МИНИСТЕРСТВО СЕЛЬСКОГО ХОЗЯЙСТВА РОССИЙСКОЙ ФЕДЕРАЦИИ

МИНИСТЕРСТВО СЕЛЬСКОГО ХОЗЯЙСТВА
РОССИЙСКОЙ ФЕДЕРАЦИИ
ФЕДЕРАЛЬНОЕ ГОСУДАРСТВЕННОЕ ОБРАЗОВАТЕЛЬНОЕ
УЧРЕЖДЕНИЕ ВЫСШЕГО ПРОФЕССИОНАЛЬНОГО ОБРАЗОВАНИЯ
«АЛТАЙСКИЙ ГОСУДАРСТВЕННЫЙ АГРАРНЫЙ УНИВЕРСИТЕТ»
С.В. Федотов, В.П. Федотов
ПРОФИЛАКТИКА БОЛЕЗНЕЙ
И БИОТЕХНИКА РЕПРОДУКЦИИ КУР
В ФЕРМЕРСКИХ ХОЗЯЙСТВАХ
Учебное пособие
Барнаул
Издательство АГАУ
2007
УДК 619:636.5/.6.618.11
Федотов С.В. Профилактика заболеваний и биотехника
репродукции кур в фермерских хозяйствах: учебное пособие /
С.В. Федотов, В.П. Федотов. Барнаул: Изд-во АГАУ, 2007.
137 с.
В учебном издании освещены достижения науки и практики последних лет в области птицеводства и болезней птиц. В
нем отражены вопросы физиологии воспроизводства птиц, методы искусственного осеменения и профилактики заболеваний
органов яйцеобразования у кур.
Предназначено для студентов и слушателей ФПК.
Рекомендовано к изданию УМС ИВМ АГАУ (протокол
№ 78 от 29 ноября 2006 г.).
Рецензент – к.в.н., доцент, зам директора диагностического центра Россельхознадзора Ю.А. Хаперский.
© Федотов С.В., 2007
© ФГОУ ВПО АГАУ, 2007
© Издательство АГАУ, 2007
СОДЕРЖАНИЕ
Краткая анатомо-физиологическая характеристика .....................4
Характеристика заболеваний органов яйцеобразования……….21
Биотехника репродукции кур……………………………………72
Мероприятия по улучшению воспроизводства кур…………...103
Ветеринарно-санитарные мероприятия………………………..122
Библиографический список…………………………………….136
3
КРАТКАЯ АНАТОМО-ФИЗИОЛОГИЧЕСКАЯ
ХАРАКТЕРИСТИКА
Домашние куры, как установил Чарльз Дарвин, произошли
от диких банкивских кур, которые были широко распространены в Северной Индии. Куры относятся к классу птицы, подклассу настоящие птицы, надотряду килевые. Их численность в настоящее время составляет более 80% от общего количества
сельскохозяйственной птицы.
Внешние формы и признаки кур связаны с особенностями
биохимических и физиологических функций организма, которые в результате селекции направлены на улучшение продуктивных и другими хозяйственно полезных качеств. Например,
чем больше живой вес птицы одной и той же породы, тем крупнее она несет яйца. В свою очередь, большая длина киля указывает на плохую яйценоскость.
Анатомически у кур выделяют следующие части тела: голову, шею, грудь, спину, крылья и конечности. На голове у кур
различают клюв; гребень; ушные мочки; сережки и глаза. Клюв
у кур средней длины, слегка изогнутый. Такая форма клюва позволяет курам рвать плотный корм, а также захватывать семена
и насекомых. Гребень в зависимости от породы может быть разной формы: розовидный, листовидный, стручковидный, роговидный и бабочковидный. У птиц яйценоских пород наиболее
распространен листовидный гребень.
У кур хорошо развита грудь и задние конечности, особенно
у мясных пород. Ноги курам служат не только для ходьбы, но и
для добычи корма. Длинные ноги указывают на хорошую яйценоскость. Пальцев на задней конечности четыре, при этом первый палец ноги направлен назад.
Хвост у кур короткий. Он обеспечивает устойчивую основу
для перьев хвоста. Хвостовое оперение лучше развито у яйценоских пород.
Перья служат курам для защиты от воздействия окружающей среды и для осуществления незначительных перелетов. Они
подразделяются на следующие
4
Рис. 1. Домашние куры.
Категории: большие маховые, рулевые, малые маховые,
кроющие, пуховые, нитевидные, кисточковые и щетинки
Скелет кур имеет ряд особенностей. Он подразделяется на
две структуры: осевой скелет, состоящий из черепа, позвоночного столба, ребра и грудины; а также скелета конечностей
(кости грудного пояса, крыльев, задних конечностей и таза). Туловищный отдел позвоночника у кур мало подвижен, но при
этом сильно развита грудная кость – киль. Вес скелета у взрослых кур составляет 9-11 % веса живой массы.
Пищеварительная система у кур современных кроссов работает эффективно, обеспечивая оптимальное содержание питательных и биологически активных веществ в крови. Ротовая полость кур не имеет границы с глоткой, в отличие от млекопитающих. У птиц не зубов, отсутствует небная занавеска, щеки и
губы. На дне ротовой полости расположен язык. На кончике и
спинке языка имеется роговой слой с образованием зубчиков,
которые направлены острием к глотке и способствуют проталкиванию пищевых масс.
Пищевод в нижней части шеи имеет шарообразное расширение - зоб, который служит местом временного пребывания
5
корма. Объем зоба изменяется, чему способствует большая растяжимость его стенок.
Желудок имеет два отдела - преджелудок или железистый
желудок и мышечный желудок. В функциональном отношении
они тесно связаны. Внутренняя оболочка мышечного желудка
(кутикула) представляет собою плотную кожистую пленку. По
мере стирания, кутикула наращивается изнутри за счет секреции
желез желудка. Кутикула в отдельных случаях приобретает зеленоватый цвет от желчи, которая забрасывается из двенадцатиперстной кишки в мышечный желудок. Железистый желудок
расположен сразу за пищеводом и имеет форму мешочка. Мышечный желудок по форме похож на диск с толстыми стенками,
темно-красного цвета. У кур он весит 50 грамм.
Кишечник - это полая трубка, сложенная петлями и подвешенная на брыжейке. Брыжейка вместе с кишечником прикрепляется к тазовому отделу позвоночного столба. Оболочка, покрывающая брюшную полость и кишечник, выделяет жидкость,
которая увлажняет поверхность, облегчая скольжение петель
кишечника.
Длина кишечника зависит от возраста птицы и характера ее
питания. У кур длина кишечника (160-170 см) в шесть раз превышает длину туловища. Кишечник разделяется на тонкий и
толстый отделы. К тонкому относятся двенадцатиперстная, тощая и подвздошная, кишки. Примерно на середине тонкого отдела находится рудиментарный желтковый отросток, отделяющий тощую кишку от подвздошной. К толстому отделу относятся прямая кишка, которая открывается в клоаку; два слепых отростка. Они расположены под углом 25-30° к поверхности кишечника по направлению к желудку, в месте перехода подвздошной кишки в прямую. Длина отростков у цыплят - 5-7 см,
у взрослых кур - 18-30 см. Заканчивается кишечник прямой
кишкой, длиной которой колеблется от 6 до 8 см. В прямой
кишке формируются каловые массы.
Клоака - это расширение в конечной части кишечника. В
верхней части клоаки имеется мешковидное выпячивание с
плотными железистыми стенками (фабрициева сумка). В средний отдел открываются мочеточник, семяпровод и яйцевод.
6
Поджелудочная железа расположена в петле двенадцатиперстной кишки. Имеет удлиненную форму желтоватый цвет,
состоит из трех долей и имеет три выводных протока. Длина ее
у кур достигает 12-25 см, вес до 40 грамм. Главный выводной
проток железы впадает в двенадцатиперстную кишку рядом с
желчным протоком.
Печень выделяет желчь, которая поступает в синус, затем
синусно-пузырному ходу в желчный пузырь. Синус и желчный
пузырь соединяются с двенадцатиперстной кишкой при помощи
пузырно-кишечного и синусо-кишечного протоков. Она выполняет барьерные (защитные) функции, обеззараживает токсические вещества, проникающие в кровь из кишечника и желудка, а
также в ней накапливаются витамины и гликоген.. Анатомически печень разделена на доли, при этом левая доля больше правой. Печень у кур достигает массы 40 грамм, что составляет 1/25
веса тела.
Пищеварение - это процесс превращения питательных веществ, содержащихся в корме, в усвояемую для организма форму. С помощью клюва, зоба, мышечного желудка, кишечника корм подвергается механической обработке: дробится, растирается, перемешивается и доводится до нужной консистенции.
Одновременно с этим на него оказывают действие бактерии,
которые поступают с кормом и находятся в содержимом пищеварительного тракта. Они подвергают биологической обработке
растительные клетки и в некоторой степени разрушают их. С
помощью секретов пищеварительных желез, происходит химическая обработка корма, в результате чего, Белки, жиры и углеводы расщепляются на более простые компоненты, которые хорошо растворяются и всасываются через стенку кишечника в
кровь. Минеральные вещества, вода и некоторые витамины, высвободившиеся из корма, переходят в раствор и поступают в
кровь без дополнительной обработки. Процесс пищеварения
заключается в химическом превращении питательных веществ
из коллоидального в кристаллоидное состояние, при котором
питательные вещества корма, приобретают растворимость и могут всасываться через оболочки клеток кишечника и поступать в
кровь и лимфу.
7
Под языком и в его шейке у птиц имеются вкусовые почки,
с помощью которых они различают сладкое, кислое, и, по некоторым данным, горькое. Захваченный корм смачивается слюной
и направляется в пищевод, где обволакивается слизью и поступает в зоб. Проходя через железистый желудок, корм механически возбуждает работу его желез, в ответ они выделяют пищеварительный сок В состав пищеварительного сока входят: соляная кислота, пепсиноген, который в присутствии соляной кислоты переходит в активную форму - пепсин. Он расщепляет белки.
Мышечный желудок с хорошо развитыми мышцами и роговой оболочкой как бы заменяет жевательный аппарат, отсутствующий у птиц. Сокращается желудок ритмично 2-3 раза в минуту, длительность каждого сокращения от 15 до 50 секунд.
Давление в мышечном желудке у кур достигает 265-280 мм
ртутного столба. Находящийся в желудке гравий и другие инородные тела увеличивают степень дробления корма Кутикула
предохраняет мышцы от механических повреждений. В мышечном желудке происходит процесс расщепления белков и частично распад углеводов под влиянием бактерий, поступивших с
кормом.
Продвижение пищи из желудка в кишечник регулируется
осмотическим давлением содержимого мышечного желудка. На
пищевую массу в двенадцатиперстной кишке действует желчь,
соки поджелудочной железы и кишечных желез. При участии
ферментов, здесь происходит активный процесс полостного и
пристеночного кишечного пищеварения.
В слепые отростки поступает не весь химус, а только его
часть, содержащая мелкие частицы корма. В слепых отростках
интенсивно всасывается вода и переваривается клетчатка. Превращение клетчатки происходит при участии ферментов и бактерий.
Питательные вещества в кровь и лимфу всасываются главным образом в тонком отделе кишечника, частично - в слепых
отростках и толстом отделе кишечника.
Система органов мочеотделения у кур состоит из почек и
мочеточников. Почки удаляют излишек воды и тем самым, поддерживают оптимальное осматическое давление в крови и тканях. Они выводят ядовитые вещества, попавшие в организм
8
случайно или в виде лечебных средств. Почки имеют продолговатую форму. У взрослых кур они темно-коричневого цвета, у
молодняка - бледно-розового. Расположены почки в углублениях пояснично-кресцового отдела, по сторонам позвоночного
столба. Правая и левая почки разделены между собой телами
позвонков. Вес их 12-18 грамм.
Мочевого пузыря у кур нет, поэтому мочеточники открываются сразу в клоаку. Моча птиц существенно отличается по
своему составу от мочи млекопитающих. Она имеет слабожелтый цвет. Основным конечным продуктом белкового обмена
является мочевая кислота, тогда как у млекопитающих - мочевина. Кроме того, в моче кур найдены в неболыших количествах
аммиак и орнитуровая кислота, которая специфична только для
птиц (в моче млекопитающих содержится гиппуровая кислота).
У петуха органы размножения состоят из двух семенников
с придатками; двух спермопроводов, которые открываются в
среднюю часть клоаки; семенных пузырьков; половых сосочков
и рудимента органа совокупления.
Семенники птиц овальной, эллипсовидной или бобовидной формы. Расположены они в брюшной полости симметрично
по обе стороны средней линии у переднего конца почек, вблизи
надпочечников, прилегая к брюшному воздухоносному мешку.
При этом левый семенник, как правило, развит лучше правого.
Абсолютная масса и размеры семенников зависят от вида, возраста птицы, а также от ее физиологического состояния. У петухов достигших физиологической зрелости длина семенника
составляет 3-4 см, ширина — 2-3 и толщина — 1-2 см, средняя
масса - 10 г. У взрослых петухов в период активной половой
деятельности масса семенников достигает 30-34 г., то есть увеличивается в 3 раза. В период линьки самца масса их уменьшается до 4-6 г.
Цвет семенников светло-розовый в раннем возрасте и белый в период половой активности. Семенник покрыт белочной
оболочкой, от которой отходят соединительные волокна Семенные канальцы, соединяющиеся между собой, образуют густую
сеть. Канальцы выстланы изнутри зародышевым эпителием и соединены между собой соединительной тканью. В веретенообразных расширениях канальцев происходит размножение спермиев.
9
Рис. 2 . Половые органы петуха:
1 — правый семенник; 2 — область придатка семенника; 3 — семявыносящий
проток; 4 — правая почка; 5 — мочеточник; 6 — мышечный отдел семявыносящего протока; 7 — белочный отдел; 8 —
круглая складка семяпровода; 9 — лимфатическая складка; 10 — правый выбрасывающий проток; 11 — отверстие прямой кишки; 12 — стенки клоаки
Придаток, окруженный обшей капсулой семенника, имеет
продолговатую форму, расположен у его дорсомедиальной стороны. У петухов придаток развит относительно слабо и заметно
увеличивается только в период активной деятельности. Придаток у петухов желтоватого цвета, в него впадает большое число
выносящих канальцев, по которым из сети семенника продвигаются половые клетки. Выносящие канальцы, сливаясь в
проток придатка, переходят в спермопровод. В придатке семенника спермин дозревают. Семенная жидкость образуется у птиц
в извитых и выносящих канальцах семенника. Данная среда выводит спермии из состояния анабиоза, повышающая их активность.
От придатка семенника рядом с мочеточниками параллельно позвоночному столбу идут два семипровода. Спермопроводы - тонкие извитые трубочки, верхняя часть которых
расположена вертикально от поперечных выносящих вен, а нижняя — параллельно мочеточникам. Их размер также меняется в
зависимости от половой активности самцов.
В расширениях спермопроводов перед входом в клоаку
скапливается сперма. В период половой активности семяпроводы и семенные пузырьки (расширенная нижняя часть семяпроводов) наполнены спермиями. Открываются семяпроводы в
клоаку, в небольших ее утолщениях, носящих название половых
сосков.
10
У петухов, не имеющих специального органа совокупления, возле расширенной части спермопровода расположено пещеристое тело с большим количеством кровеносных сосудов.
Пещеристая часть при половом возбуждении набухает. При спаривании самец прижимает свою клоаку к клоаке самки. Влагалище самки выпячивается, и сперма поступает в него, минуя
клоаку.
Половая активность у петухов высокая. В течение суток он
способен осуществить 14-29 копуляций, выделяя 0,4-1,6 мл
спермы. В 1 мл эякулята петуха породы белый леггорн насчитывается 1,4-2,33 млн. спермиев. Спермии, поступая в половые
органы самки, сохраняют свою жизнидеятельность в течении 730 суток. Наибольшая их активность отмечается в течение 10-12
суток. Оплодотворение яйцеклетки осуществляется в первые 20
минут после овуляции. В процессе оплодотворения участвуют в
среднем 300 спермиев (Лысов В.Ф., Максимов В.И., 2003).
У кури половой аппарат состоит из одного левого яйцевода
(правый редуцирован) и яичника. Яичник является органом
формирования яйцевых клеток (желтков), обогащенных питательными веществами. У взрослых кур яичник имеет форму
продолговатой четырехугольной пластинки. Расположен он в
поясничной части брюшной полости, перед левой почкой. В
пластинке яичника различают сосудистый слой, имеющий
большое количество отростков, и наружный корковый слой, который придает яичнику складчатость. Размеры
яичника существенно варьируют в зависимости от возраста, физиологического состояния и породы кур.
По морфологическим признакам и физиологическим
функциям яйцевод делится на пять отделов: воронку, белковый
отдел, перешеек, матку, влагалище.
Воронка (infundibulum) имеет овальное отверстие диаметром 8-9 см, открывается в брюшную полость около яичника.
Стенки воронки утончены и несколько выпячены образуя как
бы его губы, которые мышечными связками соединяются с
брюшной стенкой. Благодаря связкам воронка может
передвигаться вперед и отодвигаться назад, захватывая яйцеклетку из желточного кармана после ее овуляции.
11
Рис. 3. Органы размножения курицы:
1 – дорсальная артерия; 2 – артериальный анастомоз; 3 – краниальная
брыжеечная артерия; 4 – развивающийся фолликул; 5 – созревающий
фолликул; 6 – яичная артерия; 7 – зрелый фолликул; 8 – стигма;
9 – брюшная связка яйцевода; 10 – воронка яйцевода; 11 – сеть яичных
артерий; 12 – отводящая вена; 13 – белковая часть яйцевода; 14 – вена
яйцевода; 15 – средняя яичная артерия; 16 – перешеек; 17 – брюшная
часть; 18 – связка; 19 – яйцо в матке; 20 – мышца, запирающая
сфинктер; 21 – сеть венозных сосудов; 22 – вагина; 23, 24 – нижний
и верхний свод клоаки; 25 – клоака; 26 – матка; 27 – артерия прямой
кишки; 28 – прямая кишка; 29 – сеть венозных сосудов;
30 – каудальная артерия; 31 – вена слепого отростка кишки;
32 – отводящая вена почки; 33 – подвздошная вена; 34 – позвоночная
артерия; 35, 36 – почечные вены; 37 – подвздошно-кишечная вена;
38 – портальная вена; 39 – венозный анастомоз; 40 – фолликул;
41 – вена передней доли почки; 42 – незрелый фолликул;
43 – фолликулярная артерия; 44 – передняя отводящая вена
12
Белковый отдел (magnum) имеет более толстые стенки и
длину до 45 см. Слизистая его собрана в 15-25 основных продольных складок, которые могут образовывать вторичные. Слизистая оболочка белкового отдела покрыта цилиндрическим
эпителием, представленным мерцательными и бокаловидными
клетками.
В белковом отделе имеется два типа желез: трубчатые и
одноклеточные. Секреты одноклеточных желез выделяются в
виде капелек, которые превращаются в мелкие зернышки сразу
после выделения. При появлении капельки дают окраску характерную для муцина, после распада капелек характерная окраска
секрета исчезает. Секрет трубчатых желез вначале зернистый,
спустя некоторое время теряет свою зернистость и становится
жидким. Секреты обоих типов желез смешиваются в просвете
яйцевода и теряют свою специфичность. При этом секрет послойно обволакивает яйцеклетку, с начало густым, затем жидковатым и снова густым слоем белка.
В перешейке, так же как и в белковом отделе, имеются
трубчатые и одноклеточные железы, состоящие из кубического
эпителия. Установлено, что они секретируют зернистое керотиноподобное вещество, образующее клейкие нити, формирующие
подскорлупные оболочки.
Процесс отложения скорлупы начинается уже в средней
части перешейка и при этом скорость транспорта этого элемента
в большей степени зависит от овуляторного цикла именно в
этом отделе, чем в матке.
Матка (uterus) имеет форму мешка длиной 10-15 см. Это
яйцеобразующая отдел яйцевода, она имеет короткую узкую
переднюю часть, которую яйцо проходит быстро, и мешкообразную заднюю часть, где происходит основное формирование
скорлупы.
В матке скорлупа яиц кур различных пород покрывается
тонким защитным слоем, быстро высыхающим при яйцекладке
на воздухе. Железы матки более узкие и тонкие, чем в предыдущих отделах яйцевода. Клетки желез краниального отдела
матки имеют ацидофильные гранулы.
Влагалище (vagina) представляет собой мышечную трубку
длиной от 6 до 10 см. Она имеет хорошо развитый слой кольце13
вых мышц. Влагалище открывается в клоаку. Влагалищное
отверстие расположено над заднепроходным отверстием, через
которое происходит опорожнение кишечника. Во время яйцекладки происходит инвагинация стенки влагалища, вследствие
чего яйцо из матки попадает прямо во внешнюю среду, не соприкасаясь со стенкой клоаки.
Полностью яйцевод представляет собой подвижную подвешенную на брыжейке трубку, передний конец которой открывается в брюшную полость, а задний в клоаку. В яйцеводе формируется яйцо. Продолжительность пребывания яйца в яйцеводе 20-24 часа.
Выделение яйцеклетки из фолликула является одним из
важнейших физиологических процессов в биологии размножения птиц. До тех пор, пока яйцо находится в полости матки,
другой конец яйцевода находится в относительно спокойном
состоянии. Как только яйцо снесено, воронка яйцевода несколько выпячивается, как бы заглатывая яичник, а за тем опускается.
При этом воронка захватывает самый большой фолликул. При
сильном сжатии мышц вызревший фолликул лопается, и яйцеклетка выходит в просвет яйцевода.
По данным Б.Г. Новикова (1975), процесс яйцекладки зависит от гормональной деятельности организма несушки. При
этом работа гипоталамуса, секретирующего рилизинг-гормоны,
определяет сезонную изменчивость яйценоскости. Аденогипофиз, выделяя пролактин, фолликулостимулирующий, лютеинизирующий, соматотропный, тиреотропный и адренокортикотропный гормоны, оказывает активное влияние на деятельность
половых желез. Нейрогипофиз продуцирует аргининвазопрессин, окситоцин и антидиуритин. Данные биологически
активные вещества стимулируют кровоснабжение органов яйцеобразования, регулируют водный обмен и регулируют сокращение мышц матки яйцевода при снесении яйца.
Проходя по яйцеводу, яйцо оказывает механическое воздействие на стенки, создавая этим биоэлектрический потенциал,
стимулирующий синтез простогландинов, которые вместе с
прогестероном и аргинин-вазотоцином вызывают сокращение
гладкой мускулатуры яйцевода.
14
Таблица 1
Последовательность формирования яйца
в яйцеводе птицы (по Б.Ф. Бессарабову, 2003)
Отдел
яйцевода
Длина,
См
Масса,
Г
Время
нахождения
яйца, ч
Воронка
9
1,0
0,25-0,5
Белковая
часть
32
17,6
2-3
Перешеек
10
4,3
1-1,5
Матка
11
13,5
19-21
Влагалище
10
5
секунды
Процессы, происходящие
в отделах яйцевода
Оплодотворение яйцеклетки,
частичное выделение плотного белка, образующего
градинки
Выделение основной части
плотного и жидкого белка;
формирование градинок наружного плотного, внутреннего и наружного жидкого
слоев белка
Выделение жидкого белка,
образование подскорлупных
оболочек, дальнейшее формирование градинок.
Разжижение наружного и
внутреннего слоев
Выделение
минеральных
солей, воды формирование
скорлупы. Дальнейшее разжижение наружного плотного и внутреннего жидких
слоев. Частичная потеря воды наружным жидким слоем.
Образование надскорлупной
пленки
Сокращение мышц, помогающих вы делению яйца из
организма птицы
Таким образом, движение яйцеклетки по яйцеводу осуществляется с помощью сокращения мышц матки и влагалища яй15
цевода. В большинстве случаев яйцо выходит острым концом.
Кладка яиц происходит циклами. Циклом называется снесение
яиц в течение нескольких дней подряд. У малопродуктивных
кур циклы короткие, а перерывы в яйцекладке длинные. Длинные циклы с короткими интервалами характеризуют хороших
несушек. Во время длинных циклов снесение яиц происходит в
одни и те же часы, за исключением нескольких дней в начале и
в конце цикла. При этом в процесс интенсивной яйценоскости
резко возрастает нагрузка на организм несушки.
За один год жизни из организма курицы-несушки выделяется с яйцом большое количество питательных веществ, превышающих в несколько раз массу ее тела. Так, при яйцекладке 300
яиц в год курица выводит из организма 1,4 кг белка, 1,2 кг жира,
1,2 кг минеральных веществ, 10-11 кг воды, поэтому очень важно обеспечить птицу высоким уровнем кормления с включением
в комбикорма витаминов, макро- и микроэлементов. Любой
сбой в кормлении и содержании вызывает патологические изменения в репродуктивных органах птиц.
Яйценоскость кур отдельных пород, линий, доходит до 250
яиц в год и более. На конкурсе в Японии в 1957 году была отмечена курица, которая снесла 365 яиц в год. В течение года яйценоскость у кур изменяется. Наиболее высокая продуктивность
наступает в весенне-летний период. Хорошие несушки подвижны, жизнедеятельны, хорошо фуражируют, постоянно находятся
в движении, с охотой поедают корм. Плохая несушка обычно
мало подвижна и плохо поедает корм. Гребень и сережки у несушек розового или красного цвета, набухшие, на ощупь теплые, в связи с увеличенным притоком крови; у не несущихся
кур они сморщенные, бледные, суховатые, на ощупь холодные.
Клоачное отверстие, у несущихся кур увеличенных размеров,
полураскрытое, набухшее, влажное; у не несущихся - сухое, суженное, морщинистое.
Начало яйцекладки у молодок наступает в возрасте 150-170
дней и продолжается семь-восемь месяцев. С возрастом яйценоскость у кур снижается: в среднем на второй год на 15-20 %,
на третий год на 20-35 %.
Первая линька начинается у цыплят в месячном возрасте.
При этом заменяется все перо. Смена пера длится 3-4 месяца.
16
Линька начинается с выпадения перьев крыла и хвоста. У взрослых кур смена пера происходит ежегодно. Начинается линька в
сентябре-октябре, когда сокращается световой день. Смена
перьев у птиц происходит в строго определенном порядке. Сначала заменяется перо шеи, спины, затем других частей туловища. Линька может проходить активно и пассивно. При активной
линьке несушки роняют от 2 до 5 перьев.
Перо вырастает у кур в течение 6-8 недель и отличается от
старого блеском и более широким, полным и мягким стержнем.
Линька - сложный биологический процесс, во время которого
уменьшается вес птицы, повышается возбудимость, прекращается яйцекладка. Во время линьки происходит не только смена
пера, но и подготовка организма курицы к новому циклу яйцекладки. Хорошие условия в период линьки могут обеспечить
высокую продуктивность кур в следующем цикле. Яйценоскость у кур активизируется с наступлением теплых весенних
дней.
Процесс оплодотворения и стадии эмбрионального развития
В цитоплазму яйца проникает от 20 до 60 спермиев (Бехтина, 1970), большинство из которых лизируются на разных
стадиях формирования яйца, и только один из них превращается
в мужской пронуклеус. Стадия двух пронуклеусов (мужского и
женского) зафиксирована Олсеном через 20-30 мин. после попадания яйцеклетки в воронку яйцевода. Мужская и женская гаплоидные группы хромосом объединяются, превращаясь в диплоидную метафазу. Слияние пронуклеусов происходит через 3-5
ч после овуляции, когда яйцо, пройдя белковую камеру, попадает в перешеек яйцевода (Бехтина, 1970).
Процесс воспроизводства у птиц подчиняется половым
рефлексам. Сложный безусловный половой рефлекс птиц включает в себя четыре феномена: приближение (локомоторные половые рефлексы); подготовка копуляционных органов (эрекции); совокупление (копуляционный рефлекс); эякуляция.
Половые рефлексы взаимосвязаны и осуществляются последовательно лишь в комплексе. После рефлекса приближения
(ухаживания), как правило, наблюдается эрекция половых орга17
нов, затем следует копуляционный рефлекс и далее наступает
эякуляция, при которой происходит извержение спермы. Спермин птиц в отличие от спермиев млекопитающих, попадая в яйцевод самок после полового акта или искусственного осеменения, надолго сохраняют способность к оплодотворению.
Отличительная особенность самцов птиц – их высокая половая активность. Отдельные петухи могут спариваться с курами до 60 раз в день и даже более. Однако столь частые спаривания приводят к выделению биологически малоценной спермы,
что влечет за собой уменьшение оплодотворяемости яиц и вывода цыплят.
Спермин, попавшие в яйцевод, продвигаются к его воронке. Их продвижение осуществляется в результате собственной
подвижности, а также в результате колебания ресничек мерцательного эпителия слизистой оболочки половых путей и сокращения мышц стенок яйцевода.
По данным некоторых исследователей, у кур через 1-2 ч
после спаривания спермин обнаруживались во влагалище, через
5 ч – в матке и перешейке, через 72-75 ч – в воронке яйцевода.
Оптимальный период, в течение которого женские половые клетки кур после овуляции из яичника могут быть нормально оплодотворены, составляет примерно 20-25 мин после овуляции. Если за это время встреча яйцеклетки со спермиями не
произойдет, то она утрачивает способность к оплодотворению,
так как в цитоплазме наступают необратимые процессы. Местом
оплодотворения (в норме) половых клеток является воронка яйцевода.
После спаривания или искусственного осеменения самок
спермин быстро проходят вверх по яйцепроводящему тракту,
большинство из них сразу оседают в трубчатых железах маточно-влагалищного сочленения, небольшая часть остается в железах шеечной части воронки, а оставшиеся в просветах яйцевода
мигрируют обратно в конец матки. Важно отметить, что для
нормального оплодотворения яйцеклеток необходимо присутствие значительного количества спермиев в железах маточно-влагалищного сочленения. Причины, побуждающие периодическое
перемещение спермиев из мест их хранения в воронку яйцевода
18
для встречи с яйцеклеткой и ее оплодотворения связаны с разностью потенциалов мужских и женских половых клеток.
Механизм проникновения спермиев в яйцеклетку и взаимодействия их с ней довольно сложен. При взаимодействии
спермия с яйцеклеткой происходит акросомная реакция, во время которой из акросомы головки спермия выталкивается специальная нить, которая входит в образующийся на поверхности
яйцеклетки воспринимающий холмик. При этом желточная оболочка яйцеклетки птиц под воздействием лизинов, выделяемых
акросомой спермия, растворяется. После разрыхления желточной оболочки в цитоплазму яйцеклетки проникает сначала
головка, затем шейка и тело спермия, а его хвостик остается за
пределами яйца. При оплодотворении в яйцеклетку кур одновременно могут проникать несколько спермиев, однако с ее
ядром сливается ядро только одного из них, а остальные спермин ассимилируются цитоплазмой и используются как источник
питательных веществ и энергии для развивающейся оплодотворенной клетки – зиготы. Слишком большое число спермиев,
проникших в яйцеклетку, может привести к ненормальному развитию зародыша. Об этом необходимо помнить при проведении
искусственного осеменения птиц, строго соблюдать режим и
оптимальную дозу однократного осеменения.
Вхождение центросомы спермиев приводит к активизации
развития зиготы. В то же время происходит слияние ядер яйцеклетки и спермия и образование нового ядра зиготы с диплоидным (полным) набором хромосом.
Через час после этого наступает первое дробление образовавшейся зиготы. За время пребывания в перешейке зигота
обычно достигает стадии 20 бластомеров. Наиболее интенсивно
зигота делится в период формирования яйца в матке. Ко времени снесения готового яйца зигота значительно продвигается в
своем развитии и может достигнуть стадии бластулы или гаструлы (что соответствует 128-256 клеточным стадиям) в зависимости от времени нахождения яйца в матке (16-22 ч).
