Министерство сельского хозяйства Российской Федерации ФГОУ ВПО Ижевская государственная сельскохозяйственная академия Кафедра физиологии и зоогигиены Берестов Д.С., Елисеева Е.В., Малков А.В. ФИЗИОЛОГИЯ И ЭТОЛОГИЯ ЖИВОТНЫХ Методические указания к лабораторно-практическим занятиям для студентов 2 курса специальностей «Ветеринария» и «Зоотехния» Ижевск 2010 2 Составители указаний: к.б.н., доцент Д.С. Берестов к.м.н., доцент Е.В. Елисеева, к.в.н., доцент, профессор РАЕ А.В. Малков Рецензент: к.в.н., доцент Т.И. Решетникова Рассмотрены на заседании кафедры физиологии и зоогигиены, протокол № 2 от 25.02.2010 Рассмотрены и рекомендованы к изданию методической комиссией факультета ветеринарной медицины, протокол № 3 от 20.04.2010 Методические указания составлены в соответствии с типовой программой по курсу физиологии сельскохозяйственных животных. Кроме руководств к лабораторным работам содержат вопросы для подготовки к текущим занятиям, коллоквиумам и экзамену, а также дополнительный справочный материал по основным физиологическим константам животных для самоподготовки студентов. ©Берестов, Д. С., составление, 2010 ©Елисеева Е.В., составление, 2010 ©Малков А.В., составление, 2010 3 СОДЕРЖАНИЕ Введение……………………………………………………………………… РАЗДЕЛ I. ФИЗИОЛОГИЯ ВОЗБУДИМЫХ ТКАНЕЙ Работа № 1. Приготовление нервно-мышечного препарата……………… Работа № 2. Определение порога возбуждения мышцы и нерва………… Работа № 3. Определение порога возбуждения мышцы и нерва………… Работа № 4. Зависимость величины сокращения мышцы от силы раздражения…………………………………………………… Работа № 5. Наблюдение явления утомления на нервно-мышечном препарате……………………………………………………… РАЗДЕЛ II. ФИЗИОЛОГИЯ ЦЕНТРАЛЬНОЙ НЕРВНОЙ СИСТЕМЫ Работа № 1. Рефлексы спинного мозга…………………………………….. Работа № 2. Определение времени рефлекса по Тюрку………………….. Работа № 3. Торможение рефлексов спинного мозга……………………... Работа № 4. Анализ рефлекторной дуги…………………………………… Работа № 5. Сеченовское торможение……………………………………... Работа № 6. Рефлексы положения………………………………………….. РАЗДЕЛ III. ФИЗИОЛОГИЯ АНАЛИЗАТОРОВ Работа № 1. Определение остроты зрения………………………………… Работа № 2. Исследование костной и воздушной проводимости звука…. Работа № 3. Определение локализации источника звука………………… Работа № 4. Определение порогов пространственной тактильной чувствительности……………………………………………... Работа № 5. Явление контраста…………………………………………….. Работа № 6. Определение порогов вкусовой чувствительности…………. Работа № 7. Определение порогов обоняния……………………………… РАЗДЕЛ IV. СИСТЕМА КРОВИ Работа № 1. Взятие крови у животных, получение плазмы и сыворотки крови…………………………………………………………… Работа №2. Определение количества эритроцитов в крови……………… Работа № 3. Определение количества гемоглобина методом Сали……… Работа № 4 . Определение количества гемоглобина в крови унифицированным цианметгемоглобиновым методом........ Работа № 5. Расчет цветного показателя…………………………………... Работа № 6. Определение скорости оседания эритроцитов (СОЭ)……… Работа № 7. Определение количества лейкоцитов в крови……………… Работа № 8. Методика определения лейкоформулы……………………… Работа № 9. Определение групп крови человека………………………….. РАЗДЕЛ V. ФИЗИОЛОГИЯ КРОВООБРАЩЕНИЯ СЕРДЕЧНОСОСУДИСТАЯ СИСТЕМА Работа № 1. Выслушивание тонов сердца…………………………………. Работа № 2. Измерение артериального давления…………………………. Работа № 3. Наблюдение движения крови………………………………… 4 5 6 7 8 9 10 11 11 12 13 14 15 16 17 18 18 19 20 21 24 26 27 29 29 30 31 33 34 35 37 4 Работа № 4. Исследование сердечно-сосудистых рефлексов…………….. Работа № 5. Запись и анализ нормальной электрокардиограммы собаки.. РАЗДЕЛ VI. ФИЗИОЛОГИЯ ДЫХАНИЯ Работа № 1. Спирометрия…………………………………………………... РАЗДЕЛ VII. ОБМЕН ВЕЩЕСТВ И ЭНЕРГИИ Работа №1. Расчет основного обмена человека…………………………… Работа №2. Вычисление степени отклонения основного обмена по формуле Рида…………………………........................................ Работа №3. Расчет должного минутного объема кровообращения по величине основного обмена…………………………………... Работа № 4. Расчет должного минутного объема дыхания, должного потребления кислорода и должной ЖЁЛ. Сравнение найденных показателей с фактическими…………………...... РАЗДЕЛ VIII. ФИЗИОЛОГИЯ ВЫДЕЛЕНИЯ Работа № 1. Получение мочи у животных и исследование ее органолептических свойств…………………………………... Работа № 2. Определение удельного веса мочи…………………………… Работа № 3. Определение рН мочи, полуколичественное определение содержания белка, глюкозы, кетоновых тел, крови, гемоглобина, билирубина, уробилиногена………………….. Работа № 4. Исследование осадка мочи…………………………………… Работа №5. Количественное определение глюкозы в моче и других биологических жидкостях……………………………………... РАЗДЕЛ IX. РУКОВОДСТВО К ПРАКТИЧЕСКИМ ЗАНЯТИЯМ НА УЧЕБНО-ОПЫТНОЙ КОНЮШНЕ Работа № 1. Оценка физиологического статуса животных. Исследование физиологии систем органов………………….. Бланк протокола обследования животных………………………………… Рекомендуемая литература…………………………………………………. ПРИЛОЖЕНИЕ 1. Характерные признаки представителей родов «жаба» и «лягушка» (анатомические и биологические особенности)……………………………………………. ПРИЛОЖЕНИЕ 2. Примерные вопросы для подготовки к коллоквиумам и экзамену для студентов очного отделения факультета ветеринарной медицины……. ПРИЛОЖЕНИЕ 3. Физиологические показатели нормы животных и некоторые зоогигиенические нормативы……………. 38 39 43 45 48 49 49 51 52 53 53 54 56 57 64 65 67 78 5 ВВЕДЕНИЕ Пособие призвано помочь в подготовке к лабораторным работам и практическим занятиям по дисциплине «физиология с/х животных и этология». При подготовке к занятию необходимо ответить на вопросы, приведенные в начале каждой работы. Для подготовки к коллоквиумам и экзамену мы также приводим соответствующий перечень примерных вопросов в конце методических указаний. Сама лабораторная работа должна быть выполнена с соблюдением действующих правил техники безопасности, при этом к ее оформлению предъявляется ряд требований. Все работы выполняются в отдельной тетради аккуратным разборчивым почерком по единой схеме: Работа № __. Название работы. Цель: ______________________ Материальное обеспечение: _____ Ход работы: ________________ Наблюдения: _______________ Заключение и выводы: ___________________ Номер, название, цель, ход работы, необходимое материальное обеспечение приведены в методических рекомендациях. Наблюдения выполняются самостоятельно исходя из результатов, полученных в ходе проведенного занятия. При этом в наблюдениях необходимо описать непосредственно наблюдаемые события и результаты, не повторяя ход работы, привести необходимые расчеты, если этого требует методика. Описание проводится с применением общепринятых терминов и сокращений. На основании проведенных наблюдений делается заключение, в котором необходимо объяснить полученные результаты. На основе наблюдений и заключения делается короткий и лаконичный вывод, являющийся итогом работы и отвечающий поставленным целям. Оформленная лабораторная работа предоставляется на проверку преподавателю в конце занятия. 6 РАЗДЕЛ I. ФИЗИОЛОГИЯ ВОЗБУДИМЫХ ТКАНЕЙ Работа № 1. Приготовление нервно-мышечного препарата Цель: Ознакомиться с историей изучения биоэлектрических явлений, научиться изготавливать работоспособный нервно-мышечный препарат. Вопросы для подготовки к работе: 1. Техника безопасности при обращении с хирургическим инструментарием и электрическим оборудованием. 2. Биоэлектрические явления в живых тканях. Природа возбуждения. 3. Понятие о возбудимых тканях. Их отличия от остальных тканей организма. Материальное обеспечение: лягушка*, пробковая или парафиновая пластинка, препаровальный набор, вата, марлевая салфетка, булавки, игла гистологическая, нитки, пипетка глазная, стеклянный крючок, раствор Рингера. Ход работы: 1. Удалить головной и разрушить спинной мозг у лягушки. 2. Проткнуть острием ножниц брюшко лягушки и перерезать позвоночник, отступив на 1 см кпереди от копчикового сочленения. 3. Держа лягушку в положении головой вниз, удалить всю свисающую переднюю часть туловища вместе с внутренностями. 4. Осторожно, не повредив нервные сплетения, очистить от остатков внутренностей заднюю часть туловища. 5. Одной рукой захватить через салфетку край позвоночника, а другой край кожи со спинной стороны и быстрым движением снять кожу с обеих лапок. 6. Хирургическим пинцетом захватить препарат за позвоночник так, чтобы лапки свисали, после чего удалить выступающую копчиковую кость. 7. Положить препарат на пробковую или парафиновую пластинку и отделить одну лапку от другой продольным разрезом через оставшийся участок позвоночника и лобковое сочленение. 8. Взять одну лапку, положить ее на спинную сторону и, придерживая пинцетом за часть позвоночника, отпрепарировать седалищный нерв до бедренного сочленения. 9. Перевернув лапку, раздвинуть стеклянными крючками фасции между двуглавым и полуперепончатым мускулами. __________________________________________________________________ * см. приложение I 7 10.Приподнять нерв за остаток позвоночника и отпрепарировать его до коленного сустава. 11.Откинув нерв на голень, освободить бедренную кость, от тканей и вылущить ее головку из тазобедренного сустава. 12.Если сокращение мышцы необходимо регистрировать графически, следует отделить икроножную мышцу, для чего захватить пинцетом ахиллово сухожилие и отделить ножницами его дистальный конец. 13.Оттягивая сухожилие по направлению к колену, отделить икроножную мышцу от прилегающих тканей и удалить все ткани голени у коленного сустава. 14.Стараться при работе не травмировать нерв инструментами и периодически смачивать препарат раствором Рингера, сохраняя его влажным. Заключение и вывод к данной работе не требуются, поскольку в ходе ее выполнения какие-либо экспериментальные данные не получаются. Работа № 2. Определение порога возбуждения мышцы и нерва Цель: изучить понятия «возбудимость» и «порог возбуждения». Определить порог возбуждения мышцы и нерва. Вопросы для подготовки к работе: 1. Определение возбудимости, раздражимости, функциональной лабильности. 2. Классификация раздражителей. 3. Характеристики возбудимости. Определение порога возбуждения. 4. Понятие о потенциале покоя и потенциале действия. механизмы их возникновения. 5. Основные физические характеристики электрического тока. Понятия силы тока, напряжения, сопротивления проводника. Принцип работы индукционного реостата. 6. Законы раздражения возбудимых тканей. Материальное обеспечение: лягушка, препаровальный набор, источник постоянного тока с ключами и электродами, вольтметр, реостат, пипетка глазная, раствор Рингера, штатив для укрепления нервно-мышечного препарата. Ход работы: 1. Приготовить нервно-мышечный препарат и закрепить его в штативе. 2. Составить цепь для получения одиночных индукционных ударов. 3. Нерв положить на электроды. 8 4. Раздвинуть катушки реостата на максимальное расстояние и расположить их под углом 90° друг относительно друга. 5. Включить источник питания и вольтметр. 6. Производить ритмичные замыкания и размыкания ключа, одновременно отклоняя подвижную катушку от вертикального положения и наблюдая за показаниями вольтметра. Отметить показание вольтметра, при котором появится первая ответная реакция со стороны нервно-мышечного препарата в виде слабых сокращений мышцы. Если в ходе работы поворота подвижной катушки будет недостаточно для получения ответной реакции, то после приведения катушки в горизонтальное состояние необходимо медленно сдвинуть ее по направлению к неподвижной. 7. Полученное значение напряжения в вольтах будет характеризовать порог возбуждения нерва. 8. Перенести мышцу на электроды. 9. Повторить эксперимент, установить порог возбуждения мышцы. 10.Записать наблюдения и полученные результаты. 11.Сделать вывод и дать заключение, в котором необходимо объяснить разницу величины порога возбуждения мышцы и нерва. Работа № 3. Изучение возбудимости и проводимости нерва Цель: Экспериментально изучить возбудимость и проводимость нерва. действие различных факторов на Вопросы для подготовки к работе: 1. Законы проведения возбуждения по нервным волокнам. 2. Механизмы проведения возбуждения по нервным волокнам. Материальное обеспечение: лягушка, препаровальный набор, источник постоянного тока с ключами и электродами, вольтметр, реостат, пипетка глазная, раствор Рингера, штатив для укрепления нервно-мышечного препарата, стеклянная пластинка, стеклянная палочка, пипетка глазная, марлевые салфетки, раствор Рингера, кристаллы поваренной соли, 2% раствор новокаина, 10% раствор аммиака, нитки. Ход работы: 1. Собрать цепь для получения одиночных индукционных ударов. 2. Приготовить препарат «реоскопическая лапка». Для этого необходимо закончить препаровку пунктом 11 лабораторной работы №1. 3. Поместить лапку на стеклянную пластинку. 4. Наносить раздражение на нерв как можно дальше от мышцы в следующем порядке: механическое (щипок пинцетом), химическое (наложение кристаллов соли), термическое (стеклянной палочкой, нагретой в воде до 9 75-80°С), электрическое (одиночными индукционными ударами средней силы). Подробно описать реакцию лапки на каждое воздействие. 5. Отмыть нерв раствором Рингера. 6. Наложить электроды на нерв. Между электродами и мышцей перетянуть нерв влажной лигатурой и замкнуть и разомкнуть ключ-рубильник. Записать в рабочую тетрадь наблюдаемый эффект. 7. Перенести электроды ближе к мышце (между лигатурой и мышцей) и снова раздражать индукционными ударами. Записать в рабочую тетрадь наблюдаемый эффект. 8. Между электродами и мышцей на нерв наложить ватку, смоченную новокаином. Спустя 4-5 минут раздражать нерв индукционными ударами выше наложения тампона с новокаином, но ниже лигатуры. Записать в рабочую тетрадь наблюдаемый эффект. 9. Снять ватку, смоченную новокаином, отмыть нерв раствором Рингера. Спустя 4-5 минут повторить раздражение током. Записать в рабочую тетрадь наблюдаемый эффект. 10.Нанести пипеткой на нерв между электродами и мышцей каплю раствора аммиака. Через 3-4 минуты произвести раздражение нерва индукционным током выше места нанесения аммиака. Записать наблюдаемый эффект. 11.Оформить наблюдения в виде таблицы: Проводимое воздействие Механическое воздействие на нерв Химическое воздействие на нерв Термическое воздействие на нерв Электрическое воздействие на нерв И т.д. Наблюдаемая реакция лапки 12.Дать объяснение результатам, сделать выводы. Работа № 4. Зависимость величины сокращения мышцы от силы раздражения Цель: Изучить закон силы, экспериментально пронаблюдав его эффекты. Вопросы для подготовки к работе: 1. Формулировки законов силы и силы-длительности. 2. Кривая Вейса. 3. Определения понятий полезное время, реобаза, хронаксия. 10 Материальное обеспечение: лягушка, препаровальный набор, штатив, источник постоянного тока, реостат, провода, электроды, груз на 20 г, раствор Рингера, булавки, марлевые салфетки, стеклянные крючки. Ход работы: 1. Собрать цепь для получения раздражения индукционными ударами. 2. Приготовить нервно-мышечный препарат, укрепить его в штативе. 3. Наложить электроды на мышцу, сухожилие икроножной мышцы соединить с грузиком. 4. Найти порог возбуждения мышцы по методике, описанной в работе № 2. 5. Замыкать и размыкать ключ электрической цепи с интервалом в 1 с., одновременно увеличивая напряжение в сети, медленно поворачивая катушку реостата. 6. Наблюдать за амплитудой сокращения икроножной мышцы в зависимости от напряжения в сети. 7. Записать наблюдения, сделать заключение и вывод. Работа № 5. Наблюдение явления утомления на нервно-мышечном препарате Цель: Изучить механизмы утомления, определить локализацию утомления в нервно-мышечном препарате. Вопросы для подготовки к занятию: 1. Классификация и строение синапсов. 2. Механизм работы и свойства химических синапсов. 3. Механизмы утомления скелетной мышцы. Материальное обеспечение: лягушка, препаровальный набор, штатив, источник постоянного тока, реостат, провода, электроды, груз на 20 г, раствор Рингера, булавки, марлевые салфетки, стеклянные крючки. Ход работы: 1. Собрать цепь для получения раздражения индукционными ударами. 2. Приготовить нервно-мышечный препарат, укрепить его в штативе. 3. Наложить нерв на электроды, сухожилие икроножной мышцы соединить с грузиком. Подобрать напряжение в сети, чтобы сокращение мышцы было максимальным. 4. Замыкать и размыкать ключ цепи 1 раз в секунду, наблюдая за реакцией мышцы вплоть до полного прекращения сокращений (до наступления утомления). 5. Снять нерв с электродов и перенести электроды на мышцу. Произвести несколько прямых раздражений мышцы электрическим током. 6. Записать наблюдения, сделать вывод и объяснить полученные результаты. 11 РАЗДЕЛ II. ФИЗИОЛОГИЯ ЦЕНТРАЛЬНОЙ НЕРВНОЙ СИСТЕМЫ Работа № 1. Рефлексы спинного мозга Цель: Наблюдать спинальный шок и спинальные рефлексы. Вопросы для подготовки к работе: 1. Рефлекторные функции спинного мозга. 2. Рефлекторная дуга соматического спинального рефлекса. 3. Проводниковые функции спинного мозга. 4. Определение спинального шока и механизм его развития. 5. Синдром Броун-Секара. Материальное обеспечение: лягушка, препаровальный набор, штатив, пинцеты Пеана, стакан с водой, стаканчик с 0,5% раствором серной кислоты, марлевые салфетки, кусочки фильтровальной бумаги. Ход работы: 1. Приготовить спинальную лягушку путем удаления головного мозга (декапитации). 2. Подвесить лягушку за нижнюю челюсть на штатив при помощи пинцета Пеана. Наблюдать спинальный шок, нанося механические раздражения пинцетом на кожу лягушки и отмечая отсутствие какой-либо ответной реакции. Спинальный шок проходит через 5-10 минут, после чего приступают к следующим этапам опыта. 3. Для наблюдения рефлексов спинного мозга применить следующие раздражители: а) пощипывать лапки лягушки пинцетом (подошвы и тыльной стороны); записать наблюдаемые реакции; б) прикладывать полоски фильтровальной бумаги, смоченной 0,5% раствором серной кислоты к различным участкам поверхности тела лягушки – области бедра, спины и живота; описать рефлексы, возникающие в ответ на раздражение каждого из указанных участков кожи; место воздействия кислотой сразу отмывать водой. 4. Записать в рабочую тетрадь результаты наблюдений, объяснить различия в характере и силе ответной реакции в зависимости от места нанесения и природы раздражителя. 5. Сделать выводы. 12 Работа № 2. Определение времени рефлекса по Тюрку Цель: Определить время рефлекса по Тюрку. Изучить зависимость этого параметра от силы раздражителя. Вопросы для подготовки к занятию: 1. Законы раздражения. 2. Понятие рецепторного поля и порога возбуждения. Материальное обеспечение: лягушка, препаровальный набор, штатив, пинцет Пеана, стакан с водой, стаканчики с растворами серной кислоты (0,1; 0,2; 0,5%), марлевые салфетки, секундомер. Ход работы: 1. Приготовить спинальную лягушку. 2. Подвесить лягушку за нижнюю челюсть на штатив при помощи пинцета Пеана и начать опыт после исчезновения признаков спинального шока. 3. Лапку лягушки опустить в стаканчик с 0,1% раствором серной кислоты и одновременно включить секундомер. Определить время от погружения лапки в раствор до момента появления ответной реакции и сразу промыть лапку в чистой воде. Записать полученное время и описать полученную ответную реакцию. 4. Повторить опыт с 0,2 и 0,5% растворами серной кислоты. 5. Интервал между опытами 3-5 мин. 6. Записать в рабочую тетрадь результаты опыта, объяснить их и сделать выводы. Примечание: время рефлекса по Тюрку и время рефлекса как одно из свойств рефлексов близкие, но РАЗНЫЕ понятия, что необходимо учитывать, давая объяснения результатам опыта. Работа № 3. Торможение рефлексов спинного мозга Цель: Изучить явление торможения рефлексов. Вопросы для подготовки к работе: 1. Виды и механизмы торможения в ЦНС. 2. Свойства нервных центров. Материальное обеспечение: лягушка, препаровальный набор, штатив, два пинцета Пеана, стакан с водой, стаканчик с 0,2% раствором серной кислоты, марлевые салфетки, нитки. 13 Ход работы: 1. Приготовить спинальную лягушку и подвесить ее на штатив при помощи пинцета Пеана. Опыт начать после исчезновения признаков спинального шока. 2. Определить время рефлекса по Тюрку на одной из тазовых лапок лягушки с 0,2% раствором кислоты. Отмыть лапку водой. 3. Повторить определение времени рефлекса, но при этом одновременно с погружением лапки в кислоту, вторую лапку сильно сдавить пинцетом. Отмыть лапку водой, записать наблюдения. 4. Ту же лапку (которую опускали в кислоту) туго перевязать у колена толстой нитью. Когда прекратится движение лягушки, снова определить время на этой же лапке. Отмыть лапку водой, записать наблюдения. 5. После снятия лигатуры через некоторое время повторить определение времени рефлекса. 6. Записать результаты наблюдений в рабочую тетрадь, дать им объяснение и сделать выводы. Работа № 4. Анализ рефлекторной дуги Цель: Изучить роль различных звеньев рефлекторной дуги в осуществлении рефлекса. Вопросы для подготовки к работе: 1. Звенья рефлекторной дуги соматических и вегетативных рефлексов. 2. Рефлекторные дуги спинальных рефлексов. Материальное обеспечение: лягушка, препаровальный набор, штатив, пинцет Пеана, стакан с водой, стаканчик с 0,5% раствором серной кислоты, марлевые салфетки, секундомер. Ход работы: 1. Приготовить спинальную лягушку и подвесить ее на штатив при помощи пинцета Пеана. Опыт начать после исчезновения признаков спинального шока. 2. Погрузить лапку в 0,5% раствор серной кислоты и проверить целостность рефлекторной дуги спинномозгового препарата лягушки и установить время рефлекса. Отмыть лапку водой. 3. Изучить роль кожи в реализации рефлексов. Для этого сделать круговой разрез кожи вокруг голени лягушки и снять кожу с лапки. Повторить определение времени рефлекса. К коже другой лапки приложить кусочек фильтровальной, бумаги, смоченной 0,5% раствором серной кислоты. Наблюдать двигательную реакцию обеих лапок лягушки. Лапки отмыть водой. 4. Изучить роль нерва в реализации рефлексов. Для этого на неповрежденной лапке сделать разрез кожи по ходу седалищного нерва. 14 Раздвинуть мышцы, отыскать седалищный нерв и перерезать его. Наблюдать за изменением тонуса мускулатуры дистальнее места перерезки. Повторить определение времени рефлекса для этой лапки. 