Лопатин С.В. - некробактериоза

РАСШИРЕННАЯ ТЕМА - НЕКРОБАКТЕРИОЗ
С. В. ЛОПАТИН
НЕКРОБАКТЕРИОЗ
КРУПНОГО РОГАТОГО СКОТА
// Ветеринария сельскохозяйственных животных. – 2007. - №12. – С. 9-15.
Некробактериоз крупного рогатого
скота — системное заболевание, проявляющееся гнойно-некротическим
воспалением преимущественно кожных покровов разных участков тела
(дисталъный отдел конечностей,
вымя, хвост), слизистых оболочек
(ротовая полость, половые органы),
внутренних органов (печень, легкие,
почки), при септическом процессе —
мышечной ткани.
имел широкое распроНекробактериоз
странение в 70—80-е годы прошлого века во
всех республиках бывшего Советского Союза.
С середины 90-х годов, с распадом СССР и
образованием на его основе независимых
суверенных
государств,
по
данным
официальной государственной ветеринарной
отчетности, во многих областях Российской
Федерации наметилась тенденция к снижению
числа неблагополучных по некробактериозу
пунктов и заболевших животных. Практически не поступает биоматериал для диагностики
болезни в ветеринарные лаборатории. Однако
результаты эпизоотологических исследований
указывают на значительное распространение
болезни на территории Сибирского региона,
Республики Татарстан, Европейской части
страны, и в независимых сопредельных государствах (А.А. Самоловов, 1993; Д. А. Хузин, Г. X Камалов, 1995; В. В. Максимович,
Э.И. Версией, 1999; Х.Н. Макаев и др., 2000;
В.Н. Кисленко с соавт., 2001; В.А. Молоканов,
В.М. Щеглов, М.Т. Байкенов, 2001; В.И.
Тетеричев и др., 2001; Т.Е. Какоулин, Л.Н.
Головкова, 2002).
Так, по данным О. И. Соломаха, Л. В. Кириллова (2001), в Российской Федерации
ежегодно болеют некробактериозом около
крупного и 16% — мелкого рогатого ско-
та. По распространенности болезнь занимает
третье место после лейкоза и туберкулеза.
А. Сидорчук, А. Воронец (2001) указывают, что
за последние 20—25 лет заболеваемость
крупного рогатого скота некробактериозом
вышла в структуре инфекционной патологии
на одно из первых мест.
Болезнь наносит неблагополучным хозяйствам большой экономический ущерб. По сообщениям Ю.Д. Караваева с соавт. (2003), в
процессе переболевания коровы теряли
30—40% массы тела и до одной тонны молока.
В оленеводстве из заболевших за год 50—70
тыс. животных 30—35% погибали.
Некробактериоз сельскохозяйс твенных
животных в большинстве случаев научными
работниками и практическими ветеринарными специалистами ассоциируется с гнойнонекротическими поражениями в области
дистального отдела конечностей. Однако с интенсификацией животноводства, связанной с
концентрацией животных, введением силосноконцентратного типа кормления и высокой
механизацией производственных процессов,
стали регистрировать поражения некробактериозной этиологии и других органов. Так, в
США у крупного рогатого скота, убиваемого
на мясо, в среднем у 12—32% животных регистрируют абсцессы печени (D.R. Brink et al.,
1990), при этом в отдельных группах они могут
варьировать от 1 до 95% (T.G. Nagaraja, М.М.
Chengappa, 1998).
Принимая во внимание, что возбудитель
некробактериоза является постоянным обитателем рубца жвачных, S. Narayanan et al. в
1997 г. подтвердили генетическую однотипность
изолятов
Fusobacterium
necrophorum,
выделенных из абсцессов печени и поражен ного эпителия рубца, a T.G. Nagaraja et al. (1999)
доказал, что снижение концентрации Fusobacterium
necrophorum в содержимом рубца способствует
уменьшению инцидентности абсцессов в
печени.
Этому также способствует увеличение
доли грубых кормов в рационе (R.A. Zinn,
ежемесячный научно-практический журнал
РАСШИРЕННАЯ ТЕМА - НЕКРОБАКТЕРИОЗ
A. Plascencia, 1996), о чем, на основании своих
исследований, убедительно показали Т.О.