Таким образом, зигота способна к сложному делению –
митозу. Через 20-30 мин. после оплодотворения за первичной
бороздкой сегментации следует вторая, и при поступлении яйцеклетки в матку бластодиск состоит уже из 4-8 бластомеров. В
19
течение 24 ч пребывания яйца в яйцеводе успевает образоваться
128-256 бластомеров. Наступает первая стадия развития зародыша – стадия бластулы, или начала гаструлы. Как правило, в
только что снесенном оплодотворенном яйце зародыш чаще всего находится в начальной стадии гаструлы. Начавшийся в яйце
процесс развития зародыша под влиянием более низкой
внешней температуры временно прекращается. Зародыш в этой
стадии имеет вид маленького белого пятнышка, состоящего из
двух листиков –наружного и внутреннего.
Все последующие стадии эмбрионального развития, совершающиеся в птичьем яйце уже вне организма матери, исследованы и описаны в ряде монографий (Рагозина, 1961; Олсен и
Нир, 1948).
В литературе имеются сведения о том, что у птиц в отдельных случаях происходит развитие яйцеклетки без оплодотворения, так называемое партеногенетическое развитие. Как
правило, зародыши в таких яйцах погибают на разных стадиях
инкубации. По сообщению Олсена, из 42000 проинкубированных яиц виргинных индеек вывелось лишь 67 индюшат. Все они
оказались самцами, некоторые дожили до половой зрелости, давали жизнеспособную сперму и оставили потомство.
Таким образом, после овуляции все дальнейшие преобразования яйцеклетки происходят в период прохождения по яйцеводу осемененной самки. Уже в воронке яйцевода в яйцеклетку проникают спермин, которые стимулируют второе редукционное деление, и лишь один из них, превращаясь в мужской
пронуклеус, вскоре сливается с яйцеклеткой. Вместе с тем стало
ясно, что способность самок домашних птиц нести оплодотворенные яйца в течение длительного времени после прекращения
осеменения обусловлена продолжительным сохранением спермиев в яйцепроводящих путях.
Г.Я. Копыловская и др. отмечают, что у кур пород юбилейная и леггорн при естественном напольном скрещивании оплодотворенность яиц в большей мере зависит от самцов, точнее,
от количественных и качественных показателей их спермы, а
выводимость – от кур, от качества яиц и способности к оплодотворению. При искусственном осеменении птиц роль самцов
значительно возрастает, так как спермой одного петуха можно
20
осеменить не 10-12 кур, как при естественном спаривании, а 5060 и даже сотни.
В первую очередь самцов в раннем возрасте отбирают с
учетом их родословной. Оставляют самцов, полученных от здоровых высокопродуктивных родителей. Из наиболее ранних
признаков, присущих уже отобранному самцу, важны в первую
очередь форма и расположение полового бугорка, форма гребня
и окраска оперения.
О пониженных воспроизводительных особенностях петухов, которые в 60- и 150-дневном возрасте имели плохо развитый гребень, сообщила О. Антонюк. Объем эякулята у них во
взрослом состоянии был меньше на 0,4 мл, а концентрация
спермиев – на 1,4 млрд, чем у петушков с хорошо развитым
гребнем.
Установлена положительная связь воспроизводительных
способностей петухов с окислительными свойствами крови и
типом альбуминов ВВ сыворотки крови петухов.
Доказано, что оплодотворенность яиц и вывод цыплят находятся в положительной связи с объемом эякулята, концентрацией, подвижностью, числом живых спермиев, резистентностью
и в отрицательной – с числом патологических спермиев и со
временем обесцвечивания метиленовой сини.
ХАРАКТЕРИСТИКА ЗАБОЛЕВАНИЙ
ОРГАНОВ ЯЙЦЕОБРАЗОВАНИЯ
В товарном яичном птицеводстве наиболее развита клеточная система содержания, которая способствует высокой яйценоскости кур при более низких затратах труда. Тем не менее
интенсификация птицеводства, связанная с переводом кур на
клеточное содержание, удаляет их от естественных условий
обитания. Куры, лишенные моциона, солнечной энергии и других факторов общебиологического действия, больше склонны к
заболеваниям нарушения обмена веществ, в том числе и к патологии органов яйцеобразования.
21
Яичная продуктивность – чувствительный показатель здоровья несушек, и ряд факторов, вызывающих заболевания и
ухудшающих состояние птицы, влияют на яйцекладку.
Степень изменения в яичнике или в яйцеводе может быть
различной: от малозаметных изменений до желточного перитонита. Последний чаще всего представляют слившиеся сальпинкс
и фолликулярную массу яичника. Образованию единого процесса способствуют выпад экссудата в брюшную полость, а вместе
с тем разрыв фолликулов и разрушение участков яйцевода.
Большое значение имеет реактивность организма, т.е. способность отвечать изменениями жизнедеятельности на воздействия окружающей среды; изменения реактивности являются
процессами, главным образом, защитно-приспособительного
характера (Данилова А.К., Найденский М.С., 1975). На состояние физиологической реактивности организма влияют возраст,
генетические особенности, кормление, содержание. Большое
значение имеют индивидуальные особенности нервной системы,
функция желез внутренней секреции и состояние обмена веществ.
Основной причиной патологии яйцевода, по мнению ряда
исследователей (Феоктистов П.И., 1962; Бессарабов Б.Ф., Байдевлятов А.Б., Мельникова И.И., 1997 и др.), является нарушение в организме несушки обмена веществ, в частности, недостаточность кальция, холина, витаминов А, Д, Е, избыток фосфора
и белковое перекармливание. Избыток белковых кормов способствует развитию токсикозов вследствие накопления в крови
солей мочевой кислоты и других кислореагирующих продуктов
метаболизма.
Птица, перенесшая тепловой стресс, по данным Б.Ф. Бессарабова, А.Б. Байдевлятова, И.И. Мельниковой (1997), начинает откладывать неполноценные яйца: без скорлупы, с одной
только подскорлупной оболочкой, с наличием крапчатых известковых наложений, с насечками или неправильной формы.
При длительном тепловом стрессе нередко наблюдается «литье
яиц». В этих случаях смертность резко возрастает, особенно
среди высокопродуктивных кур-несушек. Также необходимо
исключить заболевания инфекционной и неинфекционной этиологии. К таковым относятся болезнь Гамборо и подагра, часто
22
возникающая при длительно текущем воспалении фабрициевой
сумки, а также при постоянном раздражении слизистой клоаки
мочевой кислотой.
Выявление указанных патологических процессов по данным авторов доступно путем пальпации фабрициевой сумки через клоаку и наружную часть брюшной стенки. Расположена
сумка на дорсальной стенке клоаки. Слепым концом она направлена к позвоночнику, а задним концом переходит в короткую шейку и открывается в клоаку. При наличии изменений в
сумке во время прощупывания усиливаются болевые ощущения.
В дальнейшем особое внимание уделяется выявлению
признаков болезни Гамборо и др. Необходимость исключения
болезни Гамборо, Марека и подагры связан с тем, что подходы и
методы терапии при данных заболеваниях существенно отличаются от системы лечения овариосальпингитов. С целью недопущения заболеваний болезни Гамборо и Марека проводятся
предупредительные меры, связанные со специфической профилактикой.
Патологоанатомическими признаками при классической
форме для болезни Марека являются диффузно-очаговые утолщения нервных стволов, а также от 2,5 до 10% случаев опухоли,
главным образом, в яичнике. При острой форме болезни часто
находят плотные очаговые и диффузные опухоли железистого
желудка, а в 44,4% – яичника.
Признаками болезни Гамборо при острой форме заболевания являются воспаление слизистой оболочки фабрициевой
сумки, увеличение ее в несколько раз и появление на ней желтого транссудата. В этот период заболевания неожиданно начинается белый водянистый понос, а у некоторых особей – воспаление и расклев клоаки.
К болезням инфекционной этиологии, влияющих на яичную продуктивность и вызывающих заболевания различных отделов репродуктивных органов, также относятся инфекционный
бронхит, ССЯ (синдром снижения яйценоскости), которые
должны быть исключены серологическими исследованиями сыворотки крови. При вирусных инфекциях внезапно падает яичная продуктивность на любой фазе. При вскрытии вынужденно
убитых кур отмечаются воспаления слизистых оболочек яйце23
вода, дегенерация средних и крупных фолликул. Дополнительно
проводится бактериологический анализ с целью выявления стафилококоза, стрептококкоза, колибактериоза, пастереллеза.
Допуская возможность поражения яичников и яйцеводов
возбудителями общих инфекционных заболеваний (Болезнь
Гамборо, Марека, ССЯ и др.), следует иметь в виду, что указанные болезни могут способствовать латентно протекающим воспалительным процессам неспецифической этиологии.
Диагностика неспецифических овариосальпингитов в некоторых случаях вызывает необходимость исключения таких
заболеваний, как фолликулярный энтерококкоз, поражение яйцевода псевдоманозом и другими инфекционными заболеваниями. Энтерококковые овариосальпингиты наблюдаются в виде спородических, но иногда и массовых случаев при воспалении органов яйцеобразования. Диагноз на это заболевание устанавливают после проведения микробиологических и иммунологических исследований.
Вопрос об овариосальпингите вирусной этиологии изучен
недостаточно, поэтому и диагностика его весьма сложна. Клинические признаки не специфичны, распознавание возможно в
результате проведения специальных вирусологических исследований.
При включении в рацион дополнительного протеина без
учета физиологического состояния птицы (Бессарабов Б.Ф.,
Байдевлятов А.Б., Мельникова И.И., 1997) наступает синдром
затрудненной яйцекладки, завершающийся выпадением влагалища. Выпадение влагалища наблюдается иногда при нарушении микроклимата и светового режима.
В этиопатогенезе болезней органов яйцеобразования многое зависит от подготовки птиц к началу яйцекладки. Так, раннее ее наступление, вызванное удлинением светового режима
или преждевременным переводом молодок на основной рацион,
часто приводит к затрудненной яйцекладке в связи с тем, что
половой аппарат такой птицы окончательно не сформирован.
Снесение яиц сопровождается сильными болями, перенапряжением организма, наблюдаются зияние сфинктора клоаки и частичное выпадение влагалища яйцевода. Частично мацерированный участок клоаки служит причиной последующего воспале24
ния яйцевода. Если воспаление яйцевода идет выше, то формируемые фолликулы, минуя воронку яйцевода, попадают в
брюшную полость, где могут рассасываться. В этом случае курица быстро прекращает яйцекладку, становится малоподвижной, плохо поедает корм и быстро истощается. На вскрытии
часто констатируют слипчатый овариосальпингит.
Среди полиэтиологических факторов, обуславливающих
заболевания, следует отметить нарушения в микроклимате. При
длительном тепловом стрессе нередко наблюдается «литье яиц».
В этих условиях смертность от овариосальпингитов резко возрастает, особенно высокопродуктивных несушек. Отход птиц в
опытных группах по их наблюдениям при нарушении светового
режима составлял выпадение влагалища яйцевода 30,3%, овариит – 76, овариосальпингит – 3,16%. В нарушении белкового и
энергетического кормления, если курица недостаточно подготовлена к продуктивному периоду, у нее наступает синдром «затрудненная яйцекладка», завершающийся выпадением влагалища яйцевода с последующим расклевом.
При избытке в рационе витаминов А и Д на фоне дефицита метионина и лизина развивается дистрофия, особенно во вторую фазу яйценоскости. Основной критерий нормального обмена веществ у кур – толщина скорлупы, которая должна составлять 330-350 нм. Потребность в витаминах у высокопродуктивных птиц очень высока. Витамины нужны не только для поддержания общей резистентности организма, но и для правильной регуляции всех обменных процессов. При недостатке
витаминов наблюдалась реакция со стороны яичников.
Фолликулы были хорошо сформированы, но находились в
состоянии сильной гиперемии, выглядели как сплошные яркокрасные шары. Патология в яичниках при витаминной
недостаточности особенно возрастала на фоне высокой
интенсивности яйцекладки. Снижение в рационе витаминов
группы В и Д приводит к увеличению отхода птиц ввиду
овариосальпингитов и желточного перитонита, смертность и
выбраковка могут достигать 55%. Дефицит витамина Д
нарушает минеральный обмен, приводит к уменьшению
продуктивности и создает предпосылки к возникновению
заболевания. Недостаток витамина Е приводит к увеличению
отхода птиц от заболеваний органов яйцеобразования.
25
По данным Б.Ф. Бессарабова, Л.М. Обухова, И.Д. Шпильмана (1988), на заболеваемость органов размножения птиц существенное действие оказывает корм, пораженный грибами и
микотоксинами. Из продуцируемых разными грибами микотоксинов наиболее токсичными для птиц являются фузарио-Т2, охратоксины, патулин и др. При поедании корма у кур ухудшается
аппетит, снижается яйценоскость, истончается скорлупа,
уменьшается общее количество белка в плазме крови, отмечается лейкопения. Токсины нарушают барьерные структуры слизистых оболочек, что приводит к сепсису и аутоинфекции.
При вирусных инфекциях внезапно падает яичная продуктивность на любой фазе, ухудшается качество белка и скорлупы
яиц. Белок становится разжиженным, на скорлупе наблюдаются
известковые наложения, шероховатость, в тяжелых случаях
скорлупа отсутствует. При вскрытии вынужденно убитых птиц
отмечаются воспаления слизистой оболочек яйцевода, дегенерация фолликул.
Одним из первых признаков возникновения нарушений
функций органов яйцеобразования является повышенное отложение жира, что служит обычно показателем снижения яйценоскости и предпосылкой начинающегося развития сальпингита.
При сальпингите нередко нарушаются морфологические и
функциональные особенности яйцеводов, способствующие процессу транспортировки овоцита.
Воспалительная реакция вызывает дистрофические процессы в эпителии слизистой оболочки яйцевода, его десквамацию, что играет существенную роль в нарушении генеративной
функции. Повреждение мерцательного эпителия тормозит продвижение ооцита, нарушение функции секреторных клеток слизистой оболочки яйцевода, является причиной снижения жизнедеятельности ооцитов.
Основными причинами сальпингитов являются: неполноценное кормление несушек, белковый токсикоз в следствии перекорма мясокостной и рыбной мукой, травматическое повреждение яйцевода и яичника, нарушение обмена веществ и функции гипофиза, витаминная недостаточность (А,Д,Е,), нехватка в
рационе кальция, холина, избыток фосфора, инфекционные
26
(простогонимоз, колибактериоз) болезни, недостаток отдельных
микроэлементов (Mn, Zn) и отдельных аминокислот.
Большинство заболеваний, связанных с нарушением обмена веществ, имеют вторичное происхождение: вначале нарушается функция печени, а затем возникают поражения других
органов. У взрослых несушек при нарушениях вторичного происхождения встречаются овариосальпингиты, алиментарные
дистрофии и анемии, вторичные гиповитаминозы и другие заболевания.
При жировой дистрофии уровень жира в печени в пересчете на сухое вещество колеблется от 50 до 70%, тогда как в
норме не должен превышать 20-30%.
Отмечает, что масса печени у взрослых кур колеблется в
пределах 40-60 г; у яичных пород и кроссов кур при голодании
выделяется в среднем 1,5 мл желчи в час на 1 кг живой массы
тела, то есть выделение желчи у птицы зависит от количества и
качества принятого рациона. При задержке с приемом корма у
молодняка, вследствие накопления желчи, происходит увеличение желчного пузыря; частично желчь эвакуируется в мышечный желудок и окрашивает кутикулу в черный цвет, иногда
происходит ее отслоение.
В результате усиленной перистальтики стенок яйцевода,
желток может быстро проходить белковую часть, не покрываясь
белком, и проникает в матку, где образуется скорлупа. В таком
мелком яйце белок отсутствует или имеется в очень незначительном количестве.
Овуляция зависит от экзогенного фактора (света), делает
его в какой-то степени управляемым технологически. Так, возникающие в результате селекции по яйценоскости и применения
интенсивных режимов освещения кур разрывы между функционированием яичника (овуляция) и яйцевода (формирование яйца), являются причиной столь большого отхода несушек от желточного перитонита (до 82% павших), а также снижения продуктивности.
Нарушения в последовательности процессов откладка –
овуляция обусловлены асинхронностью функционирования
яичникам и яйцевода у высокопродуктивных кур.
27
Одной из причин асинхронности яйцекладки является одностороннее воздействие современных световых режимов при
выращивании и содержании несушек на половую систему несушек.
Нередко сальпингит наблюдается у молодых кур, имеющих недоразвитый яйцевод. Усиленное кормление молодок с
включением в рацион 18% протеина, высокий световой режим
могут привести к усиленной яйцекладке и появлению сальпингита.
Резкий переход на удлиненный световой день в начале несколько стимулировал половое созревание, незначительно повышалась интенсивность яйцекладки, но в последующим наблюдали ее угнетение. Ввиду заболеваний органов размножения
отход птиц в опытных группах составлял 23-53%, тогда как в
контрольных – 1,4%. При патологоанатомическом вскрытии
павших кур регистрировали выпадение клоаки у 30,3% птиц,
желточный перитонит – у 25,7%.
Болезни органов размножения причиняют значительный
экономический ущерб. Убытки складываются из недополучения
продукции, раннего отхода и выбраковки птицы. На крупных
птицефабриках 25-30% от общего падежа и выбракованной
взрослой птицы от незаразных заболеваний приходится на патологию органов размножения заболеваний.
Современная классификация заболеваний
органов размножения кур
Номенклатура болезней как простой перечень их названий
складывалась исторически. Любая болезнь – это эволюционно
сложившаяся нозологическая единица (греч. нозоз – болезнь),
специфичность которой определяется этиологическим фактором. Поэтому признание каждой вновь открытой болезни требует убедительного доказательства ее основной отличительной
особенности. В одном случае в наименование болезни положено
название вызванной причины (гиповитаминозы), в другом –
учитываются характерные признаки (сальпингиты), в третьих –
исторически сложившиеся названия, например, кутикулит.
28
По мере накопления знаний о болезнях органов размножения кур и расширения их номенклатуры, появилась необходимость расположения болезней в определенном порядке, т.е. потребность их в классификации. Некоторые исследователи
строили классификацию по клиническим проявлениям заболевания (Данилевский В.М., 1962), что не может полностью охарактеризовать патологию.
Позже была предложена классификация (Бессарабов Б.Ф.,
Байдевлятов А.Б., Мельникова И.И., 1997), в основу которой
положен этиопатогенез заболеваний, и выглядит она следующим образом:
1) патология формирования гамет в различные периоды
овогенеза;
2) оварииты, сальпингиты и овариосальпингиты первичной и вторичной этиологии;
3) недоразвитие органов яйцеобразования, связанное с нарушениями кормления ремонтных молодок, общим недоразвитием птиц, нарушение технологии содержания;
4) функциональные нарушения: затрудненная яйцекладка,
выпадение влагалища яйцевода и др.
Предложенная нами классификация, в свою очередь, исходит из особенностей локализации патологического процесса с
учетом клинико-анатомических данных и физиологических
процессов в репродуктивных органах. Перечисленные особенности определяют характеристику развития болезненного процесса и позволяют правильно ориентироваться при организации
лечебно-профилактических мероприятий.
Однако следует отметить, что при развитии заболевания
могут быть отклонения в физиологии рядом находящихся органов. Так при нарушении белкового обмена наряду с патологией
яйцевода могут быть заболевания почек, вызывающие при этом
подагру.
При анализе физиологических функций и строения репродуктивных органов птиц обращаем внимание на то, что она имеет особенности по сравнению с половой системой сельскохозяйственных животных. У взрослых кур яичник имеет форму продолговатой четырехугольной пластинки. На поверхности яичника на стебельках имеются фолликулы различной величины:
29
крупные фолликулы (диаметром 3-4 см), средние фолликулы
(диаметром 0,9-1,9 см) и мелкие фолликулы (0,2-0,8 см). Их общее количество у кур-несушек в возрасте 250 дней может достигать 30-35 фолликул.
В результате воздействия гормонов гипофиза яичник становится секреторным органом и продуцирует гормоны: эстрогены, андрогены и прогестерон. В свою очередь, фолликул выполняет не только опорную, но и большую обменную функцию.
Клетки фолликула сами образуют часть питательных веществ
для ооцита.
При проведении клинических исследований больных кур
с патологией органов яйцеобразования обращали внимание на
различное течение патологического процесса в яичнике и фолликулах на ранних стадиях заболевания.
Учитывая анатомическое строение и физиологические
функции яичника и фолликул у птиц, а также клиническое проявление воспалительного процесса в данных органах, было принято решение описать патологию фолликул яичников как отдельную нозологическую единицу. Таким образом, рассматривать патологию яичника у кур в форме оофорита и фолликулита
яичника.
Следует отметить, что при диагностировании заболеваний
репродуктивных органов у птиц указанная патология рассматривается в целом без дифференцированного подхода к различным
отделам яйцевода. В частности, не описаны причины, вызывающие заболевания влагалища, матки и белковой части яйцевода.
Каждый отдел при формировании яйца выполняет определенную
функцию, поэтому этиологические факторы, вызывающие патологические процессы в яичниках и яйцеводах, различны.
До последнего времени патология яйцевода у кур рассматривалась в виде сальпингита или овариосальпингита. При
этом распознавание овариосальпингитов и остаточных явлений
заболеваний репродуктивных органов у кур представляло значительные затруднения. Диагноз ставился на основании анамнеза и общедоступных методов исследований. Детальное ознакомление с анамнезом позволяло получить данные, имеющие значение для распознавания заболевания. В этом отношении особый интерес представляли сведения о времени и условиях воз30
никновения заболевания, его течении и проводившемся лечении. Хроническую стадию процесса определяли по вторичным
половым признакам (яйценоскости и т.д.), а также биохимическим показателям крови.
На современном этапе ведения промышленного птицеводства возникает необходимость ранней диагностики патологий
органов яйцеобразования с учетом локализации патологического очага для принятия незамедлительных мер по лечению и
профилактики.
Таким образом, желательно проведение дифференцированного диагноза с учетом строения и функционирования яйцевода. Несмотря на общие клинические признаки для патологий
яичников и яйцеводов, при сальпингите наблюдаются затрудненная яйцекладка, выпадение яйцевода и расклев. Дифференцированный диагноз проводится на основании данных анамнеза,
анализа клинических проявлений и результатов исследований
после проведения лечебно-профилактических обработок. По
показаниям применяются дополнительные методы исследований: бактериологические, серологические и биохимические.
При проведении комплексной диагностики учитываем
анатомофизиологические особенности яйцевода у птиц. В белковом отделе желток находится около 2,5-3 ч. Яйцо, достигая
конца белкового отдела яйцевода, состоит из желтка, окруженного градинковым слоем и плотным белочным мешком. То есть
в данном отделе яйцевода происходит выделение основной части плотного и жидкого белка; формирование градинок наружного плотного, внутреннего и наружного жидкого слоев белка.
В маточном отделе яйцевода яйцо находится от 19 до 21 ч.
За это время происходит выделение минеральных солей и воды
из маточных желез, в результате чего происходит формирование
скорлупы. В дальнейшем идет процесс частичной потери воды
наружным жидким слоем и образования надскорлупной пленки.
Во влагалище яйцевода сформированное яйцо при нормальном течении физиологического процесса находится от 3 до
5 с. Сокращение мышц стенок влагалища способствуют выделению яйца из организма птицы. Кроме того, сокращения мышц
матки и влагалища яйцевода осуществляют движение яйцеклетки по яйцеводу.
31
Болезни репродуктивных органов
Патология яичников
Оофорит
Фоллик
улит
Патология
яйцевода
Метриты
Овариосальпингиты
Желточный
перитонит
Магнуиты
Физиологические
нарушения яйцекладки
Снесение
мелких яиц
(менее 30 г)
Снесение
слишком
крупных яиц
(более 80 г)
Вагиниты
Снесение деформированных яиц
Снесение двухжелтковых яиц
Затрудненная
яйцекладка
Недоразвитие яичника и яйцевода
Патология скорлупы
Рис. 4. Современная классификация болезней органов размножения
кур-несушек (по Федотову С.В. и Бессарабову Б.Ф., 2004)
32
При проведении патологоанатомических исследований
кур, выбракованных по производственным показателям, диагностировали отдельные участки патологий в различных отделах
яйцевода. С учетом этиологических факторов мы выделили магнуит, метрит и вагинит яйцевода в отдельные нозологические
единицы.
Проведенные нами исследования позволили провести
классификацию и сделать описание заболеваний органов размножения кур-несушек (рис. 4).
Оофорит (овариит) – воспаление яичников. Оофориты у
кур протекают скрытно без выраженных клинических признаков. Обнаружить заболевание можно по косвенным признакам:
прекращение яйцекладки и бледность гребешка.
Воспаление яичников регистрируется у молодок и курнесушек. Воспалительные заболевания яичников обусловлены
их структурой и функциями, следовательно, диагностика патологии должна быть комплексной с учетом многофакторности.
Клинически воспаление яичников проявляется угнетением, прекращением яйцекладки, но чаще обнаруживается на
вскрытии. Пораженный яичник имеет серый цвет, зрелые желточные фолликулы отсутствуют, а недозревшие на поверхности
капсулы могут иметь полосчатые кровоизлияния (рис. 5).
Причиной возникновения заболевания, по мнению ряда
исследователей (Бессарабов Б.Ф., Байдевлядов А.Б., Мельникова И.И., 1997), является избыток белка при недостатке витаминов и нарушения технологии выращивания птиц. При нарушении светового режима, по их данным, 76% от общего количества павшей птицы от незаразных заболеваний составляли куры с
диагнозом воспаление яичников. Из 103 случаев вскрытия трупов кур с опухолями дифференцировано 86% карцинома яичника; 1,9% – саркома яичника и 5,8% случаев – лейкоз. Авторы не
отрицают, что оварииты могут быть следствием других болезней (пуллороз, пастереллез и др.).
При недостатке витаминов А, Д, Е, задерживается созревание яичников и наблюдается их деформации, а при недостаточном поступлении кальция в организме нарушается ионное
равновесие, что приводит к нарушению функции яичников.
33
Рис. 5. Оофорит у несушки (возраст 380 дней)
У больных кур клиническое состояние характеризовалось
следующими показателями: упитанность средняя, гребень бледно-розовый, кончик его цианотичный. При вскрытии птиц обнаруживали кровоизлияния в яичнике, овулированные фолликулы,
а также большое количество деформированных фолликул, часть
из которых было с разорванными оболочками. При этом яйцевод, как правило, был развит хорошо без видимых изменений.
Печень обычно была желто-коричневого цвета с признаками
жирового перерождения.
При патологоанатомическом исследовании яичник имеет
вид бесформенной массы в виде кисты, наполненной зеленовато-бурой маслянистой жидкостью гнилостного запаха. Желточные фолликулы деформированы, содержимое их разжижено,
зеленоватого или серо-грязного оттенка, в оболочке фолликулов
наблюдаются кровоизлияния. В яичнике наряду с патологическими измененными можно обнаружить и нормально сохранившиеся фолликулы.
34
Проведенные нами исследования свидетельствуют о том,
что оофориты регистрировались при сбалансированном кормлении и физиологической норме кальция, фосфора и витаминов А,
Д, Е, но практически во всех случаях выявляли микробную ассоциацию (стафилококки, энтерококки, кишечная палочка). Дополнительно наблюдали оофориты у кур с хроническим течением болезни Марека.
Лечение и профилактика. При увеличении случаев овариитов у кур-несушек необходимо усилить противомикробную
терапию. Для этого можно использовать 10%-ный раствор энрофлокса, обладающий широким спектром действия. Препарат
активен против грамотрицательных, грамположительных бактерий и микоплазм. Он быстро и легко адсорбируется организмом,
достигая максимальных плазматических концентраций через 1-2
ч после введения. Препарат применяют в смеси с водой из расчета 0,5 л на 1000 л воды в течение 3 дней.
При нарушении обмена веществ весьма эффективен следующий премикс (Бессарабов Б.Ф., Байдевлятов А.Б., Мельникова И.И., 1997): на 1 т корма 1000 г холинхлорида, 25 г йодида
калия, 250 тыс. витамина А, 40 мл витамина Е 25%-ного, 50 тыс.
витамина Д, 150 г аскорбиновой кислоты, 2 г викасола. Если
патология связана с инфекционными процессами, то в состав
премикса добавляют левомицетин или производные тетрациклина в дозе 350-400 г на 1 т комбикорма. Такую добавку используют в течение 7 дней.
Фолликулит яичника – воспаление желточных фолликулов. Фолликулы яичников выполняют опорную, трофическую и
разграничительную функции. Они в виде мешочка одевают
женскую половую клетку (ооцит). Стенка фолликула образована
эпителиальной и соединительной тканями. При воздействии неблагоприятных факторов на яичник возможно воспаление фолликулов (рис. 5-6).
Недостаток витамина Е сдерживает созревание фолликулов и обуславливает их деформацию, что приводит к увеличению отхода кур от заболевания. Они также указывают, что
трехдневного водного голодания достаточно, чтобы наступила
массовая гибель несушек, при вскрытии которых отмечали выпадение фолликулов в брюшную полость.
35
При недостаточном поступлении кальция в организме нарушается ионное равновесие, задерживается созревание яичников, уменьшается прочность оболочек фолликулов, развивается
атония яйцевода, снижается устойчивость к инфекции яичников.
При проведении нами вскрытия больной птицы находили
деформированные фолликулы, содержимое которых было разжижено или уплотнено. В оболочках фолликул отмечали точечные кровоизлияния. В то же время рядом с патологическими
фолликулами наблюдались нормально сохранившиеся.
По нашим наблюдениям, поражение фолликулов ведет к
задержке их развития и к диструкции эпителия. Воспалительный процесс может распространяться на смежные ткани, в которых возникают расстройства кровообращения, экссудация и инфильтрация.
Во время патологоанатомического вскрытия кур, выбракованных в конце яйцекладки, отмечали хронический фолликулит. При этом морфологические признаки воспаления отсутствовали, но наблюдались склеротические изменения сосудов,
утолщение и гиалинизация их интимы.
При морфологическом исследовании участков пораженных фолликул установлено, что эпителий фолликулярного слоя
истончен. На некоторых участках отмечали активную пролиферацию и вакуолизацию фолликулярных клеток. Базальная мембрана фолликулярного слоя не всегда была четко выражена, соединительная ткань инфильтрирована лимфоцитами, утолщена,
иногда наблюдались спайки.
С целью выявления причин деформации фолликулов проводят
микробиологические исследования. Для этого делают высев материала из измененных участков фолликул. Выделенные микроорганизмы культивируют на мясопептонном агаре и бульоне. На
агаре как правило образовываются круглые мелкие с ровными
краями колонии лимонно-желтого цвета. Суточные культуры с
агара пересевают на мясопептонный бульон и в среды с глюкозой, маннитом, лактозой и дульцитом. Проведенные микроскопические исследования подтверждают наличие стафилококков.
36
Рис. 5. Фолликулит яйцевода (курица 250 дней)
Рис. 6. Фолликулит яйцевода (курица 320 дней)
37
При проведении бактериологических исследований, кроме
стафилококков, выделяются также и эшерихии. На наличие
Е. Соli из патологического материала делают посевы на дифференциально-диагностическую среду в чашки Петри. Чашки помещали в термостат при температуре 37ºС и просматривали через 18-20 ч. После получения первичного роста бактерий на
МПА и в МПБ делают пересев культуры на среду Эндо с целью
изучения морфологических и культурально-биохимических
свойств. На конечном этапе проводят серологическую типизацию характерных по форме, консистенции и цвету колоний
Е. Соli, полученных на средах.
При анализе отмечаем, что эшерихии – прямые с закругленными концами палочки, подвижные или неподвижные перитрихи. В мазках из первичного материала располагаются одиночно или попарно. Размеры отдельных бактерий колеблются в
длину от 0,5 до 4 мкм, в ширину – от 0,4 до 0,6 мкм. Спор не
образуют, отдельные серовары (08, 09) образуют капсулу. Окрашиваются всеми анилиновыми красками, по Граму – отрицательно (в розово-красный цвет). В мазках из первичного материала часто выражена биполярность.