5. Изучить роль спинного мозга в осуществлении рефлекторной деятельности. Для этого проверить проявление рефлекса с передних конечностей, нанося механические и химические раздражители на кожу передних лапок и наблюдая ответную реакцию. Разрушить спинной мозг, введя препаровальную иглу в спинномозговой канал. Повторить раздражение кожи. 6. Подробно описать наблюдаемые эффекты. Зарисовать схематично рефлекторную дугу двигательного спинального рефлекса, объяснить полученные результаты, сделать выводы. Работа № 5. Сеченовское торможение Цель: Воспроизвести классический опыт центрального (Сеченовского) торможения. Экспериментально доказать наличие тормозных нейронов в головном мозге. Вопросы для подготовки к работе: 1. Понятие о классическом, центральном, «Сеченовском» торможении. 2. Механизм Сеченовского торможения. Материальное обеспечение: лягушка, препаровальный набор, штатив, стакан с водой, пипетка глазная, стаканчик с 0,5% раствором серной кислоты, салфетки марлевые, ватные тампоны, кристаллы поваренной соли, раствор Рингера, секундомер, пинцет Пеана. Ход работы: 1. Лягушку завернуть в марлевую салфетку, взять ее в левую руку вверх черепной коробкой, а снизу голову подпереть указательным пальцем. Разрезать кожу черепа немного кзади носовых отверстий, затем латерально с обеих сторон на 1,5-2 см удалить кожный лоскут. Поперечным разрезом рассечь костную покрышку, скользя по внутренней поверхности кости, чтобы не повредить мозг. Затем удалить костный отрезок. Остановить кровотечение. Сделать поперечный разрез кпереди от зрительных долей (двухолмие переднего мозга) и удалить полушария. Кровотечение остановить ватными тампонами. При помощи пинцета Пеана подвесить лягушку на штативе. 2. Определить время рефлекса два-три раза с промежутком в 2-3 минуты для установления постоянства реакции по методике лабораторной работы №2. Осушить фильтровальной бумагой поверхность мозга и нанести на оба зрительных бугра по кристаллику поваренной соли. Соль не должна 15 растекаться по продолговатому и спинному мозгу. Повторить определение времени рефлекса. 3. Снять кристаллик и обмыть зрительные бугры раствором Рингера. Снова определить время рефлекса. 4. Записать в рабочую тетрадь наблюдаемые эффекты, объяснить их и сделать выводы. Работа № 6. Рефлексы положения (опыт на кролике) Цель: Изучить статические и статокинетические рефлексы. Вопросы для подготовки к работе: 1. Понятие о статических и статокинетических рефлексах. Их классификация. 2. Роль среднего мозга, моста и продолговатого мозга в контроле положения тела в пространстве. 3. Определение и механизм децеребрационной ригидности. Материальное обеспечение: кролик, дощечка, грузики на 0,5; 1; 2 кг. Ход работы: 1. Посадить кролика на стол и обратить внимание на положение туловища и конечностей. 2. Исследовать тонические рефлексы. Для этого наблюдать за положением туловища и конечностей у кролика: а) при подпирании подбородка и поднятии головы; б) положить кролика на спину и повернуть голову вокруг горизонтальной оси влево и вправо. 3. Записать полученные наблюдения, указав изменение тонуса мышц сгибателей и разгибателей конечностей в ходе эксперимента. 4. Исследовать установочные рефлексы. Для этого положить животное на бок, удерживая руками голову и таз. Положить сверху дощечку с половинным грузом его веса. Записать наблюдения. После этого снять груз. Наблюдать полученную реакцию. 5. Исследовать статокинетические рефлексы на примере «лифтных». Для этого усадить животное на дощечку. Быстро опуская и поднимая дощечку с кроликом наблюдать за положением конечностей и изменением тонуса мышц в начале и в конце движения. Во время эксперимента необходимо придерживать животное, чтобы оно не спрыгнуло с дощечки. 6. Записать в рабочую тетрадь наблюдаемые изменения положения тела и головы кролика, объяснить полученные результаты, сделать выводы. 16 РАЗДЕЛ III. ФИЗИОЛОГИЯ АНАЛИЗАТОРОВ Работа № 1. Определение остроты зрения Цель: Изучить понятие остроты зрение. Определить остроту зрения. Вопросы для подготовки к работе: 1. Понятие об анализаторах. Отделы в составе анализаторов. 2. Строение зрительного анализатора и механизмы зрения. 3. Анатомическое строение глазного яблока. Материальное обеспечение: таблица для определения остроты зрения, указка, стул, испытуемый. Ход работы: 1. Таблицу Сивцева повесить на хорошо освещенную стену на расстоянии 5 м от испытуемого. 2. Испытуемый закрывает (но ни в коем случае не зажмуривает) один глаз специальным щитом или рукой. 3. Указкой показывают ту или иную букву или незамкнутую окружность, начиная с верхних рядов, и выясняют, в какой из строк испытуемый делает первую ошибку. 4. По числу справа от предыдущей строки определяют остроту зрения. 5. Процедуру повторяют с другим глазом. 6. Записать результат, объяснить полученные значения остроты зрения. Примечание: Острота зрения – это способность глаза различать две близко расположенные точки как два раздельных объекта, а не как единое пятно. Нарушение остроты зрения не обязательно связано с развитием близорукости или дальнозоркости. Острота зрения – это отношение расстояния, с которого человек реально видит ту или иную строчку таблицы, к расстоянию, с которого он должен ее видеть в норме (этот параметр указан слева от каждой строки, например, первая строчка должна четко читаться с расстояния 50 м), т.е. V=d/D где V – острота зрения, d – расстояние с которого человек реально видит ту или иную строчку, D – расстояние, с которого человек должен видеть туже строчку. Исходя из приведенной формулы, численное выражение остроты зрения – величина всегда положительная, а нормальная острота зрения равна 1,0. То есть теоретически остроту зрения можно определять по любой строчке, но в условиях лаборатории или офтальмологического кабинета удобнее пользоваться методикой, изложенной выше. 17 Работа № 2. Исследование костной и воздушной проводимости звука Цель: Экспериментально убедиться в существовании двух способов проведения звуковой волны к рецепторному аппарату уха и сравнить их эффективность. Освоить диагностические опыты Ринне и Вебера. Вопросы для подготовки к работе: 1. Строение слухового анализатора и механизмы слуха. 2. Звук с точки зрения физики. Его природа и основные характеристики. Материальное обеспечение: набор камертонов, ватный тампон, испытуемый. Ход работы. 1. Убедиться в существовании костной проводимости звука. Для этого заткнуть слуховые проходы ватными тампонами и ножку звучащего камертона поочередно прикладывать к области лба, темени, затылка и внимательно прислушаться. Звук будет слышен во всех случаях. Для того чтобы заставить камертон звучать, его необходимо, держа за ножку, несильно ударить по свободной руке, колену или деревянному брусочку. УДАРЯТЬ КАМЕРТОНОМ ОБ КАМЕРТОН НЕЛЬЗЯ. 2. Сравнить костную проводимость с воздушной. Для этого сначала исследовать воздушную проводимость, поднеся звучащий камертон к открытому уху и сравнить громкость звучания с результатом предыдущего пункта работы. Записать наблюдения, сделать вывод, объяснить разницу в полученных результатах. 3. Воспроизвести опыт Вебера, записать наблюдения, сделать вывод. Как и опыт Ринне, он применяется как относительно простой тест установления локализации патологии в системе звуковой рецепции. Сущность опыта Вебера заключается в следующем: приведенный в звучание камертон необходимо приставить к середине темени больного. При одинаковом слухе на оба уха звук приставленного к темени камертона одинаково слышен обоими ушами и проецируется в верхнюю часть головы. При неодинаковом слухе на оба уха, обусловленном заболеванием одного из них или одного в большей мере, нежели другого, звук воспринимается только в одном каком-нибудь ухе. Подобное явление называется лятерализацией Вебера. Латерализация звука в больное ухо получается тогда, когда причиной его заболевания является поражение звукопроводящего аппарата; при одностороннем заболевании звуковоспринимающего аппарата лятерализация получается в здоровое ухо. Для производства опыта Вебера пользуются камертонами А (106,75 колебаний в 1"), с1 (256 колебаний в 1") и а1 (435 колебаний в 1"). Высокие камертоны для этой цели непригодны. 18 4. Воспроизвести опыт Ринне для каждого уха, сделать наблюдения и вывод. Для этого звучащий камертон приставляют ножкой к сосцевидному отростку и оставляют в таком положении до тех пор, пока исследуемый не заявит, что он перестал его слышать. Сразу после этого, не ударяя по камертону, подносят камертон браншами к слуховому проходу. При нормальном слухе камертон продолжает быть слышным еще некоторое время. Подобный результат опыта, когда восприятие звука через воздушную проводимость превалирует над восприятием звука через костную проводимость, носит название положительного опыта Ринне или просто положительного Ринне. При заболеваниях звукопроводящего аппарата камертон, который перестает быть слышным у уха, воспринимается вновь с кости, другими словами: костная проводимость превалирует над воздушной. Такой Ринне называют отрицательным. Отрицательный Ринне указывает на заболевание звукопроводящего аппарата. Работа № 3. Определение локализации источника звука Цель: Изучить механизм бинаурального слуха. Вопросы для подготовки к работе: 1. Понятие бинаурального слуха, его механизм. 2. Биологическое значение бинаурального слуха. Материальное обеспечение: фонендоскопы с одинаковой и разной длиной трубок, источник звука (колокольчик, кликер и т.д.), повязка, испытуемый. Ход работы: 1. Усадить испытуемого на стул спиной к исследователю и завязать ему глаза. 2. Убедиться в способности испытуемого определять местонахождение источника звука с открытыми ушами. Для этого издавать звук с разных сторон от него, при этом испытуемый должен рукой указывать местоположение источника звука. 3. Плотно закрыть одно из ушей и повторить опыт. 4. Вставить обычный фонендоскоп в уши испытуемого. Повторить эксперимент, но при этом мембрану фонендоскопа всегда держать перед источником звука. 5. Повторить опыт с фонендоскопом, имеющим трубки разной длины. 6. Оформить в тетради наблюдения, сделать вывод, дать объяснения полученным результатам. 19 Работа № 4. Определение порогов пространственной тактильной чувствительности Цель: Изучить механизм пространственной тактильной чувствительности, определить и сравнить порог пространственной тактильной чувствительности кожи разных участков тела. Вопросы для подготовки к работе: 1. Виды и механизмы работы кожных рецепторов. 2. Механизм пространственной тактильной чувствительности. Материальное обеспечение: эстезиометр или циркуль Вебера, линейка, испытуемый. Ход работы: 1. Испытуемый закрывает глаза. 2. Исследователь плотно сдвигает иглы циркуля и прикасается ими к коже испытуемого. Испытуемый должен сказать, сколько прикосновений иголок чувствует – одно или два. В данном случае воздействие будет восприниматься как одиночное прикосновение. Затем иглы циркуля начинают раздвигать примерно на 0,5 мм, каждый раз прикасаясь к коже и спрашивая ощущения. В тот момент, когда испытуемый впервые почувствует двойное прикосновение, линейкой измеряют расстояние между иглами, полученный результат – порог пространственной тактильной чувствительности для данного участка кожи. Опыт необходимо провести на коже подушечки указательного пальца, ладони, кончика носа, шеи. 3. Записать полученные результаты, сделать вывод, объяснить разницу в полученных результатах для разных участков кожи. Работа № 5. Явление контраста Цель: Изучить явление адаптации рецепторов на примере особенностей терморецепции. Вопросы для подготовки к работе: 1. Механизмы терморецепции. 2. Понятие об адаптации рецепторов. 3. Механизм адаптации рецепторов и его значение для организма. Материальное обеспечение: сосуды с водой разной температуры (10, 25 и 40°C), секундомер, термометры, испытуемый. 20 Ход работы: 1. Опустить кисть одной руки в горячую воду (40°C), а другую в холодную (10°C) и одновременно включить секундомер. 2. Определить время адаптации терморецепторов. Для этого не вынимать руки до тех пор, пока не исчезнут температурные ощущения. В этот момент выключить секундомер. 3. Обе руки одновременно перенести в воду с температурой 25°C. 4. Записать наблюдения, сделать вывод, объяснить полученные результаты. Работа № 6. Определение порогов вкусовой чувствительности Цель: Определить пороги чувствительности различных вкусов. Вопросы для подготовки к работе: 1. Строение вкусового анализатора. 2. Механизмы рецепции вкусовых веществ. Материальное обеспечение: стеклянная палочка с закруглением на конце или глазная пипетка, кипяченая или дистиллированная вода, 0,01%, 0,1% и 1% раствор лимонной кислоты, 0,01%, 0,1%, 1% и 10% раствор сахара, 0,001%, 0,01%, 0,1% и 1% раствор соляно-кислого хинина, 0,001%, 0,01%, 0,1% и 1% раствор хлористого натрия, полоскательница, испытуемый. Ход работы: 1. На различные участки языка стеклянной палочкой или глазной пипеткой наносить капельки исследуемого вещества, начиная с наименьшей концентрации постепенно увеличивая ее до тех пор, пока испытуемый сможет определить вкус предлагаемого раствора. Эту концентрацию принимают за порог данной вкусовой чувствительности. 2. Перед нанесением капли следующего раствора испытуемый должен тщательно пополоскать рот, после чего можно приступать к очередному этапу исследования с другим раствором. Полоскание желательно проводить дистиллированной водой, поскольку вода из под крана в следствие содержания многих ионов сама по себе обладает разным вкусом. 3. Между пробами различных веществ рот также необходимо ополоснуть кипяченой или дистиллированной водой, интервал между пробами 1–2 мин. 4. Записать наблюдения, сделать вывод. 21 Работа № 7. Определение порогов обоняния Цель: Определить пороги ощущения запаха различных веществ. Вопросы для подготовки к работе: 1. Строение обонятельного анализатора. 2. Механизмы хеморецепции запахов. 3. Механизмы высокой чувствительности животных многих видов к запахам. Материальное обеспечение: флаконы с 0,0001%, 0,001%, 0,01% и 1% растворами камфары; 0,0001%, 0,001%, 01%, 1%, 2% и 3% растворами этилового спирта; 0,0001%, 0,001%, 0,01%, 0,1% и 1% растворами, испытуемый. Ход работы: 1. Открыть пробку флакончика с пахучим веществом, поднести флакончик к ноздрям и сделают несколько «нюхательных» вдохов. 2. Указанную манипуляцию проделать для всех растворов, начиная с наименьших концентраций. 3. Установить наименьшую концентрацию раствора каждого вещества, вызывающего ощущение запаха. 4. Записать наблюдения, сделать вывод. 22 РАЗДЕЛ IV. СИСТЕМА КРОВИ* Работа № 1. Взятие крови у животных, получение плазмы и сыворотки крови Цель: освоить методики получения крови у животных для лабораторных исследований. Вопросы для подготовки к работе: 1. Состав крови. 2. Отличия плазмы крови от сыворотки. 3. Правила асептики и антисептики при выполнении пункции крупных кровеносных сосудов. 4. Величины общего количества крови в организме и допустимые объемы взятия крови. Материальное обеспечение: ножницы, спиртовые тампоны, иглы, шприцы, пробирки, гепарин или раствор цитрата натрия, гемостатический жгут, стерильные одноразовые вакуумные пробирки нужного с держателями и двусторонними иглами для них. Ход работы: Получение больших количеств крови у лошадей, крупного и мелкого рогатого скота: 1. Зафиксировать животное 2. Выбрить или выстричь небольшой участок шерстного покрова на границе верхней и средней трети шеи над яремным желобом. 3. Обработать место пункции спиртовым тампоном. 4. Большим пальцем одной руки сдавить яремную вену ниже точки прокола кожи. Ту же манипуляцию может проводить помощник с использованием резинового гемостатического жгута. Сдавливание сосудов при этом производится только с одной стороны во избежание полного прекращения кровоснабжения головного мозга. 5. Ввести иглу в вену под углом 45º к коже против тока крови. Скос иглы при этом должен быть направлен вверх. 6. Кровь набрать в стерильную пробирку. При этом она должна аккуратно сбегать по стенке сосуда во избежание механического гемолиза. 7. Отпустить вену в месте ее пережатия и только вслед за этим извлечь иглу из вены. В противном случае кровь будет выливаться из иглы на пол помещения. 8. Обработать место введения спиртовым тампоном. __________________________________________________________________ * при подготовке к работам этого раздела можно воспользоваться иллюстрированным фото- и видео руководством по методам лабораторного анализа крови – авторы Берестов Д.С., Мерзлякова Е.А., Васильев Ю.Г. 23 1. 2. 3. 4. 5. 6. 7. 8. В случае использования для взятия крови вакуумных пробирок (это более удобный, безопасный и современный вариант) необходимо: Порядок наложения жгута и правила асептики/антисептики те же. После подготовки точки прокола кожи необходимо свинтить защитный чехол с двусторонней иглы со стороны резинового колпачка. Ввинтить двустороннюю иглу в держатель. Снять колпачок с той части двусторонней иглы, которая предназначена для венепункции. Произвести венепункцию. Быстрым движением ввести в держатель вакуумную пробирку. Колпачок пробирки при этом прокалывается, а за счет вакуума кровь начинает поступать в пробирку. После взятия необходимого количества крови ослабить гемостатический жгут, извлечь пробирку, извлечь иглу из вены, место прокола обработать. Подписать полученную пробу. Использованную иглу и держатель утилизировать. Получение больших количеств крови у свиней: В крупных животноводческих комплексах на сегодняшний день широко практикуется процедура купирования хвоста, в связи с чем взятие крови путем отрезания его кончика не актуально. Можно получить нужное количество крови из большой ушной вены, но удобнее всего с точки зрения количества крови и чистоты пробы набирать необходимое количество крови из орбитального венозного синуса. Для этого: 1. Зафиксировать животное. Поросенка при этом можно взять на руки, а взрослое животное удобнее фиксировать петлей за верхнюю челюсть. 2. Раздвинуть веки животного пальцами. 3. Иглу срезом слегка прижать к глазному яблоку и двигая к переднему углу глаза завести ее под третье веко. 4. Продолжая двигаться вдоль глазного яблока, углублять иглу в глазницу до тех пор, пока игла не окажется направленной слегка вниз и назад. 5. В тот момент, когда игла будет находиться в переднем углу глаза и окажется направлена практически перпендикулярно к поверхности головы, необходимо сделать глубокий прокол. В случае попадания в глазничный синус из иглы пойдет кровь. 6. Если игла упирается в кость и из нее не идет кровь, ее необходимо перенаправить и сделать повторный прокол. 7. Набрав нужное количество крови, извлечь иглу. Получение больших количеств крови у собак: 1. Животное фиксировать в горизонтальном положении. 2. Кровь берется из подкожной вены предплечья (v. cephalica antebrachii) примерно на середине предплечья или из подкожной вены голени (v. saphena). 24 3. Порядок подготовки венепункции, наложения жгута и введения иглы такой же как при пункции яремной вены крупных животных. Получение больших количеств крови у морских свинок: В зависимости от целей и опыта человека, проводящего манипуляцию, практикуется взятие крови из сердца, подкожной вены предплечья и орбитального венозного сплетения. Для получения крови из сердца необходимо: 1. Подготовить поверхность кожи в точке пункции – у левого края грудной кости в области наилучшей пальпации сердечного толчка. 2. Произвести прокол кожи и всех тканей, направляя иглу к середине грудной полости на глубину 1,5-2 см. 3. Набрать необходимое количество крови, извлечь иглу, обработать место прокола. Получение крови у крыс: Производится способом отрезания кончика хвоста. Имеются сведения о получении крови из сердца, но по сравнению с морскими свинками для крыс этот способ взятия крови является небезопасным, требует надежной фиксации, седации или даже наркотизации животного, что делает его неудобным. Получение крови у мышей: Производится из кончика хвоста после его отрезания или из орбитального венозного сплетения. 1. 2. 3. 4. Получение крови у птиц: Производится из подкожной локтевой вены. Для этого: Вблизи локтевого сустава выщипать перья. Нажать пальцами выше локтя, найти вену. Обработать кожу в месте вкола иглы, произвести пункцию. Получение небольшого количества крови для морфологического анализа у млекопитающих: 1. После фиксации животного выстричь и обработать спиртом кожу в области прохождения краевой вены уха. 2. Проколоть вену иглой или надрезать острым скальпелем. 3. В случае приготовления мазка для диагностики кровепаразитарных заболеваний использовать первую выступившую каплю крови. Во всех остальных случаях удалить первую каплю, остальные использовать в работе (собирать на часовое стекло, набирать в пипетку, меланжер и т.д.) 4. Обработать кожу спиртовым тампоном. 25 Получение небольшого количества крови у птиц: Небольшое количество крови у птиц берут чаще всего путем надреза или прокола иглой гребешка (сережек), а у гусей, уток – при прокалывании мягких тканей межпальцевых перепонок. 1. 2. 3. 4. Получение плазмы крови: Предварительно в емкость для отбора образца крови поместить небольшое количество антикоагулянта (гепарин – 2 капли на 10 мл крови, 20-30 мг лимоннокислого натрия на 10 мл крови и др.) После набора крови осторожно перемешать ее с антикоагулянтом путем неоднократного переворачивания пробирки. Центрифугировать полученную смесь при 3000 об/мин в течение 20 мин. В случае отсутствия центрифуги допускается отстаивание крови в термостате при 37ºС в течение суток (у лошадей в силу очень высокой СОЭ – в течение 1 ч). Содержимое пробирки расслоится на эритроциты (внизу), тонкий мутный слой лейкоцитов (лейковзвесь над слоем эритроцитов) и прозрачную жидкость – плазму (вверху), которую можно использовать для исследований. Получение сыворотки крови: 1. Набрать кровь в пробирку без антикоагулянта. 2. Дать отстоятся в термостате в течение суток. 