Nagaraja, M. M Chengappa (1998), заключив, что
наибольшая инцидентность абсцессов печени
регистрируется в откормочных хозяйствах с
преобладанием высококонцент-ратного типа
кормления.
Наши исследования также показали, что
в животноводческих хозяйствах Сибири достаточно широко распространена патология
печени в виде абсцессов. Так, по данным
ветеринарно-санитарной экспертизы животных, убиваемых на Новосибирском мясокомбинате, абсцессы печени установлены в 25,4%
хозяйств, поставлявших скот с инцидентностью от 2,1 до 35,2% животных, достигая в
отдельных случаях 40—80%.
В настоящее время считается, что основными факторами, способствующими возникновению абсцессов печени, являются всевозможные
нарушения кормления животных, в том числе
несбалансированность рационов по количеству и типу кормов. Объясняется это тем, что
стенка рубца, подверженная высокой кислотности из-за несбалансированного кормления
и действия инородных предметов, становится
восприимчивой к вторжению и колонизации
возбудителя, который, обладая адгезивными
свойствами по отношению к эпителию рубца,
через кровь попадает в печень.
По нашим многолетним наблюдениям, в
Сибири у крупного рогатого скота в основном поражается кожа конечностей в области
мякишей, межкопытцевого свода и венчика.
В то же время зарубежные исследователи
из США, Великобритании, Италии поражения мягких тканей дистального отдела
конечностей подразделяют на четыре формы
клинического проявления (D.G. Baggot, 1978,
R.W. Blowey, 1994, S.L. Berry, 1997, С. Bergsten,
1999).
Тем не менее, мы наблюдали несколько
форм клинического проявления некробактериоза. Некоторые из них ранее не отмечены
(поражения сосков вымени, фрагментов кожи
в области рудиментарных копытцев).
В ЗАО «Авангард» Усть-Таркского района
Новосибирской области инфекционным заболеванием было поражено 350 дойных коров, или
70% стада. Болезнь протекала в летний период
(июль — август). В этот период часто шли
дожди.
Клинические признаки болезни — поражение кожи в области рудиментарных копытцев
задних конечностей. Пораженные участки
имели форму полосок размером 2,5—3,0 х 1,0—
2,0см. В начальной стадии развития за-
болевания отмечали отечность, гиперемию
кожи, болезненность при пальпации, хромоту,
повышение местной температуры. Во второй
стадии заболевания образовывалась рана
в виде язвы. Поверхность раны покрыта
фибринозно-гнойным экссудатом, на ней были
участки некроза. Раневая поверхность была
сухой; корочки фибринозного экссудата отторгались на 3—4-й день, образуя язву.
Одним из основных факторов, способствующих появлению некробактериоза, являлась
сырость на пастбище и в загонах. Заболеваемость коров некробактериозом прекратилась
в конце августа, когда установилась сухая
погода.
Второй случай некрабактериоза отмечен в
пастбищный период в ЗАО «Целинный» Новосибирской области. Заболеванию был подвержен молодняк в возрасте 12 мес.: 60% телочек
из 450 голов и 50% бычков из 320 голов. У
животных поражались участки кожи над
венчиком задних конечностей. Клинические
признаки заболевания: хромота, образование
воспалительного отека, что сопровождалось
припуханием кожи и повышением местной
температуры. Затем развивался абсцесс, с
последующим образованием язвы; от раны исходил запах сероводорода. Появление болезни
было связано с травмированием стеблями
сухой травы кожи конечностей в результате
засушливого жаркого лета.
Третий случай клинического проявления
некробактериоза связан с поражением кожи
сосков вымени. Эта форма некробактериоза
была отмечена у высокоудойных коров в
одном из хозяйств Новосибирской области.
При осмотре кожи сосков обнаруживались
гнойно-некротические язвы. Бактериоло гическим исследованием выделили чистую
культуру, патогенную для белых мышей. Поражения кожи сосков вымени были вызваны
травмированием ее резиной стаканов доильных аппаратов в процессе доения.