На мясопептонном агаре E. Coli образовывают выпуклые
колонии средней величины, влажные блестящие, прозрачные и
непрозрачные в проходящем свете, круглые с ровным краем
(S-формы) и более плоские, сухие, со слегка волнистым краем
(R-формы). Иногда образовывают мелкие прозрачные колонии,
напоминающие колонии сальмонелл, а также слизистые крупные колонии.
На мясопептонном бульоне эшерихии растут диффузно с
образованием осадка серо-белого цвета, легко разбивающегося
при встряхивании. Некоторые штаммы на поверхности среды
образовывали тонкую пленку и пристеночное кольцо. На среде
Эндо часто формируют две формы колонии: темно-вишневые с
металлическим оттенком, плоско-приподнятые и колонии малиново-красного цвета в центре приподнятые с розовой каймой по
периферии.
При микробиологической диагностике репродуктивных
органов у клинически здоровых кур стафилококки, энтерококки
и др. не выделялись. Фолликулы яичников были округлой фор38
мы различной величины. Содержимое фолликул имело желтый
цвет и средней густоты консистенцию.
Таким образом, при фолликулите характер патоморфологических изменений структуры фолликулов яичника указывает
на выраженное цитотоксическое действие возбудителя инфекции. Наблюдается усиление лимфоцитарной инфильтрации
фолликулярной и текальной оболочек фолликулов, увеличение
количества форменных элементов крови и тканевых базофилов.
Лечение и профилактика. При выделении стафилококков
лечебно-профилактический эффект наблюдается при даче с
кормом окситетрациклина из расчета 30 г на 1000 кур-несушек в
течение 7 дней. При данной патологии также рекомендуется
10%-ный байтрил. Препарат назначается птице в дозе 10 мг на 1
кг массы птицы с питьевой водой из расчета 50 мл на 1000 л воды при круглосуточном поении в течение 3-5 дней. При хроническом течении заболевания следует определять чувствительность стафилококка к препаратам.
При выделении кишечной палочки рекомендуется назначить невиграмон из расчета 60 мг на 1 кг веса птицы или левомицетин (45 мг на 1 кг веса птицы). Необходимо давать препараты с кормом в течение 7 дней. Весьма важным моментом в
лечебно-профилактической обработке является определение
чувствительности кишечной палочки к назначенным препаратам.
Если этиологическим фактором является смешанная микрофлора, то можно применить комплексный препарат «Зинаприм». В его состав входят сульфаметазин и триметоприм, которые блокируют действие дигидрофолаторедуктазы, препятствуя образованию дигидрофолеевой кислоты, что приводит к гибели бактерий. Данные химиотерапевтические средства следует
развести в воде (1 г на 1 л) и выпаивать птице в течение 3 дней.
Хорошие результаты получили от применения амоксициклина и главулоновой кислоты (62,5% амоксиклав). Препараты дают перорально в течение суток с питьевой водой на протяжении 5 дней из расчета 20 г на 200 л воды.
Магнуит – воспаление белковой части яйцевода. Причины этого заболевания многочисленны и изучены недостаточно.
К факторам, влияющим на структуру и клинику заболевания,
39
относятся условия, способствующие изменению реактивности
организма птиц, а также биологических особенностей микробоввозбудителей (рис. 7-8).
Рис. 7. Воспаление белковой части яйцевода (магнуит) у курицы
(350 дней)
Рис. 8. Магнуит у курицы (220 дней), яйцо в белковой части яйцевода
40
Большое значение имеет реактивность организма, т.е. способность отвечать изменениями жизнедеятельности на воздействия окружающей среды; изменения реактивности являются
процессами, главным образом, защитно-приспособительного
характера. На состояние физиологической реактивности организма влияет возраст, генетические особенности, кормление,
содержание. Большое значение имеют индивидуальные особенности нервной системы, функция желез внутренней секреции и
состояние обмена веществ.
Основной причиной патологии яйцевода, по мнению ряда
исследователей (Феоктистов П.И., 1962; Артемичев М.А., 1972;
Бессарабов Б.Ф., Байдевлятов А.Б., Мельникова И.И., 1997 и
др.), является нарушение в организме несушки обмена веществ,
в частности, недостаточность кальция, холина, витаминов А, Д,
Е, избыток фосфора и белковое перекармливание. Избыток белковых кормов при недостатке витаминов способствует развитию
токсикозов вследствие накопления в крови солей мочевой кислоты и других кислореагирующих продуктов метаболизма.
По нашим наблюдениям, патология белковой части яйцевода
тесно связана с воспалением и поражением яичников, в основе
которого лежит микробный фактор.
Что касается возбудителей, то преобладающим видом являются стафилококки, устойчивые к антибиотикам и сульфаниламидам. В настоящее время значительно возросла роль кишечной флоры.
Наиболее распространенными сероварами эшерихий были
01, 02, 078, в том числе 02 – 66,7% культур, 078 – 13,3%, 01 –
11,6%. К сероварам 09, OIII, OI4I отнесено только по одной
культуре E. coli, к серовару 055 – 2 культуры.
По результатам биопробы более вирулентные эшерихии
относились к серовару 078, 02, 01, вызывая гибель 36%, 30 и
21% цыплят в первые сутки после заражения; через сутки после
введения культур сероваров 09, 055, OIII, OI4I пали по два из
трех взятых в опыт цыплят.
В свою очередь, обнаруженные на птицефабриках стафилококки обладали довольно разнообразными биохимическими свойствами. Проведенные исследования указывают на широкое био41
варирование стафилококков, выделенных от кур с патологией
репродуктивных органов.
Заболевание внешне проявляется слабо: у кур отсутствует
яйцекладка, наблюдается бледность гребешка и потеря веса. На
вскрытии слизистая гиперемирована, покрыта слизью. В просвете могут быть сгустки творожистой массы желтоватого или
зеленоватого цвета. В белковой части яйцевода могут находиться несформировавшиеся яйца, заключенные в фибринозную
капсулу.
Лечение и профилактика. С лечебно-профилактической
целью, по данным Б.Ф. Бессарабова, А.Б. Байдевлятова,
И.И. Мельниковой (1997), можно скармливать птице из расчета
на 1 т корма: холинхлорида – 1000 г, инозитола – 900, витамина
Е – 10, витамина В12 – 12 мг.
Часто магнуит сопровождается авитаминозом, поэтому
целесообразно при проведении групповой терапии применять
витаминно-минеральные премиксы. В условиях кормовых цехов
крупных птицефабрик можно приготовить витаминный премикс
по А.Б. Рудовской (1985).
Для этого на 1 т основного рациона добавляют: витамин А
– 15 млн МЕ; витамин Д – 1 млн МЕ; кальций – 45 кг; магний –
0,5 кг; фосфор – 12 кг; хлорид марганца – 200 г; хлорид железа –
100 г; хлорид меди – 20 г; иодит калия – 3 г. При этом все добавки предварительно измельчаются на миксере для более равномерного распределения в премиксе. В дальнейшем минералы
и витамины взвешиваются и засыпаются в смеситель, где находится незначительное количество комбикорма (3-5 кг). Полученную смесь и 20-30 кг комбикорма вносят в куттер, смешивая
в течение 20-30 мин., после чего в куттер добавляют комбикорм
до вместимости и продолжают смешивать.
Подготовленной добавкой обогащают основной рацион.
Для этого содержимое куттера загружают в бункер с дозатором,
оттуда премиксы равномерно поступают на смешивание с основными кормами.
Дополнительно допускается скармливание технического
животного жира и кормовых фосфотидов. Перед употреблением
данные кормовые добавки необходимо подогреть до температу42
ры 60-70ºС и добавлять в комбикорма из расчета 40 кг на 1 т основного рациона.
В случае обнаружения инфекционного начала можно вводить в течение 3-5 дней сульфатиазол, добавляя его к корму из
расчета 10 мг на 1 кг, а также антибиотики (стрептомицин, пенициллин и т.п.).
Метрит яйцевода – воспаление матки яйцевода. Оно связано с нарушением секреторной функции желез слизистой оболочки маточного отдела яйцевода, что оказывает тормозящее
действие на продвижение яйца по просвету матки (рис. 9-10).
При наличии патологического очага в матке яйцевода курица начинает откладывать неполноценные яйца: без скорлупы,
с одной только подскорлупной оболочкой, с наличием крапчатых известковых наложений, с насечками или неправильной
формы, нередко наблюдается «литье яиц». В этих случаях
смертность резко возрастает, особенно среди высокопродуктивных кур-несушек.
Таким образом, деформированные яйца образуются в
матке яйцевода при воспалительной реакции. В результате сдавливания яйца стенкой яйцевода на ранней стадии образования
скорлупы образовываются разнообразные формы: усеченные
сжатые яйца, яйца с придатками на концах, уродливые яйца в
виде спирали или винта, спаянные яйца.
В матке яйцевода яйцо находится в течение 19-21 ч, за это
время происходит формирование скорлупы. Кристаллы кальциевых солей медленно откладываются в промежутках между
волокнами каркаса, давая начало образованию губчатого слоя.
При достижении яйцом средней части матки формирование каркаса почти заканчивается, то есть вещество скорлупы откладывается в течение первых трех часов после попадания яйца в матку.
При недостаточном поступлении кальция в организме нарушается ионное равновесие, что может привести к деформациям яиц. Яйца с шероховатой скорлупой формируются в известковой части яйцевода в результате нарушения деятельности желез, выделяющих кальций. Образованию деформированных яиц
способствует патология яйцевода.
43
Главной причиной снесения яиц с тонкой и хрупкой скорлупой служит недостаток в рационе несушек кальция. В качестве других этиологических факторов могут иметь значение недостаточность фосфора, витамина Д, марганца, перегрузка рациона жирами.
По нашим наблюдениям, фактором, обуславливающим
воспаление матки яйцевода, может быть нарушение белкового и
минерального кормления. На птицефабриках иногда для стимулирования яйцекладки включают в рацион дополнительный
протеин при дефиците кальция и витаминов группы Д.
В таких случаях на время удается увеличить выход яйца
до тех пор, пока не наступит дисбаланс белкового обмена в организме птицы. Особенно это представляет опасность при недостатке витаминов группы В и Д. При достижении критического периода увеличивается отход продуктивной птицы из-за
сальпингитов, выбраковка может достигать 55%.
На вскрытии павших кур-несушек отмечали, что слизистая оболочка матки яйцевода недостаточно влажная в просвете
яйцевода – сформированное без скорлупы яйцо, к которому
плотно прилегает слизистая матки. На слизистой
Рис. 9. Метрит яйцевода у курицы (250 дней)
44
Рис. 10. Метрит у курицы (300 дней), яйцо в матке яйцевода
оболочке наблюдали гиперемию, расстройство микроциркуляции, экссудацию, образование периваскулярных инфильтратов.
Воспалительный инфильтрат состоял, главным образом, из полиморфно-ядерных лейкоцитов, содержащихся в подэпителиальной соединительной ткани.
При патологии яйцевода деформированные яйца имеют
самую разнообразную форму: удлиненно- цилиндрическую,
сплющенную, грушевидную, веретенообразную, в редких случаях – бочкообразную. Таким образом, деформация яйца указывает на патологические процессы в матке яйцевода кур-несушек.
Существенное влияние на заболеваемость репродуктивной системы оказывает нарушение минерального кормления несушек.
Установлено, что содержание кур на рационе с уровнем кальция
740 мг на голову приводит к заболеваемости 53,6% от всех курнесушек, исключительно от патологии органов размножения.
Кальциевое голодание существенно влияло на качество скорлупы, которая была истонченной. Наблюдали «литье яиц» и увеличение их боя до 60%. Введение в рацион такой птице солей
45
кальция до оптимального уровня довольно быстро восстанавливало качество скорлупы до нормы.
Количество яиц с насечками и микротрещинами снижалось
практически до нуля. Последнее свидетельствует о достаточно
высокой и очень быстрой усвояемости организмом птицы солей
кальция, особенно на фоне его дефицита. Исходя из физиологии
птиц количество кальция, поступающего из корма на построение скорлупы, составляет около 60-75%, остальное поступает из
трубчатых костей. В норме скорлупа яиц содержит 1,6-2,4 г
кальция. После снесения первого яйца уровень кальция в организме понижается на 20%.
Несушки особенно остро реагируют на недостаток воды в
период интенсивной яйцекладки. На второй день после прекращения дачи воды основная масса кур откладывала яйца с насечками, а в последующие дни вообще без скорлупы. Такой процесс свидетельствует о существенном нарушении всех видов
обмена в организме, в первую очередь, минерального.
Наружную шероховатость при наличии на ней известковых поясков и перетяжек можно отнести к деформациям яиц.
Яйца с шероховатой скорлупой формируются в известковой
части яйцевода в результате нарушения деятельности желез,
выделяющих кальций. Образованию деформированных яиц способствует патология яйцевода.
К болезням инфекционной этиологии, влияющим на воспалительные процессы в матке яйцевода и на яичную продуктивность, относятся синдром снижения яичной продуктивности
и инфекционный бронхит. При вирусных инфекциях внезапно
падает яйценоскость, на любом этапе ухудшается качество белка и скорлупы яиц.
Симптомы воспаления матки яйцевода проявляются в основном следующим образом: птица часами сидит, оперение
тусклое, общая слабость. Иногда в течение нескольких дней курица пытается снести яйцо, при этом делает активные попытки.
У таких несушек при пальпации через брюшную стенку прощупывается сформированное яйцо. В отдельных случаях при наличии яйценоскости отмечается «литье яиц», а также яйца без
скорлупы или с шероховатой поверхностью.
46
Наружную шероховатость при наличии на ней известковых поясков и перетяжек можно отнести к деформации яиц. Яйца с шероховатой скорлупой формируются в известковой части
яйцевода в результате нарушения деятельности желез, выделяющих кальций. Образованию деформированных яиц способствует воспаление слизистой оболочки матки яйцевода.
На вскрытии выбракованных и павших кур-несушек в просвете
маточной трубки могут находиться деформированные или бесскорлупные яйца. В таких случаях слизистая матки яйцевода
плотно прилегает к оболочке или скорлупе яйца. На самой слизистой оболочке наблюдали гиперемию, расстройство микроциркуляции, образование перивоскулярных инфильтратов
(рис. 11).
Рис. 11. Пораженный участок слизистой матки яйцевода курицы
(250 дней)
У кур-несушек с клиническими признаками метрита яйцевода уменьшается уровень фракций кальция. На образование
скорлупы матка кур непосредственно использует ионизированный кальций крови, концентрация которого изменяется в цикле
образования яйца. В крови кур-несушек уровень ионизирован47
ного кальция значительно выше, чем у птиц с низкой яйценоскостью.
С целью выявления бактериальной обсемененности яйцеобразующего органа делают высев на питательные среды соскобы со слизистой матки. На первом этапе используют мясопептонный бульон и агар для изначального роста, затем проводят
пересевы и идентификацию на специальных средах. В заключении бактериальных исследований проверяют чувствительность
к бактерицидным препаратам, в частности к энрофлоксацину,
методом серийных разведений и на бумажных дисках.
Следует отметить, что условно-патогенная микрофлора
высевается только с трупного материала, при этом по данным
патологоанатомического вскрытия воспалительный процесс захватывал не только матку, но и весь яйцевод. Выделенная микрофлора была представлена довольно в широком спектре: Pasteurella haemolytica, Pasteurella gallinurum, Staphylococcus aureus,
Streptococcus faecalis и Esherihia coli. В то же время при вынужденном убое кур-несушек с клиническими признаками метрита
яйцевода патогенная микрофлора не высевается.
Следовательно, со временем воспалительный процесс,
развивающийся в матке, распространяется на другие отделы яйцевода и осложняется микробной контаминацией. В связи с чем
возникает необходимость проведения комплексной профилактики метритов яйцевода кур-несушек.
Лечение и профилактика. При нарушении обмена веществ белкового или других обменных процессов можно применить следующий премикс из расчета на 1 т корма: казеина –
2,8 кг, аскорбиновой кислоты – 200 г, лимонной кислоты – 250
г, сульфата натрия (глауберовая соль) – 1050 г. Премикс скармливают в течение всего периода яйцекладки. Яйца имеют прочную скорлупу. Казеин связывает соли кальция и нормализует
белковый обмен в организме птицы, а лимонная и аскорбиновая
кислота ускоряют его перенос из яйцевода на формирующуюся
скорлупную оболочку. Сульфат натрия восполняет недостаток
серы в организме. Для повышения качества скорлупы следует
выпаивать курам глюконат кальция из расчета 1 г на 100 мл
питьевой воды.
48
При данной патологии можно использовать витамины
группы В в сочетании с водорастворимыми витаминами групп К
и С. Рекомендуемая концентрация: В1 – 1500 мг; В2 – 1250; В6
– 2000; В12 – 20; С – 20000; К3 – 3000; РР – 20000; В3 – 6500;
фолиева кислота – 50; биотин – 10; инозитол – 1000 и растворитель – 1000 мг. Полученный раствор разбавляют водой из расчета 1 литр на 1000 литров и выпаивают в течении 7 дней.
Хорошие результаты получены при даче комплексных препаратов. В течение 5-ти дней 2 раза в сутки задавать энрофлоксацин в
дозе 50 мг/ л воды и аскорбиновую кислоту в дозе 1,12 г/л воды.
Препараты первоначально развести в подогретой воде до полного
растворения, затем через марлю или через мелкопористую сетку,
вплетенную в воронку, выливать в бак накопителя. Дополнительно курам ежедневно в течение месяца в рацион вводить Юник
Фуд (смесь минеральных солей) из расчета 1 кг на тонну корма.
Препарат смешивать с основным кормом в смесители.
Вагинит яйцевода – воспаление влагалища яйцевода. Характеризуется заболевание нарушением секреторной и моторной
функции стенки влагалища. Через образовавшиеся в слизистой и
подслизистой оболочках эрозии проникает патогенная микрофлора (кокки, некробактерии и др.), что может привести к развитию фибринозного воспаления. Патологический процесс переходит на влагалище яйцевода, что заканчивается в дальнейшем расклевом.
Причиной патологий яйцевода является нарушение в организме кур обмена веществ: избыточное белковое кормление
несушек при недостатке зеленных и сочных кормов. В этом случае в организме образуется избыток мочевой кислоты, которая
раздражает слизистую оболочку клоаки. Через образовавшиеся в
слизистой и подслизистой оболочках эрозии проникает патогенная микрофлора (кокки, некробактерии и др.), что может привести к развитию фибринозного воспаления. Патологический
процесс переходит на влагалище яйцевода, что заканчивается в
дальнейшем расклевом.
При включении в рацион дополнительного протеина без
учета физиологического состояния птицы (Бессарабов Б.Ф.,
Байдевлятов А.Б., Мельникова И.И., 1997) наступает синдром
затрудненной яйцекладки, завершающийся выпадением влага49
лища. Выпадение влагалища наблюдается иногда при нарушении микроклимата и светового режима.
По нашим исследованиям, одним из этиологических факторов является кормовой травматизм, связанный с избыточным
количеством в рационе непереваримой клетчатки (особенно лузги овса и ячменя).
При наружном осмотре кур-несушек в производственном
птичнике у части птиц отмечали беспокойство, частое приседание, частичное или полное выпячивание влагалища через клоаку
(рис. 13). При пальпации обнаруживали в яйцеводе сформировавшиеся в скорлупе или в оболочке яйцо. На вскрытии вынужденно забитых кур отмечали, что слизистая оболочка влагалищной части яйцевода гиперемирована, набухшая, сухая (рис. 12).
Часто в нижней части яйцевода обнаруживали яйцо, которое на
2-3 см входило во влагалище. Яйца имели гладкую поверхность
и были вполне сформированы. Учитывая, что стенка клоаки в
равной степени относится и к прямой кишке, то мы осматривали
слизистую влагалища, клоаки и прямой кишки. При исследовании прямой кишки обнаруживали набухание слизистой оболочки, гиперемию, обилие слизистого секрета, а в отдельных случаях и остатки неперевариваемой оболочки зерновых культур.
В этот период в рацион кур вводили нешелушенных 10%
ячменя, 10% овса, 35% молотой полновесной пшеницы, 4% отрубей пшеничных и другие составляющие по нормам для данного кросса. Отход кур с патологией яйцевода доходил до 30% от
общего количества павшей птицы.
При морфологическом исследовании на слизистой оболочке влагалища яйцевода наблюдали дистрофические процессы и десквамацию эпителия, расширение сосудов, гиперемию,
застойные явления в микроциркулярном русле, отечность стромы, инфильтраты, состоящие в основном из полиморфноядерных лейкоцитов. Часто имели место микроциркулярные нарушения в мышечном и серозных слоях. При исследовании участков клоаки и прямой кишки, соприкасающихся с влагалищем
яйцевода, отмечали дистрофические явления в многослойном
плоском эпителии и инфильтраты в строме, в состав которых
входят полиморфноядерные лейкоциты, лимфоциты, плазматические клетки и гистиоциты. Иногда наблюдали склеротические
50
изменения в сосудистой системе, разрастание соединительной
ткани и спаечные процессы.
Рис. 12. Вагинит яйцевода курицы несушки (240 дней)
Рис. 13. Вагинит яйцевода у курицы (300 дней)
51
Изменения структуры тканей влагалища, клоаки и прямой
кишки могут быть вызваны травмированием непереваренными
остями цельного ячменя, которые обнаруживались в клоаке при
паталогоанатомическом вскрытии.
При гистологическом исследовании в слизистой оболочке
влагалища яйцевода наблюдаются дистрофические процессы и
десквамация эпителия, расширение сосудов, гиперимия, застойные явления в микроциркулярном русле, отечность стромы, инфильтраты, состоящие в основном из полиморфноядерных лейкоцитов. Часто имели место микроциркулярные нарушения в
мышечном и серозных слоях. При исследовании участков клоаки и прямой кишки, соприкасающихся с влагалищем яйцевода,
отмечали дистрофические явления в многослойном плоском
эпителии и инфильтраты в строме, в состав которых входят полиморфноядерные лейкоциты, лимфоциты, плазмотические
клетки и гистиоциты. Иногда наблюдали склеротические изменения в сосудистой системе, разрастание соединительной ткани
и спаечное воспаление.
Изменения микроциркуляции и структуры тканей влагалища, клоаки и прямой кишки могут быть вызваны травмированием непереваренными остями цельного ячменя, которые обнаруживались в клоаке при паталогоанатомическом вскрытии.
Лечение и профилактика. При кормовом травматизме
лузгой зерновых следует в рацион вводить ферментный комплекс «Роксазим». Оптимальная дозировка – 80 г/т корма.
Роксазим обладает ферментным и антибактериальным действием за счет сложного строения. В препарате содержатся производные 8-оксихолина, обладающего противомикробными и антипротозойными свойствами, а также смеси растительных протеолитических ферментов.
Дополнительно с профилактическое целью совместно с
роксазимом ввести витаминный премикс «Ронимикс А» (500 г/т
корма). Лечебно-профилактический комплекс задавать курам в
течение месяца.
Овариосальпингит – группа болезней, характеризующихся воспалением яйцевода и яичника. Болезнь распространена среди несушек всех видов птиц, но чаще регистрируется у
кур несушек. Заболевание в отдельных хозяйствах составляет
52
20-30% от всех незаразных болезней несушек. Главной причиной, вызвавшей возникновение заболевания, является нарушение в организме обмена веществ, но также сальпингиты могут
быть следствием или осложнением других болезней (пастереллез, пуллороз, простогонимоз и др.).
При сальпингите нередко нарушаются морфологические и
функциональные особенности яйцеводов, способствующие процессу транспортировки овоцита.
К факторам, обеспечивающим процесс оплодотворения и
транспорта оплодотворенной яйцеклетки, относятся не только
хорошая проходимость яйцевода, но также нормальная моторная функция, которая регулируется действием гормонов яичника на нервную систему яйцевода. Большое значение имеет нормальное состояние фибрий, участвующих в восприятии ооцита и
проникновении ее в ампулярную часть яйцевода. Процесс оплодотворения и транспорт зиготы в значительной мере обеспечиваются нормальной структурой слизистой оболочки яйцевода и
функцией покровного эпителия.
При воспалительных заболеваниях часто происходит нарушение всех указанных условий. Вследствие нарушения кровообращения, экссудации, пролифирации и других процессов,
характерных для воспаления, изменяются строение и функции
фимбрий, нередко происходит их склеивание, ведущие к сужению или облитирации просвета ампулы яйцевода.
Воспалительная реакция вызывает дистрофические процессы в эпителии слизистой оболочки яйцевода, его десквамацию, что играет существенную роль в нарушении генеративной
функции. Повреждение мерцательного эпителия тормозит продвижение ооцита, нарушение функции секреторных клеток слизистой оболочки яйцевода, является причиной снижения жизнедеятельности ооцитов.
Секреторные клетки, имеющие бокаловидную форму,
располагаются между клетками мерцательного (реснитчатого)
эпителия, преимущественно в углублениях между складками
слизистой оболочки.
В слизистой оболочке белковой части яйцевода происходят циклические изменения, не достигающие той степени, которая характерна для эндометрия. В фолликулярную фазу цикла
53
возрастает число реснитчатых и секреторных клеток. В лютеиновую фазу цикла бокаловидные клетки вырабатывают секрет,
который выделяется в полость белковой части яйцевода. Этот
секрет обволакивает яйцеклетку. Он, по-видимому, создает среду для ее питания и других видов жизнедеятельности, а также
облегчает скольжение зиготы по направлению в другие отделы.
Кроме питательных веществ секрет бокаловидных клеток
содержит, вероятно, примесь экстрогенного гормона, который
играет важную роль в осуществлении начальных стадий эмбриогенеза, происходящих вслед за оплодотворением.
К торможению процесса оплодотворения ведет также деформация складок слизистой оболочки, присущая сальпингиту.
Известно, что продольное расположение складок в совокупности с функцией мерцательного эпителия и секреторных клеток
способствует скольжению яйцеклетки по яйцеводу. Нарушение
всех этих морфологических и функциональных свойств слизистой оболочки при сальпингите является одним из важных условий нарушения генеративной функции.
Хорошо известно значение моторной функции яйцевода в
осуществлении транспорта ооцита. Эта функция характеризуется сокращением мускулатуры, регулируется гормонами яичника, действующими на рецепторный аппарат яйцевода. В результате сокращений яйцевод несколько приподнимается, отгибается назад, воронка приближается к яичнику и даже охватывает
его фолликулярную поверхность, что способствует попаданию
ооцита в ампулу яйцевода.
Недостаточное содержание в организме экстрогенных
гормонов вызывает понижение возбудимости яйцевода и его
способности к сближению с овулирующим яичником. Это нарушает механизм восприятия яйцеклетки, которая попадает не в
яйцевод, а в брюшную полость, где может погибнуть. Недостаток прогестерона тормозит нормальную перестальтику яйцевода, может вызвать даже длительный спазм мускулатуры, что
ведет к задержке яйцеклетки в яйцеводе и ее гибели. Таким образом, нарушение моторной функции яйцевода при сальпингите
может быть причиной потери продуктивности при отсутствии
полной облитерации его просвета.
54
Одним из первых признаков возникновения нарушений
функции органов яйцеобразования является повышенное отложение жира, что служит обычно показателем снижения яйценоскости и предпосылкой начинающегося развития овариосальпингитов. По данным Б.Ф. Бессарабова, А.Б. Байдевлятова,
И.И. Мельниковой (1997), указанную патологию условно можно
разделить на 3 стадии. В стадии предвестников наиболее отчетливо выступают изменения жирового обмена. Уровень холестерина и холина в крови резко увеличивается, что является следствием начавшейся резорбции этих веществ. Белки сыворотки
крови находятся в динамичном равновесии с белками органов и
тканей. Следовательно, изменения их уровня отражает степень
нарушения обменных и функциональных расстройств во всем
организме. В стадии выраженной болезни наблюдаются более
глубокие количественные и качественные изменения белков
крови: нарушаются общий обмен, функции органов и систем
организма. У кур в стадии летального исхода обнаруживают выраженную дегенерацию печени и большое количество разлагающейся ихорозной жидкости в брюшной полости, что указывает на резкий токсикоз.
Большинство заболеваний, связанных с нарушением обмена веществ, имеют вторичное происхождение: вначале нарушается функция печени, а затем возникают поражения других
органов. У взрослых несушек при нарушениях вторичного происхождения встречаются овариосальпингиты, алиментарные
дистрофии и анемии, вторичные гиповитаминозы и другие заболевания.
В результате массовых поражений печени сокращается
срок продуктивного использования птицы, повышается риск
заболеваний инфекционной этиологии. Особенно страдают гепатозами куры в конце продуктивного периода. Иногда
выбраковка составляет 30-40% в 6-8-месячном возрасте, в то
время как при нормальном использовании за весь период
выбраковка должна составлять максимально не более 15%.
Печень является крупной железой внутренней секреции и
выполняет многочисленные функции; наиболее важные из них –
участие в липидном, белковом, углеводном и минеральном об55
мене, регуляции водного обмена, кроме того, она служит в качестве депо крови.
В печени происходят накопление витаминов, отложение
жира в качестве энергетического материала, синтез аминокислот. Особое значение имеет функция детоксикации вредных для
организма веществ.
Масса печени у взрослых кур колеблется в пределах 40-60
г; у яичных пород и кроссов кур при голодании выделяется в
среднем 1,5 мл желчи в час на 1 кг живой массы тела, то есть
выделение желчи у птицы зависит от количества и качества
принятого рациона. При задержке с приемом корма у выведенного молодняка вследствие накопления желчи происходит увеличение желчного пузыря; частично желчь эвакуируется в мышечный желудок и окрашивает кутикулу в черный цвет, иногда
происходит ее отслоение.
В условиях крупных птицеводческих хозяйств мы наблюдали как острые, так и хронические овариосальпингиты. Диагноз на заболевание удалось поставить на основании патологоанатомического вскрытия, так как оно протекает в большинстве
случаев без заметных клинических признаков. При остром течении болезни снижается яйцекладка, теряется вес, бледнеют гребень и сережки. Повышается температура тела на 1ºС. Живот
увеличен, при пальпации болезненный горячий. При движении
иногда живот волочится по земле. Состояние больных прогрессивно ухудшается: птица малоподвижна, оперение вокруг клоаки испачкано каловыми массами серо-зеленого цвета. В этот
период теряется оперение в области живота, на откладываемых
яйцах отмечаются известковые наложения. Часть птиц погибает
через 3-7 дней с признаками сепсиса и интоксикации.
Заболевание внешне проявляется слабо: у кур отсутствует
яйцекладка, наблюдаются бледность гребешка и потеря веса.
При вскрытии слизистая гиперемирована, покрыта слизью. В
просвете могут быть сгустки творожистой массы желтоватого
или зеленоватого цвета. В белковой части яйцевода могут находиться несформировавшиеся яйца, заключенные в фибринозную
капсулу.
При хроническом течении заболевания отсутствует яйцекладка. Птица анемична, легковесна. Из яйцевода выделяется
56
жидкий белок или гнойно-фибринозная масса, иногда при прощупывании яйцеобразующих органов можно обнаружить деформированные яйца или сгустки фибрина. Куры погибают через несколько недель после возникновения заболевания.
На вскрытии трупов павших птиц находят в разной степени измененный яичник, яйцевод и серозные покровы брюшной
полости (рис. 15). Яичник часто имеет вид бесформенной массы
в виде кисты, наполненной зеленовато-бурой маслянистой жидкостью
гнилостного
запаха.
Желточные
фолликулы
деформированы, содержимое их разжижено или уплотнено. В
оболочках фолликулов отмечаются кровоизлияния. В редких
случаях наряду со измененными в яичнике можно обнаружить и
нормально сохранившиеся фолликулы (рис. 14).