3. В пробирке образуется сгусток крови, вокруг которого образуется прозрачная, желтоватая, слегка опалесцирующая жидкость – сыворотка, которую можно слить или отсосать пипеткой и использовать для исследований. Работа № 2. Определение количества эритроцитов в крови Цель: освоить метод ручного определения количества эритроцитов с помощью счетной камеры Горяева. Вопросы для подготовки к работе: 1. Строение и функции эритроцитов. Видовые особенности. 2. Значение определения количества эритроцитов для клинической практики. 3. Количество эритроцитов у здоровых животных разных видов. Материальное обеспечение: микроскоп, камера Горяева, покровные стекла, смеситель (эритроцитарный меланжер), скарификатор, спиртовые тампоны, 0,9 % раствор натрия хлорида, емкости для утилизации тампонов и использованных инструментов с дезинфицирующим раствором. 26 Ход работы: 1. Проверить наличие и работоспособность необходимого оборудования и реактивов. 2. Сфокусировать микроскоп на сетке камеры Горяева, при этом в зависимости от индивидуальных предпочтений можно использовать окуляры с увеличением х7 или х10 и объективы х20 или х40. Найти большие квадраты сетки, разделенные на 16 малых квадратов. 3. Проверив чистоту поверхностей стекла камеры Горяева, притереть к ней покровное стекло до появления Колец Ньютона. 4. Если для работы используется кровь животного, уже набранная в пробирку, то ее необходимо аккуратно перемешать и вылить небольшое ее количество на чистое часовое стекло. 5. Если для работы используется свежая кровь человека, то ее необходимо взять из пальца с соблюдением правил асептики и антисептики. Работа проводится строго в перчатках. Необходимо взять чистое часовое стекло, протереть его спиртовым тампоном. Палец донора обрабатывается спиртовым тампоном, после чего открывается упаковка со стерильным одноразовым скарификатором. Открывание производится со стороны ручки, а не со стороны острия. Уверенным твердым движением прокалывается кожа кончика пальца, использованный скарификатор сразу выкидывается в емкость с дез. раствором. Первая капля крови удаляется спиртовым тампоном. Последующие капли выдавливаются на стерильное часовое стекло. В работе используются нестерильные многоразовые меланжеры, поэтому категорически запрещено прикасаться ими к ранке, отбор крови ведется только строго с часового стекла. После получения необходимого количества крови на ранку накладывается спиртовый тампон. 6. Взять эритроцитарный смеситель (меланжер). Он имеет красную бусинку в резервуаре и три отметки: «0,5», «1», «101». Со стороны отметки «101» надеть на него грушу или резиновую трубку, соединенную с грушей. 7. Набрать в меланжер кровь с часового стекла до отметки «0,5». 8. Удалить излишек крови с кончика меланжера ватным тампоном. 9. После удаления излишка крови, ее столбик должен находится точно напротив отметки «0,5»*. 10.В этот же меланжер набрать физиологический раствор до отметки 101. Если раствор находится в большой емкости, желательно заранее перелить необходимое его количества в малый сосуд, удобный для работы. При таком наборе кровь получается разбавленной в 200 раз. 11.Большим пальцем свободной руки зажать кончик меланжера, а другой рукой снять грушу. ________________________________________________________________ * отметка «1» используется для набора крови в случае анемии и(или) эритропении, для разбавления крови в меньшее количество раз и получения более достоверного результата. 27 12.Зажать второй кончик меланжера средним пальцем (он окажется зажатым между большим и указательным пальцами) и интенсивными встряхиваниями перемешать его содержимое. 13.Выпустить первые 3 капли содержимого меланжера на ватный тампон. 14.Следующую каплю нанести встык камеры Горяева и покровного стекла таким образом, чтобы щелевидное пространство между стеклами оказалось полностью заполненным смесью. 15.Поместить меланжер в емкость с дез. раствором, а камеру Горяева под объектив подготовленного микроскопа. 16.Через 3 минуты* подсчитать количество эритроцитов** в 5 больших квадратах сетки камеры Горяева, разделенных на 16 малых и расположенных по большой диагонали сетки. 17.Найденное количество клеток умножить на 104. Полученное число – это количество эритроцитов в одном микролитре (1мкл = 1мм3) исследуемой крови***. Работа № 3. Определение количества гемоглобина методом Сали Цель: научиться определять количества гемоглобина в крови вручную методом Сали. Вопросы для подготовки к работе: 1. Функции гемоглобина в организме. 2. Строение молекулы гемоглобина. 3. Значение определения количества гемоглобина для клинической практики. 4. Количество гемоглобина в крови здоровых животных разных видов. Материальное обеспечение: спиртовые тампоны, кровь или приборы для ее получения (скарификатор), часовое стекло, 0,1 н. раствор соляной кислоты, дистиллированная вода, стеклянные пипетки, тонкая стеклянная палочка, гемометр Сали, капилляр на 20 мкл или механический дозатор с диапазоном дозирования, захватывающим объем в 20 мкл, емкости с дез. раствором для утилизации использованных тампонов, капилляров, часовых стекол и наконечников дозатора. __________________________________________________________________ * это необходимо для того, чтобы эритроциты успели осесть на сетку камеры, и находились в одной плоскости. В противном случае они не будут находиться в одном фокусе объектива микроскопа, и подсчет будет вести неудобно. ** для точности подсчета и для того, чтобы не сосчитать одну и ту же клетку дважды, в случае, если эритроцит лежит непосредственно на краю квадрата, то считают только те эритроциты, которые касаются (неважно внутри или снаружи) верхнего или правого края квадрата, а те которые касаются левого и нижнего края квадрата не считают. *** для того чтобы рассчитать количество эритроцитов в литре исследуемой крови, необходимо количество клеток, найденное в 5 больших квадратах, умножить на 1010. 28 Ход работы: 1. В пробирку гемометра* до первой нижней метки (или кольцевой отметки, если таковая имеется) набрать пипеткой децинормальный раствор соляной кислоты. 2. Налить небольшое количество анализируемой крови на часовое стекло (отбор крови из пальца проводится как при определении количества эритроцитов). 3. Капилляром на 20 мкл или дозатором набрать 20 мкл (0,02 мл) крови. 4. Кровь аккуратно выдуть на дно пробирки с соляной кислотой. Чистой надосадочной жидкостью 2-3 раза промыть капилляр или наконечник дозатора. 5. Встряхнуть пробирку, перемешав ее содержимое. 6. Подождать 3 минуты для образования в пробирке солянокислого гематина, имеющего интенсивный коричневый цвет. 7. Пипеткой понемногу разбавлять содержимое пробирки дистиллированной водой до тех пор, пока цвет раствора не выровняется с цветом эталонных растворов гемометра. В процессе разбавления периодически перемешивать содержимое пробирки тонкой стеклянной палочкой. 8. Отметить, какое значение шкалы гемометра находится на уровне нижнего мениска уровня жидкости пробирки. Полученное значение – количество гемоглобина в исследуемой крови в гр% (если максимальные числа шкалы двузначные) или единицах Сали (если максимальные числа шкалы трехзначные). Работа № 4 . Определение количества гемоглобина в крови унифицированным цианметгемоглобиновым методом Цель: освоить один из точных инструментальных методов определения количества гемоглобина. Вопросы для подготовки к работе: 1. Строение и свойства молекулы гемоглобина. 2. Синтез и распад гемоглобина в организме. 3. Принципы колориметрического анализа. Материальное обеспечение: фотоэлектроколориметр (ФЭК), кюветы для ФЭКа с толщиной поглощающего слоя 1 см., дозатор механический одноканальный переменного объема с диапазоном дозирования 5-50 мкл или капилляр на 20 мкл, часовое стекло, кровь или оборудования для ее взятия (скарификатор), спиртовые тампоны, пробирки объемом не менее 10 мл, стеклянные пипетки объемом 1 и 10 мл, стеклянная палочка, набор реагентов __________________________________________________________________ * в зависимости от модели гемометра шкала пробирки может быть отградуирована как в гр%, так и в единицах Сали. 1 ед. Сали = 6 гр%. 29 для определения количества гемоглобина цианметгемоглобиновым методом, дистиллированная вода, емкости с дез. раствором для утилизации использованных тампонов, капилляров, часовых стекол и наконечников дозатора. Ход работы*: 1. Подготовить ФЭК. Для этого ручки «грубо» и «точно» вывернуть максимально против часовой стрелки, после чего включить прибор в сеть. С момента включения до начала анализа должно пройти не менее 20 минут. 2. Пипеткой набрать в пробирку 1 мл монореагента из набора реактивов. 3. Другой пипеткой добавить 9 мл дистиллированной воды. Перемешать. 4. Взять две** одинаково промаркированные кюветы для колориметрии с толщиной поглощающего слоя 1 см. 5. В каждую кювету чистой пипеткой набрать по 5 мл полученного рабочего раствора из пробирки. В ходе работы допускается держать кюветы только за боковые поверхности. 6. Набрать 20 мкл крови и выпустить ее в одну из кювет. Перемешать. 7. Подождать не менее 5 минут. 8. Перевести ручку переключателя положения кювет в положение «1». 9. Открыть крышку ФЭКа и в дальний ряд кюветодержателя поместить кювету с чистым рабочим раствором (контроль). 10.В ближний ряд кюветодержателя поместить кювету с пробой крови и закрыть крышку. 11.Установить ручку переключения светофильтров в положение «540 нм». 12.Установить переключатель чувствительности в положение «2» по черной шкале. 13.Ручками «грубо» и «точно» установить стрелку прибора в положение «0» нижней шкалы. 14.Перевести переключатель кювет в положение «2». 15.Отметить показания стрелки прибора по нижней шкале. ВНИМАНИЕ отсчет ведется справа налево. 16.Найденное значение умножить на 39,2. Полученное число – количество гемоглобина в гр% в образце исследуемой крови. 17.В случае анализа нескольких проб крови, заменить кювету с пробой крови на следующую. Контрольную кювету оставить ту же, проверить положение нуля относительно контроля и повторить определение. ________________________________________________________________ * в данной методике описан макрометод определения количества гемоглобина в одной пробе крови с использованием 20 мкл крови для анализа и 1-сантиметровых кювет. ** количество используемых в работе кювет равно количеству проб крови плюс одна кювета для контроля. Рабочий раствор при этом должен готовиться единовременно для всех проб. Например, если необходимо определить количество гемоглобина в 10 пробах крови, понадобиться 11 кювет и 55 мл рабочего раствора реагента (в случае макроварианта метода). 30 Работа № 5. Расчет цветного показателя Цель: научиться рассчитывать цветной показатель, усвоить его значение для клинической практики. Вопросы для подготовки к работе: 1. Значение расчета цветного показателя для клинической практики. 2. Величины нормальных значений цветного показателя. Материальное обеспечение: необходимы данные о содержании в крови эритроцитов и гемоглобина. Ход работы: По цветному показателю судят о степени насыщенности гемоглобином каждого эритроцита. Цветной показатель (ЦП) вычисляется по формуле: Работа № 6. Определение скорости оседания эритроцитов (СОЭ) Цель: освоить методику определения скорости оседания эритроцитов методом Панченкова, уяснить значение этого показателя для клинической практики. Вопросы для подготовки к работе: 1. Значение определения СОЭ для клинической практики. 2. Факторы, определяющие величину СОЭ. 3. Нормативные значения СОЭ у животных разных видов. Материальное обеспечение: аппарат Панченкова, 5% раствор цитрата натрия, часовые стекла, кровь или приборы для ее взятия (скарификатор), спиртовые тампоны, часы, емкости с дез. раствором для утилизации использованных тампонов, скарификаторов и капилляров. Ход работы: 1. Промыть пипетку прибора Панченкова 5% раствором цитрата натрия. 2. В промытую пипетку набрать 5% раствор цитрата натрия до метки «Р» (50) и выдуть его на часовое стекло. 3. Дважды набрать свежей крови в ту же пипетку до метки «К» и выдуть, ее на то же часовое стекло. 4. Перемешать полученную смесь крови и цитрата натрия и набрать смесь в пипетку до метки «0». 31 5. Установить пипетку вертикально в штатив прибора. Для этого большим пальцем заткнуть кончик пипетки, снять грушу, указательным пальцем другой руки закрыть верхний конец пипетки, а нижний ее конец поставить на резиновую прокладку прибора и зафиксировать пипетку в вертикальном положении. 6. Засечь время и отмечать по шкале пипетки положение столбика отстоявшихся эритроцитов каждые 15 минут. Через час записать окончательный результат. Работа № 7. Определение количества лейкоцитов в крови Цель: освоить метод ручного определения количества лейкоцитов с помощью счетной камеры Горяева. Вопросы для подготовки к работе: 1. Виды и функции лейкоцитов в организме. 2. Значение определения количества эритроцитов для клинической практики. 3. Факторы, определяющие количество лейкоцитов. 4. Количество эритроцитов в крови здоровых животных разных видов. Материальное обеспечение: микроскоп, камера Горяева, покровные стекла, смеситель (лейкоцитарный меланжер), скарификатор, спиртовые тампоны, жидкость Тюрка, емкости для утилизации тампонов и использованных инструментов с дезинфицирующим раствором. Ход работы: 1. Проверить наличие и работоспособность необходимого оборудования и реактивов. 2. Сфокусировать микроскоп на сетке камеры Горяева, при этом в зависимости от индивидуальных предпочтений можно использовать окуляры с увеличением х7 или х10 и объективы х20 или х40. Найти большие квадраты сетки, не разделенные на 16 малых квадратов. Они расположены группами по 4. Подсчет количества лейкоцитов удобнее вести с объективом х20. 3. Проверив чистоту поверхностей стекла камеры Горяева, притереть к ней покровное стекло до появления Колец Ньютона. 4. Налить небольшое количество анализируемой крови на часовое стекло (отбор крови из пальца проводится как при определении количества эритроцитов). 5. Взять лейкоцитарный меланжер. Он имеет белую или прозрачную бусинку в резервуаре и отметки «0,5», «1» и «11». 6. Набрать в меланжер кровь с часового стекла до отметки «0,5». 7. Удалить излишек крови с кончика меланжера ватным тампоном. 32 8. После удаления излишка крови, ее столбик должен находится точно напротив отметки «0,5»*. 9. В этот же меланжер набрать жидкость Тюрка** до отметки 20. Если раствор находится в большой емкости, желательно заранее перелить необходимое его количества в малый сосуд, удобный для работы. При таком наборе кровь получается разбавленной в 20 раз. 10.Большим пальцем свободной руки зажать кончик меланжера, а другой рукой снять грушу. 11.Зажать второй кончик меланжера средним пальцем (он окажется зажатым между большим и указательным пальцами) и интенсивными встряхиваниями перемешать его содержимое. 12.Выпустить первые 3 капли содержимого меланжера на ватный тампон. 13.Следующую каплю нанести встык камеры Горяева и покровного стекла таким образом, чтобы щелевидное пространство между стеклами оказалось полностью заполненным смесью. 14.Поместить меланжер в емкость с дез. раствором, а камеру Горяева под объектив подготовленного микроскопа. 15.Через 3 минуты подсчитать количество лейкоцитов в 100 больших квадратах сетки камеры Горяева, не расчерченных на малые квадраты. Они расположены группами по 4. В сетке камеры Горяева их всего 100, таким образом необходимо произвести подсчет во всех нерасчерченных больших квадратах. 16.Найденное количество клеток умножить на 50. Полученное число – это количество лейкоцитов в одном микролитре (1мкл = 1мм3) крови. Работа № 8. Методика определения лейкоформулы Цель: освоить ручную методику дифференцированного лимфоцитов и уяснить ее значение для клинической практики. подсчета Вопросы для подготовки к работе: 1. Факторы, определяющие лейкоцитарный состав крови. 2. Значение определения лейкоформулы для клинической практики. 3. Нормальные показатели лейкоформулы у животных разных видов. Материальное обеспечение: обезжиренные предметные стекла, шпатели для растяжки мазков крови, кровь или приборы необходимые для ее взятия (скарификатор), спиртовые тампоны, абсолютный этиловый спирт, рабочий раствор красителя Романовского-Гимза, емкости для окраски , микроскоп с иммерсионным объективом, иммерсионное масло, атлас клеток крови. __________________________________________________________________ * отметка «1» используется для анализа в случае лейкопении. ** жидкость Тюрка – это 3% раствор уксусной кислоты, подкрашенный метиленовым синим. 33 Ход работы: 1. На край хорошо обезжиренного предметного стекла нанести небольшую каплю крови. 2. Положить стекло на стол. Зажать шпатель для растяжки мазков крови между большим и указательным пальцами. 3. Держа шпатель под углом 45° к предметному стеклу, прикоснуться его краем к капле крови, дать ей растечься по краю. 4. Быстрым, но не резким движением провести краем шпателя по поверхности предметного стекла. Капля крови при этом должна тянуться за шпателем, а не перед ним. 5. Высушить на воздухе полученный мазок крови. 6. Зафиксировать мазок, поместив на 15 минут в абсолютный этиловый спирт. 7. Окрасить мазок, поместив его в емкость с рабочим раствором красителя Романовского-Гимза в течение 15-20 минут, контролируя интенсивность окраски периодическим микроскопированием. 8. После получения требуемой интенсивности окраски ополоснуть мазок водой, высушить на воздухе. 9. Под иммерсионной системой произвести дифференцированный подсчет минимум 100 лейкоцитов. В случае затруднения в идентификации лейкоцита, воспользоваться атласом крови. При этом необходимо учесть, что при растягивании мазка разные виды лейкоцитов в силу различий их массы и плотности распределяются по стеклу неравномерно, поэтому при подсчете необходимо передвигать мазок таким образом, чтобы захватить как центральные области мазка, так и его края в разных участках стекла. При подсчете ста клеток одна клетка будет представлять 1% лейкоцитов своего вида. 10.Записать в тетрадь результат в виде: ЭхБхЮхПяхСяхЛихМх, где «х» процент клеток каждого вида, «Э» - эозинофилы, «Б» - базофилы, «Ю» юные нейтрофилы (метамиелоциты), «Пя» - палочкоядерные нейтрофилы, «Ся» - сегментоядерные нейтрофилы, «Ли» - лимфоциты, «М» моноциты. 11.Умножив долю клеток каждого вида на общее количество лейкоцитов в той же пробе крови, установить абсолютное содержание лейкоцитов каждого вида в единице объема крови. Записать результат. Примечания: - расчет лейкоформулы всегда должен сопровождаться данными об общем количестве лейкоцитов в единице объема крови. В противном случае полученная лейкоформула может оказаться просто бесполезной в оценке состояния животного. - удалить масло с объектива, а также с поверхности мазка после проведения расчета можно однократным движением мягким спиртовым тампоном без сильного нажима. 34 Работа № 8. Определение групп крови человека Цель: изучить принцип деления крови на группы, пронаблюдать явление агглютинации эритроцитов в ходе определения групп крови человека. Вопросы для подготовки к работе: 1. Понятие об агглютининах и агглютиногенах. 2. Системы групп крови животных и человека. 3. Значение определения групп крови для клинической практики. Материальное обеспечение: скарификаторы, предметные стекла, карандаш дли отметок на стекле, две стеклянные палочки, 3 глазные пипетки, стандартные сыворотки (цоликлоны) 1, 2 и 3 групп, спиртовые тампоны, емкости с дез. раствором для утилизации использованных тампонов, скарификаторов и стеклянных инструментов. Ход работы: 1. На чистое предметное стекло нанести три маленьких капли исследуемой крови. 2. Рядом (ни в коем случае не непосредственно в кровь) с первой каплей крови нанести каплю сыворотки первой группы крови (она содержит агглютинины α и β), рядом со второй – каплю сыворотки второй группы (с агглютинином β), рядом с третьей – каплю сыворотки третьей группы (с агглютинином α). Объем капли сыворотки должен быть в несколько раз больше объема капли крови. 3. Тремя разными стеклянными палочками смешать кровь с сыворотками (цоликлонами). 4. Добавить по капле физиологического раствора в каждую каплю и в течение 3-5 минут покачивать стекло и наблюдать за реакцией. 5. В случае возникновения агглютинации в смеси появляются конгломераты эритроцитов, сливающиеся в хлопья, легко видимые невооруженным глазом и выпадающие в осадок. Скорость наступления агглютинации может зависеть от температуры воздуха в лаборатории. 6. Определить групповую принадлежность исходя из следующей таблицы: Группа крови Наличие агглютинации Первая капля Вторая капля Третья капля I (0) II(А) + + III(В) + + IV(АВ) + + + 7. Записать полученный результат в рабочую тетрадь. 35 РАЗДЕЛ V. ФИЗИОЛОГИЯ КРОВООБРАЩЕНИЯ. СЕРДЕЧНОСОСУДИСТАЯ СИСТЕМА Работа № 1. Выслушивание тонов сердца Цель: Выслушать и запомнить звучание звуков (тонов), возникающих при нормальной деятельности сердца, изучить механизм их возникновения. Вопросы для подготовки к работе: 1. Сердечный цикл. 2. Механизм возникновения сердечного толчка и тонов сердца. 3. Частота сердцебиения в покое у здоровых животных разных видов. Материальное обеспечение: тампоны, исследуемый. фонендоскоп или стетоскоп, спиртовые Ход работы: 1. Выслушать сердечные тоны животного, имеющего на занятии или человека в случае отсутствия животного. 2. Если одним фонендоскопом пользуется несколько человек, то необходимо протирать его ушные оливы спиртовым тампоном после каждого использования. 3. Записать в тетрадь слышимые характеристики тонов, возникающих при работе сердца и места их наилучшей слышимости. Отметить громкость, продолжительность, ритмичность, высоту тонов. Соотнести точки наилучшей слышимости с топографией сердца и расположением области сердечного толчка. У лошади систолический тон лучше слышен в пятом межреберье слева на середине нижней третьей грудной клетки, диастолический тон – в четвертом межреберье слева на 2-3 см ниже горизонтальной линии от лопатко-плечевого сустава. У коровы систолический тон – в четвертом межреберье на уровне нижней третьей грудной клетки животного, диастолический тон – на 2-3 см ниже лопатко-плечевого сустава. 