Поражение мышечной ткани тазовых конечностей при некробактериозе наблюдали
в нескольких хозяйствах Сибири (Новосибирская и Томская области, Красноярский
край). В этих хозяйствах некробактериозом
заболевали высокопродуктивные коровы и
первотелки. Коровы не хромали; дистальный
отдел конечностей не поражался. При убое
животных отмечали гнойно-некротические
поражения мышц тазового пояса, бедренной
кости и эпифизарной части костного мозга.
Мышечная ткань была вишневого цвета,
дряблой консистенции, от нее исходил неприятный запах. Костная ткань эпифиза на
разрезе наполнена кровью, костный мозг серокоричневого цвета, мягкой консистенции.
Согласно данным других исследований, с
интенсификацией откорма крупного рогатого
скота участились случаи появления гнойного
воспаления тканей хвоста, вызванные возбудителем некробактериоза F. necrophorum. Они
связывают это с односторонним кормлением
бычков и неудовлетворительными условиями
содержания (Л. А. Сергеева и П.Н. Баканов,
1982; А.А. Самоловов, 1989; P. Klucznick, 1976;
W. Goldhorn, 1984).
Имеются сообщения об этиологической роли
F. necrophorum в воспалении половых органов
(I.M. Sheldon et al., 2004; E.J. Williams et al.,
2005) и вымени животных (Т. Shinjo, 1983).
Эндометриты встречаются у 20 — 40% коров
после отела. По данным зарубежных
исследователей, этиология послеродовых
болезней у коров может быть связана со следующими возбудителями:
Arcanobacterium
pyogenes,
Fusobacterium
necrophorum,
Bacteroides melaninogenicus. Синергизм между
Arcanobacterium pyogenes и Fusobacterium
necrophorum усиливает их вирулентность, в
результате чего эндометрит у коров протекает
очень тяжело. Fusobacterium necrophorum
продуцирует лейкотоксин, который способствует
распространению
Arcanobacterium
pyogenes в ткани органов животных. В то же
время, Arcanobacterium pyogenes вырабатывает
фактор роста для Fusobacterium necrophorum
(R.A. Laven, A.R. Peters, 1996; G.S. Lewis, 1997;
E. Malinowski, 2004).
M. H. Коннов, В.Г. Гумеров, В. Г. Гафаров и
др., (2003), М.Н. Коннов (2004) в результате
вирусологических
и
бактериологических
исследований доказали, что этиологическими
агентами, вызывающими инфекционный баланопостит откормочных бычков, являются
герпесвирус типа 1 и бактерии Fusobacterium
necrophorum. Впервые установлено, что баланопостит у откормочных бычков протекает, в
основном, в виде смешанной инфекции.
В КП «Беклемишевское» Читинской области поражение бычков некробактериозом
в форме баланопостита составляло до 35% (А.
А. Ежинов, Б.Н. Бубеев, А. В. Волченко, 2002;
Б.Н. Бубеев, 2004).
При лабораторном исследовании проб
секретов из сосков вымени коров в летний
период содержания в 35% случаев выделяли
Cory neb acterium pyogenes, Peptococcus
indolicus — 31% и Fusobacterium necrophorum 22% (J.M. Van Den Bogaard, M.J. HazenU Vecht,
1987).
Некробактериозные поражения хвоста
были отмечены у бычков на откорме в одном
из хозяйств Новосибирской области. Заболевали бычки, находившиеся на втором периоде откорма. Болезнью было охвачено 23,5%
животных.