Рис. 14. Овариосальпингит у курицы-несушки (250 дней)
При диффузных овариосальпингитах брюшная полость
бывает заполнена жидким содержимым грязно-желтого цвета,
гнилостного запаха. Брюшина и серозные покровы имеют фибринозные наложения, часто диагностируется слипчатое воспа57
ление кишечника. Почки и мочеточники инфильтрированы мочекислыми солями, печень в состоянии белково-жировой дистрофии. Слизистая оболочка яйцевода гиперемирована, покрыта
слизью или творожистой рассыпчатой массой желтоватого или
зеленоватого цвета.
В яйцеводе иногда обнаруживают сформированное яйцо,
но с мягкой скорлупой буроватого цвета с гнилостным содержимым зеленоватого цвета.
Рис. 15. Овариосальпингит у курицы (250 дней)
Воспаления яйцевода и яичника (овариосальпингит) распространены среди несушек всех видов птиц, но чаще регистрируется у кур-несушек. Главной причиной, вызвавшей возникновение заболевания, является нарушение в организме обмена веществ, в частности, недостаточность кальция, холина, витаминов А, Д, Е, избыток белков. Заболевание возникает также среди
курочек, не достигших зрелости, которые попадают в условия
обильного кормления и удлиненного светового дня. Сальпингиты могут быть следствием или осложнением других болезней
(пастереллез, пуллороз, простогонимоз и др.).
58
При анализе распространения и этиопатологии оофорита и
сальпингита кур в Пенджабском университете (Индия)
(Batra G.L., Singh B., Grewal G.S., Sodhi S.S., 1982) было вскрыто
375 птиц с клиническими признаками поражения яйцеобразующих органов. При бактериологическом исследовании яичников
и яйцеводов выявлены E. coli в 193 случаях, Klebsiella – в 2,
Pseudomonas – в 2 и Proteus – в 1 случае. При проведении определения чувствительности к противомикробным препаратам использовали метод стандартных дисков. Большая часть изолятов
была высокочувствительна к хлорамфениколу, нитрофурантоину, фурандентину. При этом показывали высокую резистентность к антибиотикам тетрациклинового ряда.
По данным Датского института болезней птиц (Niselbaum I., 1981), ученые не установили корреляции между природой патологических изменений в яйцеводе и данными бактериологического исследования. При обследовании 116886 курнесушек в 438 случаях (0,37%) выявляли сальпингит с последующей выбраковкой этих птиц. После убоя провели бактериологическое исследование содержимого яйцеводов 150 выбракованных кур. В 96 случаях выявили заметный рост микроорганизмов одного вида. Кишечную палочку выделили в 64 случаях
(43%), Pasteurella haemolytica – в 7 (4,7%), P. gallinurum – в 5
(3,3%), Staphylococcus aureus – в 2 (1,3%), Streptococcus faecalis –
в 2 (1,3%) и Moraxella spp. – в 1 случае (0,7%). Смешанную микрофлору обнаружили в 16 случаях (11%), в то время как неспецифический рост – в 3 случаях. Из яйцеводов клинически здоровых кур-несушек микрофлора не выделена. Обнаружили 19 различных О-групп кишечной палочки, наиболее часто встречалась
О2 группа.
Лечение и профилактика. Так как одной из причин данной патологии является нарушение обмена веществ, то следует
вводить в рацион: холинхлорид – 1000 г, йодид калия – 25 г, витамин А – 250 тыс. ед, витамин Е – 40 мл, витамин Д – 50 тыс.
ед, аскорбиновая кислота – 150 г, викасол – 2 г на тонну основного корма. Премикс используют три месяца.
Для нормализации функции печени необходимы различные витамины, аминокислоты, антиоксиданты. Наиболее важный из них – холин, который участвует в жировом обмене ве59
ществ, регулирует и выводит избыточное накопление жиров и
тем самым препятствует их чрезмерному накоплению в печени.
В компонентах комбикормов растительного происхождения содержание холина обычно не превышает 60-75%, поэтому
необходимо дорабатывать корма дополнительным введением
холина. У здоровой птицы содержание холина в печени составляет 4-5 мкг/г, в яйце – 24-25 мкг/г.
Холин служит в основном в качестве донора метиловых
групп, которые необходимы для создания креатина и адреналина. Функциональные особенности холина тесно связаны с витамином В12, выполняющим функцию катализатора путем активации липидного обмена.
При нехватке метионина происходят жировая инфильтрация и дистрофия печени, количество жира может достигать 50%,
поэтому изменяется окраска органа, вместо вишневого приобретает желтый, коричневый цвет.
Лизин необходим для синтеза белка и поддержания азотного баланса организма, кроме того, он является компонентом
пептидных гормонов. В некоторых рационах для кур-несушек
дифицит лизина составляет 15-20%.
В случае поражения печени в лечебных целях рекомендуются комплексные препараты на основе аминокислот лизина и
метионина, витаминов холин-хлорида и В12, сорбитола, инозитола. Препараты согласно наставлению по их применению
улучшают функцию печени, повышают продолжительность использования и продуктивность птицы, предупреждают необратимые нарушения обмена веществ, поэтому при промышленной
технологии необходимо периодически вводить их в воду или
корма. К этим препаратам относятся оральный раствор «Гепатамин» (1 мл на 1 л воды) и «Гепатовекс», который добавляется
в комбикорм из расчета 5 кг на 1 т корма.
При лечении овариосальпингитов можно применять препарат витазол, в состав которого входит: витамин А – 20000 МЕ,
витамин Д3 – 3000000 МЕ, витамин Е – 25000 МЕ, витамин К3 –
5000 мг, витамин С – 10000 мг, витамин В1 – 1500 мг, витамин
В2 – 1500 мг, витамин В6 – 2000 мг, витамин В12 – 25 мг, фолиевая кислота – 15000 мг, пантотенат кальция – 6000 мг, никотиновая кислота – 15000 мг, холинхлорид – 50 мг, биотин – 50
60
мг, глюкоза 1000 г. Витазол растворяют в воде из расчета 500 г
препарата на 1000 л и выпаивают в течение 5-7 дней.
При избытке мочевой кислоты в рацион следует ввести
пищевую соду (2 кг/т корма), уротропин (0,05 г на 1 голову),
селен (2 мг на 10 кг корма) на 10 дней. Затем задать комплекс:
окситоцин – 30,0 мл, неомицин сульфат – 25,0 г, глюкоза –
150 г. Порошок растворяют в 500 л воды и выпаивают курам в
течение 4-5 дней.
При подозрении на инфекцию следует ввести левомицетин или тетрациклин (350 г на тонну корма) в течение 7 дней.
Не плохие результаты были получены при применении 10%ного амоксицилина. Препарат относится к группе полусинтетических пенициллинов, обладающих широким бактерицидным
действием. Он препятствует синтезу клеточной перегородки,
вызывая нарушение осмотического баланса, что приводит к гибели бактерий на этапе роста.
Рабочий раствор готовят, смешивая 100 г 10%-ного амоксицилина с 4-5 л воды. Перед употреблением матричный раствор добавляют к 200 л воды и задают птице.
Желточный перитонит – группа заболеваний, объединяющих воспаление яйцевода, яичников, брюшины. При данной
патологии у птиц находили в различной степени изменения
яичников, яйцевода и серозных покровов брюшной полости;
чаще обнаруживали разрывы желточных фолликулов, воспаление яичника и яйцевода; атонию, смещение и разрыв яйцевода.
При исследовании крови больных сальпингоперитонитом
кур устанавливают псевдоэозинофильный лейкоцитоз со сдвигом ядра влево до миелоцитов, а также лимфопению, эозинофилию, полихроматофилию. В отдельных случаях отмечаем появление вакуолей в протоплазме лейкоцитов и эозинофилов. В
цельной крови и плазме больных несушек увеличена концентрация общего и остаточного азота, свободных аминокислот,
мочевой кислоты, возрастает активность глутаминоаспаргиновой трансаминазы. Наиболее характерные отклонения в сыворотке крови: увеличение общего белка до – 8,0 г% и выше, снижение уровня кальция до – 10-13 мг%, нарастание количества
мочекислых солей.
61
В отдельных случаях причиной желточного перитонита
могут быть травмы различного происхождения (удары о насесты, кормушки, грубое обращение при ловле), в результате которых происходит разрыв желточных фолликул или их преждевременный отрыв и попадание желточной массы в грудобрюшную полость, где они могут разложиться и вызвать воспаление
брюшины.
У недостаточно подготовленной к продуктивному периоду курице наступает синдром «затрудненной яйцекладки», завершающийся обычно выпадением яйцевода. Избыток белка и
фосфора на фоне недостаточности витаминов группы В (холин,
рибофлавин и др.) способствует накоплению в крови солей молочной кислоты и других продуктов метоболизма, что служит
причиной возникновения сальпингитов, овариитов и желточного
перитонита. В условиях трехдневного водного голодания достаточно, чтобы в последующем наступила массовая гибель несушек от желточного перитонита. При вскрытии констатируют
выпадение фолликулов в брюшную полость и развитие асептического катарально-фибринозного воспаления.
Около 43% кур с клиникой желточного перитонита были
инфицированы бактериями Esherihya Coli, которых выделяли
при посевах из внутренних органов. В данном случае кишечная
палочка играет потенциальную роль, но может служить вторичным возбудителем. Патогенными штаммами колибактериоза
легко удается вызвать заражение кур при введении культуры в
просвет яйцевода. Наиболее часто в производственных условиях
при желточных перитонитах выделяется серотип О2.
У больной птицы отвисает живот, кожа в области живота
синеет и через стенку можно прощупать полужидкую или густую массу. Птица двигается с трудом, аппетит снижен, угнетенное состояние, худеет, яйцекладка прекращается. На 3-7-е сутки
с начала болезни возможен летальный исход на почве сепсиса и
интоксикации.
Желточный перитонит является следствием нарушения
нормального процесса формирования яйца у несушек. Целым
рядом исследователей установлено, что овуляция у кур возможна в довольно широком диапазоне времени относительно откладки предыдущего яйца
62
В свою очередь В.Ф. Гусев и Г.А. Кононов (1969) при
вскрытии кур, павших от желточного перитонита, отмечали
фибринозное или гнойное воспаление брюшины и прилегающих
к ней воздухоносных мешков, слипчивое воспаление кишечных
петель, наличие в брюшной полости жидкости грязно-желтого
цвета, зловонного запаха, дряблость сердечной мышцы; почки и
мочеточники наполнены мочекислыми солями.
Часто при вскрытии находят покрасневшую с язвеннодифтерическим процессом слизистую оболочку яйцевода. При
этом в яйцеводе содержится желтого цвета казеозный экссудат,
иногда округлой формы, в виде глыб или напоминает яйцо, на
разрезе конгломерата заметна выраженная слоистость.
Снесение яиц у больных кур сопровождается сильными
болями, наблюдается зияние сфинктора клоаки, выпадение влагалища яйцевода. Со временем происходит инфицирование
клоаки и воспаление яйцевода. Возможен стеноз яйцевода и в
результате антиперестальческих движений происходит выход
яиц в брюшную полость. Инфицированные яйца, попадая в
брюшную полость, могут вызвать желточный перитонит.
У заболевшей птицы наблюдают прекращение яйцекладки, общее угнетение и повышение температуры. Живот был
сильно увеличен, при пальпации болезнен, часто флюктуировал.
Состояние быстро ухудшается вплоть до летального исхода в
течение 7 дней с яркой клиникой интоксикации.
В результате неблагоприятных этиологических факторов
задерживается созревание фолликулов яичника, уменьшается их
прочность и устойчивость к воздействию микрофлоры. Содержимое фолликул подвергается гнойно-гнилостному распаду и в
виде ихорозной массы изливается в плевро-пенитальную полость, что приводит к диффузному перитониту. Ввиду воспаления воронки яйцевода и атонии ее начального отрезка она становится непроходимой для образующихся в яичнике желтков. В
таких случаях желток вместо яйцевода попадает в брюшную
полость. Выпавшие единичные желтки могут рассасываться, в
то время как многократное повторение приводит к желточному
перитониту.
У заболевшей птицы наблюдаются прекращение яйцекладки, общее угнетение и повышение температуры. Живот
63
сильно увеличен, при пальпации болезнен, часто флюктуирует.
Состояние быстро ухудшается, вплоть до летального исхода в
течение 7 дней с яркой клиникой интоксикации. Установлено,
что 60% заболеваний половой системы птиц сопровождается
желточным перитонитом.
При остром заболевании куры становятся безучастными,
теряют аппетит; фекальные массы окрашиваются в серозеленый цвет. Яйценоскость резко снижается, откладываемые
яйца покрыты известковыми наложениями. При подостро протекающем заболевании часто увеличивается в объеме живот, с
признаками флюктуации в нем жидкости, вокруг клоаки оперение запачкано каловыми массами. При прощупывании яйцевода
обнаруживают яйцо, иногда увеличенное в объеме. Куры принимают вертикальную постановку тела, кожа в области живота
без оперения, синюшного цвета.
Проводя патологоанатомическое вскрытие трупов птиц, погибших от нарушения функции репродуктивной системы, находят в равной степени изменения яичников, яйцевода и серозных
покровов брюшной полости: чаще обнаруживают разрывы фолликулов; воспаление яичника; атонию, смешение и разрывы яйцевода. Оболочки фолликул яичника в различной стадии созревания сильно гиперемированы. На части из них обнаруживают кровоизлияния в виде петехий, которые иногда сливаются вместе,
придавая им ярко-красный цвет. Сами фолликулы могут деформироваться, приобретая сегментированную мешковидную или
колбасовидную форму. Нередко оболочка фолликула расплавляется, что создает возможность для излияния желтка в брюшную
полость и склеивания желточной массой петель кишечника.
При остром течении заболевания куры становятся безучастными, теряют аппетит; фекальные массы окрашиваются в серо-зеленый цвет. Яйценоскость резко снижается, откладываемые яйца покрыты известковыми наложениями. При подостро
протекающем заболевании часто увеличивается в объеме живот
с признаками флюктуации в нем жидкости, вокруг клоаки оперение запачкано пометом. При прощупывании яйцевода обнаруживают яйцо, иногда увеличенное в объеме. Куры принимают
вертикальную постановку тела, кожа в области живота без оперения, синюшного цвета.
64
Проводя патологоанатомическое вскрытие трупов птиц,
погибших от нарушения функции репродуктивной системы, находили в равной степени изменения яичников, яйцевода и серозных покровов брюшной полости: чаще обнаруживают разрывы фолликулов; воспаление яичника; атонию, смешение и
разрывы яйцевода. Оболочки фолликул яичника в различной
стадии созревания были сильно гиперемированы. На части из
них обнаруживали кровоизлияния в виде петехий, которые иногда сливаются вместе, придавая им ярко-красный цвет. Сами
фолликулы были деформированы, приобретали сегментированную мешковидную или колбасовидную форму. Нередко оболочка фолликула расплавлялась, что создавало возможность для
излияния желтка в брюшную полость и склеивания желточной
массой петель кишечника.
Диагноз на желточный перитонит ставили на основании
симптомов болезни, комплекса патоморфологических признаков
и лабораторных исследований. При этом обращали внимание на
рацион и условия содержания птицы.
В целях исключения заболеваний инфекционной этиологии (сальмонеллез, колибактериоз и др.), где поражение репродуктивной системы кур является симптомом, необходимо провести соответствующие бактериологические и вирусологические исследования.
В отдельную группу при составлении классификации мы вынесли физиологические аномалии яйцекладки, связанные, повидимому, с технологическим стрессом, с гормональными нарушениями в организме кур-несушек, а также со специфическими заболеваниями: инфекционный бронхит кур, пуллороз, простагонимоз и т.д.
Лечение и профилактика. При подозрении или выделении микробного фактора птице следует ввести в рацион левомицетин или тетрациклин из расчета 350 г на 1 т основного
корма и давать в течение 7 дней.
Если в крупном птицеводческом хозяйстве складывается
неблагоприятная ситуация по желточному перитониту, можно
применять комплексный препарат «Тромексин». В его состав
входят сульфаметоксипиридазин, триметоприм, тетрациклин
гидрохлорид, фенилбутазол, бромгексин хлоргидрат и наполни65
тель. Противомикробные вещества, образующие данный препарат, усиливают синергетику, что увеличивает спектр действия.
Одновременно получается положительный эффект от бромгексина, который разжижает слизь, и от фенилбутазона, снимающего гиперимию слизистых оболочек. Тромексин задают в течение 3 дней (1 г на 1 л воды).
В лаборатории необходимо проверить чувствительность
выделенных микробов к лекарственным препаратам и в дальнейшем пользоваться теми препаратами, к которым чувствительны
выделенные микробы. С целью повышения резистентности в этот
период необходимо увеличить на 30-40% по сравнению с принятой нормой содержание в рационах витаминов А, Е, С, Д, В.
Скармливать их надо в виде специальных витаминных добавок.
По данным Б.Ф. Бессарабова, А.Б. Байдевлятова, И.И. Мельниковой (1997), можно использовать: холинхлорид – 800 г, витамин Е
– 30 г, витамин В6 – 30 г, витамин В12 – 30 мг, витамин А – 250
тыс. ед. – 40 мл, витамин Е – 50, витамин Д – 50 тыс. ед.
Снесение мелких яиц – распространенная аномалия яйцекладки. Причинами данной аномалии могут быть специфические заболевания: инфекционный бронхит кур, пуллороз, простагонимоз, а также нарушение обмена кальция и фосфора,
травматическое повреждения органов яйцеобразования.
Мелкими считаются яйца, вес которых не превышает 35,0
г. Снесение мелких яиц чаще наблюдается у молодых птиц при
использовании несбалансированного рациона, нарушениях светового режима и водном голодании. Провоцирующими факторами являются сужение матки и инфицирование влагалища яйцевода.
Яйца, которые относятся к мелким (карликовым), не превышают величину грецкого ореха. Форму яиц оценивают по индексу путем деления малого диаметра яйца на большой и выражают в процентах. Для удобства можно использовать индексомер ИМ-1 конструкции П.П. Царенко. Исследуемое яйцо помещают на рабочую площадку прибора, прижимая одновременно к
обеим неподвижным упорам так, чтобы ось яйца была параллельна одному из неподвижных упоров и перпендикулярна другому. Придерживая одной рукой яйцо в соприкосновении с неподвижными упорами, пальцами другой руки сжимают рукоят66
ки до контакта подвижных упоров с поверхностью яйца и фиксируют показания стрелки на шкале индексов. При этом учитывают, что индекс формы в значительной степени связан с количеством боя и насечки яиц.
Мелкие яйца могут быть без желтка, чаще они образуются
при скоплении в яйцеводе небольшого количества белка, который обволакивается скорлупой. Иногда в центре карликого яйца
можно обнаружить сгусток крови, фибрин, частицы желтка. Вокруг посторонних включений формируется яйцо, обычно круглой формы.
В результате усиленной перистальтики стенок яйцевода,
желток может быстро проходить белковую часть, не покрываясь
белком, и проникает в матку, где образуется скорлупа. В таком
мелком яйце белок отсутствует или имеется в очень незначительном количестве.
Снесение слишком крупных яиц. У кур бывают очень
большие яйца, например, двухжелтковые, достигающие более
80 г. Их образование происходит при отделении двух желтков, в
короткий промежуток времени попадающих в яйцевод. При понижении тонуса яйцевода желток задерживается и его достигает
другой, тем самым образуя единое ядро. Свойство откладывать
двухжелтковые яйца наследственно. Из таких яиц при инкубации выводимый молодняк чаще всего имеет уродства.
Подразделяют несколько типов двухжелтковых яиц: каждый из двух желтков имеет отдельные желтковые оболочки, но
желтки плотно соприкасаются друг с другом и покрыты общим
белком; каждый желток имеет отдельную желточную оболочку
и отдельный градинковый слой белка, но оба желтка имеют общий белковый мешок, оболочки и скорлупу; все окружающие
желток компоненты яйца расположены отдельно и имеют только общую оболочку и скорлупу; все компоненты яйца расположены отдельно, и подскорлупные оболочки разделяют желтки,
но имеется общая скорлупа.
Образование двухжелтковых яиц происходит при отделении двух желтков, которые в короткий промежуток времени попадают в яйцевод. При понижении тонуса яйцевода желток задерживается и его достигает другой, тем самым, образуя единое
ядро.
67
В редких случаях отмечается снесение двойных яиц, которые представляют собой присутствие одного более или менее
сформированного яйца в другом.
Структурно двойные яйца представлены следующими типами: сформированное яйцо внутри другого сформированного;
безжелтковое яйцо внутри сформированного; сформированное
внутри безжелткового; безжелтковое яйцо внутри безжелткового.
Снесение двухжелтковых и двойных яиц иногда затруднено, они могут задерживаться в яйцеводе, вызывая различные
патологии яйцекладки.
Патологии формирования яичной скорлупы. Нарушения относятся к неравномерному образованию яичной скорлупы
и встречаются особенно часто у высокопродуктивных кур.
Недостаток формирования скорлупы отмечается у кур, в
рационе у которых не хватает витамина D, минеральных веществ,
а также солнечного облучения. На слабость скорлупы влияет повышение температуры в птицеводческих помещениях. При температуре 38-40ºС в организме птицы отмечается сдвиг в обмене
кальция, что оказывает ингибирующее действие на формирование яичной скорлупы. Длительное повышение температуры тела
несушки также ведет к образованию слабой скорлупы.
Усиленная активность яйцевода приводит к нарушениям
этапов транспортировки и формирования, в результате чего на
яйце откладываются известковые наложения различной пористости. Яйца с мраморной скорлупой имеют звездчатый рисунок
вследствие скопления избыточной влаги в органическом веществе, находящемся между порами.
Отдельным пороком является мягкость скорлупы, что связано с нарушением механизма поглощения и отложения кальция, а также с недостатком поступления извести из кормов. Если
данный недостаток передается по наследству, то таких птиц
следует выбраковывать. Остальных несушек для получения яиц
с прочной скорлупой необходимо обеспечить минеральными
кормами и витамином D, в отдельных случаях можно давать
препараты марганца.
Яйца с патологией скорлупы не годятся для инкубации.
Для селекции прочности скорлупы удобен метод косвенной
68
оценки путем измерения упругой деформации на приборе
ПУД-1 конструкции П.П. Царенко.
Яйцо в горизонтальном положении помещают в специальное гнездо на приборе и воздействуют на него грузом массой
500 г. Степень упругой деформации определяют по прогибу после снятия силового воздействия на яйцо. С помощью прибора
можно оценить 900-1100 яиц в час при полном сохранении их
целостности. Степень упругой деформации яиц колеблется в
пределах 12-60 мкм. Упругая деформация коррелирует с толщиной скорлупы (r = -0,7…- 0,8) и ее прочностью (r = -0,5…-0,7).
Существует определенная зависимость между толщиной
скорлупы и качеством яиц у кур. Так, при толщине скорлупы
0,28 мм доля боя и насечки составляет 45,5%; 0,31 – 21,8; 0,33 –
12,3; 0,38 мм – 4,9%. В норме куриное яйцо должно иметь плотность 1,070-1,095 г/см3, индекс формы – 73-80%, упругая деформация – 21-26 мкм, толщина скорлупы – 0,34-0,36 мм, питательная ценность 100 г яичной массы – 663 кДж.
Снесение деформированных яиц. При сдавливании
стенкой яйцевода скорлупы на ранней стадии формирования
образуются деформированные яйца. Они имеют разнообразную
форму: цилиндрическую, шарообразную, сплющенную, изогнутую, грушевидную, веретенообразную, почкообразную, эллиптическую, усеченную, спаянную, в редких случаях, уродливые
яйца в виде спирали.
Часто к аномалиям яйца приводят ушибы яйцевода или
его воспаление. При этом появляются яйца с шероховатой скорлупой, с наличием на ней известковых поясков и перетяжек. Это
связано с судорожным сокращением яйцевыводящих путей и с
нарушением деятельности желез в маточной части яйцевода, где
происходит формирование известкового слоя яйца.
Деформация яйца оценивается визуально, оно не может
быть инкубационным, так как эмбриональный зародыш не способен развиваться.
Наличие крови в яйце. Появление в яйце «кровяных пятен» связано с несколькими этиологическими факторами: с ранним разрывом фолликулярной оболочки при формировании яйца, удлинением светового режима, а также стрессовыми ситуациями. В редких случаях попадание крови в яйцо у молодых
69
несушек наблюдается в результате разрывов мелких кровеносных сосудов яйцевода.
При осмотре таких яиц на овоскопе отмечаем красноватожелтую окраску, отсюда название – «красюки». Причиной появления «красиков» могут быть стафилококки, попадающие в яйцевод из сопредельных органов. Микроорганизмы проникают в
яйцо, разрушая желточную оболочку. В результате наблюдается
изменение структуры яйца, внутренняя часть его гомогенизируется и приобретает красноватую окраску. Подобная клиническая
картина наблюдается при пуллорозе и сальмонеллезе птиц.
Затрудненная яйцекладка. Болезнь чаще регистрируется
у молодых кур, обычно ранней весной в результате недоразвития половых органов, снесения крупных яиц или потери тонуса
яйцевода и брюшных стенок. Субъективными причинами служат недополучение необходимого количества питательных веществ, минеральных солей и витаминов, а также удлинение светового режима в начале яйцекладки.
Довольно часто объективными причинами данной патологии являются опухоли яичника и яйцевода: липомы, фибромы,
фибросаркомы, полиморфноклеточные саркомы, карциномы.
Почти 80% овариокарцином образуется при имплантации метастазов и отмечаются в форме диссеминированных узелков на
яичнике, яйцеводе и брюшине. Из 103 случаев вскрытия трупов
птиц с опухолями установлено: желточные карциномы – 86,5%;
аденокарцином яйцевода – 4,9; карцином желточных протоков –
0,9; сарком яичников – 1,9 и лейкоза – 5,8%.
Заболевание в начальной стадии протекает без ярких клинических признаков. Затем дыхание у птиц становится учащенным, иногда со стонами. Они ведут себя беспокойно, стремясь
отыскать гнездо. При пальпации через брюшную стенку или через клоаку прощупываем 2-3 сформированных яйца в нижней
части яйцевода. Если на 4-5-й день курица не снеслась, у нее
отмечается угнетение. Несушка стоит широко расставив конечности, хвост опущен, а передняя часть приподнята. При этом
живот горячий, брюшная стенка напряжена. В дальнейшем наблюдаются посинение гребня, потеря жизненного тонуса и гибель птицы.
70
Иногда затрудненная яйцекладка отмечается при снесении
первых яиц молодыми птицами, так как яйцевод, клоака и таз
недостаточно развиты. Яйцевод может несвоевременно расслабляться и яйцо задерживается во влагалищной части. У курицы в
этот момент могут наступить судороги, переходящие в параличи. Чаще птица лежит и делает ногами непроизвольные движения. Состояние курицы улучшается, если она снесет яйцо, и
ухудшается, если в воронку яйцевода поступают новые ооциты.
Для того, чтобы исключить данную патологию, необходимо обеспечить полноценное кормление в течение всего года,
включая в рацион травяную муку, зеленые сочные корма, корнеплоды. Птица должна совершать достаточно активных движений с использованием выгулов, а при клеточном содержании
профилактика заключается в правильном регулировании светового режима и выведением кормушек за пределы клетки.
Недоразвитие яичника и яйцевода. Заболевание отмечается у молодок, которые с наступлением физиологической зрелости не способны откладывать яйца.
У нормальных кур к началу яйцекладки размеры половых
органов должны соответствовать следующему стандарту: длина
яйцевода – 10-20 см; масса – 4-5 г, диаметр – 4-6 мм. При этом
воронка, белковая часть, перешеек, матка и влагалище яйцевода
выражены хорошо.
Главной причиной инфантилизма является недостаточное
обеспечение кур питательными веществами. Особенно при нехватке в рационах биологически активных веществ (витаминов
А, Е, Д; незаменимых аминокислот), что приводит к недоразвитию репродуктивных органов.
Клинически инфантилизм проявляется слабо, в редких
случаях отмечается общее недоразвитие птицы и уменьшение в
размерах гребня. Чаще куры имеют нормальный гребень и сережки, но недоразвитые яйцевод и яичник. Диагноз подтверждается патологоанатомическим вскрытием: в яичнике отсутствуют фолликулы; яйцевод тонкий, сморщенный.
Для исключения заболевания необходимо проводить планомерную селекционную работу, обеспечивать полноценное
кормление с учетом возраста птиц в период подготовки к яйцекладке.
71
БИОТЕХНИКА РЕПРОДУКЦИИ КУР
Отбор петухов
Для искусственного осеменения кур отбирают петухов
крепкой конституции от высокопродуктивных здоровых родителей. В ответ на массаж они должны выделять достаточное количество хорошей спермы. Первый отбор проводят в 60-70дневном возрасте. Для дальнейшего использования оставляют
петушков, наиболее типичных для данной породы и линии с хорошим общим развитием. Второй отбор петухов яичных пород
проводят в возрасте 5 месяцев, общепользовательных и мясных
пород – в возрасте 5-6 месяцев. Оставляют хорошо развитых
петухов с мягким животом, реагирующих на массаж выворачиванием клоаки, эрекцией копулятивного органа и выделением
спермы хорошего качества. Окончательный отбор петухов яичных пород проводят в возрасте 7 месяцев, общепользовательной
и мясных пород – в возрасте 7,5-8 месяцев. При первом отборе
оставляют одного петушка на 10 курочек, при повторном – их
число можно уменьшить в 2 раза. Окончательно оставляют одного петуха на каждые 40-60 кур.
За 2-3 недели до начала использования петухов помещают
в предназначенные для них клетки, чтобы они привыкли к новым условиям, друг к другу и обслуживающему персоналу.
Подсаживать и заменять петухов нежелательно, так как это приводит к дракам и значительному торможению половых рефлексов.
Петухов, используемых для получения спермы, содержат
в клеточных батареях не более 3 голов в одной клетке (при высоте клетки 65 см и длине кормового фронта 18 см). Поилки
монтируют на задней стенке батареи, дверки клеток должны
легко открываться. В петушатнике поддерживают температуру
15-20°С. Более низкая температура быстрее охлаждает спермоприемники, а следовательно, и сперму, что ухудшает ее качество, в свою очередь более высокая температура угнетает самцов.
72
Оценка качества спермы
Сперма состоит из двух основных частей – спермиев и
плазмы. Спермин образуются в извитых канальцах семенников,
а плазма – из жидкости спермопроводов, клоакальных желез и
секрета извитых канальцев.
Оценка качественных показателей спермы – это определение комплекса физиологических свойств, характеризующих ее
биологическую полноценность, от которой зависят оплодотворение яйцеклеток и жизнеспособность потомства. Наиболее объективно состояние воспроизводительной способности
самца характеризует оплодотворяющая способность спермы,
определенная по результатам осеменения. Этот показатель выражают процентом оплодотворенных яиц от числа заложенных
на инкубацию. При оценке качества спермы пользуются косвенными методами. Все они сводятся к определению числа спермиев и их биологических свойств.
Спермопродукция самцов зависит от вида птицы, породы,
возраста, состояния линьки, условий содержания и кормления.
Химический состав спермиев и плазмы спермы в большей
мере изучен у петухов. В ней содержится около 80-85% воды,
602-615 мг% белкового азота, а также углекислота (НСО3),
кальций, магний, натрий, калий, медь, цинк, железо, хлориды,
фосфор общий (кислоторастворимый, неорганический, органический, липидный), дезоксирибонуклеиновые кислоты, протеин,
азот общий, азот небелковый, мочевая кислота, креатин, гутаминовая кислота свободная, сиаловая кислота, глюкоза, фруктоза, сорбитол, инозитол, аскорбиновая кислота, эрготионин, молочная кислота, лимонная кислота, пировиноградная кислота, 2оксиглутаровая кислота, кислая фосфомоноэстераза, щелочная
фосфомоноэстераза.