36 Работа № 2. Измерение артериального давления Цель: Научиться измерять артериальное давление у животных и человека бескровным методом. Изучить зависимость артериального давления от физической нагрузки. Вопросы для подготовки к работе: 1. Определение давления крови. Систолическое и диастолическое артериальное давление. Пульсовое давление. 2. Факторы, определяющие величину артериального давления. 3. Факторы, способствующие венозному возврату крови к сердцу. Материальное обеспечение: ручной механический тонометр*, фонендоскоп или стетоскоп, спирт, вата, исследуемый. Ход работы: 1. Измерить у испытуемого человека систолическое и диастолическое давление крови в плечевой артерии бескровным методом. Вычислить пульсовое давление как разницу между систолическим и диастолическим. 2. Выполнить приседания и отжимания. 3. Повторно измерить давления. 4. Занести результаты измерений в таблицу: Давление крови в плечевой артерии до и после физической нагрузки. Показатель Систолическое давление, Диастолическое давление, Пульсовое давление, мм.рт.ст. мм.рт.ст мм.рт.ст. До нагрузки После нагрузки 5. Объяснить результат, записав заключение и вывод. 6. В случае наличие на занятии животного, произвести измерение артериального давления в разных сосудах, результаты записать в рабочую тетрадь. __________________________________________________________________ * механический тонометр является более точным прибором по сравнению с автоматическими электронными тонометрами, но менее удобен в работе. Самым точным является ртутный сфигмоманометр Рива-Роччи (в настоящий момент в практике не применяется). 37 Методика измерения артериального давления: Существует два способа измерения артериального давления: кровавый и бескровный. Кровавый метод: в просвет сосуда вводится канюля, трубкой соединенная с манометром. Величина давления и его колебания регистрируются фактически напрямую. Способ более точный, чем бескровный но менее удобный и безопасный. Применяется на сегодняшний день только в научных целях. Бескровный метод: Существует в нескольких разновидностях, но автором современной повсеместно применяемой методики является хирург Военно-медицинской академии Санкт-Петербурга Н.С. Коротков (рис. 1). Метод изобретен в 1905 г. На часть тела, содержащую артерию, в которой производится измерение давления, накладывается манжета тонометра. В нее с помощью груши нагнетается воздух. Как только давление воздуха в манжете становится больше систолического давления в артерии, сосуд сдавливается и кровоток в нем не осуществляется. После этого медленно выпускают воздух из манжеты, одновременно аускультируют артерию с помощью фонендоскопа ниже места пережатия и Рис. 1. Н.С. Коротков. параллельно пальпируют пульс. Как только давление в манжете выровняется с систолическим давлением крови в артерии, в момент каждой систолы кровь станет толчками «протискиваться» по сосуду под манжетой. В этот момент с помощью фонендоскопа начинают выслушиваться ритмичные звуки, называемые тонами Короткова. Одновременно начинает пальпироваться пульс. Показания манометра прибора в данный момент времени будут равны систолическому давлению крови в исследуемой артерии. После этого продолжают выпускать воздух из манжеты. Как только давление воздуха в манжете выровняется с диастолическим давлением крови в артерии, кровь начнет проходить по сосуду не только в систолу, но и в диастолу. Тоны Короткова в этот момент времени исчезают (пульс естественно остается), а показания манометра будут равны диастолическому артериальному давлению. 38 Особенности измерения артериального давления у животных. Лучшим местом для определения артериального давления у лошадей и крупного рогатого скота является хвостовая артерия. Животное при этом фиксируют в станке. На корень хвоста накладывают манжету. Нащупывают пульс в дистальном отделе хвостовой артерии. Нагнетают воздух в манжету, при этом пульсация в артерии прекращается. Постепенно снижают давление манжеты. Момент появления пульса соответствует систолическому давлению в хвостовой артерии. Пальпаторный метод Рива-Роччи (по пульсу) позволяет определить только систолическое давление. У собак и кошек определение давления произвести труднее в силу размеров животного. У крупных собак можно производить определение давления в крупных артериях конечностей пальпаторно (по пульсу), для удобства можно использовать тонометр с педиатрической манжетой. В настоящий момент для измерения артериального давления у собак и кошек используют специальные приборы. Основной принцип их работы тот же – на конечность накладывается манжета. Главной особенностью является регистрация пульсовой волны ниже места пережатия с помощью осциллографии, доплерографии или фотоплетизмографии, так как в большинстве случаев сделать это пальпаторно или с помощью аускультации затруднительно или невозможно. При определении артериального давления следует иметь в виду, что у животных оно имеет не настолько жесткие нормативные величины как у человека, к тому же нельзя забывать, что давление в разных артериях сильно различается, что нужно обязательно иметь в виду при сравнении с нормальными значениями. Работа № 3. Наблюдение движения крови Цель: Визуально пронаблюдать движение крови в сосуде живого организма. Вопросы для подготовки к работе: 1. Функциональные типы сосудов. 2. Особенности движения крови по сосудам. Понятие осевого цилиндра. 3. Объемная и линейная скорости кровотока. Факторы, обуславливающие их величину. Материальное обеспечение: пробковая пластинка, микроскоп, капилляроскоп, осветитель, булавки, марлевая салфетка, 3% раствор эфира, лягушка. Ход работы: 1. Наркотизировать лягушку погружением ее в 3% раствор эфира на 10 мин. 2. Укрепить лягушку на пробковой пластинке так, чтобы перепонка лапки была против отверстия в пластинке. 39 3. При малом увеличении микроскопа найти артериальные и венозные сосуды, ориентируясь по направлению течения крови в них. Для наблюдения кровообращения в сосудах языка пинцетом захватить язык лягушки и растянуть его булавками над отверстием в дощечке. 4. Наблюдают течение крови в артериолах, капиллярах, венулах. 5. Зарисовать видимую картину в рабочую тетрадь. Описать характер движения крови в сосудах разного калибра. Сделать вывод. 6. Провести капилляроскопию у человека. Для этого нанести капельку иммерсионного масла на ногтевое ложе и поместить палец под тубус капилляроскопа. Установить освещение и фокус на самый край ногтевого ложа, найти капилляры и обратить внимание на их форму. При внимательном рассмотрении в отдельных, более широких капиллярах, видно движение крови (эритроцитов) по изгибу концевого капилляра. Зарисовать в тетради несколько капилляров. Отметить артериальную и венозную части концевого капилляра и направление движения крови в нем. Работа № 4. Исследование сердечно-сосудистых рефлексов Цель: Изучить некоторые механизмы регуляции деятельности сердечнососудистой системы, исследовать сердечные рефлексы, выяснить их значение для диагностической и терапевтической практики. Вопросы для подготовки к работе: 1. Внутриклеточные и межклеточные механизмы регуляции миокарда. 2. Внутрисердечная нервная регуляция. 3. Экстракардиальные механизмы регуляции деятельности сердца. Материальное обеспечение: секундомер, заболеваний сердечно-сосудистой системы. испытуемый с работы отсутствием Ход работы: 1. Измерить частоту и характеристики пульса испытуемого за 1 минуту. 2. Исследовать глазосердечный рефлекс Данини-Ашнера. Для этого в течение 5 секунд сквозь верхние веки давить на глазные яблоки. Сразу после этого повторно исследовать частоту пульса. 3. Исследовать влияние пробы Вальсалвы на сердечную дятельность. Для этого подсчитать частоту и исследовать характеристики пульсовой волны до и после сильного натуживания при крытой голосовой щели. 4. Записать в рабочую тетрадь наблюдения, сделать вывод и дать заключение, объяснив полученные данные. 40 Работа № 5. Запись и анализ нормальной электрокардиограммы собаки Цель: Освоить методику записи и анализа электрокардиограммы. Усвоить механизм ее формирования. Вопросы для подготовки к работе: 1. Механизм автоматии миокарда. Определение понятия пейсмекер. 2. Строение, механизмы работы и значение проводящей системы сердца. 3. Механизм возникновения разности потенциалов на поверхности миокарда при его работе. 4. Топографическая анатомия сердца собаки. 5. Нормативные показатели ЭКГ собак. Материальное обеспечение: электрокардиограф, 96 %-ный этиловый спирт, калькулятор, собака. Ход работы: 1. Записать электрокардиограмму. Для этого заземлить электрокардиограф, включить его в сеть. Собаку уложить на стол на правый бок. Закрепить на конечностях электроды: красный – на правой грудной, желтый – на левой грудной, зеленый – на левой тазовой, черный – на правой тазовой конечностях. Места контактов электродов с кожей увлажнить этиловым спиртом. Установить переключатель амплитуды стандартного милливольта в положение «10» или (в зависимости от модели аппарата) поворотом колеса регулировки установить амплитуду 10 мм/мВ. Установить скорость движения бумаги 50 мм/с, кнопку успокоителя в положение «вкл». Одновременно включить подачу бумаги и перевести кнопку успокоителя в положение «выкл», затем несколько раз нажать кнопку «1», записав тем самым амплитуду стандартного милливольта. Выключить подачу бумаги и включить успокоитель. Последовательно записать 3 стандартных и 3 усиленных отведения, переключая соответствующую ручку электрокардиографа. Все переключения производить только при включенном успокоителе. По мере записи каждого отведения проводить их маркировку (если модель кардиографа не позволяет сделать это автоматически). Записать 4 грудных отведения, переключив ручку переключателя отведений в положение «V» и последовательно закрепляя белый электрод в следующих точках грудной стенки животного: для отведения V4 – в шестом межреберье слева на уровне реберно-хрящевой линии, V2L – в шестом межреберье слева у края грудины, V2r – в пятом межреберье справа у края грудины, V10 – над остистым отростком седьмого грудного позвонка. Места контактов электродов с кожей увлажнять спиртом. 2. Выключить кардиограф, отсоединить электроды. На полученной электрокардиограмме отметить дату записи, вид животного, породу, пол, возраст, кличку, скорость движения бумаги. 41 3. Провести анализ полученной электрокардиограммы в следующей последовательности: определить источник водителя ритма; определить частоту сердечных сокращений; измерить продолжительность интервалов и амплитуду зубцов, проанализировать их форму, наличие эктопических очагов в миокарде; определить положение электрической оси сердца (ЭОС). Оформить электрокардиографическое заключение в той же последовательности. В случае наличия ЭКГ – патологии предположить ее возможную причину. ВАЖНО ЗАПОМНИТЬ: электрокардиограмма является отражением только электрической деятельности сердца, в связи с этим поставить окончательный диагноз, проанализировав только одну ЭКГ и не сделав других исследований сердца, в большинстве случаев невозможно! Тем не менее, ЭКГ является важным диагностическим тестом, который может на фоне других исследований значительно облегчить постановку диагноза, а во многих случаях заподозрить первичное заболевание, не связанное с самим сердцем животного, но сопровождающееся вторичным нарушением деятельности сердечно-сосудистой системы. 4. Самостоятельно проанализировать одну из предложенных на занятии электрокардиограмм в порядке, описанном выше. Методика определения положения водителя ритма: проанализировать электрокардиограмму во втором отведении. Синусовый ритм характеризуется правильным чередованием зубцов PQRSТ, равным расстоянием между одинаковыми комплексами соседних циклов. При перемещении пейсмекера в атриовентрикулярный узел сохраняется правильная форма комплекса QRS, зубец Р исчезает. Желудочковый ритм характеризуется деформацией, расширением комплекса QRS и замедлением частоты сердечных сокращений. При анализе ритма необходимо учитывать, что у ряда собак в качестве физиологической особенности могут наблюдаться миграция водителя ритма («блуждающий пейсмекер») и дыхательная аритмия. Последняя наиболее характерна для собак брахицефалических пород. Методика расчета частоты сердечных сокращений (за минуту). При скорости движения бумаги 25 мм/с разделить 1500 на расстояние в мм между двумя одинаковыми зубцами соседних циклов (удобнее рассчитывать расстояние между зубцами R). При скорости движения бумаги 50 мм/с на тот же параметр разделить 3000. Определение положения электрической оси. Примерное определение положения ЭОС: среди стандартных отведений найти то, в котором алгебраическая сумма амплитуд зубцов комплекса QRS максимальна. ЭОС примерно будет совпадать с осью этого отведения. Например, на рисунке 2 схематично изображены фрагменты трех стандартных отведений ЭКГ собаки. 42 Рис. 2. Схематическое изображение фрагментов электрокардиограммы собаки в трех стандартных отведениях. Подсчитаем алгебраическую сумму амплитуд зубцов комплекса QRS во всех указанных отведениях. Она составит: в первом отведении -2+4=+2 мм, во втором -2+9-1=+6 мм, в третьем -1,5+6=4,5 мм. Как видно, максимальная сумма амплитуд получена во втором отведении, значит, положение электрической оси близко к положению оси этого отведения, при этом, поскольку сумма имеет положительное значение, ЭОС направлена в сторону положительного полюса оси второго отведения, то есть приблизительно находится в районе +60º. Более понятным результат становится при соотнесении полученных данных с шестиосевой системой координат Бейли. Точное определение положения ЭОС: начертить на бумаге шестиосевую систему координат Бейли (рис. 3). На оси каждого из трех стандартных отведений отложить алгебраическую сумму амплитуд зубцов с Рис. 3. Шестиосевая система координат Бейли с примером графического способа определения положения ЭОС. 43 учетом знака. Из каждой полученной точки провести перпендикуляр. Все три полученных таким образом перпендикуляра сойдутся в одной точке. Соединить эту точку с точкой пересечения осей отведений. Вектор, направленный из этой точки в точку пересечения перпендикуляров (стрелка на рисунке), и будет показывать положение электрической оси сердца. В большинстве случаев у здоровых собак положение ЭОС находится в диапазоне от +30 до +120. В приведенном примере положение ЭОС составляет +70°. Необходимо лишь отметить, что размерность отрезков, откладываемых по осям отведений, значения не имеет, а алгебраическую сумму амплитуд зубцов комплекса QRS можно вычислять не только в миллиметрах, как в приведенном примере, но и в милливольтах, на точность результата это не влияет. 44 РАЗДЕЛ VI. ФИЗИОЛОГИЯ ДЫХАНИЯ Работа № 1. Спирометрия Цель: Измерить емкости и объемы легких. Вопросы для подготовки к работе: 1. Функции органов системы внешнего дыхания. 2. Частота дыхания в покое у здоровых животных разных видов. 3. Определения понятий: дыхательный объем, резервный объем вдоха, резервный объем выдоха, жизненная емкость легких (ЖЁЛ), остаточный объем, общая емкость легких, воздух мертвого пространства, ателектаз. 4. Факторы, определяющие величину ЖЁЛ. 5. Механизм вдоха и выдоха. Материальное обеспечение: спирометр, спиртовые тампоны. Ход работы: 1. Подготовить спирометр к работе – заполнить водой, проверить подвижность внутреннего цилиндра, протереть трубку спиртом. 2. Не глядя на шкалу спирометра, сделать спокойный вдох через нос, а выдох, также спокойный, через рот в трубку аппарата. Сделать 3 вдоха и выдоха. Затем указанный на приборе объем воздуха разделить на количество выдохов. Результат – дыхательный объем. 3. Поставить спирометр в исходное положение. Соблюдать прежнюю глубину вдоха через нос и произвести максимальный выдох через рот в спирометр. Отметить показание прибора, вычесть из этого значения величину дыхательного объема. Результат – резервный объем выдоха. 4. Развернуть плечи, откинуть голову назад и сделать максимальный вдох, а затем – максимальный выдох в спирометр. Отеттить показание прибора. Результат – жизненная емкость легких. 5. Отнять от жизненной емкости легких сумму дыхательного и резервного объема выдоха. Результат – резервный объем вдоха (дополнительный объем). 6. Записать результаты работы в рабочую тетрадь и сделать выводы. 7. Получить у преподавателя номер одного из нижеприведенных вопросов* и дать на него развернутый письменный ответ. __________________________________________________________________ * авторы вопросов: Казаков, В.Н. Физиология в задачах. Учебное пособие для студентов вузов / В.Н. Казаков, В.А. Леках, Н.И. Тарапата. – Ростов-на-Дону: «Феникс». – 1996. – 409 с. 45 1. Широко известен факт, что предварительное интенсивное дыхание (гипервентиляция) позволяет продлить время погружения. Однако при этом международная федерация фридайвинга (ныряние без акваланга) перед очередным «нырком» крайне не рекомендует делать более 4 предварительных глубоких вдохов. Почему? 2. В последние годы получил распространение фридайвинг – погружение без акваланга. При этом в ходе погружения иногда наблюдается явление «блэкаута» – внезапной потери сознания. Самым интригующим является тот факт, что блэкаут наступает в конце всплытия, когда до поверхности остается всего 4 – 5 метров. Попытайтесь объяснить механизм этого явления. 3. Кто из двух спорящих прав? Один утверждает: «легкие расширяются и поэтому в них входит воздух», второй: «воздух входит в легкие и поэтому они расширяются». 4. Как изменится разница в процентном составе выдыхаемого и альвеолярного воздуха, если человек будет дышать в противогазе? 5. Вследствие отравления барбитуратами у больного резко понизилась чувствительность нейронов дыхательного центра к углекислому газу. В этих условиях врач решил назначить дыхание чистым кислородом. Согласны ли вы с таким решением? 6. У одной собаки производят искусственный вдох (насильственное растяжение альвеол воздухом). У другой собаки перерезают блуждающие нервы и раздражают их центральные отрезки. Будут ли наблюдаться различия в дыхательных реакциях обеих собак? 7. Человеку необходимо пройти по дну водоема. В такой ситуации, если отсутствуют специальные приспособления, дышат через трубку, конец которой выходит из воды. Имеется три трубки. Длина каждой 1 метр, а внутренний диметр соответственно 68 мм, 30 мм, 5 мм. Какую трубку нужно использовать. Обоснуйте Ваш ответ соответствующим расчетом. 8. Чемпионы по нырянию погружаются на глубину до 100 м без акваланга и возвращаются на поверхность за 4 – 5 минут. Почему у них не возникает кессонная болезнь? 9. Известны патологические состояния, связанные с ухудшением диффузии кислорода через альвеолярно-капиллярную мембрану. Этого не наблюдается в отношении углекислого газа. Почему? 10. Здорового жителя горного района обнаружено повышенное содержание в крови эритроцитов. Можете ли Вы сказать, на какой примерно высоте находится этот район? 11. При содержании в крови всего 0,3 % кислорода его напряжение соответствует парциальному давлению этого газа в альвеолярном воздухе и, следовательно, устанавливается равновесие. Тем не менее, в кровь продолжает поступать значительное количество кислорода. С чем это связано? 12. На вопрос «в чем заключается функция дыхательного центра?» некоторые студенты отвечают, что «он посылает импульсы в легкие». Это ,конечно, неверно. Дыхательный центр посылает нервные импульсы в дыхательные мышцы. А правильно ли утверждение «дыхательный центр связан с легкими»? 13. В опыте на курарезированном кролике осуществляется искусственное дыхание (вопрос первый – почему?). Однако экспериментатор не может знать истинные потребности организма в кислороде в каждый конкретный момент. Можно ли поставить эксперимент так, чтобы искусственное дыхание было оптимальным (точно соответствовало потребностям организма)? Чисто технические трудности во внимание не принимать. 14. Если у новорожденного при перевязке пуповины затягивать лигатуру очень медленно, то первый вздох может не наступить, и животное погибнет. Почему? 46 РАЗДЕЛ VII. ОБМЕН ВЕЩЕСТВ И ЭНЕРГИИ Работа №1. Расчет основного обмена человека Цель: освоить табличный и аналитический методы определения величины основного обмена человека в зависимости от пола, возраста, роста и массы тела. Вопросы для подготовки к работе: 1. Дать определение понятиям: обмен веществ, анаболизм, катаболизм, основной обмен, калориметрия, дыхательный коэффициент, калорический эквивалент кислорода. 2. Принципы прямой и непрямой калориметрии. Материальное обеспечение: таблицы для расчета основного обмена, весы, калькулятор. Ход работы: 1. Определите массу тела и рост испытуемого. Если взвешивание производилось в одежде, то полученный результат следует уменьшить на 5 кг для мужчин и на 3 кг для женщин. 2. Используя таблицы, определите величину основного обмена испытуемого. 3. Вычислите величину основного обмена (ОО, ккал/сут) испытуемого по формуле (Harris, Benedict, 1919): для мужчин: ОО = 66.5 + 13.8хМ + 5.0хР - 6.8хВ, для женщин: ОО = 65.5 + 9.6хМ + 1.8хР - 4.7хВ, где М - масса тела (кг), Р - рост (см), В - возраст (полных лет). 4. Запишите полученные результаты в виде таблицы: Масса тела, кг Рост, см Возраст, лет Пол Основной обмен, ккал/сут по таблице по формуле 5. Переведите величину основного обмена в систему СИ, для этого используйте соотношение: 1 ккал равна 4.19 кДж. 6. Проанализируйте полученные результаты (сопоставьте величину основного обмена, полученную с помощью таблицы, с результатом, найденным по формуле). 7. Сделайте вывод. 