Показатели естественной резистентности
организма крупного рогатого скота как бактерицидная, так и лизоцимная активности
меняются в течение года. В хозяйствах, неблагополучных по некробактериозу, показатели
резистентности ниже, чем в благополучных
РАСШИРЕННАЯ ТЕМА - НЕКРОБАКТЕРИОЗ
хозяйствах, и они ниже у больных животных по сравнению со здоровыми. Динамика
показателей естественной резистентности и
заболеваемости имеет противоположную направленность, т. е. со снижением показателей
естественной резистентности увеличивается
заболеваемость и, наоборот, при повышении
резистентности снижается заболеваемость, при
коэффициенте корреляции: БА- г = -0,924, ЛАг = -0,600,
Следовательно, некробактериоз животных
следует рассматривать не как местное поражение тканей дистального отдела конечностей,
а как системное заболевание, которому свойственен эпизоотический процесс. Ведущими же факторами, влияющими на степень его
проявления, выступают условия кормления и
содержания. В хозяйствах при концентратном
(40,00—52,85%) типе кормления и продуктивностью от кг до 7700кг, заболеваемость
коров кожной формой некробактериоза колебалась от 8 до 50%, абсцессы печени — от
2,3 до 7,80%, отмечены единичные случаи
поражения мышечной ткани и сосков вымени. В хозяйствах при полуконцентратном
(25,3—37,91%) типе кормления коров и удое
на 1 фуражную корову от 2750 до 4000кг,
заболеваемость коров кожной формой некробактериоза колебалась от 8 до 24%, абсцессы
печени — от 1,81 до 2,05%.
Основным способом лабораторной диагностики некробактериоза крупного и мелкого
рогатого скота является бактериологическое
исследование: микроскопия мазка, посев на
питательные среды, биопроба на лабораторных животных.
По данным экспертиз районных и областных ветеринарных лабораторий в большинстве случаев диагноз на некробактериоз
не подтверждается. Одной из причин таких
заключений лабораторий мы связываем с трудоемкостью взятия для бактериологического
исследования некротизированных тканей из
пораженного пальца внутри роговой капсулы.
Второй причиной, на наш взгляд, является то,
что некротизированные участки тканей для
исследования отбираются с поверхности пораженного органа. На поверхности пораженных
тканей органа присутствует, как известно,
большое количество аэробных микроорганизмов. А возбудитель некробактериоза относится
к анаэробным микроорганизмам и в пораженном органе находится глубоко, на границе
здоровой и некротизированной тканей.
Для исследования в лабораторию направляют обычно пораженную фалангу по путовый сустав. Взятие из глубины пораженной
фаланги некротизированных фрагментов
тканей скальпелем, ножницами, пинцетом
или ложкой Фолькмана, как правило, всегда
очень затруднительно.
Мы предлагаем пораженную фалангу механически расчленить на несколько фрагментов
(3—4), в зависимости от степени поражения.
Затем в боксе из пораженных участков
фаланги ложкой Фолькмана, скальпелем,
ножницами или пинцетом, предварительно
обработанных 70% спиртом или подвергнутых
фломбированию над пламенем горелки,
отбирают пробы некротизированных тканей
для исследований. Дальнейшее бактериологическое исследование проводят согласно
«Методическим указаниям по лабораторной
диагностике некробактериоза» (1987).
При некробактериозе, особенно его кожной форме, наряду с основным возбудителем
в больших количествах присутствует сопутствующая микрофлора: стафилококки, стрептококки, микрококки, кишечная палочка и
другие микроорганизмы, препятствующие получению чистой культуры и своевременной и
правильной постановке диагноза. В целом на
постановку диагноза затрачивается 8—10
суток, а в случае значительного обсеменения
биологических
образцов
вульгарной
микрофлорой это время увеличивается на 6—
10 дней.
В настоящее время наиболее чувствительными и специфичными признаны способы
диагностики инфекционных болезней, основанные на выявлении генома возбудителя в
биологическом материале с помощью полимеразной цепной реакции.
Теоретически и практически обосновано,
что меры борьбы с некробактериозом крупного рогатого скота должны базироваться на
комплексном проведении организационнохозяйственных, ветеринарно-санитарных и
лечебно-профилактических мероприятий, воздействующих на все звенья эпизоотического
процесса — восприимчивое животное, возбудитель инфекции и факторы передачи.
В России с начала 90-х годов многочисленными группами авторов начались усиленные
исследования по изысканию биологических
препаратов, в частности вакцин разного типа,
для профилактики некробактериоза животных.
По данным А. Сидорчук, А. Воронец (2001),
применение вакцин нековак и нековак-стимул в
течение одного-двух лет способствует резкому
снижению количества больных животных в
неблагополучном стаде (с 30—50% до 1—5%),
а в ряде случаев дает возможность добиться
полной ликвидации заболевания. Как указывают авторы, в целях повышения эффективности
РАСШИРЕННАЯ ТЕМА НЕКРОБАКТЕРИОЗ
вакцинации необходимо сочетать применение
препарата с другими ветеринарно-санитарными
мероприятиями,
По сообщению О.И. Соломаха, Л.В. Кириллова (2001), среди животных, привитых
инактивированной формолвакциной, заболело
0,3% особей, при заболеваемости до вакцинации и в контроле от 15% до 30%.