В сперме петухов имеются как глюкоза, так и фруктоза, но
в малых количествах, глюкозы – 7,7-8,1 мг%, фруктозы – 4 мг%.
В цельной сперме петухов содержится от 5 до 50 мг% сахаров в
зависимости от концентрации в ней спермиев. Например, в
сперме с высокой концентрацией клеток количество сахаров
меньше, чем в редкой сперме. Это объясняется, вероятно, тем,
73
что в концентрированной сперме быстрее расходуются энергетические резервы вообще и сахара в частности.
Один из источников энергетических резервов – липиды
спермы. Они находятся в спермиях и выполняют одновременно
и структурные функции. Средняя концентрация липидов в
сперме петухов равна 164,7-191,5 мг%. Их расход в сперме в
расчете на 1 млрд спермиев при инкубации в течение 1 ч и температуре 38° равен в среднем 17,2%, а расход сахаров за это время – 27,7 %.
В спермиях содержится аденозинтрифосфорная кислота
(АТФ), имеющая огромное значение в энергетике спермиев, так
как она является основным макроэргическим соединением, выделяющим энергию, необходимую для движения спермиев и
успешного протекания некоторых других процессов. Уменьшение содержания АТФ почти всегда сопровождается понижением
активности спермиев.
Из ферментов, имеющихся в сперме птиц, наиболее полно
изучены цитохромоксидазы, дегидрогеназы и фосфатазы. Суммарная активность дегидрогеназ определяется временем, необходимым для обесцвечивания метиленовой сини, или по реакции восстановления 0,2%-ного раствора 2, 3, 5-трифенилтетразолий в красный формазон.
Сперме петухов присуща низкая активность щелочной
фосфатазы и высокая – кислой фосфатазы. Следует отметить,
что активность этих ферментов в сперме птиц очень изменчива
и зависит от индивидуальных особенностей птиц, их возраста и
сезона года.
При общей оценке спермы сначала проводят внешний осмотр полученного эякулята. Нормальная сперма молочно-белого
или слегка желтоватого цвета, сливкообразной консистенции.
При наличии в сперме крови она имеет розовато-красный цвет,
при загрязнении пометом – желтовато-коричневый. Моча видна
в сперме в виде белых хлопьев. Эякулят, отклоняющийся от
нормы по внешним признакам, нельзя использовать для искусственного осеменения птиц.
На качество спермиев влияют физко-химические свойства
окружающей среды. Из многочисленных условий, влияющих на
жизнеспособность спермиев, наибольшую роль играют темпера74
тура, рН, буферность, осмотическое давление, ионный состав
окружающей среды и свет. Значение этих условий бывает различным в зависимости от того, для какой цели предполагается
использовать сперму.
Для движения спермиев оптимальна температура тела животных, хранить же сперму желательно при возможно более
низкой температуре, когда обменные процессы в спермиях резко заторможены, энергетические запасы расходуются экономно,
меньше образуется продуктов распада, отрицательно влияющих
на их жизнеспособность. Уменьшение температуры спермы на
10° замедляет дыхание спермиев вдвое, а при 0° дыхание протекает еще медленнее. Однако резкое снижение температуры
спермы до 0° вызывает температурный шок. Это явление особенно выражено у спермиев млекопитающих, но оно присуще и
спермиям птиц. Поэтому рекомендуется получать сперму в теплый спермоприемник (около 25°) и снижать ее со скоростью 1,52° в минуту.
Для лучшей активизации движения спермиев птиц оптимальна рН, близкая к нейтральной (7) или слабощелочной (7,2). В
сильно кислой среде у спермиев наступает кислотный анабиоз.
Впервые это явление было установлено в 1924 г. К.Н. Крыжишкиовским и Г.Н. Павловым. Они поместили сперму млекопитающих в запаянный капилляр и, вскрыв его после суточного хранения при температуре 10°, обнаружили спермин без признаков
движения, которое восстановилось после соприкосновения спермы с воздухом. Инактивацию движения спермиев они объяснили
торможением, вызванным накопившимися кислотами, а восстановление движения – обогащением среды кислородом.
Резкому изменению рН препятствуют буферные свойства
спермы, создаваемые солями, слабо диссоциированными кислотами, белками и другими соединениями, имеющимися в ее
плазме. Для придания буферных свойств сперме в нее вводят
цитрат натрия или соли фосфорной и угольной кислот.
Сохранение биологических свойств спермиев в значительной степени зависит от величины осмотического давления
окружающего раствора. Оптимально осмотическое давление
плазмы спермы или разбавителя равно осмотическому давлению
содержимого спермиев. Величину осмотического давления из75
меряют в атмосферах или в депрессии (температура, при которой происходит замерзание спермы). Точка замерзания спермы
петухов равна –0,63... -0,67°С.
Широкие колебания осмотического давления в плазме
спермы и применяемых средах вредно сказываются на биологических свойствах спермиев. При снижении его, или иначе говоря, в гипотонических средах, происходит избыточное проникновение воды в спермии, в результате чего они набухают. В результате снижается их оплодотворяющая способность. Поэтому
всякий раз, когда ведется разработка сред, необходимо добиваться их изотоничности, чтобы осмотическое давление в них
было такое же, как и содержимое спермиев.
Отрицательно воздействует на спермин прямое солнечное
освещение, так как ультрафиолетовые лучи их убивают. Такое
же вредное воздействие оказывает ряд лекарственных веществ,
применяемых для дезинфекции, поэтому пункты искусственного осеменения должен быть изолированы от производственных
и вспомогательных помещений.
Для правильной оценки самцов по спермопродукции, их
за две недели до анализа сажают в клетки небольшими группами, так как в больших группах выделяются самцы-лидеры, которые подавляют остальных, ухудшая их физиологическое состояние вообще и показатели спермы в частности.
Рис. 16. Определение качества спермы
76
В течение двухнедельной выдержки в отведенных клетках
самцы привыкают к обстановке и обслуживающему персоналу.
Это необходимо для более успешной выработки у них положительного рефлекса на массаж, сопровождающегося эрекцией
копулятивного органа и выделением спермы.
Оценку качества спермы начинают после введения самцов
в установленный режим, когда образовался устойчивый рефлекс
выделения спермы на массаж.
Для прогнозирования качества спермы достаточно оценить ее в начале племенного сезона в 3-5 эякулятах, чтобы получить полное представление о спермопродукции самцов в последующий период племенного сезона.
Объем эякулята измеряют по делениям на спермоприемнике или градуированной пипеткой на 1-2 мл. Установлены следующие средние объемы эякулятов при однократном получении
спермы у петухов – 0,2-0,5 мл.
По густоте и активности сперму оценивают по общепринятой методике под микроскопом при увеличении в 300–400 раз
Неразбавленная сперма по густоте в зависимости от концентрации спермиев в 1 мл может иметь следующие оценки.
Густая сперма (Г) – все поле зрения микроскопа густо заполнено спермиями. Соответствует концентрации, приблизительно равной для петухов – 3 (млрд/мл).
Средняя сперма (С) – в поле зрения микроскопа между
спермиями заметны промежутки. Соответствует концентрации,
приблизительно равной для петухов – 2 (млрд/мл).
Редкая сперма (Р) – спермин размещаются в поле зрения
микроскопа с большими незаполненными промежутками. Соответствует концентрации, приблизительно равной для петухов –
менее 2 (млрд/мл).
Активность спермиев. Активность (подвижность) спермиев оценивают по десятибалльной шкале: 10 баллов – сперма,
в которой все спермин имеют прямолинейное поступательное
движение. Однако практически такое явление маловероятно, так
как в каждом эякуляте есть спермии различного возраста, степени зрелости, возбудимости и подвижности. Поэтому реальной
высокой оценкой подвижности считают 9 баллов (9 спермиев из
10 имеют прямолинейное поступательное движение). Мини77
мальной оценкой (1 балл) характеризуется сперма с самой низкой подвижностью (1 спермий из 10 двигается прямолинейнопоступательно). Поступательные движения единичных спермиев обозначают ЕД, колебательные – КД; неподвижность всех
спермиев – буквой Н (некроспермия), полное отсутствие спермиев в сперме – буквой А (азоспермия).
Для визуального определения густоты спермиев на предметное стекло наносят каплю спермы таких размеров, чтобы она
заполнила все пространство под покровным стеклом, но не вытекала из-под него. При такой оценке сперму петухов считают
густой (Г), когда все поле зрения микроскопа заполнено спермиями (рис. 3) в количестве от 4 до 6 млрд/мл. Средней (С) по
густоте считается сперма, в которой между спермиями имеются
уже промежутки, а число спермиев в ней колеблется от 2 до 4
млрд/мл. В редкой (Р) сперме спермин отделены друг от друга
большими промежутками, а концентрация их при этом равна
0,5-2 млрд/мл. Для осеменения такая сперма непригодна.
Более точно определить концентрацию спермиев можно с
помощью счетной камеры и фотоэлектроколориметра.
Концентрация спермиев. Сперма птиц очень густая. Ее
концентрацию выражают числом спермиев в 1 мл (1 см³) в миллиардах и обозначают буквой С. Между концентрацией спермиев и оплодотворяющей способностью спермы установлена прямая положительная корреляция порядка 0,3-0,4. Концентрацию
спермиев определяют в счетных камерах или на фотоэлектроколориметре. Подсчет количества спермиев в счетной камере Горяева проводят по общепринятой методике при увеличении в
400 раз В эритроцитный меланжер набирают сперму до деления
0,5; 3%-ный раствор хлористого натрия набирают до деления
101 Концентрацию вычисляют по формуле:
С= n / 100,
где С – концентрация спермиев (млрд/мл);
п – число спермиев в пяти больших квадратах.
Подсчет концентрации спермиев в камере Горяева трудоемок и длителен. При необходимости оценивать большое количество самцов лучше пользоваться фотоэлектроколориметром. Концентрацию спермиев определяют ФЭК-М по общепринятой методике и в соответствии с прилагаемой к при78
бору инструкцией. Для этого необходимо предварительно построить калибровочную кривую, изображающую зависимость
оптической плотности от концентрации спермиев. С этой целью
выбирают несколько эякулятов и тщательно определяют концентрацию спермиев в счетной камере. Из отобранных эякулятов путем разбавления 3,5%-ным раствором лимоннокислого
натрия 1:1; 1:2; 1:3 и т. д. готовят ряд образцов спермы (не менее 5-6-эталонов) и уточняют концентрацию спермиев в каждом
из них в счетной камере. Определяют оптическую плотность
каждого образца на приборе и, зная фактическую концентрацию
спермиев, установленную в счетной камере, строят калибровочную кривую. Для этого на миллиметровой бумаге откладывают
по горизонтальной оси известные концентрации спермиев каждого образца, по вертикальной – соответствующие им величины
оптической плотности. В местах пересечения перпендикуляров
ставят точки и проводят кривую так, чтобы она прошла через
большинство указанных точек, а число точек, лежащих выше и
ниже калибровочной кривой, было примерно одинаковым. Для
определения концентрации спермиев любого эякулята нужно
лишь определить его оптическую плотность на приборе и посмотреть, какой концентрации спермиев соответствует калибровочная кривая.
Оценку спермы птиц по редукции метиленовой сини проводят по методике, применяемой для спермы барана и быка.
Сперма хорошего качества обесцвечивает раствор у петухов за
3-4 мин.
Определение резистентности спермиев. Резистентность
спермы (Р) - показатель устойчивости спермиев к 1%-ному раствору хлористого натрия.
Метод определения резистентности основан на растворяющем действии изотонического раствора натрия липопротеидного покрова спермиев. Чем более устойчивы спермин, тем
меньшее действие оказывает на них этот раствор, а значит, и
при большом разведении они сохраняют способность двигаться
прямолинейно-поступательно. Резистентность спермы выражается количеством раствора хлористого натрия (мл), необходимого для полного прекращения поступательного движения спермиев. Методика определения резистентности следующая. В три
79
флакона (пенициллиновые) отмеряют при помощи бюретки 1%ный раствор химически чистого хлористого натрия в дистиллированной воде: флакон № 1 – 10 мл, флакон № 2 – 0,5, флакон №
3 – 0,25 мл.
Микропипеткой набирают 0,02 мл спермы и, обтерев кончик пипетки фильтровальной бумагой, вносят сперму во флакон
№ 1. Этим же раствором смывают из канала пипетки оставшуюся сперму. Круговыми движениями перемешивают содержимое
флакона № 1 и просматривают каплю под микроскопом без покровного стекла. Если все спермин неподвижны, то резистентность испытываемой спермы менее 500. Если же поступательное движение спермиев продолжается, то градуированной пипеткой отмеряют 0,5 мл содержимого флакона № 1 и переносят
во флакон № 2.
Содержимое флакона № 2 перемешивают круговыми движениями, выдерживают в течение 3 мин. и исследуют каплю
под микроскопом. Если все спермин погибли, значит, резистентность равна 1000. Если обнаружено поступательное движение спермиев, то из флакона № 2 отмеряют 0,25 мл раствора
и переносят во флакон № 3, перемешивают и после 3-минутной
выдержки исследуют под микроскопом. Гибель спермиев указывает на резистентность, равную 2000. При наличии во флаконе № 3 поступательных движений спермиев добавляют из бюретки 1%-ный раствор хлористого натрия по 0,5 мл и после каждой прибавки содержимое флакона № 3 снова перемешивают и
каплю исследуют под микроскопом до прекращения прямолинейных поступательных движений спермиев.
Определение переживаемости спермиев вне организма.
Один из важнейших показателей качества полученной спермы –
активность спермиев. Определение переживаемости спермиев
вне организма может служить дополнительным весьма значительным критерием их оплодотворяющей способности. Чем
дольше спермин сохраняют живучесть в пробирке, тем выше
устойчивость их к внешним воздействиям. Выживаемость спермиев снижается в результате плохого кормления и содержания
самцов, при попадании в сперму воды, медикаментов, грязи, а
также при резком охлаждении.
80
Для определения переживаемости спермы птиц наиболее
удобны следующие температурные режимы хранения: 2-5°С и
48,5°С. В первом случае переживаемость определяется в наиболее благоприятных условиях хранения спермы – за счет снижения обменных процессов, при котором заторможены распад запасных веществ и накопление ядовитых продуктов обмена. При
температуре 2-5° сперма птиц переживает до 13 суток.
Во втором случае переживаемость определяется повышением температуры (48,5°С), когда ускоряется движение спермиев, возрастает расход энергии, происходит самоотравление ядовитыми продуктами обмена. Кроме того, температура 48,5°С
является промежуточной между 41,7°С и 55°С, из которых первая характерна для нормальной жизнедеятельности клеток, а
вторая – для начала необратимой денатурации клеточных белков с последующей их коагуляцией. Поэтому переживаемость
спермиев при этой температуре – своеобразная проба их последующей жизнеспособности. При температуре 48,5°С срок жизни
спермиев сокращается до 1-2 ч.
Определение переживаемости спермиев при температуре 2-5°С. В пенициллиновые флаконы отмеряют градуированной пипеткой по 0,2 мл цельной свежей спермы или разбавленной разбавителем. Флаконы со спермой закрывают пробками, выдерживают при комнатной температуре в течение 2-3
мин., а затем помещают в холодильник при температуре 2-5°.
Оценку активности спермиев проводят при температуре 40°С,
42°С через 0, 24, 48, 72 и т. д. часов хранения. Для этого на
предметное стекло наносят каплю спермы, рядом с ней вдвое
большую каплю 4%-ного раствора лимоннокислого натрия. Обе
капли накрывают покровным стеклом и ведут наблюдение за
подвижностью спермиев в течение 1-2 мин. Подвижность оценивают по 10-балльной шкале в месте слияния капли спермы с
раствором лимоннокислого натрия. Продолжительность переживаемости спермиев устанавливают в часах или сутках, то есть
определяют число часов от начала наблюдения до полной неподвижности всех спермиев за вычетом половины времени между предпоследним и последним наблюдением, поскольку неизвестно время прекращения поступательных движений спермиев. Абсолютный показатель переживаемости вычисляют сле81
дующим образом: сначала складывают баллы двух смежных
оценок и сумму делят пополам, получая средние оценки подвижности для каждого промежутка времени между просмотрами. Затем полученные средние оценки умножают на число часов
между просмотрами и произведения суммируют.
В связи с тем, что действительное время прекращения
движения спермиев неизвестно, среднюю оценку за данный
промежуток времени умножают на 12, а не на 24 ч.
Определение переживаемости спермиев при температуре 48,5°. В пенициллиновые флаконы отмеряют градуированной пипеткой по 0,2 мл свежей спермы или разбавленной разбавителем 1.1.
Флаконы со спермой плотно закрывают пробками и помещают в суховоздушный электрический термостат с автоматическим поддержанием температуры 48,5°. Оценку активности
спермиев производят под микроскопом по 10-балльной шкале
при температуре 42°С без подщелачивания цитратом натрия с
использованием столика Морозова. Первую оценку производят
через 30 мин., затем через каждые последующие 10 мин. до полной гибели спермиев. Переживаемость выражают в минутах от
начала наблюдения до момента полной гибели спермиев.
Определение
окислительно-восстановительных
свойств спермы. Свежеполученная сперма птиц имеет нейтральную (рН = 7) реакцию. Незначительное увеличение кислотности (рН < 6) замедляет движение спермиев, но не убивает
их. При рН > 8 (щелочная реакция) наблюдаются ускорение
движения спермиев и быстрая их гибель.
Концентрацию водородных ионов измеряют при помощи
универсальной индикаторной бумаги (рН от 1 до 10) или специального прибора ЛПУ-01.
Оценка спермы по редукции метиленовой сини. Существует тесная взаимосвязь между дыхательной активностью спермы и
ее оплодотворяющей способностью. Интенсивность дыхания
спермы определяют по времени обесцвечивания 0,01%-ного раствора метиленовой сини, которое наступает после израсходования кислорода, находящегося в сперме. Сперма хорошего качества значительно быстрее обесцвечивает раствор метиленовой сини
(петухов – за 3-4 мин, индюков – за 4-5, гусаков – за 7-9 мин). Не82
обходимый раствор метиленовой сини (0,01%-ный) готовят следующим образом. Приготовляют 200 мл 1%-ного раствора хлористого натрия. В него добавляют 0,5 г метиленовой сини. Полученный раствор сохраняют в течение трех дней при температуре
25-30°С в стеклянной колбе № 1 с притертой пробкой. Далее в
колбу № 2 наливают 90 мл 1%-ного раствора хлористого натрия и
из колбы № 1 добавляют 10 мл раствора метиленовой сини, после
чего тщательно взбалтывают. Затем в колбу № 3 наливают 40 мл
раствора из колбы № 2 и добавляют 60 мл раствора хлористого
натрия, взбалтывают. Таким образом, в колбе № 3 получают
0,01%-ный рабочий раствор метиленовой сини, который применяют для определения дыхания спермиев
Определение дыхания спермиев. На предметное стекло
наносят каплю свежей неразбавленной спермы и каплю 0,01%ного раствора метиленовой сини. Обе капли смешивают стеклянной трубочкой (внутренний диаметр 0,8-1 мм) и всасывают
смесь, чтобы в канале трубки получился столбик длиной около 2
см. При всасывании смеси необходимо следить за тем, чтобы в
пробу не попали пузырьки воздуха, так как это приводит к ошибочным выводам. Затем трубку со смесью кладут на белую бумагу горизонтально и держат при температуре 18-22°С, отмечая
время, в течение которого сперма обесцветит раствор.
Оценка спермиев по активности дегидрогеназ. Особенности обменных процессов и подвижности спермиев обусловлены
активностью ряда ферментов. Главное место в метаболизме
спермы занимают окислительно-восстановительные ферменты –
дегидрогеназы. Активность дегидрогеназ спермы положительно
коррелирует с концентрацией спермиев и их подвижностью,
способностью сохраняться при низких температурах, то есть
может служить качественной характеристикой спермы – ее оплодотворяющей способности.
Методика определения активности дегидрогеназ по
Семакову (в модификации М.С. Ворониной для спермы петухов). Для определения дегидрогеназной активности спермы
птицы готовят 0,2%-ный 2-, 3-, 5-трифенилтетразолий хлорида
на буферном растворе с рН = 7,4. Фосфатный буфер приготовляют следующим образом: готовят первичный фосфат калия
(9,078 г реактива до 1 л воды) и вторичный фосфат натрия
83
(11,876 г реактива до 1 л воды). Реактивы предварительно
должны быть высушены в эксикаторе над хлоридом кальция.
Для получения буфера с рН = 7,4 берут 1,92 мл первичного
фосфата калия и 8,08 мл вторичного фосфата натрия. Буфер всегда готовят в день его использования.
Для исследования берут 0,1 мл неразбавленной спермы,
наливают ее в центрифужную пробирку, добавляют 0,25 мл
0,2%-ного раствора 2, 3, 5-трифенилтетразолия хлорида на буферном растворе с рН = 7,4 (раствор тетразолия и пробирки
предварительно должны быть подогреты в термостате при температуре 38-40°С). Затем содержимое пробирки тщательно перемешивают, плотно закрывают пробкой и ставят в водяную
баню при температуре 38-40°С. Этот препарат в присутствии
подвижных спермиев при температуре 38-40°С восстанавливается в красный формазан, что придает и пробе красную окраску.
В качестве контроля используют 0,25 мл 0,2%-ного раствора
тетразолия в пробирке, которую ставят в водяную баню. Время
от начала установки пробы в водяную баню или ультратермостат до появления розовой окраски и является показателем активности дегидрогеназ: чем дольше не появляется окраска, тем
ниже активность, и наоборот.
Активность дегидрогеназ в большой степени зависит от
концентрации спермиев в сперме. Для сравнения активности
дегидрогеназ спермы разных эякулятов вводят поправку на концентрацию спермиев, то есть время, прошедшее до появления
окраски и выраженное в минутах, умножают на коэффициент,
во сколько раз концентрация спермиев в пробе спермы превышает стандарт (принятый стандарт – 1 млрд спермиев в 1 мл
спермы). Например, если проба спермы с содержанием в 1 мл
2,5 млрд спермиев окрасилась за 10 мин., то истинная активность дегидрогеназ составляет 25 мин. (10x2,5 = 25).
Высокой подвижностью, переживаемостью и оплодотворяющей способностью характеризуется сперма петухов с высокой и средней активностью дегидрогеназ (в пределах 18-30
мин.).
Подсчет живых и мертвых спермиев. Оценка спермы по
числу живых и мертвых спермиев основана на том, что живые
спермии, двигающиеся поступательно, не окрашиваются краси84
телями, в то время как мертвые или ослабленные окрашиваются.
У млекопитающих мертвых спермиев легко отличить от живых
по окрашиваемости нигрозин-эозином.
Предложено несколько приемов окрашивания спермы
птиц. Наиболее точным является метод, разработанный в США
Вильсоном и др. Для окрашивания по этому методу применяют
1,8%-ный раствор краски трипана голубого на фосфатном буфере (к 10 мл раствора трипана голубого добавляют 20 мл фосфатного буфера непосредственно перед использованием с рН = 7,2).
Каплю свежеполученной спермы и 0,5 мл раствора смешивают в
небольшой стеклянной трубочке, помещают на стекло каплю
смеси и делают мазок. Через 10 мин. проводят подсчеты по 100
спермиев на каждом конце препарата. Головки мертвых спермиев частично или полностью окрашиваются в голубой цвет.
Между числом мертвых спермиев и оплодотворяющей
способностью спермы установлена отрицательная корреляция,
чем ниже процент мертвых спермиев, тем выше оплодотворяющая способность спермы.
Патологические формы спермиев. У сельскохозяйственной птицы, как и у млекопитающих, описано множество
аномальных форм спермиев, но их значение для оплодотворяющей способности спермы мало изучено. Патологические формы
спермиев и их число варьируют в зависимости от условий кормления, содержания, состояния линьки и ряда других причин.
У птиц различают следующие патологические формы
спермиев: 1) акросома крючкообразная, набухшая или отсутствующая; 2) головка (тело головки) вакуолизированная, раздвоенная или увеличенная; 3) шейка нитевидная, изогнутая или
вздутая, различной формы; 4) хвост свернут или отсутствует.
У петухов спермин со свернутой головкой появляются
уже в семенных протоках или даже во время сперматогенеза,
поэтому наличие незначительного их числа возможно даже в
нормальной сперме.
Шейка спермиев – самая чувствительная часть, подвергающаяся воздействию различных факторов. Капля протоплазмы,
иногда соединенная с шейкой, указывает на незрелость спермиев.
Наиболее низка оплодотворяющая способность спермы наблюдается при наличии в эякуляте спермиев с изогнутыми шейками.
85
Получение спермы
Предварительно петухов тренируют для выработки у них
условного рефлекса выделения спермы на массаж. Желательно
это делать через день в одни и те же часы (лучше в 9-10 ч утра).
Обычно бывает достаточно 3-5 тренировок. Для массажа один
из техников берет левой рукой петуха за обе голени и держит
его так, чтобы он находился под левой рукой головой назад.
Правой рукой техник делает легкий, но интенсивный двусторонний массаж по направлению от киля вдоль лонных костей к
хвостовой части. Другой человек большим и указательным
пальцами слегка нажимает с обеих сторон на клоаку, что приводит к эрекции копулятивного органа и эякуляции.
Сперму у петухов может получить и один человек. Для
этого подстригают возле клоаки все перья, а также перья, спускающиеся возле хвоста вниз. Человек, надев фартук, садится на
стул и держит петуха головой налево, зажав обе его ноги коленями. В правой руке между указательным, средним и безымянным пальцами техник держит спермоприемник, а большим
пальцем и мизинцем движением от киля к хвосту массирует
нижнюю часть живота. Одновременно левой рукой поглаживает
поясничную область спины по направлению от груди к хвосту.
Через несколько секунд петух начинает реагировать на массаж,
поднимая хвост. В это время техник большим и указательным
пальцами левой руки делает легкий массаж задней части живота
петуха и при эрекции копулятивного органа сжимает клоаку
пальцами левой руки, собирая сперму в спермоприемник. Удобно получать сперму в градуированный двухстенный спермоприемник. Сперму у петухов берут через день по 1-2 эякулята. Второй эякулят надо получать лишь в том случае, если первого недостаточно для осеменения кур, закрепленных за этим петухом.
Необходимо иметь в виду, что сперма второго эякулята в большинстве случаев бывает более редкой. Получаемая от петухов
сперма должна быть чистой, без примеси помета, крови, мусора
и пыли.
Сперма сельскохозяйственных птиц менее чувствительна
к холоду, чем сперма млекопитающих. Однако резкое охлаждение тоже ухудшает ее оплодотворяющую способность. Тем86
пература в помещении должна быть не ниже 15…18°С, а температура спермоприемника – в пределах 35…42°С.
Сперму от петухов можно получать, используя электроэякулятор. Электроэякулятор подключают к электросети, напряжение при выходе из прибора около 49 В, а силу тока (в
миллиамперах) устанавливают в зависимости от ситуации.
Предварительно петуха фиксируют в специальном станке, установленном на небольшом столе; один проводник от прибора,
оканчивающийся иглой, вводят в эпидермис кожи в области
подвздошной кости. Другой проводник, оканчивающийся хорошо отполированным наконечником, вводят в клоаку и массируют ее круговыми движениями этого наконечника. Затем ключом, находящимся на панели электроэякулятора, замыкают цепь
на 2-3 сек. Выделившуюся сперму наносят на предметное стекло
и оценивают под микроскопом.
Этот метод дает хорошие результаты. Обычно удается
отобрать около 25% петухов с высокими показателями качества
спермы. При спаривании кур с такими петухами оплодотворенность яиц кур кросса 288 равнялась 98-99,5%.
Для получения спермы используют градуированный двухстенный спермоприемник. Между его стенками наливают воду,
нагретую до 25…30°С. Теплая вода препятствует резкому снижению температуры спермоприемника и спермы, а имеющиеся
деления на стенках внутренней емкости позволяют сразу же определить объем полученного эякулята. Спермоприемник после
получения спермы закрывают пробкой или ватой. Сперму у петухов получают через день по 1-2 эякулята. Необходимо иметь в
виду, что сперма второго эякулята в большинстве случаев более
редкая. Для осеменения используют только чистую сперму, без
примесей крови и помета, с активностью не менее 7 баллов.
Методы осеменения кур-несушек
При осеменении кур селекционного стада, когда необходимо знать происхождение потомков по отцу и по матери, сперму получают от каждого петуха в отдельный спермоприемник.
Искусственное осеменение кур яичных пород можно начинать с 7,5-8-месячного возраста; заканчивают его, когда у
87
большинства птиц наступает линька и значительно снижается
оплодотворенность яиц.
Способ Ватанабе. Оттаивание спермы, находившейся в
сосуде Дьюара, проводят в мензурке, содержащей воду с температурой 5°С, в течение 5 мин., затем переносят в другую посуду
с температурой воды 20°С и держат при этой температуре до
момента осеменения кур.
Осеменяют кур в область матки на глубину 11 см шприцем, соединенным со стеклянной трубочкой. Подвижность оттаянной спермы при использовании этого способа замораживания
с желточным разбавителем равнялась 73,9%, а с бесжелточным
– 85,6%. Оплодотворенность яиц в первую неделю кладки яиц
была соответственно 52,9 и 74,0%, во вторую неделю – 32,8 и
55,9% (Курбатов А.Д. и др., 1987).
Способ Лейка. Для оттаивании ампулы со спермой вынимают из азота и держат в спиртовой ванне с температурой 25°С до исчезновения льда. Затем пастеровской пипеткой сперму
как можно быстрее переносят из ампул в центрифужные пробирки с круглым донышком, погруженные в водяную баню с
температурой 5°С. А далее, постепенно, каждый раз осторожно
помешивая (методом засасывания в пипетку), через каждые 3-5
мин. добавляют холодный неглицеринизированный разбавитель
в следующих количествах, мл: 0,08; 0,22; 0,4; 0,73; 1,5; 1,9. В
состав этого разбавителя входят 1,92 г моногидрата глутамата
натрия, 0,6 г фруктозы, 0,08 г ацетата магния тетрагидрата,
0,128 г моногидрата цитрата калия, 0,51 г безводного ацетата
натрия, до 100 мл дистиллированной воды.
Пробы центрифугируют 15 мин. при 5°С и 700 об/мин.,
затем пастеровской пипеткой удаляют надосадочный слой, к
осадку добавляют 0,1 мл холодного неглицеринизированного
разбавителя и ресуспензируют спермин путем постукивания по
пробирке пальцем.
Восстановленные пробы спермы переносят в птичник в
ванне с холодной водой (5°С). Содержимое ампулы вводят курице при помощи глубокой внутривагинальной техники вблизи желез приемников спермы. Для осеменения используют образцы
спермы, имеющие высокий процент спермиев с прямолинейным
поступательным движением. Осеменение проводят раз в 3 дня.
88
Однако способы Лейка и Ватанабе не лишены существенных недостатков. При использовании данных способов необходимы холодная комната, запайка ампул и удаление криопротектора из оттаянной спермы, что требует больших затрат времени.
Лейк и Стеварт, а также Ватанабе и Терада предлагают осеменение кур проводить внутриматочно, что, во-первых, требует высокой квалификации осеменаторов и, во-вторых, приводит к
инфицированию половых путей самок, так как вводимая в матку
сперма минует бактериальный барьер, имеющийся в области
влагалищно-маточного сфинктера.
Сейчас в условиях производства искусственное осеменение кур проводят индивидуальными стеклянными или полистироловыми пипетками (длина 100-150 мм, внутренний диаметр
1,5-1,8 мм, наружный диаметр – 60-70 мм). После стерилизации
стеклянные пипетки можно использовать повторно. Применяют
также полиэтиленовый или капроновый шприц с бегунком. Катетер такого шприца необходимо менять после осеменения каждой курицы. Для осеменения кур можно использовать шприц –
полуавтомат для осеменения овец, укоротив катетер до 10 см и
оплавив его конец для предотвращения травмирования слизистой оболочки яйцевода (рис. 6).