47 Таблица для расчета основного обмена мужчин (ОО = А + В (ккал); 1 ккал = 4,19 кДж) А Масс а, кг 44 45 46 47 48 49 50 51 52 53 54 55 56 57 58 59 60 61 62 63 64 65 66 67 68 69 70 71 72 73 74 75 76 77 78 79 80 81 82 83 84 Кк ал 672 685 699 713 727 740 754 768 782 795 809 823 837 850 864 878 892 905 919 933 947 960 974 988 1002 1015 1029 1043 1057 1070 1084 1098 1112 1125 1139 1153 1167 1180 1194 1208 1222 В Ма сса , кг 85 86 87 88 89 90 91 92 93 94 95 96 97 98 99 100 101 102 103 104 105 106 107 108 109 110 111 112 113 114 115 116 117 118 119 120 121 122 123 124 Кк ал Рост, см Мужчины (возраст в годах) 17 1235 1249 1263 1277 1290 1304 1318 1332 1345 1359 1373 1387 1406 1414 1428 1442 1455 1469 1483 1497 1510 1524 1538 1552 1565 1579 1593 1607 1620 1634 1648 1662 1675 1689 1703 1717 1730 1744 1758 1772 40 44 48 52 56 60 64 68 72 76 80 84 88 92 96 100 104 108 112 116 120 124 128 132 136 140 144 148 152 156 160 164 168 172 176 180 184 188 192 196 200 113 153 193 233 273 313 353 393 433 473 513 553 593 633 673 713 743 773 803 823 843 863 883 903 923 19 128 168 208 248 288 328 368 408 448 488 528 568 608 648 678 708 738 768 788 808 828 848 868 888 908 21 23 25 27 29 31 33 619 669 659 679 699 719 729 759 779 799 819 839 859 605 625 645 665 685 705 725 745 765 785 805 825 845 592 612 631 652 672 692 718 732 752 772 792 812 832 578 598 618 638 658 678 698 718 738 758 778 798 818 565 585 605 625 645 665 685 705 725 745 765 785 805 551 571 591 611 631 651 671 691 711 731 751 771 791 538 558 578 598 618 638 658 678 698 718 738 758 778 35 524 544 564 584 604 624 644 664 684 704 724 744 764 48 Таблица для расчета основного обмена женщин (ОО = А + В (ккал); 1 ккал = 4,19 кДж) А Масс а, кг 44 45 46 47 48 49 50 51 52 53 54 55 56 57 58 59 60 61 62 63 64 65 66 67 68 69 70 71 72 73 74 75 76 77 78 79 80 81 82 83 84 Кк ал 1076 1085 1095 1105 1114 1124 1133 1143 1152 1162 1172 1181 1191 1200 1210 1219 1229 1238 1248 1258 1267 1277 1286 1296 1305 1315 1325 1334 1344 1353 1363 1372 1382 1391 1401 1411 1420 1430 1439 1449 1458 В Ма сса , кг 85 86 87 88 89 90 91 92 93 94 95 96 97 98 99 100 101 102 103 104 105 106 107 108 109 110 111 112 113 114 115 116 117 118 119 120 121 122 123 124 Кк ал Рост, см Женщины (возраст в годах) 17 1468 1478 1487 1497 1506 1516 1525 1535 1544 1554 1564 1573 1585 1592 1602 1661 1621 1631 1640 1650 1659 1669 1678 1688 1698 1707 1717 1726 1736 1745 1755 1764 1774 1784 1793 1803 1812 1822 1831 1841 40 44 48 52 56 60 64 68 72 76 80 84 88 92 96 100 104 108 112 116 120 124 128 132 136 140 144 148 152 156 160 164 168 172 176 180 184 188 192 196 200 -21 -5 11 27 43 59 75 101 107 123 139 155 171 187 201 215 229 243 255 267 279 291 303 313 322 333 19 21 23 25 27 29 31 33 -14 2 18 34 50 66 82 98 114 130 146 162 178 192 206 220 234 246 258 270 282 294 304 314 324 334 183 190 198 205 213 220 227 235 242 250 257 264 272 174 181 188 196 203 211 218 225 233 240 248 255 262 164 172 179 186 194 201 209 216 223 231 238 246 253 155 162 170 177 184 192 199 207 214 221 229 236 244 146 153 160 168 175 183 190 197 204 215 220 227 234 136 144 151 158 166 173 181 188 195 203 210 218 225 127 134 142 149 156 164 171 179 186 193 201 208 216 35 117 125 132 140 147 154 162 169 177 184 191 199 206 49 Работа № 2. Вычисление степени отклонения основного обмена по формуле Рида Цель: определить величину отклонения основного обмена от нормы. Вопросы для подготовки к работе: 1. Факторы, определяющие величину основного обмена. 2. Условия проведения определения интенсивности основного обмена. Материальное обеспечение: тонометр, калькулятор. Ход работы: 1. У испытуемого подсчитать частоту пульса и измерить артериальное давление (по способу Короткова) 3 раза подряд с промежутками в 2-3 мин. Вычислить величину пульсового давления. 2. Записать полученные результаты в виде таблицы: Номер Частота Артериальное давление, мм рт. ст. наблюдения пульса систолическое диастолическое пульсовое 1 2 3 3. Вычислите степень отклонения основного обмена от нормы по формуле Рида: СО = 0.75 (ЧП + ПД 0.74) - 72, где СО - степень отклонения (%), ЧП - частота пульса (уд/мин), ПД - пульсовое давление (мм рт. ст.) 4. Проанализировать полученные результаты. Сравнить степень отклонения, вычисленную по формуле Рида, с допустимой величиной. Вычислить, сколько ккал (кДж) составляет определенная в исследовании степень отклонения. Отклонение величины основного обмена до 10% считается нормальным (допустимым). Поскольку в учебной лаборатории обычно не соблюдаются условия, необходимые для определения основного обмена, то результаты, полученные в исследовании, будут лишь приблизительно отражать уровень обмена испытуемого. 5. Сделать вывод. 50 Работа №3. Расчет должного минутного объема кровообращения по величине основного обмена Цель: Определить нормальное значение минутного объема кровообращения. Вопросы для подготовки к работе: 1. Дать определения понятиям: минутный объем систолический объем. 2. Нейрогуморальная регуляция основного обмена. кровообращения, Ход работы: 1. Поделить найденную по таблицам Гарриса-Бенедикта величину основного обмена на средний калорийный эквивалент кислорода 4,88 и привести все к минуте, определив тем самым должную величину минутного объема сердца в литрах: ДМО= основной обмен/(4,88×0,06×24×60)=основной обмен/422 2. Записать результат в рабочую тетрадь, сделать вывод. Работа № 4. Расчет должного минутного объема дыхания (МОД), должного потребления кислорода и должной ЖЁЛ. Сравнение найденных показателей с фактическими Цель: Определить нормальные индивидуальные физиологические показатели системы внешнего дыхания, используемые для сравнения с фактическими данными в диагностических целях. Вопросы для подготовки к работе: 1. Физиологические объемы легких. 2. Минутный объем дыхания и факторы, определяющие его величину. 3. Методика спирометрии. Ход работы: 1. Рассчитать должную величину МОД по формуле. Должный основной обмен, определенный по таблицам Гарриса-Бенедикта, взять из работы №1. Должный МОД = (Должный основной обмен ккал/сутки)/7,0740 Обычно минутный объем дыхания взрослого человека составляет от 4 до 10 л. 51 2. Рассчитать потребление кислорода (ПО2), которое в основных условиях составляет от 160 до 300 мл в минуту. Расчет должного ПО2 производится по формуле: Должное ПО2 = Должный основной обмен / 7,07 3. Жизненная емкость легких у здоровых составляет от 2.5 до 7.5 л, такой разброс в значениях требует обязательного использования должных величин. Должная ЖЁЛ рассчитывается по формуле: Должная ЖЕЛ = Должный основной обмен 3,0 (для мужчин). Должная ЖЕЛ = Должный основной обмен 2,6 (для женщин). 4. После расчета сравнить найденную величину должной ЖЁЛ с реальными данными, полученными ранее в работе «Спирометрия», сделать вывод. 52 РАЗДЕЛ VIII. ФИЗИОЛОГИЯ ВЫДЕЛЕНИЯ Работа № 1. Получение мочи у животных и исследование ее органолептических свойств Цель: Освоить способы получения мочи животных для лабораторного исследования и физические характеристики мочи животных разных видов. Вопросы для подготовки к работе: 1. Механизмы образования мочи. Почечные ультрафильтрация, канальцевые реабсорбция, экскреция, секреция. 2. Механизмы выведения мочи. Материальное обеспечение: станки для фиксации, катетеры, мочеприемники, дезинфицирующие растворы, стерильные вазелин или масло, мерные цилиндры, посуда для сбора мочи. Объект исследования: животные крупные и мелкие (крупный рогатый скот, собака, кошка). Ход работы: 1. Однократно порцию мочи обычно собирают в период мочеиспускания, которая у коров чаще всего бывает утром после их подъема. Процесс мочеиспускания зачастую (но не всегда) можно вызвать рефлекторно, например, создавая звук льющейся воды. Главные недостатки метода – не всегда возможно получить мочу в произвольный момент времени, а также попадание в мочу загрязнения с кожи животного (например, элементов подстилки), что неприемлемо для некоторых исследований, например бактериологического анализа. 2. Получение мочи с помощью катетеризации. Для этого животное необходимо зафиксировать, а в мочеполовой канал ввести стерильный катетер различной конструкции в зависимости от вида и пола животного. Катетер предварительно можно смазать стерильным вазелином, а наружные участки мочеполовых путей очистить и обработать дезинфицирующим раствором; 3. Сбор мочи в течение суток производят в станках с помощью специальных приемников, фиксируемых к области мочеиспускательного канала. Из общего объема собранной мочи отбирают среднюю пробу и производят ее исследование. 4. Охарактеризовать цвет, запах, консистенцию, прозрачность полученной пробы, отметить наличие видимого осадка и его характер. Записать в рабочую тетрадь полученные наблюдения. Цвет определяется в отраженном дневном свете на белом фоне. Консистенция определяется при аккуратном переливании жидкости из сосуда в сосуд тонкой струйкой. При определении цвета и запаха необходимо отметить не только их качественную характеристику, но и интенсивность. Например, 53 недостаточно указать, что цвет просто желтый, необходимо отметить светло-желтый, интенсивно-желтый и т.д. Работа № 2. Определение удельного веса мочи Цель: Научиться определять удельный вес мочи, усвоить значение этого параметра для клинической практики. Вопросы для подготовки к работе: 1. Физические свойства мочи. 2. Факторы, определяющие величину плотности мочи. 3. Суточные колебания плотности мочи. 4. Механизм концентрации мочи. Поворотно-противоточный механизм. 5. Физиологические эффекты альдостерона и антидиуретического гормона. 6. Значение определения плотности мочи для клинической практики. Материальное обеспечение: свежая моча животного, урометр, стеклянный цилиндр, термометр, поваренная соль. Ход работы: 1. В цилиндр аккуратно по стенке, не допуская вспенивания, налить мочу. 2. С помощью термометра определить температуру мочи. 3. Аккуратно опустить в цилиндр с мочой урометр, не допуская его прикосновений ко дну и стенкам цилиндра. Отпускать урометр следует осторожно, поскольку при падении он может удариться в дно цилиндра и разбить его. 4. Отметить значение шкалы урометра, соответствующее нижнему мениску жидкости. 5. Если температура мочи будет ниже 15ºС, необходимо прибавить к величине показания шкалы урометра 0,001 г/мл на каждые три градуса, и наоборот, при температуре мочи выше 15ºС следует вычесть из показания шкалы урометра 0,001 г/мл на каждые три градуса. 6. Записать полученный результат, сравнить его с нормативным. 7. Постепенно добавлять поваренную соль в мочу, проследить за изменением показаний урометра. 8. Записать наблюдения, сделать выводы, в том числе о влиянии концентрации солей на плотность мочи. 54 Работа № 3. Определение рН мочи, полуколичественное определение содержания белка, глюкозы, кетоновых тел, крови, гемоглобина, билирубина, уробилиногена. Цель: Освоить работу с тестовыми полосками для полуколичественного анализа мочи. Вопросы для подготовки к работе: 1. Состав мочи животных разных видов. 2. Значение исследования состава мочи для клинической практики. Оборуование и реактивы: свежая моча животного, тестовые полоски для анализа мочи. Ход работы: 1. Открыть футляр с тестовыми полосками, извлечь полоску и закрыть футляр. Держать упаковку в открытом состоянии не допускается. 2. Конец полоски с нанесенным индикаторным элементом опустить в пробу мочи на 2-3 секунды, извлечь, после чего провести ребром полоски по краю сосуда с мочой, а затем саму полоску положить на чистую ровную поверхность индикаторным элементом верх. Прикасаться к индикатору любыми предметами категорически недопустимо. 3. Через 1-2 минуты сравнить цвет индикаторного элемента с цветом шкалы нанесенной на футляр, отметить и записать результат. 4. Аналогичным образом с каждой пробой мочи провести определение рН, количества глюкозы, белка, кетоновых тел, билирубина, уробилиногена, крови (эритроцитов), гемоглобина. Результаты занести в рабочую тетрадь, сделать наблюдение и вывод, сравнив полученные данные с физиологическими нормами. В случае обнаружения отклонений сделать предположение относительно их происхождения. Обратите внимание определение крови и гемоглобина производится одним и тем же индикаторным элементом. Результат учитывается не только по цвету, но и по равномерности его распределения по квадрату индикатора. Работа № 4. Исследование осадка мочи Цель: Изучить содержимое осадка мочи здорового животного. Вопросы для подготовки к работе: 1. Состав осадка мочи. 2. Значение исследования осадка мочи для клинической практики. Материальное обеспечение: свежая проба мочи, лабораторная центрифуга, центрифужные пробирки, предметные стекла, покровные стекла, стеклянные пипетки, микроскоп, набор карандашей. 55 Ход работы: 1. Центрифугировать пробу мочи (10 мл в конической центрифужной пробирке) в течение 10 минут при 3000 оборотах центрифуги в минуту. 2. Аккуратно слить надосадочную жидкость, стеклянной пипеткой отобрать каплю центрифугата на предметное стекло, накрыть покровным и рассмотреть под малым и большим увеличением микроскопа. 3. Зарисовать полученную картину, сделать необходимые обозначения. Сделать заключение и вывод, сравнив полученный результат с нормой. В случае отклонения от нормальных величин или обнаружения элементов, отстуствующих в норме сделать предположение об их происхождении. Работа № 5. Количественное определение глюкозы в моче и других биологических жидкостях Цель: Освоить способ количественного определения глюкозы в моче. Вопросы для подготовки к работе: 1. Механизмы канальцевой реабсорбции глюкозы. 2. Значение определения количества глюкозы в моче для клинической практики. 3. Основные принципы калориметрического анализа. Материальное обеспечение: набор реагентов для определения концентрации глюкозы в биологических жидкостях энзиматическим колориметрическим методом, ФЭК, стеклянные пробирки, пипетки, кюветы для колориметрии с толщиной поглощающего слоя 5 мм. Ход работы*: 1. Содержимое одного флакона № 2 (лиофилизат) аккуратно перемешивая, растворить в одном флаконе № 1 (буфер). Для получения более достоверных результатов рекомендуется выдержать готовый раствор при комнатной температуры в течение получаса. Полученный реагент стабилен не менее 6 месяцев при температуре хранения 2-4ºС. 2. Для проведения анализа необходимо приготовить опытную, контрольную и калибровочную пробы. 3. Опытная проба: смешать 0,01 мл мочи и 2 мл рабочего реагента 4. Калибровочная проба: смешать 2 мл рабочего раствора и 0,01 мл реагента № 3 (калибратор с заранее известным содержанием глюкозы – 10 ммоль/л). 5. Контрольная проба: 2 мл рабочего реагента. 6. Реакционную смесь тщательно перемешать и инкубировать не менее 10 минут при 37 ºС или 15 минут при комнатной температуре. __________________________________________________________________ * ход работы приведен для набора реагентов «Глюкоза – Витал». 56 7. Измерить оптическую плотность опытной и калибровочной проб против контрольной в кюветах с толщиной поглощающего слоя 5 мм при длине волны 510 нм (в случаен использования ФЭКа – 490 нм). 8. Произвести расчет концентрации глюкозы по формуле: С=Ео/Ест х 10, где Ео – экстинкция (показание прибора) при анализе опытного образца, Ест – экстинкция стандарта (калибровочной пробы). 9. Записать полученные результаты в лабораторную тетрадь, сделать вывод. 10. При мытье посуды для анализа нельзя пользоваться моющими растворами, содержащими перекись водорода, а также диэтиловый эфир. 11.С теми же реагентами можно провести качественное определение глюкозы в моче. Для этого к 0,5 мл рабочего раствора необходимо добавить 0,01 мл мочи. Появление розового окрашивания в течение 15 минут при комнатной температуре свидетельствует о наличие в пробе глюкозы. 57 РАЗДЕЛ IX. РУКОВОДСТВО К ПРАКТИЧЕСКИМ ЗАНЯТИЯМ НА УЧЕБНО-ОПЫТНОЙ КОНЮШНЕ Работа № 1. Оценка физиологического статуса животных. Исследование физиологии систем органов. Цель: изучить правила безопасности при работе с животными, освоить основные приемы оценки физиологического статуса животных, исследовать и запомнить физикальные характеристики работы органов и систем здорового животного. Вопросы для подготовки к работе: 1. Правила техники безопасности при работе с лошадьми и баранами. 2. Основные физиологические константы здоровых животных. 3. Основные приемы клинического обследования систем органов. Ход работы: 1. Распечатать нижеприведенный бланк практической работы *. 2. Следуя указаниям преподавателя и плану, изложенному в бланке, провести обследование животного. Результаты обследования занести в бланк. 3. Предоставить бланк на проверку преподавателю. ________________________________________________________________ * указанный план представляет сильно упрощенный вариант порядка обследования животного, принятого в клинической диагностике, поскольку преследует цель изучить нормальные параметры работы систем органов, а не поиск патологии. В связи с этим указанный бланк не является полной схемой обследования животного, принятой в клинической диагностике, хоть и по возможности опирается на нее. При проведении работы возможно и желательно пользоваться методическими руководствами для клинической диагностики. 58 ФИО студента: _________________________________ группа: __________ Оценка физиологического статуса здоровых животных. Исследование физикальных характеристик работы основных органов и систем организма животных Цель: Освоить основные приемы оценки физиологического статуса животных, исследовать и запомнить физикальные характеристики работы органов и систем здорового животного. ПРОТОКОЛ ОБСЛЕДОВАНИЯ: Вид животного: ____________________________________________________ Кличка: ___________________________________________________________ Возраст: __________________________________________________________ Пол: ______________________________________________________________ Масть: ____________________________________________________________ Порода: ___________________________________________________________ Дата и время обследования: __________________________________________ Клинический статус Ректальная температура: ______ ºС Частота пульса: ________ уд/мин Частота дыхания: ______ движений в минуту Положение тела в пространстве: ______________________________________ __________________________________________________________________ Упитанность: ______________________________________________________ Темперамент: ______________________________________________________ Тип конституции: __________________________________________________ Исследование кожи (характер поверхности, цвет, температура, влажность, целостность, чувствительность, эластичность, запах): ____________________ __________________________________________________________________ __________________________________________________________________ __________________________________________________________________ __________________________________________________________________ __________________________________________________________________ __________________________________________________________________ Состояние кожного покрова (цвет, блеск, чистота, эластичность, густота, прочность удержания в волосяных фолликулах):_________________________ __________________________________________________________________ __________________________________________________________________ __________________________________________________________________ __________________________________________________________________ __________________________________________________________________ 59 Лимфатические узлы – подчелюстные и коленной складки (размер, форма, подвижность, пальпируемый характер поверхности, температура, чувствительность): _________________________________________________ __________________________________________________________________ __________________________________________________________________ __________________________________________________________________ __________________________________________________________________ __________________________________________________________________ __________________________________________________________________ Состояние конъюнктивы, слизистых оболочек носовой, ротовой полости и влагалища (цвет, целостность, характер поверхности, влажность): __________________________________________________________________ __________________________________________________________________ __________________________________________________________________ __________________________________________________________________ __________________________________________________________________ Исследование сердечно-сосудистой системы Осмотр области сердца (осмотр и пальпация области сердечного толчка, локализация сердечного толчка): ______________________________________ __________________________________________________________________ __________________________________________________________________ __________________________________________________________________ __________________________________________________________________ __________________________________________________________________ Аускультация области сердца (характер сердечных тонов): _______________ __________________________________________________________________ __________________________________________________________________ __________________________________________________________________ __________________________________________________________________ __________________________________________________________________ Исследование пульса и артерий (ритмичность, напряжение, наполнение с указанием артерии): ________________________________________________ __________________________________________________________________ __________________________________________________________________ __________________________________________________________________ Исследование вен (эластичность и пульсация яремных вен, результаты осмотра и пальпации видимых вен конечностей): ________________________ __________________________________________________________________ __________________________________________________________________ __________________________________________________________________ 60 Исследование дыхательной системы Состояние носовой полости (состояние отверстий носа, консистенция, цвет, запах и объем истечений): ___________________________________________ __________________________________________________________________ __________________________________________________________________ __________________________________________________________________ Тип дыхания: ______________________________________________________ Ритм дыхания: _____________________________________________________ Глубина