Ю. Д. Караваев с соавт., (2004) на основании своих исследований показали, что
инактивированная эмульсин-вакцина предохраняет от заболевания около 98% привитых
животных и обладает терапевтическим
эффектом. Наилучший эффект отмечался в
тех хозяйствах, где было сбалансированное
кормление, вовремя проводилась обрезка копытцев у животных.
Авторами разработана и апробирована
вакцина ГОА ИЭВСиДВ, не уступающая по
эффективности другим известным вакцинам.
В 90-е годы в России разработкой вакцин
против некробактериоза занимались несколько научных коллективов: ГНУ ИЭВСиДВ гидроокисьалюминиевая вакцина; МВА и
ВГНКИ — нековак и нековак-ститул вакцины;
ВИЭВ — эмульгированная инактивированная
вакцина. Нами проведено одновременное испытание этих вакцин в неблагополучном хозяйстве Новосибирской области на одной и той же
ферме, при одинаковых условиях кормления,
хода и содержания животных (табл. 1).
Все вакцины применяли согласно наставлениям по их применению. Среднемесячная
заболеваемость животных в опытных группах
была достоверно ниже по сравнению с контрольными (Р<0,01). Однако, применение
только одного метода вакцинации для профилактики и ликвидации некробактериоза
животных в неблагополучном хозяйстве не
обеспечивает полную защиту животных от
данной болезни. Коэффициент снижения
интенсивности проявления эпизоотического
процесса после применения вакцин составил
от 41,1 до 59,78%.
За последние 10—15 лет для лечения больных некробактериозом животных было предло-
жено и апробировано значительное количество
неспецифических лечебных средств местного и
общего действия. Препараты общего действия
(левотетрасульфин, некрофар и др.) обладают
раздражающим действием на организм животных и содержат в своем составе большое
количество антибиотиков, что исключает возможность использования молочной и мясной
продукции в пищу в течение 7—10 дней после
их применения. После длительного их использования возможно привыкание возбудителя
некробактериоза к антибиотикам. Большинство лечебных препаратов, применяемых
местно при некробактериозе, обладают или
антимикробным, или только дегидратирующим
действием. Поэтому разработка эффективных
комплексных препаратов и поиск оптимальных
схем лечения крупного рогатого скота при
указанной болезни имеют большое значение
для сохранения поголовья.
Нами разработан и предложен для ветеринарной практики комплексный, безвредный
лечебный препарат для местного применения
- некрогель, обладающий антимикробным
действием в отношении микроорганизмов,
участвующих в инфекционном гнойно некротическом процессе при некробактериозе
животных.
Разработаны и испытаны два инъекционных препарата тетрацин, некросептин и препарат для местного применения — фузоцид.
Лечение крупного рогатого скота с инфицированными ранами дистальных отделов
конечностей осуществляли следующим образом. Первоначально выполняли туалет раны
с удалением гноя и свободнолежащих нежизнеспособных тканей с применением 0,25%-го
раствора перманганата калия. По возможности иссекали все некротизированные ткани,
вскрывали ниши, карманы. Далее орошали
раневую поверхность 3%-ным раствором перекиси водорода, обсушивали ватно-марлевым
тампоном. Наносили испытуемые препараты
и накладывали марлевую повязку с интервалом 2—3 дня. Лечебный эффект действия
препаратов сравнивали с контрольной груп-
Результаты одномоментного испытания разных разрабатываемых
противонекробактериозных вакцин
Таблица
1
1
^^^^^^^^•^^•^••••••нр^ '
•
' ~"* 'эщ
^•|^^нн^^^^^^^^^^^н^н^^^^^^^^^в^н^^н|^^^нвНЁ^:~:
........................