Кур, подлежащих искусственному осеменению, можно содержать в индивидуальных и групповых клетках. При содержании в групповых клетках для избежания пропуска или повторного осеменения спину двух кур красят краской одного
цвета, двух других – краской другого цвета, пятую курицу не
красят. Помощник техника-осеменатора ловит курицу и фиксирует левой рукой за хвост. Не вынимая птицу из клетки, он правой рукой надавливает ей на левую сторону живота между лонными костями и задним концом грудной кости до выведения
яйцевода наружу. Техник-осеменатор вводит в яйиевод пипетку
со спермой на глубину 4-5 см. В это время руку, надавливающую на живот курицы, следует убрать, иначе при напряжении
брюшных мышц сперма может вытекать (рис. 5).
При напольном содержании кур помощник техника-осеменатора берет курицу левой рукой за ноги, помещает ее рот
мышкой левой руки, а правой рукой надавливает слегка на живот между лонными костями и грудной клеткой, где расположен
89
яйцевод, и клоака курицы раскрывается. Техник двумя пальцами левой руки слегка растягивает клоаку до выведения яйцевода, а правой рукой вводит в него пипетку со спермой на глубину
4-5 см.
Осеменяют кур свежеполученной спермой один раз в 5
дней (через 4 дня на 5-й). Концентрация спермиев в однократной дозе 0,025-0,03 мл должна быть не менее 100-150 млн. с активностью не ниже 7 баллов. Яйца для инкубации собирают на 3-й
день после первого осеменения.
Осеменять надо во второй половине дня (после 14 ч), когда у основной массы несушек закончилась яйцекладка. Для скорейшего
насыщения половых путей самки
спермиями следует первые два
осеменения проводить с интервалами в 1-2 дня или вводить сразу
двойную дозу спермы – 0,05 мл.
Для промышленных целей кур
можно осеменять смешанной
Рис. 17. Искусственное
спермой от нескольких петухов.
осеменение кур
В зависимости от объема
работы и кратности (частоты) осеменения кур применяют два
календарных графика.
График 1. Сперму от петухов получают 5 раз в неделю.
Маточное стадо кур делят на 4 группы: кур трех групп осеменяют на 4-6-й день дозой спермы 0,03 мл, четвертой группы –
на 7-й день дозой спермы 0,05 мл. Суббота и воскресенье остаются свободными.
График 2. Сперму от петухов получают 5 раз в неделю.
Маточное стадо кур делят на 5 групп и осеменяют дозой спермы
0,05 мл на 7-й день. Суббота и воскресенье остаются свободными. Этот график предусматривает наиболее интенсивную организацию труда по искусственному осеменению кур при максимальном режиме использования петухов-производителей с высокой живучестью спермиев.
90
Подводя итог вышесказанному, можно отметить, что осеменять кур лучше во вторую половину дня, когда большинство
из них закончило яйцекладку. Кур осеменять свежей неразбавленной спермой в течение первых 10-20 мин после ее получения, глубина введения катетера в яйцевод 2-3 см. Доза однократного осеменения неразбавленной спермой 0,025 мл. При
концентрации спермиев 3-3,5 млрд/мл в такой дозе их будет
около 80 млн. Для того чтобы обеспечить насыщение половых
путей кур необходимым числом спермиев, при первом осеменении вводить удвоенную дозу спермы. Сбор яиц на инкубацию
можно начать через 48 ч после такого осеменения. Если первая
доза равна 0,025 мл, то через день осеменение повторяют и сбор
яиц на инкубацию начинают на следующий день после второго
осеменения. В дальнейшем кур осеменяют каждые пять дней.
Если не ставится задача получения потомков известного происхождения, в один спермоприемник можно
брать сперму от 4-5
петухов и осеменять
Рис. 18. Аппарат
кур
смешанной
для искусственного осеменения
спермой,
так
как при
птиц, состоящий из стеклянного шприца,
этом
увеличиваются
катетера и рукоятки
оплодотворенность
яиц и выводимость. При хорошем качестве спермы осеменять
кур можно один раз в 6-7 дней увеличенной в 1,5-2 раза дозой
спермы.
В племенном птицеводческом заводе «Свердловский» для
искусственного осеменения применяют индивидуальные полистироловые, полиэтиленовые или стеклянные пипетки с
оплавленным концом. Длина их составляет 12-15 см,
внутренний диаметр – 1,0-1,8 мм. На пипетке должна быть
нанесена доза разбавленной спермы. Работу по искусственному
осеменению проводят три человека (двое вынимают кур и
подготавливают их к осеменению, один осеменяет).
91
Кур, содержащихся в индивидуальных клетках, осеменяют, не вынимая из клеток. При этом оператор фиксирует курицу
левой рукой в клетке, а правой надавливает на левую сторону
живота между лонными костями и задним концом грудной кости до выведения яйцевода наружу. Техник-осеменатор вводит в
яйцевод пипетку или катетер шприца на глубину 2-3 см и выдавливает порцию спермы с помощью наконечника пипетки или
поршня шприца. В это время руку, надавливающую на живот
курицы, следует убрать, иначе при напряжении брюшных мышц
сперма может вытечь.
При групповом содержании птицы каждую курицу вынимают из клетки, осеменяют и затем отсаживают в другую клетку. Для этого в батарее всегда оставляют одну свободную клетку. Оператор вынимает курицу из клетки правой рукой за ноги,
берет ее головой под мышку и легким надавливанием левой рукой на нижнюю часть живота слева выводит яйцевод, а техник
вводит в него пипеткой или катетером шприца сперму. После
каждого осеменения катетер протирают ватным тампоном, смоченным 70%-ным этиловым спиртом (расход спирта на одно
осеменение – 0,2 мл). Доза введения неразбавленной спермы
составляет 0,03 см3, разбавленной – 0,1 см3.
Интенсивное откладывание яиц курами (70-80%) наблюдается в первой половине светового дня. Наиболее благоприятное время для осеменения кур – через 2-3 ч после снесения яйца.
В этот период в яйцеводе курицы создаются соответствующие
условия для приема и размещения спермиев в криптах утеровагинальной части яйцевода. Осеменение кур непосредственно
перед снесением яйца снижает оплодотворенность яиц, так как
сперма выталкивается яйцом. Поэтому организация искусственного осеменения строится таким образом, чтобы осеменение
приходилось на вторую половину дня. В начале племенного сезона первое осеменение кур проводят двойной дозой спермы
(0,06 см3 – неразбавленной спермы или 0,2 см3 – разбавленной)
или осеменяют кур два дня подряд.
Сбор яиц на инкубацию начинают через день после второго осеменения. В начале продуктивного периода осеменение
необходимо проводить 1 раз в 7 дней, а в конце продуктивного
92
периода, когда оплодотворенность яиц начинает снижаться, – 1
раз в 5 дней.
После каждого дня работы посуду и инвентарь тщательно
моют раствором соды, шприцы, катетеры ополаскивают 70%ным спиртом, сушат и облучают ультрафиолетовыми лучами в
течение 15 мин. Стеклянную посуду и шприцы кипятят в стерилизаторах.
Организация искусственного осеменения кур
в крупных фермерских птицеводческих хозяйствах
При содержании взрослой птицы в клетках применяют искусственное осеменение, что позволяет в 2,0-2,5 раза сократить
количество самцов в стаде со значительным повышением вывода здоровых цыплят.
Пункт искусственного осеменения оборудуют либо в отдельном помещении или в одном из птичников, где содержатся
петухи. При этом должен быть сохранен санитарный разрыв от
ветеринарного блока и аптеки. В пункте нельзя хранить ветеринарные препараты и реактивы, кроме тех, которые необходимы
в работе в данный момент.
Пункт воспроизводства птиц должен состоять из трех
комнат: лаборатории площадью 10-14 м²; моечной (6 м²) и бытовой (16 м²). Температура в помещении должна поддерживаться в районе 22°С. Пункт должен быть сухим, светлым и с хорошей вентиляцией.
В лаборатории полы покрывают мраморной крошкой или
линолимумом, стены на высоту – 1,8 м облицовочной плиткой
или масляной краской. В данном помещении размещают бытовой холодильник, сушильный и стеклянный шкаф, термостат,
столы, микроскоп и УФЛ.
В моечной обязательно наличие хорошей канализации и
водопровода. В ней размещают дистиллятор и оборудование для
мойки и обработки посуды. В бытовом отсеке устанавливают
шкафы для спецодежды и инвентаря, а также столы и стулья.
При проведении искусственного осеменения кур в крупных птицеводческих хозяйствах птиц размещают в клеточных
батареях (КБН-1, КБН-3 и др.). В промышленных хозяйствах в
93
каждую клетку такой батареи помещают по 5 кур. В конце батареи оставляют свободной одну клетку, куда пересаживают осемененных кур из клетки, находящейся рядом, а в освободившуюся клетку перемещают кур из следующей клетки и т. д.
Можно производить осеменение без пересадки кур. Тогда их
метят различными красками, чтобы не пропустить при осеменении.
В племенных станциях кур размещают в индивидуальных
батареях. При отсутствии последних птиц можно размещать
в многоярусных батареях. В них клетки второго, третьего и четвертого ярусов перегораживают на 3 части, размещая в каждой
по одной курице. Нижний ярус в таких батареях оставляют для
кур, от которых получают пищевые яйца, так как проводить
осеменение таких кур трудно. При осеменении кур четвертого
яруса применяют специальные тележки.
Петухов лучше размещать в отдельном помещении, при
котором желательно организовать лабораторию искусственного
осеменения, самцов содержать в двух- или трех- ярусных металлических батареях конструкции ВНИИПП. При их отсутствии
петухов можно держать в батареях КБН-1, превратив их из четырех- в двух- ярусные. Птичник с петухами лучше располагать
в одном из центральных птичников, чтобы сократить расстояние, а следовательно, и время переноски спермы до птичников.
При этом есть небольшой запас времени, так как разбавление
спермы имеющимися средами позволяет хранить разбавленную
сперму 1-2 ч без снижения ее качества.
При маленькой нагрузке на оператора по уходу за петухами, ему можно вменить в обязанность помощь осеменаторам в
работе по получению и доставке спермы к месту осеменения
кур.
В племенных предприятиях необходимо добиться получения максимального числа потомков от высокопродуктивных
родителей, конечно, для этой цели нужно использовать кур и
петухов длительное время. Достичь этого возможно только путем организации полноценного питания птиц, хорошего их содержания и умелого использования. Всякое нарушение в кормлении, поении или освещении может вызвать частичную линьку
петухов или кур, которая и является главной причиной сниже94
ния оплодотворенности яиц. Существенную роль в сохранении
качеств спермы, а следовательно, и оплодотворенности яиц играет правильное использование петухов, направленное на сохранение их воспроизводительной способности. От петухов
первого года лучше получать сперму через день, а от петухов
второго года – через 1-2 дня.
Организация и оплата труда осеменаторов – один из факторов, способствующих повышению эффективности их труда.
Четкое распределение обязанностей между членами бригады
осеменаторов позволяет работать им более производительно.
Работа проводится постоянными бригадами под руководством
одного из зооветработников.
Бригада состоит из звена, занимающегося получением
спермы, и звена, занимающегося искусственным осеменением.
Первое звено состоит из 2-3 человек. Если сперму получает
один человек, то ему нужен подсобный рабочий для подачи петухов.
Число звеньев и организация труда в бригадах зависят от
объема работы, типа клеток, в которых содержатся куры маточного стада. За одним членом бригады можно закреплять около
1400-3000 кур. Наиболее удобна сдельно-прогрессивная оплата
труда, при которой основными показателями являются число
осеменяемых кур и процент оплодотворенных яиц. Контролирует оплодотворенность яиц зоотехнический персонал с учетом
данных цеха инкубации. При продаже яиц от искусственно осеменяемых кур в другие хозяйства зоотехник-селекционер или
главный зоотехник периодически берут со склада 300 яиц и делают контрольную закладку. Такие закладки производятся не
реже 2 раз в месяц. Яйца от кур разных бригад закладывают на
инкубацию раздельно.
В племенном птицеводческом хозяйстве «Свердловский» для
искусственного осеменения организуют бригады, включающие
несколько звеньев. Численность бригады зависит от поголовья
осеменяемых кур. Каждое звено из трех человек за рабочий день
может провести работу по искусственному осеменению 2000
голов кур прародительского и родительского стад (осеменение
смешанными эякулятами). В бригаде назначается один техникосеменатор, который готовит разбавитель, разбавляет и оцени95
вает сперму. Два человека (помощники осеменатора) специализируются на получении спермы от петухов.
Количество звеньев и распорядок проведения работы в бригаде
зависят от ее объема. Составляются календарные графики работы с учетом того, что осеменение нужно производить через каждые 5 дней.
Для улучшения качества воспроизводства кур необходимо
стимулировать труд техников-осеменаторов. Их заработная плата должна быть на уровне основных рабочих птицефабрики с
учетом эффективности осеменения птиц.
МЕРОПРИЯТИЯ
ПО УЛУЧШЕНИЮ ВОСПРОИЗВОДСТВА КУР
Технология кормления
Предрасполагающими факторами снижения воспроизводства кур являются болезни репродуктивных органов, а так же
нарушения технологии кормления и содержания. Технологические нарушения могут привести к нарушению обмена веществ и
функции органов размножения. Уровень обмена веществ у современных кроссов в несколько раз превышает этот показатель
у ранее известных пород кур. Так, кросс «Хайсекс белый» в возрасте 160-170 дней имеет продуктивность 90-95% с яйценоскостью 290-320 яиц за 12 месяцев.
Научное обоснование кормления птицы с учетом их генетических особенностей вида, продуктивности и условий содержания имеет большое значение в системе птицеводства. Первые
нормы были предложены М.И. Дьяковым. При этом потребность в питательных веществах и энергетическую ценность
кормов выражали в крахмальных эквивалентах и переваримом
протеине.
В 1938 г. в Научно-исследовательском институте птицеводства А.А. Сергеев с сотрудниками разработали новые нормы.
Общую питательность кормов и рационов выражали в кормовых
единицах. Кроме того, нормировали содержание переваримого
протеина, кальция, фосфора, натрия и витаминов А, Д и В2. Эти
96
нормы кормления имели большое значение при кормлении птицы и способствовали повышению ее продуктивности.
Сотрудниками Всесоюзного научно-исследовательского и
технологического института птицеводства под руководством
И.Т. Маслиева были предложены нормы кормления птиц, рассчитанные по комплексу питательных веществ и обменной
энергии. Развитию интенсивного птицеводства способствовал
рост производства полноценных комбикормов.
В результате координированной деятельности, обобщения
данных многих опытных работ по биохимии, физиологии и
кормлению птицы в ВАСХНИЛ подготовлены научно обоснованные рекомендации по нормированному кормлению птицы.
Новая система кормления нашла широкое применение на практике и в комбикормовой промышленности.
Нормирование по обменной энергии и комплексу питательных веществ соответствует физиологическим потребностям
высокопродуктивной птицы и сохранению ее здоровья. Потребность в обменной энергии и содержание ее в кормах выражают в
килоджоулях на 100 г сухого корма. Нормирование белкового
кормления ведется по сырому протеину. Потребность в сыром
протеине и содержание его в кормах определяют в процентах на
100 г сухого корма.
Большое значение для повышения эффективности кормления имеет энергопротеиновое отношение. Этот показатель
определяет количество энергии, приходящееся на 1% протеина.
Вычисляют его делением количества килоджоулей, содержащихся в 1 кг корма, на количество протеина в процентах.
По сравнении с другими видами сельскохозяйственных
животных куры-несушки наиболее интенсивно продуцируют
пищевой белок. В курином яйце 58% приходится на белок, 32%
– на желток, 10% – на скорлупу. В свою очередь, сырой яичный
белок содержит 87% воды, 12% белка и около 1% жира, углеводов и других веществ, а желток – 68% воды, 13% белка и примерно 9,5% жира и минеральных компонентов. Энергетическая
ценность 100 г яичной массы, включая скорлупу, составляет
около 640 кДж.
Энергия корма необходима несушке на поддержание жизни, образование яиц и роста. Возможность потребления корма
97
курами примерно одинаковая и составляет в среднем 125-130 г
на голову. Для повышения обменной энергии высокопродуктивной птице в рацион вводят кормовые жиры. Дополнительное
регулирование энергетического обмена у клеточных несушек
проводят путем балансирования рациона с учетом системы содержания и яйценоскостью.
Таблица 2
Особенности фазового кормления кур
продуктивного периода
Физиологические
Показатели
Возраст, недель
Яйценоскость, %
Содержание сырого
протеина в рационе, %
1-я фаза
2-я фаза
3-я фаза
20-42
43-60
61-73
80-85
70-75
65
17
15
13
В первую очередь несушки должны быть обеспечены протеином, который необходим для поддержания жизнедеятельности и формирования белка яиц. Для нормальной яйценоскости
(Менькин В.К., 1997) на 1 кг живой массы птице требуется около 3 г протеина, следовательно, для формирования в организме
100 г яичной массы птица должна получать около 28 г сырого
белка. Потребность несушек в протеине изменяется с возрастом
и уровнем яйценоскости. Эта закономерность положена в основу программ фазового кормления кур на протяжении их продуктивной жизни (табл. 2).
Оценку ведут по незаменимым аминокислотам, в основном по метионину, триптофану и лизину, содержание которых
во многих кормах ограничено, а потребность птицы в них довольно велика. Содержание этих биологически активных веществ в рационах выражают в миллиграммах на 100 г сухого
корма. Потребность несушек в незаменимых аминокислотах при
наличии в 100 г корма 1130 кДж обменной энергии составляет:
аргинина – 0,90; лизина – 0,75; метионина – 0,32; метионина и
цистина – 0,60; триптофана – 0,17. При недостатке в рационе
птицы серосодержащих аминокислот наблюдаются расклев и
98
каннибализм. Балансируют аминокислотный состав путем введения кормов животного происхождения. Часть данных кормов
в рационе можно заменить растительными с добавками препаратов аминокислот. Например, рыбную муку можно заменить
соевым шротом с добавкой кормового метионина (табл. 3, 4).
Таблица 3
Примерные нормы обменной энергии, сырого протеина,
клетчатки, минеральных веществ и аминокислот
для кур-несушек на 100 г сухого корма
Показатели
Обменная энергия, ккал
Сырой протеин, г
Сырая клетчатка, г
Кальций, г
Фосфор, г
Натрий, г
Лизин, г
Метионин, г
Цистеин, г
Триптофан, г
Аргинин, г
Гистидин, г
Лейцин, г
Изолейцин, г
Фенилаланин, г
Треонин, г
Валин, г
Энергопротеиновое соотношение
Куры-несушки (суточное потребление корма 115 г) при продуктивности, %
50
60
70
80
306
295
277
267
17,5
17
16
15,5
5-7
5-7
5-7
5-7
3,3
2,9
2,5
2,1
1,1
1
0,9
0,8
0,5
0,5
0,4
0,4
0,58
0,57
0,53
0,52
0,33
0,32
0,3
0,29
0,29
0,28
0,26
0,26
0,17
0,17
0,16
0,15
0,93
0,91
0,85
0,83
0,37
0,36
0,34
0,33
1,4
1,36
1,28
1,24
0,58
0,13
0,53
0,52
0,41
0,4
0,57
0,36
0,96
0,45
0,42
0,41
0,64
0,62
0,58
0,57
175
174
173
172
Установлена многообразная роль витаминов в жизнедеятельности птицы (Сметнев С.И., 1978): они участвуют в разносторонних обменных реакциях и оказывают влияние на физиологические процессы.
99
Таблица 4
Размер добавок на 1 г корма курам-несушкам
(по Г.А. Кононову, 1978)
Питательные вещества
Витамин А, млн МЕ
Витамин Д3, млн МЕ
Витамин Е, мг
Рибофлавин, г
Пантотеновая кислота, г
Холин-хлорид
Витамин В12, мг
Фолиевая кислота, г
Никотиновая кислота, г
Витамин К, г
Железо, г
Марганец, г
Кобальт, г
Цинк, г
Медь, г
Йод, г
Куры несушки
15
1
4
4
10
1000
12
0,5
30
2
20
50
0,5
50
4
5
Наиболее важное значение в естественной резистентности животного организма принадлежит витамину А. Он образуется в печени и ретикулоэндотелиальной системе из каротина
(провитамина А), который поступает в организм животных с
различными растительными кормами.
Витамин А обладает способностью увеличивать стойкость
организма в особенности к тем инфекциям, при которых не образуется специфического иммунитета. Сущность неспецифического иммунитета заключается в нормализации хода окислительно-восстановительных процессов, в которых витамину А
принадлежит существенная роль.
Витаминный комплекс В и его отдельные компоненты
оказывают более существенное влияние на устойчивость организма к гноеродным инфекциям. Птицы, получавшие витамины
комплекса В в пределах 15-55% потребности, обнаруживают
100
выраженное снижение устойчивости к инфекции золотистым
стафилококком. Общеизвестно также хорошее лечебное действие богатых В-комплексом препаратов из дрожжей при стафилококковых поражениях кожи.
Витамин Д (антирахитический) образуется из провитамина под воздействием ультрафиолетовых лучей и принимает активное участие в минеральном обмене. Он регулирует усвоение
организмом солей кальция и фосфора, оказывая влияние на
формирование скелета животного. Кроме того, витамин влияет
на обмен магния и железа.
Витамин Д стимулирует также функции щитовидной и
паращитовидной желез и, таким образом, играет весьма важную
роль в обмене кальция в поддержании кислотно-щелочного равновесия в организме.
При нарушении фосфорно-кальциевого обмена развиваются клинические признаки рахита и остеомаляции, что резко
снижает устойчивость организма к инфекции. Это подтверждается низкими показателями фагоцитоза и слабой иммунобиологической реактивностью.
Исходя из вышесказанного, расширился круг нормированных витаминов, используемых в птицеводстве. Кроме А, Д,
В2 оказались важными витамины Е и К из витаминов группы В:
тиамин, ниацин, пиридоксин, пантотеновая и фолиевая кислота,
холин, биотин и витамин В12. Следует помнить, что птица
должна получать такое количество витаминов, которое не только предотвращает авитаминозы, но и обеспечивают высокую
продуктивность. Увеличение содержания витаминов в рационе
способствует обогащению ими яиц и повышает их пищевую
ценность и инкубационные качества и ценность. Нормируют
витамины в мг или интернациональных единицах на 100 г сухого корма.
Племенные куры нуждаются в обеспечении комбикормами, содержание витамина А в которых не ниже 10 тыс. МЕ на 1
кг корма. Также в кормах необходим витамин Д, оказывающий
влияние на продуктивность несушки, минеральный обмен в организме, крепость яичной скорлупы и выводимость цыплят. Например, при содержании в 1 кг корма витамина Д в количестве
1160 МЕ выводимость цыплят составила 91%, а при 190 МЕ она
101
снизилась до 44% (Менькин В.К., 1997). Препараты витамина Д,
полученные путем ультрафиолетового облучения зоостеринов,
биологически в 30 раз более активны в организме птицы, чем
препараты витамина Д, произведенные облучением фитостеринов.
Отмечается существенная потребность промышленных
несушек в витамине К, который необходим как фактор, улучшающий инкубационные качества яйца. Введение в рацион травяной муки (3-5%) полностью удовлетворяет потребность кур в
данном витамине. Витамин С синтезируется в организме птицы
в достаточном количестве, тем не менее добавка его в комбикорм в отдельных опытах оказывала положительное действие на
яйценоскость.
Достигнут существенный прогресс в изучении минерального питания птицы и уточнения норм микро- и макроэлементов. Минеральные вещества имеют большое и разнообразное
значение в жизнедеятельности птицы и составляют 3-4% живой
массы птицы и 10% массы яйца со скорлупой. Недостаток одного или нескольких минеральных веществ снижает продуктивность и плодовитость птицы, а иногда приводит к заболеваниям
и даже гибели. В качестве минеральных добавок для полноценных кормовых смесей используют костную муку, измельченную
ракушку, мел, поваренную соль. При этом необходимо помнить,
что избыток соли в рационе может быть причиной отравления.
С каждым яйцом из организма несушки выводится примерно 2 г кальция. При остром дефиците кальция куры снижают
яйценоскость или несут яйца с ослабленной скорлупой, что
обесценивает продукцию и наносит значительный экономический ущерб хозяйству.
Одним из основных факторов, лимитирующих интенсивность обмена у самок птиц, особенно во время репродуктивного
периода, является кальций.
Известно, что среднесуточное удержание кальция организмом высокопродуктивных кур-несушек достигает более 60%
их рациона. При уровне кальция в рационе 2,5-3,0% и потреблении корма в количестве 110-120 г в сутки, что, казалось бы,
удовлетворяет потребности для образования яйца, в действительности у кур с интенсивностью яйценоскости 70-75% очень
102
часто наблюдается отрицательный баланс этого элемента, сопровождающийся потерей его из скелета. Такая ситуация связана, возможно, с колебаниями с потреблением птицей корма, неблагоприятными условиями среды и, наконец, снижением уровня абсорбции и ретенции кормового кальция в процессе яйцекладки (табл. 5).
Таблица 5
Потребность в кальции кур-несушек
различной продуктивности
(% массы воздушно-сухого комбикорма)
Потребность
корма в сутки, г
90
100
110
120
130
90
4,5
4,1
3,7
3,7
3,1
Яйценоскость, %
80
70
60
4,0
3,5
3,0
3,6
3,2
2,7
3,3
2,9
2,5
3,0
2,6
2,3
2,7
2,4
2,1
50
2,5
2,3
2,1
1,9
1,8
Во время кальцификации скорлупы, даже при идеальных
условиях (равномерное поступление кальция, максимальное его
использование и уравновешенный баланс), некоторое количество кальция расходуется из кости.
Такое явление наблюдается в связи с тем, что скорость его
аккумулирования в скорлупе превосходит скорость абсорбции
их кишечника. Считается нормальным, когда в скорлупу яйца
включается 30-35% скелетного кальция.
Для образования скорлупы кальций должен извлекаться из
крови со скоростью 115-120 мг/час, что эквивалентно перемещению в полость матки каждые 15 мин. всего кальция, который находится в крови несушки. Птицы во время репродуктивного периода
обменивают кальций в 20 раз быстрее, чем млекопитающие, при
этом извлечение его из крови происходит в 5 раз быстрее.
Кальций принимает участие в регуляции процесса овуляции. Куры, получавшие дефицитный по кальцию рацион, через
некоторое время прекращали яйцекладку, которую можно было
восстановить инъекцией гонадотропинов. Поэтому эксперимен103
таторы предположили, что причина торможения не является
дисфункцией яичников, а является следствием сбоя гипоталамогипофизарной системы. Таким образом, снижение концентрации
ионизированного кальция до критических величин является
следствием нарушения секреции гонадотропинов. Прекращение
яйцекладки происходит в момент, когда концентрация ионизированного кальция опускается до 1 моля. Такое снижение вызывает у птиц нарушение синтеза люлиберина, стимулирующего
предовуляторное увеличение гонадотропинов.
Организму кур-несушек для нормальной яйценоскости
необходим полный комплекс микроэлементов. При недостатке
марганца и цинка племенные куры несут яйца с пониженным
содержанием этих элементов, что является причиной эмбриональной смертности цыплят.
В производственных условиях при интенсивном методе
выращивания для кур необходимы йод, железо и медь. Потребность в йоде у племенных несушек составляет 0,7 г на 1 т комбикорма. Железо и медь куры получают из комбикормов, куда
они вводятся совместно с витаминами и аминокислотами в виде
премиксов. Добавки микроэлементов в рационы несушек не
должны превышать (г на 1 т комбикорма): железо – 10, марганец
– 50, медь – 2,5, цинк – 60, кобальт – 1 (табл. 4).
Корма для приготовления смесей должны быть доброкачественными, без признаков плесени и гнилостного запаха, наличие примеси песка в комбикорме допускается не более 0,3%.
Несушкам необходимо обеспечить доступ к гравию. Мелкий
песок не может заменить гравий, так как он долго не задерживается в мышечном желудке, а попадая в кишечник, раздражает
слизистую оболочку и нарушает пищеварение. Размеры частиц
гравия для несушек должны быть 5-8 мм.
Основу полноценных комбикормов для кур-несушек составляют богатые энергией и бедные протеином зерна злаков
(50-70%). В них содержится 9-12% сырого протеина, 2-4% сырого жира, 55-70% крахмала и 2-12% сырой клетчатки. Нормы
введения в рационы птицы зерен различных злаков следующие:
кукуруза, пшеница – до 70%; ячмень, овес, сорго, просо – до 40;
рожь – до 7%. Зерно бобовых улучшает перевариваемость протеина всего рациона, поэтому можно вводить горох в кормо104
смесь (7-15%), бобы (5-10%), безалкалоидный люпин (3-7%)
(табл. 3).
Для повышения энергии в рационах птицы к ним добавляют животные и растительные жиры. В 100 г растительного
жира содержится 3570 кДж обменной энергии, 3650 кДж животного жира. Ценной кормовой добавкой служат остатки при
производстве растительных масел – фосфатиды, богатые незаменимыми жирными кислотами.
Отдельные кормовые средства не используют в птицеводстве или применяются с предосторожностью. Не рекомендуется
скармливать зерна вики, чины, гречихи и зерновые отходы с высоким содержанием ядовитых семян сорняков.
Льняной жмых перед скармливанием следует проверять
на содержание в нем синильной кислоты, а хлопковые шроты
должны быть свободны от госсипола. Конопляные жмыхи и
шроты, содержащие наркотические вещества, вводят в комбикорма не более 5% по массе. В природных известняках, используемых для кормления, исключают магний и фтор. Нельзя добавлять сверх нормы в комбикорма синтетические аминокислоты (лизин, метионин), микроэлементы и витамин Д. Обязательно механизированное поение чистой водой с использованием
ниппельных поилок.
Нормированное кормление рассчитано на получение высокой яичной продуктивности, сохранения поголовья птицы и
получения продукции высокого качества. Следует помнить, что
только здоровая птица эффективно использует корма и система
ветеринарно-профилактических мероприятий неразрывна с
кормлением птицы и технологией производства яиц.
Кормить кур-несушек можно комбикормом с одним и тем
же содержанием питательных веществ. С точки зрения организации кормления такой способ наиболее простой. Но при этом
расходуется избыточное количество кормов, особенно протеиновых, что может привести к нарушению обмена веществ и может вызвать патологию в органах размножения. Более эффективным способом является так называемое фазовое кормление:
содержание питательных веществ в рационе кур-несушек изменяется с возрастом птицы, в первые месяцы яйцекладки, в ее
интенсивной период, в комбикорме содержится больше энергии
105
и сырого протеина, чем в последние месяцы, когда яйценоскость
постепенно снижается.
Комбикорма обогащаются витаминами и микроэлементами, которые входят в состав премиксов. На птицефабрике «Молодежная» Первомайского района применяют два рецепта, которые предназначены для кур-несушек в возрасте до 12 месяцев
и для птицы более старшего возраста. В первом комбикорме содержится 17% сырого протеина, во втором – 15%. Внедрение на
птицефабрике фазового кормления по сравнению с непрерывным использованием комбикорма с 17% протеина позволило
увеличить экономию кормов в течение года.
Большое внимание в хозяйстве уделяется содержанию в
комбикорме достаточного количества минеральных кормов, являющихся источником кальция. Так, при недостатке его в минеральных кормах, качество скорлупы яиц ухудшается, яйценоскость кур снижается, возникают патологические изменения в
органах
размножения.
Для
нормализации
фосфорнокальциевого обмена в рацион независимо от фазы введены известняк и рыбная мука.
На птицефабрике четко соблюдается режим кормления.
Корма готовятся в кормоцехе и через бункеры по транспортерам
подаются курам. Периодически несушкам в комбикорм вводят
гравий из расчета 1 кг на 100 голов в неделю.
