными и контрольными вариантами (контроль для каждого варианта опыта свой – учеты
с соседних необработанных растений) в графическом выражении
выглядят весьма существенными.
При втором учете отмечено
значительное нарастание распространения болезни, особенно на
необработанных растениях, а
также в вариантах с квадрисом и
www.gavrish.ru
экогелем в концентрации 0,5%.
Наряду с этим развитие болезни
в варианте с использованием
1%-ного экогеля изменилось
незначительно в сравнении с первым учетом. Это свидетельствует о
высокой эффективности препарата экогель в концентрации 1% и
выше.
Наиболее активно подавлял
болезнь фунгицид топаз. Квадрис
в условиях теплиц «Белой Дачи»
Таблица 3. Влияние обработки экогелем на инфекционные структуры возбудителя настоящей
мучнистой росы огурца, ЗАО «АФ «Белая Дача», июль-август 2008 г.
Инфекционные структуры
Инфекционные структуры в поле зрения микроскопа, шт.
Нормальные
Плазмолизированные
Деформированные
Конидии
11,0
1,0
0,0
Цепочки конидий
0,8
0,0
0,0
Конидии
11,3
2,1
0,3
Цепочки конидий
1,0
0,4
0,0
Конидии
3,1
2,3
0,4
Цепочки конидий
0,1
0,4
0,1
Конидии
1,5
1,1
0,0
Цепочки конидий
0,1
0,1
0,0
0,0
0,0
0,0
0,0
0,0
0,0
Конидии
1,2
1,5
0,5
Цепочки конидий
0,6
1,0
0,0
Конидии
4,3
0,2
0,0
Цепочки конидий
0,7
0,0
0,0
Конидии
11,5
2,7
0,7
Цепочки конидий
1,6
0,3
0,0
Конидии
2,3
1,6
1,2
Цепочки конидий
0,3
1,2
0,0
0,0
0,0
0,0
0,0
0,0
0,0
0,0
0,0
0,0
0,0
0,0
0,0
Конидии
7,1
2,6
1,0
Цепочки конидий
1,7
0,0
0,0
0,0
0,0
0,0
28.07.08 Контроль
31.07.08 Контроль
Экогель 0,5%
Экогель 1,0%
Экогель 1,0% + топаз 0,05%
Конидии и цепочки конидий
Экогель 1,0% + квадрис 0,05%
Конидии и цепочки конидий
Топаз 0,06%
Квадрис 0,06%
04.08.08 Контроль
Экогель 0,5%
Экогель 1,0%
Конидии и цепочки конидий
Экогель 1,0% + топаз 0,05%
Конидии и цепочки конидий
Экогель 1,0% + квадрис 0,05%
Конидии и цепочки конидий
Топаз 0,06%
Конидии и цепочки конидий
Квадрис 0,06%
Экогель 1,0% + сильвет 0,03%
Конидии и цепочки конидий
Таблица 4. Эффективность экогеля и его смеси с топсином-М против мучнистой росы огурца,
ВНИИ фитопатологии и ЗАО «АФ «Белая Дача», апрель 2007 г.
Дата учета
Результаты микроскопирования
23.04.07
Многочисленные полноценные инфекционные структуры патогена
(конидии и конидиальные цепочки)
Обработка смесью экогель 1% + топсин М 0,1%
24.04.07
70% конидий и 90% конидиальных цепочек плазмолизированы
26.04.07
30% конидий и 90% конидиальных цепочек сильно плазмолизированы
потерял эффективность, тогда как
еще в прошлом году он активно
подавлял развитие мучнистой
росы на растениях гибрида огурца
F1 Кураж.
Результаты изучения влияния
обработки экогелем на развитие
инфекционного процесса приведены в таблице 3.
Поскольку гибрид F1 Кураж
обладает генетической устойчивостью к мучнистой росе, благоприятные условия для размножения
колоний возбудителя на его листовой поверхности отсутствуют. Об
этом свидетельствует установленное за время учета незначительное
нарастание числа нормально развитых конидий в подушечках мучнистой росы на листе, а также возрастание числа плазмолизированных и деформированных конидий
и конидиальных цепочек, подсчитанных в поле зрения микроскопа.
В вариантах с обработкой экогелем отмечено уменьшение числа
инфекционных структур при увеличении концентрации препарата
(табл. 3).
В вариантах с обработкой смесями экогеля с фунгицидами инфекционные структуры патогена
были полностью подавлены, чего
нельзя сказать о мицелии (см.
рис. 1). Аналогичные результаты
мы получили в 2007 г. (табл. 4):
➢ при первом учете полноценные
инфекционные структуры встречались после обработки топазом,
еще больше их было после обработки квадрисом. Очевидно, что
топаз уже не отличается традиционно высокой эффективностью
против мучнистой росы в первые
дни после обработки.
➢ при втором учете полноценные
инфекционные структуры обнару-
живали только в вариантах с квадрисом и экогелем в концентрации 0,5%. В остальных вариантах
опыта их не обнаружили. Следовательно, концентрация экогеля
0,5% является недостаточной для
полноценной защиты от мучнистой росы. В то же время, полное
подавление 1%-ным экогелем
конидий и конидиальных цепочек
свидетельствует о высокой эффективности препарата против мучнистой росы.
В настоящее время выращивающие тепличный огурец хозяйства остро нуждаются в эффективных препаратах, поэтому экогель
может стать одним из них, тем
более, что его защитный эффект во
многом обусловлен повышением иммунного статуса растений.
Появление резистентных к действию экогеля штаммов патогена
в его популяциях — едва ли дело
ближайшего будущего.
Таким образом, проведенный
анализ показал, что обработка растений огурца экогелем положительно влияет на:
➢ рост корневой системы, сопровождающийся увеличением биомассы корня;
➢ иммунизацию растений, уменьшение их заселяемости факультативными паразитами бактериальной (Pseudomonas syringae)
и грибной (Fusarium spp.) природы;
➢ значительное подавление развития возбудителя мучнистой
росы в концентрации 1%.
Полученные результаты позволяют рекомендовать экогель
для использования в защищенном
грунте в качестве биостимулятора,
а также как средство защиты рас❒
тений от болезней.