I
И
Коэффициент снижения интенсивности
- вакцина ГОА
ИЭВСиДВ
50,71
проявления
эпизоотического ироцесеа
2
- вакцина Нековак
46,1
3
- вакцина ВИЭВ
41,2
"'Ж;:
и/и
ежемесячный научно-практический журнал
РАСШИРЕННАЯ ТЕМА - НЕКРОБАКТЕРИОЗ
пой животных, раны которых обрабатывали
общепринятыми средствами.
Производственное испытание разрабатываемых препаратов проводили в неблагополучных
хозяйствах Новосибирской области, Алтайского края, в Республиках Татарстан и Хакасия, в
Таймырском автономном округе. Животных в
опытных группах лечили испытуемыми лечебными средствами согласно разработанных нами
наставлений по их применению, контрольных
- традиционными препаратами (присыпка
Плахотина, Островского, мазь Вишневского,
левотетрасульфин). В течение 30 дней с начала
лечения учитывали количество выздоровевших
животных и сроки их выздоровления. Лечебную эффективность препаратов оценивали по
количеству выздоровевших животных и продолжительности их лечения.
Некрогелъ — это многокомпонентная смесь
на водорастворимой основе, имеющая форму
мази
желто-коричневого
цвета,
со
специфическим запахом чеснока,, в состав
которой включены лекарственные вещества из
групп антибиотиков, сульфаниламидов, местноанастезирующих, антисептических средств
и формообразователей. Мазь некрогель испытана в 65 неблагополучных хозяйствах на
16865 больных животных в 12 субъектах
России. Лечебная эффективность мази колебалась от 84 до 90% и в среднем составила
86,33±0,53% (табл. 2).
В качестве присыпки предложен препарат
фузоцид на основе бентонита, лечебная эффективность которого при производственном
испытании составила 78,15±1,2% а общепринятых лечебных средств (присыпки Островского, Плахотина) была достоверно ниже
- 65,34± 1,1%.
Разработанные авторами инъекционные
препараты тетрацин и некросептин рекомендованы для применения при осложненной
стадии болезни.
Тетрацин — комплексный препарат, представляющий собой композит антибиотиков
нового поколения, пролангаторов и анальгезирующих веществ, который не вызывает
побочной реакции при введении больным
животным.
Некросептин — комплексный препарат,
представляющий собой композит антибиотиков,
пролангаторов и аналыезирующих веществ.
При производственном испытании на крупном рогатом скоте лечебная эффективность
составила: тетрацина — 92,7±0,46%, (Р<0,01),
некросептина - 84,7±0,56%, (Р<0,01), в контроле (левотетрасульфин) — 81,0±0,43%; на
северных оленях совместное применение тетрацина с некрогелем давало положительный
результат в 91,7%, (Х2=17,6; Р<0,01), взвеси
антибиотиков (окситетрациклина гидрохлорид) на 0,15% растворе агар-агара с мазью
Вишневского — 45,0%.
Лечебная эффективность некрогеля при некробактериозе
крупного рогатого скота в разных регионах страны
Наименование региона
юг
животных.
%
Количество
„
Получено
Таблица
2
Обработано
Выздоровело,
Л/ хозяйств
препарата,
Новосибирская область
34
621
9936
88
Алтайский край
10
120
1920
90
Республика Татарстан
5
215
3440
86
Томская область
2
21
335
84
Республика Хакасия
2
15
242
87
Кемеровская область
3
14
221
85
Читинская область
2
10
160
87
Кировская область
1
8
128
84
Тюменская область
1
6
96
85
Красноярский край
3
6
112
85
Краснодарский край
1
5
80
88
Таймырский АО (олени)
1
5
195
87
Итого по 12 -и регионам
65
1046
16865
86,33+0,53
«Ветеринария сельскохозяйственных животных» №12/2007
ежемесячный научно-практический журнал
I
Для лечения больных некробактериозом
животных предложено большое количество
разных препаратов, эффективность которых
не во всех случаях высокая. Это связано, повидимому, с тем, что многие исследователи не
учитывали или не указывали в своих работах
степень некробактериозного поражения, что,
на наш взгляд, может существенно влиять на
результаты лечения. Нами испытаны лечебные
препараты разных фирм-производителей
Мазь профезима серии 191294, предложенная НИКТИ БАВ НПО «Вектор».