Состав и питательность рациона представлена в таблице 6,
при анализе которой отмечаем, что ввод кальция в этот период
находился на нижней границы норматива для данной группы
птиц.
Для увеличения производственных показателей необходимо укреплять кормовую базу. На передовых фермерских хозяйствах сибирского региона добились стабильного урожая зерновых культур (29-30 ц/га) и ежегодной выработки 1000 т гранулированной травяной муки. При этом используют для сушки
агрегаты АВМ-0,65Г и ОГМ-1,5. Переход на сетевой газ позволил сэкономить за один год до 300 т жидкого топлива на одном
агрегате.
106
107
7.00
2.00
4.00
8.00
0.20
8.50
0.20
Шрот соевый
Масло рапсовое
Мука травяная 3 класс
Жмых подсолн. 24-28%
Кормовой метионин
Известняк
Соль поваренная
Норма (мин)
Норма (мах)
0. 14
5.20
2.52
7.40
7.84
2.04
3.09
100.00 89.73
2.00
Артемия салина
Итого
0.20
Меласса свекловичная
0.50
3.00
Премикс витаминный
3.00
Мука мясо-костн.
259.5
277
285
9.06
0.40
18.80
3.04
16.90
18.20
6.00
8.25
12.50
Мука рыбная 56-60%
5.10
5.00
16.38
16.50
17.50
0.54
0.02
2.08
0.48
2.94
1.02
1.74
1.07
6.49
5.00
3.00
7.00
0.13
0.60
0.11
2.00
0.08
0.53
0.24
0.08
1.24
6.54
2.50
5.00
0.16
2.16
1.88
0.49
0.06
0.27
1.52
0.81
0.75
0.85
0.10
0.07
0.02
0.19
0.05
0.14
0.07
0.17
0.21
0.18
0.20
0.00
0.03
0.01
0.04
0.01
0.02
0.01
0.08
Энерг., Прот., Жир., Клетч.,
Трип
Лизин
ккал
%
%
%
тофан
56.40 56.40 166.38
КЕ
Горох
%
ввода
Пшеница фуражная
Состав
0.73
0.66
0.72
0.04
0.20
0.09
0.01
0.09
0.02
0.08
0.02
0.19
3.62
3.60
4.00
0.13
0.00
2.89
0.02
0.04
0.03
0.32
0.17
0.01
0.02
0.65
0.70
0.90
0.04
0.00
0.09
0.01
0.05
0.16
0.12
0.02
0.17
0.39
0.36
0.40
0.00
0.04
0.00
0.03
0.14
0.12
0.01
0.05
0.21
0.15
0.40
0.00
0.00
0.07
0.01
0.00
0.00
0.05
0.06
0.00
0.01
0.84
1.40
1.40
0.22
0.02
0.26
0.04
0.02
0.00
0.28
Мет
Линол.
Каль- Фос - Фосф- На+
кислоций
фор дост. трий
цист.
та
3576.33
260.00
4.00
120.00
0.90
10.63
220.00
240.00
136.00
52.00
679.00
276.00
801.00
100.00
676.80
Сумма
Таблица 6
Рацион кормления родительского стада птицефабрики «Молодежная» (утвержден 18.04.03)
В птицеводческих хозяйствах для снижения себестоимости продукции и для получения высококачественных кормов
ведется большая работа по развитию растениеводства. Для намеченной цели в растениеводстве ежегодно производят посев
озимых до 20 августа и вспашку зяби в основном заканчивают
до 1 октября ежегодно. В хозяйствах, как правило, засыпают
семена зерновых культур 1-го и 2-го класса, в том числе 65-70%
– 1-го класса. Все семена относятся к элитным – I и II репродукции. На каждый гектар посевной площади вносят ежегодно 90100 кг в действующем веществе минеральных удобрений.
Таким образом, проведение весенне-полевых работ требует самого тщательного рационального использования тракторного парка и трудовых ресурсов. Согласно этим требованиям
составлен жесткий график загрузки техники. Такие графики загрузки техники нужны, в первую очередь, для рационального
использования трудовых ресурсов и техники, а с другой – для
усиления контроля за их использованием на период весеннеполевых работ. Многое при этом зависит от опыта и подготовки
механизаторов. И в этом отношении на птицефабрике разработаны материальные стимулы на основе оплаты труда по 18разрядной системе.
Выплаты премий производятся по специально разработанной шкале заработной платы. Кроме того, за качественное исполнение работ производится дополнительная оплата. Дополнительная и натуральная оплата осуществляется также по условиям соревнования среди работающих звеньев и отрядов. Такие же
стимулы применяются в цехах выращивания молодняка птицы,
производства яиц, автотранспортном цехе, стройцехе, цехе убоя
птицы яйцесортировальных цехах и т.д.
Во многих хозяйствах успешно внедрили экспресс-метод
определения токсичности комбикормов и сырья. Анализ на этот
показатель занимает мало времени – всего 1,5-2 ч, поэтому имеется возможность предотвращать отравление птицы путем исключения из рациона токсичных кормов.
Зерно, используемое для приготовления комбикормов,
нередко оказывается пораженным микроскопическими грибами,
выделяющими токсические продукты жизнедеятельности – микотоксины. Комбикорма, представляя собой многокомпонент108
ную смесь продуктов растительного, животного, минерального
происхождения, являются высокопитательным субстратом для
развития различных микробов и бактерий. Таким образом, комбикорм одновременно может содержать микотоксины, бактериальные токсины, токсины жизнедеятельности амбарных вредителей, продукты окисления жиров, тяжелые металлы, семена
ядовитых растений и многое другое. Даже после термообработки и гранулирования комбикорма, становясь почти стерильными, могут содержать термостабильные токсины микрогрибов и
бактерий, вызывая отравление животных и птицы.
В практике, как правило, токсичность кормов обнаруживается с большим опозданием, когда имеются явные признаки отравления: снижение потребления или полный отказ от корма,
появление поноса, снижение продуктивности и повышение отхода птицы, особенно у молодняка первого периода выращивания. Этим видимым признакам отравления птицы предшествует
скрытая от наших глаз форма проявления токсичности кормов,
при которой происходит снижение переваримости и использования организмом птицы питательных веществ кормов, потеря
приростов живой массы молодняка, снижение яйценоскости у
взрослой птицы. При этом сила действия токсинов корма прямо
пропорциональна степени пораженности и, соответственно, токсичности кормов.
Однако действие токсинов корма не ограничивается поражениями пищеварительного тракта птицы. При глубоком изучении токсинов установили их главную особенность – ослаблять
иммунную систему организма. Различные микотоксины повышают чувствительность к сальмонеллезу, аспергиллезу, кокцидиозу, псевдочуме и многим другим заболеваниям. Они приводят к регрессии фабрициевой сумки, тимуса, селезенки, которые
ответственны за становление иммунной системы. Микотоксины
ослабляют действие вакцин.
Для избежания вредного действия пораженного токсинами
корма необходимо вести систематическое определение токсичности кормов на комбикормовых предприятиях или непосредственно в хозяйствах.
Для экспресс-методов биотестирования требуются чувствительные тест-организмы, не имеющие сложных защитных бу109
ферных систем, как у теплокровных животных или рыб. Такими
тест-организмами являются одноклеточные организмы – инфузории. Инфузории содержат ряд ферментов, например ацетилхолинэстеразу, присутствующих также в клетках многоклеточных, в том числе и теплокровных животных. В качестве тесторганизмов можно использовать парамеции, колподы, стилонихии, тетрахимена пириформис.
Анализ показал, что результаты по оценке токсичности
комбикормов совпадают с клиническими и патологическими
показателями у животных на 80-90%.
При загрязнении комбикормов микотоксинами, не обладающими выраженным дерматоксическим действием (афлатоксин, ДОН, охратоксин), не превышающим МДД, период скармливания их птице не должен превышать 2-3 недель. В случаях
вынужденного скармливания корма, загрязненного микотоксинами, необходимо введение в корма добавок, ослабляющих отрицательное действие микотоксинов на продуктивность птицы.
В качестве добавок, профилактирующих афлатоксикоз и вомитоксикоз, можно использовать цеолит или бентонит в количествах 2-3%. Эффективно предупреждает хронический афлатоксикоз и вомитоксикоз добавление к комбикорму 2 кг DLметионина или 150 г гамма-амино-масляной кислоты (ГАМК) в
расчете на 1 т корма.
В системе мер, направленных на повышение эффективности использования кормов в птицеводстве, определенную роль
отводят биологически активным веществам. В кормовую смесь
вводят свыше 30 компонентов, причем две трети составляют
вещества химического синтеза. Особенно возросла роль биологически активных веществ в кормлении птицы при ограниченном добавлении в комбикорма кормов животного происхождения, при использовании в рационах только растительных компонентов, а также в связи со стрессовыми ситуациями.
Во ВНИТИП апробированы новые биологически активные
вещества, которые способствуют повышению продуктивности
птицы.
Фенозепам (БД-98). Это белый или с кремовым оттенком
кристаллический порошок, нерастворимый в воде. Он обладает
транквилизирующим и гипноседативным действием, снижает
110
стрессовые реакции организма, что способствует повышению
продуктивности птицы.
В организме птиц фенозепам превращается в нетоксические метаболиты. В течение первых суток выделяется 65-85%
введенной дозы препарата. Полная элиминация наступает через
пять суток. Фенозепам превосходит все известные транквилизаторы бенздиазепинового ряда по активности. В комбикорма для
молодок рекомендуется вносить 0,3 мг/кг фенозепама. Дачу
препарата следует прекращать за пять дней до убоя птицы.
Фумаровая кислота. Это однородный мелкокристаллический сыпучий порошок белого цвета, труднорастворимый в воде. Препарат не слеживается, слабогигроскопичен, устойчив при
длительном хранении, не оказывает отрицательного действия на
сохранность витаминов в премиксах. По физико-химическим
свойствам фумаровая кислота соответствует требованиям,
предъявляемым к компонентам, используемым при изготовлении премиксов и комбикормов, и не требует специальной подготовки. В условиях хозяйства включать ее в комбикорм необходимо путем ступенчатого смешивания в количестве 0,1-1,0%
согласно показаниям к ее применению.
Препарат обладает широким спектром действия. Умеренно раздражая вкусовые рецепторы, он повышает аппетит у птицы. В желудочно-кишечном тракте предотвращает рост гнилостной и условно-патогенной микрофлоры, улучшает моторносекреторную деятельность и повышает усвояемость кормов.
Фумаровую кислоту применяют для повышения резистентности птицы при стрессе с целью профилактики постстрессовых, желудочно-кишечных и респираторных болезней, при
лечении каннибализма; в качестве дополнительного энергетического средства при повышенных технологических нагрузках;
для улучшения аппетита, нормализации и стимуляции роста молодняка. В производственном стаде оптимальная доза – 150 г на
1 т корма. Этот препарат не накапливается в организме. Сроки
убоя птицы на мясо и использования продуктов птицеводства
после применения фумаровой кислоты не ограничены. Препарат
снижает заболеваемость и падеж молодняка, увеличивает продуктивность птицы на 3-8% и сокращает затраты кормов на 27%.
111
Фенибут. Это белый мелкокристаллический порошок без
запаха, хорошо растворимый в воде. Препарат не гигроскопичен, его можно применять с антибиотиками, нитрофуранами,
витаминами, микроэлементами и другими веществами в составе
премикса и комбикорма. Фенибут предназначен для снижения
стресса, ускорения роста, развития и повышения продуктивности птицы. Используют его в составе комбикормов.
Фенибут не имеет противопоказаний к применению. Он
способствует сопротивляемости организма к неблагоприятным
факторам физической, химической и биологической природы,
повышает интенсивность роста молодняка на 5-10%, увеличивает яйценоскость птицы на 2-4%.
Фенибут вводят в виде добавки из расчета 0,06-0,10 г на
1 кг комбикорма. Препарат скармливают курам только в первые
месяцы яйценоскости. При выращивании ремонтного молодняка
в условиях жаркого климата рекомендуется использовать 0,06 г
фенибута на 1 кг корма в стартовый и предкладковый периоды
или во время обостренной чувствительности иммунной системы
птиц к стрессу.
Кватерин. Это белый кристаллический порошок со слабым специфическим (напоминающим рыбный) запахом и сладковато-горьковатым вкусом. Препарат гигроскопичен, хорошо
растворим в воде. В водных растворах устойчив. Кватерин можно применять с антибиотиками, нитрофуранами, витаминами,
микроэлементами и другими веществами. Предназначен для повышения резистентности, профилактики заболеваний и стимуляции продуктивности птицы.
Препарат используют в составе различных видов кормов.
Он повышает функциональную активность белоксинтезирующей и митохондрильной систем клетки. В желудочно-кишечном
тракте увеличивает проницаемость эпителиальных клеток для
аминокислот и пептидов, стимулирует секрецию желудочного
сока и панкреазы, повышает усвояемость кормов, особенно у
молодняка птицы.
Кватерин не имеет противопоказаний к применению. Сроки убоя птицы на мясо и использование продуктов птицеводства
после применения его не ограничены. Препарат повышает продуктивность птицы (на 3-7%), увеличивает сохранность ее (на 3112
5%), улучшает усвояемость корма (на 2-5%), а также способствует снижению затрат на применение дорогостоящих и дефицитных стимулирующих и химиотерапевтических средств.
Использование качественных, сбалансированных и обогащенных кормов в промышленном птицеводстве залог высокого
уровня воспроизводства птиц.
Технология содержания
Все промышленное яичное птицеводство в Алтайском
крае в настоящее время переведено на клеточный способ содержания птиц. В данных условиях птица испытывает недостаток
естественного освещения, отсутствие моциона и т.д. Недостаточность этих факторов создает предпосылки к возникновению
заболеваний нарушения обмена веществ и снижению устойчивости к инфекционным заболеваниям, особенно к условно патогенной инфекции. Тем не менее, успехи науки и практики в области зоотехнии и организации производства биологически активных кормовых добавок и полнорационных комбикормов, а
также освоение современного технологического оборудования
позволили хозяйствам выращивать в клетках кур с высокой
продуктивностью.
Преимущества клеточной системы содержания в птицеводстве хорошо известны, а необходимость ее применения на
современном этапе развития отрасли несомненна. Тот факт, что
цены на яйцо оставались практически на одном уровне в странах Западной Европы с 1952 по 1976 гг., а потребление яиц за
этот период возросло более чем 2 раза, во многом объясняется
переходом на клеточное содержание птицы.
При организации содержания кур несушек необходимо
создать для них такие условия, которые обеспечили бы высокую
яйценоскость, эффективное использование кормов, сохранность
птицы, особенно от заболеваний органов размножения. Достигается это соблюдением комплекса условий, включающего режимы температуры, света и влажности воздуха.
Ремонтный молодняк в хозяйствах переводится во взрослое поголовье в возрасте 5 месяцев, но в клетки для несушек – в
возрасте 140 дней. Пересадка молодок, начавших нестись, из
113
одних клеток в другие может вызвать снижение яйценоскости,
которое повлечет за собой временное прекращение яйцекладки.
Перевод в дальнейшем кур из одной клетки в другие не практикуется.
Плотность посадки определяется числом кур в одной
клетке и площадью клетки, приходящейся на одну голову, кроме
того, надо учитывать и длину фронта кормления. Длина фронта
кормления должна составлять 10 см на несушку. Практически
следует определять такую плотность посадки несушек, при которой обеспечивалось бы максимальное производство яиц с
наименьшими затратами.
Имеются экспериментальные данные о возможности получения хорошей яйценоскости при площади клетки в среднем
на несушку 350 см2 и менее. Не рекомендуется размещать клеточных несушек из расчета площади клетки менее 400 см2 на
голову.
В клетки КБН-3 площадью 1890 см2 высаживается по пять
куриц, при этом на одну курицу приходится 378 см2 при фронте
кормления 9 см.
Нормальной температурой, по данным С.И. Сметнева
(1978), в помещениях для клеточных несушек считается 15-16оС
при относительной влажность воздуха 60-70%. В жаркое время
года при хорошей вентиляции температура в птичниках может
превышать 20оС.
При низкой температуре наружного воздуха помещения
отапливаются, подогревается поступающий воздух (табл. 7).
Важнейшее значение при выращивании ремонтного молодняка для несушек имеет продолжительность освещения. В
период яйценоскости выдерживается более стабильное освещение. При выращивании ремонтного молодняка исходная продолжительность светового дня для несушек берется от конечной. В дальнейшем световой день постоянно увеличивается. Если яйценоскость кур находится на достаточно высоком уровне,
то нет необходимости увеличивать световой день более 18 ч.
Для несушек некоторых кроссов можно ограничить продолжительность освещения до 16 ч. При содержании кур-несушек в
многоярусных клеточных батареях трудно обеспечить равномерную освещенность всех клеток.
114
Таблица 7
Ориентировочное количество свежего воздуха,
подаваемого в помещение для клеточных несушек
(м3 на 1 кг живой массы птицы в час по С.И. Сметневу)
Период года
Холодный
Переходный
Теплый
Расчетная зимняя температура воздуха, оС
-10
-15
-20
-25
-30
-40
1,8
1,6
1,5
1,4
1,4
1,4
3,8
3,8
3,8
3,8
3,7
3,6
5,0
4,9
4,9
4,7
4,7
4,7
Чрезмерная освещенность всех клеток также нежелательна, как и слишком низкая. По данным ВНИИПП, средняя яйценоскость несушек, содержащихся в клетках с освещенностью в
пределах 18 люкс, составила 217 яиц, а яйценоскость кур в более освещенных клетках (92 люкс) – 207 яиц. Нормальной считают освещенность в пределах 10-70 люкс, определяют освещенность в горизонтальной плоскости на уровне кормушки.
На птицефабрике «Молодежная» Первомайского района
при содержании кур породы белый леггорн, кросс «Хайсекс белый» введены следующие режимы: в птичниках при переводе
молодки из акклиматизаторов световой день составляет 9 ч при
интенсивности света 6 люкс, затем через каждые последующие
10 дней световой день увеличивается на полчаса, а интенсивность света на 1 люкс, и так световой день доводится до 15 ч 30
мин., а интенсивность света – до 20 люкс. Согласно установленному графику включение света производится первые десять
дней в 8 ч, и далее включение начинается с 6 ч (табл. 16).
При влажности 65-70% с 106-дневного возраста птиц проводят включение света ночью с 24:00-1:00, а отключение света
днем – с 12:00-13:00. Выключение в 17 ч и далее – согласно
продолжительности светового дня. Отключение света днем с
последующим включением ночью поднимает продуктивность
кур-несушек при таких параметрах микроклимата до 96%.
115
116
Возраст
недель
дней
0-5
1
6-17
2
8-14
3
15-21
4
22-28
5
29-35
6
36-42
7
43-49
8
50-56
9
57-63
10-15
64-105
16
106-112
17-18
113-126
19
127-133
20
134-140
21
141-147
22-23
148-161
24
162-168
25-26
169-182
27
183-189
28-30
190-210
31-35
211-245
36-40
246-280
41
281
Прод-ть
освещ.
23
20
18
16
14
12-30
11-30
10-30
10
9
8
9
10
10-30
11
11-30
12
12-30
13
13-30
14
14-30
15
15-30
Вкл-е света
утром
1
3
4
5
6
7
7.13.24
7.13.24
7.13.24
73013.24
8.13.24
8
7-30
7-30
7
7
7
6-30
6-30
6
6
6
6
6
Вкл-е света
вечером
24
23
22
21
20
19-30
11.1930.1
11.1830.1
11.18.1
11.1730.1
11.17.1
17
17-30
18
18
18-30
19
19
19-30
19-30
20
20-30
21
21-30
Освещ-ть
люкс
20-25
20
20
10
6-8
6-8
6-8
6-8
6-8
6-8
6-8
6-8
8-10
10
10
10
10
20
20
20
20
20
20
20
Влажность – 65-70%. С 106-го дня – отключение света с 12:00-13:00. Включение света с 24:00-1:00.
16-23VII
24-25VII
26VII-1VIII
2-8VIII
9-15VIII
16-22VIII
23-29VIII
30VIII-5IX
6-12IX
13-19IX
20IX-1XI
2-8XI
9-22XI
23-29XI
30-6XII
7-13XII
14XII-4I-2002
5-11I
12-25I
26I-1II
2II-22II
23II-29III
30III-3V
4V
Дата
Темп.
режим
32-30
30
29-27
27-23
23-20
21-20
20
20
20
20-18
18-22
18-22
18-22
18-22
18-22
18-22
18-22
18-22
18-22
18-22
18-22
18-22
18-22
18-22
Примеч.
Таблица 8
Световой режим для кур на птицефабрике «Молодежная» (вывод с 16 по 19 июль 2001 г.)
Очень эффективно показала себя замена традиционных
круглого сечения воздуховодов на прямоугольные. При этом
воздух в залы подается и сверху и снизу, а удаляется с помощью
вытяжных вентиляторов, расположенных в продольных и поперечных стенах на высоте около 80 см от пола. В вентиляционной системе, обеспечивающей воздухообмен в птичниках, используются вентиляторы типа Ц4-70 (для подачи воздуха) и
осевые «Климат-47» (для вытяжки). Такая комбинированная
схема подачи воздуха позволяет удалять вредные для птиц газы,
скапливающиеся как раз в нижней зоне воздушного бассейна.
Нарушения воздухообмена и температурного режима в
птичнике можно решить установкой регулятора РТЕ-11 М, а
также увеличения площади калориферной, в результате воздух в
калориферы будет поступать через шахты из наиболее чистой
верхней зоны помещения и уже частично прогреваться. На выходе воздуха из вентиляторов Ц4-70 установить шиберы, с помощью которых регулировать подачу воздуха в зависимости от
его температуры. Контурное отопление птичника осуществлять
с учетом наружной температуры воздуха при помощи автоматизированного газового теплогенератора ТГ-2,5, что позволит
поддерживать нужную температуру в птичниках в зависимости
как от наружной температуры, так и от возраста птицы.
В птичнике можно увеличить фронт кормления и поения
птицы путем снятия поперечных перегородок и усиления подножных решеток в клетках. Вместо горизонтальных транспортеров ТСН-ЗБ в батареях смонтировать спиральные шнеки собственного изготовления, тем самым сократить число поломок
оборудования и продолжительность по времени удаления помета.
В настоящее время в фермерских хозяйствах модернизируются кормоцеха, которые оснащены весовыми дозаторами
улучшенной конструкции и могут вырабатывать за одну смену
более 100 т кормосмеси, сбалансированной по питательным веществам и обменной энергии. В цехе установлено 32 бункеранакопителя БПР-70 вместимостью 70 м3, каждый для заводских
комбикормов и 16 бункеров для различных кормовых добавок
(мела, травяной, с костной и рыбной муки, дробленого зерна,
соевого шрота и т.д.). Три емкости на 45 т предназначены для
117
хранения и подогрева технических жиров, растительного масла,
еще пять – для уже готовых кормосмесей (15 т каждая).
Рис. 17. Клеточная батарея
Автономно в хозяйствах могут действовать две линии по
приготовлению кормосмесей: для молодняка и взрослого поголовья. Каждая их них работает во взаимосвязи с вышеперечисленными бункерами-накопителями и емкостями. Через три специальных смесителя (общая производительность 20 т/ч) выдается готовая продукция с заданной питательностью.
В кормоцехе монтируются также дробильно-сортировальный комплекс ДС1, на котором измельчаются до нужных
размеров кормовые щебень и гравий. Исходное сырье (например, щебень) подается ленточными транспортером в роторную
дробилку, а дальше уже в дробленом виде полученный продукт
поступает в отсек сортировки, где разделяется на фракции. Одна, более мелкая, по ленточному транспортеру продвигается к
месту затаривания (размер частиц определяет установленная
съемная сетка), а другая, покрупнее, подается на ленточный элеватор, которая возвращает ее на дробилку.
118
В агрегате предусмотрена система аспирации – улавливание и сброс пыли, образующейся в процессе дробления, с помощью вентилятора циклона и шлюзового питателя. Возможна
загрузка ДСК через приемную яму, то есть непосредственно из
автотранспорта, доставляющего исходный материал.
Уход за курами сводится к своевременному удалению слабых и прекративших яйценоскость кур и поддерживанию помещения и оборудования в необходимом санитарном состоянии.
Большое значение имеет четкая работа всех механизмов, обеспечивающих соблюдение установленного распорядка дня раздачи кормов, удаление помета и сбор яиц. При выбраковке птиц
руководствуются признаками экстерьера, пигментацией гребня
и сережек, клюва и ног. Кроме этого учитывают состояние живота и лонных костей. С возрастом число кур, подлежащих выбраковке, увеличивается. В случае увеличения допустимых
норм отбраковки необходимо внимательно проверить все условия содержания и кормления птицы. Клеточные батареи должны
содержаться в чистоте. После освобождения клеток и помещений от птицы производят их очистку, мойку и дезинфекцию.
В фермерских хозяйствах можно проводить санитарную
обработку по английской технологии, которая включает 4 фазы:
Фаза 1. Удаление оборудования и сухая механическая чистка. Мытье всех емкостей 1%-ным раствором виркона.
Фаза 2. Проверка системы водоснабжения. Освобождение
емкостей с дальнейшим наполнением водным раствором Виркона (1 кг на 200 л воды).
Фаза 3. Мойка поверхностей помещения и оборудования.
Обычная мойка 0,1%-ным раствором натузана при температуре
60-70оС.
Фаза 4. Дезинфекция, включающая опрыскивание потолка, стены и пол. Профилактическую дезинфекцию проводить
0,5-1%-ным раствором Виркона, заключительную – 2%-ным.
Расход составляет 200 мл/м2.
В передовых фермерских хозяйствах из года в год стараются улучшать техническую оснащенность хозяйств, технологию кормления птицы, условия ее содержания. Специалисты
птицефабрик с высшим и средним образованием наряду со
своими основными обязанностями постоянно совершенствуют
119
технологический процесс производства, внедряют достижения
науки и техники, передовой опыт.
Строительство новых птичников и реконструкция старых
позволили перевести птицу в клеточные батареи КБУ-3, БКМ-3
и БКН-3. Использование однотипного оборудования облегчило
его техобслуживание и обеспечение запчастями.
В птицеводческих хозяйствах постоянно осуществляют
реконструкцию систем отопления, электро- и водоснабжения.
Так, устаревшие водогрейные котлы ТВГ-4 заменяются на более
мощные ТВГ-8,3, а паровые котлы Е-1/9 – на АБА-4/15. Это сразу же сказывается на микроклимате помещений, температура в
которых поддерживается в нужных пределах. Отсюда улучшается качество получаемой продукции и ее переработки.
Переоборудование системы электроснабжения позволило
увеличить потребление электроэнергии с 3 до 12 млн кВт/ч и
обеспечить полную механизацию и автоматизацию всех технологических процессов производства.
Большинство хозяйств имеют автономное водоснабжение
из собственных артезианских скважин и канализационную сеть
с полями фильтрации. Не стало проблем с бесперебойным обеспечением водой как основных, так и вспомогательных подразделений. Предотвращен отвод сточных вод в водоемы и реки,
что очень важно для экологического состояния региона. С другой стороны, в целях экономии воды внедряется режим прерывистого поения птицы, скоординировав его с программой светового освещения с автоматическим регулированием в птичниках
для молодняка и взрослого поголовья.
Продолжаются реконструкции систем теплоснабжения с
целью автоматического регулирования расхода тепла. Эту проблему решают установкой регулятора РТЕ-1 1М. Контурное
отопление каждого помещения осуществляется с учетом наружной температуры воздуха. Во всех корпусах, где выращивается
молодняк можно поставить автоматизированные газовые теплогенераторы ТГ-2,5, что позволит поддерживать нужную температуру в птичниках в зависимости как от наружной температуры, так и от возраста птицы.
В производство внедряются станции управления освещением СУО-1, которые позволяют поддерживать заданный свето120
вой режим в птичниках, регулируя освещенность с помощью
резистора, а также имитировать восход и закат солнца. Плавное
повышение и снижение напряжения в лампах накаливания в течение нескольких десятков секунд увеличивают срок их службы, а также предотвращают стресс у птицы, вызываемый обычно резкой сменой темноты и света.
В цехе инкубации повсеместно внедряются стенды для обрезки клюва у суточного молодняка, необходимой для предупреждения расклева в стаде. В инкубационных шкафах
ИУП-Ф-45 и выводных ИУВ-Ф-15 вместо регуляторов температуры РТИ-3 и тиристоров стали применять приборы типа
МИДА-КВАРЦ-07.
Ряд новых инженерно-технических решений нашел практическое воплощение в хозяйствах. Сдаются в эксплуатацию
убойный цех с глубокой переработкой птицы. Внедряются новые типы контейнеров для транспортировки живой птицы, яиц и
мясной продукции, что дало возможность механизировать погрузочно-разгрузочные работы, сократить количество занятых
людей на этих работах.
Однако многие птицеводческие хозяйства испытывают
финансовые трудности. Птицеводы, использующие покупные
комбикорма, специальные дорогостоящие кормовые добавки и
витамины, сложное технологическое оборудование, значительные объемы электроэнергии и газа, оказались тяжелой
экономической ситуации, в невыгодном положении. Кроме того,
цены на продукцию птицеводства в наибольшей степени зависят
от стоимости на другую сельскохозяйственную продукцию и от
покупательской способности населения. Поэтому существование крупных хозяйств как энергоемких предприятий возможно
только с внедрением энергосберегающих технологий и современных методов выращивания птицы.
Интенсификация птицеводства в нашей стране, в основном, осуществляется в результате преимущественного использования клеточного содержания птицы. Искусственное осеменение в этих условиях является одним из перспективных способов
воспроизводства стада птиц.
В последнее время в яичном птицеводстве стали широко
использовать режимы прерывистого освещения. В ряде иссле121
дований показана возможность и целесообразность многократного отключения света в птичниках в течение суток. При нормальной продуктивности за счет данного метода можно сэкономить от 30 до 75% электроэнергии, идущей на освещение.
По данным Г.А. Кирдяшкиной (2005), при содержании
племенных кур яичных кроссов в клеточных батареях рекомендуется использовать режим прерывистого освещения по схеме:
18-я неделя – 3с:2т:3с:16т (первое включение света в 8 ч); 19-я
неделя – 0,5с:2т:3с:1,5т:3с:14т (первое включение света в 6 ч);
20-я неделя – 1с:3т:3,5с:1т:3,5с:12т (первое включение света в 4
ч); 21-я неделя – 1с:4т:4с:1т:4с:10т (первое включение света в 3
ч). Рациональным временем искусственного осеменения кур при
данной схеме является 10 ч утра.
ВЕТЕРИНАРНО-САНИТАРНЫЕ МЕРОПРИЯТИЯ
Крупные птицеводческие фермерские хозяйства должны
работать по закрытому типу. Вход на территорию возможен
только с разрешения главного ветеринарного врача при соблюдении посетителями ветеринарно-санитарных правил, установленных ветеринарным законодательством.
Вся территория хозяйства должна быть разбита на участки, которые закреплены за начальниками цехов, бригадирами,
птичницами; ответственные лица постоянно контролируют чистоту вокруг птичников и закрепленных за ними объектов.
Важную роль в профилактике болезней играют ветеринарно-санитарные, зоогигиенические, технологические, административно-хозяйственные и организационные мероприятия.
Птицеводческое хозяйство находятся на режиме предприятий
закрытого типа, куда запрещен вход посторонних лиц, а также
въезд транспорта, не связанного с обслуживанием хозяйства.
Установлена строгая пропускная система для людей и транспорта. Обслуживающему персоналу разрешается вход на территорию птицефабрики только через санитарный пропускник, а
въезд транспорта – через постоянно действующий дезбарьер.
Все цеха обособлены и изолированы друг от друга.