дыхания:___________________________________________________ Симметричность дыхания: ___________________________________________ Результаты перкуссии границ легких: Линия маклока Слева Справа номер межреберья номер межреберья Линия седалищного бугра номер межреберья номер межреберья Линия плечевого сустава номер межреберья номер межреберья Характеристика перкуторного звука: __________________________________ __________________________________________________________________ __________________________________________________________________ Аускультация грудной клетки, тип дыхания (везикулярное, нежное везикулярное, усиленное везикулярное, бронхиальное дыхание, наличие хрипов): ___________________________________________________________ __________________________________________________________________ __________________________________________________________________ Исследование пищеварительной системы Прием корма (аппетит, описание приема корма): ________________________ __________________________________________________________________ __________________________________________________________________ __________________________________________________________________ __________________________________________________________________ Состояние ротовой полости (состояние десен, губ, щечных поверхностей, запах, влажность): __________________________________________________ __________________________________________________________________ __________________________________________________________________ __________________________________________________________________ __________________________________________________________________ Язык (цвет, влажность, чувствительность, состояние уздечки): ____________ __________________________________________________________________ __________________________________________________________________ 61 Зубы (количество, характер стирания, целостность, правильность прикуса, состояние небной занавески): ________________________________________ __________________________________________________________________ __________________________________________________________________ __________________________________________________________________ Жевание (активность, характер, продолжительность и количество жевательных движений): ____________________________________________ __________________________________________________________________ __________________________________________________________________ Саливация: ________________________________________________________ __________________________________________________________________ Исследование живота (конфигурация, симметричность, напряженность, чувствительность):__________________________________________________ __________________________________________________________________ __________________________________________________________________ Частота сокращений рубца у барана: ___________ сокращений за 3 минуты Кишечник (звуки при перкуссии и аускультации в области тонкого и толстого кишечника с указанием отделов): _____________________________ __________________________________________________________________ __________________________________________________________________ __________________________________________________________________ __________________________________________________________________ __________________________________________________________________ Акт дефекации (поза, частота, характер): _______________________________ __________________________________________________________________ __________________________________________________________________ Кал (количество, форма, консистенция, цвет, запах, наличие примесей, отхождение газов): _________________________________________________ __________________________________________________________________ __________________________________________________________________ __________________________________________________________________ Исследование мочевыделительной системы Состояние наружных половых органов: ________________________________ __________________________________________________________________ __________________________________________________________________ __________________________________________________________________ 62 Акт мочеиспускания (поза, частота, количество выделенной мочи): ________ __________________________________________________________________ __________________________________________________________________ Исследование мочи (цвет, запах, прозрачность, консистенция, определение рН, полуколичественное определение содержания белка, кетоновых тел, глюкозы, билирубина, уробилиногена, гемоглобина, крови): ______________ __________________________________________________________________ __________________________________________________________________ __________________________________________________________________ __________________________________________________________________ __________________________________________________________________ Исследование нервной системы Поведение (общее состояние, поза тела, общий характер реакций на внешние воздействия): ______________________________________________________ __________________________________________________________________ __________________________________________________________________ __________________________________________________________________ __________________________________________________________________ Состояние костей черепа и позвоночного столба (конфигурация, плотность, чувствительность): _________________________________________________ __________________________________________________________________ __________________________________________________________________ __________________________________________________________________ __________________________________________________________________ Глаза (прозрачность и чистота глазных сред, состояние век, зрачков, в том числе реакция на свет): ______________________________________________ __________________________________________________________________ __________________________________________________________________ __________________________________________________________________ __________________________________________________________________ __________________________________________________________________ Слух (целостность и конфигурация ушных раковин, местная температура, чувствительность, реакция животного на шумы): ________________________ __________________________________________________________________ __________________________________________________________________ __________________________________________________________________ __________________________________________________________________ __________________________________________________________________ 63 Общая и местная болевая и тактильная чувствительность (реакция животного на прикосновение, надавливание и уколы кожи различных участков тела): __ __________________________________________________________________ __________________________________________________________________ __________________________________________________________________ __________________________________________________________________ __________________________________________________________________ Состояние соматических рефлексов (холки и брюшного): _________________ __________________________________________________________________ __________________________________________________________________ __________________________________________________________________ __________________________________________________________________ __________________________________________________________________ Состояние вегетативных рефлексов (глазо-сердечный): ___________________ __________________________________________________________________ __________________________________________________________________ __________________________________________________________________ 64 РЕКОМЕНДУЕМАЯ ЛИТЕРАТУРА 1. Ноздрачев, А.Д. Начала физиологии / А.Д. Ноздрачев и др. – С-Пб. – 2001. 2. Ноздрачев, А.Д. Общий курс физиологии человека и животных / А.Д. Ноздрачев и др. – 1991. 3. Скопичев, В.Г. Физиология животных и этология / В.Г. Скопичев и др. – М.: КолосС, 2003. – 720 с. 4. Лысов, В.Ф. Основы физиологии и этологии животных / В.Ф. Лысов, В.И. Максимов. – М.: КолосС, 2004. – 248 с. 5. Голиков, А.Н. Физиология сельскохозяйственных животных / А.Н. Голиков и др. – М.: Агропромиздат, 1991. – 432 с. 6. Георгиевский, В.И. Физиология сельскохозяйственных животных / В.И. Георгиевский и др. – М.: Агропромиздат, 1990. – 511с. 7. Физиология человека в 3-х томах / под ред. Р. Шмидта, Г. Тевса. – М.: «Мир», 1996. 8. Шмидт-Ниельсен, К. Физиология животных. Приспособление и среда / перевод Гроздовой М.Д., Рожковой Г.И., под ред. и с предисл. Е.М. Крепса. – М.: «Мир», 1982. – 416. 9. Шеперд, Г. Нейробиология. В двух томах / под ред. Д.А. Сахарова. – М.: «Мир», 19887. 10.Албертс, Б. Молекулярная биология клетки / Б. Альбертс и др. – М.: Мир. – 1994. 11.Методы ветеринарной клинической лабораторной диагностики. Справочник / под ред. И.П. Кондрахина. – М.: КолосС, 2004. – 520 с. 12.Георгиевский, В.И. Практическое руководство по физиологии сельскохозяйственных животных. Учебное пособие для с.-х. вузов / В.И. Георгиевский. – М.: «Высш. школа», 1976. – 352. 13.Битюков, И.П. Практикум по физиологии сельскохозяйственных животных / И.П. Битюков, В.Ф. Лысов, Н.А. Сафонов. – М.: Агропромиздат, 1990. – 256 с. 14.Физиология центральной нервной системы и сенсорных систем. Хрестоматия / Т.Е. Россолимо [и др.]. – М.: Московский психологосоциальный институт, Воронеж: НПО «МОДЭК», 1999. – 576 с. 15.Мак-Фарленд, Д. Поведение животных: Психобиология, этология и эволюция / Д. Мак-Фарленд. – М.: Мир, 1988. – 520 с. 16.Мелехин, Г.П. Физиология сельскохозяйственной птицы / Г.П. Мелехин. – М.: Колос. – 1975. 17.Ипполитова, Т.В. Этология животных / Т.В. Ипполитова. – М.: МГАВМиБ им. К.И. Скрябина. – 1999. – 32 с. 18.Лысов, В.Ф. Физиология молодняка с.-х. животных: Учеб. пособ. / В.Ф. Лысов. – Казань: Казанский вет. ин-т. – 1977. 19.Анохин, П.К. Очерки по физиологии функциональных систем / П.К. Анохин. – М.: Медгиз. – 1975. 20.Данилова, Н.Н. Физиология высшей нервной деятельности / Н.Н. Данилова. – Ростов-на-Дону: Феникс. – 1999. 65 ПРИЛОЖЕНИЕ 1 Характерные признаки представителей родов «жабы» и «лягушки» (анатомические и биологические особенности) Род жабы (рис.4). Зубов нет. Зрачок глаза горизонтальный. Кожа бугорчатая, бородавчатая. Кладка икры в виде шнура. Обитает в лесах, садах, парках, кустарниках, на дне оврагов и степных балок. Ведет наземный образ жизни, в связи с чем перепонки на лапах отсутствуют. Кожа ороговевает и гораздо лучше, чем у других земноводных, защищена от испарения. Дыхание осуществляется главным образом через легкие, так как кожный газообмен затруднен. Кожа относительно сухая и покрыта ороговевшими бугорками. При раздражении кожи выделяется едкая слизь. Днем жабы прячутся среди камней в сырых ямах, забираются в норы грызунов, а ночью выходят на добычу. Питаются исключительно наземными беспозвоночными, среди которых преобладают насекомые. Зимняя спячка у жаб длится около 170 дней. Весной, вскоре после пробуждения, они направляются к водоемам для икрометания, где задерживаются около недели, а затем покидают его. Откладка икры проходит в конце апреля или в начале мая. Рис. 4. Внешний вид жабы. 66 Род лягушки (рис. 5). Кожа гладкая или слабобугорчатая. Зрачок глаз горизонтальный. На задних ногах хорошо развиты плавательные перепонки. На верхней челюсти есть зубы. Икра в виде комков. Ведет исключительно водный образ жизни. Окраска тела гармонирует с фоном водной растительности. По способу питания - хищник. В наших условиях ведет дневной образ жизни. Охотится на различных насекомых. Пищевой рефлекс сопровождается выбрасыванием липкого языка, которым она накрывает свою добычу и отправляет в рот. Насытившись, лягушка уходит в воду, где в благоприятных для нее условиях отдыхает и переваривает пищу. Зимуют лягушки на дне водоема, мигрируя осенью либо в более глубокие из них, либо к родникам. Зимующие лягушки часто скапливаются под нависающими берегами или скрываются в подвальной растительности. Выходят с зимовок с конца марта до конца мая при температуре воздуха около 10-12 градусов тепла. Между первым появлением лягушек и началом икрометания проходит от недели до месяца. Рис. 5. Внешний вид лягушки. Быстро отличить лягушку от жабы можно по характеру передвижения. Лягушка по суше передвигается прыжками, прыгая на значительное расстояние и поднимая тело одновременным толчком задних конечностей. Жаба передвигается медленно, шагами, переваливаясь и последовательно переставляя конечности. 67 ПРИЛОЖЕНИЕ 2 Примерные вопросы для подготовки к коллоквиумам и экзамену для студентов очного отделения факультета ветеринарной медицины Вопросы к разделу «Физиология возбудимых тканей»: 1. Понятие о физиологии как науке, разделы, методы физиологии 2. Общее строение биологических мембран 3. Основные функции биологических мембран 4. Понятие о раздражителе. Классификация раздражителей 5. Основные свойства возбудимой клетки – понятия раздражимости, возбудимости, основные состояния нервно-мышечной ткани 6. Потенциал покоя, механизм его возникновения и поддержания. 7. Потенциал действия. Понятие, механизм генерации. 8. Функциональная характеристика возбуждения. Понятия абсолютной, относительной, вторичной рефрактерности, первичной и вторичной экзальтации. 9. Физиологические свойства возбудимых тканей, законы раздражения. 10.Зависимость силы раздражения от времени его действия (кривая силавремя Вейсса), понятия полезное время, реобаза, хронаксия. 11. Парабиоз, понятие, стадии парабиотического состояния 12. Функциональный парабиоз, понятия и механизм оптимума и пессимума частоты сокращений 13. Механизм проведения возбуждения по нерву, особенности проведения возбуждения по миелинизированному и немиелинизированному волокну 14. Общие представления о строении синапсов 15. Классификация синапсов, механизм передачи импульса в возбуждающих и тормозных синапсах 16. Строение гладкой и поперечно-полосатой мускулатуры, ультраструктура саркомера 17. Молекулярный механизм мышечного сокращения 18. Режимы и типы мышечных сокращений, суперпозиция кривых, тетанус 19. Особенности механизмов функционирования гладкой и сердечной мускулатуры 20. Энергетика работающей мышцы, понятие о быстрых и медленных волокнах 21. Механизм утомления Вопросы к разделу «Физиология ЦНС»: 1. Методы исследования функций ЦНС: стереотаксическая техника, электроэнцефалография, микроэлектродная техника, метод вызванных потенциалов. 2. Строение и функции нейрона. Классификация нервных клеток. 3. Виды и функции глиоцитов в ЦНС. 4. Строение и механизм передачи возбуждения в химических синапсах. 68 5. Строение и механизм передачи возбуждения в электрических синапсах. 6. Рефлекс. Определение, классификация, примеры. Аксон-рефлекс. 7. Рефлекторная дуга. Основные звенья. Обратная афферентация. 8. Нервный центр. Определение и свойства. 9. Принципы координации рефлекторной деятельности. 10. Торможение в ЦНС (центральное, постсинаптическое, возвратное, пресинаптическое, пессимальное торможение). 11. Доминанта А.А. Ухтомского. Свойства доминанты. 12. ГЭБ (гематоэнцефалический барьер). Строение и функции. 13.Физиология спинного мозга. 14.Физиология продолговатого мозга. 15. Физиология Варолиевого моста. 16. Физиология среднего мозга. 17. Ретикулярная формация ствола мозга. Строение и функции. 18. Физиология мозжечка. 19. Симптомы поражения мозжечка (атония, атаксия, астазия, астения, астезия, дезэквилибрация). 20. Физиология таламуса. 21. Физиология гипоталамуса. 22. Функции подкорковых ядер. 23. Метасимпатическая нервная система. Строение и функции. 24. Симпатическая нервная система. Строение, функции, основные эффекты. 25. Парасимпатическая нервная система. Строение, функции, основные эффекты. Вопросы к разделу «Физиология системы крови»: 1. Функции крови. 2. Объем и состав крови животных разных видов, депо крови. 3. Химический состав плазмы крови. 4. Физико-химические свойства крови (плотность, вязкость, поверхностное натяжение, рН, буферные системы, физиологические механизмы поддержания постоянства рН плазмы крови, щелочной резерв, осмотическое и онкотическое давление, их регуляция). 5. Свертывающая и противосвертывающая системы крови, механизм гемостаза. 6. Морфология и функции эритроцитов разных видов животных. 7. Состав, функции, виды гемоглобина, механизм доставки кислорода к тканям. 8. Морфология и функции лейкоцитов (лимфоциты, моноциты, нейтрофильные, эозинофильные и базофильные гранулоциты). 9. Свойства и функции тромбоцитов. 10.Гемопоэз, его регуляция, механизмы гемопоэза. 11.Понятие о группах крови, видовые особенности. 69 12.Лабораторные методики определения количества эритроцитов, лейкоцитов, СОЭ, гемоглобина, времени свертывания крови, расчет цветного показателя, вывод лейкоформулы. Значение этих показателей для клинической практики. 13.Нормальные показатели крови у животных различных видов (гематокрит, количество эритроцитов, лейкоцитов, гемоглобин, лейкоформула) – у коровы, лошади, свиньи, собаки. Вопросы к разделу «Физиология сердечнососудистой системы»: 1. Строение сердца. Особенности сердечной мышцы. 2. Кровоснабжение, иннервация сердца, особенности обмена веществ в миокарде. 3. Автоматия сердечной мышцы. Понятие о пейсмекере. Механизм генерации сердечного ритма. Частота сердечных сокращений в покое у животных разных видов. 4. Возбудимость сердечной мышцы. Функциональная характеристика (особенности генерации потенциала действия, относительная и абсолютная рефрактерность сердечной мышцы, экзальтация, экстрасистолия, компенсаторная пауза). 5. Проводимость сердечной мышцы. Строение и функции проводящей системы сердца, опыт Станиуса. Видовые особенности распространения возбуждения по миокарду. 6. Сократимость миокарда. Механизм сокращения, закон Боудича, закон Франка-Старлинга. 7. Сердечный цикл. Работа миокарда, клапанов, передвижение крови по полостям сердца в разные фазы цикла. Минутный и систолический объемы крови. 8. Механизм возникновения и характеристика сердечного толчка, тонов сердца. 9. Характеристика электрической деятельности сердца, электрокардиография. 10. Внутриклеточные механизмы регуляции работы сердца. 11. Нервная регуляция деятельности сердца. Инотропный, хронотропный, батмотропный, дромотропный эффекты. Опыты Гольца. 12. Гуморальная регуляция деятельности сердца. 13. Факторы, определяющие движение крови по сосудам и венозный возврат крови к сердцу. 14. Давление крови. Факторы, определяющие его величину. Систолическое и диастолическое артериальное давление. 15. Время кругооборота крови и методика его определения. 16. Пульс. Характеристика артериального, венного пульса. Сфигмография. 17. Рефлекторная регуляция движения крови по сосудам. Варианты перераспределения кровотока в зависимости от характера влияния вегетативной нервной системы. 70 18. Сосудистые рефлексогенные зоны. 19. Гуморальная регуляция кровообращения Вопросы к разделу «Физиология дыхания»: 1. Функции органов системы внешнего дыхания. 2. Биомеханика вдоха-выдоха и механизм первого вдоха. Нормальная частота дыхания животных. 3. Ателектаз и пневмоторакс. Определения, виды, причины возникновения. 4. Сурфактант: определение, состав, функции. 5. Легочные объемы. 6. Механизм газообмена в легких. 7. Транспорт газов кровь. 8. Механизм газообмена в тканях. 9. Дыхательный центр: определение и функциональная характеристика его отделов. 10. Рецепторы легких: виды, роль в регуляции дыхания. Механизм автоматической смены вдоха выдохом. 11. Гуморальная регуляция дыхания. Регуляция газообмена в соответствии с метаболическими потребностями организма. 12. Особенности дыхания птиц. Вопросы к разделу «Физиология пищеварения»: 1. Основные функции пищеварительного тракта. Основные типы пищеварения. 2. Физиологические механизмы насыщения и голода. 3. Методы исследования физиологии органов пищеварения. Вклад И.П. Павлова в развитии современной теории физиологии пищеварения. 4. Пищеварение в ротовой полости. Видовые особенности. 5. Состав и функции слюны. Видовые особенности, регуляция слюноотделения. 6. Механизмы глотания, отрыжки, рвоты. 7. Общие представления о строении слизистой желудка, зоны слизистой, типы желез. 8. Состав и функции компонентов желудочного сока. 9. Нейро-гуморальная регуляция секреторной деятельности однокамерного желудка. 10. Двигательная активность однокамерного желудка, пилорический рефлекс, голодная периодика. 11. Особенности желудочного пищеварения у лошадей и свиней. 12. Особенности пищеварения в преджелудках жвачных. 13. Пищеварение в сычуге. Особенности желудочного пищеварения у молодняка жвачных. 14. Состав и функции компонентов сока поджелудочной железы. 15. Механизмы нейро-гуморальной регуляции секреции поджелудочной железы. Фазы панкреатической секреции. 71 16. Состав и функции желчи, механизм желчеобразования. 17. Нейро-гуморальная регуляция желчеобразования и желчевыделения. Рециркуляция желчи между тонким кишечником и печенью. 18. Структурно-функциональная организация слизистой тонкого кишечника. 19. Состав и функции компонентов кишечного сока. Пристеночное пищеварение. 20. Переваривание и всасывание углеводов в тонком кишечнике. 21. Переваривание и всасывание белков в тонком кишечнике. 22. Переваривание и всасывание жиров в тонком кишечнике. 23. Механизмы всасывание воды и электролитов в тонком кишечнике. 24. Моторная деятельность тонкого кишечника. 25. Моторика толстого кишечника, виды сократительной активности, ее регуляция. 26. Переваривание и всасывание в толстом кишечнике. 27. Особенности пищеварения птиц. Вопросы к разделу «Физиология обмена веществ и энергии»: 1. Понятие обмена веществ и энергии. Взаимосвязь анаболизма и катаболизма. Основной обмен. Основные этапы обмена веществ. 2. Методы исследования энергообмена. Прямая калориметрия. 