Профезим -- бактериальный препарат протосубтилин, полученный из Вас. subtilis,
иммобилизованный на аминоэтиленцеллюлозе,
обладающий способностью быстро очищать
гнойно-некротические раны за счет длительного гидролиза денатурированных белков. Лечебная эффективность мази составила 65%.
Процеол - препарат НИКТИ БАВ НПО
«Вектор» применили для группового лечения
и профилактики некробактериоза крупного
рогатого скота в ножных ваннах. Лечебная
эффективность в первоначальном контролируемом научном опыте равнялась 95,6%.
Дальнейшее испытание процеола на разных
группах в разных хозяйствах при терапии
гнойных ран показало низкую терапевтическую
эффективность (60—70%). Данный препарат,
как и профезим при лечении гнойных ран необходимо применять с лечебными средствами,
способствующими заживлению ран.
Повиаргол — новый антисептик, — изготовлен НИИКТИ БАВ НПО «Вектор». Повиаргол
- коллоидное серебро, стабилизированное синтетическим полимером. Лечебная эффективность в научном опыте была лишь 33,3%.
Учитывая полученный недостаточно высокий результат применения мази повиаргола,
приготовили из порошкообразного повиаргола
гель на водорастворимой основе с добавлением
антибиотика тетрациклиновой группы и стабилизатора. Лечебная эффективность препарата
составила 100%.
Однако, учитывая очень высокую цену при
покупке повиаргола, мы вынуждены были отказаться от разработки препаратов на основе
коллоидного серебра.
Оксигель-К — изготовитель ЗАО «Фармтехнология». Оксигель-К представляет собой
вязкую опалесцирующую массу от желтого до
зеленевато-желтого цвета. Лечебная эффективность оксигеля-К составила 100%, присыпки
Островского — 85%. Препарат оксигель-К испытали в 3 хозяйствах Новосибирской области
на 184 больных некробактериозом животных, из
которых выздоровело 76,3±2,3%.
Данный препарат, также как процеол и
профезим при лечении гнойных ран необ
ходимо применять с лечебными средствами,
способствующими заживлению ран.
Тетрацин испытали в неблагополучном по
некробактериозу хозяйстве. Производственное испытание тетрацина без учета стадии
некробактериоза проведено в 4 неблагополучннных хозяйствах на 394 больных животных, из которых выздоровело в среднем
92,7±0,46%, (Р<0,01). В контрольной группе при
обработке левотетрасульфином 162 животных
лечебная
эффективность
составила
81,0±0,43%.
Таким образом, один тетрацин или в комплексе с некрогелем показал высокую лечебную эффективность в начальной и средней
стадиях некробактериоза крупного рогатого
скота. Продолжительность лечения больных
некробактериозом животных тетрацином в
начальной стадии в 2,5 раза меньше, чем некросептином, в средней стадии в комплексе с
некрогелем — в 2 раза. При производственном
испытании лечебная эффективность тетрацина составила 92,7±0,46%, некросептина 84,7±0,56%, левотетрасульфина — 81,0+0,43 82,0±0,66%. При внутримышечном введении
животным тетрацин не обладал раздражающим действием по сравнению с некросептином
и левотетрасульфином.
Тетрацин мы впервые испытали на больных
некробактериозом северных оленях в неблагополучном хозяйстве Таймырского автономного
округа.
Таким образом, при производственном
испытании на больных некробактериозом
северных оленях лечебная эффективность
тетрацина совместно с некрогелем оказалаь в
два раза выше (91,%) по сравнению с взвесью
антибиотиков (окситетрациклина гидрохлорид) на 0,15% растворе агар-агара с мазью
Вишневского.
В неблагополучных по некробактериозу
хозяйствах рационы кормления не сбалансированы по многим показателям; нарушены
обменные процессы организма животных с
проявлением клинических признаков остеодистрофии; ветеринарно-санитарное состояние
животноводческих помещений не соответствуют комфортным условиям содержания.
Оздоровление животных от некробактериоза возможно только после стабилизации
обменных процессов за счет нормированного
сбалансированного кормления и условий содержания, контролируемых по основным биохимическим показателям сыворотки крови.