122
Цех родительского стада должен быть вынесен за пределы
промышленной зоны на расстояние 1 км. Взрослое поголовье
родительского стада кур содержится группами в клеточных батареях типа КБР-2 в двух ярусном исполнении. Сбор яиц механизированный 4 раза в смену, с обязательной аэрозольной обработкой парами формальдегида не позднее 1-2 ч после снесения.
Кур родительского стада исследуют на туберкулез, пуллорозтиф, миконлазмоз, ремонтный молодняк кур – на поллороз в
возрасте 50-55 дней, повторно – при достижении 40%-ной яйцекладки, а затем в возрасте 210-230 дней и ежемесячно в птичниках, где имеется реагирующая птица. Эту работу выполняет постоянная бригада под контролем ветеринарного врача. Вся положительно реагирующая птица подлежит убою в день исследования. После окончания исследования в птичнике проводится
влажная дезинфекция пола 2-3%-ным горячим раствором каустической соды и аэрозольная – молочной кислотой.
Цех инкубации – важнейшее звено технологического конвейера промышленного производства яиц. Успешное получение
полноценного суточного молодняка зависит от двух основных
причин: биологической полноценности яиц и правильного
выполнения всех операций в технологии инкубирования.
Для перевозки яиц из цеха родительского стада в цех инкубации используют специальный автофургон, оснащенный автоматическим устройством. Он обеспечивает оптимальный температурный и влажностный режимы в любое время года. Кроме
того, в автофургоне обеззараживают яйца парами формальдегида. Перед закладкой в инкубатор яйца обязательно вновь дезинфицируют, так как скорлупа может быть заражена как патогенными, так и условно-патогенными микроорганизмами. Дезинфекция инкубационных яиц осуществляется в герметической
камере.
При инкубировании яйца дополнительно обеззараживают
парами формальдегида методом самоиспарения формалина, который берут из расчета 45 мл на 1 м3 камеры, заливают в металлическую емкость и выпаривают в течение 30 мин. Так дезинфицируют яйца дважды: первый раз — через 6 ч после закладки
в инкубатор, второй раз – через 10 сут инкубации, то есть при
закладке новой партии яиц. Эта обработка не отражается на вы123
водимости. Заключительную дезинфекцию проводят в выводном шкафу в период наклева. На пол выводного шкафа ставят
ванночки (кюветы) размером не менее 20х30 см и наливают в
них формалин слоем 8-10 см, воздушные клапаны периодически
открывают. За 2 ч до выборки при показании проводят аэрозольную обработку цыплят лекарственными препаратами. Цыплят, пригодных к выращиванию, переводят в специальное помещение, где их облучают на стационарной ультрафиолетовой
установке ртутнокварцевыми лампами ПОК-2. После облучения
цыплят вакцинируют против болезни Марека внутримышечным
методом с помощью полуавтоматических инъекторов ИП1 и
отправляют в цех выращивания.
С учетом потенциальной угрозы инфицирования территории и поголовья птицы на птицефабрике организована и действует первичная санитарная защита, которая включает в себя
следующие ветеринарно-санитарные объекты: дезипфекционнопромывочный пункт для автотранспорта; пункт мойки и дезинфекции тары внешнего и внутреннего оборота с пароформалиновой камерой; дезкамеру для дезинфекции яичной тары. В системе санитарной профилактики санпропускники – серьезный
барьер для инфекции. Обслуживающий персонал работает в
птичниках и на других объектах только в спецодежде, которую
дезинфицируют в санпропускнике. Убойный цех и санитарная
бойня – один из опасных очагов концентрации и стационарного
присутствия возбудителей инфекционных болезней, поэтому
каждый посетивший бойню возвращается в свой цех только через санпропускник. Эти объекты ежедневно механически очищают, моют горячей водой (60°С) и горячим (70°С) раствором
кальцинированной соды с концентрацией 35%. Профилактическую дезинфекцию проводят 1-2 раза в неделю горячим 2%-ным
раствором каустической соды или раствором хлорной извести с
содержанием 0,5-1% активного хлора.
Транспортные и погрузочно-разгрузочные работы внутри
птицефабрик выполняют специально закрепленным транспортом. Движение с грузом осуществляется через одни ворота, которые оборудованы разгрузочно-погрузочной площадкой с дезинфекционным пунктом. При въезде на территорию птицефабрики, а также во все производственные цеха заправлены налив124
ные дезбарьеры. Боенские отходы и отходы инкубации перерабатывают в котлах ГВК-2,8 в мясо-костную муку, используемую
в корм взрослой птицей после бактериологического контроля.
Помет утилизируют на пометосушильных установках барабанного типа. Непереработанную часть помета подвергают биотермическому обезвреживанию с соблюдением ветеринарносанитарных правил. Пометохранилище удалено от птицеводческой зоны на 500 м. Все дороги на птицефабриках с твердым
покрытием, их периодически чистят и моют из поливочномоечных автомашин; 2 раза в неделю все дороги обрабатывают
дезраствором из специальной установки.
Особое внимание уделяют санитарной подготовке помещений, которая имеет важнейшее значение в системе профилактики любых заболеваний. В профилактические перерывы проводят комплекс санитарно-хозяйственных работ (с тщательной
влажной и аэрозольной дезинфекцией, дезинсекцией и дератизацией) в производственном помещении, а также на прилегающей территории и подъездных дорогах.
Важную роль в профилактике инфекционных болезней играет контроль санитарного состояния воздуха в птичнике. При
содержании в 1 м3 воздуха более 250 тыс. микроорганизмов у
птицы вызывается стресс. Работу по контролю санитарного состояния воздуха в птицеводческих помещениях проводят работники ветеринарной лаборатории при помощи аппарата Кротова.
Постоянная дезинфекция воздуха молочной и надуксусной кислотами, гипохлоритом натрия с 2%-ным содержанием хлора,
йодинола, йодтриэтиленглюколя, однохлористого йода из расчета на 1 м3 воздуха 25 мг препарата (экспозиция 20-30 мин.) 3
дня подряд с 5-7-дневным перерывом, а также ингаляции йода
кристаллического с алюминиевой пудрой предупреждают аэрогенное перезаражение птицы. Одновременно проводится влажная дезинфекция полов, стен, пометных коробов 3%-ным раствором едкого натрия температурой 70°С один раз в неделю.
Все это привело к значительному снижению количества микрофлоры в воздухе птичника.
На многих хозяйствах внедрена аэроионизация птицеводческих помещений. Искусственная аэроионизация отрицательной полярности уменьшает микробную загрязненность воздуха,
125
ускоряет гибель стафилококков, ослабляет токсичность бактерий и вирусов. В воздухе помещения во время сеансов ионизации в 2-3 раза снижается количество микроорганизмов.
Важным в санитарном отношении мероприятием, по мнению специалистов, является осуществление принципа «пусто –
занято». Сущность этого принципа состоит в следующем: в
птичнике или секторе содержат некоторый срок птицу только
одного возраста (разница не должна превышать 8 дней). После
перевода птицы в другой сектор или сдачи её на убой часть помещений или сектор в целом в течение определенного времени
остается свободным, и в этот период проводят в нем санитарные
мероприятия (дезинфекция, дезинсекция и дератизация). Перед
дезинфекцией удаляют помет, все поверхности помещений, полы, а также оборудование и инвентарь обмывают горячим
0,25%-ным раствором сульфанола, 1,5-2%-ным раствором кальцинированной соды или горячей водой. Дезинфекцию проводят
методом орошения и аэрозольным методом. Для дезинфекции
методом орошения используют одно из следующих средств: горячий 5%-ный раствор кальцинированной соды, 2%-ный горячий раствор едкого натра, 3%-ный раствор каустифицированной
содо-поташной смеси, 1%-ный раствор формальдегида. После
нанесения растворов на поверхности помещений двери их
должны быть закрыты не менее чем на 3 ч. Мелкий инвентарь
обеззараживают путем погружения его в один из указанных растворов. Аэрозольная дезинфекция выполняется при полной герметичности, 60%-ной влажности и температуре не ниже 16оС.
Для создания аэрозолей берут 3 части 40%-ного раствора формальдегида и 1 часть кселонафта или креолина. Приготовленный раствор распыляют с помощью распылителя (форсунка
ПВАН) и воздушного компрессора. Дезинфекцию делают из
расчета 3 мл раствора на 1 м3 при экспозиции 24 ч. По окончании дезинфекции помещение проветривают, а инвентарь промывают.
Дезинсекцию проводят 0,5-1%-ным раствором неостомазана или 0,5-1%-ной водной эмульсией карбофоса. Помещение и
оборудование обрабатывают дважды: первый раз до механической очистки и мойки из расчета 200-400 мл инсектицидного
средства на 1 м2 площади, второй раз – соответственно, после
126
просушивания помещения. Целесообразно обрабатывать птичники аэрозолем, состоящим из трех частей: 40%-ного продажного формалина, одной части креолина и 0,4 части хлорофоса.
Защита птицеводческих хозяйств от мышевидных грызунов должна проводиться постоянно. Меры борьбы с грызунами
подразделяют на профилактические и истребительные. Профилактические мероприятия включают в себя устранение всех
строительно-технических недочетов, поддержание чистоты на
птичниках и окружающих территорий, правильное хранение
кормов. Нельзя допускать гнездования грызунов в «мертвых
пространствах» в строительных конструкциях.
Истребительные мероприятия проводят механическими,
биологическими, химическими и комплексными методами.
Одним из химических средств для истребления крыс в
птичниках является зоокумарин. Это порошкообразная смесь
яда и наполнителя. Зоокумарин из группы антикоагулянтов, в
качестве наполнителя которого используется костная пыль.
Смерть от отравления наступает на 3-15-й день с признаками
геморрагического диатеза. В экстренных случаях в качестве
противоядия можно применять викасол (витамин К).
Приманки готовят из свежего хлеба, различных каш, муки, комбикормов, мясного и рыбного фарша. Используются
только доброкачественные продукты. К приманочному продукту добавляют 2% зоокумарина с костным наполнителем, содержащим 1% яда, и тщательно равномерно смешивают. Приманки
раскладывают равномерно вечером в течение 4-5 суток в приманочные ящики. Приманочные ящики (длина 50 см, ширина и
высота 12 см) делают из фанеры или тонкого теса. В торцовых
сторонах ящика устраивают отверстия диаметром 5-6 см, нижний край отверстия должен находиться на высоте 2-3 см от пола.
После комплексной санитарной обработки помещения оставляют пустыми при клеточном содержании несушек 20 дней.
Затем в течение одной недели завозят новую одновозрастную
птицу.
Преимущество системы «пусто – занято» заключается в
том, что создаются благоприятные условия для эффективной
санации помещений и территории, а также для создания однородного фона птицы.
127
Если в птицеводческом хозяйстве нет возможности выполнить соответствующие работы по секторам, то этот принцип
осуществляется в птичниках последовательно.
Принцип «черное – белое» и его соблюдение имеют важное значение в комплексе санитарных мероприятий. Сущность
принципа заключается в пространственном (территориальном
или строительном) разграничении ряда производственных технологических процессов (операций) с разграничением технологического оборудования и обслуживающего персонала. По этому принципу должны работать все ветеринарно-санитарные
объекты: санпропускники, дезинфекционный блок для транспорта и тары, дезинфекционные камеры, дезбарьеры. На всех
этих объектах строго изолируют «черную» и «белую» стороны.
По белым (чистым) дорогам следует обслуживающий персонал
в производственные помещения, поступают птица и корма в
птичники; по черным (грязным) дорогам удаляют из помещений
помет, павшую птицу. Забор и выброс воздуха в птичнике также
осуществляется по указанному принципу.
Специалисты ветслужбы освоили работу аппарата ЭДО-4,
предназначенного для получения посредством электролиза активного раствора гипохлорита натрия. Он применяется для детоксикации птицы путем аэрозольной обработки или выпаивания. Также в работе используют аэрозольные генераторы САГ-1
для вакцинации птицы против ньюкаслской болезни, а САГ-10 и
ОПА-6 – для профилактики респираторных заболеваний. Внедрены в хозяйстве современные методы диагностики болезней
Гамборо и ССЛ. Диагностикумы приобретаются в НИИ городов
Санкт-Петербурга и Владимира.
Так как успешная работа предприятия полностью зависит
от хорошего состояния птицы, то в условиях концентрации
производства особое внимание обращают на ее резистентность и
не допускают возникновения опасных инфекций.
В хозяйстве должен быть разработан детальный план комплексных и организационно-хозяйственных мероприятий по
профилактике инфекционных болезней птицы. Этот документ
утверждается директором и предписывает режим работы закрытого предприятия.
128
В некоторых хозяйствах для подготовки производственных корпусов создана специализированная бригада, оснащенная
моечными машинами ОЭМ-23, емкостями для подогрева воды.
Качество работы, мойки и дезинфекции помещений и оборудования контролируют непосредственно ветврачи производственных цехов и специалисты зооветлаборатории. В распоряжении
ветеринарной службы имеются агрегаты ДУК, АГ-УД-2,
САГ-10, компрессор ПКСД-5, специальная машина для перевозки отходов и павшей птицы в отведенное место, установки
УФ-облучения, ОДК, ЭДО-4, овоскопы, инструментарий,
аналитические весы, бактерицидные лампы и др.
Помещения каждого цеха систематически исследуют на
состав микрофлоры и по результатам исследований принимают
меры для снижения концентрации микробов. Для дезинфекции
воздуха в помещениях в присутствии птицы применяют раствор
гипохлорида натрия, получаемый путем электролиза на аппарате ЭДО-4, а также препараты йода, молочную кислоту. Дезинфекцию, дезинсекцию, аэрозольную обработку птицы и помещений проводят ветсанитары. Павшая птица подвергается патолого-анатомическому вскрытию. Яичная и мясная тара обрабатывается в специальной дезкамере. Для дезинфекции яичной
тары используют формальдегид, распыляемый с помощью агрегата АГ-УД-2. Мясную тару предварительно моют в 3%-ном
растворе кальцинированной соды, нагретом до 60ºС, а затем обрабатывают сухим паром.
Лаборанты проводят бактериологические исследования
яиц, мяса птицы, яичного порошка, отходов инкубации, а также
поступающих в хозяйство комбикормов и отдельных ингредиентов. Лаборатория исследует сыворотку крови птицы на наличие антител к вирусным болезням иммуноферментным методом
(ИФА), по реакции диффузной преципитации (РДП).
Для поддержания эпизоотического благополучия хозяйства птицу вакцинируют против наиболее распространенных
инфекций. Против болезни Марека цыплят вакцинируют сразу
же после выборки из выводного шкафа и сортировки. Вакцину
вводят подкожно в область шеи или внутримышечно – во
внутреннюю поверхность бедра. Инъекции проводят с помощью
шприцов Socorex Luer Lock 187.2 или инъекторами-полуавтоматами живой вирус-вакциной в соответствии с
129
живой вирус-вакциной в соответствии с наставлением по ее применению. Используются иглы диаметром 0,7 мм и длиной 13
мм.
При хранении и транспортировке вакцины необходимо
следить за тем, чтобы в сосудах Дьюара всегда было достаточное количество азота. Не реже одного раза в неделю их пополняют. Извлекать из сосуда следует только одну ампулу. После
оттаивания повторно помещать ампулу в сосуд запрещается.
Ампулы с вакциной размораживают в воде при температуре 2527°С, удерживая ампулу одной рукой и плавно покачивая в течение 1 мин. Смешивают вакцину с растворителем сразу же после оттаивания, ополаскивая им трижды ампулу и ее горлышко
и перенося жидкость во флакон с вакциной. При смешивании
нельзя допускать образования пены, т.к. при этом происходит
разрушение клеток, внутри которых находится вирус. Время от
извлечения ампулы из сосуда до смешивания с растворителем
не должно превышать 1,5 мин.
При использовании вакцин нужно строго контролировать
дозу (объем вводимой вакцины). Вакцинируют все поголовье, не
оставляя ни одной головы непривитой. В период вакцинации
флаконы с вакциной периодически встряхивают. Иглы меняют
после вакцинации каждых 400 гол., а шприцы — после 5000
инъекций.
На птицефабриках проводят профилактическую вакцинацию птицы против инфекционной бурсальной болезни (Гамборо). Обрабатывают молодняк двукратно в возрасте 5 и 15 дней
путем выпаивания из вакуумных поилок вакцины, изготавливаемой ВНИИЗЖ (г. Владимир). Методика заключается в следующем. За сутки до вакцинации определяют количество воды,
выпиваемой птицей за 0,5-1 ч в миллилитрах на 1 гол. На следующий день вакцину разводят с таким расчетом, чтобы в установленном объеме воды содержалось 1,2 дозы препарата. Используют для разведения только чистую охлажденную до комнатной температуры кипяченую воду. Поилки, в которые наливают разведенную вакцину, тщательно промывают без применения дезсредств. Кроме того, перед вакцинацией птицу выдерживают без воды в течение 4-6 час. Иммунитет нее вырабатыва130
ется через 15 дней после второй прививки. Выполняет все эти
мероприятия бригада вакцинаторов в количестве 3-4 человек.
Контроль за качеством проведенной вакцинации осуществляется серологическим методом по РЗГА. Для исследований из
каждого цеха следует брать не менее 25 проб сыворотки крови
от имеющегося поголовья.
Птицу в возрасте 16-17 недель прививают инактивированными вакцинами, чтобы у потомства вырабатывался более однородный иммунитет. Это облегчает выбор программы дальнейшей профилактики данного заболевания.
В связи с переходом работы на разведение и выращивание
новых кроссов кур в целях профилактики заболеваний поголовье обрабатывают против синдрома снижения яйценоскости.
Против ССЯ птицу вакцинируют в возрасте 16-17 нед. инактивированной вакциной. Вакцинацию проводят как в благополучном хозяйстве, так и в хозяйстве, где у птиц обнаружены в сыворотке крови антитела или проявлены следующие клинические
признаки: снижение продуктивности, появление безскорлупных
(«литье») или с обесцвеченной шероховатой скорлупой яиц.
Приводим одну из схем лечебно-профилактических мероприятий, разработанную для цеха по производству яиц в птицеводческом хозяйстве. В возрасте 100-120 дней птицу вакцинируют против ССЯ, дают ей с кормом витаминную смесь (1/2 дозы), фуразолидон (1/2 дозы), обрабатывают аэрозолем тилана. В
этот период принимают профилактические меры против следующих болезней: ньюкаслской, ИББ, ИБ.
Вакцинация против инфекционного бронхита кур в период
выращивания проводится живыми вакцинами двукратно или
трехкратно. Схема вакцинации определяется эпизоотической
обстановкой в хозяйстве. Живые вакцины используют в соответствии с наставлением по их применению. В 16-17-недельном
возрасте вводится инактивированная вакцина (табл. 8).
Вакцинация против инфекционного энцефаломиелита проводится в возрасте 10-12 нед. Прививают молодок, по крайней мере, за месяц до начала яйцекладки. Вакцинируют живой вакциной из штамма Calnek 1143. Живая вакцина против энцефаломиелита характеризуется тем, что распространяется очень хорошо от одной птицы к другой в пределах здания. Материнские
131
антитела обеспечивают защиту приблизительно до 4-недельного
возраста.
Таблица 8
Схема вакцинаций (ППЗ «Свердловский)
Возраст
Название заболевания
1 сутки Болезнь Марека
10-12
дней
18-19
дней
Инфекционный
бронхит
Болезнь
Ньюкасла
21-22
дня
Болезнь Гамборо
29-30
дня
40 дней
47-50
дней
75 дней
85 дней
110-120
дней
Способ введения
Подкожно по 0,2 мл
Спрей
Спрей
Название вакцины
штамм, изготовитель
«3004» ВНИИЗЖ,
«Rismavac» Интервет
«Н-120» ВНИИЗЖ,
г. Владимир
«Ла-Сота» ВНИИЗЖ,
г. Владимир
Выпойка (питьевая вода
«Винтерфильд 2512»
+ 0,2%-ного сухого
ВНИИЗЖ, г. Владимир
обезжиренного молока)
Выпойка (питьевая вода
«Винтерфильд 2512»
Болезнь Гамборо
+ 0,2%-ного сухого
ВНИИЗЖ, г. Владимир
обезжиренного молока)
Болезнь
«Ла-Сота» ВНИИЗЖ,
Спрей
Ньюкасла
г. Владимир
Инфекционный
«Н-120» ВНИИЗЖ,
Спрей
бронхит
г. Владимир
Инфекционный
«Н-120» ВНИИЗЖ,
Спрей
бронхит
г. Владимир
Выпойка (питьевая вода
Инфекционный
+ 0,2%-ного сухого
«Calnek» 1143
энцефаломиелит
обезжиренного молока)
ИБК + ИББ +
Инактивированные
0,5 мл в грудную мышССЯ-76, НБ +
поливалентные вакцины
цу
Рео
ВНИИЗЖ, г. Владимир
Против других инфекционных заболеваний птица обрабатывается в соответствии с необходимостью и в зависимости от
эпизоотического состояния хозяйства и региона.
Кроме вакцинаций можно использовать следующие обработки: в возрасте 160-180 дней применять йодтриэтиленгликоль
и формалин через день для профилактики лейкоза, микоплазмоза. В возрасте 210-220 дней птице скармливают витаминную
смесь (1/2 дозы), с 240-го по 260-й день ее обрабатывают в аэрозольной форме стрептомицином (250 тыс. ед/м³) в целях профи132
лактики колибактериоза. Аэрозоль йодтриэтиленгликоля меняют еще в период 280-300 дней. Витаминизацию птиц производить по достижении несушками возраста 350-370 дней.
Особое внимание в ветеринарно-санитарных мероприятиях отводится искусственному осеменению.
Долговременное хранение спермы птиц в жидком азоте
открывает широкие возможности в племенной работе, позволяет
изыскать новые пути повышения продуктивности птицы.
Осеменение замороженной спермой, полученной от племенных самцов, должно проводиться лишь в течение 1-1,5 мес.
Этого достаточно для получения от каждого производителя 5070 дочерей, по которым оценивают племенные достоинства
самца.
Замороженную сперму используют только от лучших
самцов после выяснения качества их потомства. Сперма остальных самцов подлежит уничтожению или ее используют для
осеменения самок промышленного стада.
Сперму самцов-улучшателей используют преимущественно свежей. Замораживают сперму от них лишь по окончании
данного племенного сезона, с тем чтобы использовать ее в последующие племенные сезоны.
При селекционно-генетических центрах необходимо создавать лаборатории долговременного хранения спермы птиц.
Такие лаборатории осуществляют методическое руководство
искусственным осеменением в племенных заводах и репродукторных хозяйствах. Они занимаются снабжением этих хозяйств
разбавителями спермы. Проводят работы по искусственному
осеменению и замораживанию спермы птиц, имеющихся в самом центре, создание сперматеки выдающихся самцов, выявленных в племенных заводах и своем хозяйстве, завоз спермы
выдающихся самцов из других селекционных центров и создание сперматеки самцов аборигенных пород.
Задача селекционеров состоит в том, чтобы смелее и шире
использовать в селекционной работе возможности, предоставляемые методами криоконсервации спермы птиц.
Для успешной работы по замораживанию спермы необходимо создать оптимальные условия. Помещение, в котором
производят замораживание, должно иметь хорошую естествен133
ную или принудительную вентиляцию. Работники должны быть
обеспечены защитными очками из органического стекла, брезентовыми, кожаными, асбестовыми рукавицами или перчатками.
При работе с жидким азотом следует строго соблюдать
правила техники безопасности, изложенные в соответствующих
инструкциях.
Азот в сосуд Дьюара, имеющий комнатную температуру,
заливают медленно. При этом нельзя заглядывать в горловину
сосуда, так как может произойти выброс жидкого азота и обжечь кожу.
При переливании азота из сосуда Дьюара в другой пользуются широкой металлической воронкой и вливают азот мелкими порциями с паузами в 6-5 с.
При заливке сосуда Дьюара жидким азотом из транспортного резервуара гибкий шланг должен достигать дна сосуда.
Для уменьшения конденсации кислорода воздуха на деталях и стенках сосуда, имеющих температуру жидкого азота,
горловину сосуда прикрывают, оставляя лишь небольшие отверстия для выхода паров азота. Выходя под небольшим давлением, пары азота препятствуют проникновению кислорода внутрь
сосуда.
При попадании жидкого азота на кожу пораженное место
надо быстро обмыть водой.
Повышение концентрации азота в воздухе помещения вызывает головную боль и может привести к потере сознания. В
этом случае пострадавшего нужно немедленно вынести на свежий воздух, а помещение проветрить.
При длительном хранении спермы в сосудах Дьюара или в
других хранилищах, при периодическом доливе в них жидкого
азота следует иметь в виду, что в сосудах происходит постепенное накопление кислорода. В процессе хранения азот испаряется
быстрее кислорода, так как температура кипения его равна –
196°С, а кислорода –183°С. По мере увеличения содержания
кислорода растет степень огнеопасности остающейся жидкости.
Поэтому после накопления кислорода до 15% сосуд опорожняют, сливают жидкость только там, где нет предметов органиче134
ского происхождения – дерева, бумаги, навоза и особенно промасленных тряпок.
Накопление кислорода в жидком азоте контролируют с
помощью газоанализатора ГХП-3 в больших сосудах раз в год, а
в сосудах Дьюара – раз в 6 мес.
Стеклянные ампулы и пипетки, гранулы, извлеченные из
азота, берут остуженным металлическим пинцетом или корнцангом, на концы которых натянуты резиновые или полиэтиленовые трубки.
Категорически запрещается оттаивать стеклянные ампулы
без защитных очков, так как при плохой запайке в ампулы может попасть жидкий азот, который при оттаивании быстро испаряется, создает в ампулах высокое давление и разрывает их.
При транспортировке сосуды Дьюара, наполненные жидким азотом, надежно закрепляют, а при транспортировке самолетом их заполняют азотом лишь наполовину.
Лица, прибывающие на птицефабрику за спермой, получают ее только в специальном помещении через контрольное
окно. Все сотрудники при входе в пункт искусственного осеменения должны надеть спецодежду, которую хранят в специальных шкафчиках.
Тара, термосы и другое оборудование из птицефабрик, неблагополучных по инфекционным заболеваниям не должны возвращаться в ППЗ. В свою очередь, термосы и другие предметы,
поступающие в ППЗ из благополучных птицефабрик, подвергаются обеззараживанию в специальном помещении согласно
«Ветеринарным правилам при воспроизводстве сельскохозяйственных животных и птиц».
Соблюдение санитарных нормативов при выращивании
сельскохозяйственной птицы в крупных птицеводческих предприятиях способствуют планомерной работе по увеличению
воспроизводства кур.
135
Библиографический список
1. Агеев В.Н. Промышленное птицеводство / В.Н Агеев,
Ф.Ф. Алексеев, М.А. Асриян; сост. В.И. Фисинин, Г.А. Тардатьян. М.: Агропромиздат, 1985. 324 с.
2. Акулов А.В. Патолого-анатомическая диагностика болезней птиц / А.В. Акулов, В.М. Апатенко, Б.Ф. Бессарабов. М.:
Колос, 1978. 320 с.
3. Методические рекомендации по диагностике и профилактике болезней органов яйцеобразования у кур / А.Б. Байдевлятов, Л.А. Ольховик, М.Б. Кузнецов. Харьков, 1983. 23 с.
4. Бессарабов Б.Ф. Болезни кур / Б.Ф. Бессарабов. М.: Россельхозиздат, 1974. с. 49- 55.
5. Бессарабов Б.Ф. Болезни сельскохозяйственной птицы /
Б.Ф. Бессарабов. М.: Колос, 1973. 212 с.
6. Бессарабов Б.Ф. Препараты для дезинфекции яиц при
промышленной инкубации / Б.Ф. Бессарабов, А.Б. Байдевлятов,
И.И. Мельникова. М.: МГАВМиБ, 1997. 16 с.
7. Бессарабов Б.Ф. Птицеводство и технология производства яиц и мяса птицы / Б.Ф. Бессарабов, Л.Д. Жаворонкова,
Т.А. Столяр. М.: Колос, 1994. 324 с.
8. Бессарабов Б.Ф. Рецептурный справочник по болезням
птиц / Б.Ф. Бессарабов, А.Б. Байдевлятов. Суммы: МКИПП
«Мрия», 1992. С. 100.
9. Бессарабов Б.Ф. Болезни органов размножения сельскохозяйственных птиц / Б.Ф. Бессарабов, А.Б. Байдевлятов,
И.И. Мельникова. М., 1997. С. 5-12.
10. Бессарабов Б.Ф. Гиповитаминозы / Б.Ф. Бессарабов,
И.И. Мельникова. М.: ЗооМедВет, 2001. 58 с.
11. Бессарабов Б.Ф. Методы контроля и профилактики незаразных болезней птиц / Б.Ф. Бессарабов, Л.М. Обухов,
И.Д. Шпильман. М.: Росагропромиздат, 1988. С. 231-235.
12. Бехтина В.Г. Морфологические особенности оплодотворения у кур // Физиология птиц / В.Г. Бехтина. Таллин, 1961.
С. 186-190.
13. Гончаров В.П. Особенности воспроизводительной
функции и искусственное осеменение сельскохозяйственной
136
птицы / В.П. Гончаров, З.И. Гришина, Д.А. Черепахин. М.:
МГАВМиБ, 1997. С. 6-12.
14. Справочник по болезням птиц / Сост.: В.Ф. Гусев,
Г.А. Кононов. Л.: Колос, 1969. С. 230-234.
15. Кирдяшкина Г.А. Прерывистое освещение племенных
кур яичных кроссов при искусственном осеменении: дис. на соис. уч. степ. канд. с-х. наук / Г.А. Кирдяшкина. Сергиев Посад,
2005. с.23.
16. Справочник ветеринарного врача птицеводческого
предприятия: в 2 кн. // Под. ред. Р.Н. Коровина. СПб., 1995.
С.328-329.
17. Лысов В.Ф. Особенности функциональных систем и
основы этологии сельскохозяйственной птицы / В.Ф. Лысов,
В.И. Максимов. М.: Агроконсалт, 2003. С.74-76.
18. Федотов С.В. Болезни органов размножения кур: монография / С.В. Федотов. Барнаул: Изд-во АГАУ, 2004. 171 с.
19. Федотов С.В. Физиология и патология воспроизводства кур: монография / С.В. Федотов. Барнаул: Изд-во АГАУ,
2006. 212 с.
20. Федотов С.В. Технология лечения и профилактика болезней органов размножения кур-несушек / С.В. Федотов //
Лучшие работы алтайских изобретателей, Алт. ВОИиР, Барнаул,
2006.
21. Федотов С.В. Классификация болезней репродуктивных органов кур-несушек / С.В. Федотов // Сельскохозяйственная наука АПК Сибири, Монголии, Казахстана и Кыргызстана;
труды 7-й Международной научно-практической конф. Монголия, Улан-Батор, 19-23 июля 2004 г. С. 405-416.
22. Федотов С.В. Гинекология и андрология домашних
животных / С.В. Федотов. Барнаул, 2003. 98 с.
23. Феоктистов П.И. Незаразные болезни. В кн.: Болезни
птиц / П.И. Феоктистов, В.М. Данилевский; Сост. Ф.М. Орлов.
М.: Колос, 1962. С. 340.
137
138
Учебное издание
Федотов Сергей Васильевич,
Федотов Василий Павлович
ПРОФИЛАКТИКА БОЛЕЗНЕЙ
И БИОТЕХНИКА РЕПРОДУКЦИИ КУР
В ФЕРМЕРСКИХ ХОЗЯЙСТВАХ
Учебное пособие
Издается в редакции авторов
ЛР № 020648 от 16 декабря 1997 г.
Подписано в печать 17.09.2007 г. Формат 60х84/16. Бумага для множительных аппаратов. Печать ризографная. Гарнитура «Times New Roman». Усл. печ. л. 9,4. Уч.-изд. л. 6,9. Тираж 50 экз. Заказ №
.
Издательство АГАУ
656049, г. Барнаул, пр. Красноармейский, 98
62-84-26