3. Методы исследования энергообмена. Непрямая калориметрия. 4. Дыхательный коэффициент. Его зависимость от класса окисляемых веществ, изменение при различных состояниях. 5. Правило Рубнера. 6. Общие принципы регуляции интенсивности обмена веществ и энергии. 7. Терморегуляция, механизмы теплопродукции и теплоотдачи. 8. Температура тела у различных видов животных, ее зависимость от физиологического состояния. 9. Физиологический механизм поддержания постоянства температуры тела. 10. Энергетическая ценность белков, жиров, углеводов. Полноценные и неполноценные белки. 11. Белковый обмен. Этапы, регуляция, коэффициент изнашивания, азотистый баланс. Особенности белкового обмена жвачных. 12. Углеводный обмен. Этапы, регуляция, особенности у жвачных. 13. Липидный обмен. Этапы, регуляция, особенности у жвачных. 14. Вводно-электролитный обмен. Значение воды и основных электролитов для организма. 15. Механизм регуляции вводно-электролитного обмена. 16. Биороль жиро- и водорастворимых витаминов. 17. Обмен билирубина. 72 Вопросы к разделу «Физиология выделения»: 1. Выделительные функции различных органов. 2. Строение и классификация нефронов. 3. Анатомическое строение и функции почек. Кровоснабжение почек. Видовые анатомические особенности. 4. Механизм клубочковой ультрафильтрации. 5. Канальцевая реабсорбция. Места реабсорбции в нефроне основных органических и неорганических соединений. 6. Поворотно-противоточный механизм. Обратное всасывание воды и концентрация мочи. 7. Канальцевая секреция и экскреция. 8. Нервная регуляция образования и выведения мочи. 9. Гуморальная регуляция образования и выведения мочи. 10. Состав и свойства мочи. Видовые особенности. 11. Эндокринная функция почек. Ренин-ангиотензин-альдостероновый механизм. 12. Участие почек в регуляции кислотно-щелочного равновесия. 13. Выделительные функции кожи. Вопросы к разделу «Физиология эндокринной системы»: 1. Гормоны – определение, историческая справка. Понятие об эндокринных железах, нейросекреция. 2. Классификация гормонов по химическому строению. 3. Классификация гормонов по физиологическому эффекту. 4. Свойства гормонов. 5. Общие представления о транспорте и рецепции гормонов. 6. Механизм действия стероидных гормонов. 7. Механизм действия тиреоидных гормонов. 8. Механизм действия гормонов белково-пептидной природы. Вторые посредники. Аденилатциклазный путь. 9. Механизм действия гормонов белково-пептидной природы. Вторые посредники. Фосфоинозитидный путь. 10. Организация органов системы внутренней секреции. Центральные и периферические железы. 11. Онтогенез и особенности анатомической организации гипоталамогипофизарной системы. 12. Рилизинг-факторы. 13. Общие механизмы регуляции внутренней секреции. Трансгипофизарный и парагипофизарный пути регуляции. Принципы прямой и обратной связи. 14.Особенности метаболизма и биологические эффекты гормонов: окситоцин вазопрессин меланотропин 73 соматотропный гормон Т3, Т4 паратгормон и тиреокальцитонин минералокортикоиды (альдостерон) глюкокортикоиды андрогены эстрогены прогестерон катехоламины (адреналин, норадреналин) глюкагон инсулин гормоны плаценты гормоны тимуса мелатонин простагландины Вопросы к разделу «Физиология иммунной системы»: 1. Характеристика органов иммунной системы. Центральные и периферические органы. 2. Строение и функция тимуса. 3. Механизм отбора Т-лимфоцитов в тимусе. 4. Строение и функции селезенки. 5. Строение и функции лимфатических узлов. 6. Лимфоидные образования пищеварительной системы. Строение и функции. 7. Функциональная характеристика клеток иммунной системы. Понятие о кластерах дифференцировки (CD). 8. Антиген. Определение, классификация. Антигенность, иммуногенность, толерантность. 9. Характеристика главных комплексов гистосовместимости (MHC). 10.Строение молекулы иммуноглобулина. Свойства иммуноглобулинов. 11.Характеристика иммуноглобулинов различных классов (G, M, A, E, D). 12.Механизм взаимодействия антигена с антителом. Классификация иммуноглобулинов в зависимости от механизма их действия. 13.Механизм гуморального иммунного ответа. 14.Механизм клеточного иммунного ответа. 15.Значение системы фагоцитов в иммунитете. 16.Общая характеристика системы комплемента. 74 Примерные экзаменационные вопросы по физиологии и этологии с/х животных для студентов очного отделения факультета ветеринарной медицины 1. 2. 3. 4. 5. 6. 7. 8. 9. 10. 11. 12. 13. 14. 15. 16. 17. 18. 19. 20. 21. 22. 23. 24. Предмет, методы, основные этапы развития физиологии. Физиология как экспериментальная наука. Общее представления о регуляции функций организма. Нервная, гуморальная и гормональная регуляция. Основные свойства живых тканей: раздражимость, возбудимость, проводимость, функциональная лабильность. Раздражители, их виды. Роль силы раздражителя и времени его действия. История изучения биоэлектрических явлений. Опыты Гальвани, Маттеучи, Дюбуа-Реймона. Возбудимые ткани: понятие, три основных состояния. Механизм возникновения и поддержания потенциала покоя. Потенциал действия. Механизм генерации, функциональная характеристика. Законы и механизмы проведения возбуждения по нервным волокнам. Синапсы. Понятие, классификация, строение, механизм функционирования химических и электрических синапсов. Торможение как активное состояние возбудимой ткани. Виды и механизмы торможения. Парабиоз. Определение, характеристика возбудимой ткани в зависимости от стадии парабиоза. Механизм сокращения поперечно полосатой мускулатуры. Особенности строения и функционирования гладкой, скелетной, сердечной мускулатуры. Режимы и типы мышечных сокращений. Механизм утомления. Нейрон и глия как основные функциональные элементы нервной системы. Классификация, строение, функциональное значение. Рефлекс. Определение, классификация, примеры. Рефлекторная дуга. Аксон-рефлекс. Нервный центр. Определение, свойства, принципы координации рефлекторной деятельности. Объем и состав крови. Видовые особенности. Депо крови. Физико-химические свойства крови. Состав и функции белков плазмы крови. Группы крови животных. Эритроциты. Значение, количество у разных видов животных. Лейкоциты. Значение, количество у разных видов животных. Гемопоэз. Понятие, регуляция. Механизм свертывания крови. Антикоагулянты и их физиологическая роль. Автоматия сердечной мышцы. Пейсмекер. Механизм генерации сердечного ритма. Частота сердцебиения у животных разных видов. 75 25. Возбудимость сердечной мышцы. Функциональная характеристика (особенности генерации потенциала действия, относительная и абсолютная рефрактерность сердечной мышцы, экзальтация, экстрасистолия, компенсаторная пауза). 26. Проводимость сердечной мышцы. Строение и функции проводящей системы сердца, опыт Станиуса. Видовые особенности распространения возбуждения по миокарду. 27. Сократимость миокарда. Механизм сокращения, закон Боудича, закон Франка-Старлинга. 28. Сердечный цикл. Работа миокарда, клапанов, передвижение крови по полостям сердца в разные фазы цикла. Минутный и систолический объемы крови. 29. Электрокардиограмма, механизмы формирования, методы регистрации, принципы анализа. Значение для клиники. 30. Нервно-гуморальная регуляция деятельности сердца. Интра- и экстракардиальные механизмы регуляции 31. Факторы, определяющие движение крови по сосудам и венозный возврат крови к сердцу. 32. Давление крови. Факторы, определяющие его величину. Систолическое и диастолическое артериальное давление. Артериальный пульс. 33. Регуляция движения крови по сосудам. Сосудодвигательный центр, его значение и функциональная организация. Сосудистые рефлексогенные зоны. 34. Перераспределительные реакции в системе кровообращения при различных физиологических состояниях. Изменение деятельности сердечно-сосудистой системы в условиях физической нагрузки. 35. Особенности кровообращения и кроветворения плода. 36. Лимфа, ее состав, образование, функции. 37. Значение дыхания для организма. Биомеханика вдоха и выдоха. Частота дыхательных движений в покое у животных разных видов. 38. Легочные объемы и емкости. Их характеристика, величины и факторы их определяющие. Методы определения. 39. Механизм газообмена в легких и тканях. Аэрогематический барьер. 40. Механизмы переноса газов кровью. 41. Механизм регуляции дыхания. Дыхательный центр, его локализация и функциональная структура. 42. Особенности дыхания птиц, голосообразование животных. 43. Функциональное значение пищеварительной системы. Типы пищеварения. Физиология голода и насыщения. 44. Пищеварение в ротовой полости: жевание, глотание, значение и состав слюны, регуляция слюноотделения, видовые особенности. 45. Виды желудочных желез, состав, функции и механизм образования желудочного сока. 46. Регуляция желудочного сокоотделения. Моторно-эвакуаторная функция однокамерного желудка. 76 47. Пищеварение в желудке жвачных животных. 48. Состав и свойства сока поджелудочной железы, роль пищеварительных ферментов. Регуляция внешнесекреторной функции поджелудочной железы. Фазы секреции. 49. Состав и значение желчи в пищеварении. Механизм желчеобразования и желчевыделения, их регуляция. 50. Пищеварение в тонком кишечнике. Состав и функции кишечного сока. 51. Механизмы всасывания воды, минеральных солей, продуктов гидролиза белков, жиров и углеводов. Роль различных отделов желудочнокишечного тракта. 52. Пищеварение в толстом кишечнике. Регуляция, видовые особенности. 53. Непищеварительные функции желудочно-кишечного тракта. 54. Микрофлора пищеварительного тракта, ее состав, происхождение. физиологическая роль. 55. Понятие обмена веществ и энергии. Взаимосвязь анаболизма и катаболизма. Основной обмен. Основные этапы обмена веществ. 56. Методы исследования энергообмена. Прямая и непрямая калориметрия. Дыхательный коэффициент. 57. Терморегуляция. Механизмы теплопродукции и теплоотдачи. Физиологический механизм поддержания постоянной температуры тела. Температура тела животных различных видов. 58. Белковый обмен. Этапы, регуляция, коэффициент изнашивания, азотистый баланс. Особенности белкового обмена жвачных животных. 59. Углеводный обмен. Этапы, регуляция, особенности обмена углеводов у жвачных животных. 60. Липидный обмен. Этапы, регуляция, особенности обмена липидов у жвачных животных. 61. Водно-электролитный обмен. Значение воды и основных электролитов для организма. Регуляция водно-электролитного обмена. 62. Функции почек. Морфо-функциональная характеристика нефронов. 63. Механизм клубочковой фильтрации. 64. Механизмы канальцевой реабсорбции. 65. Экскреторная, инкреторная, метаболическая и гомеостатическая функции почек. 66. Нейрогуморальная регуляция функции почек. 67. Диурез, его величина, зависимость от времени суток. Состав и свойства мочи животных разных видов. Мочеиспускание, его регуляция. 68. Гормоны. Определение, классификация, свойства. 69. Механизмы действия гормонов. 70. Структурно-функциональная организация гипоталамо-гипофизарной системы. 71. Гормоны надпочечников, их роль в адаптации организма. 72. Гормоны щитовидной железы. Физиологическая роль, регуляция работы щитовидной железы. 73. Физиология половой системы самцов. 77 74. Физиология половой системы самок. Половой цикл. Видовые особенности. Гормональная регуляция. 75. Анализатор. Определение, организация. Рецептор: определение, классификация. 76. Физиология зрительного анализатора. 77. Физиология слухового анализатора. 78. Физиология анализатора положения тела в пространстве. 79. Физиология вестибулярного анализаторов. 80. Физиология двигательного анализатора. 81. Ноцицепция. Биологическое значение и механизмы боли. Антиноцицептивная система. 82. Характеристика и функции органов иммунной системы. 83. Функциональная характеристика клеток иммунной системы. Понятие о главных комплексах гистосовместимости. 84. Механизм гуморального иммунного ответа. 85. Механизм клеточного иммунитета. 86. Классификация, функции, строение молекул иммуноглобулинов. 87. Общая характеристика системы комплемента. 88. Типы высшей нервной деятельности и виды темперамента. Значение для животноводства. 89. Условный рефлекс. Значение, механизм образования, торможение условных рефлексов. Виды коркового торможения. 90. Память. Механизмы и виды памяти. 91. Сон. Виды, стадии, значение сна, видовые особенности. 92. Теория функциональных систем. 93. Физиология спинного мозга. 94. Функциональная и структурная характеристика продолговатого мозга. 95. Особенности организации и функции мозжечка и моста. 96. Структурно-функциональная характеристика среднего мозга. 97. Строение и функции таламуса. 98. Физиология гипоталамуса. 99. Строение и функции ретикулярной формации. 100. Базальные ядра. Роль в регуляции мышечного тонуса, сложных двигательных реакций и условно-рефлекторной деятельности организма. 101. Кора головного мозга, ее функции, особенности морфофункциональной организации (шестислойное строение, экранный принцип функционирования, вертикальные функциональные единицы). 102. Особенности организации и функции вегетативной нервной системы. 103. Состав молока и молозива. Механизм образования и выведения молока. Регуляция молокоотдачи. 104. Стресс. Определение, стадии, механизмы и значение. 105. Понятие об этологии. Формы поведения и поведенческие реакции животных. 78 ПРИЛОЖЕНИЕ 3 Физиологические показатели нормы животных и некоторые зоогигиенические нормативы Таблица 1. Нормативные биохимические показатели крови взрослых животных (по И.П. Кондрахину и др., 1985) Показатель Количество эритроцитов, 1012/л Количество лейкоцитов, 109/л Гемоглобин: г% г/л Гематокрит, % Глюкоза: мг% ммоль/л Кетоновые тела: мг% г/л В т.ч. кислота: бета-масляная: мг% г/л ацетоуксусная, мг% Кобальт, мкг% Марганец, мкг% Медь: мкг% мкмоль/л СОЭ по Панченкову, мм/ч Время свертывания крови, мин. Азот аминокислот: мг% ммоль/л Аскорбиновая кислота (витамин С): мг% ммоль/л Белок общий: г% г/л Альбумины, % α-глобулины, % β-глобулины, % γ-глобулины, % Билирубин: мг% мкмоль/л КРС 5,0-7,5 Овцы Свиньи Цельная кровь 7,0-12,0 6,0-7,5 Лошади Куры 6,0-9,0 3,0-4,0 4,5-12,0 6,0-14,0 8,0-16,0 7,0-12,0 20,0-40,0 9,9-12,9 99-129 35-45 40-60 2,22-3,33 1,06-6,0 0,01-0,06 7,9-11,9 79-119 35-45 40-60 2,22-3,33 1,0-3,0 0,01-0,03 9,9-11,9 99-119 39-43 80-100 3,33-5,55 0,5-2,5 0,005-0,025 9-14,9 90-149 35-45 75-95 3,05-5,27 - 8,9-12,9 89-129 39-42 89-140 1,44-7,77 - 2,8-4,6 0,28-0,046 0,2-1,4 3,0-5,0 15-25 90-110 14,1-17,3 0,5-1,5 0,8-2,3 0,008-0,023 0,2-0,7 3,0-5,0 2-8 50-70 7,9-11,0 0,5-1,0 0,4-2,0 0,1-0,5 2,5-5 2-10 2,9 2,5-5 35-45 3,51-7,08 40-70 2,0-3,0 57-70 7,9-11,0 2-3 5-6 8-10 10-15 8-10 1,5-2 4-6 2,85-428 Сыворотка крови 4-6 6-8 2,85-4,28 4,28-5,7 5-7 3,57-4,99 - 0,6-1,5 34-85 0,4-0,8 23-45 0,2-1,2 11-68 0,2-1.5 11-85 - 7,2-8,6 72-86 38-50 12-20 10-16 25-40 0,01-0,3 0,17-5,13 6,5-7,5 7,0-8,5 35-50 13-20 7-11 20-46 0,01-0,3 0,17-5,13 40-55 14-20 16-21 17-26 0,08-0,3 1,37-5,13 7,0-7,8 65-75 35-45 14-18 20-26 18-24 0,8-1,6 13,7-27,36 4,3-5,9 70-85 31-35 17-19 11-13 35-37 0,01-0,1 0,17-1,71 79 Йод, связанный с белком (СБИ): мкг% нмоль/л Кальций общий: мг% ммоль/л Каротин в пастбищный период, мг% Каротин в стойловый период, мг% Креатинин, мг% Липиды общие, мг% β-липопротеиды, % Фосфолипиды, мг% Триглицериды, мг% Молочная кислота: мг% ммоль/л Магний: мг% ммоль/л Мочевина: мг% ммоль/л НЭЖК, мг% Пировиноградная кта: мг% мкмоль/л Ретинол: в пастбищ. период: мкг% мкмоль/л в стойловый период: мг% мкмоль/л Фосфор неорганич.: мг% мкмоль/л Холестерин: мг% ммоль/л Натрий: мг% ммоль/л Калий: мг% ммоль/л Щелочной об.% СО2 4-8 315-630 10-12,5 2,5-3,13 4-8 350-630 10-12,5 2,5-3,13 4-6 315-473 10-14 2,5-3,5 2-4 157,6-315,2 10-14 2,5-3,5 8-12 2-3 0,9-2,8 - - - - 0,4-1,0 - - - - 0,45-0,65 280-600 65-70 70-250 20-50 9-13 1-1,44 0,6-1,1 9-11 1-1,44 0,7-1,9 350-400 90-200 20-80 9-11 1-1,44 0,9-1,8 5-13 0,56-1,44 1,4-4,0 360-2100 8-10 0,89-1,1 2-3 0,82-1,23 20-40 3,2-6,7 3-16 2-3 0,82-1,23 20-36 3,3-5,8 - 2,5-3,5 1,03-1,44 20-35 3,3-5,8 8-20 2,0-3,5 0,82-1,44 20-36 3,3-5,8 - 2-3 0,82-1,23 14-22 2,3-3,7 6-10 0,8-1,7 114-193 0,8-1,7 114-193 0,6-1,3 68-148 - - 40-150 1,4-5,3 - - - - 24-80 0,8-2,8 - - - - 4,5-6,0 1,45-1,94 4,5-6,0 1,45-1,84 4,0-6,0 1,29-1,94 4,2-5,5 1,35-1,78 5,5-7,5 1,78-2,42 50-170 1,30-4,42 60-140 60-110 1,56-3,64 1,56-2,86 Плазма крови 320-340 320-340 139-148 139-148 16-19 16-19 4,10-4,86 4,10-4,86 48-60 45-55 55-100 1,43-2,60 80-200 2,8-5,2 320-340 139-148 16-19 4,10-4,86 резерв, 46-66 310-350 135-143 19-22 4,86-5,63 50-65 350-380 152-165 19-23 4,86-5,89 48-55 80 Таблица 2. Лейкограмма крови здоровых животных (%) Вид животного КРС Лошади Овцы Свиньи Собаки Кролики Куры Б 0-2 0-1 0-1 0-1 0-1 0-2 1-3 Э 5-8 2-6 4-12 1-4 3-9 1-3 6-10 М 0 0 0 0 0 0 0 Нейтрофилы Ю П 0-1 2-5 0-1 3-6 0-2 3-6 0-2 2-4 0 1-6 0 5-9 С 20-35 45-62 35-45 40-48 43-71 33-39 24-30* Л М 40-65 25-44 40-50 40-50 21-40 43-62 52-60 2-7 2-4 2-5 2-6 1-5 1-3 4-1 * Псевдоэозинофилы (гетерофилы). Таблица 3. Средние показатели содержания основных макро- и микроэлементов в сыворотке крови сельскохозяйственных животных Вид животных Лошадь Натрий Kалий Кaльций Фосфор Mагний 139,1 4,6 3,0 4,0 1,0 Кoбальт Медь Mарганец Цинк Йод 0,3 0,7 - Корова Овца Макроэлементы, ммоль/л 143,5 141,3 4,9 4,9 2,8 2,9 3,5 3,7 1,5 1,0 Микроэлементы, мкмоль/л 0,4 0,4 13,3 9,4 0,9 0,8 23,1 13,8 0,2 0,2 Свинья Курица 145,6 5,1 3,0 3,2 1,3 163,0 5,6 5,0 10,6 0,9 0,6 34,4 0,9 0,15 0,4 9,4 - Таблица 4. Состав лимфы, % Вещества Белок Натрий Калий Глюкоза Небелковый азот Фибриноген Плазма крови Лимфа отдела шейного Лимфа грудного протока 8 0,32 0,02 0,12 0,032 2 0,33 0,023 0,12 0,034 4 0,33 0,024 0,13 0,029 0,4 - 0,04 81 Таблица 5. Нормативный пульс животных и птицы Животное, птица Жеребенок Лошадь Теленок в возрасте до 14 дней Молодняк КРС с 6 до 18 мес. Корова Ягненок Взрослая овца Козленок Взрослая коза Поросенок в возрасте до 14 дней Свинья Частота Частота пульса в Животное, птица пульса в минуту минуту 40–70 100–140 Молодая собака 24–42 100–120 Взрослая собака малых пород 90–140 Взрослая 70–90 собака больших пород 60–80 130–140 Котенок 50–70 110–130 Взрослая кошка 100–130 Лисица 80–140 70–80 90–180 Норка 100–120 Нутрия 125–175 70–80 90–130 Песец голубой 110–140 Кролик 120–200 60–90 150–200 Курица, гусь, утка Таблица 6. Средние показатели систолического и диастолического давления у животных, мм рт. ст. Животные Лошадь Собака Корова Свинья Овца Артерии Запястная Бедренная Хвостовая Запястная Бедренная систолическое 172 150 98-128 139 151 Виды давления диастолическое 123 90 69-99 99 114 пульсовое 49 60 29 40 37 Таблица 7. Частота дыхания в покое у здоровых животных и птицы Животное, птица Жеребенок Взрослая лошадь Теленок до 14 дней Молодняк КРС Взрослый скот Ягненок Взрослая овца Козленок Взрослая коза Свинья Поросенок Верблюд Олень Количество дыхательных движений в минуту 12–16 8–12 35–40 25–30 10–25 15–20 10–15 12–18 10–15 8–18 5–12 8–16 8–16 Животное, птица Молодая собака Взрослая собака Молодая кошка Взрослая кошка Лисица Норка Нутрия Кролик Курица Гусь Индейка Утка Голубь Количество дыхательных движений в минуту 20–30 10–20 22–25 10–22 12–60 35–160 32–120 10–15 22–25 12–20 12–18 16–28 30–70 82 Таблица 8. Состав и парциальное давление газов вдыхаемого, выдыхаемого и альвеолярного воздуха* (при барометрическом давлении 760 мм) Состав воздуха, % Газ вдыхаем ый 20,82 0,03 выдыхае альвеоля мый рный 16,3 13,9 4,0 5,62 Кислород Двуокись углерода 79,15 79,7 80,48 Азот От 0,5 во вдыхаемом до 6.5% в Водяные выдыхаемом и альвеолярном пары (приблизите воздухе льно) Парциальное давление воздуха, мм рт. ст. вдыхаемый выдыхаемый альвеолярны й 158,25 116,2 101,1 0,30 28,5 40,0 596,45 568,3 571,8 Таблица 9. Нормативные показатели желудочного содержимого и желудочного сока у взрослых животных натощак Показатель Крупный рогатый скот 1,4-3,9 15-35 pH желудочного сока pH желудочного содержимого Общая кислотность желудочного содержимого, титр. ед. 7-20 HCI желудочного содержимого, свободная, титр. ед. 5-15 HCI связанная, титр. ед. Переваривающая сила Ферментативная желудочного содержимого по активность (3-5 мин. – обесцвечивание Метту, мм метиленовой сини) Желудочный лейкопедез _ содержимого (в 1 мкл) Лошади Свиньи Овцы 1,3-1,7 1,9-4,0 24-36 1,1-2,0 1,8-4,5 30-60 0,8-1,2 1,7-3,5 35-70 20-28 10-30 14-36 12-26 10-20 15-30 2,2-6,9 1,5-5,6 1,8-4,7 180-250 115-400 29-179 83 Таблица 10. Константы биохимических показателей содержимого рубца Показатель Сухое вещество в цельном содержимом рубца, % Сухое вещество в рубцовой жидкости, % pH Летучие жирные кислоты, ммоль/100 мл Соотношение кислот, молярный %: Уксусная Пропионовая Изомасляная Масляная Изовалериановая Валериановая Капроновая Азот, мг%: Общий в цельном содержимом Общий в рубцовой жидкости Небелковый Белковый Аммонийный Аммиак, мг% Азот нитрата, мг% Азот нитрита, мг% Молочная кислота, ммоль/100 мл Редуцирующие сахара, мг% Количество бактерий, шт./мл Количество простейших, тыс./мл Газы рубца, %: СО2 СН4 О2+N2 КРС 3,5-5,5 Овцы 4,0-9,37 1,96-3,2 6,0-7,3 6,0-14,0 2,0-4,66 6,2-7,3 5,0-15,0 55,0-70,0 15,0-20,0 0,6-1,5 10,0-15,0 1,0-3,0 1,0-3,0 0-1,2 55,0-65,0 15,0-22,0 0,5-1,5 10,0-15,0 1,0-3,0 1,0-4,0 0-1,2 100-300 50-240 15-60 35-200 5-20 6,5-25,0 0,017-0,054 0,010-0,016 Следы – 0,20 0-50,0 100-400 109-1010 120-350 60-250 10-50 40-240 5-30 6,5-35,0 0,012-0,09 0,005-0,008 Следы – 0,15 1,0-50,0 100-500 109-1010 200-1200 50-70 20-40 250-1800 50-70 20-35 Таблица 11. Объём разных отделов желудочно-кишечного тракта у животных Животное Общий объем желудочнокишечного тракта, л* Относительный объем, % к общему желудок тонкий толстый кишечник кишечник 200-300 71** 18 11 Корова 100-180 10 30 60 Лошадь 25-32 65** 23 12 Овца (коза) 22-30 30 35 35 Свинья 2-3 63 23 14 Собака 0,4-0,6 66 18 16 Кошка 0,5-0,8 25 32 43 Кролик * указанные цифры получены при умеренном наполнении отделов желудочнокишечного тракта водой. ** сумма четырёх камер. 84 Таблица 12. Состав бактерий и простейших рубца, г/кг сухого вещества Вещества Азот Углеводы Липиды Зола Лизин** Бактерии 78 155 100 170 8.5 Простейшие 64 380 90* 65 10.2 * Более половины - фосфолипиды ** г/100 г азота аминокислот. Таблица 13. Ферментативное переваривание корма в тонком отделе кишечника Основные ферменты Трипсин Хемотрипсин Карбоксипептидазы Липаза Фосфолипаза α-амилаза Рибонуклеаза, дезоксирибонуклеаза Пептидазы Дисахаридазы (мальтаза, лактаза, сахараза) Щелочная фосфатаза Оптимум Субстрат рН Ферменты кишечного сока 6,5-8,0 Белки, полипептиды 6,5-8,0 То же 6,5-8,0 Конечная СООгруппа пептидов 7,8-8,2 Липиды Продукты расщепления Полипептиды, аминокислоты То же Аминокислоты Жирные кислоты, глицерин, моноглицериды 6,5-7,0 Фосфолипиды Жирные кислоты, фосфорная кислота, холин, глицерин 6,8-7,0 Крахмал, декстрины Мальтоза, глюкоза (α -связи) Ферменты поджелудочного сока. 6,5-7,0 РНК и ДНК Мононуклиотиды 7,0-8,0 Олигопептиды Аминокислоты 6,5-7,0 Дисахара Глюкоза, галактоза, фруктоза 7,5-8,0 Фосфорные эфиры Дефосфорилированные соединения 85 Таблица 14. Нормальная температура животных и птицы. Животное, птица Жеребенок Лошадь Теленок до 14 дней Молодняк КРС Взрослый скот Корова в последние два месяца беременности Ягненок Овца Козленок Коза Поросенок Свинья Щенок небольших пород Щенок средних пород Щенок больших пород Температура, 0С Около 39 37,5-38,5 38,5-40,5 38,5-40,0 38,0–39,5 38,5–40,0 39,5–40,5 38,5–40,0 39,0–41,0 38,5–40,5 39,0–40,5 38,0–40,0 38,6–39,3 38,3–39,1 38,2–39,0 Животное, птица Собака малая Собака средняя Собака большая Кошка Молодая лисица Взрослая лисица Норка Нутрия Кролик Курица Гусь Индейка Утка Голубь Температура, 0С 38,5–39,0 38,0–38,6 37,5–38,3 38,0–39,0 39,5–40,5 39,0–40,0 39,5–40,8 36,8–38,1 38,5–39,5 40,5–42,0 40,0–41,0 40,5–41,5 41,0–43,0 41,0–44,0 Таблица 15. Энергетический обмен у животных Вид животных Лошадь Свинья Собака Кролик Гусь Курица Масса тела, кг 441 128 15,2 2,3 3,5 2,0 Теплопродукция, кДж в сутки на 1 кг массы тела на 1 м2 поверхности тела 47,3 3967,8 79,9 4512,0 215,6 4348,7 314,3 3247,9 279,2 4055,7 297,2 3946,9 86 Таблица 16. Нормы водопотребления животных, л. на голову в день Животные Коровы молочные Коровы мясные Нетели Молодняк до 6 мес. Молодняк старше 6 мес. Лошади взрослые Молодняк до 1,5 лет Свиньи супоросные Свиньи подсосные Поросята-отъёмыши Овцы и козы Ягнята и козлята Расход воды всего в т.ч. на поение 100 65 70 65 60 40 20 30 10 25 25 60 10 10 3 50 35 12 20 8 8 3 для сельскохозяйственных Животные Собаки Кошки Кролики, норки, соболи Лисицы, песцы Куры Цыплята Индейки Индюшата Утки Гуси Цесарки Расход воды всего в т.ч. на поение 2,5 0,9 1,0 0,3 3 3 0,9 7 0,3 0,4 1,31 0,8 0,9 1,6 0,7 0,3 1,0 0,7 0,75 1,3 0,3 Таблица 17. Нормативные показатели мочи здоровых животных Показатель рН Креатин, % Гиппуровая кислота (за сутки), г Мочевина, % от общего азота Мочевина, г (за сутки) Аммиак, г (за сутки) Мочевая кислота, мг% Сахар Уробилин Хлорид натрия (за сутки), г Белок Эритроциты Лейкоциты Лошади 7,2-8,4 0,0035 160 84,5 75-100 0,4 КРС 7,0-8,6 0,009 150 Свиньи 6,5-7,8 0,010 - Овцы 30 83,5 84,0 82,0-84,5 60-100 0,22 в среднем 0,05-0,2 Не более 0,02% 0,5-1,5 мг % 0,6-0,9% незначительное количество 0-5 эритроцитов в 1 мкл 0-2 лейкоцита в 1 мкл Козы 8,0-8,5 0,005 82,0-84,5 - 87 Таблица 18. Среднее количество и относительная плотность мочи здоровых животных Животное Количество мочи за сутки Относительная плотность мочи, г/мл, кг/л 1,020-1,050 1,015-1,045 1,015-1,065 1,010-1,030 1,03-1,00 1,02-1,00 1,01-1,00 1,02-1,00 3-10 6-12 0,5-1,5 2-4 8-15 0,21-2,00 0,020-0,005 0,1-0,2 Лошадь КРС Овца, коза Свинья Верблюд Собака Кролик Кошка Таблица 19. Среднее количество мочи и навоза, выделяемое животными в течение суток Вид животных Количество мочи, л 6-12 3-10 0,5-1,5 2-4 0,25-2,0 0,02-0,05 КРС Лошадь Мелкий рогатый скот Свинья Собака Кролик Количество навоза, кг 20-30 10-15 1,5-2,5 3-6 - Таблица 20. Состав молока домашних животных Животное воды белка Лошадь Осел Корова Коза Верблюд Овца Буйвол Свинья Собака Кролик Олень 90,3 90,1 87,3 87,3 86,0 84,0 83,0 82,4 77,0 70,0 65,0 1,8 1,8 3,4 3,7 4,0 6,5 4,6 6,1 7,1 12,4 14,0-20,0 Содержание, % казеина жира 1,3 0,8 2,9 2,4 3,2 4,2 4,2 4,7 4,1 10,4 8,7 1,1 1,4 3,6 4,0 4,0 6,1 6,4 6,4 9,3 15,5 17,0 молочного сахара 6,0 6,0 5,0 4,5 5,6 4,2 4,2 4,0 3,1 1,9 2,8 солей 0,4 0,5 0,7 0,9 0,9 1,0 0,9 1,1 1,3 2,7 1,5 88 Таблица 21. Биохимические показатели молозива и молока здоровых коров Показатель Молоко Кислотность, о Т Кетоновые тела, мг% Каротин, мкг% Магний, мг% Мочевина, мг% Кальций, об.мг% Белок, об.% Ретинол, мкг% Сахар молочный, % Токоферол, мкг% Фосфор неорганическ ий, мг% рН Натрий, мг% Калий, мг% Фосфолипиды , г% Моноглицери ды, г% Молозиво 2-го дня 3-го дня 1-го дня 16-19 1-го удоя - 4-го дня 5-го дня 40,0 33,0 27,3 23,1 21,6 4-8 2-6 - - - - 6-8 8-28 110-400 - - - - - 11-15 20-40 25-33 15-20 - - - - 15-17 18-24 125-130 260-180 235-152 183-147 181-141 176-140 168-90 2,7-5,0 13,0-3,5 22,5 150-580 14,8 - 9,4 - 5,8 - 4,0 - 3,9 - 4,0-5,6 - 3,0 3,6 3,9 4,1 4,1 8-10 - - - - - - 60-65 152-96 160-90 128-80 109-70 97-69 - 6,3-6,5 36-63 140-180 0,23+0,02 1,64+0,1 1,1+0,02 - - - 0,01+0,02 0,11+ 0,02 0,05+ 0,01 - - 0,59+ 0,02 0,03+ 0,05 - 89 Таблица 22. Состав молока и плазмы крови у коров, % (по Майнарду) Вещества Вода Глюкоза Лактоза Сывороточный альбумин Сывороточный глобулин Молочный альбумин Молочный глобулин Аминокислоты Казеин Нейтральный жир Фосфолипиды Эфир холестерола Кальций Фосфор Натрий Калий Хлор Лимонная кислота Молоко 87,0 4,90 - Плазма крови 91,0 0,05 3,20 - 4,40 0,52 0,05 * 2,90 3,70 0,04 следы 0,12 0,10 0,05 0,15 0,11 0,20 0,003 0,09 0,20 0,17 0,009 0,011 0,34 0,03 0,35 следы * содержание аминокислот в общем белке коровьего молока, % Валин Лейцин Изолейцин Треонин Тиреонин Цистин Фенилаланин Тирозин Триптофан Лизин Гистидин Аргинин 8,4 10,6 8,5 4,5 3,7 0,7 5,7 6,4 1,4 6,6 2,6 3,8 90 Таблица 23. Наступление зрелости, продолжительность использования и жизни животных Животные Лошади Ослы КРС Овцы Козы Свиньи Собаки Кошки Кролики Нутрии Куры Индейки Цесарки Гуси Утки Наступление половой зрелости (возраст - мес.) 12-18 10-12 6-12 5-10 5-8 6-10 5-7 6-8 3-5 3-4 4-6 6-7 5-6 6-7 5-6 Наступление физиологическ ой зрелости (возраст - мес.) 24-30 18-20 18-24 10-12 8-12 10-15 10-12 8-9 4-6 5-6 5-6 218 дней 180 дней 218 дней 211 дней Продолжительн Продолжительн ость ость жизни, лет использования животных, лет 15-18 40-50 12-15 40-50 12-14 20-22 4-5 10-15 5-6 12-15 4-6 20-30 8-10 10-15 5-8 13-17 2-3 5-7 3-4 6-8 1-2 15-20 3-4 10-12 2-3 8-12 2-5 50 1-2 10-15 Таблица 24. Сроки высиживания яиц Птица Домашняя курица Цесарка Индейка Павлин Гусь Период высиживания, дней 19-24 26-29 26-29 29-32 28-33 Птица Утка Голубь Канарейка Попугай Лебедь Период высиживания, дней 28-32 17-19 12-14 19-25 35-42 91 Таблица 25. Продолжительность беременности у животных Животное Лошадь Осел Мул Коровы: молочные породы мясные породы Продолжительность беременности, Количество потомства, гол. дней 320-355 (336) 1 348-377 (362) 1 В среднем 350 1 279-286 (283) 284-289 (285) 1 1 Овца Коза Домашняя свинья Кабан дикий Собака 144-156 (150) 146-157 (150) 110-118 (114) 124-132 (130) 63 (62,5) Домашние кошки Мышь 56–60 22–44 Кролик 28–33, до 35 и более (чем крупнее порода и меньше потомства, тем дольше продолжается беременность) В среднем 15, наиболее 35 53-55 47–56 (51–52) 39–59 (50) 130, у первородящих – короче 1, часто 2 2 8-12 6-12 8-12 (большие породы) 6-10 (средние породы) 2-4 (карликовые породы, рождаются слепые) 4-6 (рождаются слепые) 1–12 и более (рождаются слепые) 6–8 Хомяк Голубой песец Лисица Норка Речной бобр Ондатра Нутрия Куница Хорек Ласка Енот Верблюд Африканский слон Индийский слон 270–285 42 10–11 недель 9–19 недель 13 месяцев 21–22 месяца 19–22 месяца 6–12 (рождаются слепые) 4 (рождаются слепые) 1–9 (рождаются слепые) У первородящих 4 У многородящих 5-6 В течение двух лет 5 приплодов 1–4 (рождаются слепые) 1-10 (рождаются слепые) 4–8 (рождаются слепые) 4–8 1 1 1 92 Таблица 26. Половая зрелость, начало и режим использования производителей Животное Время наступления половой зрелости, мес Начало приучения к садкам, мес. Начало использования, мес. До какого возраста используют, лет Режим использования при искусственном осеменении Бык 6-10 Жеребец 18 Баран 6-10 Хряк 6-10 12 24-36 7-8 8 16-18 36 14-18 10-11 14-17 20 и более 8 7-8 через 2-3 дня 6 садок в 2-4 садки в дублетная садка (с неделю день интервалом 10-15 мин.) Число маток, закрепленных за одним производителем 40-50 20-25 (до 30) 25-30 при вольном спаривании 60-100 40-50 50-60 при ручном спаривании Таблица 27. Годовая половая нагрузка естественном и искусственном осеменении Производ итель Половая нагрузка при естественном осеменении самок вольная ручная на одна садка через 3 дня производителя 10-15 15-20 при Искусственное осеменение Бык 35-40 60-100 кол-во закрепленных самок 2500-5000 Жеребец 20-25 40-50 100-300 Баран 25-30 50-60 1000-3000 Хряк 10-15 15-20 100-300 Кролик Кобель - 8-12 10-20 - режим получения спермы по 2 эякулята с интервалом 7-10 мин. через 3-4 дня. по одному эякуляту в день, один день в неделю – отдых по 2-4 эякулята ежедневно в сезон осеменения по одному эякуляту в 3 дня 93 Таблица 28. Показатели спермы животных, пригодной для осеменения Вид животного Бык Объем эякулята, мл. 4-5 в среднем 20 максимально Спермиев в 1 мл. млрд. 1-2 в среднем 6 максимально МолочноЦвет Консистенция Активность спермиев по 10бальной системе % патологических спермиев, не более Максимальный % незрелых спермиев Резистентность (усл. ед.., тыс.) Время обесцвечивания метиленовой сини, мин. Жеребец Хряк Баран Кролик Кобель Кот 50-100 300 300 1000 1-2 5 0,5 4 10 40 0,2 0,5 0,2-0,5 0,8 0,1-0,2 1 2-5 8 0,05-0,1 1 0,05-0,1 1 0,02-0,05 0,5 Сероватобелый, иногда белый желтоватый Сметанообраз Водянистая, ная часто со слизью Молочнобелый Сливочно- Молочнобелый белый Молочнобелый Молочнобелый Водянистая Сметано- Водянистая Водянистая Водянистая со сгустками образная 8-10 5-10 7-10 8-10 18 25 20 14 2 10 10 2 10-40 - - 10-40 5-30 - - 3-12 94 Таблица 29. Время и кратность рефлексологического исследования самок на беременность и бесплодие (самцом-пробником) Животное Кобыла Корова Свинья Овца Коза Кратность пробы 1 раз ежедневно или через день 2 раза в день 1-2 раза в день 1-2 раза в день 1-2 раза в день Проведение регулярной пробы после осеменения, дни начало конец 8 30 10 15 10-12 8 30 30 30 30 Таблица 30. Особенности плодных циклов у разных видов животных Животное Корова Проявление стадии возбуждения после родов, дни 18-25 Кобыла Продолжительность Полового Стадии Охоты цикла, дни возбуждения, дни 18-22 3-5 10-23 (16) ч 5, чаще 7-12 21-22 6-12 5-10 сут. Овца, коза 15-30 14-18 (чаще 16-17) 3-6 Свинья 30 (чаще через 25 дней после отъема поросят) 20-21 5-7 33-35 ч (у романовски х овец 4670 ч) 40-50 ч Сроки овуляции Через 10-15 ч после окончания охоты В конце охоты 27-36 ч (30-36 ч от начала охоты) Начинается на 2-й день после начала охоты и длится 24-48 ч 95 Таблица 31. Продолжительность родов у животных Животные Корова Кобыла Овца, коза Овцы романовской породы Свинья Длительность стадии родов подготовительной выведения плода последовой До 12 ч От 20 мин. до 3-4 ч 5-6 ч (до 10 ч) (иногда до 6 ч) От нескольких часов до 5-30 мин. 5-30 мин. 1-2 дней (иногда 30-50 мин.) 15 мин до 3 ч (иногда до 5-30 мин. (интервалы 10 мин.-3 ч (до 4 ч) 30 ч) между рождением плодов от 5 мин. до нескольких часов) 29-46 ч 7-25 мин. 1-2,5 ч Верблюдица Крольчиха 2-6 ч 2-6 ч. 9-15 мин. - 30-48 ч. 15-35 мин., иногда затягивается до суток. Вместе с плодом или вскоре после родов (3 ч) 30-90 мин. - Таблица 32. Продолжительность родов и выделения последа Животные Продолжительность раскрытия шейки матки Средняя продолжительность изгнания плода Кобыла от нескольких часов до 1-2 дней 30 мин., иногда 5-10 мин. Корова до 12 ч. и более Коза, овца Свинья около суток 2-6 ч. Сука Кошка 3-6 ч. 3-6 ч. от 20 мин. до 6 ч., в среднем 3 часа от 15 мин. до суток первый плод через 2-6 ч., остальные через 2-20 мин. от 10-15 мин. до 12 ч. от 10-15 мин. до 3-7 ч. Средняя продолжительность выделения последа после родов вместе с плодом или через 5-30 мин., реже через 2 ч. до 3-12 ч. до 3 -12 ч. вместе с плодом или вскоре после родов то же то же 96 Таблица 33. Половая цикличность у здоровых животных Животное Наступление Продолжительно течки после родов, сть течки, дней дней Кобыла Корова Ослица Овца Коза Свинья Сука Кошка Крольчиха* 8-9 20-50 9-10 15-35 16-30 55-60 4-5 мес. 30-50 4-5 Период относительного покоя, дней 2-11 16-32 часа 5-6 1-2 1-2 1-3 9-14 9-15 - 21-23 18-24 22-26 15-19 14-20 18-22 22-24 15-28 4-6 Прекращение течки в связи с возрастом, лет. 22-27 20-22 25-30 8 8 6-8 10 10 4-5 * Примечание: у кроликов течка обусловлена процессом спаривания, а также временем года. Таблица 34. Продолжительность жизни некоторых птиц Птица Сип Орел Страус Аист Журавль Сова Чайка Кукушка Попугай Максимальный возраст, лет 100 60-80 50 70 40-50 60-70 40-44 40 75-100 и более Птица Лебедь Дятел Гусь Ворона Голубь Курица Черный дрозд Канарейка Воробей Максимальный возраст, лет 100 50 50 70 40-50 15-20 18 10-12 (24) 20 (60) 97 Таблица 35. Продолжительность жизни некоторых животных Животное Слон Лошадь Осел Зебра Корова Верблюд Овца Коза Горный козел Олень Лань Лось Дикий кабан Домашняя свинья Носорог Максимальный возраст, лет 120-200 40-50 40-50 22 20-25 40-50 10-15 12-15 20-25 30 20 20 20-30 20-30 40-45 Животное Собака Волк Лисица Домашняя кошка Лев Тигр Медведь Бобр Белка Морская свинка Заяц Кролик Крыса Мышь Максимальный возраст, лет 10-15 (20) 10 10 9-10 20-25 20 40-50 20-25 10-12 4-5 (8) 7-8 5-7 3 3-3,5 (5) Таблица 36. Возраст домашних животных. Средние сроки возрастных изменений резцов у крупного рогатого скота Изменение зубов Прорезывание Стирание переднего края молочных резцов Стирание молочных резцов до шейки зуба Смена молочных зубов на постоянные Стирание эмали почти на всей язычной поверхности резцов; приближение формы стертой поверхности к четырехугольной Зацепы До рождения Средние внутренние До рождения 4–5 месяцев 5–6 месяцев Средние наружные До рождения или в первую неделю после рождения 6–8 месяцев Окрайки 10-12 месяцев 14 месяцев 16–18 месяцев 18–22 месяца 1,5–2 года 2,3–3 года 3–3,5 года 3,5–4 года 7 лет 8 лет 9 лет 10–11 лет 1–2 недели 8–9 месяцев 98 Таблица 37. Средние сроки возрастных изменений зубов у свиней Изменение зубов Прорезывание Смена молочных на постоянные Зацепы 10-15дней 12 месяцев Резцы Средние На третьем месяце 17-18 месяцев Клыки Окрайки До рождения До рождения 9 месяцев «Волчьи» зубы 5,5-6 месяцев - 9 месяцев Таблица 38. Средние сроки возрастных изменений резцов у овец Изменение зубов Зацепы Прорезывание Смена молочных на постоянные Появление щелей между резцами Резцы принимают долотообразную форму Выпадение резцов 1-2 недели Средние внутренние 3-4 недели 1,5 года 1,5-2 года Средние наружные 3-4 недели 2,5 года - 2 года 9 месяцев 4-6 лет Окрайки 3-4 недели 3-3,5 года 6-7 лет 7-8 лет Таблица 39. Средние сроки возрастных изменений резцов у лошадей Изменение зубов Прорезывание молочных резцов на нижней и верхней челюстях Стирание чашечки на молочных резцах Смена молочных резцов на постоянные Стирание чашечки на резцах нижней челюсти Стирание чашечки на резцах верхней челюсти Стирание следа чашечки на нижней челюсти Стирание следа чашечки на верхней челюсти Форма трущейся поверхности: округлая треугольная обратноовальная Зацепы Средние Окрайки 7-12 дней 15-45 дней 5-9 месяцев 10-12 месяцев 12-14 месяцев 15-24 месяца 2,5 года 3-5 лет 4,5 года 6 лет 7 лет 8 лет 9 лет 10 лет 11 лет 13 лет 14 лет 15 лет 16 лет 17 лет 18 лет 12 лет 15 лет 18 лет 13 лет 16 лет 19 лет 14 лет 17 лет 20 лет 99 Таблица 40. Средние сроки возрастных изменений зубов у собак Наименование зубов Зацепы Прорезывание молочных зубов Появление промежутков между молочными резцами Сглаживание молочных резцов Смена зубов на постоянные Начало стирания постоянных зубов нижней челюсти Начало стирания постоянных зубов верхней челюсти Сглаживание постоянных резцов нижней челюсти Сглаживание постоянных резцов верхней челюсти Резцы нижней челюсти принимают обраноовальную форму Резцы верхней челюсти принимают обратнооваль-ную форму Резцы Средние Окрайки На 3-й и 4-й неделе Клыки С 2 месяцев 2,5 месяца 3-3,5 месяца 4 месяца 4-5 месяцев 3-3,5 месяца 4-5 месяцев 4-6 месяцев 4-5 месяцев 15 месяцев 18 месяцев - 6 лет 3 года 4 года 6 лет 6 лет 2 года 2,5-3 года 4-5 лет - 3,5 года 4-5 лет 5-6 лет - 7 лет 8-9 лет - - 9-10 лет - - - 100 Таблица 41. Фронт кормления и поения, суточный расход воды на голову Животные Коровы молочные Коровы мясные Нетели Молодняк до 6 мес. Молодняк старше 6 мес. Свиньи супоросные Свиньи подсосные Поросята-отъёмыши Овцы и козы Ягнята и козлята Собаки Кошки Кролики Куры Цыплята Индейки Индюшата Утки Гуси Фронт кормления, см 70-80 70-90 40-60 40-50 50-60 40-50 40-50 25-30 30-40 15-20 20 10 10 10 7 8-10 6-8 10 15 Фронт поения, см 70-80* 70-90 40-60 40-50 50-60 40-50 40-50 25-30 30-40 15-20 20 10 2 2 2 2.5 2.5 3 3 Расход воды, л всего в т.ч на поение 100 65 70 65 60 40 20 10 30 25 25 12 60 20 10 8 10 8 3 3 2.5 0,9 1.0 0,3 3 3 0,9 0,3 0,4 0,3 1.31 1.0 0,8 0,7 0,9 0,75 1.6 1.3 Таблица 42. Требования к качеству воды, предназначенной для водопоя животных Показатель Запах и привкус, баллов Цветностьº Прозрачность, см Общая жёсткость, мг экв/л Сухой остаток, мг/л Взвешенные вещества, мг/л Реакция, рН Аммонийные соли, NH3 мг/л Нитраты, NO3 мг/л Органический азот, мг/л Хлориды, мг/л Сульфаты, мг/л Общее железо, мг/л Норма Не более 2 Не более 20 Не менее 30 не более 10 1000 и ниже 1,5 и ниже 6,5-9,0 3 и ниже Показатель Свинец, мг/л Ртуть, мг/л Мышьяк, мг/л Кадмий, мг/л Хром трёхвалентный, мг/л Хром шестивалентный, мг/л Медь, мг/л Цинк, мг/л Норма 0,1 и ниже 0,005 и ниже 0,05 и ниже 0,03 и ниже 0,5 и ниже 0,1 и ниже 3 и ниже 5 и ниже 7 и ниже 2 и ниже 350 500 1-1,5 Марганец, мг/л Никель, мг/л Ванадий, мг/л Фтор, мг/л Сумма тяжёлых металлов, мг/л Колититр 0,3 и ниже 1 и ниже 1 и ниже 1.5 1 и ниже Фосфаты, РО4 мг/л 0,5 и ниже Роданиды, мг/л Цианиды, мг/л 0,1 и ниже 0,02 и ниже Детергенты, мг/л 2 и ниже Болезнетворные микробы Общее количество колоний в 1 мл воды Содержание различимых глазом водных организмов Не менее 300 Отсутствие Не более 100 Отсутствие 101 Таблица 43. Параметры микроклимата помещений для крупного рогатого скота Показатель микроклимата Помещения для коров Родильное отделение Профилак торий Температура, Сº Относительная влажность, % Концентрация газов не более: углекислого газа, % аммиака, мг/м3 сероводорода, мг/м3 окиси углерода, мг/м3 Микробная осемененность, тыс. в 1 м3 воздуха, не более Скорость движения воздуха, м/с: зимой в переходный период летом Воздухообмен, м3/ч на животное: зимой в переходный период летом Освещение естественное: коэффициент освещённости,% световой коэффициент Освещение искусственное, лк 10 (8-12) 16 (14-18) 18 (16-20) Помещения для молодняка на на доращива откорме нии 15 (12-18) 12 (8-16) 70 (50-85) 70 (50-80) 70 (60-80) 70 (50-80) 70 (50-85) 0,25 20 10 2 0,15 10 5 0 0,15 10 5 0 0,2 15 5 0 0,25 20 10 2 70 50 30 40 70 0,3 0,5 0,2 0,3 0,1 0,2 0,2 0,3 0,3 0,5 0,8 0,5 0,4 0,5 0,8 17 35 17 35 - 17 35 17 35 70 70 - 70 70 0,5 – 0,8 0,8-1,0 0,8-1,0 0,8-1,0 0,4-0,5 1:15 1:10 1:10 1:15 1:20 50-75 75-100 50-75 50-75 20-50 102 Таблица 44. Параметры микроклимата помещений для свиней Показатели микроклимата Температура, Сº Относительная влажность, % Концентрация газов не более: углекислого газа, % аммиака, мг/м3 сероводорода, мг/м3 окиси углерода, мг/м3 Микробная осемененность, тыс. в 1 м3 воздуха, не более Скорость движения воздуха, м/с: зимой в переходный период летом Воздухообмен, м3/ч на животное: зимой в переходный период летом Освещение естественное: коэффициент освещённости, % световой коэффициент Освещение искусственное, лк Помещения для маток поросят холостых и глубоко подсосных с на легко супоросных поросятами отъемышей откорме супоросных -сосунами 15 (14-16) 18 (16-20) 18 (16-20) 22 (20-24) 18 (14-20) 75 (60-85) 70 (60-80) 70 (60-80) 70 (60-80) 70 (60-85) 0,2 20 10 2 0,2 15 5 - 0,10-0,15 15 5 - 0,2 15 5 - 0,2 20 10 2 100 60 50 50 80 0,3 0,5 1 0,2 0,3 1 0,15 0,2 0,4 0,2 0,3 0,6 0,2 0,4 1 35 45 60 35 45 60 35 45 60 10 20 50 45 65 90 1.2 1:10-1:12 1.2 1:10 1.2 1:10-1:15 1 1:10 0,5 1:15-1:20 50-100 50-100- 50-100 50-100 20-50 103 Таблица 45. Параметры микроклимата помещений для птиц Показатель микроклимата Куры Температура, 16-18 Сº Относительна 60-70 я влажность, % Скорость движения 0,2-1,0 воздуха, м/с Углекислый 0,15 газ, % 5-15 Аммиак, мг/м3 Сероводород, 5 мг/м3 Микробная обсемененность, до 250 тыс/м3 Концентрация 5,0 пыли, мг/м3 0,10Световой 1/12 коэффициент Освещенность, лк 30-75 Для взрослых Индейки Утки Гуси Для молодняка 1-30 31-60 61-150 дней дней дней 16 14 14 28-24 22-20 18 60-70 70-80 70-80 60-70 60-70 60-70 0,2-0,1 0,2-0,1 0,2-0,1 0,1-0,6 0,1-0,6 0,1-0,6 0,15 5-15 0,15 5-15 0,15 5-15 0,10 5-10 0,10 5-10 0,10 5-10 5 5 5 5 5 5 до 250 до 250 до 250 до 30 до 50 до 100 5,0 5,0 5,0 1,0 2,0 3,0-4,0 1/10-1/12 1/10-1/12 1/101/12 1/8-1/10 1/81/10 1/8-1/10 30-75 30-75 30-75 100 85 75 Таблица 46. Параметры микроклимата помещений для лошадей Показатель микроклимата Температура, Сº Относительная влажность, % Скорость движения воздуха, м/с Углекислый газ, % Аммиак, мг/м3 Сероводород, мг/м3 Микробная осемененность, тыс/м3 Концентрация пыли, мг/м3 Световой коэффициент Освещенность, лк Взрослые и молодняк старше года 5(4-6) 75 (60-85) 0,1-0,5 0,25 20 10 До 150 Кобылы с жеребятами 12(6-15) 60(50-75) 0,1-0,3 0,15 10 10 До 100 1-4 1/10-1/15 150-200 1-2 1/10-1/15 50-100 104 Таблица 47. Параметры микроклимата помещений для овец Показатель микроклимата Температура, Сº Относительная влажность, % Концентрация газов не более: углекислого газа, % аммиака, мг/м3 сероводорода, мг/м3 окиси углерода, мг/м3 Микробная осемененность, тыс. в 1 м3 воздуха, не более Скорость движения воздуха, м/с: зимой в переходный период летом световой коэффициент Освещение искусственное, лк Освещение естественное: коэффициент освещенности, % Помещения для Маток, баранов, Ягнения молодняка после отбивки 5 (3-6) 18 (16-20) 75 70 Маток 15 (12-16) 75 0,25 20 10 2 0,2 15 5 - 0,25 20 10 2 70 50 50 0,5 0,2 0,2 0,5 0,8 1:20 30-50 0,2 0,3 1:15 50-100 0,3 0,5 1:15 30-50 0,5 1 0,8